JP7828280B2 - 新規分解関連相互作用の検出 - Google Patents
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Description
本出願は、2019年12月17日付けで出願された米国仮出願番号第62/949,026号に基づく優先権を主張するものである。その優先出願の開示内容全体が本明細書に組み入れられる。
本明細書に付帯する電子提出のテキストファイルの内容は参照としてその全体が本明細書に組み入れられる:配列表のコンピューター可読性形態のコピー(ファイル名:「ORN-064PC_ST25.txt」;作成日:2020年12月7日;ファイルサイズ:10,365バイト)。
(a)リガンドを基盤とするキメラ受容体を有する細胞を提供することであって、
該キメラ受容体が、
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)該第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインであって、
それに融合した細胞内E3リガーゼ基質結合サブユニットベイト蛋白質を有し、
ここで該第2の受容体の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT(Signal Transducer and Activator of Transcription:シグナル伝達因子および転写活性化因子)の動員を低減または排除する変異を含む、
膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
を含む、
細胞を提供すること;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む受容体断片である、
発現させること;
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること、
によって分子相互作用を検出する。実施態様においては、低分子のE3リガーゼ基質結合サブユニットへの結合によって、プレイ蛋白質への結合が促進され、また足場蛋白質、低分子と共に複合体を形成するE3リガーゼ基質結合サブユニット、およびプレイ蛋白質を含む蛋白質複合体の形成が促進される。
(a)リガンドを基盤とするキメラ受容体を有する細胞を提供することであって、
該キメラ受容体が、
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)該第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインであって、
それに融合した足場蛋白質を有し、
ここで該第2の受容体の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT(Signal Transducer and Activator of Transcription:シグナル伝達因子および転写活性化因子)の動員を低減または排除する変異を含む、
膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
を含む、
細胞を提供すること;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む受容体断片である、
発現させること;
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること、
によって分子相互作用を検出する。実施態様においては、該足場蛋白質はE3リガーゼ基質結合サブユニットと相互作用し、また足場蛋白質とE3リガーゼ基質結合サブユニットとの間の複合体はプレイと相互作用する。
(a)リガンドを基盤とするキメラ受容体を含む細胞を提供することであって、
該キメラ受容体が:
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)該第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインであって、
それに融合した細胞内E3リガーゼ基質結合サブユニットベイト蛋白質を有し、
ここで該受容体構築物の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT動員を低減または排除する変異を含む、
該第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
を含む、
細胞を提供すること;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む受容体断片である、
発現させること;
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること、
を含む。
(a)リガンドを基盤とするキメラ受容体を有する細胞を提供することであって、
該キメラ受容体が、
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインであって、およびそれに融合した足場蛋白質を有する膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
ここで該受容体構築物の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT(シグナル伝達因子および転写活性化因子)動員を低減または排除する変異を含む、
膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン
を含み;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む受容体断片である、
発現させること;
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること、
によって分子相互作用を検出する。実施態様においては、該足場蛋白質はE3リガーゼ基質結合サブユニットと相互作用し、該足場蛋白質とE3リガーゼ基質結合サブユニットの間の複合体はプレイと相互作用する。
(a)リガンドを基盤とするキメラ受容体を含む細胞を提供することであって、
該キメラ受容体が:
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)そのような第1の受容体または第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインであって、
それに融合した1種類の蛋白質(または複数種類の蛋白質)を有し、
細胞内E3リガーゼ基質結合サブユニットベイト蛋白質と相互作用可能であり、
ここで該受容体構築物の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT動員を低減または排除する変異を含む、
膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
を含み;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む受容体断片である、
発現させること;
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること、
を含む。実施態様においては、該ベイト蛋白質が足場蛋白質およびE3リガーゼ基質結合サブユニットベイトに会合する。実施態様においては、該ベイト蛋白質を該膜貫通蛋白質に直接的に融合する。
