JPH02203794A - Monoclonal antibody for oncogene product - Google Patents

Monoclonal antibody for oncogene product

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JPH02203794A
JPH02203794A JP63317637A JP31763788A JPH02203794A JP H02203794 A JPH02203794 A JP H02203794A JP 63317637 A JP63317637 A JP 63317637A JP 31763788 A JP31763788 A JP 31763788A JP H02203794 A JPH02203794 A JP H02203794A
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Michiyo Tanaka
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Shunsuke Ishii
俊輔 石井
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Abstract

PURPOSE:To obtain a monoclonal antibody which specifically reacts with a protein corresponding to cellular oncogene, c-myb, to enable higher accurate diagnosis of the canceration of hematopoietic cells. CONSTITUTION:The immunoassay of the protein corresponding to cellular oncogene, c-myb, is effected using a combination of a monoclonal antibody which reacts with the whole protein of about 85 kilodalton, corresponding to a cellular oncogene and also reacts with the protein which is formed by removing the peptide of 35 kilodalton from the C-terminal side of the whole protein, and another monoclonal antibody which reacts with the whole protein of about 85 kilodalton, corresponding to cellular oncogene, c-myb, but does not reacts with the protein which is formed by removing the peptide of about 35 kilodalton from the C-terminal side of the whole protein.

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 この発明は、新規なモノクローナル抗体、そのモノクロ
ーナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞、およびその
モノクローナル抗体を用いる免疫定量法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] This invention relates to a novel monoclonal antibody, a hybridoma cell secreting the monoclonal antibody, and an immunoassay method using the monoclonal antibody.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

癌遺伝子産物、すなわち癌遺伝子に対応する蛋白質の量
を測定することによる癌の診断法が知られている。造血
系細胞の癌化の診断方法としては、細胞性癌遺伝子c−
mybに対応する蛋白質(以下、c−myb蛋白質と称
することがある)の、細胞溶解質中の濃度を測定する方
法が従来から知られている。
A method for diagnosing cancer by measuring the amount of oncogene products, ie, proteins corresponding to oncogenes, is known. As a method for diagnosing canceration of hematopoietic cells, cellular oncogene c-
A method for measuring the concentration of a protein corresponding to myb (hereinafter sometimes referred to as c-myb protein) in cell lysate has been known.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problem to be solved by the invention]

しかしながら、従来の免疫測定法においては、c−my
b蛋白質で免疫した動物から得られた抗血清に含まれて
いるポリクローナル抗体が用いられていたので、特異性
が低(再現性に欠けるという欠点があった。本発明の目
的は、c−myb蛋白質に特異的なモノクローナル抗体
を提供し、更に特異性が高く、しかも再現性のあるc−
myb蛋白質の免疫測定法を提供することにある。
However, in conventional immunoassays, c-my
Since polyclonal antibodies contained in antisera obtained from animals immunized with c-myb protein were used, they had the disadvantage of low specificity (lack of reproducibility). We provide protein-specific monoclonal antibodies and highly specific and reproducible c-
An object of the present invention is to provide an immunoassay method for myb protein.

〔課題を解決するための手段〕[Means to solve the problem]

前記の目的は、本発明により、 (1)細胞性癌遺伝子c−mybに対応する約85キロ
ダルトンの蛋白質全体(以下、全c−myb蛋白質と略
称することがある)と反応し、しかも前記の約85キロ
ダルトンの蛋白質全体(すなわち全c−+++yb蛋白
質)からC末端側ペプチド約35キロダルトンが脱落し
た蛋白質(以下、c−myb蛋白質50と略称すること
がある)とも反応するモノクローナル抗体、および (2)全c−myb蛋白質とは反応するが、c−myb
蛋白質50とは反応しないモノクローナル抗体によって
達成することができる。
The above object, according to the present invention, (1) reacts with the entire protein of about 85 kilodaltons (hereinafter sometimes abbreviated as whole c-myb protein) corresponding to the cellular oncogene c-myb; A monoclonal antibody that also reacts with a protein in which about 35 kilodaltons of the C-terminal peptide have been removed from the entire protein of about 85 kilodaltons (i.e., the whole c-+++yb protein) (hereinafter sometimes abbreviated as c-myb protein 50); and (2) reacts with all c-myb proteins, but c-myb
This can be achieved using a monoclonal antibody that does not react with protein 50.

更に、本発明は (a)全c−ayb蛋白質で免疫したマうスの脾臓細胞
とマウスのミエローマ細胞との融合によって形成され、
そして (b)全c−myb蛋白質と反応し、しかもc−a+y
b蛋白質50とも反応するモノクローナル抗体を分泌す
る、 ことを特徴とするハイブリドーマ細胞に関する。
Furthermore, the present invention provides (a) cells formed by fusion of mouse spleen cells and mouse myeloma cells immunized with whole c-ayb protein;
and (b) reacts with all c-myb proteins, and c-a+y
The present invention relates to a hybridoma cell characterized in that it secretes a monoclonal antibody that also reacts with b protein 50.

更に、本発明は、 (a)全c−myb蛋白質で免疫したマウスの脾臓細胞
とマウスのミエローマ細胞との融合によって形成され、
そして (b)全c−myb蛋白質とは反応するが、c−myb
蛋白質50とは反応しないモノクローナル抗体を分泌す
る、 ことを特徴とするハイブリドーマ細胞に関する。
Furthermore, the present invention provides: (a) formed by the fusion of mouse spleen cells and mouse myeloma cells immunized with whole c-myb protein;
and (b) reacts with all c-myb proteins, but c-myb
The present invention relates to a hybridoma cell characterized by secreting a monoclonal antibody that does not react with protein 50.

更に本発明は、細胞性癌遺伝子c−mybに対応する蛋
白質に対するモノクローナル抗体1種以上を用いること
を特徴とする、水性液体中の細胞性癌遺伝子c−a+y
bに対応する蛋白質の免疫定量方法にも関する。
Furthermore, the present invention is characterized in that one or more monoclonal antibodies against a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb are used to detect the cellular oncogene c-a+y in an aqueous liquid.
The present invention also relates to a method for immunoassaying the protein corresponding to b.

以下、本発明の詳細な説明する。The present invention will be explained in detail below.

細胞性癌遺伝子c−myb遺伝子に対応する蛋白質に対
するモノクローナル抗体である本発明による抗C−麟y
b蛋白質モノクローナル抗体は、新規なマウス・ハイブ
リドーマ細胞をイン・ビトロ(例えば培地中)またはイ
ン・ビボ(例えばマウスの腹腔内)で培養することによ
って製造することができる。
Anti-C-liny according to the present invention, which is a monoclonal antibody against the protein corresponding to the cellular oncogene c-myb gene
b protein monoclonal antibodies can be produced by culturing novel mouse hybridoma cells in vitro (eg, in culture) or in vivo (eg, intraperitoneally in mice).

