JPH03240485A - 血液細胞処理剤 - Google Patents
血液細胞処理剤Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、血液細胞に作用して有用物質を産生させ得る
血液細胞処理剤に関する。
血液細胞処理剤に関する。
(従来の技術)
生理活性物質を不溶性担体に固定化したものはアフィニ
ティークロマトグラフ用吸着剤、治療用血液処理剤、抗
菌性材料その他分析用試薬などとして広く利用されてお
り、今後さらに幅広い応用が期待される重要な物質であ
る。
ティークロマトグラフ用吸着剤、治療用血液処理剤、抗
菌性材料その他分析用試薬などとして広く利用されてお
り、今後さらに幅広い応用が期待される重要な物質であ
る。
治療用血液処理剤のなかでも血液細胞を対象としたもの
としてはダラム陰性菌細胞壁由来のりボ多糖体を固定化
したちのく特開昭59−21145)やボークウッドマ
イトジェン等の植物レクチンを固定化したもの〔須賀原
はか、人口臓器 ■(3)、1401 (1989))
等が知られているが、これ等は毒性の強い物質を固定化
したものである。従って、それらの使用時にこれらリガ
ンドの溶出があってはならないが、化学構造が複雑な天
然物を固定化したものであるため、その可能性が皆無で
ある補償がない欠点があり、また、リガンドが高分子で
あるためその分子の中に複数の活性部位を持ち、それ故
その作用が複雑である欠点がある。
としてはダラム陰性菌細胞壁由来のりボ多糖体を固定化
したちのく特開昭59−21145)やボークウッドマ
イトジェン等の植物レクチンを固定化したもの〔須賀原
はか、人口臓器 ■(3)、1401 (1989))
等が知られているが、これ等は毒性の強い物質を固定化
したものである。従って、それらの使用時にこれらリガ
ンドの溶出があってはならないが、化学構造が複雑な天
然物を固定化したものであるため、その可能性が皆無で
ある補償がない欠点があり、また、リガンドが高分子で
あるためその分子の中に複数の活性部位を持ち、それ故
その作用が複雑である欠点がある。
(発明が解決しようとする課題)
本発明者らは、かかる従来技術の問題点に鑑み、毒性の
ない低分子化合物を不溶性担体に固定化し、これを血液
細胞と接触させることによって有用なサイトカイン等を
産生させられないか検討した結果、リポ多糖体の構成成
分であるN−アセチルノイラミン酸を固定化したものが
単核球系細胞にインターロイキン−1、インターロイキ
ン−6、TNF、G−C3FおよびGM−C3F等を産
生させることを見出し、本発明に到達した。
ない低分子化合物を不溶性担体に固定化し、これを血液
細胞と接触させることによって有用なサイトカイン等を
産生させられないか検討した結果、リポ多糖体の構成成
分であるN−アセチルノイラミン酸を固定化したものが
単核球系細胞にインターロイキン−1、インターロイキ
ン−6、TNF、G−C3FおよびGM−C3F等を産
生させることを見出し、本発明に到達した。
(課題を解決するための手段)
本発明は、以下の(1)〜(6)の技術的手段から構成
される。
される。
(1)不溶性担体の表面にN−アセチルノイラミン酸を
アミド結合で固定化して成る血液細胞処理剤。
アミド結合で固定化して成る血液細胞処理剤。
(2)不溶性担体が、シャーレ、瓶、膜、繊維、中空系
、粒状物またはこれ等を用いた組み立て品であることを
特徴とする上記(1)記載の血液細胞処理剤。
、粒状物またはこれ等を用いた組み立て品であることを
特徴とする上記(1)記載の血液細胞処理剤。
(3)白血球を上記(1)記載の血液細胞処理剤と接触
させることを特徴とするサイトカインの製造方法。
させることを特徴とするサイトカインの製造方法。
(4)サイトカインが、インターロイキン−1であるこ
とを特徴とする上記(3)記載のサイトカインの製造方
法。
とを特徴とする上記(3)記載のサイトカインの製造方
法。
(5)サイトカインが、コロニー刺激因子であることを
特徴とする上記(3)記載のサイトカインの製造方法。
特徴とする上記(3)記載のサイトカインの製造方法。
(6)サイトカインが、インターロイキン−6であるこ
