JPH0191777A - Production of levan fructotransferase - Google Patents

Production of levan fructotransferase

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JPH0191777A
JPH0191777A JP24588687A JP24588687A JPH0191777A JP H0191777 A JPH0191777 A JP H0191777A JP 24588687 A JP24588687 A JP 24588687A JP 24588687 A JP24588687 A JP 24588687A JP H0191777 A JPH0191777 A JP H0191777A
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幸吉 田村
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倉本 隆志
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Abstract

PURPOSE:To obtain the titled transferase useful as a sweetener, etc., in high yield at a low cost, by culturing a microbial stain belonging to genus Pseudomonas in a medium containing a polymer of fructose and separating the enzyme from the cultured product. CONSTITUTION:A microbial strain belonging to genus Pseudomonas and capable of producing levan fructotransferase [preferably Pseudomonas fluorescens MZ No.949 (FERM 9235)] is cultured in a medium containing a fructose polymer (e.g., levan or phlein) and the objective transferase is separated from the cultured product.

Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は、レバンまたはフレインよりジ−ローフラクト
シルクラノース 2.6’:6.2’ジアンハイドライ
ドを生成させる酵素・レバンフラクトトランスフェラー
ゼの製造法に関するものである。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of Industrial Application The present invention relates to a method for producing levan fructotransferase, an enzyme that produces g-low fructosyl curanose 2.6':6.2' dianhydride from levan or Frein. It is.

従来の技術 レバンフラクトトランスフェラーゼは、多糖類・レバン
またはフレインを分解して下記構造式のジーD−7ラク
トシルフラノース 2,6’:6,2’アンハイドライ
ド(略称DFAI!/)を生成させる酵素である。
Conventional technology Levan fructotransferase is an enzyme that decomposes polysaccharides such as levan or frein to produce G-D-7 lactosylfuranose 2,6':6,2' anhydride (abbreviated as DFAI!/) having the following structural formula. It is.

LJ −IQ DFAIVはフラクトースに似たされやかな甘味を有す
る物質である。したがって、レバンまたはフレインから
DFAIVを安価に製造することができれば、この物質
を甘味料として利用することが可能になるが、それに必
要なレバンフラクトトランスフェラーゼが従来は入手困
難であった。
LJ-IQ DFAIV is a substance with a mild sweet taste similar to fructose. Therefore, if DFAIV could be produced inexpensively from levan or Frein, it would be possible to use this substance as a sweetener, but the levan fructotransferase required for this has hitherto been difficult to obtain.

従来、レバン7ラクトトランス7エラーゼはアースロバ
フタ−・ウレアファシェンスにより生産されることが知
られている(Carbohydrate Iteses
rch、第99巻。
It has been known that levan-7 lactotrans-7 erase is produced by Arthrobacter ureafaciens (Carbohydrate Iteses).
rch, Volume 99.

197〜204頁、100年)。しかしながら、アース
ロバクターーウレアファシエンスのレバンフラクトトラ
ンスフェラーゼ産生力は弱く、この菌を用いる方法によ
っテ高品質のレバン7ラクトトランスフエラーゼヲ経済
的に得ることは困難である。
pp. 197-204, 100). However, the levan 7 lactotransferase production ability of Arthrobacter ureafaciens is weak, and it is difficult to economically obtain high quality levan 7 lactotransferase by a method using this bacterium.

発明が解決しようとする問題点 したがって本発明の目的は、レバンフラクトトランスフ
ェラーゼを安価に且つ豊富に生産し得る方法を提供する
ことにある。
Problems to be Solved by the Invention Therefore, an object of the present invention is to provide a method for producing levanfructotransferase at low cost and in abundance.

問題点を解決するための手段 上記目的を達成するため、本発明者らは多くの微生物に
ついてレバンフラクトトランスフェラーゼ産生能の観点
からスクリーニングを行い、シュードモナス属に属する
一細菌すなわちシュードモナス・フルオレッセンスMZ
、 No、949 (微工研菌寄第9235号)がすぐ
れた性質を有することを知った。
Means for Solving the Problems In order to achieve the above object, the present inventors screened many microorganisms from the viewpoint of their ability to produce levanfructotransferase, and found one bacterium belonging to the genus Pseudomonas, namely Pseudomonas fluorescens MZ.
, No. 949 (Feikoken Bibori No. 9235) was found to have excellent properties.