ここで用いるマウス・ハイブリドーマ細胞は、−船釣に
はc−myb蛋白質で免疫したマウスの脾臓細胞とマウ
スのミエローマ細胞(骨髄腫細胞)とを、Kohler
およびMilsLeinの方法(Nature、第25
6巻495頁(1975年)参照〕により細胞融合して
製造することが可能である。
The mouse hybridoma cells used here are: - Mouse spleen cells immunized with c-myb protein and mouse myeloma cells (myeloma cells) were used for boat fishing.
and MilsLein's method (Nature, No. 25)
6, p. 495 (1975)], it can be produced by cell fusion.

また、上記のハイブリドーマ細胞を培養する培地として
は、ハイブリドーマ細胞の培養に適した任意の培地を用
いることができ、好適にはダルベツコ氏変法イーグル氏
培地(Dulbecco’s modifiedEea
gle’s n+edium H以下DME、と記す)
にウシ胎児血清、L−グルタミン、L−ピルビン酸およ
び抗生物質くペニシリンGとストレプトマイシン)を含
む培地が用いられる。
Further, as a medium for culturing the above-mentioned hybridoma cells, any medium suitable for culturing hybridoma cells can be used, and Dulbecco's modified Eea medium is preferably used.
gle's n+edium H (hereinafter referred to as DME)
A medium containing fetal bovine serum, L-glutamine, L-pyruvic acid, and antibiotics (penicillin G and streptomycin) is used.

上記のハイブリドーマ細胞の培養は、イン・ビトロの場
合には例えば培地中で5%C0zrj1度および37℃
で約3日間、またイン・ビボ例えばマウスの腹腔内で培
養する場合には約14日間実施する。
The above hybridoma cells may be cultured in vitro at 5% C0zrj 1 degree and 37°C in a culture medium, for example.
The culture is carried out for about 3 days, or for about 14 days when cultured in vivo, for example, intraperitoneally in mice.

このようにして製造された培養液またはマウスの腹水か
らモノクローナル抗体を分離、精製する場合には、蛋白
質の単離、精製に一般的に用いられる方法を用いること
が可能である。そのような方法としては、硫安塩析、イ
オン交換クロマトグラフィー、分子篩ゲルを用いる分子
篩カラムクロマトグラフィー、プロティンA結合長II
を用いる親和性カラムクロマトグラフィー、透析、凍結
乾燥の方法等がある。
When separating and purifying monoclonal antibodies from the culture fluid or mouse ascites fluid thus produced, it is possible to use methods commonly used for protein isolation and purification. Such methods include ammonium sulfate salting out, ion exchange chromatography, molecular sieve column chromatography using molecular sieve gel, protein A bond length II
There are methods such as affinity column chromatography, dialysis, and freeze-drying.

このようにして得られた抗c−syb蛋白質モノクロー
ナル抗体は、他の癌遺伝子産物とは反応しないで、c−
myb蛋白質とだけ特異的に結合する能力を有し、c−
myb蛋白質の免疫定量用の試薬として有用である。
The anti-c-syb protein monoclonal antibody thus obtained does not react with other oncogene products, and the anti-c-syb protein monoclonal antibody
It has the ability to specifically bind only to myb protein, and c-
It is useful as a reagent for immunoassay of myb protein.

この発明の抗C−蒙yb蛋白質モノクローナル抗体(例
えば後述の実施例で得られた?1YB−1,MYB−2
゜NYB−3およびMYB−4)は各種の免疫定量法に
おける試薬として使用することができる。
Anti-C-Month yb protein monoclonal antibodies of this invention (for example, ?1YB-1, MYB-2 obtained in the Examples described below)
NYB-3 and MYB-4) can be used as reagents in various immunoassay methods.

例えばイムノプロット定量法は、一般的には1種あるい
は2種以上の抗C1シb蛋白質モノクローナル抗体を用
いて行なう。まず、被検体(例えば細胞溶解質)を、5
DS−ポリアクリドアミドを用いた電気泳動で処理し、
つづいてこのゲル中の細胞溶解質をニトロセルロース膜
あるいは他の膜に転写し、転写後の膜を抗c−Ilyb
蛋白質モノクローナル抗体1種あるいは2種以上(例え
ば本発明によるモノクローナル抗体MYB−1および/
またはMYB−3)を含む溶液に1時間程度浸した後に
洗浄し、酵素標識した抗マウスγ−グロブリン抗体を加
えて1時間程度静置する。洗浄後、酵素基質液を加えて
30分間程度酵素反応を行なう。反応終了後、デンシト
メーターを用いた比色法によって酵素反応の生成物等を
測定することにより、被検体中のc−syb蛋白質を定
量する。
For example, immunoplot quantification is generally carried out using one or more anti-C1 siB protein monoclonal antibodies. First, the analyte (e.g. cell lysate) is
treated by electrophoresis using DS-polyacrydamide,
Next, the cell lysate in this gel is transferred to a nitrocellulose membrane or other membrane, and the transferred membrane is coated with anti-c-Ilyb.
One or more protein monoclonal antibodies (for example, the monoclonal antibodies MYB-1 and/or the monoclonal antibodies of the present invention)
Or MYB-3) is immersed in a solution for about 1 hour, then washed, an enzyme-labeled anti-mouse γ-globulin antibody is added, and the sample is left to stand for about 1 hour. After washing, an enzyme substrate solution is added and an enzyme reaction is carried out for about 30 minutes. After the reaction is completed, the c-syb protein in the sample is quantified by measuring the products of the enzymatic reaction by a colorimetric method using a densitometer.