とを特徴とする請求項第(3)項記載のサイトカインの
製造方法。
とを特徴とする請求項第(3)項記載のサイトカインの
製造方法。
(7)不溶性担体がスチレンまたはα−メチルスチレン
を主体とするビニル重合体成型品の表面にアミノメチル
基を導入したものであることを特徴とする上記(1)記
載の血液細胞処理剤。
を主体とするビニル重合体成型品の表面にアミノメチル
基を導入したものであることを特徴とする上記(1)記
載の血液細胞処理剤。
本発明でいう不活性担体とは、実質上不溶性で、第1級
または第2級アミノ基を有し、かつ、N−アセチルノイ
ラミン酸をアミド結合で固定することのできる担体を意
味する。該不溶性担体の形状はシャーレ、瓶、管、膜、
繊維、中空糸、粒状物またはこれ等を用いた組み立て品
のいずれでもよいが、とりわけ、これ等に光透過性があ
ると細胞の観察が容易にでき、細胞の管理がしやすいの
で好ましい。
または第2級アミノ基を有し、かつ、N−アセチルノイ
ラミン酸をアミド結合で固定することのできる担体を意
味する。該不溶性担体の形状はシャーレ、瓶、管、膜、
繊維、中空糸、粒状物またはこれ等を用いた組み立て品
のいずれでもよいが、とりわけ、これ等に光透過性があ
ると細胞の観察が容易にでき、細胞の管理がしやすいの
で好ましい。
本発明でいう不溶性担体の具体例をあげると、■スチレ
ンまたはα−メチルスチレンの単独重合体もしくはこれ
らの主成分とする芳香族ビニル系共重合体をシャーレ、
試験管、管、フィルム、瓶、注射筒、カテーテルなどに
成型したものの表面にアミノメチル基を導入したもの、
■スチレン/エチレン・ブチレンのABAブロックコポ
リマの膜にアミノメチル基を導入したもの、■ポリプロ
ピレン補強ポリスチレン繊維の表面にアミノメチル基を
導入したもの、■ポリスチレンまたはスチレン・ジビニ
ルベンゼン共重合体ビーズに、アミノメチル基を芳香核
置換基として導入したもの、■アミノプロピル化ガラス
ピーズなどがあげられるが、これ等に限定されるもので
はない。また、これらのなかでも、■と■が光透過性が
高く、且つ、取り扱いやすいので、特に、好ましく用い
られる。
ンまたはα−メチルスチレンの単独重合体もしくはこれ
らの主成分とする芳香族ビニル系共重合体をシャーレ、
試験管、管、フィルム、瓶、注射筒、カテーテルなどに
成型したものの表面にアミノメチル基を導入したもの、
■スチレン/エチレン・ブチレンのABAブロックコポ
リマの膜にアミノメチル基を導入したもの、■ポリプロ
ピレン補強ポリスチレン繊維の表面にアミノメチル基を
導入したもの、■ポリスチレンまたはスチレン・ジビニ
ルベンゼン共重合体ビーズに、アミノメチル基を芳香核
置換基として導入したもの、■アミノプロピル化ガラス
ピーズなどがあげられるが、これ等に限定されるもので
はない。また、これらのなかでも、■と■が光透過性が
高く、且つ、取り扱いやすいので、特に、好ましく用い
られる。
■の場合、成型品の厚みには特に制限はないが、実用に
耐える強度を維持するためには、通常、100ミクロン
以上の厚みを持つものが好ましく用いられる。また、そ
の光透過性に関しては該成型品の底面または側面の反対
側に存在する物質の形を確認可能にするに十分な光透過
性を有することが望ましい。該成型品の光透過性は主と
して表面での散乱によって決まるので、表面が完全に平
滑でな4Jればならない。該成型品の場合、500〜7
00ナノメーターの波長の光に対する吸光度が3以下で
あることが必要である。この吸光度が小さいほど該成型
品の光透過性が良(、吸光度が1以下であればさらに好
ましい。
耐える強度を維持するためには、通常、100ミクロン
以上の厚みを持つものが好ましく用いられる。また、そ
の光透過性に関しては該成型品の底面または側面の反対
側に存在する物質の形を確認可能にするに十分な光透過
性を有することが望ましい。該成型品の光透過性は主と
して表面での散乱によって決まるので、表面が完全に平
滑でな4Jればならない。該成型品の場合、500〜7
00ナノメーターの波長の光に対する吸光度が3以下で
あることが必要である。この吸光度が小さいほど該成型
