JP7500429B2 - 優性遺伝性カテコラミン誘発多形性心室頻拍の治療のための組成物および方法 - Google Patents
優性遺伝性カテコラミン誘発多形性心室頻拍の治療のための組成物および方法 Download PDFInfo
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Description
100×(分数X/Y)
ここで、Xは、配列アラインメントプログラム(BLASTなど)によってそのプログラムのAとBとのアラインメントで完全な一致としてスコア付けされたヌクレオチドまたはアミノ酸の数であり、Yは、Bにおける核酸の総数である。核酸またはアミノ酸配列Aの長さが核酸またはアミノ酸配列Bの長さと等しくない場合、Bに対するAのパーセント配列同一性は、Aに対するBのパーセント配列同一性と等しくない。
CPVTは、致命的な不整脈に対する高い感受性を特徴とする遺伝性チャネル病である。常染色体優性および常染色体劣性変種という、この疾患の2つの形態が報告されている。常染色体優性は心臓のRYR2遺伝子の突然変異に関連付けられ、常染色体劣性変種は心臓のCASQ2遺伝子の突然変異に関連付けられる(Priori et al., Circulation 104(Supplement II):335(2001)、および、Lahat et al., Am. J. Hum. Genet. 69:1378-1384(2001))。臨床観察では、CPVTの優性な形態を有する患者は、交感神経の活性化に応答して双方向性および多形性心室頻拍を発症するが、安静時の心電図プロファイルは目立たず、心臓構造が保たれることが示されている。
CASQ2導入遺伝子
本明細書に記載の組成物および方法を用いて、CASQ2をコードする導入遺伝子を、病理を治療するために、優性CPVTを有するヒト患者などの患者に提供することができる。CASQ2導入遺伝子は、本明細書に記載の遺伝子治療のための他の組成物の中でも、様々なベクター(例えば、ウイルスベクター)を介して患者に送達され得る。いくつかの実施形態(例えば、ヒト患者を治療する実施形態)において、CASQ2導入遺伝子は、以下に示す配列番号1に提示される野生型ヒトCASQ2のアミノ酸配列と少なくとも85%同一である(例えば、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、99.9%、または100%同一である)アミノ酸配列を有するタンパク質をコードする。本明細書に記載の組成物および方法と併せて使用するためのCASQ2導入遺伝子には、配列番号1のアミノ酸配列に対して1つ以上の保存的アミノ酸置換を有するタンパク質をコードするものが含まれる。例えば、CASQ2導入遺伝子は、配列番号1のアミノ酸配列に対して最大50個の保存的アミノ酸置換(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、または50個の保存的アミノ酸置換)を有するタンパク質をコードし得る。CASQ2導入遺伝子は、付加的または代替的に、配列番号1のアミノ酸配列に対して1つ以上の非保存的アミノ酸置換を有し得る。例えば、CASQ2導入遺伝子は、配列番号1のアミノ酸配列に対して最大50個の非保存的アミノ酸置換(例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、または50個の非保存的アミノ酸置換)を有するタンパク質をコードし得る。
本明細書に記載の組成物および方法と併せて有用な例示的な野生型CASQ2アミノ酸および核酸配列を、以下の表2に記載する。
本明細書に記載のCASQ2導入遺伝子は、導入遺伝子がプロモーターに作動可能に連結されるように、ベクター、プラスミド、または本明細書に記載の他の核酸送達ビヒクルなどの送達ビヒクルに組み込まれてもよい。本明細書に記載の組成物および方法と併せて有用な例示的なプロモーターは、患者(例えば、ヒト患者)の心筋細胞などの心臓細胞において導入遺伝子の発現を誘導するものである。例えば、本明細書に記載の遺伝子送達ビヒクルにおいてCASQ2の発現を誘導するために用いられ得るプロモーターには、デスミンプロモーター、サイトメガロウイルスプロモーター、ミオシン軽鎖2プロモーター、アルファアクチンプロモーター、トロポニン1プロモーター、Na+/Ca2+交換体プロモーター、ジストロフィンプロモーター、クレアチンキナーゼプロモーター、アルファ7インテグリンプロモーター、脳性ナトリウム利尿ペプチドプロモーター、アルファB-クリスタリン/小熱ショックタンパク質プロモーター、アルファミオシン重鎖プロモーター、または心房性ナトリウム利尿因子プロモーターが含まれるが、これらに限定されない。