また、この発明による2種のモノクローナル抗体(c−
syb蛋白質との結合部位が異なる抗体)を、一方は不
溶性化した(例えば、マイクロタイタープレートのウェ
ルに付着させた)形、そして他方は標識(例えば、放射
性同位体、酵素、発光体)付けした形の試薬とし、これ
らの試薬と水性液体試料(例えば細胞溶解質)中のc−
myb蛋白質とを結合させることに基づく免疫定量法に
用いることができる。例えば、酵素免疫定量法は、一般
的には、c−myb蛋白質の互いに異なる抗原決定基を
認識する2種類の抗c−myb蛋白質モノクローナル抗
体を用いて行なう。まず、マイクロタイタープレートの
ウェル(穴)あるいはプラスチックチューブを、1種類
の抗体(例えば本発明によるモノクローナル抗体MYB
−1)で感作させる。次に、このウェルあるいはプラス
チックチューブにc−myb蛋白質を含む被検体(例え
ば細胞溶解質)および酵素標識した別種の抗体(例えば
本発明によるモノクローナル抗体M’/B−3)の溶液
を入れ、約30分間静置後に洗浄し、酵素基質溶液を加
えて30分間程度酵素反応を行なう。反応終了後、比色
法等により、被検体中のc−myb蛋白質を定量する。
In addition, two types of monoclonal antibodies (c-
syb proteins), one in insoluble form (e.g. attached to the wells of a microtiter plate) and the other labeled (e.g. radioisotope, enzyme, luminescent). c- in the aqueous liquid sample (e.g. cell lysate).
It can be used in immunoassay based on binding with myb protein. For example, enzyme immunoassay is generally performed using two types of anti-c-myb protein monoclonal antibodies that recognize mutually different antigenic determinants of c-myb protein. First, a well (hole) of a microtiter plate or a plastic tube is filled with one type of antibody (for example, the monoclonal antibody MYB according to the present invention).
-1) to sensitize. Next, a solution of an analyte containing c-myb protein (e.g., cell lysate) and an enzyme-labeled antibody of another type (e.g., monoclonal antibody M'/B-3 according to the present invention) is placed in this well or plastic tube. After standing for 30 minutes, the plate is washed, an enzyme substrate solution is added, and an enzyme reaction is carried out for about 30 minutes. After the reaction is completed, the c-myb protein in the sample is quantified by colorimetry or the like.

また、化学発光免疫定量法は、−a的には、c−+my
b蛋白質の互いに異なった抗原決定基を認識する2種類
の抗c−myb蛋白モノクローナル抗体を用いて行なう
。まず、マイクロタイタープレートのウェルあるいはプ
ラスチックチューブを1種類の抗体(例えば本発明のモ
ノクローナル抗体MYB−1)で感作させる。次に、こ
のウェルあるいはプラスチックチューブにc−+ayb
蛋白質を含む被検体(例えば細胞溶解質)および化学発
光化合物で標識した別種の抗体(例えば本発明によるモ
ノクローナル抗体MYB−3)の溶液を入れ、約30分
間静置後洗浄し、過酸化水素を加えて化学発光を起こさ
せ、これをルミノメータ−を用いて被検体中のc−+a
yb蛋白質を定量する。
In addition, chemiluminescence immunoassay method is based on -a, c-+my
This is carried out using two types of anti-c-myb protein monoclonal antibodies that recognize different antigenic determinants of b protein. First, a well of a microtiter plate or a plastic tube is sensitized with one type of antibody (for example, the monoclonal antibody MYB-1 of the present invention). Next, add c-+ayb to this well or plastic tube.
A solution of a protein-containing analyte (e.g., cell lysate) and another type of antibody labeled with a chemiluminescent compound (e.g., monoclonal antibody MYB-3 according to the present invention) is added, allowed to stand for about 30 minutes, then washed, and hydrogen peroxide is removed. In addition, chemiluminescence is caused, and this is detected using a luminometer to detect c-+a in the sample.
Quantify yb protein.

〔実施例〕〔Example〕

次に、この発明を実施例により更に詳細に説明するが、
この発明は以下の実施例によって限定されるものではな
い。
Next, this invention will be explained in more detail with reference to examples.
This invention is not limited by the following examples.

1 : c−mbの c−myb蛋白質の調製は、Gene、 56 (19
87) 125〜135に記載の方法に従って実施した
。すなわち、マウス癌遺伝子c−mybのcDNAを含
む発現ベクターpAR2156を大腸菌(1!5her
ichia colt) BL21株にトランスフォー
メーションして得た大腸菌BL21 (pAR2156
)株(理化学研究所シーンバンク細胞銀行)を培地中で
十分に増殖させた。次に、ラクトースオペロンの非代謝
性誘導物質であるイソプロピル−β。
1: Preparation of the c-myb protein of c-mb was described in Gene, 56 (19
87) It was carried out according to the method described in 125-135. That is, the expression vector pAR2156 containing the cDNA of the mouse oncogene c-myb was injected into Escherichia coli (1.5 her
E. coli BL21 (pAR2156) obtained by transforming the BL21 strain (Ichia colt)
) strain (RIKEN Scene Bank Cell Bank) was sufficiently grown in culture medium. Next, isopropyl-β, a non-metabolizable inducer of the lactose operon.

D−チオガラクトシド(IPTG)を培養液に添加した
D-thiogalactoside (IPTG) was added to the culture medium.

1時間培養した後、大腸菌BL21 (pAR2156
)株を集菌し、その菌溶解質を5DS−ポリアクリルア
ミドで電気泳動し、分子量(85キロダルトン)で同定
したc−myb蛋白質を含むゲルを切り出した。
After culturing for 1 hour, E. coli BL21 (pAR2156
) strain was collected, the bacterial lysate was electrophoresed on 5DS-polyacrylamide, and the gel containing the c-myb protein, identified by its molecular weight (85 kilodaltons), was cut out.

このゲルから、c−myb蛋白質を電気泳動的に抽出し
た。こうして得たc−myb蛋白質(A280nm= 
0.2 。
The c-myb protein was electrophoretically extracted from this gel. The c-myb protein thus obtained (A280nm=
0.2.

1O−)を免疫原として、また抗c−myb蛋白質モノ
クローナル抗体産生性バイプリドーマを選別するための
HLISA用抗原として使用した。
1O-) was used as an immunogen and as an antigen for HLISA to select anti-c-myb protein monoclonal antibody-producing bilidoma.

実m (a)免疫化した脾臓細胞の調製: 上記のc−a+yb蛋白質免疫原溶液(A280rv=
 0.1 )を等量のフロイント氏完全アジュバントと
乳化するまで混合し、その混合液200Iをマウス腹腔
内に投与することにより免疫を行なった(第1回免疫)
。30日経過後、該マウスに上記と同様の混合液200
Iをマウス腹腔内に投与した(第2回免疫)。第2回免
疫から21日経過後、c−11yb蛋白質免疫原溶液(
A280nm = 0.1 )を等量の生理食塩水で希
釈し、その希釈液200Iを、該マウスの静脈内に投与
した(最終免疫)。最終免疫から3日経過後、脾臓を無
菌的にマウスから取り出し、次の細胞融合工程に使用し
た。
(a) Preparation of immunized spleen cells: The above c-a+yb protein immunogen solution (A280rv=
0.1) was mixed with an equal amount of Freund's complete adjuvant until emulsified, and the mixture 200I was intraperitoneally administered to mice (first immunization).
. After 30 days, the mouse was given 200 ml of the same mixture as above.
I was administered intraperitoneally to mice (second immunization). 21 days after the second immunization, c-11yb protein immunogen solution (
A280nm = 0.1) was diluted with an equal volume of physiological saline, and the diluted solution 200I was intravenously administered to the mouse (final immunization). Three days after the final immunization, the spleen was aseptically removed from the mouse and used for the next cell fusion step.

