JP7703552B2 - 植物における熱ストレス耐性を誘導する方法 - Google Patents
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Description
方法
24ポットのApogeeコムギを温室で、3連続の生育条件下で栽培した。初めに、コムギをProMix(登録商標)栽培培地に植え、約6週間、グロースキャビネット内で、24/18℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で栽培した。最初の一連の生育条件の後、植物体はFeekesステージ10.4-10.5(開花期)であった。次に、タンク噴霧器を用いて、0、30または100ppm ACC(n=8)のスプレー塗布を行った。次に、処理の2日後に、植物体を36/30℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で7日間、グロースチャンバーに移した。これらの条件は、著しい熱ストレスを成す。最後に、植物体をその後、24/18℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下でさらに約5週間、グロースチャンバーに戻した。植物体を次に破壊的に収穫し、穂の総数、穂の重量、粒重、一穂あたりの収量、Δ穂数および収穫指数を測定した。Δ穂数は、収穫時の繁殖分げつ数から処理時の繁殖分げつ数を差し引いて算出される。繁殖分げつの増加は、繁殖成功の増加を示す。収穫指数は、穀物のポンド数を地上バイオマスの総ポンド数で除することで算出される。結果は以下の表1に示される。
上記の表1に示すように、熱ストレスに先立つACCの適用は、穂数、穂の重量、粒重、一穂あたりの収量、分げつ数および収穫指数の増加をもたらした。これらの増加は、用量依存的であった。具体的に言うと、30ppm ACCの適用は、穂数を6.3%、穂の重量を8.5%、粒重を15.7%、一穂あたりの収量を11.1%、分げつ数を16.7%、収穫指数を10.3%、コントロールと比較して増加させた。100ppm ACCの適用は、穂数を10.5%、穂の重量を14.5%、粒重を25.7%、一穂あたりの収量を17.8%、分げつ数を42.0%、収穫指数を17.2%、コントロールと比較して増加させた。それゆえ、コムギの開花期でのACCの適用は、コムギを後の熱ストレスから保護し、収量および繁殖成功を、ACCで処理していないコムギと比較して増加させた。
方法
ApogeeコムギをProMix BX(Premier Horticulture)中に播き、グロースキャビネットで、以下の条件で栽培した:24/18℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期。2019年11月15日の最初の一連の生育条件の後、植物体をFeekesステージ5で評価した。次に、トラック噴霧器(track sprayer)を用いて、0、0または100ppm ACC(n=8)のスプレー塗布を行った。次に、処理の2日後に、1組のコントロール植物体(「処理コントロール」)および100ppm ACC植物体を34/28℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で4日間、第2のグロースキャビネットに移した。これらの条件は、著しい熱ストレスを成す。もう1組のコントロール植物体(「ストレスコントロール」)は、第1のグロースキャビネットの中に放置した。最後に、植物体を次に第1のグロースキャビネットに約14日間戻し、植物体をFeekesステージ10.1(出穂)に到達させた。植物体を次に破壊的に収穫し、穂の総数、新鮮重量、総繁殖分げつ数、繁殖分げつの割合、Δ群落密度および乾燥総重量を測定した。繁殖分げつの割合は、繁殖分げつ数を収穫時の穂の総数で除することで算出される。Δ群落密度は、収穫時の群落密度から処理時の群落密度を差し引いて算出される。結果は以下の表2に示される。
上記の表2に示すように、熱ストレスに先立つACCの適用は、新鮮重量、総分げつ数、%分げつ、Δ群落密度および乾燥総重量の増加を、熱ストレスにさらされたが、ACCで処理されていないコムギ植物体と比較してもたらした。%繁殖分げつは、理想的な条件(すなわちストレスコントロール)下で栽培されたコムギ植物体の1.1%以内に戻された。さらに、Δ群落密度は、ACCで処理したコムギ植物体において、理想的な条件下で栽培されたコムギ植物体と比較して、42.1%増加した。それゆえ、コムギの栄養成長期でのACCの適用は、コムギを後の熱ストレスから保護し、収量および繁殖成功を、ACCで処理していない、熱ストレスを受けたコムギと比較して増加させた。
方法