品の光透過性が良(、吸光度が1以下であればさらに好
ましい。
本発明血液細胞処理剤の製造は、不溶性担体をに一アセ
チルノイラミン酸とカルボジイミドの混合溶液に加える
か、N−ヒドロキシスクシンイミドエステルで代表され
る活性エステルの溶液中に浸漬することにより容易に達
成される。
チルノイラミン酸とカルボジイミドの混合溶液に加える
か、N−ヒドロキシスクシンイミドエステルで代表され
る活性エステルの溶液中に浸漬することにより容易に達
成される。
本発明でいうサイトカインとはインターロイキン−1、
インターロイキン−2、インターロイキン−6等で代表
されるインターロイキン類、0MC3F、(、−C3F
等で代表されるコロニー刺激因子、インターフェロン、
TNF等を意味する。
インターロイキン−2、インターロイキン−6等で代表
されるインターロイキン類、0MC3F、(、−C3F
等で代表されるコロニー刺激因子、インターフェロン、
TNF等を意味する。
本発明で用いるN−アセチルノイラミン酸は動物界に広
く存在する炭素数が9個のα−ケト酸であるが、有機合
成の手段でも得ることができる。
く存在する炭素数が9個のα−ケト酸であるが、有機合
成の手段でも得ることができる。
水酸基をカルボン酸エステルにしたものも細胞が分泌す
る加水分解酵素によって容易に脱エステル化されるので
、同様に用いることができる。なお実施例3に示めされ
るように、この物は固定化しない状態ではサイトカイン
の誘導能は殆どない。
る加水分解酵素によって容易に脱エステル化されるので
、同様に用いることができる。なお実施例3に示めされ
るように、この物は固定化しない状態ではサイトカイン
の誘導能は殆どない。
不溶性担体に固定化して初めて活性がでる。
コロニー刺激因子は軟寒天中で顆粒球、マクロファージ
の幹細胞を刺激して、成熟した顆粒球やマクロファージ
から成るコロニーを形成させる特異的刺激因子として知
られている糖蛋白質である。
の幹細胞を刺激して、成熟した顆粒球やマクロファージ
から成るコロニーを形成させる特異的刺激因子として知
られている糖蛋白質である。
コロニー刺激因子の中には、GM−C3F、GC3F、
M−C3F等があることが知られている。
M−C3F等があることが知られている。
また、これ等は単球、マクロファージ、線維芽細胞、血
管内皮細胞、骨髄ストローマ等によって産生されること
が知られている。GM−C3Fは白血球の数の増加だけ
でな(、顆粒球機能の亢進の作用もあることが知られて
おり、骨髄性白血病の治療、AIDSや癌の化学療法後
の白血球減少症の治療のためにも使われている[実験医
学 1(15)(増刊)198−203 (1989)
)。
管内皮細胞、骨髄ストローマ等によって産生されること
が知られている。GM−C3Fは白血球の数の増加だけ
でな(、顆粒球機能の亢進の作用もあることが知られて
おり、骨髄性白血病の治療、AIDSや癌の化学療法後
の白血球減少症の治療のためにも使われている[実験医
学 1(15)(増刊)198−203 (1989)
)。
また、G−C3Fも同様に重症感染症の予防や治療に用
いられる〔実験医学 ユ(15)(増刊)191197
(1989))。
いられる〔実験医学 ユ(15)(増刊)191197
(1989))。
インターロイキン−1は白血球が産生ずる発熱物質とし
て古くから知られているが、最近ではいろんな作用のあ
ることが知られており、特に抗腫瘍効果や造血促進作用
があり、臨床への利用が試みられている(実験医学 7
(15)(増刊)170−177 (1989))。
て古くから知られているが、最近ではいろんな作用のあ
ることが知られており、特に抗腫瘍効果や造血促進作用
があり、臨床への利用が試みられている(実験医学 7
(15)(増刊)170−177 (1989))。
血液細胞を本発明の血液細胞処理剤と接触させながら培
養すると、血液細胞は活性化されて、実施例3に示すよ
うに高濃度の種々のサイトカインを産生じた。この場合
、血液細胞の中から単球だけを取り出して処理すること
もできるし、いろんな血液細胞の混合物を処理する利用
方法もある。
養すると、血液細胞は活性化されて、実施例3に示すよ