(b)細胞融合: 無菌的に摘出した上記の脾臓を、15%ウシ胎児血清を
含むDME培地5−を入れたシャーレに入れた0次に、
脾臓を15%ウシ胎児血清を含むDME培地約15−で
還流して脾臓細胞を流出させた後、この脾臓細胞懸濁液
をナイロンメツシュに通した。この脾臓細胞を50d遠
心チユーブに集め、500Xgで10分間遠心した。こ
うして得たペレットにヘモライジング溶液(155ai
M NH,CA’ 。
(b) Cell fusion: The spleen removed aseptically was placed in a Petri dish containing DME medium containing 15% fetal bovine serum.
After the spleen was perfused with approximately 15 ml of DME medium containing 15% fetal bovine serum to drain out the spleen cells, the spleen cell suspension was passed through a nylon mesh. The spleen cells were collected in a 50d centrifuge tube and centrifuged at 500Xg for 10 minutes. Hemolizing solution (155ai) was added to the pellet thus obtained.
MNH, CA'.

10mMKHCOz、1 mM Na1EDTA pH
7,0) 5 mを加え、懸濁させた。0℃で5分間放
置して懸濁液中の赤血球を破壊させた。15%ウシ胎児
血清lO〜2〇−を含むDME培地を加えてから遠心分
離した。こうして得た細胞ペレットをDME培地で遠心
法によって洗浄し、生きている脾臓細胞数を測定した。
10mM KHCOz, 1mM Na1EDTA pH
7,0) 5 m was added and suspended. The suspension was left at 0° C. for 5 minutes to destroy red blood cells in the suspension. DME medium containing 15% fetal bovine serum 10 to 20 was added and centrifuged. The cell pellet thus obtained was washed with DME medium by centrifugation, and the number of living spleen cells was determined.

一方、予め培養しておいたマウスミエローマ細胞(骨髄
腫細胞) SP 210−Ag 14 (理化学研究所
シーンバンク細胞銀行)約2X10’個に上記脾臓細胞
1×10′1個を加え、DME培地中でよく混合し、遠
心分離を行なった(500X g 、 10分間)。そ
の上清を吸引し、ペレットをよく解きほぐし、40%ポ
リエチレングリコール4000溶液(38℃に保温)0
.5−を滴下し、遠心チューブを手で1分間穏やかに回
転することによってポリエチレングリコール溶液と細胞
ペレットを混合させた0次に、38℃に保温しておいた
DME培地を30秒毎にl−加えて、チューブを穏やか
に回転させた。
On the other hand, 1 x 10' of the above spleen cells were added to about 2 x 10' mouse myeloma cells (myeloma cells) SP 210-Ag 14 (RIKEN Scene Bank Cell Bank) that had been cultured in advance, and the mixture was placed in DME medium. The mixture was mixed well and centrifuged (500×g, 10 minutes). Aspirate the supernatant, loosen the pellet well, and dissolve in 40% polyethylene glycol 4000 solution (kept at 38°C).
.. The polyethylene glycol solution and cell pellet were mixed by adding 5-ml dropwise and gently rotating the centrifuge tube by hand for 1 minute. Next, the DME medium kept at 38°C was mixed with 1-ml solution every 30 seconds. In addition, the tube was rotated gently.

この操作を10回繰返した後、15%ウシ胎児血清20
〜30w11を含むDME培地を加えて、遠心分離(5
00x g 、 10分間)を行なった。上清を除去し
た後、細胞ペレットを15%ウシ胎児血清を含むHT培
地(DME培地にアミノプテリン4X10−’M1チミ
ジン1.6 Xl0−’M、ヒボキサンチンl×10−
’Mになるように添加したもの)で、遠心法によって2
回洗浄後、40−の上記HT培地に懸濁した。この細胞
懸濁液を96ウエル細胞培養プレートの各ウェルに20
0pZずつ分注し、37℃、5%炭酸ガスを含む炭酸ガ
ス培養器で培養を開始した。培養中、2〜3日間隔で各
ウェルの培地を約100m除き、新たに上記のHT培地
1ooyを加えることによりHT培地中で増殖するハイ
ブリドーマを選択した。8日目から15%ウシ胎児血清
を含むHT培地(DME培地にチミジン1.6 X 1
0−5M1ヒボキサンチンlXl0−’Mになるように
添加したもの)に交換し、ハイブリドーマの増殖を観察
するとともに、lO0日目、上述のELISA法により
、抗c−myb蛋白質抗体産生ハイブリドーマをスクリ
ーニングした。
After repeating this operation 10 times, 20% 15% fetal bovine serum
Add DME medium containing ~30w11 and centrifuge (5
00x g for 10 minutes). After removing the supernatant, the cell pellet was mixed with HT medium (DME medium containing 15% fetal bovine serum) containing aminopterin 4X10-'M1 thymidine 1.6X10-'M, hypoxanthine lx10-'
' M), and then centrifuged to obtain 2
After washing twice, the cells were suspended in 40-ml of the above HT medium. Add 20 cells of this cell suspension to each well of a 96-well cell culture plate.
0 pZ was dispensed and culture was started at 37° C. in a carbon dioxide gas incubator containing 5% carbon dioxide gas. During culturing, approximately 100 m of the medium in each well was removed at intervals of 2 to 3 days, and 1 ml of the above-mentioned HT medium was newly added to select hybridomas that proliferated in the HT medium. From day 8, HT medium containing 15% fetal bovine serum (1.6 x 1 thymidine in DME medium)
The mixture was replaced with 0-5M1hyboxanthin lX10-'M), the growth of the hybridomas was observed, and on the 100th day, hybridomas producing anti-c-myb protein antibodies were screened by the above-mentioned ELISA method.

(C)ハイブリドーマの樹立 ハイブリドーマ培養上清中の産生抗体の有無はELIS
A法により測定した。96ウエルI!LISA用プレー
)(1−■ulonll、日本グイナテック株式会社)
の各ウェルに、前述の精製c−myb蛋白質溶液(A2
80rv= 0.05、生理食塩水で希釈した)51J
ずつを分注し、25℃で2時間放置した0次に、0.0
5%Tween 20−生理食塩水で3回洗浄した後、
各ウェルに培養上滑50plを加え、25℃で1時間反
応させた。
(C) Establishment of hybridoma The presence or absence of produced antibodies in the hybridoma culture supernatant is determined by ELIS.
Measured by method A. 96 well I! LISA play) (1-■ulonll, Japan Guinatec Co., Ltd.)
Add the purified c-myb protein solution (A2
80rv = 0.05, diluted with saline) 51J
After dispensing 0.0
After washing three times with 5% Tween 20-saline,
50 pl of culture medium was added to each well and reacted at 25°C for 1 hour.