AMFR、ANAPC11、APG16L、ARIH1、ARIH2、ARPC1A、ARPC1B、ASB2、ASB2、ATG16L1、BAF250、BARD1、BIRC2、BIRC3、BIRC4、BIRC7、BMI1、BRAP、BRCA1、bTrCP、CBL、CBLB、CBLC、CBLL1、CCIN、CCIN、CCNB1IP1、CRBN、CHFR、CHIP、CNOT4、COP1、CSA、DCAF1、DCAF10、DCAF11、DCAF12、DCAF13、DCAF14、DCAF15、DCAF16、DCAF17、DCAF19、DCAF2、DCAF3、DCAF4、DCAF5、DCAF6、DCAF7、DCAF8、DCAF9、Dda1、DDB2、DET1、DNAI2、DTX3、DZIP3、E6AP、EDD、EED、ENC1、ENC1、FANCL、FBXL1、FBXL10、FBXL11、FBXL12、FBXL13、FBXL14、FBXL15、FBXL16、FBXL17、FBXL18、FBXL19、FBXL20、FBXL21、FBXL22、FBXL3、FBXL4、FBXL5、FBXL7、FBXL8、FBXO1、FBXO10、FBXO11、FBXO12、FBXO13、FBXO14、FBXO15、FBXO16、FBXO17、FBXO18、FBXO19、FBXO2、FBXO20、FBXO21、FBXO22、FBXO3、FBXO4、FBXO5、FBXO6、FBXO7、FBXO8、FBXW1、FBXW10、FBXW11、FBXW12、FBXW5、FBXW7、FBXW8、FBXW9、FEM1A、FEM1B、FEM1C、GAN、GAN、GNB1、GNB2、GNB5、GRWD1、GTF2H2、GTF3C2、HACE1、HECTD1、HECTD2、HECTD3、HERC1、HERC2、HERC3、HERC4、HERC5、HERC6、HLTF、HOIP、HUWE1、IBRDC2、IBRDC3、IFRG15、IPP、IPP、ITCH、IVNS1ABP、IVNS1ABP、KATNB1、KBTBD10、KBTBD10、KBTBD11、KBTBD11、KBTBD12、KBTBD12、KBTBD13、KBTBD13、KBTBD2、KBTBD2、KBTBD3、KBTBD3、KBTBD4、KBTBD4、KBTBD5、KBTBD5、KBTBD6、KBTBD6、KBTBD7、KBTBD7、KBTBD8、KBTBD8、KCTD5、KEAP、KEAP1、KIAA0317、KIAA0614、KLHDC5、KLHL1、KLHL1、KLHL10、KLHL10、KLHL11、KLHL11、KLHL12、KLHL12、KLHL13、KLHL13、KLHL14、KLHL14、KLHL15、KLHL15、KLHL17、KLHL17、KLHL18、KLHL18、KLHL2、KLHL2、KLHL20、KLHL21、KLHL21、KLHL22、KLHL22、KLHL23、KLHL23、KLHL24、KLHL24、KLHL25、KLHL25、KLHL26、KLHL26、KLHL28、KLHL28、KLHL29、KLHL29、KLHL3、KLHL3、KLHL30、KLHL30、KLHL31、KLHL31、KLHL32、KLHL32、KLHL33、KLHL33、KLHL34、KLHL34、KLHL35、KLHL35、KLHL36、KLHL36、KLHL38、KLHL38、KLHL4、KLHL4、KLHL5、KLHL5、KLHL6、KLHL6、KLHL7、KLHL7、KLHL8、KLHL8、KLHL9、KLHL9、LINCR、LNX1、LRR1、LRRC41、LRSAM1、LZTR1、LZTR1、MAGEA1、MAGE-A1、MAGEA2、MAGE-A2、MAGEA3、MAGE-A3、MAGEA6、MAGE-A6、MAGEB18、MAGE-B18、MAGEB2、MAGE-B2、MAGEC2、MAGE-C2、MALIN、MAP3K1、MARCH1、MARCH11、MARCH2、MARCH4、MARCH5、MARCH6、MARCH7、MARCH8、MARCH9、MDM2、MDM4、MEX、MGRN1、MIB1、MIB2、MID1、MKRN1、MNAT1、MUF1、MULAN、MURF、MYCBP2、MYLIP、Nedd4、NEDD4L、NEDL1、NEDL2、NEURL、NEURL2、NLE1、NUP43、OSTM1、PAFAH1B1、PARC、PARK2、PCGF1、PCGF2、PDZRN3、PEX10、PEX7、PJA1、PJA2、POC1A、PPIL2、PRAME、PRPF19、PWP1、RACK1、RAD18、RAE1、RAG1、RBBP4、RBBP5、RBBP6、RBBP7、RBCK1、RBX1、RCHY1、RFFL、RFPL4A、RFWD2、RING1、RNF103、RNF11、RNF111、RNF114、RNF12、RNF123、RNF125、RNF128、RNF13、RNF130、RNF133、RNF135、RNF138、RNF139、RNF14、RNF144A、RNF167、RNF168、RNF180、RNF181、RNF182、RNF185、RNF19、RNF2、RNF20、RNF20、RNF216、RNF25、RNF34、RNF4、RNF40、RNF41、RNF43、RNF43、RNF5、RNF6、RNF7、RNF8、RNF85、RPTOR、SCAP、SH3RF1、SHPRH、SIAH1、SIAH2、SMU1、SMURF1、SMURF2、SOCS1、SOCS3、SPOP、SPSB1、SPSB1、SPSB2、SPSB2、SPSB4、SPSB4、STXBP5L、SYVN1、TAF5L、TBL1Y、THOC3、TLE1、TLE2、TLE3、TOPORS、TRAF2、TRAF6、TRAF7、TRAIP、TRIAD3、TRIM1、TRIM10、TRIM11、TRIM12、TRIM13、TRIM14、TRIM15、TRIM16、TRIM17、TRIM18、TRIM2、TRIM21、TRIM22、TRIM23、TRIM24、TRIM25、TRIM26、TRIM27、TRIM28、TRIM29、TRIM29、TRIM3、TRIM31、TRIM32、TRIM33、TRIM36、TRIM37、TRIM39、TRIM40、TRIM41、TRIM44、TRIM45、TRIM47、TRIM5、TRIM50、TRIM52、TRIM54、TRIM55、TRIM58、TRIM59、TRIM62、TRIM65、TRIM66、TRIM7、TRIM71、TRIM8、TRIM9、TRIP12、TRPC4AP、TSSC1、UBE3B、UBE3C、UBE4A、UBE4B、UBOX5、UBR1、UBR2、UBR3、UBR4、UHRF1、UHRF2、VHL、VPS18、WDR12、WDR23、WDR26、WDR3、WDR31、WDR37、WDR39、WDR4、WDR47、WDR48、WDR5、WDR51B、WDR53、WDR57、WDR59、WDR5B、WDR61、WDR76、WDR77、WDR82、WDR83、WDR86、WSB1、WSB2、WWP1、WWP2、ZNF294、ZNF313、ZNF364、ZNRF1、ZNRF2、ZYG11A、ZYG11B、またはZYG11BL。
BIRC6、CUL3、DDB1、ELOB、ELOC、RBX1、SKP1、UBCH5A、UBE2A、UBE2B、UBE2B2、UBE2C、UBE2D1、UBE2D2、UBE2D3、UBE2D4、UBE2E1、UBE2E2、UBE2E3、UBE2F、UBE2G1、UBE2G2、UBE2H、UBE2J1、UBE2J2、UBE2K、UBE2L3、UBE2L6、UBE2M、UBE2N、UBE2NL、UBE2O、UBE2Q1、UBE2Q2、UBE2QL、UBE2R1、UBE2R2、UBE2S、UBE2T、UBE2U、UBE2V1、UBE2V1、UBE2V2、およびUBE2W。
