JP7506605B6 - 肺炎球菌莢膜多糖類担体タンパク質複合体の製造方法 - Google Patents

Description

発明の背景
（１）発明の分野
本発明は、特定の肺炎球菌血清型の１つ以上の活性化肺炎球菌多糖類および担体タンパク質が別々に凍結乾燥され、この別々に凍結乾燥された多糖類および担体タンパク質が別々に有機溶媒中で再構成され、次いで、再構成された多糖類および担体タンパク質がＴｅｅ－混合によって一緒に組み合わされ、結合されて、多糖類担体タンパク質複合体を産生する、肺炎球菌嚢多糖類タンパク質複合体を産生するための方法に関する。それぞれ特定の血清型の多糖類を含む複数の複合体を用いて、ワクチンに使用するための複合体の組合せを有する多価肺炎球菌免疫原性組成物を製造することができる。

（２）関連技術の説明
莢膜をもつ細菌の一例である肺炎球菌は、世界中で深刻な病気の重大な原因となっている。米国疾病対策センター（ＣＤＣ）は１９９７年、米国で毎年、肺炎球菌性髄膜炎３０００例、肺炎球菌性菌血症５０，０００例、肺炎球菌性中耳炎７，０００，０００例、肺炎球菌性肺炎５００，０００例があると推定している。Ｃｅｎｔｅｒｓ ｆｏｒ Ｄｉｓｅａｓｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ ａｎｄ Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ， ＭＭＷＲ Ｍｏｒｂ Ｍｏｒｔａｌ Ｗｋｌｙ Ｒｅｐ １９９７， ４６（ＲＲ－８）： １－１３を参照のこと。さらに、これらの疾患の合併症は、最大８％の死亡率および２５％の肺炎球菌性髄膜炎を伴う神経学的後遺症を報告している一部の研究では重大となりうる。Ａｒｄｉｔｉ ｅｔ ａｌ．， １９９８， Ｐｅｄｉａｔｒｉｃｓ １０２：１０８７－９７参照。

長年認可されてきた多価肺炎球菌多糖類体ワクチンは、成人、特に高齢者やハイリスク者の肺炎球菌疾患の予防に非常に重要であることが証明されている。しかしながら、乳児および幼児は非複合型肺炎球菌多糖類体に対する反応が不良である。細菌の多糖類はＴ細胞非依存性の免疫原であり、乳児では弱い誘発反応しか誘発しないか、または反応を誘発しない。細菌の多糖類免疫原を担体タンパク質に化学的に結合させると、幼児において免疫応答がＴ細胞依存性免疫応答に変換される。ジフテリアトキソイド（ＤＴｘ、ＤＴの化学的無毒化体）およびＣＲＭ_１９７は、そのアミノ酸配列にＴ細胞刺激エピトープが存在するため、細菌多糖類免疫原の担体タンパク質として記載されている。

したがって、担体タンパク質に結合した細菌莢膜の１５の多糖類を含む多糖類－タンパク質複合体ワクチンが開発され、さらなるものが開発中である。開発された結合型ワクチンの例としては、インフルエンザ菌ｂ型（Ｈｉｂ）結合型ワクチン（例：ＨＩＢＴＩＴＥＲ（登録商標））ならびに肺炎球菌に対する結合型ワクチン（ＰＲＥＶＮＡＲ（登録商標）やＰＲＥＶＮＡＲ １３（登録商標）など）や髄膜炎菌に対する結合型ワクチン（例：ＭＥＮＪＵＧＡＴＥ（登録商標））が挙げられる。

多糖類抗原を担体タンパク質に結合させ、反応混合物を精製して、結合したタンパク質をもたない遊離の多糖類、結合した多糖類抗原をもたない遊離の担体タンパク質、および低分子量の多糖類タンパク質複合体を除去することができる。遊離多糖類、遊離タンパク質、および低分子量複合体の精製のための種々の方法が、当技術分野において公知であり、例えば、疎水性クロマトグラフィー、接線限外濾過、ダイアフィルトレーションなどが含まれる。例えば、国際特許出願公開ＷＯ００／３８７１１号、米国特許第６，１４６，９０２号、およびＬｅｉ et al.、２０００、Ｄｅｖ． Ｂｉｏｌ． １０３：２５９－２６４を参照のこと。遊離多糖類の量を減少させる方法には、さらに、米国特許第７，７０９，００１号および米国特許出願公開第２０１１０２０１７９１号に開示されているような担体タンパク質および多糖類の共凍結乾燥が含まれ、これら文献は、担体タンパク質と多糖類の共凍結乾燥が、特に莢膜多糖類１９Ａに関して、担体タンパク質と多糖類の別個の凍結乾燥よりも好ましいことも示している。しかし、共凍結乾燥によって、個々の製剤やサイクルパラメータを、より少ない手順で最適化することが妨げられ、また、所望の溶液サイズで担体タンパク質や多糖類血清型供給物を産生することも妨げられる。

国際特許出願公開００／３８７１１号 米国特許第６，１４６，９０２号 米国特許第７，７０９，００１号 米国特許出願公開第２０１１０２０１７９１号

Ｃｅｎｔｅｒｓ ｆｏｒ Ｄｉｓｅａｓｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ ａｎｄ Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ， ＭＭＷＲ Ｍｏｒｂ Ｍｏｒｔａｌ Ｗｋｌｙ Ｒｅｐ １９９７， ４６（ＲＲ－８）： １－１３ Ａｒｄｉｔｉ ｅｔ ａｌ．， １９９８， Ｐｅｄｉａｔｒｉｃｓ １０２：１０８７－９７ Ｌｅｉ et al.、２０００、Ｄｅｖ． Ｂｉｏｌ． １０３：２５９－２６４

したがって、遊離多糖類および低分子量複合体などの不純物を含まない安定な多糖類タンパク質複合体を産生する改良された方法が引き続き必要とされている。

発明の概要
本発明は、肺炎球菌ワクチンとして使用するための多価肺炎球菌多糖類タンパク質複合体を産生するための工程を提供し、当該工程において、様々な昇華工程を用いた肺炎球菌多糖類および担体タンパク質の個別の凍結乾燥が調製され、次いで、結合工程において使用され、肺炎球菌ワクチンに使用するための多価肺炎球菌多糖類タンパク質複合体が産生される。個別の乾燥の工程は、多糖類および担体タンパク質の共凍結乾燥を上回る様々な利点を提供し、これには、個々の製剤およびサイクルパラメータを最適化する能力、便利な取り扱い、および所望の溶液サイズを有する個々の多糖類および担体タンパク質調製物を産生する能力が含まれるが、これらに限定されない。

成分の組合せとPs溶液のPr溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、最終的に１：１のPs:Pr比で組み合わされる）。 成分の組合せとPr溶液のPs溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、最終的に１：１のPs:Pr比で組み合わされる）。 図３は、成分の組合せと凍結乾燥させたPsのPr溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（Prは当初３ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、Psを溶解するのに使用される）。 成分の組合せと別々の複合化容器にＰｒ溶液とＰｓ溶液を同時添加したときの多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、成分容量添加速度は同じである）。 無水ＤＭＳＯ中での速い（２分）再構成対遅い（８分）再構成によるＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。 無水ＤＭＳＯ中での中間再構成とそれに続く保持時間の増加（３０分； ６０分； １２０分； １８０分； ２４０分； ３００分）によるＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。 異なる濃度（１０ｍｇ／ｍＬ； ３０ｍｇ／ｍＬ； ５０ｍｇ／ｍＬ）の無水ＤＭＳＯ中での速い再構成のＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。 無水ＤＭＳＯ中で１０ｍｇ／ｍＬでの速い再構成（２分間）を伴うＣＲＭ_１９７の動的光散乱（ＤＬＳ）プロファイルを示す。各試料について３回の測定値を得た（３回のトレース）。 無水ＤＭＳＯ中で３０ｍｇ／ｍＬでの速い再構成（２分間）を伴うＣＲＭ_１９７の動的光散乱（ＤＬＳ）プロファイルを示す。各試料について３回の測定値を得た（３回のトレース）。 異なるレベルの水（無水ＤＭＳＯ； ９９％ ＤＭＳＯ／水； ９７％ ＤＭＳＯ／水； ９５％ ＤＭＳＯ／水）を用いた、ＤＭＳＯ 中での速い再構成（２分間）のＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。 無水ＤＭＳＯ中での速い（２分間）再構成対遅い（８分間）再構成の特別な乾燥凍結乾燥ＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す（速い（２分間）；遅い（８分間）。 ＣＲＭ_１９７：多糖類血清型６Ｂ （ＣＲＭ_１９７－６Ｂ）複合体のＦＴＩＲスペクトルを示す。 担体タンパク質（Ｐｒ）多糖類（Ｐｓ）複合体をつくるための一般的なスキームを示す。 大きさが増す多糖類を用いた反応から生じる複合体の大きさを示す。

本発明は、以下の（Ａ）（Ｂ）および（Ｃ）の方法を提供する：
（Ａ）担体タンパク質に共有結合した１つの肺炎球菌血清型由来の複数の肺炎球菌多糖類を含む組成物を製造するための方法であって、
（ａ）１つの肺炎球菌血清型由来の複数の活性化肺炎球菌多糖類を含む第１の乾燥組成物、および担体タンパク質を含む第２の乾燥組成物を提供する工程；
（ｂ）第１の乾燥組成物および第２の乾燥組成物を有機溶媒中で別々に再構成し、混和して、肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む第１の均質溶液および担体タンパク質を含む第２の均質溶液を提供する工程；
（ｃ）第１の均質溶液と第２の均質溶液をＴｅｅ－混合して混合物を調製する工程；
（ｄ）前記混合物に還元剤を添加して、１つの肺炎球菌血清型の多糖類に結合した担体タンパク質を含む複合体溶液を製造する工程；
を含む方法：
（Ｂ）担体タンパク質に共有結合した１つ以上の肺炎球菌多糖類を含む組成物を製造する方法であって、
（ａ）１つ以上の肺炎球菌血清型由来の活性化肺炎球菌多糖類を含む第１の乾燥組成物、および担体タンパク質を含む第２の乾燥組成物を提供する工程；
（ｂ）第１の乾燥組成物および第２の乾燥組成物を有機溶媒中で別々に再構成し、混和して、１つ以上の活性化多糖類を含む第１の均質溶液および担体タンパク質を含む第２の均質溶液を提供する工程；
（ｃ）第１の均質溶液と第２の均質溶液をＴｅｅ－混合して混合物を調製する工程；
（ｄ）前記混合物に還元剤を添加して、前記肺炎球菌血清型の１つ以上の多糖類に結合した担体タンパク質を含む複合体溶液を製造する工程；
を含む方法、および
（Ｃ）担体タンパク質に共有結合した２つ以上の肺炎球菌多糖類を含む組成物を製造する方法であって、
（ａ）２つ以上の肺炎球菌血清型由来の活性化肺炎球菌多糖類を含む第１の乾燥組成物、および担体タンパク質を含む第２の乾燥組成物を提供する工程；
（ｂ）第１の乾燥組成物および第２の乾燥組成物を有機溶媒中で別々に再構成し、混和して、２つ以上の活性化多糖類を含む第１の均質溶液および担体タンパク質を含む第２の均質溶液を提供する工程；
（ｃ）第１の均質溶液と第２の均質溶液をＴｅｅ－混合して混合物を調製する工程；
（ｄ）前記混合物に還元剤を加えて、前記肺炎球菌血清型の２つ以上の多糖類に複合した担体タンパク質を含む複合体溶液を生成する工程；を含む方法。

この方法の特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物は、凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される昇華乾燥工程によって調製される。さらなる実施形態において、昇華乾燥工程は、ケーキまたはリオスフェア（ｌｙｏｓｐｅｒｅ）ビーズの形態で第１の水溶液および第２の水溶液を凍結することを含む。別の実施形態では、昇華乾燥は、金属トレイ、プラスチックトレイ、ビニール袋、およびクラスＩチューブバイアルからなる群から選択される容器で実施されるバルク乾燥である。

特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約６％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約５％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約４％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約３％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約２％以下の最終的な水分含有量を有する。

特定の実施形態では、第１および第２の乾燥組成物は、第１および第２の乾燥組成物を製造するために、１、２、またはそれ以上の肺炎球菌血清型由来の活性化肺炎球菌多糖類を含む第１の水溶液および担体タンパク質と緩衝液を含む第２の水溶液の昇華乾燥によって調製され、ここで、第１および第２の水溶液は、約０．５％ （ｗ／ｖ）またはそれ以上のショ糖を含み、昇華乾燥が凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される。特定の実施形態では、第１の水溶液は、約４％～６％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含み、第２の水溶液は、約４％～８％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含む。

特定の実施形態では、第１の水溶液は、約６～９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、第２の水溶液は、約６～１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。特定の実施形態では、第１の水溶液は、約６または９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、第２の水溶液は、約６、９、１０、または１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。

特定の実施態様において、有機溶媒は非プロトン性溶媒である。特定の実施態様において、非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、酢酸エチルアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アセトン、またはヘキサメチルリン酸トリアミドである。特定の実施形態において、有機溶媒はＤＭＳＯである。

この方法の特定の実施形態において、工程（ｂ）における再構成は８分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は６分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は４分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は２分以内で行われる。特定の実施形態において、再構成は約２分を含む。特定の実施形態において、工程（ｂ）における再構成は１分以内で行われる。

特定の実施形態では、工程（ｂ）における第１および第２の均質溶液を作るための混合は、１２０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は９０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は６０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は３０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は１５分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は１０分以内で行われる。特定の実施態様において、担体タンパク質を含む第二の均質溶液は、Ｔｅｅ－混合によって多糖類を含む第１の均質溶液と組み合わせる前に、約６時間以内、ＤＭＳＯ溶液中にある。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．３の比率で担体タンパク質に結合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．９～約１．５の比率で担体タンパク質に結合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．５の比率で担体タンパク質に結合した多糖類を含む。

特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を有する。特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１０％未満である遊離多糖類濃度を有する。

特定の実施形態において、複合体は、５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量対重量基準で担体タンパク質に対して約０．６～約１．３の比率で担体タンパク質に複合した多糖類および溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含み、複合体は５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施態様において、緩衝液は、ｐＨ範囲５．０～７．０のヒスチジン、コハク酸塩、ＭＥＳ、ＭＯＰＳ、ＨＥＰＥＳ、または酢酸塩緩衝液である。

特定の実施形態では、緩衝液は５．０～７．０のｐＨ範囲のリン酸塩またはクエン酸塩緩衝液である。

特定の実施態様において、多糖類は、血清型１、２、３、４、５、６Ａ、６B、６Ｃ、６Ｄ、６E、６Ｇ、６Ｈ、７Ｆ、７Ａ、７Ｂ、７Ｃ、８、９Ａ、９Ｌ、９Ｎ、９Ｖ、１０Ｆ、１０Ａ、１０Ｂ、１０Ｃ、１１Ｆ、１１Ａ、１１Ｂ、１１Ｃ、１１Ｄ、１１Ｅ、１２Ｆ、１２Ａ、１２Ｂ、１３、１４、１５Ｆ、１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１６Ｆ、１６Ａ、１７Ｆ、１７Ａ、１８Ｆ、１８Ａ、１８Ｂ、１８Ｃ、１９Ｆ、１９Ａ、１９Ｂ、１９Ｃ、２０Ａ、２０Ｂ、２１、２２Ｆ、２２Ａ、２３Ｆ、２３Ａ、２３Ｂ、２４Ｆ、２４Ａ、２４Ｂ、２５Ｆ、２５Ａ、２７、２８Ｆ、２８Ａ、２９、３１、３２Ｆ、３２Ａ、３３Ｆ、３３Ａ、３３Ｂ、３３Ｃ、３３Ｄ、３３Ｅ、３４、３５Ｆ、３５Ａ、３５Ｂ、３５Ｃ、３６、３７、３８、３９、４０、４１Ｆ、４１Ａ、４２、４３、４４、４５、４６、４７F、４７Ａ、４８、ＣＷＰＳ１、ＣＰＳ２、およびＣＷＰＳ３からなる群から選択される肺炎球菌血清型から得られる。

特定の実施態様において、肺炎球菌多糖類は、酸化剤と反応することによって活性化される。

特定の実施態様において、担体タンパク質は、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、百日咳トキソイド、細菌性細胞溶解素、およびニューモリシンからなる群より選択される不活化細菌性トキソイドである。特定の実施形態において、不活化細菌トキソイドはＣＲＭ_１９７である。