核酸送達用のウイルスベクター
ウイルスゲノムは、患者の標的細胞(例えば、ヒト細胞などの哺乳動物細胞)のゲノムへの目的の遺伝子の効率的な送達に利用可能な豊富なベクター供給源を提供する。ウイルスゲノムは、このようなゲノム内に含まれるポリヌクレオチドが通常、一般化または特殊化された形質導入によって標的細胞のゲノムに組み込まれるため、遺伝子送達のための特に有用なベクターである。これらのプロセスは、自然のウイルス複製サイクルの一部として発生し、遺伝子の統合を誘導するためにタンパク質や試薬を追加する必要はない。本明細書に記載の組成物および方法と併せて使用され得るウイルスベクターの例には、AAV、レトロウイルス、アデノウイルス(例えば、Ad5、Ad26、Ad34、Ad35、およびAd48)、パルボウイルス(例えば、アデノ関連ウイルス)、コロナウイルス、オルトミクソウイルス(例、インフルエンザウイルス)、ラブドウイルス(例、狂犬病および小胞性口内炎ウイルス)、パラミクソウイルス(例、はしかおよびセンダイ)などの負鎖RNAウイルス、ピコルナウイルスおよびアルファウイルスなどの正鎖RNAウイルス、およびアデノウイルス、ヘルペスウイルス(例、ヘルペスシンプレックスウイルス1型および2型、エプスタインバーウイルス、サイトメガロウイルス)、およびポックスウイルス(例、ワクシニア、改変ワクシニアアンカラ(MVA)、鶏痘およびカナリア痘)を含む二本鎖DNAウイルスがある。本明細書に記載の組成物および方法と併せて使用され得る他のウイルスには、例えば、ノーウォークウイルス、トガウイルス、フラビウイルス、レオウイルス、パポーバウイルス、ヘパドナウイルス、および肝炎ウイルスが含まれる。レトロウイルスの例には、トリ白血病肉腫、哺乳類のC型、B型ウイルス、D型ウイルス、HTLV-BLVグループ、レンチウイルス、スプマウイルスが含まれる(Coffin, J. M., Retroviridae: The viruses and their replication, In Fundamental Virology, Third Edition, B. N. Fields, et al., Eds., Lippincott-Raven Publishers, Philadelphia, 1996)。他の例としては、ネズミ白血病ウイルス、ネズミ肉腫ウイルス、マウス乳房腫瘍ウイルス、ウシ白血病ウイルス、ネコ白血病ウイルス、ネコ肉腫ウイルス、トリ白血病ウイルス、ヒトT細胞白血病ウイルス、ヒツジ内因性ウイルス、ギボンエイプ白血病ウイルス、メイソンファイザーサルウイルス、シミアン免疫不全ウイルス、シミアン肉腫ウイルス、ラウス肉腫ウイルス、およびレンチウイルスがある。ベクターの他の例は、例えば、US5,801,030に記載されており、その開示は、遺伝子治療で使用するウイルスベクターに関するため、参照により本明細書に組み込まれる。
いくつかの実施形態において、本明細書に記載の組成物および方法の核酸は、患者の標的心臓細胞(例えば、心筋細胞)などの細胞へのrAAVベクターおよび/またはビリオンの導入を容易にするために、rAAVベクターおよび/またはビリオンに組み込まれる。本明細書に記載の組成物および方法と併せて有用なrAAVベクターには、(1)CASQ2導入遺伝子、および(2)異種遺伝子の組み込みおよび発現を促進するウイルス核酸を含む組み換え核酸構成物が含まれる。ウイルス核酸は、DNAのビリオン内への複製およびパッケージング(例えば、機能的ITR)のためにシスで必要とされるAAVのそれらの配列を含み得る。このようなrAAVベクターは、マーカーまたはレポーター遺伝子も含んでもよい。有用なrAAVベクターには、1つ以上の自然発生AAV遺伝子の全体または一部が削除されているが、機能的な隣接ITR配列を保持しているものが含まれる。AAVITRは、特定の用途に適した任意の血清型(例えば、血清型2に由来する)であり得る。rAAVベクターを使用する方法は、例えば、Tal et al., J. Biomed. Sci. 7:279-291(2000)、および、Monahan and Samulski, Gene Delivery 7:24-30(2000)に記載されており、それらの開示は、遺伝子送達のためのAAVベクターに関するため、参照により本明細書に組み込まれる。