本発明は上記知見に基づくものであって、フラクトース
のポリマーを含有する培地を用いてシュードモナス属に
属するレバン7ラクトトランスフエラーゼ生産菌を培養
し、培養物からレバンフラクトトランスフェラーゼを採
取することを特徴とするレバンフラクトトランスフェラ
ーゼの製造法を提供するものである。
The present invention is based on the above findings, and is characterized by culturing levan-7 lactotransferase-producing bacteria belonging to the genus Pseudomonas using a medium containing a fructose polymer, and collecting levan-fructotransferase from the culture. The present invention provides a method for producing levan fructotransferase.

上記MZ No、949株は、広島県尾道市の土壌より
分離されたものであって、その菌学的性質は次のとおり
である。
The above MZ No. 949 strain was isolated from the soil of Onomichi City, Hiroshima Prefecture, and its mycological properties are as follows.

(a)形態 ■細胞の形および大きさ 0.5〜0.7X2.0〜3.5μ重の桿菌■運動性:
あり。1本以上の極鞭毛を有する。
(a) Morphology ■ Cell shape and size 0.5-0.7 x 2.0-3.5μ rods ■ Motility:
can be. It has one or more polar flagella.

■胞子:なし ■グラム染色性:陰性 ■抗酸性:なし くb)生育 ■肉汁寒天斜面培養 中程度の発育;透明;やや赤味を帯びる。■Spores: None ■Gram staining: negative ■Anti-acidity: None b) Growth ■Meat juice agar slant culture Medium growth; transparent; slightly reddish.

■肉汁液体培養:中程度の発育;表面に膜形成。■ Broth liquid culture: Moderate growth; film formation on the surface.

■肉汁ゼラチン穿刺培養:液化しない。■Meat juice gelatin puncture culture: Does not liquefy.

■リドマスミルク :変化しない。■ Lidmus milk: No change.

■BCPミルク :変化しない。■BCP milk: No change.

(c)生理的性質 ■硝酸塩の還元ニする。(c) Physiological properties ■Reduces nitrates.

■脱窒:しない。■Denitrification: No.

■MRテスト :陰性 ■vpテスト :陰性 ■インドールの生成:なし ■硫化水素の生成:なしくTSI寒天培地)■デン粉の
加水分解:なし ■クエン酸の利用:あり (クリステンセン培地)■無
機窒素源の利用 硝酸塩およびアンモニウム塩を利用する。
■MR test: Negative ■VP test: Negative ■Indole production: None ■Hydrogen sulfide production: None (TSI agar medium) ■Starch hydrolysis: None ■Use of citric acid: Yes (Christensen medium) ■Inorganic nitrogen Source Utilization Utilizes nitrate and ammonium salts.

[相]色素の生成:水溶性、蛍光性の色素を生成する。[Phase] Pigment generation: Produces water-soluble, fluorescent dyes.

■オキシダーゼ:陽性 @カタラーゼ:陽性 ■生育の範囲:pH4〜10で生育する。■Oxidase: positive @catalase: positive ■Growth range: Grows at pH 4-10.

4℃、27℃で生育する。37℃で生育しない。Grows at 4℃ and 27℃. Does not grow at 37°C.

■酸素に対する態度:好気性 [相]0−Fテスト ニゲルコースを酸化する。■Attitude towards oxygen: aerobic [Phase] 0-F test oxidizes nigercose.

(HHh L eifson法) ■炭水化物の利用=D−グルコース、L−アラビノース
、トレハロース、イノシトーノ呟 L−バリン、p−ヒ
ドロキシ安息香酸を利用する。シュクロース、ゲラニオ
ール、アセトアミド、エタノールを利用しない。
(HHh Leifson method) ■ Utilization of carbohydrates = D-glucose, L-arabinose, trehalose, inositone, L-valine, p-hydroxybenzoic acid. Do not use sucrose, geraniol, acetamide, or ethanol.

Oアルギニンの脱炭酸:陽性 [相]グロトカテキン酸の分解:オルト型の開裂以上の
諸性状をバージエイのマニュアル・オブ・デターミネイ
ティブ・バクテリオロジー、第3版(1974)の記載
と照合することにより、本菌がシュードモナス・フルオ
レッセンス[ミグラ 1895]であることを確認した
Decarboxylation of O-arginine: positive [phase] Decomposition of glotocatechuic acid: cleavage of ortho-type and other properties by comparing with the description in Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 3rd edition (1974) It was confirmed that this bacterium was Pseudomonas fluorescens [Migra 1895].

