JP7377937B2 - オリゴ糖の還元末端糖の定量的分析方法 - Google Patents
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Description
一般に、糖の定量には、酸化還元を利用した比色法、酵素を利用した方法、及び液体高速クロマトグラフィー(HPLC)を用いた分析法等が多く利用されている。アガロオリゴ糖の機能性を示すためには、それに含まれる機能性成分であるオリゴ糖を定量することが必要である。しかし、一般的に糖の分析法として用いられている比色法やHPLC法は夾雑物の影響を受けやすく、また加水分解やラベル化の効率により、定量精度に問題がある。また、還元末端の3,6-anhydro-L-galactoseの安定性の問題から、標準物質(2、4、6、8糖等のオリゴ糖)の精製が難しく、標準品の規格化や安定供給ができていない。このため、アガロオリゴ糖に含まれるオリゴ糖を定量的に分析する方法は確立できていない。
好ましくは、本発明は、前述するアガロオリゴ糖のように、各種有用な生理活性作用を有する複数のオリゴ糖類を有する組成物について、それに含まれる還元末端糖の割合を定量的に分析する方法を提供することを課題とする。
また、アガロオリゴ糖の13C-NMRスペクトルにおいても、β型アノマーのC-1,C-3及びC-4のNMRシグナルは、特異的な位置(各92.6ppm、85.6ppm、88.3ppm付近)に現れ、末端に位置していない3,6-anhydro-L-galactoseのC-1,C-3及びC-4のNMRシグナルとも、また分子内及び分子外の他のカーボンのNMRシグナルとも重複しないことを確認した。
(I-1)還元末端を有するオリゴ糖類を少なくとも1種含有する組成物に含まれる還元末端糖を定量的に分析する方法であり、下記の工程を有することを特徴とする方法:
(1)α型還元末端糖(α型アノマー)とβ型還元末端糖(β型アノマー)とが平衡状態にあるオリゴ糖類含有組成物を、qNMRに供する工程、
(2)qNMRにて、β型アノマーのアノマー炭素に結合したプロトン(アノメリックプロトン)に由来するシグナル、又はβ型アノマーのC-1,C-3及びC-4の少なくとも1つの炭素に由来するシグナルを測定し、オリゴ糖類含有組成物中のβ型アノマーの含量を算出する工程、及び
(3)前記工程で算出されるオリゴ糖類含有組成物中のβ型アノマーの含量と、当該オリゴ糖類含有組成物におけるα型アノマーとβ型アノマーとの存在比から、オリゴ糖類含有組成物中のα型アノマーとβ型アノマーの総量を算出する工程。
(I-2)前記還元末端を有するオリゴ糖類を少なくとも1種含有する組成物がアガロオリゴ糖である、(I-1)に記載する定量方法。
(I-3)前記還元末端を有するオリゴ糖類が、アガロビオース、アガロテトラオース、アガロヘキサオース、アガロオクタオース、アガロデカオース、及びそれらの修飾体よりなる群から選択される少なくとも1種である、(I-1)又は(I-2)に記載する定量方法。
(I-4)前記還元末端糖が3,6-anhydro-L-galactoseである、(I-1)~(I-3)のいずれかに記載する定量方法。
(I-5)前記(2)工程で実施するqNMRが、1H-qNMRであり、β型アノマーのアノメリックプロトンに由来するシグナルのピークが、分子内及び分子外の他のプロトンに由来するシグナルのピークと重複しないことを特徴とする、(I-1)~(I-4)のいずれかに記載する定量方法。
(I-6)β型アノマーのアノメリックプロトンに由来するシグナルが、4 ppm~6 ppm、好ましくは5 ppm又はその付近にピークを有するものである、(I-1)~(I-5)のいずれかに記載する定量方法。
(I-7)前記(1)工程の前に、還元末端を有するオリゴ糖類を少なくとも1種含有する組成物を水溶液に溶解し、還元末端糖をα型アノマーとβ型アノマーとの平衡状態に調整する工程を有する、(I-1)~(I-6)のいずれかに記載する定量方法。
(I-8)前記組成物が、少なくともアガロビオース、アガロテトラオース、アガロヘキサオース、及びアガロオクタオースを含有する組成物であり、前記水溶液が10mM 酢酸緩衝液(pH 5)またはそれと同等の緩衝液である、(I-7)に記載する定量方法。
(II-1)還元末端を有するオリゴ糖類を少なくとも1種含有する組成物について、定量NMRに供する試料を調製する方法であり、オリゴ糖類含有組成物を水溶液に溶解し、還元末端糖をα型アノマーとβ型アノマーとの平衡状態に調整する工程を有する、前記方法。
(II-2)前記オリゴ糖類が、アガロビオース、アガロテトラオース、アガロヘキサオース、アガロオクタオース、アガロデカオース、及びそれらの修飾体よりなる群から選択される少なくとも1種である、(II-1)に記載する定量NMR用試料調製方法。
(II-3)前記組成物が、少なくともアガロビオース、アガロテトラオース、アガロヘキサオース、及びアガロオクタオースを含有する組成物である、(II-1)又は(II-2)に記載する定量NMR用試料調製方法。
(II-4)前記組成物がアガロオリゴ糖である、(II-1)~(II-3)のいずれかに記載する定量NMR用試料調製方法。
(II-5)前記水溶液が、10mM 酢酸緩衝液(pH 5)またはそれと同等の緩衝液である、(II-1)~(II-4)のいずれかに記載する定量NMR用試料調製方法。
