JP7667922B2 - 局所投与用の医薬組成物 - Google Patents
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Description
[1]乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与用の医薬組成物。
[2]局所投与が経鼻投与、舌下投与または吸入投与である、上記[1]に記載の医薬組成物。
[3]局所投与が、上気道および/または下気道に対する投与である、上記[1]または[2]に記載の医薬組成物。
[4]前記上気道が、鼻腔である、上記[3]に記載の医薬組成物。
[5]上気道および/または下気道においてプラズマサイトイド樹状細胞によるインターフェロンの産生を誘導するための、上記[1]~[4]のいずれかに記載の医薬組成物。
[6]前記医薬組成物の投与対象が感染症に罹患した後、該対象においてIFNの産生が誘導される、上記[5]に記載の医薬組成物。
[7]感染症の予防または治療のための、または、投与対象の感染症への罹患リスク低減に用いるための、上記[1]~[6]のいずれかに記載の医薬組成物。
[8]感染症が、ウイルス感染症である、上記[7]に記載の医薬組成物。
[9]ウイルス感染症の予防が、ウイルス感染症の発症予防またはウイルス感染症の重症化予防である、上記[8]に記載の医薬組成物。
[10]ウイルス感染症がCOVID-19またはインフルエンザウイルス感染症である、上記[8]または[9]に記載の医薬組成物。
[11]ウイルス感染症が呼吸器系感染症の原因ウイルスが感染したものである、上記[8]~[10]のいずれかに記載の医薬組成物。
[12]呼吸器系ウイルス感染症の原因ウイルスがSARS-CoV-2またはインフルエンザウイルスである、上記[11]に記載の医薬組成物。
[13]哺乳動物に投与される、上記[1]~[12]のいずれかに記載の医薬組成物。
[14]哺乳動物がヒトである、上記[13]に記載の医薬組成物。
[15]投与回数が2回以上である、上記[1]~[14]のいずれかに記載の医薬組成物。
[16]投与間隔が1日以上である、上記[1]~[15]のいずれかに記載の医薬組成物。
[17]ウイルス感染症の予防の有効期間が、局所投与を行った最後の日から56日間である、上記[8]~[16]のいずれかに記載の医薬組成物。
[18]乳酸菌の1日当たりの投与量(成体の体重50kg基準)が、1mg以上1000mg以下である、上記[1]~[17]のいずれかに記載の医薬組成物。
[19]乳酸菌がラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティスJCM5805菌株である、上記[1]~[18]のいずれかに記載の医薬組成物。
[20]ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティスを有効成分として含有する、局所投与用組成物。
[21]医薬組成物である、上記[20]に記載の局所投与用組成物。
[22]ウイルス感染部位に局所投与する、上記[8]~[19]のいずれかに記載の医薬組成物。
[23]乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与するための免疫賦活用組成物。
[24]顎下リンパ節および/または脾臓におけるIFN誘導性抗ウイルス遺伝子(ISG)の発現を増強させるための、上記[22]または[23]に記載の免疫賦活用組成物。
[25]ISGが、Viperin、Isg15およびMx1からなる群から選択される1種または2種以上である、上記[24]に記載の免疫賦活用組成物。
[26]脾臓中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるための、および/または、鼻粘膜中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるための、上記[22]~[25]のいずれかに記載の免疫賦活用組成物。
[27]鼻粘膜中のリンパ球に対するCD11b+Siglec-H+細胞の比率を増加させるための、上記[22]~[26]のいずれかに記載の免疫賦活用組成物。
[28]有効量の乳酸菌またはそれを含んでなる組成物を、それを必要としている対象に局所投与する工程を含む、感染症の予防方法もしくは治療方法、感染症の罹患リスク低減方法または免疫賦活方法。
[29]局所投与用の感染症の予防剤もしくは治療剤の製造のための、局所投与用の感染症の罹患リスク低減剤の製造のための、または局所投与用の免疫賦活剤の製造のための、あるいは、局所投与用の感染症の予防剤もしくは治療剤としての、局所投与用の感染症の罹患リスク低減剤としてのまたは局所投与用の免疫賦活剤としての、あるいは、局所投与による感染症の予防方法もしくは治療方法、局所投与による感染症の罹患リスク低減方法または局所投与による免疫賦活方法における、乳酸菌の使用。
[30]局所投与による感染症の予防もしくは治療に用いるための、局所投与による感染症の罹患リスク低減に用いるための、または局所投与による免疫賦活に用いるための、乳酸菌。
実施例1では、乳酸菌の経鼻投与によるSARS-CoV-2感染予防効果について検討した。
ア 乳酸菌の投与、SARS-CoV-2の感染