本発明を実施する場合に用いる培地としては、7うクト
ースのポリマーを酵素誘導基質として含有させることを
除けば、特殊なものを必要としない。シュードモナス属
細菌の培養に通常使用される培地、すなわちグルコース
等の炭素源および酵母エキス、ペプトン等の有機窒素源
、その他硝酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、塩化マン
ガンなどの無機塩類等を基本成分として適宜組合せたp
H5〜8程度の培地を用いることができる。培地に含有
させるフラクトースのポリマーとしては、レバン、フレ
イン等を用いることができ、その好適濃度は0.01〜
30%、特に好ましくは1〜5%である。
The medium used in carrying out the present invention does not require any special medium, except that it contains a polymer of 7 ctose as an enzyme-inducing substrate. A medium normally used for culturing Pseudomonas bacteria, that is, a carbon source such as glucose, yeast extract, an organic nitrogen source such as peptone, and other inorganic salts such as sodium nitrate, magnesium sulfate, and manganese chloride, etc., were appropriately combined as basic ingredients. p
A medium of about H5 to H8 can be used. Levan, Frein, etc. can be used as the fructose polymer to be contained in the medium, and the preferred concentration thereof is 0.01 to 0.01.
30%, particularly preferably 1-5%.

培養は、シュードモナス属細菌培養の常法に従って行う
ことができる。目的とする酵素は菌体外に生産される。
The culture can be performed according to a conventional method for culturing Pseudomonas bacteria. The target enzyme is produced outside the bacterial cell.

生産は菌の対数増殖期に始まり、定常期にほぼ最大生産
量に達するので、通常は定常期に達したあと適当な時期
に培養を打切る。
Production begins during the logarithmic growth phase of the bacterium and reaches almost maximum production during the stationary phase, so culture is usually discontinued at an appropriate time after the stationary phase is reached.

培養終了後は直ちに遠心分離して菌体を除去する。Immediately after culturing, centrifuge to remove bacterial cells.

シュードモナス菌はβ−フラクトシダーゼを生産しない
ので、菌体を除いただけの培養液でも粗酵素液として利
用できるが、これを酵素精製の常法に従って精製すれば
、より活性が強く、利用し易いレバンフラクトトランス
フェラーゼを得ることができる。
Since Pseudomonas does not produce β-fructosidase, the culture solution from which the bacterial cells have been removed can be used as a crude enzyme solution, but if this is purified according to the conventional enzyme purification method, it is possible to obtain a highly active and easily used enzyme solution. fructotransferase can be obtained.

得られるレバンフラクトトランスフェラーゼは安定で、
冷蔵庫で数カ月間保存可能であり、冷凍庫中ならばさら
に長期間保存することができる。
The resulting levan fructotransferase is stable and
It can be stored in the refrigerator for several months, and even longer in the freezer.

発明の効果 後記実施例が実証するように、本発明の製法によればア
ースロバ、フタ−属細菌を用いる従来の製法よりもはる
かに高い収率でレバン7ラクトトランス7エラーゼが得
られ、したがってこの酵素を安価に且つ豊富に提供する
ことが可能になる。
Effects of the Invention As demonstrated by the Examples described below, the production method of the present invention allows levan-7 lactotrans-7 erase to be obtained in a much higher yield than the conventional production method using bacteria belonging to the genus Arthrobacteria and Futa. Enzymes can be provided inexpensively and in abundance.

実施例 以下、実施例を示して本発明を説明する。なお、各側に
おいて示した酵素活性は、次の方法により測定したもの
である。
EXAMPLES The present invention will be explained below with reference to Examples. The enzyme activity shown on each side was measured by the following method.

酵素活性測定法:適当に希釈した酵素液1鳳1と2%レ
バン溶液(pH6,0の0.1M酢酸緩衝液使用)1m
lとを混合し、40℃で1時間反応させたのち、生成し
たDFAIVを高速液体クロマトグラフィーで定量する
Enzyme activity measurement method: Appropriately diluted enzyme solution 1 Otori and 2% levan solution (using 0.1M acetate buffer with pH 6.0) 1m
After reacting at 40° C. for 1 hour, the produced DFAIV is quantified by high performance liquid chromatography.

1分間に1μモルのDFAIVを生成させる酵素量を、
1単位とする。なお、高速液体クロマトグラフィーの条
件は次のとおりである。
The amount of enzyme that produces 1 μmol of DFAIV per minute is
It is considered as 1 unit. Note that the conditions for high performance liquid chromatography are as follows.

