JP7843986B2 - リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法 - Google Patents

リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法

Info

Publication number
JP7843986B2
JP7843986B2 JP2020189313A JP2020189313A JP7843986B2 JP 7843986 B2 JP7843986 B2 JP 7843986B2 JP 2020189313 A JP2020189313 A JP 2020189313A JP 2020189313 A JP2020189313 A JP 2020189313A JP 7843986 B2 JP7843986 B2 JP 7843986B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
lignocellulose
decomposition
bacteria
rumen
tank
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2020189313A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2022078564A (ja
Inventor
昭 赤司
千佳 多田
雅也 遠藤
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tohoku University NUC
Original Assignee
Tohoku University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tohoku University NUC filed Critical Tohoku University NUC
Priority to JP2020189313A priority Critical patent/JP7843986B2/ja
Priority to EP21891440.6A priority patent/EP4245835A4/en
Priority to PCT/JP2021/030266 priority patent/WO2022102192A1/ja
Publication of JP2022078564A publication Critical patent/JP2022078564A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7843986B2 publication Critical patent/JP7843986B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F3/00—Biological treatment of water, waste water, or sewage
    • C02F3/34—Biological treatment of water, waste water, or sewage characterised by the microorganisms used
    • C02F3/341—Consortia of bacteria
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F11/00—Treatment of sludge; Devices therefor
    • C02F11/02—Biological treatment
    • C02F11/04—Anaerobic treatment; Production of methane by such processes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F3/00—Biological treatment of water, waste water, or sewage
    • C02F3/006—Regulation methods for biological treatment
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M45/00—Means for pre-treatment of biological substances
    • C12M45/09—Means for pre-treatment of biological substances by enzymatic treatment
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P5/00—Preparation of hydrocarbons or halogenated hydrocarbons
    • C12P5/02—Preparation of hydrocarbons or halogenated hydrocarbons acyclic
    • C12P5/023—Methane
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F11/00—Treatment of sludge; Devices therefor
    • C02F11/12—Treatment of sludge; Devices therefor by de-watering, drying or thickening
    • C02F11/121—Treatment of sludge; Devices therefor by de-watering, drying or thickening by mechanical de-watering
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F2103/00—Nature of the water, waste water, sewage or sludge to be treated
    • C02F2103/26—Nature of the water, waste water, sewage or sludge to be treated from the processing of plants or parts thereof
    • C02F2103/28—Nature of the water, waste water, sewage or sludge to be treated from the processing of plants or parts thereof from the paper or cellulose industry
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F2209/00—Controlling or monitoring parameters in water treatment
    • C02F2209/02—Temperature
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F2209/00—Controlling or monitoring parameters in water treatment
    • C02F2209/04—Oxidation reduction potential [ORP]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F2209/00—Controlling or monitoring parameters in water treatment
    • C02F2209/06—Controlling or monitoring parameters in water treatment pH
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
    • C02F2209/00—Controlling or monitoring parameters in water treatment
    • C02F2209/14—NH3-N
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/30—Fuel from waste, e.g. synthetic alcohol or diesel

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Water Supply & Treatment (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Hydrology & Water Resources (AREA)
  • Environmental & Geological Engineering (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Processing Of Solid Wastes (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