BALB/cマウス(17週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を対照群(乳酸菌未投与群)と5つの乳酸菌投与群の計6群に分け、表1に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は2または3)。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al.,Science Advances.(2022)8(1). eabh3827)を0.5×LD50(30μl)で感染させた。また、感染前と感染3日後で体重測定を行った。そして、感染3日後に解剖し、肺および肺胞洗浄液(BALF(Bronchoalveolar Lavage Fluid))を採取した。
採取した肺をTRIzol(Thermo Fisher Scientific社)に浸漬し、gentleMACS M tube(Miltenyi Biotec社)に分散させた。遠心分離後、上清を回収しクロロホルム(ナカライテスク社)を添加し、遠心分離後、上部の水槽を2-プロパノール(ナカライテスク社)を含むチューブへ回収した。遠心分離後、上清を除き75%エタノールでペレットを懸濁し遠心分離し、上清を完全に除き乾燥後、RNase-Free Water(GIBCO社)に懸濁した。また、採取したBALFからのRNAはQIAmp ViralRNA Mini Kit(QIAGEN社)を用いて調製した。
抽出したRNAはリアルタイムPCR法により定量した。リアルタイムPCRは、QuantiTect Probe RT-PCR Kit(QIAGEN社)および遺伝子特異的SARS-CoV-2プライマー・プローブを用い、一般的な反応組成に従って、50℃で30分間、95℃で15分間、続いて95℃で15秒間、60℃で60秒間を45サイクル反応させることにより行った。プライマーは表2に示すものを用いた(Shirato K, et al., Jpn. J. Infect. Dis. 2020; 73(4): 304-307)。
BALFについて、感染性SARS-CoV-2ウイルスの定量を行った。具体的には、10質量%FCSを添加したDMEM(GIBCO社)で10-106まで10倍段階希釈系列を作成し、Vero細胞(アフリカミドリザル腎細胞株(JCRB1819 VeroE6/TMPRSS2、JCRB細胞バンク))をシートした96穴プレート(CORNING社)に各BALF希釈液100μlを4穴ずつ接種し、接種4日後における細胞変性の有無でウイルス感染を評価した。ウイルス力価の計算はReed-Muenchの式によってTCID50/mlとして算出した。
結果は、図1~3に示す通りであった。図1の示すSARS-CoV-2感染前の体重に対する感染3日目(感染約72時間後)の体重の割合から、乳酸菌投与群ではいずれも体重減少が認められなかったのに対し、対照群(乳酸菌非投与群)では感染前の90%程度の体重減少が認められた。Day(-2/-7)群およびDay(-3/-8)群においても体重減少の抑制効果が認められたことから、乳酸菌の経鼻投与による感染抑制効果が数日間(少なくとも3日間)は維持された。また、対照群では、乳酸菌投与群と比較して、毛並みが悪くなるとともに、活動量が低下し食餌摂取回数が減少する様子が観察された。
実施例2では、乳酸菌の経鼻投与によるSARS-CoV-2感染後の血中およびBALF中のIFN-α産生に対する影響を検討した。
BALB/cマウス(17週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を対照群(乳酸菌未投与群)と5つの乳酸菌投与群の計6群に分け、表3に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は2または3)。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al., Science Advances. 2022; 8(1): eabh3827)を0.5×LD50(30μl)で感染させた。そして、感染3日後(約72時間後)に解剖し、血中および肺胞洗浄液(BALF)中のインターフェロン-α(IFN-α)濃度をinterferon α All Subtype ELISA Kit(PBL BIOMEDICAL LABORATORIES社)を用いて測定した。
結果は、図4に示す通りであった。対照群では、SARS-CoV-2感染3日後(感染後約72時間後)の血中のIFN-α濃度の平均値は100pg/mlを超え、BALF中のIFN-α濃度の平均値は300pg/mlを超えていることが確認された。これに対し、乳酸菌投与群では、SARS-CoV-2感染3日後(感染後約72時間後)の血中のIFN-α濃度の平均値は50pg/ml以下であり、BALF中のIFN-α濃度の平均値は200pg/ml以下であることが確認された。
実施例3では、乳酸菌の経鼻投与によるSARS-CoV-2感染後の体重減少抑制について検討した。