MMCQKFYVVLLHWEFLYVIAALNLAYPISPWKFKLFCGPPNTTDDSFLSPAGAPNNASALKGASEAIVEAKFNSSGIYVPELSKTVFHCCFGNEQGQNCSALTDNTEGKTLASVVKASVFRQLGVNWDIECWMKGDLTLFICHMEPLPKNPFKNYDSKVHLLYDLPEVIDDSPLPPLKDSFQTVQCNCSLRGCECHVPVPRAKLNYALLMYLEITSAGVSFQSPLMSLQPMLVVKPDPPLGLHMEVTDDGNLKISWDSQTMAPFPLQYQVKYLENSTIVREAAEIVSATSLLVDSVLPGSSYEVQVRSKRLDGSGVWSDWSSPQVFTTQDVVYFPPKILTSVGSNASFHCIYKNENQIISSKQIVWWRNLAEKIPEIQYSIVSDRVSKVTFSNLKATRPRGKFTYDAVYCCNEQACHHRYAELYVIDVNINISCETDGYLTKMTCRWSPSTIQSLVGSTVQLRYHRRSLYCPDSPSIHPTSEPKNCVLQRDGFYECVFQPIFLLSGYTMWIRINHSLGSLDSPPTCVLPDSVVKPLPPSNVKAEITVNTGLLKVSWEKPVFPENNLQFQIRYGLSGKEIQWKTHEVFDAKSKSASLLVSDLCAVYVVQVRCRRLDGLGYWSNWSSPAYTLVMDVKVPMRGPEFWRKMDGDVTKKERNVTLLWKPLTKNDSLCSVRRYVVKHRTAHNGTWSEDVGNRTNLTFLWTEPAHTVTVLAVNSLGASLVNFNLTFSWPMSKVSAVESLSAYPLSSSCVILSWTLSPDDYSLLYLVIEWKILNEDDGMKWLRIPSNVKKFYIHDNFIPIEKYQFSLYPVFMEGVGKPKIINGFTKDAIDKQQNDAGLYVIVPIIISSCVLLLGTLLISHQRMKKLFWDDVPNPKNCSWAQGLNFQKPETFEHLFTKHAESVIFGPLLLEPEPISEEISVDTAWKNKDEMVPAAMVSLLLTTPDPESSSICISDQCNSANFSGSQSTQVTCEDECQRQPSVKYATLVSNDKLVETDEEQGFIHSPVSNCISSNHSPLRQSFSSSSWETEAQTFFLLSDQQPTMISPQLSFSGLDELLELEGSFPEENHREKSVCYLGVTSVNRRESGVLLTGEAGILCTFPAQCLFSDIRILQERCSHFVENNLSLGTSGENFVPYMPQFQTCSTHSHKIMENKMCDLTV(配列番号:1)。
(a)リガンド依存性キメラ受容体を含む細胞を提供することであって、
該リガンド依存性キメラ受容体が、
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
および
(ii)第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインおよびそれに融合した細胞内ベイト蛋白質、
ここで該第2の受容体の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインがSTAT(Signal Transducer and Activator of Transcription:シグナル伝達因子および転写活性化因子)の動員を低減または排除する変異を含む、
膜貫通ドメインおよび細胞内ドメイン、
を含む、
細胞を提供すること;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、
ここで該受容体断片が機能的STAT動員部位を含む、
発現させること、
および
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出することであって、
ここで該ベイト蛋白質がFK506結合蛋白質(FKBP)である、
シグナルを検出すること、
を含む。
実施例1:分子糊誘導性CRBN基質相互作用の検出に関するMAPPIT派生的アッセイ構成の評価
本実施例では、リガンド誘導性CRBN基質またはネオ基質を同定する目的で、Lemmensら、「MAPPIT、蛋白質/蛋白質相互作用の細胞内検出に関する哺乳動物2ハイブリッド法(MAPPIT, a mammalian two-hybrid method for in-cell detection of protein-protein interactions)」Methods Mol Biol. 2015;1278:447-55に記載の方法を利用するMAPPITアッセイの派生法を用いる。従来型のMAPPITアッセイは蛋白質/蛋白質相互作用をモニターするために用いられていた。ベイト蛋白質(蛋白質A)を融合蛋白質として発現するが、該融合蛋白質では蛋白質Aが、レプチン受容体の工学的に改変した細胞内受容体ドメインと遺伝子的に融合されており、該細胞内受容体ドメインはそれ自身がエリスロポエチン(Epo)受容体の細胞外ドメインに融合されている。該Epo受容体構成要素にEpoリガンドが結合することによって、受容体結合細胞内JAK2を活性化する。しかし、活性化JAK2は、STAT3結合およびそのリン酸化を引き起こすレプチン受容体を活性化できない;理由は、正常であれば活性化JAK2によってリン酸化されるそのチロシン残基に変異が導入されているからである。代わりに蛋白質Bと蛋白質Aの相互作用によって、JAK2リン酸化可能STAT3ドッキング部位の再構成を行う;これにより、蛋白質Bはgp130受容体の細胞内ドメインに融合する(活性化JAK2キナーゼが認識する適正なチロシン残基を含むことになる)。すなわち、蛋白質Aと蛋白質Bの物理的相互作用によって、EPOが惹起するJAK2-STAT3シグナル伝達経路の活性化が再構成される。STAT3の活性化は、ルシフェラーゼをコードする遺伝子または蛍光マーカー(GFPまたは他の種類の蛍光蛋白質(EGFPなど)など)をコードする遺伝子を含むSTAT3応答性レポーター遺伝子を導入することによってモニターできる。このようにして、MAPPITアッセイは無損傷細胞におけるそのような組換え蛋白質/蛋白質相互作用を評価する汎用アッセイを提供する。
本実施例2においては、実施例1で用いたアッセイ設定を、代替的なCRBNキメラ受容体融合構築物を用いた類似のMAPPIT派生的アッセイ構成で対照比較的に試験した。実施例1において既に言及しているように、他の代替的な受容体融合物も利用可能であり、EPO細胞外ドメインをレプチン受容体細胞外ドメインで代替すると、EPOの代わりにレプチンで活性化されるアッセイシステムとなる。本実施例では、EPO受容体細胞外ドメイン(実施例1のようにpSEL-CRBN)またはレプチン受容体細胞外ドメイン(pCLG-CRBN)のいずれかを含むMAPPIT受容体融合物に連結したCRBNをコードするプラスミドでHEK293T細胞を形質転換した。図3A~Dの模式図に示されるように、これらの構築物は細胞外ドメイン以外にも、キメラ受容体の細胞内構成において相違を有する。pSEL-CRBN構築物の場合には、融合物が工学的に改変したレプチン受容体の細胞内ドメイン全体を含む;他方、pCLG-CRBN構築物の場合には、JAK2動員部位を含むレプチン受容体の短い一部分が用いられており、またこのドメインとそれに融合したCRBNベイト蛋白質との間に付加的なGly-Gly-Serヒンジが配置されている。さらに、文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、部分的gp130ドメイン(IKZF1イソ型1、IKZF1イソ型7、GSPT1イソ型1またはGSPT1ドメイン2+3)に融合した目的の基質をコードするプラスミドおよびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)でHEK293T細胞を共形質転換した。IKZF1(イソ型1)gp130融合物の場合には、2種類の異なる構築物をIKZF1のN末端またはC末端のいずれかに融合したgp130と共に用いた。形質転換から24時間後に、表示用量の被検化合物(CC-220またはCC-885)の存在下または非存在下で、細胞をEPO(pSEL-CRBNを用いたアッセイの場合)またはレプチン(pCLG-CRBNを用いたアッセイの場合)で処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPOまたはレプチン+被検化合物で処理した細胞のEPOまたはレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図3A~Dに示されるデータは、代替的MAPPIT受容体融合物の両方ともがCRBNとの分子糊依存性ネオ基質相互作用の検出を可能にすることを示唆している。