本発明は、リグノセルロース系バイオマスを効率的に分解することができるリグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法に関する。
リグノセルロース系バイオマスは、植物細胞の細胞壁、即ち植物繊維の主成分から構成され、地球上に多く存在する有機炭素源であることから、石油などの化石燃料に代わるエネルギー資源として注目されている。リグノセルロース系バイオマスは、難分解性であることから、分解の段階において多大なエネルギー、コスト、及び時間を要する。そのため、エネルギー資源としての利用の拡大が滞っているのが実情である。
従来、反芻動物の第一胃（ルーメン）に存在するルーメン液に含まれる細菌を利用した、リグノセルロース系バイオマスを分解する技術が知られている（例えば、特許文献１）。
特許文献１には、ルーメン液によるリグノセルロース含有廃棄物を用いた有機酸発酵方法が記載されている。具体的には、古紙などのリグノセルロース系バイオマスを原料とするメタン発酵の前処理において、ルーメン液を用いた反応系に還元作用を有するシステインを共存させて嫌気性条件下とし、３０～４５℃の中温、６～２４時間の比較的短時間の反応により、メタン発酵の基質（原料）となり得る酢酸、プロピオン酸、及び酪酸等の有機酸の生産量を増加させ、これに伴い、効率良くメタンを製造することが開示されている。
国際公開第２０１２／０５３６３１号
しかしながら、特許文献１においては、ルーメン液の採取元となる反芻動物の個体ごとに、ルーメン液に生息する細菌の菌数が一定ではないことや、リグノセルロース分解活性にばらつきがあることについては考慮されておらず、リグノセルロース分解を安定かつ効率的に進行させるためのルーメン液の選定については記載されていない。ルーメン液によっては、リグノセルロース分解活性が十分ではないものも存在するため、バイオマスの量に応じて、ルーメン液の供給量を調整しても、リグノセルロース分解がうまく進行しない場合があるという問題があった。また、リグノセルロース分解物の生産量が低くなると、それらを基質（原料）とするメタン発酵も進行しないため、安定かつ効率的にメタンを生成させることができないといった問題があった。
そこで、本発明は、リグノセルロース系バイオマスの分解を効率的に行うことを可能とし、リグノセルロース系バイオマスの分解により生産された分解物を基質（原料）とするメタン発酵を効率的に進行させるためのリグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法を提供することを目的とする。
上記課題を解決するために、本発明のリグノセルロース分解システムは、リグノセルロース系バイオマスを分解するリグノセルロース分解システムであって、特定の細菌の存在数量を指標として反芻動物由来のルーメン液を選定する選定手段、特定の細菌の存在数量を指標としてルーメン微生物の培養を制御する培養槽、及び特定の細菌の存在数量を指標としてリグノセルロースの分解を制御する分解槽のうち少なくともいずれか一つと、前記選定手段において選定されたルーメン液、前記培養槽内の培養液、及び前記分解槽内の反応液のうち少なくとも一つを用いてリグノセルロース系バイオマスを分解することにより生産されたリグノセルロース分解物を基質としてメタン発酵を行うメタン発酵槽と、を備えることを特徴としている。
上記構成によれば、特定細菌の菌数を指標としてリグノセルロース分解活性の高いルーメン液の選定、又は特定細菌の菌数を指標としてルーメン微生物の培養をモニタリングしながらリグノセルロース分解活性の評価を行うことができる。そのため、リグノセルロース系バイオマスの分解が効率的に進行し、単糖類、オリゴ糖、揮発性脂肪酸等のリグノセルロース分解物の生産量を増大させることができる。それにともない、メタン発酵槽内においてリグノセルロース分解物を基質（原料）とするメタン発酵を効率的に進行させることができる。
また、本発明は、上記リグノセルロース分解システムにおいて、前記特定の細菌は、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌のうち、少なくとも一種以上であることを特徴としている。
上記構成によれば、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌を、リグノセルロース分解活性が特に高い細菌として特定し、これらの３種類の細菌の少なくとも一種以上の存在数量を指標として選定されたルーメン液を用いること、又は上記３種類の細菌の少なくとも一種以上の存在数量を指標としてルーメン微生物の培養をモニタリングすることによりリグノセルロース分解活性をより正確に評価することができる。その結果、リグノセルロース系バイオマスの分解を安定かつ効率的に進行させることができる。
また、本発明は、リグノセルロース分解システムにおいて、前記特定の細菌の存在数量を定量ＰＣＲ法により測定した場合、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）は１．０×１０９ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ以上、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）は１．０×１０７ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ以上、又はプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）は１．０×１０１０ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ以上であることを特徴としている。
上記構成によれば、３種類の細菌の少なくとも一種以上の存在数量が所定値以上であるルーメン液を選定することにより、リグノセルロース分解活性の高いルーメン液を得ることができる。また、培養槽において、上記３種類の細菌の少なくとも一種以上の存在数量が所定値以上となるように、ルーメン微生物を培養することにより、リグノセルロース分解活性の高い培養液を得ることができる。さらに、培養槽又は分解槽において上記３種類の細菌を定期的にモニタリングし、それらの細菌の少なくとも一種以上の存在数量が所定値以上となるように培養槽又は分解槽を運転することにより、下流のメタン発酵槽においてメタンガスの発生量を促進させることができる。
また、本発明は、上記セルロース分解システムにおいて、温度、ｐＨ、酸化還元電位（ＯＲＰ）、水理学的滞留時間（ＨＲＴ）又は固形物滞留時間（ＳＲＴ）、及び培地のアンモニウム態窒素濃度を含むパラメータに基づいて、前記培養槽内での前記ルーメン微生物の培養、及び前記分解槽内での前記リグノセルロース系バイオマスの分解のうち少なくともいずれか一つを制御することを特徴としている。
上記構成によれば、温度、ｐＨ、酸化還元電位（ＯＲＰ）、水理学的滞留時間（ＨＲＴ）又は固形物滞留時間（ＳＲＴ）、及び培地のアンモニウム態窒素濃度を含むパラメータに基づいて、培養槽内でのルーメン微生物の培養、及び分解槽内でのリグノセルロース系バイオマスの分解のうち少なくともいずれか一つを制御することにより、培養槽内又は分解槽内を反芻動物の第一胃（ルーメン）内の環境に近似させ、リグノセルロース系バイオマスを分解するのに適した状態に保つことが可能となる。その結果、リグノセルロース系バイオマスをより安定かつ効率的に分解することができる。
また、本発明は、上記セルロース分解システムにおいて、前記培養槽、又は前記分解槽は、前記ルーメン微生物の培養と前記リグノセルロースの分解とを一槽内で行う培養槽兼分解槽であることを特徴としている。
上記構成によれば、ルーメン微生物の培養とリグノセルロースの分解とを一槽内で行うことができるため、リグノセルロース分解システムの製造コストを低減することができるとともに、設備をコンパクト化することができる。
上記課題を解決するために、本発明のリグノセルロースの分解方法は、リグノセルロース系バイオマスを分解するリグノセルロースの分解方法であって、特定の細菌の存在数量を指標として反芻動物由来のルーメン液を選定する選定工程、特定の細菌の存在数量を指標としてルーメン微生物の培養を制御する培養工程、及び特定の細菌の存在数量を指標としてリグノセルロースの分解を制御する分解工程のうち少なくともいずれか一つと、前記選定工程において選定されたルーメン液、前記培養工程で得られた培養液、及び前記分解工程で得られた反応液のうち少なくとも一つを用いてリグノセルロース系バイオマスを分解することにより生産されたリグノセルロース分解物を基質としてメタン発酵を行うメタン発酵工程と、を備えることを特徴としている。
上記構成によれば、特定細菌の菌数を指標としてリグノセルロース分解活性の高いルーメン液の選定、又は特定細菌の菌数を指標としてルーメン微生物の培養をモニタリングしながらリグノセルロース分解活性を評価することができる。そのため、リグノセルロース系バイオマスの分解が効率的に進行し、単糖類、オリゴ糖、揮発性脂肪酸等のリグノセルロース分解物の生産量を増大させることができる。それにともない、メタン発酵槽内においてリグノセルロース分解物を基質（原料）とするメタン発酵を効率的に進行させることができる。その結果、メタンの収率を向上させることが期待できる。