BALB/cマウス(16週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を対照群(乳酸菌未投与群)と乳酸菌投与群の2群に分け、表4に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は6)。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al., Science Advances. 2022; 8(1): eabh3827)を0.5×LD50(30μl)で感染させた。そして、感染7日後まで毎日体重測定し、感染前の体重に対する体重の割合を算出した。
結果は、図5に示す通りであった。対照群では感染後3日後から4日後をピークに顕著な体重減少が認められた。これに対し、乳酸菌投与群では、感染後に明らかな体重減少は認められず、対照群と比較して有意に体重減少が抑制された。
実施例4では、乳酸菌の経鼻投与によるSARS-CoV-2感染予防効果の持続性について検討した。
ア 乳酸菌の投与、SARS-CoV-2の感染
BALB/cマウス(15週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を対照群(乳酸菌未投与群)と乳酸菌投与群5群の計6群に分け、表5に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は4または5)。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al., Science Advances. 2022; 8(1): eabh3827)を5×LD50(5μl)で感染させた。そして、感染2日後に解剖し、鼻咽腔関連リンパ組織(NALT(nasal-associated lymphoid tissues))を採取した。
例1(1)イの記載と同様にして、採取したNALTからのRNAの抽出および調製を行った。
例1(1)ウの記載と同様にして、RNAの定量を行った。
結果は、図6に示す通りであった。Day(-1/-3)群およびDay(-4/-6)群では、対照群と比較して、SARS-CoV-2のウイルスRNA量およびサブゲノミックRNA量が顕著に低かった。また、Day(-7/-9)群、Day(-10/-12)群およびDay(-14/-16)群においても、対照群と比較して、ウイルスRNA量およびサブゲノミックRNA量が10倍程度低い傾向にあった。
実施例5では、乳酸菌の経鼻投与によるA型インフルエンザウイルス(H1N1)感染予防効果について検討した。
ア 乳酸菌の投与、A型インフルエンザウイルスの感染
BALB/cマウス(12週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を対照群(乳酸菌未投与群)と乳酸菌投与群の2群に分け、表6および表7に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は5または7)。表6および表7の各群のマウスは感染0日目に麻酔下においてA型インフルエンザウイルスのA/PR8/34(PR8)(国立感染症研究所から入手、Ikeda K, Ainai A, et al., Vaccine. 2015; 33(45): 6066-9.)またはA/Narita/1/2009(Narita)(国立感染症研究所から入手、Adachi Y, et al., J Exp Med. 2015; 212(10): 1709-23.)を、40×LD50(5μl)または5×LD50(5μl)でそれぞれ感染させた。そして、感染2日後に解剖し、鼻腔洗浄液を採取した。
採取した鼻腔洗浄液からのRNAはQIAmp ViralRNA Mini Kit(QIAGEN社)を用いて調製した。
抽出したRNAはリアルタイムPCR法により定量した。リアルタイムPCRは、QuantiTect Probe RT-PCR Kit(QIAGEN社)および遺伝子特異的A型インフルエンザウイルスプライマー・プローブを用い、一般的な反応組成に従って、50℃で30分間、95℃で15分間、続いて94℃で15秒間、56℃で75秒間を40サイクル反応させることにより行った。プライマーは表8に示すものを用いた(Nakauchi M, et al., Journal of Virological Methods. 2011; 7171(1): 156-162)。
結果は、図7に示す通りであった。乳酸菌投与群では、対照群と比較して、PR8感染とNarita感染のいずれにおいても鼻腔洗浄液中のA型インフルエンザのウイルスRNA量が有意に低かった。
実施例6では、乳酸菌の経鼻投与による免疫賦活効果について検討した。
ア 乳酸菌の投与
BALB/cマウス(16週齢・雌・体重約20g、日本エスエルシー社)を表9に示す4群に分けて乳酸菌の経鼻投与試験を行った。対照群にはPBS(GIBCO社)を投与し、投与群には表9に示す条件にて乳酸菌(ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を投与した(各群のn数は3)。なお、対照群には、投与群の投与用量と対応するPBSのみを投与した。そして、乳酸菌投与3日後に、麻酔下で心臓からの全採血により安楽死させ解剖した。
各組織検体からのRNA抽出は、次の下記(i)~(vi)の手順で行った。
(i)各組織検体を1ml TRIzol(Thermo Fisher Scientific社)入りMチューブ(Miltenyi Biotec社)に回収し、-80℃で凍結保存した。