次に、Tween 20−生理食塩水で200倍希釈し
たベルオキシターゼ結合抗マウス抗体(ダコ社、デンマ
ーク)50Iiを各ウェルに加えた。反応終了後、0.
05%Tween 20−生理食塩水で各ウェルを3回
洗浄し、0.5 mMアミノアンチピリン、10mMフ
ェノールおよびo、oos%過酸化水素水を含む溶液2
50111を各ウェルに加え、25℃で30分間反応さ
せ、各ウェルの490n*における吸光度を測定した。
Next, 50Ii of peroxidase-conjugated anti-mouse antibody (Dako, Denmark) diluted 200-fold in Tween 20-saline was added to each well. After the reaction is completed, 0.
Wash each well three times with 0.05% Tween 20 - saline solution 2 containing 0.5 mM aminoantipyrine, 10 mM phenol and o, oos% hydrogen peroxide.
50111 was added to each well, reacted at 25°C for 30 minutes, and the absorbance at 490n* of each well was measured.

その結果、192ウエル中4ウエルに抗体産生が認めら
れた。その4ウエル中の各ハイブリドーマを24ウエル
プレートに写し、15%ウシ胎児血清を含むHT培地で
4〜5日間培養した。その後、再度ELISA法によっ
て抗c−myb蛋白質抗体の産生の有無を確認してから
限界希釈法によりクローニングした。限界希釈法は、H
T培地でバイプリドーマが5個/−となるように希釈し
た細胞浮遊液を、予め正常BALB/C系マウスの腹腔
細胞がウェルあたり2X10’個分注しである96ウエ
ルプレートの各ウェルに100mずつ分注した。10日
後、ELISA法によって抗c−syb蛋白質特異的抗
体を産生ずるハイブリドーマのクローンをスクリーニン
グした。その結果、各ハイブリドーマにつき、20〜4
0個の抗体産生クローンが得られた。これらのクローン
の中から、増殖のよい、抗体分泌能の高い、しかも安定
なりローンを選び、前述と同様の方法で再クローン化を
行い、抗c−a+yb蛋白質特異的抗体産生ハイプリド
ーマMYB−1,MYB−2゜MYB−3およびMYB
−4を樹立した。
As a result, antibody production was observed in 4 out of 192 wells. Each hybridoma in the 4 wells was transferred to a 24-well plate and cultured for 4 to 5 days in HT medium containing 15% fetal bovine serum. Thereafter, the presence or absence of production of anti-c-myb protein antibodies was confirmed again by ELISA, and then cloning was performed by limiting dilution. The limiting dilution method is H
A cell suspension diluted with T medium to give 5 bilidomas/- was placed into each well of a 96-well plate containing 2 x 10' normal BALB/C mouse peritoneal cells per well. Dispensed. Ten days later, hybridoma clones producing anti-c-syb protein-specific antibodies were screened by ELISA. As a result, for each hybridoma, 20 to 4
0 antibody producing clones were obtained. Among these clones, clones with good proliferation, high antibody secretion ability, and stability were selected and re-cloned in the same manner as described above to obtain anti-ca+yb protein-specific antibody-producing hybridoma MYB-1. , MYB-2゜MYB-3 and MYB
-4 was established.

3:モノクロ−ル  の (a)イン・ビトロ法 マウスバイブリド−7MVB−1,MYB−2,MYB
−3およびMYB−4を、それぞれ15%ウシ胎児血清
を含むDME培地中で37℃、5%二酸化炭素雰囲気中
において72〜96時間培養した。培養物を遠心分離(
10000x g 、 10分)後、上清に固形の硫酸
アンモニウムを50%最終濃度となるように徐々に加え
た。混合物を水冷下で30分間攪拌した後、60分間放
置し、遠心分離(10000x g 、 10分)後、
得られた沈渣を少量の10i+Mリン酸緩衝液(pH8
、O)に溶解し、1000倍量の10s+Mリン酸緩衝
液に対して透析した。これを、10+sMリン酸緩衝液
ですでに平衡化したDEAR−セルロースのカラムに充
填した。モノクローナル抗体の溶出はloa+Mリン酸
緩衝液(pH8,0)と0.2 M Na(Jを含む1
0mMリン酸緩衝液(pH18,0)の間で濃度勾配法
により行なった。溶出されたモノクローナル抗体を限外
濾過法で濃縮し、0.1Mリン酸緩衝液(pH8,0)
に対して透析した。ウシ血清1gGを除くために、透析
物をやぎ抗つシ血清1gG−セファロース4Bのカラム
に通した。次に通過液を0.1 Mリン酸緩衝液(pH
8,0)で平衡化したプロティンA−セファロース4B
のカラムに充填した。カラムをpH3,5の緩衝液で溶
出して、精製した抗c−myb蛋白質特異抗体MYB−
1(同様にしてMYB−2,MYB−3オヨびMYB−
4)の溶液を得た。
3: Monochrome (a) In vitro method mouse hybrid-7MVB-1, MYB-2, MYB
-3 and MYB-4 were each cultured in DME medium containing 15% fetal bovine serum at 37°C in a 5% carbon dioxide atmosphere for 72 to 96 hours. Centrifuge the culture (
After 10000 x g (10 min), solid ammonium sulfate was slowly added to the supernatant to a final concentration of 50%. The mixture was stirred under water cooling for 30 min, then left for 60 min, and after centrifugation (10000 x g, 10 min),
The obtained precipitate was added to a small amount of 10i+M phosphate buffer (pH 8
, O) and dialyzed against 1000 times the volume of 10s+M phosphate buffer. This was loaded onto a column of DEAR-cellulose already equilibrated with 10+sM phosphate buffer. Elution of monoclonal antibodies was carried out using loa+M phosphate buffer (pH 8,0) and 0.2 M Na (1 containing J
The concentration gradient method was performed between 0 mM phosphate buffer (pH 18,0). The eluted monoclonal antibody was concentrated by ultrafiltration and added to 0.1M phosphate buffer (pH 8.0).
Dialyzed against. To remove 1 g of bovine serum, the dialysate was passed through a column of 1 g of goat serum - Sepharose 4B. The flow-through was then diluted with 0.1 M phosphate buffer (pH
Protein A-Sepharose 4B equilibrated with 8,0)
was packed into a column. The column was eluted with a pH 3.5 buffer to remove the purified anti-c-myb protein specific antibody MYB-
1 (Similarly, MYB-2, MYB-3 and MYB-
A solution of 4) was obtained.

(b)イン・ビボ法 プリスタン(2、6,10,14−テトラメチルペンタ
デカン)0.5mjを10〜12週齢のBALB/C系
マウスの腹腔内に投与後14〜20日目のマウス腹腔内
にインビトロで増殖させたハイブリドーマMYB−1゜
MYB−2,MYB−3またはMYII−4をマウス−
匹あたり2×106細胞となるように接種した。
(b) In vivo method 0.5 mj of pristane (2,6,10,14-tetramethylpentadecane) was administered intraperitoneally to 10-12 week old BALB/C mice 14-20 days after the intraperitoneal injection. Hybridomas MYB-1, MYB-2, MYB-3, or MYII-4 grown in vitro were injected into mice.
The cells were inoculated at 2 x 106 cells per animal.