本実施形態に係るリグノセルロース分解方法を実施するためのリグノセルロース分解システムを示す概略図である。図１（ａ）は３相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム、図１（ｂ）は２相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム、図１（ｃ）は単相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システムを示す。 本実施形態に係るリグノセルロース分解方法を実施するためのリグノセルロース分解システムを構成する槽の一例を示す図である。図２（ａ）は、図１（ａ）に示す３相型のリグノセルロース分解システムを構成する培養槽の一例を示す図である。図２（ｂ）は、図１（ｂ）に示す２相型のリグノセルロース分解システムを構成する培養槽兼分解槽の一例を示す図である。 実施例において、ルーメン液Ａ、及びルーメン液Ｂによるリグノセルロース分解の評価試験を示す図である。 実施例において、ルーメン液Ａ、ルーメン液Ｂ、及び下水汚泥消化液に含まれる全細菌、及び５種類のリグノセルロース分解細菌の菌数を示すグラフである。
本発明者らは、反芻動物の第一胃に存在するルーメン液に生息する細菌（ルーメン微生物）のリグノセルロース分解への寄与を明らかにすることを目的として、定量ＰＣＲ法による細菌数の定量を行った。ルーメン液に生息する代表的な５種類のリグノセルロース分解細菌数とリグノセルロース分解活性の関係を調査したところ、これらのうち、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌の存在数量とルーメン液のリグノセルロース分解活性とに概ね正の比例関係があることが明らかとなった。これにより、この３種類の細菌の存在数量に着目して、リグノセルロース分解活性の高いルーメン液の選定、又は特定細菌の菌数を指標としてルーメン微生物の培養をモニタリングしながらリグノセルロース分解活性の評価を行うことによって、リグノセルロース系バイオマスの分解を効率的に行うことができるとの知見が得られた。
本発明に係るリグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法に関する実施形態や図面について、以下に具体的に説明する。ただし、本発明は、以下に説明する実施形態や図面に記載されている構成に限定されることを意図しない。
＜リグノセルロース分解システムの構成＞
図１を参照しつつ、本実施形態に係るリグノセルロースの分解方法を採用した３つのタイプのリグノセルロース分解システムについて説明する。
図１（ａ）は、３相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム１を示す。また、図２（ａ）は、図１（ａ）に示すリグノセルロース分解システム１を構成する培養槽１０の一例を示す図である。図１（ａ）に示すように、リグノセルロース分解システム１は、ルーメン微生物を培養する培養槽１０、培養したルーメン微生物を用いてリグノセルロース系バイオマスを後段のメタン発酵槽３０で利用されやすい形に変換（分解）する分解槽２０、及びメタン発酵槽３０により構成される。培養槽１０には、牛などから採取されたルーメン液、人工培地（人工だ液）、及び必要に応じて粉砕機４０などによって破砕・粉砕されたリグノセルロース系バイオマスが供給されると、ルーメン液に存在するリグノセルロース分解細菌がリグノセルロースを分解代謝することにより増殖すると共にリグノセルロース分解物（リグノセルロースの部分分解物や酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ：Ｖｏｌａｔｉｌｅ Ｆａｔｔｙ Ａｃｉｄ））が生産される。図２（ａ）に示すように、培養槽１０では、培養液１１が撹拌機６０で攪拌され、膜７０（フィルター）などで固液分離された液体（ろ過液）及び未分解もしくは部分分解されたリグノセルロース系バイオマスを含む懸濁液が、それぞれ下流の分解槽２０（前処理槽ともいう）に送られる。培養液１１のろ過液と懸濁液が培養槽１０から引き抜かれて分解槽２０に送られる量を適宜調整することによって、培養槽１０内の培養液１１の水理学的滞留時間（ＨＲＴ：Ｈｙｄｒａｕｌｉｃ ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ ｔｉｍｅ）及び固形物滞留時間（ＳＲＴ：Ｓｌｕｄｇｅ ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ ｔｉｍｅ）を制御することができる。培養液１１のろ過液と懸濁液には多数のリグノセルロース分解細菌が含まれるので、分解槽２０にリグノセルロース系バイオマスを供給すると、リグノセルロース分解細菌のはたらきによりリグノセルロース分解反応が進行し、酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）やリグノセルロース部分分解物を含む反応液が生産される。分解槽２０からメタン発酵槽３０に、リグノセルロース分解物を多く含む反応液が供給されると、メタン発酵槽３０内に収容されているメタン発酵液中において、リグノセルロース分解物を基質（原料）とするメタン発酵が進行し、メタンが生成する。その後、メタン発酵槽３０内のメタン発酵残渣は脱水機５０に送られる。脱水機５０から排出される脱水離脱液には、窒素源やリン源となる物質が含まれているので、培養槽１０に還流して添加しても良い。また、脱水機５０から排出される濃縮汚泥は肥料や建築資材等として利用してもよい。図１（ａ）に示す３相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム１は、（１）ルーメン微生物の培養、（２）リグノセルロースの分解（前処理）、及び（３）メタン発酵、と各工程の役割が分かれているので、運転制御が行いやすいという利点がある。
図１（ｂ）は、２相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム１０１を示す。また、図２（ｂ）は、図１（ｂ）に示すリグノセルロース分解システム１０１を構成する培養槽兼分解槽１２０の一例を示す図である。図１（ｂ）に示すように、リグノセルロース分解システム１０１は、ルーメン微生物の培養とリグノセルロース系バイオマスの分解（前処理）とを兼ねた培養槽兼分解槽１２０、及びメタン発酵槽１３０により構成される。培養槽兼分解槽１２０には、牛などから採取されたルーメン液、人工培地（人工だ液）、及び必要に応じて粉砕機４０などによって破砕・粉砕されたリグノセルロース系バイオマスが供給されると、ルーメン液に存在するリグノセルロース分解細菌がリグノセルロースを分解代謝することにより増殖すると共にリグノセルロース分解細菌のはたらきによりリグノセルロース分解反応が進行し、酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）やリグノセルロース部分分解物を含む反応液が生産される。図２（ｂ）に示すように、培養槽兼分解槽１２０では、反応液１２１が撹拌機６０で攪拌され、膜７０（フィルター）などで固液分離された液体（ろ過液）及び未分解もしくは部分分解されたリグノセルロース系バイオマスを含む懸濁液が、それぞれ下流のメタン発酵槽１３０に送られる。反応液１２１のろ過液と懸濁液が培養槽兼分解槽１２０から引き抜かれてメタン発酵槽１３０に送られる量を適宜調整することによって、培養槽兼分解槽１２０内の反応液１２１の水理学的滞留時間（ＨＲＴ）及び固形物滞留時間（ＳＲＴ）を制御することができる。メタン発酵槽１３０に、リグノセルロース分解物を含む反応液１２１が供給されると、メタン発酵槽１３０内に収容されているメタン発酵液中において、リグノセルロース分解物を基質（原料）とするメタン発酵が進行し、メタンが生成する。その後、メタン発酵槽１３０内のメタン発酵残渣は脱水機５０に送られる。脱水機５０から排出される脱水離脱液には、窒素源やリン源となる物質が含まれているので、培養槽兼分解槽１２０に還流して添加しても良い。また、脱水機５０から排出される濃縮汚泥は肥料や建築資材等として利用してもよい。図１（ｂ）に示す２相型のプロセスは、培養工程と分解工程（前処理工程）とを一槽（培養槽兼分解槽１２０）で行うことができるプロセスであり、ＲＵＤＡＤ（Ｒｕｍｅｎ Ｄｅｒｉｖｅｄ Ａｎａｅｒｏｂｉｃ Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ）プロセスとして知られている（非特許文献 Ｈｕｕｂ Ｊ．Ｇｉｊｚｅｎ他、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｖｏｌ．３１，ｐｐ.４１８－４２５（１９８８））。本プロセスは３相型プロセスより槽が少ないので、より安価に建設することができるとともに、設備をコンパクト化することができる。
図１（ｃ）は、培養槽１０、分解槽２０、培養槽兼分解槽１２０を有さず、特定細菌の菌数を指標として選定されたルーメン液をメタン発酵槽２３０に直接投入し、メタン発酵槽２３０内でリグノセルロース系バイオマスの分解とメタン発酵とを行う単相型のプロセスにより構成されるリグノセルロース分解システム２０１を示す。メタン発酵槽２３０には、牛などから採取されたルーメン液、及び必要に応じて粉砕機４０などによって破砕・粉砕されたリグノセルロース系バイオマスが供給されると、ルーメン液に存在するリグノセルロース分解細菌のはたらきによりリグノセルロース分解反応が進行し、酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）やリグノセルロース部分分解物を含む反応液が生産され、これらを基質として、あるいは水素と二酸化炭素を基質としてメタン発酵が進行する。単相型のプロセスにおいては、リグノセルロース分解活性が高い、選定されたルーメン液をリグノセルロース系バイオマスと直接反応させるため、人工培地（人工だ液）を添加しなくてもよいが、適宜必要に応じて添加してもよい。単相型のプロセスは、培養槽１０、分解槽２０などを有さないため、最も安価に建設することができるとともに、設備をさらにコンパクト化することができる。
＜リグノセルロースの分解方法＞