非融合型のCRBNベイトを用いて化合物誘導性CRBN/基質相互作用を試験することは有益であると考えられるので、CRBNの代わりにMAPPITキメラ受容体構築物にDDB1を融合するMAPPIT派生的アッセイを開発した。DDB1は、CRBNをコアE3ユビキチンリガーゼ複合体足場サブユニットCUL4AまたはCUL4B(カリン4Aまたはカリン4B)に連結するアダプター蛋白質である。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、EPO受容体細胞外ドメインを含むMAPPIT受容体融合物に連結したDDB1をコードするプラスミド(pSEL-DDB1)、部分的gp130ドメインに融合したCRBN基質蛋白質(実施例1でも用いたIKZF1イソ型7または未開示標的蛋白質X1)をコードするプラスミド、およびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)で、HEK293T細胞を形質転換した。さらに、異なる量の非融合CRBN発現構築物と共に細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のレナリドミド(LEN)の存在下または非存在下で細胞をEPO処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図4に示されるように、共発現した非融合CRBNの存在下においてのみ、IKZF1および標的Xとの相互作用の両方について安定したレナリドミド依存性MAPPITシグナルが得られる;このことは、該シグナルが基質gp130融合蛋白質のCRBNへの結合によって媒介されるものであることを示唆している。
DDB1アダプター蛋白質はCRBN E3リガーゼ複合体の必須構成要素であり、CRBNをCUL4AまたはCUL4B複合体足場蛋白質へ連結するので、CRBN-基質動員アッセイのMAPPIT派生的融合蛋白質構成要素を発現する細胞において、内因性DDB1レベルは限定的であると考えられる。本実施例4においては、CRBNとIKZF1との間のIMiD誘導性相互作用についてDDB1共発現の効果を評価した。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、EPO受容体細胞外ドメインを含むCRBN MAPPIT受容体融合物をコードするプラスミド(pSEL-DDB1)、IKZF1(イソ型7)のgp130融合物をコードするプラスミド、およびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)で、HEK293T細胞を形質転換した。さらに、試験した条件の一部においては、細胞をさらに非融合DDB1発現プラスミドで共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のIMiD(サリドマイド、THL;レナリドミド、LEN;ポマリドミド、POM;CC-122;CC-220;CC-885)の存在下または非存在下で、細胞をEPO処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図5のデータは、DDB1を共発現した試料において、試験した化合物の最大シグナルと比較して、該化合物の低濃度でシグナルが増加したことを示しており、このことはDDB1の共発現によってアッセイ感度が向上したことを示唆する。
実施例3および4において考察しているように、DDB1はCRBN E3リガーゼ複合体の主要構成要素であり、CRBN仲介性基質動員およびユビキチン化にとって必須である。実施例3および4において用いたアッセイ構成に加えて、別のMAPPIT派生的アッセイ設定において、DDB1とCRBNの遺伝子融合を含むMAPPIT受容体構築物を用いる。そのような融合物は、EPO受容体細胞外ドメイン(pSEL-DDB1-CRBN)を含むMAPPITキメラ受容体を用いて作成して、本実施例5において用いた。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、この構築物と共にIKZF1(イソ型7)のgp130融合物をコードするプラスミドおよびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)で、HEK293T細胞を形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のIMiD(サリドマイド、THL;レナリドミド、LEN;ポマリドミド、POM;CC-122;CC-220;CC-885)の存在下または非存在下で、細胞をEPO処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図6のデータは、DDB1/CRBN遺伝子融合物がCRBN IMiD誘導性基質動員を検出するMAPPIT派生的アッセイに利用可能であることを示唆している。
本実施例6では、基質結合リガンドに化学的に連結したCRBN結合リガンドを構成するハイブリッドリガンドであるProtacによって誘導されるCRBN基質動員について評価した。本実施例で試験した化合物はARV-825であり、これはCRBN結合リガンドとBRD4結合性化合物の化学的融合物である。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、実施例2で用いたEPO受容体細胞外ドメイン(pSEL-CRBN)またはレプチン受容体細胞外ドメイン(pCLG-CRBN)のいずれかを含む融合構築物をコードする代替的な2種類のMAPPIT派生的CRBNベイト受容体をコードするプラスミドを、BRD4(イソ型3)のgp130およびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)と共に用いて、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のARV-825の存在下または非存在下で、細胞をEPO(pSEL-CRBNで形質転換した試料の場合)またはレプチン(pCLG-CRBNにの場合)で処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPOまたはレプチン+被検化合物で処理した細胞のEPOまたはレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図7A~Bに示すデータは、試験したアッセイ構成のそれぞれにおいて、明確な用量依存性シグナル増加を示し、このことはMAPPIT派生的CRBN基質動員アッセイがPROTAC型の分子によって誘導される相互作用を検出可能であることを示唆している。