(ii)凍結保存した組織検体を融解し、GentleMACS(Miltenyi Biotec社)を用いて組織を破砕し、室温で2~3分静置した後、3,000×g、5分、4℃で遠心した。上清をエッペンチューブに回収し、さらに12,000×g、10分、4℃で遠心した。
(iii)上清をエッペンチューブに回収し、クロロホルム(富士フィルム和光純薬社)180μlを添加し、室温で2~3分静置した後、12,000×g、15分、4℃で遠心した。
(iv)上清上部の水層を2-プロパノール(富士フィルム和光純薬社)450μl入りのエッペンチューブに回収し、室温で10分静置した後、12,000×g、10分、4℃で遠心した。
(v)上清を除去し、75%エタノール(富士フィルム和光純薬社)1mlを添加し、ボルテックスした後、7,500×g、5分、4℃で遠心した。
(vi)上清を除去し、15分間ペレットを風乾させた。その後、RNase Free Water(QIAGEN社)で懸濁し、56℃、10分で熱処理を行った後、-80℃で保存した。
抽出したRNAからIFN誘導性抗ウイルス遺伝子(ISG)であるViperin、Isg15およびMx1の各mRAN発現量の定量を行った。具体的には、下記(i)~(v)の手順で行った。
(i)各サンプルのRNA濃度をナノドロップにて測定した後、1000ng/15μlとなるようiScript cDNA synthesis kit(BIORAD社)のNuclease Free Waterで希釈した。
(ii)Master Mix (5x iScript reaction mix 4μl/サンプル、iScript reverse transcript 1μl/サンプル)を調製し、各RNA溶液に5μlずつ添加した。
(iii)その後、サーマルサイクラーにてcDNA合成を行い、-20℃にて保存した。
(iv)各cDNAサンプルをMilliQ水で5倍希釈するとともに、全サンプルを混合したスタンダード溶液を×1、×2、×4、×8、×16、×32、×64および×128の濃度で調整した。
(v)表10に示す反応液を96ウェルプレートにアプライし、リアルタイムPCRは、Light Cycler 480を用いて、95℃で10秒間、60℃で10秒間および72℃で10秒間のセットを45サイクル反応させることにより行った。プライマーは表11に示すものを用いた。
結果は、図8~11に示す通りであった。図8では、Day(-3)(解剖3日前(乳酸菌の1回目の経鼻投与日))の体重に対する、Day(-2)(解剖2日前)、Day(-1)(解剖1日前(乳酸菌の2回目の経鼻投与日))およびDay(0)(解剖当日)の体重の割合から、Day(0)(解剖当日)においてLow volume(-)群とLow volume(+)で比較し、有意な差は認められなかった。また、Day(0)(解剖当日)においてHigh Volume(-)群とHigh Volume(+)群と比較し、有意な差は認められなかった。また、いずれの群においても、毛並みおよび活動量への影響は認められなかった。
実施例7では、実施例6で解剖により摘出した脾臓、顎下リンパ節および鼻粘膜を用いて、乳酸菌の経鼻投与によるpDCに与える影響について検討した。
実施例6で解剖により摘出した脾臓、顎下リンパ節および鼻粘膜の各組織におけるpDC数を次の手順で定量した。表12に示す蛍光標識抗体を用いて各組織を染色し、染色後の細胞をFACS bufferを用いて1回洗浄し、FACS bufferに再懸濁して、FACS解析に供した。そして、FACS Cant II (BD Biosciences社)を用いてデータを取得し、FlowJo software (Tree Star社)を用いて解析した。ここで、CD11cおよびSiglec-Hを発現する細胞(CD11c+SIglec-H+細胞)またはCD11bを発現せずSiglec-Hを発現する細胞(CD11b-Siglec-H+細胞)をpDCと定義し、FACS解析のリンパ球分画に含まれる全リンパ球に対するpDCの比率から各組織中のリンパ球に対するpDCの比率を定量するとともに、pDCの細胞表面活性化マーカーとしてMHCクラスII(I-A/I-E)およびCD86の発現レベルを測定した。また、FACS解析のリンパ球分画に含まれるCD11bおよびSiglec-Hを発現する細胞(CD11b+Siglec-H+細胞)の比率から各組織中のリンパ球に対するCD11b+Siglec-H+細胞の比率を定量した。
結果は、図12~17に示す通りであった。図12では、Low volume投与群(Low volume(+)群)は、Low volume対照群(Low volume(-)群)と比較して、脾臓中のリンパ球に対するpDCの比率が増加傾向にあった。一方で、図13では、脾臓のpDCにおいて、MHCクラスII(I-A/I-E)(図13A)およびCD86(図13B)の発現量に有意な差は認められなかった。
実施例8では、実施例6で解剖により摘出した鼻粘膜から採取した鼻粘膜細胞を用いて、乳酸菌投与による免疫賦活効果についてさらに検討した。