本発明におけるリグノセルロースの分解方法について、以下、詳細に説明する。植物細胞の細胞壁の主成分であるリグノセルロースは、ヘミセルロース、セルロース、及びリグニンが強固に結合されることにより構成されている。牛などの反芻動物の第一胃（ルーメン）に存在するルーメン液には、リグノセルロースを分解する酵素を産生するルーメン微生物が多数存在する。本発明におけるリグノセルロースの分解方法では、リグノセルロース分解活性の高いルーメン微生物のはたらきを利用して、リグノセルロースが分解され、酢酸等の揮発性脂肪酸が生産される。ルーメン微生物のうち、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌の存在数量とリグノセルロース分解活性とに正の比例関係があることに基づき、これらの３種類の細菌のうち少なくとも一つの細菌の菌数を指標として、選定されたルーメン液を用いること、ルーメン微生物の培養をモニタリングしながら、リグノセルロース分解活性を評価すること、上記二点によりリグノセルロース系バイオマスを安定かつ効率的に分解することができる。
原料となるリグノセルロース系バイオマスとしては、森林間伐材、稲藁、籾殻、バガス、茅等の未利用農林産廃棄物のほか、野菜屑、茶殻、コーヒー滓、おから、焼酎滓、建築廃材、古紙・廃紙、都市ゴミ等のリグノセルロース系産業廃棄物、またはエリアンサスやジャイアントミスカンサス等のバイオマス資源作物が挙げられる。また、シュレッダーにより裁断化された紙は、繊維が壊れ、リサイクルし難いものとして焼却されているが、このような裁断化された紙についても原料として利用することができる。リグノセルロース系バイオマスのリグノセルロース分解が進行し、酢酸等の揮発性脂肪酸が生産されると、メタン発酵の基質（原料）とすることができるため、メタンを効率的に製造することが可能である。また、揮発性脂肪酸まで発酵が進まなくとも、リグノセルロースがセロビオース等の分子量が小さな形状まで分解される、またはグルコース等の構成糖まで分解されると、メタン発酵の基質（原料）とすることができるため、メタンを効率的に製造することが可能である。
［ルーメン液の選定工程］
ルーメン液は、反芻動物の第一胃（ルーメン）に存在する消化液である。反芻動物としては、牛、羊、山羊、鹿、ラクダ、ラマ等が挙げられる。例えば、成牛の第一胃は、１５０～２００Ｌの容量があり、ルーメン液にはリグノセルロース分解細菌、ヘミセルロース分解細菌、リグニン分解細菌、デンプン分解細菌、メタン生成細菌等が多く生息している。リグノセルロース分解細菌は、リグノセルロース（繊維質）を分解するセルラーゼ等の酵素を産生することができる。そのため、反芻動物により、草などの繊維質が摂取されると、リグノセルロース分解細菌がリグノセルロースを分解し、反芻動物にとってのエネルギー源となる酢酸、プロピオン酸、酪酸、吉草酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ：Ｖｏｌａｔｉｌｅ Ｆａｔｔｙ Ａｃｉｄ）が生産される。また、ルーメン液に含まれるメタン生成細菌は、リグノセルロース分解細菌によって生産された酢酸を基質として、あるいは水素と二酸化炭素を基質としてメタンを生成することができる。ルーメン液は、反芻動物の第一胃からカテーテル等の管を用いて採取したものを使用してもよく、食肉加工工場等から発生したものを使用してもよい。
ルーメン液の選定は、リグノセルロース分解細菌である、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌のうち少なくとも一つの細菌の菌数を指標として行うことができる。これらの細菌の菌数の定量は、特に限定されないが、特定の細菌の菌数を迅速かつ正確に測定することが可能な、定量ＰＣＲ法により行うことが好ましい。
定量ＰＣＲ法を用いてリグノセルロース分解細菌の菌数の定量を行う場合、ルーメン液からゲノムＤＮＡを抽出して精製したものを使用する。リグノセルロース分解細菌は、１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子配列解析により、菌種が特定されることから、ＰＣＲプライマーまたはプローブを用いて、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、目的とする細菌の菌数を定量することができる。
［ルーメン微生物の培養工程］
リグノセルロース系バイオマスの分解には、反芻動物から得られたルーメン液を使用するほか、ルーメン微生物の培養液を使用してもよい。ルーメン微生物の培養液は、ルーメン液に培養液の濃縮液を添加して培養したものでもよく、ルーメン液を遠心分離して得られた沈殿物（菌体）に液体培地を添加して培養したものであってもよい。ルーメン微生物の培養において、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の少なくとも一種以上の細菌の存在数量を指標として、温度、酸化還元電位（ＯＲＰ：Ｏｘｉｄａｔｉｏｎ‐Ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ）、水理学的滞留時間（ＨＲＴ）又は固形物滞留時間（ＳＲＴ）、及び培地のアンモニウム態窒素濃度を調整することにより、リグノセルロース分解活性の高いルーメン微生物の培養液を得ることができる。これらの細菌の菌数の定量は、特に限定されないが、特定の細菌の菌数を迅速かつ正確に測定することが可能な、定量ＰＣＲ法により行うことが好ましい。定量ＰＣＲ法を用いてリグノセルロース分解細菌の菌数の定量を行う場合、培養液からゲノムＤＮＡを抽出して精製したものを使用する。ルーメン微生物の培養液は、大量に培養したり、継代培養したりすることもできるため、細菌の菌数を調整したルーメン微生物の培養液を、必要に応じてリグノセルロース分解に利用することができる。
ルーメン微生物の培養液に使用する培地としては、培地の基材が天然物に由来する天然培地を使用してもよく、ルーメン微生物の増殖に必要な各種栄養素がすべて化学薬品で構成されている合成培地を使用してもよい。特に、ルーメン微生物にとって有用な栄養源であるアンモニウム塩のような窒素源、リン酸塩のようなリン源等の他、セルロース、ヘミセルロース等の炭素源を含むことが好ましい。また、栄養源として、図１（ａ）（ｂ）に示すように、脱水機５０から排出される脱水脱離液には、窒素源やリン源となる物質が含まれているので、脱水脱離液を添加しても良い。また、培養工程後の分解工程において、酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）が生産されると、反応液中のｐＨが低下したり、浸透圧が上昇したりすることにより、リグノセルロース分解細菌の存在数量や機能が変化してしまうことから、ｐＨの変化や浸透圧の上昇を和らげるために、培地に緩衝剤を添加することが好ましい。緩衝剤としては、反芻動物のだ液は緩衝能力が高いので、それを模した人工だ液を使用することが好ましい。緩衝剤としては、塩化ナトリウム、重炭酸ナトリウム、リン酸塩、及び塩化カリウム等が挙げられる。培地のｐＨは、６．０～７．５、好ましくは６．５～７．０に必要に応じ酸・アルカリを添加して調整する。また、培地に使用する水は、水道水や地下水を使用することが好ましい。また、培地のアンモニウム態窒素濃度は、５０～２，０００ｍｇ／Ｌ、より好ましくは６０～５００ｍｇ／Ｌとなるように、加水、または脱水脱離液を供給して制御する。
図１（ａ）に示す培養槽１０、又は図１（ｂ）に示す培養槽兼分解槽１２０において、ルーメン微生物の培養工程をルーメン内の環境と同様、嫌気性状態とするために、ルーメン微生物の培養液の酸化還元電位は、－１００ｍｖ以下、より好ましくは－２００ｍｖ以下、さらに好ましくは－２５０ｍｖ程度に調整する。ルーメン微生物（リグノセルロース分解細菌）は嫌気性細菌であるため所定のＯＲＰより高くなった場合（好気状態に近づいた場合）は、窒素ガスや二酸化炭素ガスなどの不活性ガスを注入したり、システインやＬ－アスコルビン酸、硫化ナトリウム、アスコルビン酸、メチオニン、チオグリコール、ＤＴＴなどの還元物質を投入したり、あるいは有機物を投入して通性嫌気性菌の作用により酸素を消費させる等の処置を施してもよい。また、培養工程を窒素又は二酸化炭素雰囲気下での閉鎖系で行ってもよい。
リグノセルロース系バイオマスの分解処理を行うたびに、ルーメン液を採取・運搬して使用することは、多大な費用とエネルギーの消費を伴う。従って、ルーメン微生物（リグノセルロース分解細菌）を長期にわたり安定に培養してルーメン液の採取頻度を低減することが望ましい。培養槽１０又は培養槽兼分解槽１２０におけるルーメン微生物の培養は、固形物滞留時間（ＳＲＴ）が水理学的滞留時間（ＨＲＴ）より長いことが重要とされる。即ち、リグノセルロース分解細菌は固形物（リグノセルロース系バイオマス）の表面に付着して増殖するため、ＳＲＴが短いと固形物と共に系外に排出される。一方、ＨＲＴが必要以上に長いと、生産された揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）によるｐＨの低下や微生物の増殖の阻害などの負の要因となる。具体的には、ＨＲＴは８時間～３６時間、好ましくは１０時間～２４時間、ＳＲＴは２４時間以上、好ましくは、４８時間～７２時間に調節する。図２（ａ）（ｂ）に示すように、培養液の攪拌が行われている完全混合系の槽内ではＨＲＴとＳＲＴを個々に調節することはできない、つまり、ＨＲＴとＳＲＴが同じになるため、膜７０（フィルター）を利用するなどの方法でろ過液と懸濁液とを個別に培養槽１０、又は培養槽兼分解槽１２０から排出する。また、培養工程における反応系の温度は、３５～４２℃、より好ましくは３７～４０℃になるよう温度センサー等を利用して制御する。なお、培養槽１０又は培養槽兼分解槽１２０に投入されるリグノセルロース系バイオマスの固形物濃度は、０．０５～２０重量％、より好ましくは０．１～５重量％である。