本発明が対象とする「オリゴ糖」は2糖~10糖であって、末端に還元糖(本発明ではこれを「還元末端糖」という)を有する糖である。このため、本願発明でいうオリゴ糖には、スクロースのように、グルコースとフルクトースの還元末端同士が結合することで還元末端が消失した、非還元性のオリゴ糖は含まれない。オリゴ糖として、制限されないものの、好ましくはアガロビオース(2糖)、アガロテトラオース(4糖)、アガロヘキサオース(6糖)、アガロオクタオース(8糖)、またはアガロデカオース(10糖)を挙げることができる。
(1)α型還元末端糖(α型アノマー)とβ型還元末端糖(β型アノマー)とが平衡状態にあるオリゴ糖類含有組成物を、qNMRに供する工程、
(2)qNMRにて、β型アノマーのアノマー炭素に結合したプロトン(アノメリックプロトン:H-1)に由来するシグナル、又はβ型アノマーのC-1,C-3及びC-4の少なくとも1つの炭素に由来するシグナルを測定し、オリゴ糖類含有組成物中のβ型アノマーの含量を算出する工程、及び
(3)前記工程で算出されるオリゴ糖類含有組成物中のβ型アノマーの含量と、当該オリゴ糖類含有組成物におけるα型アノマーとβ型アノマーとの存在比から、オリゴ糖類含有組成物中のα型アノマーとβ型アノマーの総量を算出する工程。
例えば、測定対象物質が3,6-anhydro-L-galactoseまたはその修飾体である場合、前記水溶液としては、制限されないものの、pH8以下の緩衝液、例えば酢酸緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、ギ酸緩衝液、TFA塩酸緩衝液などの緩衝液を挙げることができる。好ましくはpH3~7、より好ましくはpH4~6のpH範囲を有する緩衝液である。好ましくは酢酸緩衝液である。また、これらの緩衝液の濃度は、上記の限り、制限されないものの、例えば1~100 mMの範囲で適宜設定調整することができる。好ましくは5~50 mM、より好ましくは5~30 mM、さらに好ましくは5~20 mMである。
測定対象物質が3,6-anhydro-L-galactoseまたはその修飾体である場合、内標物質として、準表認証標準物質(CRM)である、3-(Trimethylsilyl)-1-propane-1,1,2,2,3,3-d6-sulfonic Acid Sodium Salt((DSS-d6)を使用することができる。
また、1H-qNMR測定法を用いて、測定対象物質3,6-anhydro-L-galactoseまたはその修飾体を測定する場合、観測中心(Offset / x_offset)を5 ppm付近にしたうえで、それが含まれるように、観測スペクトル幅(Spectral Width / x_sweep)が20 ppm程度となるように観測スペクトル領域を設定することができる。また、測定対象物質がそれ以外のオリゴ糖類である場合は、そのβアノメリックプロトンとqNMR referenceのシグナルの間に観測中心を設定し、観測幅の中に目的のシグナルが入るように、観測スペクトル領域を設定すればよい。測定対象に水が多く含まれる場合は、水のピークを除去する操作(水消しのパルスシーケンスを入れて測定する)を行うことができる。
本発明のqNMR用試料の調製方法は、還元末端を有するオリゴ糖類を少なくとも1種含有する組成物(単一オリゴ糖類含有組成物又は複数オリゴ糖類含有組成物)について、qNMRに供する試料を調製する方法であり、オリゴ糖類含有組成物を水溶液に溶解し、還元末端糖をα型アノマーとβ型アノマーとの平衡状態に調整する工程を有することを特徴とする。
単一オリゴ糖類含有組成物又は複数オリゴ糖類含有組成物が、3,6-anhydro-L-galactose又はその修飾体を還元末端にもつオリゴ糖類を含有する組成物である場合、前記水溶液として、好ましくは10mM 酢酸緩衝液(pH 5)またはそれと同等の緩衝液を用いることができる。
10mM 酢酸緩衝液(pH 5)と同等の緩衝液としては、制限されないものの、pH8以下の緩衝液、例えば酢酸緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、ギ酸緩衝液、TFA塩酸緩衝液などの緩衝液を挙げることができる。好ましくはpH3~7、より好ましくはpH4~6のpH範囲を有する緩衝液である。好ましくは酢酸緩衝液である。また、これらの緩衝液の濃度は、上記の限り、制限されないものの、例えば1~100 mMの範囲で適宜設定調整することができる。好ましくは5~50 mM、より好ましくは5~30 mM、さらに好ましくは5~20 mMである。
(1)試料
(i)測定試料(Sample):
アガロオリゴ糖:寒天の酸加水物。アガロビオース(2糖)、アガロテトラオース(4糖)、アガロヘキサオース(6糖)、及びアガロオクタオース(8糖)を主成分とする複数のオリゴ糖類を含む混合物(シオノギヘルスケア社製(Lot No. AG122012))
アガロビオース(2糖):シオノギヘルスケア社製
Balnk Capsule:HPMC(クオリカプス社製)
Blank test Food:乾燥澱粉、ステアリン酸カルシウム、及び微粒二酸化ケイ素を含む混合物(シオノギヘルスケア社製)
グルコサミン+アガロオリゴ糖:N-アセチルグルコサミン、II型コラーゲン、アガロオリゴ糖、還元麦芽糖水飴、粉末セルロース、ステアリン酸カルシウム、微粒二酸化ケイ素、ビタミンB12、ビタミンB6、及び葉酸を含む混合物(シオノギヘルスケア社製)