特定の実施形態において、複合体溶液は滅菌濾過される。

本発明は、担体タンパク質に共有結合した１つ以上の肺炎連鎖球菌多糖類を含む組成物を製造するための方法を提供し、この方法は、
（ａ）（ｉ）１つ以上の肺炎球菌血清型由来の活性化肺炎球菌多糖類を含む第１の水溶液、および（ｉｉ）担体タンパク質および緩衝液を含む第２の水溶液を提供する工程；
（ｂ）第１の水溶液と第２の水溶液を昇華乾燥工程で別々に乾燥させて、乾燥した１つ以上の活性化多糖類を含む第１の乾燥組成物と、乾燥担体タンパク質を含む第２の乾燥組成物を製造する工程；
（ｃ）乾燥組成物に有機溶媒を添加し、混合することにより、第１の乾燥組成物および第２の乾燥組成物を別々に再構成して、１つ以上の活性化多糖類を含む第１の均質溶液および担体タンパク質を含む第２の均質溶液を提供する工程；
（ｄ）第１の均質溶液と第２の均質溶液をＴｅｅ－混合して混合物を調製する工程；および
（ｅ）前記混合物に還元剤を加えて、肺炎球菌血清型の１つ以上の活性化多糖類に複合した担体タンパク質を含む複合体溶液を生成する工程を含む。

この方法の特定の実施形態において、昇華乾燥工程は、凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される。さらなる実施形態において、昇華乾燥工程は、ケーキまたはリオスフェアビーズの形態で第１および第２の水溶液を凍結することを含む。別の実施形態では、昇華乾燥は、金属トレイ、プラスチックトレイ、ビニール袋、およびクラスＩチューブバイアルからなる群から選択される容器で実施されるバルク乾燥である。

特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約６％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約５％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約４％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約３％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約２％以下の最終的な水分含有量を有する。

特定の実施態様において、第１および第２の水溶液は、約０．５％ （ｗ／ｖ）以上のショ糖を含む。特定の実施形態では、第１の水溶液は、約４％～６％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含み、第２の水溶液は、約４％～８％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含む。

特定の実施形態では、第１の水溶液は、約６～９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、第２の水溶液は、約６～１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。特定の実施形態では、第１の水溶液は、約６または９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、第２の水溶液は、約６、９、１０、または１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。

特定の実施態様において、有機溶媒は非プロトン性溶媒である。特定の実施態様において、非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、酢酸エチルアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アセトン、またはヘキサメチルリン酸トリアミドである。特定の実施形態において、有機溶媒はＤＭＳＯである。

この方法の特定の実施形態において、工程（ｃ）における再構成は８分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における再構成は６分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）での再構成は４分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における再構成は２分以内で行われる。特定の実施形態において、再構成は約２分を含む。特定の実施形態では、工程（ｃ）における再構成は１分以内で行われる。

特定の実施形態では、工程（ｃ）における第１および第２の均質溶液を作るための混合は、１２０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における混合は９０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における混合は６０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における混合は３０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における混合は１５分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｃ）における混合は１０分以内で行われる。特定の実施態様において、担体タンパク質を含む第二の均質溶液は、Ｔｅｅ－混合によって多糖類を含む第１の均質溶液と組み合わせる前に、約６時間以下、ＤＭＳＯ溶液中にある。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．３の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．９～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。

特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含む。特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１０％未満である遊離多糖類濃度を含む。

特定の実施形態において、複合体は、５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で担体タンパク質に対して約０．６～約１．３の比率で担体タンパク質に複合した多糖類および溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含み、複合体は５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施態様において、緩衝液は、ｐＨ範囲５．０～７．０のヒスチジン、コハク酸塩、ＭＥＳ、ＭＯＰＳ、ＨＥＰＥＳ、または酢酸塩緩衝液である。

特定の実施形態では、緩衝液は５．０～７．０のｐＨ範囲のリン酸塩またはクエン酸塩緩衝液である。

特定の実施態様において、多糖類は、血清型１、２、３、４、５、６Ａ、６B、６Ｃ、６Ｄ、６E、６Ｇ、６Ｈ、７Ｆ、７Ａ、７Ｂ、７Ｃ、８、９Ａ、９Ｌ、９Ｎ、９Ｖ、１０Ｆ、１０Ａ、１０Ｂ、１０Ｃ、１１Ｆ、１１Ａ、１１Ｂ、１１Ｃ、１１Ｄ、１１Ｅ、１２Ｆ、１２Ａ、１２Ｂ、１３、１４、１５Ｆ、１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１６Ｆ、１６Ａ、１７Ｆ、１７Ａ、１８Ｆ、１８Ａ、１８Ｂ、１８Ｃ、１９Ｆ、１９Ａ、１９Ｂ、１９Ｃ、２０Ａ、２０Ｂ、２１、２２Ｆ、２２Ａ、２３Ｆ、２３Ａ、２３Ｂ、２４Ｆ、２４Ａ、２４Ｂ、２５Ｆ、２５Ａ、２７、２８Ｆ、２８Ａ、２９、３１、３２Ｆ、３２Ａ、３３Ｆ、３３Ａ、３３Ｂ、３３Ｃ、３３Ｄ、３３Ｅ、３４、３５Ｆ、３５Ａ、３５Ｂ、３５Ｃ、３６、３７、３８、３９、４０、４１Ｆ、４１Ａ、４２、４３、４４、４５、４６、４７F、４７Ａ、４８、ＣＷＰＳ１、ＣＰＳ２、およびＣＷＰＳ３からなる群から選択される肺炎球菌血清型から得られる。

特定の実施態様において、肺炎球菌多糖類は、酸化剤と反応することによって活性化される。

特定の実施態様において、担体タンパク質は、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、百日咳トキソイド、細菌性細胞溶解素、またはニューモリシンからなる群より選択される不活化細菌性トキソイドである。特定の実施形態において、不活化細菌トキソイドはＣＲＭ_１９７である。

特定の実施形態において、複合体溶液は滅菌濾過される。

本発明はさらに、２以上の複合体を含み、各複合体は、担体タンパク質に共有結合した１以上の血清型由来の肺炎球菌多糖類を有する組成物を作製するための方法を提供し、この方法は
（ａ）（ｉ）各々が特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む２以上の第１の水溶液であって、多糖類が酸化剤と反応して活性化多糖類を提供しており、該２以上の第１の水溶液が同一でないことを特徴する第１の水溶液、または、（ｉｉ）各々が２以上の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む２以上の第１の水溶液であって、多糖類が酸化剤と反応して活性化多糖類を提供しており、該２以上の第１の水溶液が同一でないことを特徴とする第１の水溶液を提供する工程；
（ｂ）２以上の第２の水溶液を提供する工程（各々が担体タンパク質および緩衝液を含み、ここで、２以上の第２の水溶液の量は、少なくとも、前記２以上の第１の水溶液の量に相当する）；
（ｃ）前記２以上の第１の水溶液と前記２以上の第２の水溶液を昇華乾燥工程で別々に乾燥させて、各々が乾燥多糖類を含む２つ以上の第１の乾燥組成物、および各々が乾燥担体タンパク質を含む２以上の第２の乾燥組成物を製造する工程；
（ｄ）２以上の第１の乾燥組成物の各々と、２以上の第２の乾燥組成物の各々を有機溶媒中で別々に再構成し、混合して２以上の第１の均質溶液（該第１の均質溶液は、各々が独立して、（ｉ）特定の肺炎球菌血清型の多糖類、または（ｉｉ）２以上の特定の肺炎球菌血清型の多糖類のいずれかを含む）および、各々が担体タンパク質を含む２以上の第２の均質溶液を提供する工程；
（ｅ）Ｔｅｅ－混合によって各第１の均質溶液を第２の均質溶液と別々に組み合わせて、複数の混合物を製造する工程；
（ｆ）複数の混合物に還元剤を加えて、複数の複合体溶液を生成する工程；
（ｇ）複数の複合体溶液の２以上を組み合わせて２以上の複合体を含む組成物を産生する工程（各複合体は、担体タンパク質に共有結合している１つ以上の血清型由来の肺炎球菌多糖類を有する）
を含む。

この方法の特定の実施形態において、少なくとも１つの複合体溶液は、第１の均質溶液と第２の均質溶液を別々にＴｅｅ－混合して複数の複合体溶液を生成することによって調製される；または、少なくとも１つの複合体溶液は、第１の水溶液と第２の均質溶液を別々にＴｅｅ－混合して複数の複合体溶液を生成することによって調製される；または、各複合体溶液は、第１の均質溶液と第２の均質溶液を別々にＴｅｅ－混合して複数の複合体溶液を生成することによって調製される；または、各複合体溶液は、第１の水溶液と第２の均質溶液を別々にＴｅｅ－混合して複数の複合体溶液を生成することによって調製される。

この方法の特定の実施形態において、昇華乾燥工程は、凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される。さらなる実施形態において、昇華乾燥工程は、ケーキまたはリオスフェアビーズの形態で第１および第２の水溶液を凍結することを含む。別の実施形態では、乾燥は、金属トレイ、プラスチックトレイ、ビニール袋、およびクラスＩチューブバイアルからなる群より選択される容器で実施されるバルク乾燥である。

特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約６％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約５％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約４％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約３％以下の最終水分含有量を有する。特定の実施形態において、第１および第２の乾燥組成物の各々は、約２％以下の最終的な水分含有量を有する。

特定の実施態様において、第１および第２の水溶液は、約０．５％ （ｗ／ｖ）以上のショ糖を含む。特定の実施形態では、第１の水溶液は、約４％～６％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含み、第２の水溶液は、約４％～８％ （ｗ／ｖ）のショ糖を含む。

特定の実施形態では、第１の水溶液は、約６～９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、第２の水溶液は、約６～１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。特定の実施形態では、第２の水溶液は、約６または９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、約６、９、１０、または１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。

特定の実施態様において、有機溶媒は非プロトン性溶媒である。特定の実施態様において、非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、酢酸エチルアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アセトン、またはヘキサメチルリン酸トリアミドである。特定の実施形態において、有機溶媒はＤＭＳＯである。

この方法の特定の実施形態において、工程（ｄ）における再構成は８分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における再構成は６分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における再構成は４分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における再構成は２分以内で行われる。特定の実施形態において、再構成は約２分を含む。特定の実施形態では、工程（ｄ）における再構成は１分以内で行われる。

特定の実施形態では、工程（ｄ）における第１および第２の均質溶液を作るための混合は、１２０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における混合は９０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における混合は６０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における混合は３０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における混合は１５分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｄ）における混合は１０分以内で行われる。特定の実施態様において、担体タンパク質を含む第二均質溶液は、Ｔｅｅ－混合によって多糖類を含む第１の均質溶液と組み合わせる前に、約６時間以内、ＤＭＳＯ溶液中にある。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．３の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．９～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対する多糖類約０．６～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。

特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含む。特定の実施形態において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１０％未満である遊離多糖類濃度を含む。

特定の実施形態において、複合体は、５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で担体タンパク質に対する約０．６～約１．３多糖類の比率で担体タンパク質に複合した多糖類、溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含み、複合体は５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施態様において、緩衝液は、ｐＨ範囲５．０～７．０のヒスチジン、コハク酸塩、ＭＥＳ、ＭＯＰＳ、ＨＥＰＥＳ、または酢酸塩緩衝液である。

特定の実施形態では、緩衝液は５．０～７．０のｐＨ範囲のリン酸塩またはクエン酸塩緩衝液である。

特定の実施態様において、多糖類は、血清型１、２、３、４、５、６Ａ、６B、６Ｃ、６Ｄ、６E、６Ｇ、６Ｈ、７Ｆ、７Ａ、７Ｂ、７Ｃ、８、９Ａ、９Ｌ、９Ｎ、９Ｖ、１０Ｆ、１０Ａ、１０Ｂ、１０Ｃ、１１Ｆ、１１Ａ、１１Ｂ、１１Ｃ、１１Ｄ、１１Ｅ、１２Ｆ、１２Ａ、１２Ｂ、１３、１４、１５Ｆ、１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１６Ｆ、１６Ａ、１７Ｆ、１７Ａ、１８Ｆ、１８Ａ、１８Ｂ、１８Ｃ、１９Ｆ、１９Ａ、１９Ｂ、１９Ｃ、２０Ａ、２０Ｂ、２１、２２Ｆ、２２Ａ、２３Ｆ、２３Ａ、２３Ｂ、２４Ｆ、２４Ａ、２４Ｂ、２５Ｆ、２５Ａ、２７、２８Ｆ、２８Ａ、２９、３１、３２Ｆ、３２Ａ、３３Ｆ、３３Ａ、３３Ｂ、３３Ｃ、３３Ｄ、３３Ｅ、３４、３５Ｆ、３５Ａ、３５Ｂ、３５Ｃ、３６、３７、３８、３９、４０、４１Ｆ、４１Ａ、４２、４３、４４、４５、４６、４７F、４７Ａ、４８、ＣＷＰＳ１、ＣＰＳ２、およびＣＷＰＳ３からなる群から選択される肺炎球菌血清型から得られる。

特定の実施態様において、肺炎球菌多糖類は、酸化剤と反応することによって活性化される。

特定の実施態様において、担体タンパク質は、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、百日咳トキソイド、細菌性細胞溶解素、またはニューモリシンからなる群より選択される不活化細菌性トキソイドである。特定の実施形態において、不活化細菌トキソイドはＣＲＭ_１９７である。

特定の実施形態において、複合体溶液は滅菌濾過される。

本発明は、さらに、担体タンパク質に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、２、３、４、５、６Ｂ、７Ｆ、８、９Ｎ、９Ｖ、１０Ａ、１１Ａ、１２Ｆ、１４、１５Ｂ、１７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２０、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを製造するための方法を含み、この方法は、
（ａ）２３の乾燥担体タンパク質組成物、および１、２、３、４、５、６Ｂ、７Ｆ、８、９Ｎ、９Ｖ、１０Ａ、１１Ａ、１２Ｆ、１４、１５Ｂ、１７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２０、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆから選択された肺炎球菌血清型由来の乾燥した活性化多糖類を各々が含む２３の乾燥した活性化多糖類組成物を提供する工程（該２３の乾燥した活性化多糖類組成物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｂ）前記２３の乾燥担体タンパク質組成物および前記２３の乾燥した活性化多糖類組成物を、別々に有機溶媒中において再構成し、混和して、各々が担体タンパク質を含む２３の均質な担体タンパク質溶液および各々が特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む２３の均質な活性化多糖類溶液を提供する工程（該２３の均質な溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｃ）前記２３の均質な担体タンパク質溶液の各々を、Ｔｅｅ－混合によって前記２３の均質な活性化多糖類溶液の１つと組み合わせて、各々が担体タンパク質および特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む２３の混合物を製造する工程（該２３の混合物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｄ）前記２３の混合物の各々に還元剤を加えて、各々が特定の肺炎球菌血清型の多糖類に結合した担体タンパク質を含む２３の複合体溶液を製造する工程（該２３の複合体溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；および
（ｅ）前記２３の複合体溶液を組み合わせて、肺炎球菌血清型多糖類１、２、３、４、５、６Ｂ、７Ｆ、８、９Ｎ、９Ｖ、１０Ａ、１１Ａ、１２Ｆ、１４、１５Ｂ、１７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２０、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆに対する多価免疫原性複合体またはワクチンを提供する工程、を含む。

本発明はさらに、肺炎球菌血清型多糖類１、４、３、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆに対する多価免疫原性複合体またはワクチンを製造するための方法を含み、この方法は、
（ａ）１５の乾燥担体タンパク質組成物、および１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆから選択された肺炎球菌血清型由来の乾燥した活性化多糖類を各々が含む１５の乾燥した活性化多糖類組成物を提供する工程（該１５の乾燥した活性化多糖類組成物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｂ）前記１５の乾燥担体タンパク質組成物および前記１５の乾燥した活性化多糖類組成物を、別々に有機溶媒中において再構成し、混合して、各々が担体タンパク質を含む１５の均質な担体タンパク質溶液および各々が特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む１５の均質な活性化多糖類溶液を提供する工程（該１５の均質な溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｃ）前記１５の均質な担体タンパク質溶液の各々を、Ｔｅｅ－混合によって前記１５の均質な活性化多糖類溶液の１つと組み合わせて、各々が担体タンパク質および特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む１５の混合物を生成する工程（該１５の混合物は、いずれもが同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｄ）前記１５の混合物の各々に還元剤を加えて、各々が特定の肺炎球菌血清型の多糖類に結合した担体タンパク質を含む１５の複合体溶液を製造する工程（該１５の複合体溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；および
（ｅ）前記１５の複合体溶液を組み合わせて、担体タンパク質に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２２Ｆ、２３Ｆ、および３３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを提供する工程、を含む。