［分解工程（前処理工程）］
分解工程（前処理工程ともいう）において、リグノセルロース系バイオマスは、リグノセルロース分解細菌が生産するリグニン分解酵素により、リグニンの一部が分解されリグノセルロースの強固な構造が緩んだ後、エンドグルカナーゼやエキソグルカナーゼ、あるいはキシラナーゼ等により、それぞれセルロースやヘミセルロースに分解され、グルコース等のヘキソース（六単糖）に変換される。さらに、グルコース等のヘキソース（六単糖）から、ピルビン酸等が生成され、さらに反応が進むと酢酸、プロピオン酸、酪酸、ギ酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）が生産される。また、代謝過程で水素や二酸化炭素も生産される。酢酸や水素、二酸化炭素は、メタン発酵の基材（原料）となるため、リグノセルロースの分解促進に伴い、酢酸や水素、二酸化炭素の生産量が増加すると、メタンの生成量も増加する。分解工程（前処理工程）において、リグノセルロースはヘキソース（六単糖）や揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）まで分解・代謝される必要はなく、難分解であるリグノセルロースが後段のメタン発酵工程で利用されやすい形状、例えば、オリゴ糖程度まで分解されれば十分である。分解工程（前処理工程）において、反応液中に含まれるリグノセルロース系バイオマスは、０．５～３０重量％、より好ましくは０．５～１０重量％である。
図１（ａ）に示す分解槽２０、又は図１（ｂ）に示す培養槽兼分解槽１２０において、分解工程を反芻動物のルーメン内の環境に近似させ、リグノセルロース分解の効率を向上させるために、温度、ｐＨ、酸化還元電位（ＯＲＰ）、水理学的滞留時間（ＨＲＴ）又は固形物滞留時間（ＳＲＴ）、及び培地のアンモニウム態窒素濃度を含むパラメータに基づいて、リグノセルロース系バイオマスを分解する制御を行い、培養液または反応液中の細菌の菌数を指標としてモニタリングすることが好ましい。これらの細菌の菌数の定量は、特に限定されないが、特定の細菌の菌数を迅速かつ正確に測定することが可能な、定量ＰＣＲ法により行うことが好ましい。定量ＰＣＲ法を用いてリグノセルロース分解細菌の菌数の定量を行う場合、培養液１１又は反応液１２１からゲノムＤＮＡを抽出して精製したものを使用する。
培地には、ルーメン液に存在するリグノセルロース分解細菌の活性を高めるために、リグノセルロース分解細菌の栄養源となる窒素源としてアンモニウム塩、リン源としてリン酸塩等を適宜添加してもよい。図１（ｂ）に示すように、脱水機から排出される脱水脱離液は、窒素源やリン源となる物質が含まれているので、脱水脱離液を添加しても良い。また、分解工程において、酢酸等の揮発性脂肪酸（ＶＦＡ）が生産されると、反応液中のｐＨが低下したり、浸透圧が上昇したりすることにより、セルロース分解細菌の存在数量や機能が変化してしまうことから、ｐＨの変化や浸透圧の上昇を和らげるために、培地に緩衝剤を添加することが好ましい。緩衝剤としては、反芻動物のだ液は緩衝能力が高いので、それを模した人工だ液を使用することが好ましい。培地のｐＨは、６．０～７．５、好ましくは６．５～７．０に、必要に応じ酸・アルカリを添加して調整する。培地や反応液の希釈に使用する水は、水道水や地下水を使用することが好ましい。また、培地のアンモニウム態窒素濃度は、５０～２，０００ｍｇ／Ｌ、より好ましくは６０～５００ｍｇ／Ｌとなるように、加水、または脱水脱離液を供給して制御する。
分解槽２０、または培養槽兼分解槽１２０において、分解工程を反芻動物のルーメン内の環境と同様、嫌気性状態とするために、反応液の酸化還元電位は、－１００ｍｖ以下、より好ましくは－２００ｍｖ以下、さらに好ましくは－２５０ｍｖ程度に調整する。ルーメン微生物（リグノセルロース分解細菌）は嫌気性細菌であるため所定のＯＲＰより高くなった場合（好気状態に近づいた場合）は、窒素ガスや二酸化炭素ガスなどの不活性ガスを注入する、システインやＬ－アスコルビン酸、硫化ナトリウム、アスコルビン酸、メチオニン、チオグリコール、ＤＴＴなどの還元物質を投入する、あるいは有機物を投入して通性嫌気性菌の作用により酸素を消費させる等の処置を施す。分解工程を窒素又は二酸化炭素雰囲気下での閉鎖系で行ってもよい。
図１（ａ）に示す分解槽２０、又は図１（ｂ）に示す培養槽兼分解槽１２０での分解工程におけるリグノセルロース系バイオマスとリグノセルロース分解細菌との反応時間は、水理学的滞留時間（ＨＲＴ）、または固形物滞留時間（ＳＲＴ）で管理することが望ましい。ＨＲＴは８～３６時間、好ましくは１０～２４時間、ＳＲＴは２４時間以上、好ましくは４８～７２時間となるように制御する。図２（ｂ）に示すように、反応液の攪拌が行われている完全混合系ではＨＲＴとＳＲＴは個別に制御できない、つまり、ＨＲＴとＳＲＴが同じになるため、培養槽兼分解槽１２０に膜７０（フィルター）膜を設置するか、これらの槽の攪拌を穏やかにして完全混合が起こらないようにする。そして、固形物を除去した膜ろ過液や上澄みと固形物を含む懸濁液の槽外への引き抜き量を適宜調整することによりＨＲＴとＳＲＴを制御する。なお、図１（ａ）に示す分解槽２０は、その上流の培養槽１０においてＨＲＴとＳＲＴとが個別に制御されているので、分解槽２０内においてＨＲＴとＳＲＴとが個別に制御される必要はなく、完全混合系としてもよい。この場合、分解槽２０内の反応液はろ過液と懸濁液に分離されないためＨＲＴとＳＲＴが同じとなる。分解槽２０のＨＲＴとＳＲＴとはいずれも４～３６時間とすることが好ましい。また、分解工程における反応系の温度は、３５～４２℃、より好ましくは３７～４０℃になるよう温度センサー等を利用して制御する。分解工程における反応は、静置して行っても、攪拌して行ってもよいが、分解工程の進行をより早めるためには、攪拌して行うことが好ましい。
培養工程と分解工程は、図１（ａ）に示すように、培養槽１０と分解槽２０においてそれぞれ独立して行われてもよく、図１（ｂ）に示すように、培養槽兼分解槽１２０において一槽で行われてもよい。
［メタン発酵工程］
ルーメン液中のリグノセルロース分解細菌とメタン生成細菌は密接な関連性があり、リグノセルロース分解細菌の活性が高まると、メタン生成細菌の活性も高まることは理論上予測できる。リグノセルロース分解細菌である、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌のうち少なくとも一つの細菌の菌数を指標としてルーメン液を選定し、選定されたルーメン液を用いること、上記特定の細菌の菌数を指標として培養工程をモニタリングすることにより分解工程における分解処理を評価することによって、メタン発酵が安定かつ効率的に進行し、メタンの生成を向上させることができる。
メタン発酵工程では、難分解であるリグノセルロースがメタン発酵工程で利用されやすい形状、例えば、オリゴ糖程度まで分解されたリグノセルロース系バイオマス、あるいは分解工程（前処理工程）において生産した酢酸等の揮発性脂肪酸（リグノセルロース分解物）や水素と二酸化炭素を基質として、メタン発酵が行われる。メタン発酵は、メタン生成細菌によって行われ、リグノセルロース分解細菌による分解工程と同等、嫌気性条件下で行われる。
メタン発酵は、湿式メタン発酵、乾式メタン発酵何れでも構わない。また、中温メタン発酵、高温メタン発酵何れでも良いが、リグノセルロース分解細菌培養工程、リグノセルロース分解工程、メタン発酵工程を全て一つの槽で行う場合は、中温メタン発酵が望ましい。中温発酵の場合、２０～３０日間、より好ましくは２３～２７日間、さらに好ましくは２５日間程度、高温発酵の場合、１０～２０日間、より好ましくは１３～１７日間、さらに好ましくは１５日間程度行われることが好ましい。また、メタン発酵の温度は、中温発酵の場合、２０℃を超えて４０℃以下、より好ましくは３０℃以上３７℃以下、さらに好ましくは３７℃程度であり、高温発酵の場合、４０℃を超えて６０℃、より好ましくは５０～５５℃、さらに好ましくは５５℃程度である。
メタン発酵工程は、図１（ａ）（ｂ）に示すようにメタン発酵槽３０、１３０において、前処理槽（分解槽２０、培養槽兼分解槽１２０）から送られる反応液に含まれるリグノセルロース分解物を基質として行われてもよく、図１（ｃ）に示すように、選定されたルーメン液とリグノセルロース系バイオマスをメタン発酵槽２３０に投入してメタン発酵を行っても良い。
ルーメン微生物の存在数量の異なるルーメン液、及び下水汚泥消化液の［リグノセルロース分解活性の評価試験］と［全細菌およびリグノセルロース分解細菌の存在数量の定量］とを行った。
［リグノセルロース分解活性の評価試験］
（試験例１）
１５０ｍＬ容のホウケイ酸ガラス製のバイアル瓶に、約１ｃｍ角に切断したコピー用紙１．５ｇとシステイン塩酸塩一水和物１５ｍｇを入れ、網目が１ｍｍのふるいにより固形物を除去したルーメン液Ａ３０ｍＬを混合した。窒素ガスを封入して嫌気状態としてからバイアルを密閉し、振とう培養器に入れ、３９℃、１３０ｒｐｍで回転振とうした。６時間後、コピー用紙の分解（溶解）の状態を目視で確認した。
（試験例２）
ルーメン液Ｂを使用したこと以外は、すべて試験例１と同様に試験を行った。
（試験例３）
ルーメン液の代わりに、食品工場の嫌気性消化汚泥を使用したこと以外は、すべて試験例１と同様に試験を行った。
図３は、ルーメン液Ａ、及びルーメン液Ｂによるリグノセルロース分解の評価試験を示す図である。ルーメン液Ａで処理したコピー用紙は、処理後６時間には、コピー用紙の原形を留めないまでに反応液がドロドロの状態となり、リグノセルロース分解が進行していることが確認された。ルーメン液Ｂで処理したコピー用紙は、処理後６時間には、コピー用紙が膨潤すると共に角が丸まっており、僅かにリグノセルロース分解が進行していることが確認された。一方で、食品工場の嫌気性消化汚泥で処理したコピー用紙は、処理後６時間となっても、全く変化が観察されず、リグノセルロース分解が進行していないことが確認された（図示せず）。以上の試験結果により、リグノセルロース分解活性は、ルーメン液Ａが最も高く、次にルーメン液Ｂが高く、食品工場の嫌気性消化汚泥には、リグノセルロース分解活性はみられないことが明らかとなった。