本実施例では、FKBP1A(FKBP12)のMTORおよびカルシニューリンサブユニットとの化合物依存性相互作用の検出に、MAPPIT派生的アッセイを用いた。MAPPIT派生的受容体およびgp130融合をコードする以下のプラスミド構築物を用い、実験設定は実施例1に記載の方法にしたがった;EPO受容体細胞外ドメインを含むMAPPITキメラ受容体構築物にFKBP1Aベイトを融合した(pSEL-FKBP1A);標的蛋白質を部分的gp130ドメイン(MTOR FRBドメインまたはPPP3CA)に融合した。カルシニューリン相互作用については、さらにもう1種類のアッセイ設定を用いた;すなわち、MAPPIT受容体およびgp130融合に加えて、カルシニューリン調節サブユニットをコードする非融合PPP3R2を発現するプラスミドを共発現した;その理由は、この調節性サブユニットがFK506マクロライド誘導性FKBP1A-カルシニューリン相互作用に寄与することが報告されているからである。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、表示の受容体をコードするプラスミドおよびgp130をコードするプラスミドならびにSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)で、HEK293T細胞を形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量の被検化合物(MTOR動員についてはラパマイシンまたはエベロリムス;カルシニューリン結合についてはFK506またはピメクロリムス)の存在下または非存在下で、細胞をEPO処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。曲線のフィッティングはGRAPHPAD PRISMソフトウエアにより、4パラメーター非線型回帰を用いて行った。図8A~Fに示す結果は、MAPPIT派生的アッセイによって、化合物誘導性FKBP1A標的結合をモニターすることが可能であることを示唆している。カルシニューリン動員の場合には、PPP3R2調節性サブユニットの共発現によって、シグナル強度が有意に増強した。
実施例6と同様に、VHLとBRD4とのProtac依存性相互作用の検出にMAPPIT派生的アッセイを用いた。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、BRD4(イソ型3)のgp130融合物およびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)と共に、EPO受容体細胞外ドメイン(pSEL-VHL)またはレプチン受容体細胞外ドメイン(pCLG-VHL)のいずれかを含む融合構築物をコードする、代替的な2種類のMAPPIT派生的VHLベイト受容体をコードするプラスミドで、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のMZ1(VHLとBRD4リガンドとの間の化学的融合物)の存在下または非存在下で、EPO(pSEL-CRBNで形質転換した試料の場合)またはレプチン(pCLG-CRBNの場合)で細胞を処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPOまたはレプチン+被検化合物で処理した細胞のEPOまたはレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図9A~Bのグラフは、試験したアッセイ構成のそれぞれにおいて、明確な用量依存性シグナル増加を示している。
本実施例では、CRBNに対するIKZF1の動員を誘導する化合物を同定するために、実施例1に記載のMAPPIT派生的IKZF1-CRBN動員アッセイを用いて、96種類のIMiDおよびIMiD様分子糊から成る化合物集合体をマイクロタイタープレート形態でスクリーニングした。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、STAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)と共に、EPO受容体細胞外ドメイン(pSEL-CRBN)およびgp130-IKZF1(イソ型7)融合構築物を含むキメラMAPPIT派生的受容体に連結したCRBNベイト蛋白質の融合構築物をコードするプラスミドで、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、細胞をEPOおよび化合物(または陰性対照としてのDMSO)で処理した。各化合物について3種類の濃度(図10A~Cにおいて、「低」、「中」および「高」と表示されている)を用いた:すなわち、以前に評価した化合物の細胞毒性レベルに応じて、0.8、4および20μM、あるいは0.2、1および5μMのいずれかを用い、各化合物濃度はそれぞれ2回試験した。化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。図10A~Cに示すのグラフ(左パネル)は、化合物処理試料およびDMSO処理対照の両方について平均ルシフェラーゼ・シグナル(生データ)の頻度分布を示しており、またそれぞれのグラフは試験を行った3種類の化合物濃度(低、中、および高)の1つについてのデータに対応している。化合物処理試料に対応する、2峰性分布の右にシフトした部分はバックグラウンドより高いシグナルを有する化合物を表し、したがってそれらの化合物はCRBNに対するIKZF1の動員を誘導する。3種類の試験濃度のうちの1種類以上の濃度において、バックグラウンドよりも高いレポーターシグナルを示すそのような3種類化合物に関するルシフェラーゼ・シグナルに、線(点線、破線または実線)で印付けしている;また、対応する用量応答曲線を右パネルに示す。これら用量応答曲線は、第1スクリーニングに用いたアッセイ設定およびプロトコルと同様のものを用いて得られたものであるが、ここでは表示濃度の9点の用量範囲について試験した。ここでデータ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表し、曲線のフィッティングはGRAPHPAD PRISMソフトウエアにより、4パラメーター非線型回帰を用いて行った。まとめると、本実施例に記載したMAPPIT派生的アッセイが、CRBNへの公知および新規の分子糊誘導性基質動員を同定する化合物集合体スクリーニングに利用可能であることを、本実施例は示唆している。図10A~Cは、特にCRBNに対する糊誘導性IKZF1動員に関する化合物スクリーニングの例示であるが、このアプローチは他の潜在的な基質のスクリーニングにも応用可能である。
リガンド誘導性CRBN基質またはネオ基質を同定する目的で、Lievensらの文献(「ヒト細胞におけるプロテオームスケールの2蛋白質インタラクトミックス(Proteome-scale binary interactomics in human cells)」Molecular & Cellular Proteomics 1 5.12 (2016): 3624-3639)に記載の方法を用いてMAPPIT細胞マイクロアレイ・スクリーニングを実施した。簡単に説明すると、上記の実施例1および9に記載のEPO受容体細胞外ドメインを含むキメラMAPPIT派生的受容体に連結したCRBNベイト蛋白質の融合構築物をコードするCRBNベイト発現プラスミド(pSEL-CRBN)と同一のプラスミドで、HEK293T細胞を形質転換した。次いで、15,000種類を超えるORFを網羅するプレイgp130融合発現プラスミド集合体を含むマイクロアレイ・スクリーニングプレートに、これらの形質転換細胞を添加した。マイクロアレイの各スポットは、異なるgp130-ORF融合発現プラスミドならびにSTAT3応答性蛍光蛋白質をコードするレポータープラスミドを含有するものであった。したがって、これらのスポット上に到達して接着したCRBNベイト形質導入細胞はいずれもgp130-ORFプレイプラスミドおよびレポータープラスミドで形質転換されるので、異なるそれぞれのマイクロアレイスポット上の細胞が異なるCRBN-ORFの組み合わせで試験される。形質転換から24時間後に、CRBNリガンドCC-220(10μM)の存在下または非存在下で、細胞をエリスロポエチンで特異的に刺激し、48時間後にレポーターシグナル(GFP様蛍光レポーター)を測定した。蛍光強度のデータを上記のような方法で分析してボルケーノプロットを作成した;図11A~Bに示されるように、このプロットでは、各マイクロアレイの細胞クラスターの積算蛍光強度(Y軸)に基づいて算出したq値を、対応する細胞クラスターの蛍光粒子数(X軸)の中央値の比に対して示す。上記の実施例1および9で用いたものと同様なアッセイ設定およびプロトコルを用いて用量応答を確認するために、強いシグナルを示す4種類のORF cDNA(図11A~Bにおいて、ドットプロット上の矢印で示される)を選択した。対応するgp130-ORFプラスミドおよびルシフェラーゼレポータープラスミドと共に、CRBN受容体融合プラスミド(pSEL-CRBN)でHEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示濃度のCC-220の存在下または非存在下で細胞をEPO処理し、さらに24時間後にルシフェラーゼ活性を判定した。用量応答曲線は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表し、曲線のフィッティングはGRAPHPAD PRISMソフトウエアにより、4パラメーター非線型回帰を用いて行った。本実施例でCC-220について例示されるように、本明細書に記載のMAPPIT派生的アッセイが、公知および新規の分子糊誘導性CRBN基質を同定するORF cDNA集合体をスクリーニングに利用可能であることを、本実施例は示唆している。