本発明は、さらに、担体タンパク質に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、および２３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを製造するための方法を含み、この方法は、
（ａ）１３の乾燥担体タンパク質組成物、および１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、および２３Ｆから選択された肺炎球菌血清型由来の乾燥した活性化多糖類を各々が含む１３の乾燥した活性化多糖類組成物を提供する工程（該１３の乾燥した活性化多糖類組成物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｂ）前記１３の乾燥担体タンパク質組成物および前記１３の乾燥した活性化多糖類組成物を、別々有機溶媒中において再構成し、混合して、各々が担体タンパク質を含む１３の均質な担体タンパク質溶液および各々が特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む１３の均質な担体タンパク質溶液を提供する工程（該１３の均質な溶液は、いずれもが同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｃ）１３の均質な担体タンパク質溶液の各々を、Ｔｅｅ－混合によって１３の活性化多糖類均質溶液のうちの１つと組み合わせて、各々特定の肺炎球菌血清型の担体タンパク質および活性化多糖類を含む１３の混合物を生成する工程（該１３の混合物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｄ）前記１３の混合物の各々に還元剤を加えて、各々が特定の肺炎球菌血清型の多糖類に結合した担体タンパク質を含む１３の複合体溶液を提供する工程（該１３の複合体溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；および
（ｅ）前記１３の複合体溶液を組み合わせて、担体タンパク質に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、および２３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを提供する工程、を含む。

本発明は、さらに、担体タンパク質に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、４、５、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆ、および２３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを製造するための方法を提供し、この方法は
（ａ）１０の乾燥担体タンパク質組成物、および１、４、５、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆ、および２３Ｆから選択された肺炎球菌血清型由来の乾燥した活性化多糖類を各々が含む１０の乾燥した活性化多糖類組成物を提供する工程（該１０の乾燥した活性化多糖類組成物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｂ）前記１０の乾燥担体タンパク質組成物および前記１０の乾燥した活性化多糖類組成物を、別々に有機溶媒中において再構成し、混和して、各々が担体タンパク質を含む１０の均質な担体タンパク質溶液および各々が特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む１０の均質な活性化多糖類溶液を提供する工程（該１０の均質溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｃ）前記１０の均質な担体タンパク質溶液の各々を、Ｔｅｅ－混合によって前記１０の均質な活性化多糖類溶液の１つと組み合わせて、各々が担体タンパク質および特定の肺炎球菌血清型の活性化多糖類を含む１０の混合物を製造する工程（該１０の混合物は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；
（ｄ）前記１０の混合物の各々に還元剤を加えて、各々が特定の肺炎球菌血清型の多糖類に結合した担体タンパク質を含む１０の複合体溶液を製造する工程（該１０の複合体溶液は、いずれも同一の肺炎球菌血清型由来の活性化多糖類を含まない）；および
（ｅ）前記１０の複合体溶液を組み合わせて、担体蛋白に結合した肺炎球菌血清型多糖類１、４、５、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆ、および２３Ｆを含む多価肺炎球菌結合型ワクチンを提供する工程、を含む。

特定の実施形態において、乾燥された担体タンパク質組成物の各々は、６％以下の最終水分含量を有し、乾燥された多糖類組成物の各々は、約６％以下の最終水分含量を有する。

この方法の特定の実施形態において、乾燥担体タンパク質および乾燥した多糖類組成物の各々は、凍結乾燥または放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水を含む昇華乾燥工程によって調製される。別の実施形態では、昇華乾燥は、金属トレイ、プラスチックトレイ、ビニール袋、およびクラスＩチューブバイアルからなる群から選択される容器で実施されるバルク乾燥である。さらなる実施形態において、昇華乾燥工程は、担体タンパク質を含む各水溶液、およびケーキまたはリオスフェアビーズの形態の多糖類を含む各水溶液を別々に凍結することを含む。

特定の実施態様において、乾燥した担体および乾燥した多糖類組成物は、複数の別々の水性多糖類溶液（該水溶性多糖類溶液は、上記の特定の肺炎球菌血清型由来の活性化肺炎球菌多糖類を含む）ならびに複数の水性担体タンパク質溶液（該水性担体タンパク質溶液は、各々が担体タンパク質および緩衝液を含む）の昇華乾燥によって調製され、ここで、水性担体タンパク質溶液の数は少なくとも水性多糖類溶液の数に対応し、水性多糖類および担体タンパク質溶液はそれぞれ約０．５％ （ｗ／ｖ）以上のショ糖を含み、昇華乾燥は凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される。

特定の実施態様において、水性多糖類および担体タンパク質溶液は、それぞれ約０．５％ （ｗ／ｖ）またはそれ以上のショ糖を含む。特定の実施形態において、多糖類水溶液は、各々、約４％～６％ （ｗ／ｖ）ショ糖を含み、水性担体タンパク質溶液は、各々、約４％～８％ （ｗ／ｖ）ショ糖を含む。

特定の実施形態において、水性多糖類溶液は、各々、約６～９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、水性担体タンパク質溶液は、各々、約６～１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。特定の実施態様において、水性多糖類溶液は、それぞれ約６または９ｍｇ／ｍＬの濃度で多糖類を含み、水性担体タンパク質溶液は、それぞれ約６、９、１０、または１２ｍｇ／ｍＬの濃度で担体タンパク質を含む。

特定の実施態様において、有機溶媒は非プロトン性溶媒である。特定の実施態様において、非プロトン性溶媒は、ジクロロメタン、テトラヒドロフラン、酢酸エチルアセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アセトン、またはヘキサメチルリン酸トリアミドである。特定の実施形態において、有機溶媒はＤＭＳＯである。

この方法の特定の実施形態において、工程（ｂ）における再構成は８分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は６分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は４分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における再構成は２分以内で行われる。特定の実施形態において、再構成は約２分を含む。特定の実施形態において、工程（ｂ）における再構成は１分以内で行われる。

特定の実施形態では、工程（ｂ）における第１および第２の均質溶液を作るための混合は、１２０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は９０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は６０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は３０分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は１５分以内で行われる。特定の実施形態では、工程（ｂ）における混合は１０分以内で行われる。特定の実施態様において、担体タンパク質を含む第二均質溶液は、Ｔｅｅ－混合によって多糖類を含む第１の均質溶液と組み合わせる前に、約６時間以内、ＤＭＳＯ溶液中にある。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対して比率約０．６～約１．３で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対して約０．９～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で、担体タンパク質に対して約０．６～約１．５の比率で担体タンパク質に複合した多糖類を含む。

特定の実施態様において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含む。特定の実施態様において、複合体溶液は、溶液中の全多糖類の約１０％未満である遊離多糖類濃度を含む。

特定の実施形態において、複合体は、５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施形態では、各複合体溶液は、重量基準で担体タンパク質に対した約０．６～約１．の比率で担体タンパク質に複合した多糖類および溶液中の全多糖類の約１５％未満である遊離多糖類濃度を含み、複合体は５（ｍｏｌ／ｍｏｌ）を超える担体タンパク質リジン損失値を有する。

特定の実施態様において、肺炎球菌多糖類は、酸化剤と反応することによって活性化される。

特定の実施形態において、複合体溶液は滅菌濾過される。

図面の簡単な説明
図１は、成分の組合せとPs溶液のPr溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、最終的に１：１のPs:Pr比で組み合わされる）。
図２は、成分の組合せとPr溶液のPs溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、最終的に１：１のPs:Pr比で組み合わされる）。
図３は、成分の組合せと凍結乾燥させたPsのPr溶液への添加中における多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（Prは当初３ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、Psを溶解するのに使用される）。
図４は、成分の組合せと別々の複合化容器にＰｒ溶液とＰｓ溶液を同時添加したときの多糖類（Ps）濃度、ＣＲＭ_１９７（Pr）濃度およびPs対Pr比率（Ｐｒ：Ｐｒ）における組成物濃度の影響を示す（成分は当初６ｍｇ/ｍｌで無水DMSOに溶解し、成分容量添加速度は同じである）。
図５は、無水ＤＭＳＯ中での速い（２分）再構成対遅い（８分）再構成によるＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。
図６は、無水ＤＭＳＯ中での中間再構成とそれに続く保持時間の増加（３０分； ６０分； １２０分； １８０分； ２４０分； ３００分）によるＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。
図７は、異なる濃度（１０ｍｇ／ｍＬ； ３０ｍｇ／ｍＬ； ５０ｍｇ／ｍＬ）の無水ＤＭＳＯ中での速い再構成のＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。
図８Ａおよび８Ｂは、無水ＤＭＳＯ中で１０ｍｇ／ｍＬ （図８Ａ）および３０ｍｇ／ｍＬ（図８Ｂ）での速い再構成（２分間）を伴うＣＲＭ_１９７の動的光散乱（ＤＬＳ）プロファイルを示す。各試料について３回の測定値を得た（３回のトレース）。
図９は、異なるレベルの水（無水ＤＭＳＯ； ９９％ ＤＭＳＯ／水； ９７％ ＤＭＳＯ／水； ９５％ ＤＭＳＯ／水）を用いた、ＤＭＳＯ 中での速い再構成（２分間）のＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す。
図１０は、無水ＤＭＳＯ中での速い（２分間）再構成対遅い（８分間）再構成の特別な乾燥凍結乾燥ＣＲＭ_１９７のＦＴＩＲスペクトルを示す（速い（２分間）；遅い（８分間）。
図１１は、ＣＲＭ_１９７：多糖類血清型６Ｂ （ＣＲＭ_１９７－６Ｂ）複合体のＦＴＩＲスペクトルを示し、ここでは、ＣＲＭ_１９７が、多糖類６Ｂ結合の前に速く（２分）、または遅く（８分）再構成された。また、水性条件下で多糖類６Ｂに結合したＣＲＭ_１９７を示す。
図１２は、担体タンパク質（Ｐｒ）多糖類（Ｐｓ）複合体をつくるための一般的なスキームを示している。
図１３は、大きさが増す多糖類を用いた反応から得られる複合体の大きさを示している。グラフから、ゆっくりとした無水ＤＭＳＯ添加は、同じサイズの多糖類から、無水ＤＭＳＯの速い添加よりもさらに大きな複合体を生じることがわかる。

発明の詳細な説明

Ｉ． 定義
本明細書中で使用される場合、用語「多糖類」（Ｐｓ）は、限定されるわけではないが、「糖類」、「オリゴ糖」、「多糖類」、「リポ糖」、「リポオリゴ糖（ＬＯＳ）」、「リポ多糖類（ＬＰＳ）」、「グリコシル酸塩」、「複合糖質」などを含む、免疫学的および細菌ワクチン技術において一般的に使用される任意の抗原性糖要素（または抗原単位）を含むことを意味する。状況に応じて、Ｐｓは特異的なことも複数のこともある。

本明細書中で使用される場合、用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」は、本発明の免疫原性組成物と共に使用する場合、アジュバントおよび賦形剤のような任意の他の成分（抗原混合物に対する表現「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」によって制限されるもの）を含むことを意味する。多価多糖類－タンパク質複合体混合物と共に使用する場合、「からなる」という用語は、特定の肺炎球菌多糖類タンパク質複合体を有し、かつ異なる血清型由来の他の肺炎球菌多糖類タンパク質複合体を含まない混合物を意味する。

本明細書で定義される場合、用語「沈殿物」、「沈殿」、「粒子形成」、「混濁」、および「凝集」は、互換的に使用されることでき、多糖類－タンパク質複合体の凝集をもたらす任意の物理的相互作用または化学反応を指すことを意味する。凝集の過程（例えば、タンパク質凝集）は、熱、圧力、ｐＨ、撹拌、剪断力、凍結融解、脱水、重金属、フェノール化合物、シリコンオイル、変性剤などを含む多数の物理化学的ストレスによって誘導され得る。

本明細書中で使用される場合、用語「再構成する」または「再構成」は、乾燥した材料に液体を添加して、乾燥した材料を溶解させて、その中に材料が溶解された溶液を提供することを指す。しかしながら、再構成によって提供される溶液は、その中に溶解された物質の濃度勾配または層を有する可能性がある。したがって、再構成後、溶液を物理的に撹拌して、再構成された材料の均質な溶液を提供する。

本明細書中で使用される場合、用語「混和（ｍｉｘｉｎｇ）」は、振る、撹拌、揺すり、回転などによる溶液の物理的撹拌を意味する。

本明細書中で用いる場合、用語「均質溶液」は、すべての成分が完全に混合されているため、溶液中の成分間に濃度勾配または層が存在しない溶液を意味する。

本明細書で使用される場合、「リオスフェア（ｌｙｏｓｐｅｒｅ）」は、例えば、ビーズあるいは球または他の形状の形態をとる凍結乾燥材料の別個の粒子である。リオスフェアは、リオパーティクルスフェア（ｌｙｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｓｐｈｅｒｏｎ）、またはリオビーズ（ｌｙｏｂｅａｄ）とも呼ばれることがある。いくつかの実施形態において、リオスフェアの直径は、２．５～６ｍｍまたは２．５～５ｍｍなどの約２～約１２ｍｍ、好ましくは２～８ｍｍである。いくつかの実施形態において、リオスフェアの容積は、約２０～５５０μＬ、好ましくは２０～１００μＬ、例えば２０～５０μＬである。リオスフェアが実質的に球形ではない実施形態では、リオスフェアのサイズは、より短い寸法に対するより長い寸法の比である、そのアスペクト比に関して記述することができる。リオスフェアのアスペクト比は０．５～２．５、好ましくは０．７５～２、例えば１～１．５とすることができる。

本明細書中で使用される場合、「免疫原性組成物」は、１つ以上の担体タンパク質に結合された１つ以上の抗原を含む多価組成物であってもよい。本発明の特定の実施形態において、抗原は、莢膜を有する細菌由来の糖である。このような組成物では、糖はある種の細菌の表面に似た糖分子の長い鎖からできている。莢膜を有する細菌には、ストレプトコッカスニューモニアエ、ナイセリア髄膜炎菌およびヘモフィルス・インフルエンザｂ型が含まれるが、これらに限定されない。抗原は同一の生物由来であっても、異なる生物由来であってもよい。本発明の好ましい態様において、抗原は、肺炎球菌莢膜多糖類である。

本明細書中で使用される場合、用語「放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水」は、マイクロ波減圧乾燥（ＭＶＤ）をも意味する。

ＩＩ． 工程
本発明は、抗肺炎球菌ワクチンとして使用され得る多価肺炎球菌多糖類タンパク質複合体を産生するための方法または工程を提供し、この方法では、様々な昇華工程を用いて、肺炎球菌多糖類および担体タンパク質の個別の（または別々の）凍結乾燥に続き、低レベルの遊離多糖類（例えば、１５％未満の遊離多糖類）を有する複合体組成物の形成をもたらす条件下で、個別の凍結乾燥多糖類および担体タンパク質を混合する。

本発明は、低レベルの遊離多糖類を有する多価肺炎球菌多糖類タンパク質複合体を産生するための従来技術の方法に対する改良である。米国特許第７，７０９，００１号および米国特許公開第２０１１０２０１７９１号に開示されているような先行技術の方法は、担体タンパク質と多糖類の共凍結乾燥を使用するが、その理由は、多糖類と担体タンパク質の共凍結乾燥が低遊離多糖類（１８％未満）を有する複合体組成物をもたらすことが示されたが、他方、別々に凍結乾燥された多糖類と担体タンパク質とを組み合わせることによって調製された複合体組成物は、米国特許公開第２０１１０２０１７９１号明細書の表に示される結果によって示されるように、約３１％の遊離多糖類を有する組成物をもたらすからである。

しかしながら、本発明の発明者らは、特定の条件下では、個別（別々）に凍結乾燥担体タンパク質および活性化多糖類を結合して、高分子量複合体を含む組成物が得られるが、米国特許公報第２０１１０２０１７９１号とは異なり、該組成物は低レベルの遊離多糖類を含むことを見出した。これらの特定の条件には、有機溶媒中の担体タンパク質の溶液と、有機溶媒中の１つまたは複数の多糖類を含む溶液とを提供し（特定の実施態様においては該有機溶媒はジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）である）、Ｔｅｅ－混合によって２つの溶液を同時に結合することが含まれる。図４に示すように、Ｔｅｅ－混合によって２つの溶液を同時に組み合わせると、典型的には１つの溶液を他の溶液に加えるか、または溶液中に乾燥物質を溶解することによって２つの溶液を組み合わた場合に生じる濃度勾配が実質的に減少または消失し（図１、２、または３参照）、また、実施例１０の血清型１９Ｆ多糖類によって例示されるように、様々な血清型から得られる多糖類についてゲル形成が減少または消失し得る。本発明は、単一組成物中における多糖類および担体タンパク質の共凍結乾燥に比較して様々な利点を提供するところ、これらには、個々の製剤およびサイクルパラメーターを最適化し得ること、便利な取り扱い、ならびに所望の溶液サイズを有する個々の多糖類および担体タンパク質調製物を産生し得ることが含まれるが、これらに限定されるものではない。