トランスフェクション技術
本明細書に記載の転写調節エレメントに作動可能に連結されたCASQ2導入遺伝子などのCASQ2導入遺伝子を標的細胞に導入するために利用可能な技術は、当該技術分野で既知である。例えば、エレクトロポレーションは、対象の細胞に静電ポテンシャルを印加することによって哺乳動物細胞(例えば、ヒト標的細胞)を透過性にするために使用することができる。このようにして外部電界にさらされたヒト細胞などの哺乳動物細胞は、その後、外因性核酸の取り込みを受けやすくなる。哺乳動物細胞のエレクトロポレーションは、例えば、Chu et al., Nucleic Acids Research 15:1311(1987)に詳細に記載されており、その開示は、参照により本明細書に組み込まれる。類似の技術であるNucleofectionTM(核酸を遺伝子注入する技術)は、真核細胞の核への外因性ポリヌクレオチドの取り込みを刺激するために、印加電界を利用する。NucleofectionTMおよびこの技術を実行するために有用なプロトコルは、例えば、Distler et al., Experimental Dermatology 14:315(2005)、およびUS2010/0317114に詳細に記載されており、それらの開示は、参照により本明細書に組み込まれる。
上記に加えて、目的の遺伝子をヒト細胞などの標的細胞に組み込むために利用可能な様々なツールが開発されている。標的遺伝子をコードするポリヌクレオチドを標的細胞に組み込むために利用可能な方法の1つは、トランスポゾンの使用を伴う。トランスポゾンは、トランスポザーゼ酵素をコードするポリヌクレオチドであり、5’および3’切除部位に隣接する目的のポリヌクレオチド配列または遺伝子を含む。トランスポゾンが細胞に送達されると、トランスポザーゼ遺伝子の発現が始まり、結果的に、目的の遺伝子をトランスポゾンから開裂する活性酵素が生じる。この活動は、トランスポザーゼによるトランスポゾン切除部位の部位特異的認識によって媒介される。場合によっては、これらの切除部位は、末端反復または逆方向末端反復であり得る。トランスポゾンから切除されると、目的の遺伝子は、細胞の核ゲノム内に存在する同様の切除部位のトランスポザーゼ触媒開裂によって、哺乳動物細胞のゲノムに組み込まれ得る。これにより、目的の遺伝子を、相補的な切除部位において開裂核DNAに挿入することができ、その後の哺乳類細胞ゲノムのDNAに目的の遺伝子を結合するホスホジエステル結合の共有核酸連結により、組み込みプロセスが完了する。場合によっては、トランスポゾンは、標的遺伝子をコードする遺伝子が最初にRNA産物に転写され、その後、哺乳動物細胞ゲノムに組み込まれる前にDNAに逆転写されるようなレトロトランスポゾンであり得る。例示的なトランスポゾンシステムは、ピギーバックトランスポゾン(例えば、WO2010/085699に詳細に記載されている)およびSleeping Beautyトランスポゾン(例えば、US2005/0112764に詳細に記載されている)であり、それらの開示は、目的の細胞への遺伝子送達に使用するトランスポゾンに関連するため、参照により本明細書に組み込まれる。
患者の標的細胞(例えば、心筋細胞)によって発現されるCASQ2導入遺伝子の発現レベルは、例えば、CASQ2導入遺伝子の転写に由来するmRNA転写物の濃度または相対的存在量を評価することによって確認することができる。付加的または代替的に、遺伝子発現は、CASQ2導入遺伝子の転写および翻訳によって生成されるCASQ2タンパク質の濃度または相対的存在量を評価することによって決定することができる。タンパク質濃度は、カルシウム存在量アッセイなどの機能アッセイを使用して評価することもできる。以下の節では、本明細書に記載の優性CPVTを有する患者などの患者への送達時にCASQ2導入遺伝子の発現レベルを測定するために利用可能な例示的な技術について説明する。導入遺伝子発現は、核酸配列決定、マイクロアレイ分析、プロテオミクス、in-situハイブリダイゼーション(例えば、蛍光in-situハイブリダイゼーション(FISH))、増幅ベースのアッセイ、insituハイブリダイゼーション、蛍光活性化セルソーティング(FACS)、ノーザン分析、および/またはmRNAのPCR分析を含むがこれらに限定されない、当該技術分野で既知の多くの方法によって評価可能である。