各ハイブリドーマにつき一匹のマウスから約10〜15
mの腹水が得られた。その抗体濃度は、2〜10qr/
affiであった。腹水中のモノクローナル抗体の精製
は、上記のインビトロ精製法と同様の方法(但し、ヤギ
抗つシ血清1gG−セファロース4Bのカラムを通す操
作を除く)で行なった。
Approximately 10-15 from one mouse per hybridoma
Ascites of m was obtained. The antibody concentration is 2-10qr/
It was affi. The monoclonal antibody in ascites was purified in the same manner as the in vitro purification method described above (with the exception of passing the antibody through a 1gG-Sepharose 4B column of goat anti-sugar serum).

邦a  4:モノクロ−ル  の  グロブリン抗c−
ayb蛋白質特異モノクローナル抗体MYB−1゜MY
B−2,MYII−3および肘B−4の免疫グロブリン
・クラスおよび特異性の同定はそれぞれオフテロニー免
疫拡散法およびエンザイムイムノアッセイ法により行っ
た。結果は表1に示す通りである。
Country A4: Monochrome globulin anti-c-
ayb protein-specific monoclonal antibody MYB-1゜MY
Identification of the immunoglobulin class and specificity of B-2, MYII-3 and elbow B-4 was performed by offtelony immunodiffusion and enzyme immunoassay, respectively. The results are shown in Table 1.

表1 以下の各細胞にc−myb蛋白質を種々の量で産生させ
、その各細胞の細胞溶解質のc−+wyb蛋白質の量を
イムノプロット法で定量した。使用した細胞は以下のと
おりである。5tlP?−1(T−NIIL)  (理
化学研究所シーンバンク細胞銀行) 、RPM−1(T
−ALL)〔理化学研究所シーンバンク細胞銀行〕、M
OLT4(T−ALL) (理化学研究所シーンバンク
細胞銀行)、KE−37(理化学研究所シーンバンク細
胞銀行)、T−1(理化学研究所シーンバンク細胞銀行
〕、RB22Pre T/B v−abl形質転換セル
ライン(全c−ayb蛋白質が発現している)〔理化学
研究所シーンバンク細胞銀行) 、Ts* c−myb
形質転換セルライン(c−+ayb蛋白質50が発現し
ている)〔理化学研究所シーンバンク細胞銀行)、37
3線繊芽細胞セルライン(c−myb蛋白質が発現して
いない)(理化学研究所シーンバンク細胞銀行)。各細
胞(5X10”cells/me)を、50mM Na
Cj! 、 0.5%デオキシコール酸(deoxy 
cholate)、 0.5%NP−40および0.1
%SDSを含む101トリス−塩酸緩衝液(pH7,5
)に懸濁して、細胞を溶解させた(4℃)。各細胞溶解
液を遠心分離(10,0OOX g 。
Table 1 Various amounts of c-myb protein were produced in the following cells, and the amount of c-+wyb protein in the cell lysate of each cell was quantified by immunoplotting. The cells used are as follows. 5tlP? -1 (T-NIIL) (RIKEN Scene Bank Cell Bank), RPM-1 (T-NIIL)
-ALL) [RIKEN Scene Bank Cell Bank], M
OLT4 (T-ALL) (RIKEN Scene Bank Cell Bank), KE-37 (RIKEN Scene Bank Cell Bank), T-1 (RIKEN Scene Bank Cell Bank), RB22Pre T/B v-abl trait Transformed cell line (expressing all c-ayb proteins) [RIKEN Scene Bank Cell Bank], Ts* c-myb
Transformed cell line (expressing c-+ayb protein 50) [RIKEN Scene Bank Cell Bank], 37
3-line fibroblast cell line (c-myb protein is not expressed) (RIKEN Scene Bank Cell Bank). Each cell (5X10"cells/me) was treated with 50mM Na
Cj! , 0.5% deoxycholic acid (deoxy
cholate), 0.5% NP-40 and 0.1
101 Tris-HCl buffer (pH 7.5) containing % SDS
) to lyse the cells (4°C). Centrifuge each cell lysate (10,0 OOX g.

15分間4℃)し、上清を集めた。各上清20I11を
5DS−ポリアクリルアミド電気泳動した後、ゲル中の
蛋白質をニトロセルロースフィルターに移動させた。こ
のフィルターを、3%スキムミルクおよび0.15M 
Na(Jを含む10a+M)リス−塩酸緩衝液(pH7
,5)で25℃で1時間処理した後、−次抗体として抗
c−+++yb蛋白質モノクローナル抗体CMVB−1
,MYB−2,MYB−3,MYB−4およびブランク
としてSP 210細胞をマウス腹腔に投与して採取し
た腹水)を25℃で1時間反応させた。10mMトリス
−生理食塩水(pH7,5)でフィルターを5回洗浄後
、二次抗体アルカリホスフプターゼ標識抗マウスIgG
を25℃で1時間反応させ、前記と同様に洗浄した。1
.5 mM塩化マグネシウムを含む50IIIM炭酸緩
衝液(pH9,8)に、終濃度0.33■/−のニトロ
ブルーテトラゾリム及び0.17■/1dの5−ブロモ
−4−クロロ−3−インドイルホスフェ)  p  )
ルイジンを加えた溶液を発色液として用いた。この発色
液を25℃で5〜lO分間反応させた0反応停止は、フ
ィルターを水で洗浄することにより行なった。出現した
バンドの強さをデンシトメーターで定量した。結果(ウ
ェスタンブロッティング法)を第1図に示す。第1図に
おいて、AレーンはRB22 Pre T/Bv−ab
l形質転換セルライン(全c−myb蛋白質が発現)、
BレーンはT@q CT myb形質転換セルライン(
c−myb蛋白質50が発現)およびCレーンは3T3
線維芽細胞セルライン(c−myb蛋白質は発現してい
ない)である。
(4°C) for 15 minutes, and the supernatant was collected. After each supernatant 20I11 was subjected to 5DS-polyacrylamide electrophoresis, the proteins in the gel were transferred to a nitrocellulose filter. This filter was mixed with 3% skim milk and 0.15M
Na (10a + M containing J) Lis-HCl buffer (pH 7
, 5) at 25°C for 1 hour, anti-c-+++yb protein monoclonal antibody CMVB-1 was used as the secondary antibody.
, MYB-2, MYB-3, MYB-4, and ascites fluid collected by administering SP 210 cells (as a blank) into the peritoneal cavity of a mouse) were allowed to react at 25° C. for 1 hour. After washing the filter 5 times with 10mM Tris-saline (pH 7.5), the secondary antibody alkaline phosphaptase-labeled anti-mouse IgG was added.
was reacted at 25° C. for 1 hour, and washed in the same manner as above. 1
.. In 50IIIM carbonate buffer (pH 9,8) containing 5 mM magnesium chloride, nitroblue tetrazolim at a final concentration of 0.33 μ/− and 5-bromo-4-chloro-3-indo at a final concentration of 0.17 μ/1 d. Ilphosfe) p)
A solution containing luidine was used as a coloring solution. This coloring solution was reacted at 25° C. for 5 to 10 minutes, and the reaction was stopped by washing the filter with water. The intensity of the band that appeared was quantified using a densitometer. The results (Western blotting method) are shown in FIG. In Figure 1, lane A is RB22 Pre T/Bv-ab
l transformed cell line (expressing the entire c-myb protein),
Lane B is the T@q CT myb transformed cell line (
c-myb protein 50 is expressed) and C lane is 3T3.
This is a fibroblast cell line (c-myb protein is not expressed).