本発明者らは、さらに、モデルとしてＣＲＭ_１９７を使用して、乾燥担体タンパク質の再構成の間において、ＤＭＳＯなどの有機溶媒が乾燥担体タンパク質に添加され際の時間の長さと、次いで、再構成された担体タンパク質が結合前に保存される時間の長さが、担体タンパク質の二次構造に影響を及ぼし、よって、所望の分子量および担体タンパク質に結合した多糖類に対する担体タンパク質の所望の比率を有する複合体の収率に影響を及ぼすことを発見した。図５－１１に示すように、無水ＤＭＳＯなどの有機溶媒中において速い添加条件下で乾燥担体タンパク質を再構成する場合、例えば、８分以内または約２分未満で有機溶媒を乾燥担体タンパク質に添加する場合には、担体タンパク質が完全にほどけ、フーリエ変換赤外分光法（ＦＴＩＲ）または動的光散乱法（ＤＬＳ）によって決定されるような検出可能なβシート形成がない再構成担体タンパク質溶液が提供される。さらに、有機溶媒中に検出可能な水を有する場合、および／または最終濃度で１２ｍｇ／ｍＬを超える担体タンパク質を有する場合には、βシート媒介凝集をもたらすことが発見された。したがって、本発明の好ましい実施形態では、有機溶媒は１００％の有機溶媒であり、検出可能な水を含まず（例えば、無水有機溶媒）、有機溶媒は、８分未満、好ましくは５分未満、より好ましくは２分以内の時間にわたって乾燥担体タンパク質に加えられ、担体タンパク質は、濃度が１０ｍｇ／ｍＬ以下または１２ｍｇ／ｍＬ以下、特に実施態様では、約６ｍｇ／ｍＬで維持される。

特定の実施形態では、乾燥担体タンパク質および多糖類の完全な溶解を保証するために、第１および第２の均質溶液を１２０分以内で混合してもよい。特定の実施形態では、混合は９０分以内であってもよい。特定の実施形態では、混合は６０分以内であってもよい。特定の実施形態では、混合は３０分以内であってもよい。特定の実施形態では、混合は１０分以内であってもよい。特定の実施形態において、担体タンパク質を含む第２の均質溶液は、Ｔｅｅ－混合によって多糖類を含む第１の均質溶液と組み合わせる前に、約６時間以下維持される。本発明者らは、担体タンパク質を無水有機溶媒中で６時間以上維持すると、担体タンパク質の検出可能なβシート媒介凝集が形成される可能性があることを発見した。したがって、特定の実施形態では、担体タンパク質はＤＭＳＯ中で６時間以内で維持される。

図１２は、担体タンパク質の均質溶液が本明細書に教示されるように調製され、担体タンパク質および多糖類の均質溶液が本明細書に教示されるようにＴｅｅ－混合によって組み合わされる、担体タンパク質多糖類複合体を作製するための一般的なスキームを示す。

一般に、精製した肺炎球菌莢膜多糖類（Ｐｓ）粉末を別々に水に溶解し、血清型１９Ａを除くすべての血清型を０．４５ミクロンで濾過する。血清型１９Ａを除くすべての血清型を均質化し、Ｐｓの分子量を減少させる。血清型１８Ｃは９０℃以上で酸加水分解によりサイズを小さくする。血清型１９Ａは、開始時のサイズが比較的小さいため、サイズを小さくしない。均質化圧力およびホモジナイザーを通過する数を血清型特異的な標的にコントロールして、血清型特異的な分子量を達成する。多糖類をそれぞれ０．２２ミクロン濾過し、その後濃縮し、開口チャネル付き１０ ｋＤ限外濾過膜（５型）を用いた限外濾過工程１で水に対して透析濾過し、透析濾過液１を製造する。

次いで、透析濾過液１を、例えば酢酸ナトリウムの緩衝液で血清型特定温度（４～２２℃）およびｐＨ （４～５）に調整して、活性化段階において、多糖類サイズ減少を最小にしてもよい。多糖類の活性化は過ヨウ素酸酸化を介して行われる。血清型４については、活性化前に、溶液を約５０℃およびｐＨ ４でインキュベートして、多糖類を部分的に脱ケタール化する。多糖類の活性化はメタ過ヨウ素酸ナトリウム溶液の添加で開始される。メタ過ヨウ素酸ナトリウムの添加量は、血清型特異的であり、多糖類反復単位１ｍｏｌ当たりメタ過ヨウ素酸ナトリウム約０．１～０．５ｍｏｌの範囲である。メタ過ヨウ素酸ナトリウムの血清型特異的電荷は、多糖類活性化の目標レベル（多糖類反復単位１モル当たりのモルアルデヒド）を達成するために選択される。

限外濾過工程２では、全ての血清型について、活性化多糖類を透析濾過し、続いて、開口チャネルを有する１０ ｋＤ限外濾過膜を用いて接線流限外濾過により濃縮して、透析濾過液２を産生することができる。透析濾過の終了時には、透析濾過液２を１５ｇ Ｐｓ／Ｌの目標値まで濃縮してもよい。好ましくは、全ての血清型に対する限外濾過は２～８℃で行う。

次に透析濾過液２をショ糖を加えた水で希釈し、最終濃度約４～１２ｍｇ／ｍＬ多糖類及び０．５～６％ （ｗ／ｖ）ショ糖とし、昇華乾燥工程を行い、最終含水率が６％以下の乾燥多糖類とする。特定の実施態様において、組成物は、約５％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約４％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約３％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約２％以下の最終水分含量を有する。凍結乾燥前に溶液に添加されるショ糖の量は血清型特異的であり、凍結乾燥前の３．０～５．０％ （ｗ／ｖ）の範囲であり得る。特定の実施形態では、２つ以上の多糖類を一緒に乾燥させて、乾燥多糖類混合物を製造することができる。

精製担体タンパク質は、５ｋＤａ接線流限外濾過膜を用いてｐＨ ７．０緩衝液、２ｍＭリン酸塩に対して透析濾過され、次いで０．２２ミクロンフィルターを通して濾過される。濾過した液をショ糖を含む水で最終濃度約６～１２ｍｇ／ｍＬ担体タンパク質と４～１０％ （ｖ／ｖ）ショ糖に希釈し、１工程で昇華乾燥し、最終含水率６％以下の乾燥担体タンパク質とする。特定の実施態様において、組成物は、約５％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約４％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約３％以下の最終水分含量を有する。特定の実施態様において、組成物は、約２％以下の最終水分含量を有する。昇華乾燥工程には、凍結乾燥または放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水が含まれ得る。

乾燥多糖類又は乾燥多糖類混合物と乾燥担体タンパク質を別々に、例えばジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）のような有機溶媒中に溶解又は再溶解する。特定の実施形態では、担体タンパク質は、約１０～２０ｍｇ／ｍＬまたは約１０ｍｇ／ｍＬ以下の濃度で再構成される。本発明者らは、ＤＭＳＯ中の１％ （ｖ／ｖ）以上の水分がβシートを介した凝集をもたらすことを発見した（図９参照）。したがって、本発明は、有機溶媒の水分含有量が１％ （ｖ／ｖ）未満である実施形態、または有機溶媒が検出可能な水分を含まない実施形態、例えば、無水有機溶媒または１００％ （ｖ／ｖ）有機溶媒である実施形態を提供する。乾燥担体タンパク質に無水有機溶媒を加えて８分以内、できれば６分以内、４分以内、あるいは２分以内、あるいは１分以内で再構成する。

本発明者らはまた、乾燥担体タンパク質に無水有機溶媒を添加するための添加時間が短いほど、フーリエ変換赤外分光法（ＦＴＩＲ）および動的光散乱（ＤＬＳ）分析に基づく不可逆βシート媒介凝集の形成が少ないことをモデルとしてＣＲＭ_１９７を用いて発見した。図５に示すように、２分間の無水ＤＭＳＯ添加時間は、βシート媒介凝集の検出可能な形成をもたらさない。したがって、特定の実施態様において、本発明は、有機溶媒、例えばDMSOであって１％未満の水分を含むもの、あるいは、検出可能な水分を含まない有機溶媒、例えば無水または１００％（ｖ／ｖ）有機溶媒中における担体タンパク質の再構成であって、該有機溶媒を乾燥担体タンパク質に２分または１０分未満の時間をかけて添加して、２０ｍｇ／ｍＬ以下または約１２ｍｇ／ｍＬ、または約１０ｍｇ／ｍＬ以下の濃度で再構成担体タンパク質を提供することを特徴とする担体タンパク質の再構成を提供する。特定の実施形態において、再構成後、混合物を３０分まで混和して、担体タンパク質の均質溶液および多糖類の均質溶液を提供し得る。しかしながら、特定の実施形態では、混合は、１２０分以内、９０分以内、６０分以内、３０分以内、または１０分以内の時間期間にわたって起こり得る。特定の実施態様において、ｐＨ ７．２の５００ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液を、リン酸ナトリウムの最終濃度が１．０ｍＭになるまで、担体タンパク質を含む均質溶液に加えることでができる。

担体タンパク質の均質溶液と１つの多糖類または２つ以上の多糖類の均質溶液を、Ｔｅｅ－混合により組み合わせて、担体タンパク質と１つの多糖類または２つ以上の多糖類の両方を含む複合体溶液を提供する。Ｔｅｅ－混合速度にはばらつきがあり得るが、一般に１０分以内で完全に混合する速度が設定されている。Ｔｅｅ－混合は、例えば室温、または４℃もしくは１８℃から２３℃の間の任意の温度で行うことができる。無水有機溶媒中で再構成または再溶解した後、血清型特異的な多糖類最終濃度および多糖類対担体タンパク質比を標的として、多糖類および担体タンパク質均質溶液を組み合わせる。一般に、担体タンパク質および多糖類は、約０．６～１．３（ｗ／ｗ）の最終的な共役多糖類：担体タンパク質比を提供する量で混合される。

複合反応を行うために、水中のシアノ水素化ホウ素ナトリウムの溶液を調製し、複合体溶液に１．０ ｍｅｑのシアノ水素化ホウ素ナトリウム（多糖類反復単位のモルあたり１．０ ｍｏｌのシアノ水素化ホウ素ナトリウム）を添加する。シアノ水素化ホウ素ナトリウム溶液のモル濃度は、複合体化反応の間における溶液の総水分量の目標量約０．５％に基づく。複合体溶液は、血清型特異的な時間、血清型特異的な温度で反応させ、担体タンパク質：多糖類複合体中間体を産生する。

次に水素化ホウ素ナトリウムの水溶液を調製し、複合体溶液に水素化ホウ素ナトリウム２．０ ｍｅｑ（多糖類反復単位に対する）を加える。水素化ホウ素ナトリウム溶液のモル濃度は、水素化ホウ素添加後の複合体溶液中の総水分量の目標量約１．０％に基づく。複合体溶液は常温で３時間（血清型７Ｆのようなある種の血清型を除き、２時間反応させる）反応させ、担体タンパク質：多糖類複合体を産生させる。

結合反応をクエンチするために、２０％（ｖ／ｖ）以下の無水ＤＭＳＯへの希釈工程において、複合体溶液を、特定の血清型由来の多糖類を含む複合体について、１５０ｍＭ塩化ナトリウム（０．０２５％ （ｗ／ｖ）ポリソルベート２０を含む１５０ｍＭ塩化ナトリウム）の溶液にゆっくりと添加して、クエンチされた複合体溶液を生成する。特定の実施態様において、希釈段階の間、温度は１５℃以下で維持される。約１時間後、ｐＨ ６．０の１．５Ｍリン酸カリウム溶液を加えて、２５ｍＭリン酸カリウムとする。結合性能は、全体的な多糖類および担体タンパク質消費、複合体多糖類対担体タンパク質比、および複合体分子量によって評価され得る。

限外濾過工程３では、クエンチした複合体溶液を約２．５ｇ／Ｌまで濃縮し、３０ｋＤａ接線流限外濾過膜を使用して、２～８℃で約１０倍量以下の１５０ｍＭ塩化ナトリウムまたは１５０ｍＭ塩化ナトリウム中の２５ｍＭリン酸カリウムに対して透析濾過して、透析濾過液３を生成することができる。限外濾過工程３からの透析濾過液３中の多糖類濃度は、高速サイズ排除クロマトグラフィー（ＨＰＳＥＣ）紫外多角光散乱屈折率（ＵＶ‐ＭＡＬＳ‐ＲＩ）により測定できる。血清型１９Ｆのようないくつかの血清型由来の多糖類を含む複合体については、透析濾過液３を０．２２－ミクロンフィルターで濾過して、濾液を生成し、続いて２２℃で約１２０時間インキュベートする。

限外濾過工程４では、限外濾過工程３からの透析濾過液３又は濾過液を多糖類濃度約２．５ｇ／Ｌに濃縮し、３００ｋＤａの接線流限外濾過膜を用いて、２０透析容量（diavolume）の１５０ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ ７．０、２～８℃中の１０ｍＭ Ｌ－ヒスチジンに対して透析濾過して、透析濾過液４を生成させることができる。特定の血清型、例えば血清型７Ｆ由来の多糖類を含む複合体については、１００ｋＤａ接線流限外濾過膜に対して複合体を透析濾過することができる；例えば、血清型６Ａ、６Ｂ、および１８Ｃ多糖類を含む複合体を、約３．５ｇ／Ｌまで濃縮し、１５０ｍＭ塩化ナトリウムおよび０．０３％ （ｗ／ｖ）ポリソルベート２０、ｐＨ ７．０を含む緩衝液に対して、３００ｋＤａ接線流限外濾過膜を用いて２～８℃で透析濾過することで、透析濾過液４を生成することができる。血清型７Ｆ、１９Ａ、１９Ｆおよび２３Ｆ多糖類を含む複合体を約２．０ｇ／Ｌまで濃縮し、３００ｋＤａ再生セルロース接線流限外濾過膜を用いて２～８℃で１５０ｍＭ塩化ナトリウムおよび０．０１５％ （ｗ／ｖ）ポリソルベート２０、ｐＨ ７．０を含む緩衝液に対して透析濾過して、透析濾過液４を製造することができる。透析濾過液２中の多糖類濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定することができる。緩衝液は、１０～５０ｍＭの酢酸塩、リン酸塩、ＴＲＩＳ、ＨＥＰＥＳ、またはヒスチジンのようなアミノ酸緩衝液でよい。特定の実施形態では、緩衝液は１０ｍＭのＬ－ヒスチジンである。

限外濾過工程４からの透析濾過液４を２２ミクロンフィルターで濾過することで第２の濾液を得ることができる。第２の濾液の多糖類濃度は、ＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩによって測定してもよい。第２の濾液の多糖類濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合は、第２の濾液を、ｐＨ ７．０の１５０ｍＭ塩化ナトリウム中１０ｍＭのＬ－ヒスチジンで、多糖類濃度１．０ｇ／Ｌに希釈してもよい。これは、単価バルク複合体中間体（Ｍｏｎｏｖａｌｅｎｔ Ｂｕｌｋ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅ）（ＭＢＣ）または単価の原薬を提供するものである。ＭＢＣはアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結することができる。

血清型６Ａ、６Ｂ、および１８Ｃ多糖類を含む複合体についての限外濾過工程４からの透析濾過液４は、二重膜０．５／０．２ミクロンフィルターを通して濾過されて、第２の濾液を生成することができる。第２の濾液の多糖類濃度は、ＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩによって測定してもよい。第２の濾液の多糖類濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合、第２の濾液を１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０３％ （ｗ／ｖ）ポリソルベート２０、ｐＨ ７．０中の１０ｍＭのＬ－ヒスチジンで多糖類濃度１．０ｇ／Ｌに更に希釈し得る。これはＭＢＣ又は単価の原薬を提供するものである。ＭＢＣはアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結することができる。

血清型７Ｆ、１９Ａ、１９Ｆ、および２３Ｆ多糖類を含む複合体についての透析濾過液４は、０．２２－ミクロンフィルターを通して濾過されて、第２の濾液を生成することができる。第２の濾液の多糖類濃度は、ＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩによって測定してもよい。第２の濾液の多糖類濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合、第２の濾液を１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０１５％ （ｗ／ｖ）ポリソルベート２０、ｐＨ ７．０中の１０ｍＭのＬ－ヒスチジンで多糖類濃度１．０ｇ／Ｌに更に希釈し得る。これはＭＢＣ又は単価の原薬を提供するものである。ＭＢＣはアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結することができる。