本明細書に記載の組成物および方法と併せて分析に適した導入遺伝子発現検出方法データセットを決定するための核酸ベースの方法には、イメージングベースの技術(例えば、ノーザンブロッティングまたはサザンブロッティング)が含まれ、これは、導入遺伝子の投与後の患者から得られる細胞と共に用いられ得る。ノーザンブロット分析は、当該技術分野で周知の従来技術であり、例えば、Molecular Cloning, a Laboratory Manual, second edition, 1989, Sambrook, Fritch, Maniatis, Cold Spring Harbor Press, 10 Skyline Drive, Plainview, NY 11803-2500に記載されている。遺伝子および遺伝子産物の状態を評価するための典型的なプロトコルは、例えば、Ausubel et al., eds., 1995, Current Protocols In Molecular Biology, Units 2(Northern Blotting), 4(Southern Blotting), 15(Immunoblotting) and 18(PCR Analysis)に見られる。
導入遺伝子の発現はさらに、目的の遺伝子によってコードされる対応するタンパク質産物(例えば、CASQ2)の濃度または相対的存在量を測定することによって決定することができる。タンパク質レベルは、当該技術分野で既知の標準的な検出技術を用いて評価することができる。本明細書に記載の組成物および方法での使用に適したタンパク質発現アッセイには、プロテオミクス法、免疫組織化学的および/またはウエスタンブロット分析、免疫沈降、分子結合アッセイ、ELISA、酵素結合免疫濾過アッセイ(ELIFA)、質量分析、質量分析免疫アッセイ、および生化学的酵素活性アッセイが含まれる。特に、プロテオミクス法を使用して、マルチプレックスで大規模なタンパク質発現データセットを生成することができる。プロテオミクス法は、質量分析を利用して、ポリペプチド(例えば、タンパク質)および/または標的タンパク質のパネルに特異的な捕捉試薬(例えば、抗体)を利用するペプチドマイクロアレイを検出および定量化して、サンプル(例えば、単一細胞サンプルまたは複数細胞集団)で発現されるタンパク質の発現レベルを同定および測定し得る。
本明細書に記載のCASQ2導入遺伝子は、本明細書に記載されるように、優性CPVTを患っているヒト患者などの患者への投与のためのビヒクルに組み込まれてもよい。CASQ2導入遺伝子を含む、ウイルスベクターなどのベクターを含む医薬組成物は、当該技術分野で既知の方法を用いて調製することができる。例えば、該組成物は、生理学的に許容される担体、賦形剤、または安定剤(Remington’s Pharmaceutical Sciences 16th edition, Osol, A. Ed.(1980)、参照により本明細書に組み込まれる)を使用して、凍結乾燥製剤または水溶液などの所望の形態で調製することができる。
導入遺伝子を含む、本明細書に記載のAAVベクターおよび他のベクターなどのウイルスベクターは、様々な投与経路によって患者(例えば、ヒト患者)に投与され得る。投与経路は、例えば、疾患の発症および重症度によって異なり、例えば、静脈内、髄腔内、皮内、経皮(transdermal)、非経口、筋肉内、鼻腔内、皮下、経皮的(percutaneous)、気管内、腹腔内、動脈内、血管内、吸入、灌流、洗浄、および経口投与を含む。血管内投与には、患者の血管系への送達が含まれる。いくつかの実施形態において、投与は、静脈(静脈内)であると考えられる血管への投与であり、いくつかの投与において、投与は、動脈(動脈内)であると考えられる血管への投与である。静脈には、内頸静脈、末梢静脈、冠状静脈、肝静脈、門脈、大伏在静脈、肺静脈、上大静脈、下大静脈、胃静脈、脾静脈、下腸間膜静脈、上腸間膜静脈、頭静脈、および/または大腿静脈が含まれるが、これらに限定されない。動脈には、冠状動脈、肺動脈、上腕動脈、内頸動脈、大動脈弓、大腿動脈、末梢動脈、および/または繊毛動脈が含まれるが、これらに限定されない。送達は、細動脈または毛細血管を介して、または細動脈または毛細血管へと行われ得ると考えられる。
材料および方法
動物の使用
動物を、イタリアのカルコにあるCharles River Laboratoriesで維持および飼育し、表現型の特徴付けのためにICS MaugeriSpa-SBに移送した。動物を、パヴィア大学によって動物福祉のための委員会で承認されたプロトコルに従って維持および研究した。