実施例6で解剖により摘出した鼻粘膜をRPMI+液中に一時保存した後、HBSS buffer液中でピンセットを用いて鼻粘膜をしごき、液ごと70μmセルストレーナーを通した後、遠心分離後(1,500rpm、4℃、5分)、上清を除去しRPMI+を加えて細胞ペレットを懸濁した。次に、細胞数をカウントし、6×105細胞/mlとなるように調製し、500μl/ウェルで48ウェルプレートに播種した。そして、培地には、無添加のもの、CpG-AとしてODN1585(Invivogen社)を1μMとなるように添加したもの、および不活化済インフルエンザウイルスH1N1(HyTest社)(H1N1)を5μg/mlとなるように添加したものを各ウェルに加え、CO2インキュベータで24時間培養した。培養終了後、細胞液を回収し遠心分離後(5,000rpm、4℃、2分)、培養上清を回収した。培養上清中のIFN-α濃度はVeriKine Interferonα ELISA Kit、Mouse(PBL Assay Science社)、IFN-β濃度はVeriKine Interferonβ ELISA Kit(PBL Assay Science社)、IFN-λ濃度はMouse IL-28B/IFN-lambda 3 DuoSet ELISA(R&D systems社)をそれぞれ用いて測定した。
結果は、図18および図19に示す通りであった。図18では、Low volume投与群(Low volume(+)群)から採取した鼻粘膜細胞は、Low volume対照群(Low volume(-)群)から採取した鼻粘膜細胞と比較して、CpG-A添加あり(CpG-A 1μM)の場合はIFN-α産生量が有意に増加した(p<0.01)。一方、CpG-A添加なし(CpG-A 0μM)の場合はIFN-α産生量は検出されなかった。この結果から、乳酸菌の投与により細菌やウイルス等の病原体の感染後にIFN-α産生が誘導されて感染症の予防効果が奏されることが示された。
参考例では、公知の投与方法である乳酸菌の経口投与によるSARS-CoV-2感染予防効果について検討した。
ア ウイルス上気道接種試験群
BALB/cマウス(20週齢・雌・体重約20g)を対照群(標準餌摂取群)と試験餌摂取群の2群に分け(各群n=8)、SARS-CoV-2感染させる14日前から感染2日後または感染3日後まで標準餌または試験餌(乳酸菌としてラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を0.029質量%含む)を自由摂取させて飼育した。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al., Science Advances. 2022; 8(1): eabh3827)を5×LD50(1.8×104TCID50)(5μl)で感染させた。そして、感染2日後または感染3日後に解剖し、鼻咽腔関連リンパ組織(NALT(nasal-associated lymphoid tissues))を採取した。
BALB/cマウス(21週齢・雌・体重約20g)を対照群(標準餌摂取群)と試験餌摂取群の2群に分け(各群n=8)、SARS-CoV-2感染させる14日前から感染3日後まで標準餌または試験餌(乳酸菌としてラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株)の加熱死菌体を0.05質量%含む)を自由摂取(経口投与)させて飼育した。各群のマウスは感染0日目に麻酔下において国立感染症研究所で樹立されたマウス馴化SARS-CoV-2 QHmusX株(Iwata-Yoshikawa N et al., Science Advances. 2022; 8(1): eabh3827)を10×LD50(3.5×104TCID50)(30μl)で感染させた。そして、感染3日後に解剖し、肺を採取した。
例1(1)イの記載と同様にして、採取したNALTおよび肺からのRNAの抽出および調製を行った。
例1(1)ウの記載と同様にして、RNAの定量を行った。
ウイルス上気道接種試験群((1)方法 ア)に関する結果は図20に、ウイルス下気道接種試験群((1)方法 イ)に関する結果は図21にそれぞれ示す通りであった。ウイルス上気道接種試験群では、SARS-CoV-2感染させる14日前から感染2日後または感染3日後まで(合計16日間または17日間)標準餌または試験餌を自由摂取(経口投与)させた結果、マウス1匹1日当たり平均2.38g(試験餌として乳酸菌1.19mg)を摂取したことを確認した。一方、ウイルス下気道接種試験群では、SARS-CoV-2感染させる14日前から感染3日後まで(合計17日間)標準餌または試験餌を自由摂取(経口投与)させた結果、マウス1匹1日当たり平均2.2g(試験餌として乳酸菌0.64mg)を摂取したことを確認した。
Claims (24)
- 乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与用の医薬組成物であって、前記乳酸菌がラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株であり、上気道および/または下気道においてプラズマサイトイド樹状細胞によるインターフェロン(IFN)の産生を誘導するための、医薬組成物。