実施例9に記載のアプローチと同様に、本実施例では、新規蛋白質リガンドの同定を目的として化合物ライブラリーのスクリーニングにMAPPIT派生的アッセイを用いた。本実施例では、特に、トリメトプリム(TMP)-リガンドハイブリッド分子の集合体を目的蛋白質に対する結合に関してスクリーニングした。TMPはDHFR(ジヒドロ葉酸還元酵素)に強固に結合するので、TMPハイブリッドリガンド融合分子の一部としてリガンドをMAPPIT派生的DHFR受容体融合物につなぎ止めるためにTMPを利用することができ、したがってベイトとしてリガンドを提示することができる(図12A~Bの模式図を参照のこと)。本アッセイ設定においては、このDHFR受容体融合物をTMPハイブリッドリガンドおよびgp130-ORF融合構築物と組み合わせて三重複合体とし、レポーターシグナルを得る。本実施例では、乳癌に関連するとされている核内受容体であって転写因子であるエストロゲン受容体(ESR1)への化合物結合について、およびp53腫瘍抑制因子の制御に関与する重要な癌標的であるMDM4(マウス二重微小染色体4)への化合物結合について、ハイブリッドリガンドのライブラリーをスクリーニングする。本実施例でスクリーニングした化合物集合体は、TMP-TAM(タモキシフェン)を混合した320種類によって構成される多様なハイブリッドリガンドのセットから成るものであった;タモキシフェンはESR1の公知のリガンドである。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、STAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)と共に、レプチン受容体細胞外ドメインを含むキメラMAPPIT派生的受容体に連結した(大腸菌)DHFRアンカー蛋白質の融合構築物をコードするプラスミド(pCLG-DHFR;図12A~B中の模式図を参照のこと)およびgp130-ESR1(図12A)またはgp130-MDM4(図12B)のいずれかの融合構築物で、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、細胞をレプチンおよび化合物(または陰性対照としてのDMSO)で処理した。化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。図12A~Bに示すグラフ(左パネル)は、化合物処理試料およびDMSO処理対照の両方について、平均ルシフェラーゼ・シグナル(生データ)の頻度分布を示す。両方の分布が大きく重なり合うが、複数の化合物がバックグラウンドより高いルシフェラーゼ・シグナルを示している。これらの外れ値を、頻度曲線上に直線の目印で示した。2種類の例示的なスクリーニングの各々について、単一ヒットを用量応答分析で確認した(右パネル)。これらの用量応答曲線は、第1スクリーニングに用いたものと(実施例2に記載のGly-Gly-Serヒンジの代わりに、変異レプチン受容体細胞内ドメインを含む代替的なDHFR受容体アンカー融合構築物pCLL-DHFRを利用することを除き)同様なアッセイ設定およびプロトコルを用いて得られたものであるが、本実施例では表示濃度の9点から成る用量範囲を試験した。ここでデータ点は、レプチン+被検化合物で処理した細胞のレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表し、曲線のフィッティングはGRAPHPAD PRISMソフトウエアにより、4パラメーター非線型回帰を用いて行った。ESR1標的スクリーニングの場合には、確認したヒットはTMP-TAMに対応する;ここで、TAMは公知のESR1リガンドであり、したがってこれらのデータによってMAPPIT派生的スクリーニングのアプローチの検証が成されるのである。まとめると、公知および新規のリガンド/標的相互作用を同定するハイブリッドリガンド集合体スクリーニングに、本実施例に記載のMAPPIT派生的アッセイが利用可能であることを、これらの例は示唆している。
本実施例では、ハイブリッドリガンドベイト分子の新規標的蛋白質を同定する目的で、Lievensらの文献(「ヒト細胞におけるプロテオームスケールの2蛋白質インタラクトミックス(Proteome-scale binary interactomics in human cells)」Molecular & Cellular Proteomics 1 5.12 (2016): 3624-3639)に記載される方法を用いて、実施例10に記載されるものと同様のMAPPIT細胞マイクロアレイ・スクリーニングを実施した。本実施例では、標的未知の強力な抗腫瘍表現型を有する未開示化合物について、その標的を同定する目的で、本スクリーニングのアプローチを利用した。これを目的として、PEG連結によってTMPをこの化合物に連結するハイブリッドリガンド融合化合物を合成した。上記の実施例11で用いたものと同一の(大腸菌)DHFR受容体アンカー融合プラスミド(pCLG-DHFR)で、HEK293T細胞を形質転換した。次いで、15,000種類を超えるORFを網羅するプレイgp130融合発現プラスミド集合体を含むマイクロアレイ・スクリーニングプレートに、これらの形質転換細胞を添加した。マイクロアレイの各スポットは、異なるgp130-ORF融合発現プラスミドならびにSTAT3応答性蛍光蛋白質をコードするレポータープラスミドを含有するものであった。したがって、これらのスポット上に到達して接着したDHFRアンカー融合物形質導入細胞はいずれもgp130-ORFプレイプラスミドおよびレポータープラスミドで形質転換される。形質転換から24時間後に、TMP/化合物ハイブリッドリガンド(最終濃度5μM)の存在下または非存在下で、細胞をレプチンで特異的に刺激し、48時間後にレポーターシグナル(GFP様蛍光レポーター)を測定した。蛍光強度のデータを上記のような方法で分析してボルケーノプロットを作成した;図13A~Bに示されるように、このプロットでは、各マイクロアレイの細胞クラスターの積算蛍光強度(Y軸)に基づいて算出したq値を、対応する細胞クラスターの蛍光粒子数(X軸)の中央値の比に対して示す。1種類のORF cDNAが強いシグナルを示したので(図13A~Bにおいて、ドットプロット上の矢印で示される)、用量応答の確認にこれを選択した。対応するgp130-ORFプラスミドおよびルシフェラーゼレポータープラスミドと共に、DHFR受容体融合プラスミド(pCLG-DHFR)で、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示濃度のハイブリッドリガンドの存在下または非存在下で、細胞をレプチン処理し、さらに24時間後に、ルシフェラーゼ活性を判定した。用量応答曲線は、レプチン+被検化合物で処理した細胞のレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表し、曲線のフィッティングはGRAPHPAD PRISMソフトウエアにより、4パラメーター非線型回帰を用いて行った。本明細書に記載のMAPPIT派生的アッセイが、新規リガンド蛋白質標的を同定するORF cDNA集合体スクリーニングに利用可能であることを、本実施例は示唆している。