本実施例に記載する実験では、ヒトRYR2R4997C突然変異の表現型を再現する優性CPVTのヘテロ接合性RYR2R4496C/+ノックインマウスモデルを使用した。このマウスモデルの製造に関する詳細は、US7,741,529に記載されており、その開示は、RYR2R4496C/+ノックインモデルの生成に関連するため、参照により本明細書に組み込まれる。
これらの実験で使用したベクターのうちの1つの設計の詳細な説明は、US8,859,517に提供されている。簡単に説明すると、UTR配列なしの、野生型マウスCASQ2(NCBI参照配列番号NM_009814.2)のコード配列を含む、偽型化アデノ随伴血清型9ベクター(AAV2/9)を生成した。野生型マウスCASQ2をpGEM-T-Easyベクター(Promega)にクローニングした。EcoRIを使用した酵素消化により、CASQ2導入遺伝子に対応するインサートをpGEMベクターから切り出し、ビスシストロン性pIRESベクター(BD Biosciences,Cat. No:631605,Clontech、パロアルト、カリフォルニア州、米国)においてサブクローニングした。その後、CASQ2導入遺伝子に対応するフラグメントとそれに続くIRES配列を、特定のプライマーを使用したPCR増幅によってサブクローニングした(Not1酵素部位を含むフォワード5’CACAGCGGCCGCACAATGAAGAGGATTTACCTGCTCATGG-3’(配列番号5)およびリバース5’-CGAAGCATTAACCCTCACTAAAGGG-3’(配列番号6))。アンプリコンを、NotIによる酵素消化によって、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターコアファシリティ(ティゲム、ナポリ、イタリア)によって提供されたアデノウイルスバックボーンベクターpAAV-2.1-eGFP、血清型9(ウシ成長ホルモン(BGH)polyA配列およびCMVプロモーターを含む)に挿入した。全てのプラスミドの配列を決定した。
RYR2R4496C/+マウスの心臓組織からおよびAAV9-WT-mCASQ2IRES-eGFPウイルスベクターに感染したRYR2R4496C/+ヘテロ接合性ノックインマウスからの総RNAを、RNeasyミニキット(Qiagen)で精製した。反応あたり1μgのテンプレートRNAの総量を、iScript cDNA合成キット(Bio-Rad Laboratories、Inc.、米国)を用いて行ったRT-PCRアッセイに使用した。種々の目的の遺伝子(RYR2CASQ2、トリアジン、ジャンクチン)および参照遺伝子(GAPDH)のmRNAのリアルタイム定量化を、CFX96検出モジュール(Bio-Rad Laboratories、Inc.)を使用して光学96ウェルプレートで実施した。全サンプルを、特定のプライマーミックスと既に報告されたプライマー(Denegri et al., Circulation 129:267381(2014))を含む20ngのcDNAテンプレートを使用して、SsoFast EvaGreen Supermixで3回分析した。リアルタイムPCRを、CFX96リアルタイムPCR検出システムを用いて行い、Bio-Rad CFX96 Managerソフトウェア(バージョン1.5)を用いて分析した。
図1に示す構成物を含むAAVベクターを、生後8日目(P8)に25ゲージの注射器でn=4の新生児マウスに6.4x1011ゲノムコピーの用量で100μlの精製ウイルスの腹腔内注射により送達した。合計n=5の同腹仔は治療されなかった。
図2に示すように。CASQ2導入遺伝子をコードするAAVベクターのRYR2R4996C/+マウスへの投与の結果、カフェインおよびエピネフリン誘発性不整脈が完全に抑制された。β-アドレナリン作動性刺激後、n=4のAAVCASQ2治療マウスはいずれも不整脈活動を示さなかったが、n=5の未治療マウスは全て不整脈を示した。また、RYR2R4996C/+マウスにおけるCASQ2送達の治療効果は、RYR2または膜関連タンパク質であるトリアジンおよびジャンクチンの活性に依存しなかった。図3に示すように、AAVCASQ2ベクターの投与の結果、心筋細胞におけるCASQ2発現が上昇したが、該細胞におけるRYR2、トリアジン、またはジャンクチンの発現は実質的に変化しなかった。