うに高濃度の種々のサイトカインを産生じた。この場合
、血液細胞の中から単球だけを取り出して処理すること
もできるし、いろんな血液細胞の混合物を処理する利用
方法もある。
産生されたサイトカインはin vivoおよびin
vitr。
vitr。
での白血球増加剤として利用できる。
本発明の血液細胞処理剤の利用としては血液回路、細胞
培養用器具、体外循環用カラム充填材料等への利用があ
げられる。
培養用器具、体外循環用カラム充填材料等への利用があ
げられる。
(発明の効果)
本発明の血液細胞処理剤は、■サイトカイン等の有用物
の産生に用いることができること、■化学的に安定なア
ミド結合で固定化されているので、溶出の心配がないこ
と、■万一、溶出しても無毒な化合物であること、■細
胞を傷めない等の利点を有する。
の産生に用いることができること、■化学的に安定なア
ミド結合で固定化されているので、溶出の心配がないこ
と、■万一、溶出しても無毒な化合物であること、■細
胞を傷めない等の利点を有する。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。
なお、実施例中の評価方法は、以下に従った。
■、芳香族ビニル系重合体成型品の化学的解析成型品を
塩化メチレンでソックスレー抽出すると不溶性の膜状物
が得られるので、これを真空乾燥し、重量を量り、赤外
線吸収スペクトル測定等を行った。
塩化メチレンでソックスレー抽出すると不溶性の膜状物
が得られるので、これを真空乾燥し、重量を量り、赤外
線吸収スペクトル測定等を行った。
2、赤外線吸収スペクトル
島津フーリエ変換赤外分光光度針FTIR4300を用
いKBr錠剤法で測定した。
いKBr錠剤法で測定した。
3、成型品の光透過性の測定
島津分光光度計UV2100を用い、500ナノメータ
ーで板状成型品に垂直方向の吸光度を測0 定した。対照として同じ厚さのポリスチレン板状成型品
の吸光度を測定し、両者の差をA S 011とした。
ーで板状成型品に垂直方向の吸光度を測0 定した。対照として同じ厚さのポリスチレン板状成型品
の吸光度を測定し、両者の差をA S 011とした。
従って、その値が小さいほど成型品の光透過性が高いこ
とになる。
とになる。
4、N−アセチルノイラミン酸の定量
シアル酸の定量法(生化学実験法 23 1!蛋白質実
験法 17頁 学会出版センター)にもとづいて、蛍光
標識1.2−ジアミノ−45−メチレンジオキシベンゼ
ンを反応させ、高速液体クロマトグラフィーで定量した
。
験法 17頁 学会出版センター)にもとづいて、蛍光
標識1.2−ジアミノ−45−メチレンジオキシベンゼ
ンを反応させ、高速液体クロマトグラフィーで定量した
。
5、サイトカインの定量
CM−C3F、G−C3F、インターロイキン1はMT
T法(T8Mosman+ジャーナル オブザ イミュ
ノロジカル メソツズ 6555〜63 (1983)
)により分析した。
T法(T8Mosman+ジャーナル オブザ イミュ
ノロジカル メソツズ 6555〜63 (1983)
)により分析した。
インターロイキン−6はインターロイキン−6依存性細
胞の増殖率により分析した。
胞の増殖率により分析した。
TNFはL929をインジケーターセルとした殺細胞能
により定量した。
により定量した。
実施例1゜
1−二トロプロパン500mと硫酸272m1の混合溶
液を0°Cに冷却し、20.4 gのN−メチロール−
α−クロルアセトアミドを加え、0〜10°Cで溶解し
た。
液を0°Cに冷却し、20.4 gのN−メチロール−
α−クロルアセトアミドを加え、0〜10°Cで溶解し
た。
この溶液を10°Cに昇温したのち、φ3.5cmX1
.2mmHのポリスチレン製培養皿(厚み1mm)に1
1m2ずつ入れ、室温でlhr反応させた。反応液を捨
て、培養皿を零下20°Cのメタノールに浸し、さらに
メタノールおよび水で洗った後、真空乾燥して、内部表
面だけクロルアセトアミドメチル化された成型品Aを得
た。この成型品のA 500は0.050であった。
.2mmHのポリスチレン製培養皿(厚み1mm)に1
1m2ずつ入れ、室温でlhr反応させた。反応液を捨