ＩＩＩ． 多糖類
肺炎球菌由来の莢膜多糖類は、当業者に公知の標準技術により調製することができる。例えば、多糖類は、細菌から単離することができ、既知の方法（例えば、欧州特許ＥＰ４９７５２４号およびＥＰ４９７５２５号を参照のこと）によって、および特定の実施形態では、ホモジナイザーを使用してまたは化学的加水分解によって達成される微小流動化によって、ある程度のサイズにすることができる。１つの実施形態において、各多糖類血清型に対応する肺炎球菌株を、ダイズベースの培地中で増殖させる。次に、遠心分離、沈殿、限外濾過などの標準的な段階を経て、個々の多糖類を精製する。例えば、米国特許出願公開第２００８／０２８６８３８号および米国特許第５，８４７，１１２号を参照のこと。多糖類は、粘度を低下させるため、および／または後続の複合化生成物の濾過性を改善するためにサイズを設定することができる。本発明において、莢膜多糖類は、血清型１、２、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、６Ｃ、６Ｄ、７Ｂ、７Ｃ、７Ｆ、８、９Ｎ、９Ｖ、１０Ａ、１１Ａ、１２Ｆ、１４、１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１６Ｆ、１７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２０、２１、２２Ａ、２２Ｆ、２３Ａ、２３Ｂ、２３Ｆ、２４Ｆ、２７、２８Ａ、３１、３３Ｆ、３４、３５Ａ、３５Ｂ、３５Ｆ、および３８のうちの１つ以上から調製される。

ＩＶ． 担体タンパク質
本発明の特定の実施形態では、ＣＲＭ_１９７が担体タンパク質として使用される。ＣＲＭ_１９７は、ジフテリア毒素の非毒性変異体（すなわち、トキソイド）である。１つの実施形態において、カサミノ酸（ｃａｓａｍｉｎｏ ａｃｉｄｓ）および酵母エキスベースの培地で増殖させたＣｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ株Ｃ７（β１９７）の培養物から単離される。別の実施形態では、ＣＲＭ_１９７は、米国特許第５，６１４，３８２号に記載された方法に従って遺伝子組み換えにより調製される。典型的には、ＣＲＭ_１９７は限外濾過、硫酸アンモニウム沈殿、イオン交換クロマトグラフィーの組み合わせによって精製される。いくつかの実施形態において、ＣＲＭ_１９７は、ＰＦＥＮＥＸ ＥＸＰＲＥＳＳＩＯＮ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ （Ｐｆｅｎｅｘ Ｉｎｃ．， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， ＣＡ）を使用して、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ中で調製される。

他の適切な担体タンパク質には、（例えば、国際特許出願公開第ＷＯ ２００４／０８３２５１号に記載されているような）コレラトキソイド、ＤＴ （ジフテリア毒素）、ＴＴ （破傷風毒素）またはＴＴのフラグメントＣ、百日咳トキソイド、大腸菌ＬＴ、大腸菌ＳＴ、および緑膿菌由来の外毒素Ａのようなさらなる不活化細菌毒素が含まれる。外膜複合体ｃ （ＯＭＰＣ）、ポリン、トランスフェリン結合タンパク質、肺炎球菌表面タンパク質Ａ （ＰｓｐＡ；国際特許出願公開公報第ＷＯ ０２／０９１９９８号参照）、肺炎球菌付着タンパク質（ＰｓａＡ）、Ａ群もしくはＢ群連鎖球菌由来のＣ５ａペプチダーゼ、または、インフルエンザ菌タンパク質D、ｄＰＬＹ－ＧＭＢＳ （国際特許出願公開公報第ＷＯ ０４／０８１５１５号参照）またはｄＰＬＹ－ｆｏｒｍｏｌなどの何らかの方法で解毒されたｐｌｙ、ＰｈｔＡ、ＰｈｔＢ、ＰｈｔＤ、ＰｈｔＥおよび例えばＰｈｔＤＥ融合体、ＰｈｔＢＥ融合体（国際特許出願公開公報第０１／９８３３４号およびＷＯ ０３／５４００７号参照）等のPhtタンパク質の融合体を含むＰｈｔＸを含む肺炎球菌ニューモリシン（Ｋｕｏら、１９９５、Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ６３； ２７０６－１３）などの細菌外膜タンパク質も使用することができる。卵白アルブミン、キーホールリンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）、牛血清アルブミン（BSA）または精製ツベルクリンタンパク質（ＰＰＤ）、ＰｏｒＢ（Ｎ． ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ由来）、ＰＤ （インフルエンザ菌タンパク質Ｄ）（例えば、欧州特許第０５９４６１０Ｂ参照）またはそれらの免疫学的に機能的な等価物、合成ペプチド（欧州特許第０３７８８８１号およびＥＰ０４２７３４７号参照）、熱ショックタンパク質（国際特許出願公開公報第９３／１７７１２号および９４／０３２０８号参照）、百日咳タンパク質（国際特許出願公開第９８／５８６６８号および欧州特許第ＥＰ０４７１１７７号参照）、サイトカイン、リンホカイン、成長因子またはホルモン（国際特許出願公開公報参照ＷＯ ９１／０１１４６参照）、Ｎ１９タンパク質（Ｂａｒａｌｄｏｉ ｅｔ ａｌ．， ２００４， Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７２：４８８４－７を参照）などの様々な病原体由来抗原由来のヒトＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープ（Ｆａｌｕｇｉ ｅｔ ａｌ．， ２００１， Ｅｕｒ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ ３１：３８１６－３８２４を参照）を含む人工タンパク質、鉄の取り込みタンパク質（国際特許出願公開公報番号ＷＯ ０１／７２３３７参照）、Ｃ．ｄｉｆｆｉｃｉｌｅの毒素ＡまたはＢ（国際特許公開公報番号ＷＯ ００／６１７６１参照）、およびフラゲリン（Ｂｅｎ－Ｙｅｄｉｄｉａ ｅｔ ａｌ．， １９９８， Ｉｍｍｕｎｏｌ Ｌｅｔｔ ６４：９参照）などの他のタンパク質も担体タンパク質として用いることができる。

他のＤＴ突然変異、例えば、ＣＲＭ_１７６、ＣＲＭ_２２８、ＣＲＭ_４５（Ｕｃｈｉｄａら、１９７３、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２１８：３８３８－３８４４）； ＣＲＭ_９、ＣＲＭ_４５、ＣＲＭ_１０２、ＣＲＭ_１０３およびＣＲＭ_１０７ならびにＧｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ Ｅｎｇｉｎｅｒｒｅｄ Ｔｏｘｉｎｓ（Ｆｒａｎｋｅｌ編、Ｍａｅｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ Ｉｎｃ、１９９２）においてＮｉｃｈｏｌｌｓおよびＹｏｕｌｅによって記載されている他の突然変異；Ｇｌｕ－１４８の欠失またはＡｓｐ、ＧｌｎまたはＳｅｒへの突然変異および／またはＡｌａ １５８の欠失またはＧｌｙへの突然変異、および米国特許第４，７０９，０１７号または米国特許第４，９５０，７４０号に記載された他の突然変異；残基Ｌｙｓ ５１６、Ｌｙｓ ５２６、Ｐｈｅ ５３０および／またはＬｙｓ ５３４の少なくとも１つ以上の突然変異、および米国特許第５，９１７，０１７号または米国特許第６，４５５，６７３号に開示されている他の突然変異；または米国特許第５，８４３，７１１号に開示されている断片が、使用し得る。

Ｖ． 昇華乾燥
特定の肺炎球菌血清型の多糖類を含む組成物および担体タンパク質を含む組成物は、最終含水率が６％以下の乾燥担体タンパク質を含む組成物および約６％以下の最終含水率を有する特定の肺炎球菌血清型の乾燥多糖類を含む組成物を提供するために昇華法を用いて別々に乾燥させてもよい。乾燥組成物は、例えば、凍結乾燥または放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水（マイクロ波減圧乾燥）により調製され得る。例えば、Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ， Ｆｏｏｄ， ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ．． Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ， ＩｎｃまたはＸｕ ＆ Ｓｕｎａｄａ， Ｃｈｅｍ Ｐｈａｒｍ Ｂｕｌｌ （Ｔｏｋｙｏ） ５５（１１）：１５４５－５０ （２００７）参照。凍結乾燥製剤成分は、ケーキまたは粒子、例えば、凍結乾燥材料のペレット、ビーズまたは球体、例えば、リオスフェアの形態であってもよい。例えば、Ａ． Ｓ． Ｍｕｊｕｍｄａｒ （２００７）．Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｄｒｙｉｎｇ． ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ参照。

リオスフェアは、例えば、液滴の形態（例えば、約２０、５０、１００または２５０マイクロリットル）の１つ以上の多糖類血清型を含む水溶液のアリコートを、液滴が無傷のままであるように固体の平坦な表面上に置くことによって作製され得る。本発明の実施態様において、表面は、例えば、約－１８０℃～約－１９６℃又は約－１８０℃～約－２７３℃の温度でのプレート、例えば金属プレートである。例えば、本発明の実施形態では、水溶液は、分注チップを介して表面上に配置される。本発明の実施形態において、水溶液は、約３ｍｌ／分～約７５ｍｌ／分、約５ｍｌ／分～約７５ｍｌ／分；約３ｍｌ／分～約６０ｍｌ／分、約２０ｍｌ／分～約７５ｍｌ／分；および約２０ｍｌ／分～約６０ｍｌ／分の分注速度で分注される。本発明の実施形態では、分注される水溶液は２５０マイクロリットルであり、分注速度は約５ｍＬ／分～約７５ｍＬ／分であるか、またはアリコートは１００マイクロリットルであり、分注速度は約３ｍＬ／分～約６０ｍＬ／分である。本発明の実施形態では、分注先端と水溶液が分注される表面との間の間隙は、約０．１ｃｍ以上（例えば、約０．５ｃｍまたは０．１ｃｍから１ｃｍの間、または０．１ｃｍから０．７５ｃｍの間）である。一旦表面上に置かれると、水溶液は凍結され、次いで凍結乾燥による昇華乾燥に供される。リオスフェアを作製する方法は当該技術分野で公知である。例えば、ＵＳ５６５６５９７； ＷＯ２０１３０６６７６９； ＷＯ２０１４０９３２０６； ＷＯ２０１５０５７５４０； ＷＯ２０１５０５７５４１またはＷＯ２０１５０５７５４８を参照。

本発明の実施形態において、水溶液は、放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水（マイクロ波減圧乾燥）により凍結乾燥される。ＲＥＶ脱水は、水の沸点や大気中の酸素含量が低い減圧下で行う乾燥法である。例えば、本発明の実施態様において、水溶液のアリコートは、固体表面上に単一の液滴として沈着し、ここで、表面の温度は、それが接触し、凍結ペレットとして表面上で凍結する際に液滴を単一の液滴として維持する方法において、約－９０℃またはそれ以下であり；そして、マイクロ波放射を、大気圧以下の圧力下で凍結ペレットに適用して、球のような乾燥ペレットを生成する。別の例では、水溶液をトレイ上に提供し、大気圧以下の圧力下でマイクロ波放射にさらし、乾燥ケーキを生成する。米国特許第４，３８９，７９４号； 第４，６６４，９２４号； 第４，８０９，５９６号； 第４，８８２，８５１号参照。

ＶＩ． 多糖類－タンパク質複合
精製された多糖類は化学的に活性化され、担体タンパク質と反応できる機能が導入される。一旦活性化されると、各莢膜多糖類は、本発明の方法に従って、担体タンパク質に別々に複合化されて、複合糖質を形成する。

１つの実施形態において、多糖類の化学的活性化は、米国特許第４，３６５，１７０号； 第４，６７３，５７４号；および第４，９０２，５０６号に記載された手段によって達成され得る。簡単に述べると、肺炎球菌多糖類を酸化剤、例えば過ヨウ素酸ナトリウム、過ヨウ素酸カリウム、または過ヨウ素酸などの過ヨウ素酸塩ベースの酸化剤と反応させ、その結果、隣接ヒドロキシル基がランダムに酸化的に切断されて反応性アルデヒド基が生成される。

酸化された多糖類のタンパク質担体上の第１級アミン基（主にリシン残基）への直接的なアミノカップリングは、還元的アミノ化によって行われることがある。例えば、結合は水溶液中で、またはジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）のような有機溶媒中で行うことができる。例えば、ＵＳ２０１５／０２３１２７０ Ａ１、ＥＰ ４７１ １７７ Ｂ１、ＵＳ２０１１／０１９５０８６ Ａ１を参照。結合反応の結果、未反応のアルデヒドは水素化ホウ素ナトリウムのような強力な還元剤の付加によってキャップされている。

１つの実施形態において、多糖類の化学的活性化およびその後の担体タンパク質への結合は、米国特許第４，３６５，１７０号， 第４，６７３，５７４号および第４，９０２，５０６号に記載された手段によって達成される。簡潔に言うと、多糖類は過ヨウ素酸ナトリウム、過ヨウ素酸カリウム、または過ヨウ素酸のような過ヨウ素酸塩ベースの酸化剤と反応し、その結果隣接ヒドロキシル基がランダムに酸化的に開裂して反応性アルデヒド基を生成する。次いで、酸化された多糖類のタンパク質担体上の第１級アミン基（主にリジン残基）への直接アミノ化カップリングは、還元的アミノ化によって達成され得る。例えば、複合体化は、ニッケルの存在下で、活性化多糖類および担体タンパク質の混合物を、シアノ水素化ホウ素ナトリウムなどの還元剤と反応させることによって実施される。結合反応は水溶液中またはジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）などの有機溶媒中で行われる。例えば、ＵＳ２０１５／０２３１２７０ Ａ１、ＥＰ ４７１ １７７ Ｂ１、ＵＳ２０１１／０１９５０８６ Ａ１を参照。結合反応の結果、未反応のアルデヒドは、水素化ホウ素ナトリウムのような強力な還元剤の添加によって任意に還元される。

１つの実施形態において、製剤化の前に、各肺炎球菌莢膜多糖類を肺炎球菌から個別に精製し、活性化して反応性アルデヒドを形成し、次いでニッケルの存在下でシアノ水素化ホウ素ナトリウムによる還元アミノ化を用いて担体タンパク質に共有結合させる。ニッケルは、還元アミノ化に用いられるシアノ水素化ホウ素ナトリウム還元剤からの残留、妨害シアン化物と複合体を形成する。したがって、ニッケルは、より大きな結合反応効率のために、および遊離シアン化物除去を助けるために、本明細書の方法において使用され得る。

遷移金属はシアン化物と安定な錯体を形成することが知られており、タンパク質アミノ基およびホルムアルデヒドのシアノ水素化ホウ素ナトリウムによる還元メチル化を改善することが知られている。Ｇｉｄｌｅｙ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ． １９８２， ２０３： ３３１－３３４； Ｊｅｎｔｏｆｔ ｅｔ ａｌ． Anal Biochem.１９８０， １０６： １８６－１９０参照。しかしながら、本発明者は驚くべきことに、ニッケルの添加は、残留した干渉シアン化物を錯体化することによって、複合化反応時におけるタンパク質の消費を促進し、より大きく、潜在的により免疫原性の高い複合体の形成をもたらすことを見出した。

市販のシアノ水素化ホウ素ナトリウム試薬ロット中の遊離シアン化物レベルのばらつきは、結合性能の不一致につながり、その結果、分子量および多糖類対タンパク質比を含む様々な結合特性をもたらす可能性がある。結合反応へのニッケルの添加は、遊離シアン化物のレベルを減少させ、したがって、ロット間の結合一貫性の程度を改善する。

別の実施形態では、結合方法は、シアネートエステルを形成するために、１－シアノ－４－ジメチルアミノピリジニウムテトラフルオロボレート（ＣＤＡＰ）による多糖類の活性化を使用し得る。活性化された糖は担体タンパク質上のアミノ基と直接結合していることもある。

代替の実施形態において、反応型ホモバイファンクショナルまたはヘテロバイファンクショナルな基は、いくつかの入手可能なモダリティ（ｍｏｄａｌｉｔｉｅｓ）のいずれかと反応することにより、活性化された多糖類上に導入されるであろう。例えば、マレイミド活性化担体タンパク質（例えば、ＧＭＢＳを用いる）またはハロアセチル化担体タンパク質（例えば、ヨードアセチミド［例えば、エチルヨードアセチミドＨＣｌ］もしくはＮ－スクシンイミジルブロモアセテートもしくはＳＩＡＢ、またはＳＩＡ、またはＳＢＡＰを用いる）との反応後に得られるチオエーテル結合を介して担体にカップリングされ得るチオール化多糖類を調製するために、シスタミンまたはシステアミンを使用してもよい。このような複合体は、国際特許出願公開公報ＷＯ ９３／１５７６０、ＷＯ ９５／０８３４８およびＷＯ ９６／２９０９４；ならびにＣｈｕら、１９８３、Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ４０：２４５－２５６に記載されている。