当該技術分野で既知である従来の分子生物学技術を使用して、配列番号1のアミノ酸配列を有する野生型ヒトCASQ2タンパク質(または配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも85%の配列同一性を有するその変種)などのCASQ2タンパク質をコードする遺伝子を、ウイルスベクターに組み込みヒト患者への投与のために配合することができる。例えば、優性CPVTを患っている患者に、心筋細胞におけるCASQ2発現を促進する転写調節エレメントの制御下でCASQ2導入遺伝子を含むAAVベクターを投与することができる。AAVベクターは、AAV2の5’および3’逆方向末端反復の間にCASQ2導入遺伝子を組み込み、AAV8またはAAV9キャプシドタンパク質(AAV2/8またはAAV2/9ベクターなど)によってキャプシド形成される偽型化ベクターであってもよい。AAVベクターは、特に、静脈内、筋肉内、または皮下などの様々な投与経路によって対象に投与することができる。
本明細書で述べられている全ての出版物、特許、及び特許出願は、あたかも、それぞれ独立した出版物又は特許出願が具体的且つ個別に参照により組み込まれることが示されているのと同程度に、参照により本明細書に組み込まれる。
Claims (22)
- カルセクエストリン2(CASQ2)をコードする導入遺伝子を含む、必要とするヒト患者における優性カテコラミン誘発多形性心室頻拍(CPVT)の治療のための組成物であって、
前記患者は、リアノジン受容体2(RYR2)をコードする内因性遺伝子において機能獲得型突然変異を示す、
組成物。 - カルセクエストリン2(CASQ2)をコードする導入遺伝子を含む、優性CPVTを有すると診断されたヒト患者における不整脈の低減のための組成物であって、
前記患者は、リアノジン受容体2(RYR2)をコードする内因性遺伝子において機能獲得型突然変異を示す、
組成物。 - カルセクエストリン2(CASQ2)をコードする導入遺伝子を含む、優性CPVTを有すると診断されたヒト患者におけるカルシウム恒常性の回復のための組成物であって、
前記患者は、リアノジン受容体2(RYR2)をコードする内因性遺伝子において機能獲得型突然変異を示す、
組成物。 - カルセクエストリン2(CASQ2)をコードする導入遺伝子を含む、優性CPVTを有すると診断されたヒト患者における遅延後脱分極事象の低減のための組成物であって、
前記患者は、リアノジン受容体2(RYR2)をコードする内因性遺伝子において機能獲得型突然変異を示す、
組成物。 - 前記RYR2の突然変異は、RYR2アゴニストと接触していない心筋細胞と比較して、前記RYR2アゴニストと接触している心筋細胞における細胞質カルシウム放出の増加をもたらす、請求項1~4のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記RYR2の突然変異は、R4497C、N4104K、N4895D、R176Q、G178A、R420W、L433P、P1067S、S2246L、G2273R、F2307L、E2311D、L2344P、R2474S、T2504M、K3717R、L3778F、G3926D、G3946S、Q4159P、V4319-K4324dup、R4651I、V4771I、F4851L、A4860G、I4867M、P4902S、および/またはR4959Qである、請求項1~5のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記突然変異は、ヘテロ接合性である、請求項1~6のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記CASQ2導入遺伝子は、配列番号1のアミノ酸配列と少なくとも85%同一、好ましくは少なくとも90%同一、より好ましくは少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする、及び/又は前記CASQ2導入遺伝子は、配列番号2の核酸配列と少なくとも85%同一、好ましくは少なくとも90%同一、より好ましくは95%同一である核酸配列を有する、請求項1~7のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記CASQ2導入遺伝子は、配列番号1のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする、及び/又は配列番号2の核酸配列を有する、請求項8に記載の組成物。