本実施例では、MTORとFKBP蛋白質ファミリー構成員(具体的にはFKBP1A(FKBP12)、FKBP3、FKBP4およびFKBP5)との間のラパマイシン誘導性結合をモニターするMAPPIT派生的アッセイを開発した。図14に示されるように、EPO受容体細胞外ドメインを含むMAPPIT受容体融合物(pSEL-FKBPx)としてFKBP cDNAをクローン化し、またMTOR(FRBドメイン)をgp130融合物としてクローン化した。文献(Lievensら、「アレイMAPPIT:哺乳動物細胞における高速大量処理インタラクトーム分析(Array MAPPIT: high-throughput interactome analysis in mammalian cells)」、 Journal of Proteome Research 8.2 (2009): 877-886)に記載のように、gp130-MTOR融合プラスミドおよびSTAT3応答性のルシフェラーゼをコードするレポータープラスミド(pXP2d2-rPAPI-ルシフェラーゼレポータープラスミド)と共に、FKBP受容体融合構築物のいずれかで、HEK293T細胞を共形質転換した。形質転換から24時間後に、表示用量のラパマイシン存在下または非存在下で、細胞をEPO処理した。被検化合物処理から24時間後に、ルシフェラーゼアッセイシステムキット(PROMEGA、Madison、WI)とEnsightプレートリーダー(PERKIN ELMER LIFE SCIENCES、Waltham、MA)を用いて、ルシフェラーゼ活性を測定した。データ点は、EPO+被検化合物で処理した細胞のEPOまたはレプチンのみで処理した細胞に対する平均ルシフェラーゼ活性の誘導倍率(三重試料)を表している。誤差棒は標準偏差を表す。図から分かるように、各FKBP-MTOR相互作用について、既報文献に報告されるようなラパマイシン誘導性レポーターシグナルを得ることができた。
Claims (40)
- 分子相互作用を検出する方法であって、前記方法が:
(a)リガンド依存性キメラ受容体を含む細胞を提供することであって、
前記リガンド依存性キメラ受容体が、
(i)第1の受容体に由来するリガンド結合ドメインの細胞外部分、
ならびに
(ii)第2の受容体の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインならびにそれに融合した細胞内ベイト蛋白質または足場蛋白質
を含み、
前記第2の受容体の膜貫通ドメインおよび/または細胞内ドメインが、STAT(Signal Transducer and Activator of Transcription:シグナル伝達因子および転写活性化因子)の動員を低減または排除する変異を含む、
細胞を提供すること;
(b)受容体断片に融合したプレイ蛋白質を細胞中で発現させることであって、前記受容体断片が機能的STAT動員部位を含む、
発現させること;
ならびに
(c)分子相互作用の存在を示唆するシグナルを検出すること
を含み、
前記ベイト蛋白質が、E3リガーゼ基質結合サブユニット、セレブロン(CRBN)、もしくはFK506結合蛋白質(FKBP)である、または
前記第2の受容体の膜貫通ドメインおよび/細胞内ドメインに融合したベイト足場蛋白質が、E3リガーゼ基質結合サブユニットであるベイト蛋白質に会合し、
前記方法が、プレイ蛋白質および/またはベイト蛋白質に結合する低分子を導入することを含み、前記分子相互作用が、前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される蛋白質/蛋白質相互作用である、
方法。 - 前記プレイ蛋白質とベイト蛋白質との間の相互作用によって、前記ベイト蛋白質に融合した受容体断片が膜貫通キメラ受容体蛋白質へ動員され、リガンド依存性膜貫通キメラ受容体シグナル伝達およびSTAT分子の活性化が回復する、
請求項1に記載の方法。 - 前記細胞がSTAT応答性レポーター遺伝子を含む、請求項1または2に記載の方法。
- 活性化した前記STAT分子が核内に移行して前記STAT応答性レポーター遺伝子の転写を誘導し、レポーター遺伝子シグナルによって分子相互作用の検出が可能となる、請求項3に記載の方法。
- 前記E3リガーゼ基質結合サブユニットが、セレブロン(CRBN)およびフォン・ヒッペル・リンドウ(Von Hippel Lindau:VHL)から選択される、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記足場蛋白質が、損傷DNA結合蛋白質1(DDB1)、カリン4A(CUL4A)、カリン1制御因子(ROC1)、SKIP1、SKP1相互作用パートナー(SKIP2)、βトランスデューシン反復配列含有蛋白質(β-TrCP)、二重微小染色体4蛋白質(MDM4)、X連鎖アポトーシス抑制因子(XIAP)、DDB1およびCUL4関連因子15(DCAF15)、ならびにWDリピートドメイン12(WDR12)から選択される、
請求項2に記載の方法。 - 前記分子相互作用が、前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される2種類以上の蛋白質/蛋白質相互作用である、請求項1~6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される前記蛋白質/蛋白質相互作用が、蛋白質/蛋白質界面における前記プレイ蛋白質またはベイト蛋白質と前記低分子との間の直接結合である、または前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される前記蛋白質/蛋白質相互作用が、前記ベイト蛋白質の蛋白質表面のアロステリック修飾によって媒介される、請求項7に記載の方法。
- 前記低分子が、前記プレイ蛋白質との相互作用を可能にするベイト蛋白質の疎水性表面露出を誘導する、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記低分子が分子糊である、請求項1~7のいずれか1項に記載の方法。
- 前記分子相互作用が複合体形成である、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の受容体および第2の受容体が同一のまたは異なる受容体である、請求項1~11のいずれか1項に記載の方法。
- 前記第1の受容体および/または第2の受容体が多量体化受容体である、
請求項1~12のいずれか1項に記載の方法。 - 前記リガンド結合ドメインがサイトカイン受容体に由来する、および/または前記リガンド結合ドメインが1型サイトカイン受容体(CR)に由来する、または前記リガンド結合ドメインがエリスロポエチン受容体(EpoR)もしくはレプチン受容体(LR)に由来する、および/または前記膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインがマウスレプチン受容体(LR)に由来する、請求項1~13のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ベイトが前記第1の受容体および/または第2の受容体断片に対して異種である、
請求項1~14のいずれか1項に記載の方法。 - 前記細胞内ドメインがJAK結合部位を含み、および/または前記受容体断片がgp130を含む、請求項1~15のいずれか1項に記載の方法。
- 前記STATがSTAT1またはSTAT3から選択される、および/または
STATの動員を低減または排除する前記変異が、1か所以上のチロシンリン酸化部位において起こる、