ApogeeコムギをProMix BX(Premier Horticulture)中に播き、グロースキャビネットで、以下の条件で栽培した:24/18℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期。最初の一連の生育条件の後、植物体はFeekesステージ5であった。次に、トラック噴霧器(track sprayer)を用いて、2019年10月4日に、0、0、100または300ppm ACC(n=8)のスプレー塗布を行った。次に、処理の2日後に、1組のコントロール植物体(「処理コントロール」)および100ppm ACC植物体を34/28℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で4日間、第2のグロースキャビネットに移した。これらの条件は、著しい熱ストレスを成す。もう1組のコントロール植物体(「ストレスコントロール」)は、第1のグロースキャビネットの中に放置した。最後に、植物体を次に第1のグロースキャビネットに約14日間戻し、植物体をFeekesステージ10.1(出穂)に到達させた。植物体を次に破壊的に収穫し、穂の総数、新鮮重量、総繁殖分げつ数、繁殖分げつの割合、Δ群落密度および乾燥総重量を測定した。繁殖分げつの割合は、繁殖分げつ数を収穫時の穂の総数で除することで算出される。Δ群落密度は、収穫時の群落密度から処理時の群落密度を差し引いて算出される。結果は以下の表3に示される。
上記の表3に示すように、熱ストレスに先立つ100ppm ACCの適用は、穂数、新鮮重量、総分げつ数、Δ群落密度および乾燥総重量の増加を、熱ストレスにさらされたが、ACCで処理されていないコムギ植物体と比較してもたらした。熱ストレスに先立つ300ppm ACCの適用は、穂数および乾燥総重量の増加をもたらした。それゆえ、コムギの栄養成長期でのACCの適用は、コムギを後の熱ストレスから保護し、収量を、ACCで処理していない、熱ストレスを受けたコムギと比較して増加させた。
方法
バターヘッドレタスをProMix BX(Premier Horticulture)中に播き、温室で栽培した。播種後3週間で、レタスをグロースキャビネットに以下の条件下で移した:24/18℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期。最初の一連の生育条件の後、植物体は結球形成(ロゼット)期であった。移動の4日後に、群落密度を算出した。次に、トラック噴霧器(track sprayer)を用いて、2020年9月21日に、0、10、30または100ppm ACC(n=5)のスプレー塗布を行った。次に、処理の2日後に、植物体の半数を34/30℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で9日間、第2のグロースキャビネットに移した。これらの条件は、著しい熱ストレスを成す。植物体を次に破壊的に収穫し、新鮮重量、大きさ、群落密度およびΔ群落密度を測定した。Δ群落密度は、収穫時の群落密度から処理時の群落密度を差し引いて算出される。結果は以下の表4に示される。
上記の表4に示すように、熱ストレスに先立つ10、30または100ppm ACCの適用は、新鮮重量、群落密度およびΔ群落密度の増加を、熱ストレスにさらされたが、ACCで処理されていないレタス植物体と比較してもたらした。それゆえ、レタスの栄養成長期でのACCの適用は、レタスを後の熱ストレスから保護し、収量を、ACCで処理していない、熱ストレスを受けたレタスと比較して増加させた。
方法
Williams 82ダイズをProMix BX(Premier Horticulture)中に播き、温室で栽培した。ダイズ植物体が、完全に広がった第1三出葉(V1成長段階)を見せたとき、ダイズの群落密度を測定し、相対的な大きさに基づいて、処理および再現にグループ分けした。次に、トラック噴霧器(track sprayer)を用いて、2020年10月9日に、0、10、30または100 ACC(n=5)のスプレー塗布を行った。スプレー後、植物体をグロースキャビネットに、以下の条件下で移した:24/18℃の日中夜間温度、16/8時間の明暗周期。次に、処理の3日後に、植物体の半数を34/30℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で6日間、第2のグロースキャビネットに移した。これらの条件は、早期熱ストレスを成す。植物体を次に破壊的に収穫し、新鮮重量、群落密度、Δ群落密度、乾燥総重量および高さを測定した。結果は以下の表5に示される。