て、培養皿を零下20°Cのメタノールに浸し、さらに
メタノールおよび水で洗った後、真空乾燥して、内部表
面だけクロルアセトアミドメチル化された成型品Aを得
た。この成型品のA 500は0.050であった。
上記で得た成型品A1個を、塩化メチレンでソックスレ
ー抽出したところ、薄膜状の不溶物3.1mgが得られ
た。培養皿の反応面は表面積は21cm2であるので、
反応部の厚みは大体1.2μと考えられる。また、この
不溶物の赤外線吸収スペクトルでは、1659cm”(
アミド−■)、1529cm”(アミド−■)および3
297cm−’ (N−H)にアミド基の強い吸収が認
めら1 2 れたことからその構造を確認した。
ー抽出したところ、薄膜状の不溶物3.1mgが得られ
た。培養皿の反応面は表面積は21cm2であるので、
反応部の厚みは大体1.2μと考えられる。また、この
不溶物の赤外線吸収スペクトルでは、1659cm”(
アミド−■)、1529cm”(アミド−■)および3
297cm−’ (N−H)にアミド基の強い吸収が認
めら1 2 れたことからその構造を確認した。
上記で得た成型品A40個を、2000dの10%ジメ
チルアミノエタノール・ジメチルスルホキサイド溶液中
に浸し、室温で18hr静置した後、2000dの10
%ジメチルアミノエタノール水溶液中、70°Cで2h
r加熱した。成型品を水洗後、乾燥して、アミノメチル
化成型品Bを得た。
チルアミノエタノール・ジメチルスルホキサイド溶液中
に浸し、室温で18hr静置した後、2000dの10
%ジメチルアミノエタノール水溶液中、70°Cで2h
r加熱した。成型品を水洗後、乾燥して、アミノメチル
化成型品Bを得た。
この成型品のA5゜。は0.05であった。
上記本発明の成型品B1個を、塩化メチレンでソックス
レー抽出したところ、薄膜状の不溶物2、3 m gが
得られた。この不溶物の赤外線吸収スペクトルでは、成
型品Aで認められた1659cm−’(アミド−■)お
よび1529cm−’(アミド−■)の第一級アミド基
の強い吸収c m−’が完全に消失していたことからそ
の構造を確認した。
レー抽出したところ、薄膜状の不溶物2、3 m gが
得られた。この不溶物の赤外線吸収スペクトルでは、成
型品Aで認められた1659cm−’(アミド−■)お
よび1529cm−’(アミド−■)の第一級アミド基
の強い吸収c m−’が完全に消失していたことからそ
の構造を確認した。
上記本発明の成型品810個を500 mflの水に浸
し、N/100−塩酸でPH5〜6に調整した後、成型
品Bの内部に0.2mg/m1ON−アセチルノイラミ
ン酸水溶液4mβと1−エチル−3=(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩8mgを加え、室
温で48hr静置した。
し、N/100−塩酸でPH5〜6に調整した後、成型
品Bの内部に0.2mg/m1ON−アセチルノイラミ
ン酸水溶液4mβと1−エチル−3=(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩8mgを加え、室
温で48hr静置した。
反応液を捨て、水洗して、本発明の血液細胞処理剤であ
る成型品Cを得た。母液中のN−アセチルノイラミン酸
の濃度から0.022 m g固定化されたことが確認
された。また、成型品上のN〜ルアセチルノイラミンは
N/4O−NaOHで洗浄しても溶出のないことを確認
した。
る成型品Cを得た。母液中のN−アセチルノイラミン酸
の濃度から0.022 m g固定化されたことが確認
された。また、成型品上のN〜ルアセチルノイラミンは
N/4O−NaOHで洗浄しても溶出のないことを確認
した。
実施例2゜
ポリスチレン製細胞培養用マルチプレート12F(住友
ベークライト製)の各ウェルに実施例1のアミドメチル
化反応液を5戚ずつ入れ、室温で60m1n、反応させ
た。反応液を捨て、零下20°Cのメタノールに投じ、
実施例1と同様に処理して、内部表面だけクロルアセト
アミドメチル化された成型品りを得た。
ベークライト製)の各ウェルに実施例1のアミドメチル