［全細菌およびリグノセルロース分解細菌の存在数量の定量］
リグノセルロース分解活性の異なるルーメン液Ａ、ルーメン液Ｂ、及び下水汚泥消化液に生息する全細菌、及び主なリグノセルロース分解細菌５種（フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、プレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）、ルミノコッカス・フラヴェファシエンス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ｆｌａｖｅｆａｃｉｅｎｓ）、及びブチリビブリオ・フィブリソルベンス（Ｂｕｔｙｒｉｖｉｂｒｉｏ ｆｉｂｒｉｓｏｌｖｅｎｓ））の存在数量の定量を、定量ＰＣＲ法により行った。表１に定量ＰＣＲに用いたプライマー／プローブと塩基配列、表２に定量ＰＣＲの条件を示す。
（ＤＮＡの抽出）
ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液からそれぞれＤＮＡを抽出し、精製した。このＤＮＡを基質とし、表１及び表２に示すＰＣＲプライマー及び／またはプローブとを用いた定量ＰＣＲ法により、全細菌、及びリグノセルロース分解細菌５種の存在数量の測定を行った。
（全細菌数の定量）
全細菌（真正細菌）の定量には、表１に示している配列番号１のフォワードプライマー（Ｆ）、配列番号２のリバースプライマー（Ｒ）、及び配列番号３のプローブ（Ｐ）を用い、ＴａｑＭａｎ（登録商標） Ｐｒｏｂｅ法により行った。定量ＰＣＲ試薬として、Ｅａｇｅｌ Ｔａｑ Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ （ＲＯＸ）（ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する全細菌の菌数を定量した。
（フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）の定量）
表１に示している配列番号４のフォワードプライマー（Ｆ）、及び配列番号５のリバースプライマー（Ｒ）を用い、ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ法により定量を行った。定量ＰＣＲ試薬として、Ｐｏｗｅｒ Ｕｐ ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ （サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する細菌の菌数を定量した。
（ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）の定量）
表１に示している配列番号６のフォワードプライマー（Ｆ）、及び配列番号７のリバースプライマー（Ｒ）を用い、ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ法により定量を行った。定量ＰＣＲ試薬として、Ｐｏｗｅｒ Ｕｐ ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ （サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する細菌の菌数を定量した。
（プレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の定量）
表１に示している配列番号８のフォワードプライマー（Ｆ）、及び配列番号９のリバースプライマー（Ｒ）を用い、ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ法により定量を行った。定量ＰＣＲ試薬として、ＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ（登録商標） ＳＹＢＲ（登録商標） ｑＰＣＲ Ｍｉｘ （東洋紡株式会社製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する細菌の菌数を定量した。
（ルミノコッカス・フラヴェファシエンス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ｆｌａｖｅｆａｃｉｅｎｓ）の定量）
表１に示している配列番号１０のフォワードプライマー（Ｆ）、及び配列番１１のリバースプライマー（Ｒ）を用い、ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ法により定量を行った。定量ＰＣＲ試薬として、Ｐｏｗｅｒ Ｕｐ ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ （サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する細菌の菌数を定量した。
（ブチリビブリオ・フィブリソルベンス（Ｂｕｔｙｒｉｖｉｂｒｉｏ ｆｉｂｒｉｓｏｌｖｅｎｓ）の定量）
表１に示している配列番号１２のフォワードプライマー（Ｆ）、及び配列番号１３のリバースプライマー（Ｒ）を用い、ＳＹＢＲ（登録商標） Ｇｒｅｅｎ法により定量を行った。定量ＰＣＲ試薬として、Ｇｅｎｅ Ａｃｅ ＳＹＢＲ（登録商標） ｑＰＣＲ Ｍｉｘ α Ｎｏ ＲＯＸ（株式会社ニッポンジーン製）を使用して、表２に示す条件でＰＣＲ反応を行い、標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域の増幅（コピー）数に基づき、ルーメン液Ａ、Ｂ、及び下水汚泥消化液に存在する細菌の菌数を定量した。
図４は、ルーメン液Ａ、ルーメン液Ｂ、及び下水汚泥消化液に生息する全細菌及びリグノセルロース分解細菌５種類の各検体１ｍＬあたりの存在数量を示す。
リグノセルロース分解活性の評価試験において、リグノセルロース分解活性が高かったルーメン液Ａでは、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）、これら３種類の細菌が最も多く存在し、リグノセルロース分解活性がほとんどみられない下水汚泥消化液では最も少なかった。２番目にリグノセルロース分解活性が高かったルーメン液Ｂでは、３種類の細菌の存在数量が、ルーメン液Ａと下水汚泥消化液の中間に位置した。リグノセルロース（コピー用紙）の分解活性は、ルーメン液Ａがルーメン液Ｂよりも高いことから、これら３種の細菌の菌数とリグノセルロース分解活性は、概ね正の比例関係があることが明らかとなった。一方、上記３種の細菌以外のルミノコッカス・フラヴェファシエンス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ｆｌａｖｅｆａｃｉｅｎｓ）、及びブチリビブリオ・フィブリソルベンス（Ｂｕｔｙｒｉｖｉｂｒｉｏ ｆｉｂｒｉｓｏｌｖｅｎｓ）の存在数量は、リグノセルロース分解活性に係らず、ルーメン液Ａ、ルーメン液Ｂ、及び下水汚泥消化液において、ほぼ同数であった。
リグノセルロース分解活性が高いルーメン液Ａに存在するフィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の存在数量は、それぞれ５．４４×１０９ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ、３．７３×１０７ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ、３．４４×１０１０ｃоｐｉｅｓ／ｍＬであった。このことから、ルーメン液のフィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）の存在数量が１．０×１０９ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ以上、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）の存在数量が１．０×１０７ｃоｐｉｅｓ／ｍＬ、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の存在数量が１．０×１０１０ｃоｐｉｅｓ／ｍＬのうち、少なくとも一つ以上を指標としてルーメン液を選択することにより、リグノセルロース分解活性の高いルーメン液が得られることが想定される。
従って、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌のうち、少なくとも一種以上の細菌の存在数量を指標とすることで、リグノセルロース分解活性の高いルーメン液を選定することが可能であることが明らかとなった。また、これに基づき、上記３種類の細菌のうち、少なくとも一種以上の細菌の存在数量を指標とすることで、ルーメン微生物の培養をモニタリングしながらリグノセルロース分解活性を評価することが可能であることが想定される。
本発明のリグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法は、古紙や廃紙等の都市ゴミ等の産業廃棄物、農林産廃棄物、建築廃材等のリグノセルロース系産業廃棄物を分解処理し、その分解処理物を原料としてメタンを生成する用途において利用可能である。
１、１０１、２０１ リグノセルロース分解システム
１０ 培養槽
１１ 培養液
２０ 分解槽
３０、１３０、２３０ メタン発酵槽
４０ 粉砕機
５０ 脱水機
６０ 攪拌機
７０ 膜（フィルター）
１２０ 培養槽兼分解槽
１２１ 反応液