上記の表5に示すように、熱ストレスに先立つ10および30ppm ACCの適用は、新鮮重量、群落密度、Δ群落密度、乾燥総重量および高さの増加を、熱ストレスにさらされたが、ACCで処理されていないダイズ植物体と比較してもたらした。熱ストレスに先立つ100ppm ACCの適用は、乾燥総重量の増加をもたらした。それゆえ、ダイズの栄養成長期でのACCの適用は、ダイズを後の熱ストレスから保護し、収量を、ACCで処理していない、熱ストレスを受けたダイズと比較して増加させた。
方法
セイヨウアブラナのキャノーラ変種の実験モデルとして一般に使用されるセイヨウアブラナの矮性種をProMix BX(Premier Horticulture)中に播き、温室で栽培した。次に、トラック噴霧器(track sprayer)を用いて、セイヨウアブラナ植物体が開花し始めてから6日後に、0、10、100または300ppm ACC(n=10)のスプレー塗布を行った。スプレー後、植物体をグロースキャビネットに、以下の条件下で移した:24/18℃の日中夜間温度、16/8時間の明暗周期。次に、処理の2日後に、植物体の半数を36/30℃の日中/夜間温度、16/8時間の明/暗光周期下で7日間、第2のグロースキャビネットに移した。これらの条件は、早期熱ストレスを成す。常に花および鞘を剪定し、鞘の数を約10に保った。植物体を次に破壊的に収穫し、種子収量、種子数、1鞘あたりの種子収量、1鞘あたりの種子数および1粒種子重を測定した。結果は以下の表6に示される。
上記の表6に示すように、熱ストレスに先立つ30、100または300ppm ACCの適用は、1鞘あたりの種子収量および1鞘あたりの種子数の増加を、熱ストレスにさらされたが、ACCで処理されていないセイヨウアブラナ植物体と比較してもたらした。熱ストレスに先立つ10ppm ACCの適用は、1鞘あたりの種子数の増加をもたらした。それゆえ、セイヨウアブラナ矮性種の生殖成長初期でのACCの適用は、植物体を後の熱ストレスから保護し、収量を、ACCで処理していない、熱ストレスを受けたセイヨウアブラナ矮性種と比較して増加させた。
Claims (20)
- 有効量の1-アミノ-1-シクロプロパンカルボン酸(ACC)を植物に適用することを特徴とする、植物における熱ストレス耐性を向上させる方法であって、前記植物が、コムギ、トウモロコシ、ダイズ、セイヨウアブラナ、およびレタスからなる群から選択され、
ここで、ACCは、コムギにおいては発芽から成熟まで、トウモロコシにおいては発芽から開花まで、ダイズにおいては発芽から開花まで、セイヨウアブラナにおいては発芽から開花まで、レタスにおいては発芽からロゼット形成まで、の植物の生育段階の間に植物に適用される、
方法。 - 前記植物が、コムギである、請求項1に記載の方法。
- 前記植物が、レタスである、請求項1に記載の方法。
- 前記植物が、ダイズである、請求項1に記載の方法。
- 前記植物が、セイヨウアブラナである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約1から約1000ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約10から約300ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約30から約300ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約30から約100ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約10から約100ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記有効量が、約10から約30ppmである、請求項1に記載の方法。
- 前記ACCが、スプレーとして前記植物に適用される、請求項1に記載の方法。
- 前記ACCが、葉面散布剤として前記植物に適用される、請求項12に記載の方法。
- 前記ACCが、前記植物の発育期で前記植物に適用される、請求項1に記載の方法。
- 前記ACCが、Feekesステージ2からFeekesステージ11までの間、前記コムギに適用される、請求項2に記載の方法。
- 前記ACCが、Feekesステージ5で、前記コムギに適用される、請求項2に記載の方法。
- 前記ACCが、Feekesステージ10.4からFeekesステージ10.5までの間、前記コムギに適用される、請求項2に記載の方法。
- 前記ACCが、前記レタスのロゼット期に、前記レタスに適用される、請求項3に記載の方法。
- 前記ACCが、V1からV4期までの間、前記ダイズに適用される、請求項4に記載の方法。
- 前記ACCが、前記セイヨウアブラナ植物体の開花期に、前記セイヨウアブラナ植物体に適用される、請求項5に記載の方法。
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