第1図から明らかなとおり、モノクローナル抗体MYB
−1およびMYB−2は85キロダルトンのc−myb
蛋白質と反応するが、c−myb蛋白質50とは反応し
ない。一方、モノクローナル抗体MYB−3およびMY
B−4は85キロダルトンのc−myb蛋白質とc−m
yb蛋白質50の両方に反応する。したがって、モノク
ローナル抗体MYB−1およびMYB−2はc−myb
蛋白質のN−末側の領域を、モノクローナル抗体MYB
−3およびMYB−4はC−末側の領域を認識する。
As is clear from Figure 1, the monoclonal antibody MYB
-1 and MYB-2 are 85 kilodalton c-myb
It reacts with proteins, but does not react with c-myb protein 50. On the other hand, monoclonal antibodies MYB-3 and MY
B-4 is an 85 kilodalton c-myb protein and a c-m
Reacts with both yb protein 50. Therefore, monoclonal antibodies MYB-1 and MYB-2 are c-myb
The N-terminal region of the protein was isolated using the monoclonal antibody MYB.
-3 and MYB-4 recognize the C-terminal region.

第2図は、モノクローナル抗体MVB−1による種々の
細胞中のc−myb蛋白質発現量を示している。
FIG. 2 shows the amount of c-myb protein expressed in various cells by monoclonal antibody MVB-1.

前述のセルラインを実施例4と同様に処理し、イムノプ
ロット法を行い、c−a+yb蛋白質のバンドの強さを
デンシトメータで測定し、グラフ化したものである。
The above cell line was treated in the same manner as in Example 4, immunoplot was performed, and the intensity of the c-a+yb protein band was measured with a densitometer and graphed.

災1健 : ン・スー・・プ・サントイ チナカネおよ
びカワオイ〔ジャーナル・オブ・ヒストケミストリー・
アンド・サイトケミストリー(Journal of 
Histochemistry and Cytoch
emistry)第22巻第1084〜1091頁(1
974年)〕の方法に準じて、西洋ワサビ・ペルオキシ
ダーゼを抗c−myb蛋白質モノクローナル抗体MVB
−1に結合させた。
Disaster 1 Ken: N.S.P. Santoi Chinakane and Kawaoi [Journal of Histochemistry]
and Cytochemistry (Journal of
Histochemistry and Cytoch
emistry) Vol. 22, pp. 1084-1091 (1
[974], horseradish peroxidase was mixed with anti-c-myb protein monoclonal antibody MVB.
-1.

この酵素ラベル抗体を用いてc−myb蛋白質のワン・
ステップ・サンドインチ酵素免疫定量を次のようにして
行なった。
Using this enzyme-labeled antibody, one of the c-myb proteins was isolated.
Step sandwich enzyme immunoassay was performed as follows.

モノクローナル抗体MYB−2を10x/−の濃度で含
有する20a+M炭酸緩衝液100μlを96ウエル平
底型ポリスチレン製マイクロタイター・プレートに入れ
て25℃で30分間静置した。そのプレートを0.05
%Tween−20を含む生理食塩水で3回洗浄した。
100 μl of 20a+M carbonate buffer containing monoclonal antibody MYB-2 at a concentration of 10×/− was placed in a 96-well flat-bottomed polystyrene microtiter plate and allowed to stand at 25° C. for 30 minutes. 0.05 that plate
Washed three times with physiological saline containing % Tween-20.

このようにして抗体を感作したプレートのウェルに被検
体(8Mウレア、1%SDSを含む0.1 M トリス
緩衝液(pH7,5)で処理した細胞の溶解液)50I
、および上記で調製したベルオキシターゼ標識抗体と0
.15M Na(Jと2%ウシアルブミンとを包む20
−hリン酸緩衝液(pH8,0)100I11を加えた
。25℃で30分間静置後、プレートを0.05%Tw
een−20を含む生理食塩水で3回洗浄した。次いで
、酵素基質液(10mMフェノール、2(1+M4−ア
ミノアンチピリンおよび0.005%過酸化水素を含む
液)200111ずつをプレートのそれぞれのウェルに
添加した。25℃で30分間反応後、各ウェルの液の4
90Mmにおける吸光度をMP−590型マイクロ・エ
ライザ・ミニリーダー(ダイナチック社製)で測定した
。被検体中のc−myb蛋白質の量は、同時に測定した
検量用c−myb蛋白質の490Mmにおける吸光度か
ら描いた検量線から求めた結果、10Ig/−〜110
0n/−の範囲で良好なデータを得ることができた。
Into the wells of the plate sensitized with antibodies in this way, 50 I
, and the peroxidase-labeled antibody prepared above and 0
.. 20 containing 15M Na(J and 2% bovine albumin)
-h 100I11 of phosphate buffer (pH 8,0) was added. After standing at 25°C for 30 minutes, the plate was diluted with 0.05% Tw.
Washed three times with physiological saline containing een-20. Next, 200111 enzyme substrate solutions (a solution containing 10 mM phenol, 2 (1+M4-aminoantipyrine, and 0.005% hydrogen peroxide)) were added to each well of the plate. After reacting at 25°C for 30 minutes, each well was liquid 4
The absorbance at 90 Mm was measured with an MP-590 Micro Elizer Mini Reader (manufactured by Dynatic). The amount of c-myb protein in the sample was determined from a calibration curve drawn from the absorbance at 490 Mm of the calibration c-myb protein measured at the same time, and was 10 Ig/- to 110
Good data could be obtained in the range of 0n/-.