請求項1~16のいずれか1項に記載の方法。 - 前記膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインがマウスレプチン受容体(LR)に由来し、前記変異がY985、Y1077、およびY1138の位置のうちの1か所以上である、および/または前記変異が、Y985F、Y1077F、およびY1138Fのうちの1つ以上である、またはマウスレプチン受容体(LR)のY985F、Y1077F、およびY1138Fと機能的に同等の変異を有する、
請求項1~17のいずれか1項に記載の方法。 - 前記プレイ蛋白質が核外搬出配列(NES)を含み、
前記NESが1~4個の疎水性残基を有し、前記疎水性残基がロイシンである、および/または前記NESが配列LxxxLxxLxLを有し、ここでLはロイシンであり、xは任意の他のアミノ酸である、
請求項1~18のいずれか1項に記載の方法。 - 前記プレイ蛋白質との相互作用前に、前記ベイトが化合物に接触しており、
前記化合物が、グルタルイミド環およびフタルイミド環を含む、および/または
前記化合物が、サリドマイド、レナリドミド、ポマリドミド、CC-220、CC-122、CC-885、もしくはその誘導体もしくは類似体、またはサリドマイド、レナリドミド、ポマリドミド、CC-220、CC-122、CC-885、もしくはその誘導体もしくは類似体と同一のCRBNベイト結合部位に競争的に結合する化合物から選択される、
請求項1~19のいずれか1項に記載の方法。 - 前記方法が、
前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される新規蛋白質/蛋白質相互作用、
または
前記プレイ蛋白質およびベイト蛋白質を含む蛋白質/蛋白質相互作用を誘導、媒介、または安定化する低分子化合物、および/または分子糊またはハイブリッドリガンドである低分子化合物
を同定する、
請求項1~20のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ベイト蛋白質がFK506結合蛋白質(FKBP)である、請求項1に記載の方法。
- 前記プレイ蛋白質とベイト蛋白質との間の相互作用によって、ベイト蛋白質に融合した受容体断片が膜貫通キメラ受容体蛋白質へ動員され、リガンド依存性膜貫通キメラ受容体シグナル伝達およびSTAT分子の活性化が回復する、
請求項22に記載の方法。 - 前記細胞がSTAT応答性レポーター遺伝子を含む、および/または
活性化したSTAT分子が核内に移行してSTAT応答性レポーター遺伝子の転写を誘導し、レポーター遺伝子シグナルによって分子相互作用の検出が可能となる、
請求項23に記載の方法。 - 前記FK506結合蛋白質(FKBP)が、FKBP12、FKBP38およびFKBP52から選択される、請求項22~24のいずれか1項に記載の方法。
- 前記分子相互作用が、前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される2種類以上の蛋白質/蛋白質相互作用である、
請求項22~25のいずれか1項に記載の方法。 - 前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される前記蛋白質/蛋白質相互作用が、蛋白質/蛋白質界面における前記プレイ蛋白質もしくはベイト蛋白質と前記低分子との間の直接結合である、または前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される前記蛋白質/蛋白質相互作用が、ベイト蛋白質の蛋白質表面のアロステリック修飾によって媒介される、請求項22~26のいずれか1項に記載の方法。
- 前記低分子が、前記プレイ蛋白質との相互作用を可能にするベイト蛋白質の疎水性表面露出を誘導する、および/または
前記低分子が分子糊である、
請求項22~27のいずれか1項に記載の方法。 - 前記分子相互作用が複合体形成である、請求項22~25のいずれか1項に記載の方法。
- 前記第1の受容体および第2の受容体が同一のまたは異なる受容体である、および/または
前記第1の受容体および/または第2の受容体が多量体化受容体である、および/または
前記リガンド結合ドメインがサイトカイン受容体に由来する、および/または前記リガンド結合ドメインが1型サイトカイン受容体(CR)に由来する、または前記リガンド結合ドメインがエリスロポエチン受容体(EpoR)またはレプチン受容体(LR)に由来する、および/または
前記膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインがマウスレプチン受容体(LR)に由来する、
請求項22~29のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ベイトが前記第1の受容体および/または第2の受容体断片に対して異種である、
請求項22~30のいずれか1項に記載の方法。 - 細胞内ドメインがJAK結合部位を含む、および/または前記受容体断片がgp130を含む、請求項22~31のいずれか1項に記載の方法。
- 前記STATがSTAT1またはSTAT3から選択される、および/または
STATの動員を低減または排除する前記変異が1か所以上のチロシンリン酸化部位において起こる、請求項22~32のいずれか1項に記載の方法。 - 前記膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインがマウスレプチン受容体(LR)に由来し、前記変異がY985、Y1077、およびY1138の位置のうちの1か所以上である、および/または前記変異が、Y985F、Y1077F、およびY1138Fのうちの1つ以上である、および/またはマウスレプチン受容体(LR)のY985F、Y1077F、およびY1138Fと機能的に同等の変異を有する、請求項22~33のいずれか1項に記載の方法。
- 前記プレイ蛋白質が核外搬出配列(NES)を含み、
前記NESが1~4個の疎水性残基を有し、前記疎水性残基がロイシンである、および/または
前記NESが配列LxxxLxxLxLを有し、ここでLはロイシンであり、xは任意の他のアミノ酸である、
請求項22~34のいずれか1項に記載の方法。 - 前記プレイ蛋白質との相互作用前に、前記ベイトが、FK506(タクロリムス)、ラパマイシン(シロリムス)、およびシクロスポリンA(CsA)もしくはその誘導体もしくは類似体、またはFK506(タクロリムス)、ラパマイシン(シロリムス)、およびシクロスポリンA(CsA)もしくはその誘導体もしくは類似体と同一のFKBPベイト結合部位に競争的に結合する化合物から選択される化合物に接触している、請求項22~35のいずれか1項に記載の方法。
- 前記方法が、低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される新規蛋白質/蛋白質相互作用を同定する、請求項22~36のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ベイト蛋白質がセレブロン(CRBN)またはFK506結合蛋白質(FKBP)である、
請求項1に記載の方法。 - 前記低分子とプレイ蛋白質またはベイト蛋白質との結合によって仲介される前記蛋白質/蛋白質相互作用が、ベイト蛋白質の蛋白質表面のアロステリック修飾によって媒介される、および/または
前記低分子が、前記プレイ蛋白質との相互作用を可能にするベイト蛋白質の疎水性表面露出を誘導する、および/または
前記低分子が分子糊化合物またはハイブリッドリガンドである、
請求項38に記載の方法。 - 前記方法が、
前記低分子とプレイ蛋白質もしくはベイト蛋白質との結合によって仲介される新規蛋白質/蛋白質相互作用、または
前記プレイ蛋白質およびベイト蛋白質を含む蛋白質/蛋白質相互作用を誘導、媒介、もしくは安定化する低分子化合物、および/または分子糊もしくはハイブリッドリガンドである低分子化合物
を同定する、
請求項38に記載の方法。
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