化反応液を5戚ずつ入れ、室温で60m1n、反応させ
た。反応液を捨て、零下20°Cのメタノールに投じ、
実施例1と同様に処理して、内部表面だけクロルアセト
アミドメチル化された成型品りを得た。
これを実施例1と同様に10%ジメチルアミノエタノー
ル・ジメチルスルホキサイド溶液および10%ジメチル
アミノエタノール水溶液で処理して、内部表面だけアミ
ノメチル化された成型品Eを得た。
ル・ジメチルスルホキサイド溶液および10%ジメチル
アミノエタノール水溶液で処理して、内部表面だけアミ
ノメチル化された成型品Eを得た。
3
4
成型品Eを1000戚の水に浸し、N/100塩酸でp
H5〜6に調整した後、風乾し、次に、成型品Eの6
個のウェルに0.2mg/mのN−アセチルノイラミン
酸水溶液21n1と1−エチル−3=(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボイミド塩酸塩4 m、 gを加え
、室温で48hr静置した。
H5〜6に調整した後、風乾し、次に、成型品Eの6
個のウェルに0.2mg/mのN−アセチルノイラミン
酸水溶液21n1と1−エチル−3=(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボイミド塩酸塩4 m、 gを加え
、室温で48hr静置した。
反応液を捨て、水洗して、本発明の血液細胞処理剤であ
る成型品Fを得た。母液中のN−アセチルノイラミン酸
の濃度から0.020mg固定化されたことが確認され
た。
る成型品Fを得た。母液中のN−アセチルノイラミン酸
の濃度から0.020mg固定化されたことが確認され
た。
実施例3
マウスマクロファージ株TME9 (小川恭喜ほか、日
本免疫学会総会・学術集会記録、±1599(1987
))を3 X 10−’Mの2−メルカプトエタノール
、50U/dのペニシリン(万有)、50μg / m
flのストレプトマイシン(明治製菓)およびウシ胎児
血清を10%含むRPM11640(Gibco)に3
X10−5個/成浮遊したものを、実施例2で得られた
成型品F1個(紫外線照射滅菌)のN−アセチルノイラ
ミン酸を固定化した6個のウェルとN−アセチルノイラ
ミン酸を固定化しなかった6個のウェルとに1−ずつ入
れ、インキュベーター中(37°C15%C02)で2
0hr培養した。細胞の様子を顕微鏡で観察したが、少
し傷害を受けている様子が認められた。培養上清を取っ
てその中のサイトカインを調べたところ、N−アセチル
ノイラミン酸を固定化した6個のウェルではGM−C3
Fは8.2U/戒、G−C3Fは30.3U/In1、
IL−1は14.9U/d、TNFは6.8U/d、I
L−6は3.4X10’U/dといずれも高い活性が認
められた。一方、N−アセチルノイラミン酸を固定化し
なかった6個のウェルではGM−C3Fは1.6U/d
以下、G−C3Fは1.2U/成以下、I L −1は
IU/d以下、TNFは2U/d以下IL−6は9U/
dといずれも活性が認められ無かった。また、市販の培
養用シャーレ(FALCON 1008)を用い、N
−アセチルノイラミン酸を30μg / rn(lを加
えて、上記と同様に培養した系ではGM−C3Fは1、
5 U/戚以下であった。
本免疫学会総会・学術集会記録、±1599(1987
))を3 X 10−’Mの2−メルカプトエタノール
、50U/dのペニシリン(万有)、50μg / m
flのストレプトマイシン(明治製菓)およびウシ胎児
血清を10%含むRPM11640(Gibco)に3
X10−5個/成浮遊したものを、実施例2で得られた
成型品F1個(紫外線照射滅菌)のN−アセチルノイラ
ミン酸を固定化した6個のウェルとN−アセチルノイラ
ミン酸を固定化しなかった6個のウェルとに1−ずつ入
れ、インキュベーター中(37°C15%C02)で2
0hr培養した。細胞の様子を顕微鏡で観察したが、少
し傷害を受けている様子が認められた。培養上清を取っ
てその中のサイトカインを調べたところ、N−アセチル
ノイラミン酸を固定化した6個のウェルではGM−C3
Fは8.2U/戒、G−C3Fは30.3U/In1、