他の適当な結合法は、カルボジイミド、ヒドラジド、活性エステル、ノルボラン、ｐ－ニトロ安息香酸、Ｎ－ヒドロキシコハク酸イミド、Ｓ--ＮＨＳ、ＥＤＣ、および／またはＴＳＴＵを用いる。多くは、国際特許出願公開ＷＯ９８／４２７２１号に記載されている。結合には、糖の遊離ヒドロキシル基とＣＤＩとの反応（Ｂｅｔｈｅｌｌら、１９７９， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．２５４：２５７２－４； Ｈｅａｒｎら、１９８１， Ｊ． Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ．２１８：５０９－１８参照）とそれに続く担体タンパク質との反応によってカルバメート結合を形成することによって得られるカルボニルリンカーが含まれ得る。この化学反応は、炭水化物のアノマー末端を還元して第１級ヒドロキシル基を形成し、続いて第１級ヒドロキシルをＣＤＩと反応させてカルバメート中間体を形成し、続いてタンパク質担体アミノ基とカップリングすることからなる。この反応には、糖上の他の第１級ヒドロキシル基の任意の保護／脱保護が必要な場合がある。

以下の実施例は、本発明のさらなる理解を促進することを意図している。

実施例１
肺炎球菌莢膜多糖類６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２３Ｆの調製
肺炎球菌を培養する方法は、当技術分野ではよく知られている。例えば、Ｃｈａｓｅ， １９６７， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １：５２を参照のこと。肺炎球菌莢膜多糖類を調製する方法も当技術分野では周知である。例えば、欧州特許第ＥＰ０４９７５２４号参照。肺炎球菌サブタイプの分離株はＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）から入手可能である。この細菌は、血液寒天培地上でα溶血性を示す、莢膜を有する非運動性のグラム陽性、ランセット形の双球菌と同定される。サブタイプは、特異的抗血清を用いたＱｕｅｌｌｉｎｇ反応に基づいて鑑別できる。米国特許第５，８４７，１１２号参照。

存在する肺炎レンサ球菌血清型のそれぞれを代表する細胞バンクは、Ｍｅｒｃｋ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ （Ｒａｈｗａｙ， ＮＪ）から凍結バイアルで入手する。肺炎球菌に適した滅菌前の増殖培地を入れた種子発酵槽に、解凍した種子培養液を移す。培養は温度とｐＨ制御で種子発酵槽内で増殖させる。種子発酵槽の全容量を、あらかじめ滅菌した増殖培地を含む生産用発酵槽に移す。生産発酵は、工程の最終的な細胞増殖段階である。温度、ｐＨ、攪拌速度をコントロールする。

発酵工程は不活化剤の添加により終了する。不活化後、溶液を不活化槽に移し、そこで制御された温度および撹拌で保持する。細胞の破片は遠心と濾過を組み合わせて取り除く。溶液を限外濾過し、透析濾過する。次に、不純物を除去し、多糖類を回収する溶媒ベースの分画にこの溶液をさらす。

実施例２
多糖類のサイズ縮小と活性化は以下のように行われる。
精製した肺炎球菌莢膜多糖類（Ｐｓ）粉末約６ｇを、室温で目標濃度約４ｇ／Ｌになるように注射用水（ＷＦＩ）に溶解する。次いで、この溶液を０．４５ミクロン濾過し、生物汚染度を減少させる。濾過したＰｓ溶液のＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩで測定する。

血清型１８Ｃおよび１９Ａを除くすべての血清型について、溶液を約２．５ｇ／Ｌに希釈した後、ＧＥＡ－Ｎｉｒｏ Ｓｏａｖｉ Ｐａｎｄａ ２Ｋホモジナイザーを用いてＰｓの分子量を減少させるためにホモジナイズする。血清型１９Ａを除くすべての血清型をホモジナイズし、多糖類の分子量を減少させた。血清型１９Ａは、開始時のサイズが比較的小さいためサイズが小さくならなかった。均質化圧力およびホモジナイザーの通過回数を血清型特異的標的（１５０～１０００ｂａｒ； ４～７ｐａｓｓ）にコントロールし、血清型特異的分子量を達成した。サイズ減少多糖類を０．２ミクロン濾過し、次いで濃縮し、１０ｋＤａのＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて水に対して透析濾過した。ホモジナイザーの出口の熱交換器への冷却水供給を用いて、ホモジナイゼーション中に温度を制御する。

血清型１８Ｃ Ｐｓの分子量を減少させるために、ホモジナイゼーションの代わりに酸加水分解を用いる。濾過した血清型１８Ｃ Ｐｓ 液の温度をＬｏｔ Ａ では約９６℃、Ｌｏｔ Ｂ では約９０℃に上昇させた後、氷酢酸（１７．４ Ｍ）で最終濃度０．２ Ｍ となるように調整し、Ｌｏｔ Ａ では約１８０ 分、Ｌｏｔ Ｂ では約１６０ 分間保持し、最終濃度０．４６ Ｍ にｐＨ ７．０ の１．５ Ｍ リン酸カリウムを加え、ｐＨ を上昇させて酸加水分解を停止した後、室温に冷却する。

血清型１９Ａは０．４５ミクロンの濾過およびサイズ縮小されていない。比較的開始サイズが小さいため、サイズ縮小は必要ない。溶解後、次段落で述べるように血清型１９Ａは０．２２ミクロン濾過される。

次いで、限外濾過工程１の前に各溶液を０．２２ミクロンフィルターを用いて濾過し、生物汚染度を減少させる。濾過されたＰｓは１０ｋＤａのＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて約１０ｇ／Ｌに濃縮され、その後常温で６浸透圧のＷＦＩに対して透析濾過され、限外濾過工程１中間体（ＵＦ１‐ＦＲ）が生成される。血清型１８Ｃは、１０ｋＤａのＮＭＷＣＯ膜の代わりに５ｋＤａのＮＭＷＣＯ膜を用いて、酸加水分解により生成される低分子量Ｐを保持することによりＰｓ回収を改善した。ＵＦ１－ＦＲのＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定される。ＷＦＩをＵＦ１－ＦＲに添加し、Ｐｓ活性化前のＰｓ濃度が約１０ｇ／Ｌになるようにする。

次に２Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液を加え、活性化反応段階のｐＨを制御する。酢酸ナトリウム濃度とｐＨ、Ｐｓ活性化反応中の温度は、各血清型に特異的な値にコントロールされている（表２）。

過ヨウ素酸塩の活性化は、ＰｎＰｓ反復単位（ＲＵ）１ｍｏｌ当たりの過ヨウ素酸モル数に基づいて１００ｍＭのメタ過ヨウ素酸ナトリウム溶液を溶液に加えることによって開始される。活性化の間、隣接ジオールは血清型特異的反応時間にわたって反応性アルデヒドに酸化される。この反応は活性化産物（ＡＰ）過程中間体を生成した。メタ過ヨウ素酸ナトリウムの荷電量と反応時間は、各血清型に特異的な値にコントロールされている（表１）。

Ｐｓ活性化に続いて、溶液をｐＨ ６．４の１０ｍＭリン酸カリウムの６透析容量に対して透析濾過し、続いて２～８℃で１０ｋＤａ ＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いてＷＦＩの６浸透容量に対して透析濾過を行う。血清型１８Ｃは、１０ｋＤａのＮＭＷＣＯ膜の代わりに５ｋＤａのＮＭＷＣＯ膜を用いて、酸加水分解により生成される低分子量Ｐｓを保持することによりＰｓ回収を改善した。次に溶液を濃縮し、限外濾過工程２中間体（ＵＦ２－ＦＲ）を生成する。ＵＦ２－ＦＲのＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定される。活性化の程度は、ＵＦ２－ＦＲ試料をチオセミカルバジドで誘導体化し、次にＨＰＳＥＣによりチオセミカルバゾンをＵＶ検出して測定する。

実施例３
ＣＲＭ_１９７担体タンパク質の調製は、以下のようにして行うことができる。

前述のシュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）（国際特許出願公開第２０１２／１７３８７６号参照）における発現を通して得られた凍結精製ＣＲＭ_１９７は、５ｋＤａのＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて、１０透析容量の２ｍＭリン酸塩、ｐＨ ７．２緩衝液に対して透析濾過され、０．２２ミクロン濾過される。特定の実施態様において、５ｍＭリン酸カリウム、ｐＨ ６．４（５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．０）を血清型１８Ｃのために使用する。透析濾過液をショ糖水中で最終濃度１．０～５．３％ （ｗ／ｖ）に希釈し、凍結乾燥して最終含水率６％以下の乾燥ＣＲＭ_１９７とする。下記の表２は、特定の血清型多糖類に対する結合のためのＣＲＭ_１９７についての代表的なショ糖濃度を提供する。

実施例４
多糖類（Ｐｓ）及びＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）の凍結乾燥は次のとおりである。

凍結乾燥に先立ち、ＣＲＭ_１９７およびＰｓ溶液を以下のように希釈する。

いくつかの実施形態において、ＣＲＭ_１９７溶液は、ＷＦＩ、５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ６．４（血清型１８ＣについてはｐＨ ７．０）、およびＷＦＩにおける新しく調製された３０％ （ｗ／ｖ）ショ糖溶液を用いて６．０ｍｇ／ｍＬのタンパク質濃度に希釈される。ＵＦ２－ＦＲ Ｐｓ溶液をＷＦＩおよびＷＦＩ中で新たに調製した３０％ ｗ／ｖショ糖溶液を用いてＰｓ濃度６．０ｍｇ／ｍＬに希釈する。

いくつかの実施形態において、ＣＲＭ_１９７溶液は、ＷＦＩ、ｐＨ ７．２の２ｍＭリン酸ナトリウム、およびＷＦＩにおける新たに調製された５０％ （ｗ／ｖ）ショ糖溶液を用いて６．０ｍｇ／ｍＬのタンパク質濃度に希釈される。ＵＦ２－ＦＲ Ｐｓ溶液をＷＦＩおよびＷＦＩ中で新たに調製した５０％ （ｗ／ｖ）ショ糖溶液を用いてＰｓ濃度６．０ｍｇ／ｍＬに希釈する。

血清型特異的なショ糖およびリン酸濃度を用いる（例、表２参照）。希釈したＣＲＭ_１９７およびＵＦ２－ＦＲ溶液をＶｉｒｔｉｓ Ｇｅｎｅｓｉｓ Ｆｒｅｅｚｅ Ｄｒｙｅｒを用いて凍結乾燥する。

実施例５
この例は、無水ＤＭＳＯ中のＣＲＭ_１９７の再構成時間がフーリエ移動赤外分光法（ＦＴＩＲ）で測定した二次構造に影響することを示す。

６ｍｇ／ｍＬ、５％ （ｗ／ｖ）ショ糖、１．２５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．２で凍結乾燥した凍結乾燥ＣＲＭ_１９７を、ＤＭＳＯ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社製無水ＤＭＳＯ、２７６５５～１００ｍＬ）に溶解し、１０ｍｇ／ｍＬの最終濃度に、ゆっくり（８分間）または高速再構成（２分間）のいずれかを用いて溶解した後、混合して均質溶液を調製する。再構成は、時点に達するまで３０秒ごとに適切な量のＤＭＳＯを加えて行う。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ２窓を有する透過モードを用いて、制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ－３Ｓで収集される。５０のスキャンを４ｃｍ－１の分解能で収集し、平均し、緩衝液を減算し、水蒸気を補正する。

凍結乾燥したＣＲＭ_１９７を無水ＤＭＳＯ中に迅速に添加（２分）して再構成を行ったところ、１６６０ｃｍ－１に予想される非結合カルボニルアミドＩピークを示し、無水ＤＭＳＯでＣＲＭ_１９７が完全に展開したことが実証された（図５）。ＣＲＭ_１９７を遅い添加速度（８分）で無水ＤＭＳＯで再構成した場合、Ｉ領域の２番目のピーク（１６２６ｃｍ－１）が存在する。この第２ピークは分子間βシート形成に起因する。

実施例６
この実施例は、中間溶解時間（４分間）で再構成し、３００分まで保持するＣＲＭ_１９７が、保持時間が長くなるにつれて分子間βシートの割合の増加につながることを示している。

６ｍｇ／ｍＬ、５％ （ｗ／ｖ）ショ糖、１．２５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．２で凍結乾燥した凍結乾燥ＣＲＭ_１９７を、ＤＭＳＯ（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社製無水ＤＭＳＯ、２７６５５－１００ｍＬ）に溶解し、４分間かけて最終濃度１０ｍｇ／ｍＬとする。再構成は、時点に達するまで３０秒ごとに適切な量のＤＭＳＯを加えて行う。最初の時点（Ｔ０）を採取した後、試料をＦＴＩＲに保持し、さらなる時点を採取する（３０、６０、１２０，１８０、２４０、３００分）。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ２窓を有する透過モードを用いて、制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ－３Ｓで収集される。５０のスキャンを４ｃｍ－１の分解能で収集し、平均し、緩衝液を減算し、水蒸気を補正する。

ＣＲＭ_１９７を無水ＤＭＳＯ中で中間時間（４分）で再構成すると、分子間βシートアミドＩピークの存在で示されるように、タンパク質凝集が起こる（図６）。最大３００分までの保持時間が長くなると、分子間βシートの量が比例的に増加し、非結合カルボニルアミドＩピークの量が減少する（図６）。

実施例７
この例は、分子間βシートの形成が濃度依存性であることを示している。

６ｍｇ／ｍＬ、５％ （ｗ／ｖ）ショ糖、１．２５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．２で凍結乾燥した凍結乾燥ＣＲＭ_１９７を、ＤＭＳＯ （無水ＤＭＳＯはＳｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社製、２７６５５－１００ｍＬ）に溶解し、最終濃度を１０、３０、５０ｍｇ／ｍＬとし、２分間かけて溶解する。再構成は、時点に達するまで３０秒ごとに適切な量のＤＭＳＯを加えて行う。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ２窓を有する透過モードを用いて、制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ－３Ｓで収集される。５０のスキャンを４ｃｍ－１の分解能で収集し、平均し、緩衝液を減算し、水蒸気を補正する。ダイナミック光散布（ＤＬＳ）測定は、１．９９６ｃＰの粘度を用いて調製された濃度で、管理温度（２５℃）でＭａｌｖｅｒｎ Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ ＺＳで収集される。

ＣＲＭ_１９７を１０ｍｇ／ｍＬで速やかに再構成すると（図７、分２）、分子間βシート形成の証拠は認められず、これまでの観察結果が確認されている（図５）。より高濃度（３０ｍｇ／ｍＬ，５０ｍｇ／ｍＬ）では、再構成時間が速くても（２分）、分子間βシートが形成される。これは、緩慢な再構成中に存在するＣＲＭ_１９７濃度の増加が分子間βシートの形成の原因の一つであるという仮説を支持する。また、この濃度仮説を支持するのはＤＬＳデータであり、ＣＲＭ_１９７では、より高い濃度で再構成された粒子の割合が、より低い濃度（図８Ａ）と比較して増加したことが示されており、タンパク質凝集と一致している（図８Ｂ）。

実施例８
ＣＲＭ_１９７の再構成に用いるＤＭＳＯ中の水の濃度を上げると、分子間βシートの形成が増加する。

６ｍｇ／ｍＬ、５％ （ｗ／ｖ）ショ糖、１．２５ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．２で凍結乾燥した凍結乾燥ＣＲＭ_１９７を、ＤＭＳＯ （無水ＤＭＳＯはＳｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ社製、２７６５５－１００ｍＬ）に溶解し、ＤＭＳＯ／水中で９５％、９７％、９９％ （ｖ／ｖ）または無水ＤＭＳＯ中で、２分間かけて最終濃度１０ｍｇ／ｍＬに戻す。無水ＤＭＳＯはＳｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ Ｄ２４３８－５０ｍＬでよい。再構成は、時点に達するまで３０秒ごとに適切な量のＤＭＳＯを加えて行う。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ２窓を有する透過モードを用いて、制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ－３Ｓで収集される。分解能４ｃｍ^‐１、平均、緩衝液減算、水蒸気補正で５０回のスキャンを収集する。

ＣＲＭ_１９７を無水ＤＭＳＯ中で１０ｍｇ／ｍＬで速やかに再構成すると（図９）、分子間βシート形成の証拠はなく、これまでの観察結果が確認されている（図５、図７）。ごく少量の水（９９％ ＤＭＳＯ／水）は分子間βシートの小さな肩を示し、その量は水の増加とともに増加する（９７％，９５％ ＤＭＳＯ／水）。これは、再構成中の水分量の増加が分子間ベータシートの量の増加につながるという仮説を支持する。

実施例９
凍結乾燥ＣＲＭ_１９７中の水分レベルを低下させても、遅い再構成に対する感度は低下しない。

ＣＲＭ_１９７は、ケーキに存在する水分を減らす方法で凍結乾燥される（より長い乾燥サイクル、より低い充填量）（ｐＨ ７．２の１．２５ｍＭリン酸塩で１％ （ｗ／ｖ）ショ糖中約６ｍｇ／ｍＬ）。凍結乾燥したＣＲＭ_１９７をＤＭＳＯ（例えば、Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ由来の無水ＤＭＳＯ Ｄ２４３８－５０ｍＬ）で２～８分間かけて最終濃度１０ｍｇ／ｍＬに溶解し、適量のＤＭＳＯを３０秒ごとに、その時点に達するまで添加して再構成する。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ_２窓を有する透過モードを用いて、制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ－３Ｓで収集される。分解能４ｃｍ^－１、平均、緩衝液減算、水蒸気補正で５０回のスキャンを収集する。