カラム: 5hodex Nil pxk J−411
キャリヤー:アセトニトリル/水(85/15)流速:
 1 、Onl/ min カラム温度:40℃ 検出:RI 実施例 ル レバン 1%、ペプトン 1%、K、HPo、0.1%
、NaN0,0.5%、M[SO4”7HzOo、os
%、およびMnCIs ・4 Hz8 0 、02%を
含むpH7,0の培地100m1を500m1容の坂ロ
コルベンに分注し、120°Cで15分間加熱滅菌した
。冷却後、シュードモナス・フルオレッセンスMZ N
o、949を1白金耳植菌し、27℃で4日間振とう培
養した。培養終了後、遠心分離して培養液から菌体を除
き、粗酵素液を得た。
Column: 5hodex Nil pxk J-411
Carrier: Acetonitrile/Water (85/15) Flow rate:
1, Onl/min Column temperature: 40°C Detection: RI Example Relevan 1%, Peptone 1%, K, HPo, 0.1%
, NaN0,0.5%, M[SO4”7HzOo, os
% and MnCIs 4 Hz80, 02% at pH 7.0 was dispensed into a 500 ml volume of Sakalokolben and heat sterilized at 120°C for 15 minutes. After cooling, Pseudomonas fluorescens MZ N
949 was inoculated into one platinum loop and cultured with shaking at 27°C for 4 days. After the culture was completed, the cells were removed from the culture solution by centrifugation to obtain a crude enzyme solution.

その酵素活性は11.6単位/100m1であった。Its enzyme activity was 11.6 units/100ml.

比較のためシュードモナス菌にかえてアースロバフタ−
・ウレアファシェンスを用い、他は同様にして得られた
粗酵素液の酵素活性は、1.0単位/100m1であっ
た。
For comparison, Arthrobafter was used instead of Pseudomonas.
- The enzyme activity of the crude enzyme solution obtained using Urea Fascens in the same manner as above was 1.0 unit/100ml.

実施例 2 レバンにかえて同量のフレインを含有させた培地を用い
たほかは実施例1と同様にして、粗酵素液を得た。
Example 2 A crude enzyme solution was obtained in the same manner as in Example 1, except that a medium containing the same amount of Frein instead of levan was used.

その酵素活性は12.0単位/100m1であった。Its enzyme activity was 12.0 units/100ml.

比較のためシュードモナス菌にかえてアースロバフタ−
・ウレアファシェンスを用い、他は同様にして得られた
粗酵素液の酵素活性は、1.0単位/100m1であっ
た。
For comparison, Arthrobafter was used instead of Pseudomonas.
- The enzyme activity of the crude enzyme solution obtained using Urea Fascens in the same manner as above was 1.0 unit/100ml.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)フラクトースのポリマーを含有する培地を用いて
シュードモナス属に属するレバンフラクトトランスフェ
ラーゼ生産菌を培養し、培養物からレバンフラクトトラ
ンスフェラーゼを採取することを特徴とするレバンフラ
クトトランスフェラーゼの製造法。
(1) A method for producing levan fructotransferase, which comprises culturing a levan fructotransferase-producing bacterium belonging to the genus Pseudomonas using a medium containing a fructose polymer, and collecting levan fructotransferase from the culture.
(2)レバンフラクトトランスフェラーゼ生産菌として
シュードモナス・フルオレッセンスMZNo.949(
微工研菌寄第9235号)を用いる特許請求の範囲第1
項記載の製造法。
(2) Pseudomonas fluorescens MZNo. as a levanfructotransferase producing bacterium. 949(
Claim 1 using the method
Manufacturing method described in section.
(3)フラクトースのポリマーとしてレバンまたはフレ
インを含有する培地を用いる特許請求の範囲第1項記載
の製造法。
(3) The production method according to claim 1, which uses a medium containing levan or phlein as a fructose polymer.
JP24588687A 1987-10-01 1987-10-01 Method for producing levanfructotransferase Expired - Fee Related JP2561100B2 (en)

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001029185A1 (en) * 1999-10-19 2001-04-26 Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology Enzymatic production of difructose dianhydride iv from sucrose and relevant enzymes and genes coding for them

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* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2001029185A1 (en) * 1999-10-19 2001-04-26 Korea Research Institute Of Bioscience And Biotechnology Enzymatic production of difructose dianhydride iv from sucrose and relevant enzymes and genes coding for them

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