IL−1は14.9U/d、TNFは6.8U/d、I
L−6は3.4X10’U/dといずれも高い活性が認
められた。一方、N−アセチルノイラミン酸を固定化し
なかった6個のウェルではGM−C3Fは1.6U/d
以下、G−C3Fは1.2U/成以下、I L −1は
IU/d以下、TNFは2U/d以下IL−6は9U/
dといずれも活性が認められ無かった。また、市販の培
養用シャーレ(FALCON 1008)を用い、N
−アセチルノイラミン酸を30μg / rn(lを加
えて、上記と同様に培養した系ではGM−C3Fは1、
5 U/戚以下であった。
5
6
Claims (7)
- (1)不溶性担体の表面にN−アセチルノイラミン酸を
アミド結合で固定化して成る血液細胞処理剤。 - (2)不溶性担体の形状が、シヤーレ、瓶、膜、繊維、
中空糸、粒状物またはこれ等を用いた組み立て品である
ことを特徴とする請求項第(1)項記載の血液細胞処理
剤。 - (3)白血球を請求項第(1)項記載の血液細胞処理剤
と接触させることを特徴とするサイトカインの製造方法
。 - (4)サイトカインが、インターロイキン−1であるこ
とを特徴とする請求項第(3)項記載のサイトカインの
製造方法。 - (5)サイトカインが、コロニー刺激因子であることを
特徴とする請求項第(3)項記載のサイトカインの製造
方法。 - (6)サイトカインが、インターロイキン−6であるこ
とを特徴とする請求項第(3)項記載のサイトカインの
製造方法。 - (7)不溶性担体がスチレンまたはα−メチルスチレン
を主体とするビニル重合体成型品の表面にアミノメチル
基を導入したものであることを特徴とする請求項第(1
)項記載の血液細胞処理剤。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2033945A JPH03240485A (ja) | 1990-02-16 | 1990-02-16 | 血液細胞処理剤 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2033945A JPH03240485A (ja) | 1990-02-16 | 1990-02-16 | 血液細胞処理剤 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03240485A true JPH03240485A (ja) | 1991-10-25 |
Family
ID=12400650
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2033945A Pending JPH03240485A (ja) | 1990-02-16 | 1990-02-16 | 血液細胞処理剤 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH03240485A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006132236A1 (ja) * | 2005-06-10 | 2006-12-14 | National University Corporation Okayama University | 白血球及び/又は造血幹・前駆細胞動員剤 |
-
1990
- 1990-02-16 JP JP2033945A patent/JPH03240485A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006132236A1 (ja) * | 2005-06-10 | 2006-12-14 | National University Corporation Okayama University | 白血球及び/又は造血幹・前駆細胞動員剤 |
JP2006342131A (ja) * | 2005-06-10 | 2006-12-21 | Okayama Univ | 白血球及び/又は造血幹・前駆細胞動員剤 |
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