Claims (1)

  1. リグノセルロース系バイオマスを分解するリグノセルロースの分解方法であって、
    特定の細菌の存在数量を指標として反芻動物由来のルーメン液を選定する選定工程と、
    前記選定工程において選定されたルーメン液を用いてリグノセルロース系バイオマスを分解する分解工程と、
    前記分解工程において生産されたリグノセルロース分解物を基質としてメタン発酵を行うメタン発酵工程と、を備え、
    前記特定の細菌は、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）の３種類の細菌であり、 上記特定の細菌の存在数量を指標としてとは、反芻動物由来のルーメン液から抽出・精製したゲノムＤＮＡについて、前記特定の細菌に特異的なＰＣＲプライマー又はプローブを用いて標的遺伝子である１６Ｓ ｒＲＮＡの遺伝子領域を定量ＰＣＲにより増幅して得られるコピー数に基づき、前記特定の細菌の存在数量を定量ＰＣＲ法により測定した場合、フィブロバクター・サクシノゲネス（Ｆｉｂｒｏｂａｃｔｅｒ ｓｕｃｃｉｎｏｇｅｎｅｓ）は１．０×１０９ｃｏｐｉｅｓ／ｍＬ以上、ルミノコッカス・アルブス（Ｒｕｍｉｎｏｃｏｃｃｕｓ ａｌｂｕｓ）は１．０×１０７ｃｏｐｉｅｓ／ｍＬ以上、及びプレボテラ・ルミニコラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ ｒｕｍｉｎｉｃｏｌａ）は１．０×１０１０ｃｏｐｉｅｓ／ｍＬ以上であることを指標とすることであるリグノセルロースの分解方法。
JP2020189313A 2020-11-13 2020-11-13 リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法 Active JP7843986B2 (ja)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2020189313A JP7843986B2 (ja) 2020-11-13 2020-11-13 リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法
EP21891440.6A EP4245835A4 (en) 2020-11-13 2021-08-18 LIGNOCELLULOSE DECOMPOSITION SYSTEM AND LIGNOCELLULOSE DECOMPOSITION METHOD
PCT/JP2021/030266 WO2022102192A1 (ja) 2020-11-13 2021-08-18 リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2020189313A JP7843986B2 (ja) 2020-11-13 2020-11-13 リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2022078564A JP2022078564A (ja) 2022-05-25
JP7843986B2 true JP7843986B2 (ja) 2026-04-13