ＣＲＭ_１９７のＤＭＳＯ再構成における水分の増加は、分子間βシート形成の割合の増加につながる（図９）。湿分を減らす方法で凍結乾燥したＣＲＭ_１９７を、速い（２分）と遅い（８分）の２つの異なる速度で無水ＤＭＳＯ中に再構成する。凍結乾燥ＣＲＭ_１９７の水分含量の低下は、分子間βシートの形成の再構成時間に対する感度を低下させない（図１０）。

実施例１０
複合体の調製において、凍結乾燥多糖類（Ｐｓ）および凍結乾燥ＣＲＭ_１９７タンパク質（Ｐｒ）を、上記のように無水ＤＭＳＯにそれぞれ別々に溶解する。次に、ＰｓとＰｒの比（Ｐｓ：Ｐｒ）および最終Ｐｓ濃度を標的として、これら２つの溶液を一緒にする。このＰｓ：Ｐｒ複合体溶液にシアノ水素化ホウ素ナトリウムを添加し、その溶液を適当な反応時間に必要な結合温度でインキュベートする。いずれもＰｒに結合されているＰｓ血清型に特異的である。得られた複合体サイズはＰｓ濃度により有意に影響されることが示されている。

複合成分（ＰｓとＰｒ）を組み合わせる方法はいくつかある。図１－４は、いくつかの組合せ戦略および成分が一緒に結合されている間の成分濃度とＰｓ：Ｐｒに及ぼすそれらの効果を詳細に示す。ＰｒをＰｓ溶液（図１）に加えたり、Ｐｒ溶液（図２）にＰｓを加えたりすると、もう一方の成分ともう一方の成分を含む溶液に加えようとしている成分の濃度はともに経時的に変化し、特に２つの溶液の境界面で変化する。濃度の経時的変化は、添加過程におけるＰｓ濃度およびＰｓ：Ｐｒ比の変化をもたらし、複合体サイズに影響を及ぼす。凍結乾燥したＰｓをＰｒ溶液に溶解すると（図３）、粉末と液体の界面でのＰｓ濃度とＰｓ：Ｐｒ比は高く始まり（Ｐｓの溶解限界で）、その後、多糖類が溶解するにつれて目標値に低下する。

しかし、Ｔｅｅ－混合によって２つの成分を別々の複合化容器に同時に加えると（図４）、この濃度勾配が除去され、２つの成分の比は添加を通して一定に保たれ、複合体サイズへの潜在的な影響は著しく減少する。チャンバー（Ｔｅｅ－混合）内の２つの構成要素を組み合わせるためのポンプの使用は、同時移送の他のモードと比較して、高いレベルの制御とスケーラビリティを提供する。

血清型１９Ｆのいくつかの開発用溶液では、表３にまとめたように、複合中に粘性のゲルが形成され、ゲル形成は、大きな、高度にネットワーク化された複合体の形成を示す。これらの溶液では、高いＰｓ濃度が結合の標的となる。ゲル化した溶液では、乾燥したＰｓをＰｒ溶液に溶解するか、またはＰｒ溶液にＰｓ溶液を加える。これらの組み合わせ戦略はともに、高い初期Ｐｓ濃度とＰｓ：Ｐｒを伴う添加中のＰｓ濃度勾配を示す（図１と図３）。濃度勾配がないロット（図４）と、初期のＰｓ濃度とＰｓ：Ｐｒ比が低い濃度勾配（図２）を有するロットのどちらもゲル形成を示さなかった。このことは、高いＰｓ濃度とＰｓ：Ｐｒ比が粘性ゲルの形成をもたらす非常に大きな複合体を生成できるという仮説を支持する。

実施例１１
凍結乾燥したＰｓと凍結乾燥したＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）を等容量の無水ＤＭＳＯを用いて常温で再溶解し、Ｐｓ均質溶液とＰｒ均質溶液とする。ＣＲＭ_１９７を２分の速い速度で再溶解する。いくつかの実施形態において、５００ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．２緩衝液は、ＤＭＳＯ再溶解タンパク質溶液中に、１．０ｍＭリン酸ナトリウムの最終濃度までスパイクされる。ＤＭＳＯで再溶解した後、血清型特異的な最終Ｐｓ濃度及びＰｓ：ＣＲＭ_１９７比を目標に、上記のとおりＴｅｅ－混合によりＰｓとＣＲＭ_１９７溶液を混合する（表４）。

ＷＦＩ中のシアノ水素化ホウ素ナトリウムの溶液を調製し、この溶液に１．０ ｍｅｑのシアノ水素化ホウ素ナトリウム（Ｐｓ反復単位のモルあたり１．０ｍｏｌｅのシアノ水素化ホウ素ナトリウム）を加える。シアノ水素化ホウ素ナトリウム溶液のモル濃度（表４）は、共役時の溶液の全水分量の約０．５％を目標とする。血清型特異的持続時間について血清型特異的温度で溶液を反応させ（表４）、結合型生成物中間体（ＣＰ）を生成する。

水素化ホウ素ナトリウムのＷＦＩ溶液を調製し、この液に水素化ホウ素ナトリウム２．０ ｍｅｑ（Ｐｓ反復単位に対する）を加える。水素化ホウ素ナトリウム溶液のモル濃度（表４）は、水素化ホウ素添加後の溶液中の全水分量の約１．０％を目標とする。この溶液を常温で２～３時間反応させ、共役生成物クエンチ中間体（ＣＰＱ）を生成させる。

次に、複合体溶液を１５０ｍＭ塩化ナトリウム（いくつかの実施形態では、０．０２５％ ｗ／ｖポリソルベート２０を有する１５０ｍＭ塩化ナトリウム）に徐々に溶液を加えることによって、２０％以下（ｖ／ｖ）の無水ＤＭＳＯに希釈する。希釈段階中、溶液温度を１５℃未満に維持する。約１時間後、ｐＨ ６．０の１．５Ｍリン酸カリウムを加えて２５ｍＭリン酸カリウムとする。結合能は、全体のＰｓおよびＣＲＭ_１９７消費、Ｐｓ対ＣＲＭ_１９７結合比、および複合体分子量によって評価される。

コンジュゲーション溶液を約２．５ｇ／Ｌまで濃縮し、３０ｋＤａ ＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて、１５０ｍＭ塩化ナトリウム中の１５０ｍＭ塩化ナトリウムまたは２５ｍＭリン酸カリウム１０透析容量に対して２～８℃で透析濾過する。これにより限外濾過－３工程中間体（ＵＦ３－ＦＲ）が作製された。ＵＦ３－ＦＲのＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定される。

いくつかの実施形態において１９Ｆについて、ＵＦ３－ＦＲは０．２２－ミクロン濾過され、続いて２２℃で約１２０時間インキュベートされる。

ＵＦ３－ＦＲ溶液は、次いで限外濾過－４工程で処理する。一部の実施例における限外濾過－４工程では、溶液は、３００ｋＤａ ＮＭＷＣＯ Ｂｉｏｍａｘ ＰＥＳ接近流超透過膜を用いて、塩化ナトリウム１５０ｍＭ、ｐＨ ７．０、２～８℃で１０ｍＬ－ヒスチジンの２０透析容量に対して、約２．５ｇ／ＬのＰｓ濃度に濃縮し、透析濾過される。血清型７Ｆは、限外濾過－４工程において１００ｋＤａのＮＭＷＣＯ膜を用いた。血清型６Ａ、６Ｂ、および１８Ｃについては、ＵＦ３－ＦＲ溶液を約３．５ｇ／Ｌまで濃縮し、３００ｋＤａ ＮＭＷＣＯ Ｂｉｏｍａｘ ＰＥＳ接線流限外濾過膜を用いて、１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０３％ ｗ／ｖ ＰＳ－２０、ｐＨ ７．０、２～８℃で１０ｍＭ Ｌ－ヒスチジンに対して透析濾過する。いくつかの実施形態において、血清型７Ｆ、１９Ａ、１９Ｆおよび２３Ｆ ＵＦ３－ＦＲ溶液を約２．０ｇ／Ｌまで濃縮し、３００ｋＤａ ＮＭＷＣＯ ＵｌｔｒａＣｅｌ、再生セルロース、接線流限外濾過膜を用いて、１５０ｍＭ塩化ナトリウム中１０ｍＭ Ｌ－ヒスチジン、０．０１５％ ｗ／ｖ ＰＳ－２０、２～８℃でｐＨ ７．０に対して透析濾過する。これにより限外濾過－４工程中間体（ＵＦ４－ＦＲ）が調製された。ＵＦ４－ＦＲのＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定される。

ＵＦ４－ＦＲはＰＶＤＦフィルターを通して０．２２ミクロン濾過される。濾液のＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定する。濾液のＰｓ濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合は、濾液をｐＨ ７．０の１５０ｍＭ塩化ナトリウム中１０ｍＭ Ｌ－ヒスチジンで希釈し、Ｐｓ濃度１．０ｇ／Ｌにする。これにより単価バルク複合体中間体（ＭＢＣ）が作製された。ＭＢＣをアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結する。

血清型６Ａ、６Ｂ、１８ＣのＵＦ４－ＦＲは、デュアルメンブレンＰＥＳフィルターで０．５／０．２－ミクロン濾過する。濾液のＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定する。濾液のＰｓ濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合、濾液を、１０ｍＭのＬ－ヒスチジンを含む１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０３％ ｗ／ｖ ＰＳ－２０、ｐＨ ７．０で、Ｐｓ濃度１．０ｇ／Ｌに希釈する。これにより単価バルク複合体中間体（ＭＢＣ）が作製された。ＭＢＣをアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結する。

血清型７Ｆ、１９Ａ、１９Ｆ、および２３ＦのＵＦ４－ＦＲは、ＰＶＤＦフィルターを介して０．２２ミクロン濾過される。濾液のＰｓ濃度はＨＰＳＥＣ ＵＶ－ＭＡＬＳ－ＲＩにより測定する。濾液のＰｓ濃度が１．０ｇ／Ｌを超える場合、濾液をＰｓ濃度１．０ｇ／Ｌに希釈し、更に１０ｍＭのＬ－ヒスチジンを１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０１５％ ｗ／ｖ ＰＳ－２０、ｐＨ ７．０に加える。これにより単価バルク複合体中間体（ＭＢＣ）が作製された。ＭＢＣをアリコートに分注し、－６０℃～－８０℃で凍結する。

実施例１２
ＣＲＭ_１９７を無水ＤＭＳＯ中でゆっくり（８分）再構成し、続いて６Ｂ多糖類に結合させると、結合後に分子間βシートが存在する。

ＣＲＭ_１９７を速く（２分間）または遅く（８分間）ＤＭＳＯで再構成し、先に述べたように精製し、約１ｍｇ／ｍＬの濃度（１０ｍＭヒスチジン、１５０ｍＭ ＮａＣｌ ｐＨ７）になるように透析濾過する。次に、ＦＴＩＲ測定を可能にするために、サンプルをＡｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ １１Ｋ ＭＷＣＯフィルターで濃縮する。ＦＴＩＲスペクトルは、５０ｍｍのＣａＦ_２窓を持つ伝送モードを用いて制御温度（２５℃）でＢｉｏＴｏｏｌｓ ＰＲＯＴＡ‐３Ｓで収集する。分解能４ｃｍ^－１、平均、緩衝液減算、水蒸気補正で５０回のスキャンを収集する。その後、Ｏｍｉｃソフトウェア（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を用いてデータを分析する。

ＤＭＳＯ中でゆっくりと再構成されたＣＲＭ_１９７とのＣＲＭ_１９７－６Ｂ複合体（図１１）は、分子間βシート形成の証拠を示し、ＣＲＭ_１９７の凝集が再構成後でも存在することを実証する。速く再構成されたＣＲＭ_１９７を用いて作られたＣＲＭ_１９７－６Ｂ複合体（図１１）は、期待される非結合Ｃ＝Ｏアミドを示し、明らかなβシート形成を示さない。

実施例１３
この実施例は、無水ＤＭＳＯ中での還元アミノ化（Ｐｒ）を使用した、血清型１、２、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、６Ｃ、６Ｄ、７Ｂ、７Ｃ、７Ｆ、８、９Ｎ、９Ｖ、１０Ａ、１１Ａ、１２Ｆ、１４、１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１６Ｆ、１７Ｆ、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２０、２１、２２Ａ、２２Ｆ、２３Ａ、２３Ｂ、２３Ｆ、２４Ｆ、２７、２８Ａ、３１、３３Ｆ、３４、３５Ａ、３５Ｂ、３５Ｆ、または３８由来のＰのＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）への結合のための方法を示す。異なる血清型多糖類は、共通の工程フローを用いて、精製ＣＲＭ_１９７担体タンパク質に個別に結合される。

先に記載したように調製した乾燥ＣＲＭ_１９７を、乾燥ＣＲＭ_１９７に無水ＤＭＳＯを２分間かけて速やかに加えて無水ＤＭＳＯ中に再構成し、Ｐを無水ＤＭＳＯ中にそれぞれ別々に再構成してＰｒ均質溶液およびＰｓ均質溶液とする。ＰｓとＰｒはそれぞれ全結合反応体積の半分に再構成される。したがって、ＤＭＳＯ再構成後のＰｓ濃度は、表３から算出した結合反応中のPs濃度の範囲２．２～７．６ｇ／Ｌの２倍である。ＤＭＳＯ再構成後のＰｒ濃度は２ｘ（結合反応中のＰｓ濃度／Ｐｓ：Ｐｒ比）範囲１．５～５．７ｇ／Ｌである。次にＰｒ均質溶液とＰｓ均質溶液をＴｅｅ－混合により一緒にする。次いで、シアノ水素化ホウ素ナトリウム（多糖類反復単位１モル当たり１モル）を混合物に加え、結合を血清型特異的な持続時間（１～４８時間）にわたって進め、目標とする複合体サイズを得る。

水素化ホウ素ナトリウムによる還元
結合反応および溶液に続いて水素化ホウ素ナトリウム（多糖類反復単位１ｍｏｌ当たり２ｍｏｌ）を加え、２２℃で１時間インキュベートする。この溶液を、約４℃で、１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．０２５％（ｗ／ｖ）ポリソルベート２０中に希釈する。次にリン酸カリウム緩衝液を加えてｐＨを中和する。この溶液を濃縮し、１０ｋＤａ ＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて、１５０ｍＭ塩化ナトリウムに対して約４℃で透析濾過する。

最終濾過・製品保存
次に各溶液を濃縮し、３００ｋＤａ ＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いてｐＨ ７．０の１５０ｍＭ塩化ナトリウム中１０ｍＭヒスチジンに対して４℃で透析濾過する。保持液を０．２２ミクロン濾過する。

血清型１９Ｆを約５日間インキュベートし、３００ｋＤａ ＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いてｐＨ ７．０の１５０ｍＭ塩化ナトリウム中１０ｍＭヒスチジンに対して約４℃で透析濾過し、０．２２ミクロン濾過する。血清型１８Ｃは、１５０ｍＭ塩化ナトリウム中の１０ｍＭヒスチジン、ｐＨ ７．０に対して、３００ｋＤａのＮＭＷＣＯ接線流限外濾過膜を用いて約４℃で透析濾過し、０．２２ミクロン濾過する。

ｐＨ ７．０の１５０ｍＭ塩化ナトリウムで更に１０ｍＭヒスチジンで希釈し、アリコートに分注し、－６０℃以下で凍結する。

実施例１４
この実施例は、異なる界面活性剤および安定剤を有する１５価肺炎球菌結合型ワクチンの製剤を示す。

血清型１、３、４、５、６Ａ、６Ｂ、７Ｆ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ａ、１９Ｆ、２２Ｆ、２３Ｆ及び３３Ｆを有する１５価肺炎球菌結合型ワクチン（以下、「ＰＣＶ１５」）の製剤には、上記のように調製された肺炎球菌多糖類体－タンパク複合体が用いられる。

処方は、前述のように、ＤＭＳＯ中の還元的アミノ化によって生成される肺炎球菌多糖類体－ＣＲＭ_１９７複合体を用いて調製される。個々の血清型の目標最終濃度を得るのに必要なバルク複合体の必要容量は、溶液容量およびバルク多糖類濃度に基づいて計算する。１５の複合体を、塩化ナトリウム、Ｌ－ヒスチジン、ｐＨ ５．８緩衝液とポリソルベート（ＰＳ）－２０、ＰＳ－８０、またはポロキサマー（Ｐ）１８８から選択される賦形剤と組み合わせる。