、:′ 化学発光物質をモノクローナル抗体に結合させる方法と
しては、−殻内にはスクシンイミド基が導入された化学
発光物質と抗体とを混合し、非結合の化学発光物質の除
去はPD−10カラム(ファルマシア〉を用いて実施す
る。本例では、抗体としてモノクローナル抗体)IVB
−1を、そして化学発光物質としてAcridiniu
+m−1(ドージン)を使用した。モノクローナル抗体
MYB−2を10n/1の濃度で含有する20mM炭酸
緩衝液100mをプラスチックチューブに入れて25℃
で1時間静置した。
:' As a method for binding a chemiluminescent substance to a monoclonal antibody, a chemiluminescent substance into which a succinimide group has been introduced into the shell is mixed with the antibody, and the unbound chemiluminescent substance is removed using a PD-10 column. (Pharmacia). In this example, the antibody is a monoclonal antibody) IVB
-1 and Acridiniu as a chemiluminescent substance.
+m-1 (Dojin) was used. Add 100ml of 20mM carbonate buffer containing monoclonal antibody MYB-2 at a concentration of 10n/1 to a plastic tube and incubate at 25°C.
It was left undisturbed for 1 hour.

そのチューブを、0.05%Tween−20を含む生
理食塩水で3回洗浄した。こうして抗体を感作させたチ
ューブに、被検体(8Mウレア、1%SO3を含む0.
1 M トリス緩衝液で処理した細胞の溶解液)501
1および上記で調製したAcridiniu+s−1標
識モノクロ一ナル抗体MYB−1と0.15M NaC
1と2%ウシアルブミンとを含む20mMリン酸緩衝液
(pH8,O)100μlを加えた。25℃で1時間静
置後、0.05%Tween−20を含む生理食塩水で
チューブを3回洗浄した。次いで、1011M HzO
i液を2004加え、発光量をTD−4000L[IM
IPHOMETER(LABO5ctence)で測定
した結果、1 pg/ d 〜10ng/ ydの範囲
で良好なデータを得ることができた。
The tube was washed three times with saline containing 0.05% Tween-20. Into the tube sensitized with the antibody in this way, the test substance (8M urea, 0.5% containing 1% SO3) was added.
Cell lysate treated with 1 M Tris buffer) 501
1 and Acridiniu+s-1 labeled monoclonal antibody MYB-1 prepared above and 0.15M NaC
100 μl of 20 mM phosphate buffer (pH 8, O) containing 1% and 2% bovine albumin was added. After standing at 25° C. for 1 hour, the tube was washed three times with physiological saline containing 0.05% Tween-20. Then 1011MHzO
Add i-liquid 2004 and adjust the luminescence amount to TD-4000L [IM
As a result of measurement with IPHOMETER (LABO5ctence), good data could be obtained in the range of 1 pg/d to 10 ng/yd.

〔発明の効果〕〔Effect of the invention〕

この発明の特異的モノクローナル抗体は、c−+myb
蛋白質の有効な免疫定量法を提供することができる。
The specific monoclonal antibody of this invention is c-+myb
An effective method for immunoassay of proteins can be provided.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は、本発明による4種のモノクローナル抗体のc
−myb蛋白質に対する反応特異性をウェスタンブロッ
ティング法によって確認した結果を示す説明図、第2図
は本発明によるモノクローナル抗体による、種々の細胞
中のc−myb蛋白質発現量を示すグラフである。
Figure 1 shows c of four monoclonal antibodies according to the present invention.
FIG. 2 is a graph showing the expression level of c-myb protein in various cells by the monoclonal antibody according to the present invention.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1、細胞性癌遺伝子c−mybに対応する約85キロダ
ルトンの蛋白質全体と反応し、しかも前記の約85キロ
ダルトンの蛋白質全体からC末端側ペプチド約35キロ
ダルトンが脱落した蛋白質とも反応するモノクローナル
抗体。 2、細胞性癌遺伝子c−mybに対応する約85キロダ
ルトンの蛋白質全体とは反応するが、前記の約85キロ
ダルトンの蛋白質全体からC末端側ペプチド約35キロ
ダルトンが脱落した蛋白質とは反応しないモノクローナ
ル抗体。 3、(a)細胞性癌遺伝子c−mybに対応する蛋白質
で免疫したマウスの脾臓細胞とマウスのミエローマ細胞
との融合によって形成され、そして(b)細胞性癌遺伝
子c−mybに対応する約85キロダルトンの蛋白質全
体と反応し、しかも前記の約85キロダルトンの蛋白質
全体からC末端側ペプチド約35キロダルトンが脱落し
た蛋白質とも反応するモノクローナル抗体を分泌する、
ことを特徴とするハイブリドーマ細胞。 4、(a)細胞性癌遺伝子c−mybに対応する蛋白質
で免疫したマウスの脾臓細胞とマウスのミエローマ細胞
との融合によって形成され、そして(b)細胞性癌遺伝
子c−mybに対応する約85キロダルトンの蛋白質全
体とは反応するが、前記の約85キロダルトンの蛋白質
全体からC末端側ペプチド約35キロダルトンが脱落し
た蛋白質とは反応しないモノクローナル抗体を分泌する
、ことを特徴とするハイブリドーマ細胞。 5、細胞性癌遺伝子c−mybに対応する蛋白質に対す
るモノクローナル抗体1種以上を用いることを特徴とす
る、水性液体中の細胞性癌遺伝子c−mybに対応する
蛋白質の免疫定量方法。
[Scope of Claims] 1. Reacts with the entire protein of approximately 85 kilodaltons corresponding to the cellular oncogene c-myb, and moreover, the C-terminal peptide of approximately 35 kilodaltons is removed from the entire protein of approximately 85 kilodaltons. A monoclonal antibody that also reacts with other proteins. 2. It reacts with the entire protein of about 85 kilodaltons corresponding to the cellular oncogene c-myb, but it reacts with the protein from which the C-terminal peptide of about 35 kilodaltons has been removed from the entire protein of about 85 kilodaltons. No monoclonal antibodies. 3, (a) formed by the fusion of mouse myeloma cells with spleen cells of a mouse immunized with a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb, and (b) a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb. Secreting a monoclonal antibody that reacts with the entire 85 kilodalton protein and also reacts with a protein in which about 35 kilodaltons of the C-terminal peptide have been removed from the entire about 85 kilodalton protein.
A hybridoma cell characterized by: 4, (a) formed by the fusion of mouse myeloma cells with spleen cells of a mouse immunized with a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb, and (b) a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb. A hybridoma characterized in that it secretes a monoclonal antibody that reacts with the entire 85-kilodalton protein but does not react with a protein in which about 35 kilodaltons of the C-terminal peptide have been removed from the entire about 85-kilodalton protein. cell. 5. A method for immunoassay of a protein corresponding to the cellular oncogene c-myb in an aqueous liquid, which comprises using one or more monoclonal antibodies against the protein corresponding to the cellular oncogene c-myb.
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