Family

ID=81601024

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2020189313A Active JP7843986B2 (ja) 2020-11-13 2020-11-13 リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP4245835A4 (ja)
JP (1) JP7843986B2 (ja)
WO (1) WO2022102192A1 (ja)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2024106791A (ja) * 2023-01-27 2024-08-08 株式会社神鋼環境ソリューション 水素発酵処理システムおよび水素発酵処理方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011115120A (ja) 2009-12-07 2011-06-16 Central Res Inst Of Electric Power Ind リグノセルロース系バイオマスからメタンガスを生成するための微生物担持担体の作製方法
WO2012053631A1 (ja) 2010-10-22 2012-04-26 国立大学法人東北大学 ルーメン液によるセルロース含有廃棄物を用いた有機酸発酵方法
WO2018136018A1 (en) 2017-01-20 2018-07-26 Istanbul Teknik Universitesi Method for increasing methane yield in anaerobic digesters by adding cellulolytic bacteria cocktail (cebac-g) prepared with rumen fluid obtained from hornless goats.

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20130130098A (ko) * 2011-11-11 2013-12-02 한경대학교 산학협력단 섬유소 분해 박테리아를 이용한 혐기소화과정에서의 메탄발생량 증가방법
WO2018136017A1 (en) * 2017-01-20 2018-07-26 Istanbul Teknik Universitesi Method for increasing methane yield in anaerobic digesters with a cellulolytic bacteria cocktail (cebac-s) prepared with rumen fluid obtained from sheep

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011115120A (ja) 2009-12-07 2011-06-16 Central Res Inst Of Electric Power Ind リグノセルロース系バイオマスからメタンガスを生成するための微生物担持担体の作製方法
WO2012053631A1 (ja) 2010-10-22 2012-04-26 国立大学法人東北大学 ルーメン液によるセルロース含有廃棄物を用いた有機酸発酵方法
WO2018136018A1 (en) 2017-01-20 2018-07-26 Istanbul Teknik Universitesi Method for increasing methane yield in anaerobic digesters by adding cellulolytic bacteria cocktail (cebac-g) prepared with rumen fluid obtained from hornless goats.

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BABA Y. et al.，Pretreatment of lignocellulosic biomass by cattle rumen fluid for methane production: Bacterial flor，Journal of Bioscience and Bioengineering，2017年，Vol.123 No.4，pp.489-496
BABA Y. et al.，Pretreatment of lignocellulosic biomass with cattle rumen fluid for methane production: Fate of adde，Microbes Environ.，2019年，Vol.34 No.4，pp.421-428, Supplementary material
INCE O. et al.，Enhancing methane production from anaerobic co-digestion of cow manure and barley: Link between proc，Environ Prog Sustainable Energy，2019年06月26日，39，e13292
LEE C. et al.，Identification of bacteria involved in the decomposition of lignocellulosic biomass treated with cow，Journal of Bioscience and Bioengineering，2020年04月21日，Vol.130 No.2，pp.137-141
LIANG J. et al.，Promising biological conversion of lignocellulosic biomass to renewable energy with rumen microorgan，Renewable and Sustainable Energy Reviews，2020年09月08日，134，110335
YUE Z. et al.，Application of rumen microorganisms for anaerobic bioconversion of lignocellulosic biomass，Bioresource Technology，2013年，128，pp.738-744
馬場 保徳 他，ウシの第一胃内容液を活用したメタン発酵と資源循環システム，バイオサイエンスとインダストリー，2015年，Vol.73 No.2，p.141-145

Also Published As

Publication number Publication date
EP4245835A1 (en) 2023-09-20
WO2022102192A1 (ja) 2022-05-19
JP2022078564A (ja) 2022-05-25
EP4245835A4 (en) 2025-08-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ventorino et al. Pre-treatment and inoculum affect the microbial community structure and enhance the biogas reactor performance in a pilot-scale biodigestion of municipal solid waste
Chen et al. Optimization of semi-continuous dry anaerobic digestion process and biogas yield of dry yellow corn straw: Based on “gradient anaerobic digestion reactor”
Liczbiński et al. Effect of hyperthermophilic pretreatment on methane and hydrogen production from garden waste under mesophilic and thermophilic conditions
Saidu et al. Biological pre-treated oil palm mesocarp fibre with cattle manure for biogas production by anaerobic digestion during acclimatization phase
Pengyu et al. Comparison of dry and wet milling pre-treatment methods for improving the anaerobic digestion performance of the Pennisetum hybrid
Tirapanampai et al. Processing of palm oil mill effluent (POME) into food waste digesting microbes: An investigation of acclimatization strategies
Vijayaraghavan et al. Bio-hydrogen generation from mixed fruit peel waste using anaerobic contact filter
JP7843986B2 (ja) リグノセルロース分解システム、及びリグノセルロースの分解方法
EP0159054B1 (en) A process for producing methane from solid vegetable material
US20220000144A1 (en) Protein concentration with hyperthermophilic organisms
Sanjaya et al. Kinetic study on the effects of elevated temperature and micro aeration in volatile fatty acids production by anaerobic fermentation of alkaline-pretreated oil palm empty fruit bunch
Ghimire Dark fermentative biohydrogen production from organic waste and application of by-products in a biorefinery concept
JP7641556B2 (ja) ろ過装置
Negassa et al. Evaluation of biogas production by anaerobic digestion of duckweed (Lemna minor) and cattle manure
KR101756446B1 (ko) 유기성 폐기물 및 가축분뇨를 혐기소화하여 감량화 및 바이오가스를 생산하는 시스템 및 그 운영방법
TW202421589A (zh) 用於降低碳排放和有機廢棄物資源化的廢棄物處理及副產物製造方法及其裝置
JP7679938B2 (ja) 燃料ガス製造装置および燃料ガス製造方法
JP7814031B2 (ja) 水素発酵処理システムおよび水素発酵処理方法
JP2006281035A (ja) 有機性廃棄物の処理装置及び処理方法
JP2024106791A (ja) 水素発酵処理システムおよび水素発酵処理方法
JP2024151930A (ja) 培地、並びにこれを用いた培養方法及び培養装置
Goel et al. Anaerobic Treatment of Food Processing Wastes and Agricultural Effluents
PL233236B1 (pl) Sposób zwiększenia sprawności energetycznej biogazowni oraz układ do zwiększenia sprawności energetycznej biogazowni
Zheng et al. Effects of NaOH pretreatment on the microbial community and its enzymatic activities in anaerobic digestion of chicken manure and straw
JP7459139B2 (ja) 嫌気性バイオガスプラント及び消化方法

Legal Events

Date Code Title Description
RD01 Notification of change of attorney

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7426

Effective date: 20201215

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20201215

A711 Notification of change in applicant

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A711

Effective date: 20230816

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20230817

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20231012

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20231108

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20241105

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20241225

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20250408

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20250430

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20250729

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20251023

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20251027

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20260317

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20260325

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7843986

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150