滅菌した調製バルクは、プロピレングリコール（ＰＧ）及びポリエチレングリコール４００（ＰＥＧ４００）を併用し、または併用せずに、バルクアルミニウムフォスフェートアジュバン（ＡＰＡ）と組合せ、組合せ中および組合せ後に、緩やかに混合する。様々な製剤において、複合体とＡＰＡの２つの濃度が研究されている。１つは８μｇ／ｍＬの血清型６Ｂ多糖類、他のすべての血清型については多糖類４μｇ／ｍＬ、そして２５０μｇ／ｍＬのＡＰＡを含んでいた。もう１つは血清型６Ｂ多糖類１６μｇ／ｍＬ、他のすべての血清型については多糖類８μｇ／ｍＬ、ＡＰＡ ５００μｇ／ｍＬであった。処方されたワクチンは２～８℃で保存される。

ＡＰＡは、ヒドロキシリン酸アルミニウムの水性懸濁液である。ＡＰＡは塩化アルミニウムとリン酸ナトリウムを１：１の容量比で組み合わせて、水酸化アルミニウムを沈殿させて製造する。結合工程の後、高剪断ミキサーで材料をサイズ縮小し、単分散粒子サイズ分布を達成する。その後、生理食塩液で濾過し、蒸気滅菌する。

実施例１５
この例では、上述のように調製した６Ｂ多糖類（Ｐｓ）とＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）をＲＥＶによって個別に凍結乾燥して乾燥ケーキを形成する。乾燥ケーキをＤＭＳＯ中で再構成し、ここに記載するように結合させる。

標的Ｐｓ：Ｐｒ比（ｗ／ｗ）は０．９～１．５であり、複合体の標的分子量（ＭＷ）は１５００～３５００ｋＤａである。標的遊離Ｐｓは１５％以下で、遊離リジン損失は５モル／モルより大きい。結果は表５のとおりであった。本発明により作製されたＲＥＶ乾燥材料は、標的範囲内の複合体ＭＷ、標的範囲内のＰｓ：Ｐｒ比、標的範囲内の遊離Ｐｓ、および標的範囲内の遊離リジンを有する。

表５の複合体Ｍｗ、複合体Ｍｎ、複合体Ｐｓ：Ｐｒのアッセイ
ＨＰＳＥＣ／ＵＶ／ＭＡＬＳ／ＲＩアッセイを用いた複合体の分子量および濃度分析複合体試料を注入し、高速サイズ排除クロマトグラフィー（ＨＰＳＥＣ）により分離した。検出は紫外線（ＵＶ）、多角光散乱（ＭＡＬＳ）および屈折率（ＲＩ）検出器を直列に用いて達成した。タンパク質濃度は、ＵＶ２８０から吸光係数を用いて算出した。多糖類濃度は、溶液の屈折率の変化とｍＬ／ｇで示された溶質濃度の変化であるｄｎ／ｄｃ因子を用いて（タンパク質と多糖類の両方が寄与する）ＲＩシグナルからデコンボルートした。試料の平均分子量は、Ａｓｔｒａソフトウェア（Ｗｙａｔｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ， Ｓａｎｔａ Ｂａｒｂａｒａ， ＣＡ）により、測定濃度および全試料ピークにわたる光散乱情報を用いて算出した。

表５のリジン喪失のアッセイ
多糖類と担体タンパク質の共有結合数の指標としての結合タンパクのリジン消費量の測定。

Ｗａｔｅｒｓ ＡｃｃＱ－Ｔａｇアミノ酸分析（ＡＡＡ）を用いて、複合体サンプルにおける複合化の程度を測定した。Ｅｌｄｅｘワークステーションで気相酸加水分解を用いて試料を加水分解し、担体タンパク質を構成アミノ酸に分解した。遊離アミノ酸を６‐アミノキノリル‐Ｎ‐ヒドロキシスクシンイミジルカルバメート（ＡＱＣ）を用いて誘導体化した。次いで、誘導体化された試料を、Ｃ１８カラム上のＵＶ検出を伴うＵＰＬＣを使用して分析した。リジン以外の代表的アミノ酸を用いて平均タンパク質濃度を求めた。結合時のリジン消費（すなわち、リジン消失）は、複合体中のリジンの平均測定量と出発タンパク質中のリジンの期待量との差によって決定した。

表５の遊離Ｐｓの定量法
遊離多糖類（ＣＲＭ_１９７と結合していない多糖類）は、まず遊離タンパク質とデオキシコール酸（ＤＯＣ）および塩酸との複合体を沈殿させて測定する。次に沈殿物を濾過し、濾液中の遊離多糖類濃度をＨＰＳＥＣ／ＵＶ／ＭＡＬＳ／ＲＩで分析する。遊離多糖類は、ＨＰＳＥＣ／ＵＶ／ＭＡＬＳ／ＲＩで測定した総多糖類のパーセンテージとして計算される。

表５の遊離Ｐｒの定量法
結合試料中の遊離多糖類、多糖類‐ＣＲＭ_１９７複合体、および遊離ＣＲＭ_１９７を、ミセル動電クロマトグラフィー（ＭＥＫＣ）モードでキャピラリー電気泳動により分離する。

簡単に述べると、試料を、２５ｍＭホウ酸塩、１００ｍＭ ＳＤＳ、ｐＨ ９．３を含有するＭＥＫＣランニング緩衝液と混合し、予備条件付けされたベアフューズド２０シリカキャピラリー中で分離する。分離を２００ｎｍでモニターし、遊離ＣＲＭ_１９７をＣＲＭ_１９７標準曲線で定量する。

遊離タンパク質の結果は、ＨＰＳＥＣ／ＵＶ／ＭＡＬＳ／ＲＩ手順によって決定された総タンパク質含有量のパーセンテージとして報告される。

実施例１６
この実施例では、６Ａ多糖類（Ｐｓ）およびＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）試料を調製し、本発明に従って分けて（別々に）凍結乾燥するか、または組み合わせて凍結乾燥する。凍結乾燥された試料は、続いてＤＭＳＯ中で再構成され、ここに記載されるように複合体化される。

ビーズを乾燥させるために２つの異なるＭＶＤサイクルを試験した（表６）。両サイクルとも、圧を５０～６０ｍＴｏｒｒの範囲に保った。温度は、どれだけの電力を加えたかに依存し、２５～３０℃の範囲に留まった。

予備乾燥サイクル（Ｌｙｏ１）には、表７に示すように１８時間を要した。

乾燥サイクルは、表８に示すように、二次乾燥サイクルを加え、一次乾燥時間を延長することにより修正（Ｌｙｏ ２）した。

標的Ｐｓ：Ｐｒ比（ｗ／ｗ）は０．９～１．５であり、複合体の標的分子量（ＭＷ）は１５００～３５００ｋＤａである。結果は表９ のとおりであった。

実施例１７
この実施例では、２３Ｆ多糖類（Ｐｓ）およびＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）試料を調製し、本発明に従って分けて（別々に）凍結乾燥するか、または組み合わせて凍結乾燥する。凍結乾燥された試料は、続いてＤＭＳＯ中で再構成され、ここに記載されるように結合される。

標的Ｐｓ：Ｐｒ比（ｗ／ｗ）は０．９～１．５であり、複合体の標的分子量（ＭＷ）は１５００～３５００ｋＤａである。その結果は表１０のとおりであり、比が２．４であった試料Ｂ２を除き、別々に凍結乾燥した試料について、ＰｓおよびＰｒが期待される目標値にあったことを示している。

実施例１８
この例は、６Ａ多糖類（Ｐｓ）を用いた複合サイズに対する凍結乾燥担体タンパク質ＣＲＭ_１９７（Ｐｒ）へのＤＭＳＯ添加時間の影響を示している。前に述べたように、ＤＭＳＯを凍結乾燥したＰｒに速く（２分）、遅く（８分）加え、混合した後、ＤＭＳＯで再構成した活性化Ｐに結合させた。

図１３は、大きさが増す多糖類を用いた結合反応から生じる複合体の大きさを示している。通常の関係は、結合反応に使われる多糖類（ＵＦ２サイズ）が大きいほど、それから生じる複合体が大きくなるということである。各多糖類サイズについて、凍結乾燥後のＰｒへの遅いＤＭＳＯ添加速度と速いＤＭＳＯ添加速度を比較した。グラフは、遅いＤＭＳＯ添加は速いＤＭＳＯ添加よりも、同じサイズの多糖類からさらに大きな複合体を生じることを示す。

実施例１９
この例は、多糖類（Ｐｓ）およびＣＲＭ_１９７（Ｐｒ； ＣＲＭ）リオスフェアを生産するための凍結乾燥剤条件の開発を示す。

実施例３および４に記載されているようにＣＲＭおよび血清型６Ａおよび２３Ｆ由来の活性化多糖類の別個の溶液を調製し、本実施例の表に示すＰｓ、ＣＲＭ、およびショ糖濃度を有した。

改良型Ｂｉｏｍｅｋ ＦＸピペッティングロボット（Ｃｒｙｏｍｅｋ）を用いて、溶液の５０μＬアリコートをＣｒｙｏｍｅｋの平らな凍結表面上に分注する。シャベル機構を使って、粉砕を起こすことなく、小さな冷たい容器にビーズを分注できる。各異なる溶液のサイクルを完了した後、ビーズを中間保存容器に移し、凍結乾燥器で昇華乾燥するか、またはマイクロ波減圧乾燥により昇華乾燥するまで－７０℃に保つ。凍結乾燥機の乾燥には、ビーズを１層にして乾燥トレーに分注する。キャビネットの圧力、シェルフ温度、サイクルタイムが設定される。ビーズを乾燥させた後、リオスフェアを２～８℃で保存する。（特定のパラメータについては、例５を参照）

予備乾燥サイクル（Ｌｙｏ１）には、表１９．１に示すように１８時間を要した。Ｋａｒｌ Ｆｉｓｈｅｒ滴定により測定されたリオスフェアの残留水分含量を表１９．２に示す。

その結果、リオスフェア中の水分含量が高いことが分かった。さらに、リオスフェアは非常にもろく、吸水性であった。固体含量は、表２０．２に示すように、多糖類、タンパク質、ショ糖濃度の増加によって増加した。乾燥サイクルは、表２０．１に示すように、二次乾燥サイクルを加え、一次乾燥時間を長くすることにより修正した（Ｌｙｏ ２）。

Ｌｙｏ２からの残留水分含量は乾燥サイクルの改善によりＬｙｏ１からより有意に低かった。二次乾燥は、全ての氷が昇華した後でさえ、生成物中に依然として存在する結合水分の除去を改善する。二次乾燥は一次乾燥（１５℃）よりも高い温度（３０℃）を必要とした。

この時点で、凍結乾燥機総乾燥サイクル時間は４５時間であった。乾燥サイクル時間をさらに短縮するため、圧力や温度などいくつかのパラメータを変更した（方法： Ｌｙｏ ３）表２１．１および２１．２。

実施例２０
この例は、多糖類（Ｐｓ）およびＣＲＭ_１９７（Ｐｒ； ＣＲＭ）リオスフェアを生産するためのラジアントエネルギー真空（ＲＥＶ）脱水（マイクロ波減圧乾燥（ＭＶＤ））条件の開発を示す。

ＣＲＭおよび血清型６Ａおよび２３Ｆ由来の活性化多糖類の溶液は、実施例３および４に記載されており、表２２．１および２２．２に示すようにＰｓ、ＣＲＭ、およびショ糖濃度を有するように調製した。

改良型Ｂｉｏｍｅｋ ＦＸピペッティングロボット（Ｃｒｙｏｍｅｋ）を用いて、溶液の５０μＬアリコートをＣｒｙｏｍｅｋの平らな凍結表面上に分注する。シャベル機構を使って、粉砕を起こすことなく、小さな冷たい容器にビーズを分注できる。各異なる溶液のサイクルを完了した後、ビーズを中間保存容器に移し、凍結乾燥器で昇華乾燥するか、またはマイクロ波減圧乾燥により昇華乾燥するまで－７０℃に保つ。マイクロ波乾燥のため、ビーズを容器に単層分注した。出力、圧力、サイクル時間を設定した。ビーズを乾燥させた後、リオスフェアを２～８℃で保存した。（特定のパラメータについては、例６を参照）。

ビーズを乾燥させるために２つの異なるＭＶＤサイクルを試験した。両サイクルとも、圧を５０～６０ｍＴｏｒｒの範囲に保った。温度は、どれだけの電力を加えたかに依存し、２５～３０℃の範囲に留まった。

ＭＶＤ１サイクルには４時間３０分を要したが、残留水分含量を２％まで減少させるには不十分であった。ＭＶＤ２サイクルは、より高いパワーでより長くかかり、したがって、有意に低い残留水分含量を提供した。

本発明はここに示された実施形態を参照して記載されているが、本発明がこれらに限定されないことを理解すべきである。本明細書の記載を読んだ当業者は、その範囲内のさらなる修正および実施形態を認識するであろう。したがって、本発明は、本明細書に添付されるクレームによってのみ限定される。

Claims (15)

1. 担体タンパク質に共有結合した肺炎球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）多糖類を含む組成物を製造する方法であって、
   （ａ）１つ以上の肺炎球菌血清型由来の化学的に活性化された肺炎球菌多糖類を含む第１の乾燥組成物、
   および担体タンパク質を含む第２の乾燥組成物を提供する工程；
   （ｂ）前記第１の乾燥組成物および第２の乾燥組成物を有機溶媒中で別々に再構成して混和し、１つ以上の化学的に活性化された多糖類を含む第１の均質溶液および担体タンパク質を含む第２の均質溶液を提供する工程であって、再構成が８分以内であり、混和が１２０分以内である工程；
   （ｃ）前記第１の均質溶液と第２の均質溶液をＴ字型の混合チャンバーを用いた混合によって組合せて混合物を調製する工程；および
   （ｄ）前記混合物に還元剤を加えて、前記肺炎球菌血清型の１つ以上の多糖類に結合した担体タンパク質を含む複合体溶液を生成する工程を含む前記方法。
2. 前記第１および第２の乾燥組成物が、凍結乾燥および放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水から選択される昇華乾燥工程によって調製される、請求項１記載の方法。
3. 前記昇華乾燥工程が、第１および第２の水溶液をケーキまたはリオスフェアビーズの形態で凍結することを含む、請求項２記載の方法。
4. 前記昇華乾燥が、金属トレイ、プラスチックトレイ、ビニール袋、およびクラスＩチューブバイアルからなる群より選択される容器内で実施されるバルク乾燥（ｂｕｌｋ ｄｒｙｉｎｇ）である、請求項２記載の方法。
5. １つ以上の肺炎球菌血清型由来の化学的に活性化された肺炎球菌多糖類を含む第１の水溶液ならびに担体タンパク質および緩衝液を含む第２の水溶液を提供すること、および、昇華乾燥工程によって前記第１および第２の乾燥組成物を調製することを含む請求項１記載の方法であって、
   凍結乾燥または放射エネルギー真空（ＲＥＶ）脱水を含む昇華乾燥工程によって前記第１および第２の乾燥組成物を調製すること、および、前記第１および第２の水溶液が約０．５％ （ｗ／ｖ）以上のショ糖を含むことを特徴とする、前記方法。
6. 緩衝液が、ｐＨ範囲５．０～７．０のヒスチジン、コハク酸塩、ＭＥＳ、ＭＯＰＳ、ＨＥＰＥＳ、または酢酸塩緩衝液である、請求項５記載の方法。
7. 緩衝液が、ｐＨ５．０～７．０の範囲のリン酸塩またはクエン酸塩緩衝液である、請求項５記載の方法。
8. 第１および第２の乾燥組成物の含水率が６％未満である、請求項１から７のいずれか一項に記載の方法。
9. 有機溶媒がジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）である、請求項１から８のいずれか一項に記載の方法。
10. 各複合体溶液が、重量対重量基準で担体タンパク質に対して約０．６～約１．３の比率で結合した多糖類を含む、請求項１から９のいずれか一項に記載の方法。
11. 複合体溶液が、溶液中の全多糖類の約１５％未満の量の遊離多糖類を含む、請求項１から１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 担体タンパク質が、破傷風トキソイド、ジフテリアトキソイド、百日咳トキソイド、細菌性細胞溶解素、およびニューモリシンからなる群より選択される不活化細菌性トキソイドである、請求項１から１１のいずれか一項に記載の方法。
13. 不活化細菌性トキソイドがＣＲＭ_１９７である、請求項１２記載の方法。
14. 複合体溶液が滅菌濾過される、請求項１から１３のいずれか一項に記載の方法。
15. 肺炎球菌多糖類が、酸化剤と反応することによって化学的に活性化される、請求項１から１４のいずれか一項に記載の方法。

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