- 局所投与が経鼻投与、舌下投与または吸入投与である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 局所投与が、上気道および/または下気道に対する投与である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記上気道が、鼻腔である、請求項3に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物の投与対象が感染症に罹患した後、該対象においてIFNの産生が誘導される、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- 感染症の予防または治療のための、または、投与対象の感染症への罹患リスク低減に用いるための、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- 感染症が、ウイルス感染症である、請求項6に記載の医薬組成物。
- ウイルス感染症の予防が、ウイルス感染症の発症予防またはウイルス感染症の重症化予防である、請求項7に記載の医薬組成物。
- ウイルス感染症がCOVID-19またはインフルエンザウイルス感染症である、請求項7に記載の医薬組成物。
- ウイルス感染症が呼吸器系感染症の原因ウイルスが感染したものである、請求項7に記載の医薬組成物。
- 呼吸器系ウイルス感染症の原因ウイルスがSARS-CoV-2またはインフルエンザウイルスである、請求項10に記載の医薬組成物。
- 哺乳動物に投与される、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- 哺乳動物がヒトである、請求項12に記載の医薬組成物。
- 投与回数が2回以上である、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- 投与間隔が1日以上である、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- ウイルス感染症の予防の有効期間が、局所投与を行った最後の日から56日間である、請求項7に記載の医薬組成物。
- 乳酸菌の1日当たりの投与量(成体の体重50kg基準)が、1mg以上1000mg以下である、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株を有効成分として含有し、上気道および/または下気道に投与される、局所投与用組成物。
- ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株を有効成分として含有し、経鼻投与、舌下投与または吸入投与される、局所投与用組成物。
- 医薬組成物である、請求項18または19に記載の局所投与用組成物。
- 乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与用の医薬組成物であって、前記医薬組成物が感染症の予防または治療のための、または、投与対象の感染症への罹患リスク低減に用いるための、医薬組成物であり、前記乳酸菌がラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株であり、前記感染症が、ウイルス感染症であり、前記医薬組成物がウイルス感染部位である上気道および/または下気道に局所投与される、医薬組成物。
- 乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与するための免疫賦活用組成物であって、前記乳酸菌がラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株であり、前記局所投与が上気道および/または下気道に対する投与であり、次の1)~3)からなる群より選択される少なくとも一つのために用いられる免疫賦活用組成物。
1)顎下リンパ節および/または脾臓におけるIFN誘導性抗ウイルス遺伝子(ISG)の発現を増強させるため
2)脾臓中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるための、および/または、鼻粘膜中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるため
3)鼻粘膜中のリンパ球に対するCD11b+Siglec-H+細胞の比率を増加させるため - 乳酸菌を有効成分として含有する、局所投与するための免疫賦活用組成物であって、前記乳酸菌がラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシーズ・ラクティス JCM5805菌株であり、前記局所投与が経鼻投与、舌下投与または吸入投与であり、次の1)~3)からなる群より選択される少なくとも一つのために用いられる免疫賦活用組成物。
1)顎下リンパ節および/または脾臓におけるIFN誘導性抗ウイルス遺伝子(ISG)の発現を増強させるため
2)脾臓中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるための、および/または、鼻粘膜中のリンパ球に対するpDCの比率を増加させるため
3)鼻粘膜中のリンパ球に対するCD11b + Siglec-H + 細胞の比率を増加させるため - ISGが、Viperin、Isg15およびMx1からなる群から選択される1種または2種以上である、請求項22または23に記載の免疫賦活用組成物。
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