- 前記組成物は、ベクター、好ましくは前記ベクターがウイルスベクターである、より好ましくは前記ウイルスベクターが、アデノ関連ウイルス(AAV)、アデノウイルス、レンチウイルス、レトロウイルス、ポックスウイルス、バキュロウイルス、単純ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、及び合成ウイルスから成る群から選択される、によって前記患者に送達される、請求項1~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記合成ウイルスは、キメラウイルス、モザイクウイルス、または偽型化ウイルスである、および/または、外来タンパク質、合成ポリマー、ナノ粒子、または小分子を含む、請求項10に記載の組成物。
- 前記ウイルスベクターは、AAVである、より好ましくは前記AAVは、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9、またはAAVrh74血清型である、請求項10に記載の組成物。
- 前記ウイルスベクターは、偽型化AAVである、好ましくは前記偽型化AAVは、AAV2/8又はAAV2/9である、請求項10に記載の組成物。
- 前記AAVは、組み換えキャプシドタンパク質を含む、請求項12に記載の組成物。
- 前記組成物は、リポソーム、小胞、合成小胞、エキソソーム、合成エキソソーム、デンドリマー、またはナノ粒子によって前記患者に送達される、請求項1~9のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記導入遺伝子は、心筋細胞において前記CASQ2の発現を誘導するプロモーターに作動可能に連結される、好ましくは、前記プロモーターは、デスミンプロモーター、サイトメガロウイルスプロモーター、ミオシン軽鎖2プロモーター、アルファアクチンプロモーター、トロポニン1プロモーター、Na+/Ca2+交換体プロモーター、ジストロフィンプロモーター、クレアチンキナーゼプロモーター、アルファ7インテグリンプロモーター、脳性ナトリウム利尿ペプチドプロモーター、アルファBクリスタリン/小熱ショックタンパク質プロモーター、アルファミオシン重鎖プロモーター、または心房性ナトリウム利尿因子プロモーターである、より好ましくは、前記プロモーターは、デスミンプロモーターである、請求項1~15のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物を前記患者に投与すると、前記患者の心臓細胞においてCASQ2の発現が増加する、好ましくは、前記心臓細胞は心筋細胞である、請求項1~16のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記CASQ2の発現は、前記細胞におけるCASQ2タンパク質またはCASQ2mRNAを測定することによって評価される、請求項17に記載の組成物。
- 前記CASQ2mRNAの発現は、前記細胞において約1.5倍~約3.5倍増加する、好ましくは前記細胞において約2倍~約3倍増加する、より好ましくは前記細胞において約2.5倍~約3倍増加する、請求項18に記載の組成物。
- 前記組成物を前記患者に投与すると、RYR2、トリアジン、および/またはジャンクチンの発現は、前記患者の心臓細胞において実質的に変化しない、請求項1~19のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物は、静脈内、髄腔内、皮内、経皮、非経口、筋肉内、鼻腔内、皮下、経皮的、気管内、腹腔内、動脈内、血管内、吸入、灌流、洗浄、および/または経口投与によって前記患者に投与される、請求項1~20のいずれか一項に記載の組成物。
- リアノジン受容体2(RYR2)をコードする内因性遺伝子において機能獲得型突然変異を示す、必要とするヒト患者における優性カテコラミン誘発多形性心室頻拍(CPVT)の治療のためのキットであって、
請求項1~21のいずれか一項に記載の組成物と、
添付文書と、
を含み、
前記添付文書は、前記組成物の治療上の有効量を前記患者に投与するようにキットのユーザーに指示するものである、前記キット。
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