トトノエール:ミルクオリゴ糖、還元麦芽糖水飴、アガロオリゴ糖、デキストリン、ビフィズス菌乾燥粉末、及びリン酸カルシウムを含む混合物(シオノギヘルスケア社製)
(ii)認証標準物質(CRM):
3-(Trimethylsilyl)-1-propane-1,1,2,2,3,3-d6-sulfonic Acid Sodium Salt((DSS-d6)(分子量:224.36)、富士フイルム和光純薬社製(核磁気共鳴スペクトル測定用)、Lot No. 6525
(iii)試薬
重水 (D2O) :Sigma-Aldrich Co. LLC(核磁気共鳴スペクトル測定用、99.9 atom)、Lot No. MKBJ18826V
重酢酸-d4 :Cambridge Isotope Laboratories Inc.、Lot No.10E227
重酢酸ナトリウム-d3 :Cambridge Isotope Laboratories Inc.、Lot No. PR-19178E
NMR装置:JEOL-ECZ400S(日本電子社製)、Varian Unity-Inova 600 (Agilent社製) 超精密天秤:UMX2(Mettler-Toledo, LLC)
(A)1H-qNMR測定
(i)共通項目
測定用ソフトウエア:JEOL Delta v5.3(日本電子社製)
対象測定とする核(Nucleus):1H
観測周波数:400 MHz以上
デジタルフィルタ(Digital Filter):TRUE
パルス角度(Pulse Angle):90°
取り込み時間(Acquisition Time):4秒
デジタル分解能(Digital Resolution):0.25 Hz
遅延時間(Relation Delay):60秒
13C核デカップリング(Decouler noise moduration):MPF8
積算回数(Number of Scans):64回
ダミースキャン(Dummy Scan):2回
スピニング(Spin ):off
(ii)個別項目
測定試料用に設定したパラメータは、以下の通りである。
観測中心(Offset):5 ppm
観測スペクトル幅(Spectral Width): -5~15 ppm
測定用ソフトウエア :Varian Unity-Inova(Agilent製)
対象測定とする核(Nucleus / x_domein):13C
測定シークエンス:gated-decouping without NOE法
観測周波数:150.7 MHz
観測スペクトル幅(Spectral Width / x_sweep): 49751Hz ppm
デジタルフィルタ(Digital Filter / auto_filter):TRUE
パルス角度(Pulse Angle / x_angle):90°
取り込み時間(Acquisition Time / x_acq_time):1.4秒
デジタル分解能(Digital Resolution / x_resolution):0.7 Hz
遅延時間(Relation Delay):10秒
1H核デカップリング(Temperature / temp_set):waltz
積算回数(Number of Scans /scans):23776回
ダミースキャン(Dummy Scan / x_prescans):8回
スピニング(Spin / spin_state):Non
観測中心(Offset / x_offset):50 ppm
(A)1H-qNMR解析
(i)共通項目
解析用ソフトウエア:Mnova(Mestrelab Research S.L.)
窓関数処理(Window function):なし
ゼロファイリング(Zero-Filing):1
参照(qNMR Reference):CRMを0ppmとする
位相補正(Phase correction):マニュアル法
ベースライン補正(Baseline correction):マニュアル法
測定試料用に設定したパラメータは、以下の通りである。
ベースライン補正:CRM(DDS-d6)を0ppmに設定後、6.0~2.7 ppm及び0.5~-0.5 ppm付近が直線になるように補正
CRMの積分範囲(DDS-d6):0.5~-0.5ppm
測定試料の積分範囲(アガロオリゴ糖):5.037~4.983 ppm
解析用ソフトウエア:Mnova(Mestrelab Research S.L.)
窓関数処理(Wind fator):Line broadning 1.0Hz
ゼロファイリング(Zero-Filing):1
参照(Reference):CRMを0ppmとする
位相補正(Phase correction):マニュアル法
ベースライン補正(Baseline correction):Whittaker スムーサー法
測定試料としてアガロオリゴ糖を、定量基準物質(qNMR reference)としてCRMであるDDS-d6を用いて、アガロオリゴ糖に含まれる各オリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6 anhydro-galactose)の総量を、1H-qNMRを用いて、下記の方法により定量した。
1H-qNMR測定に供するアガロオリゴ糖及びCRMを溶解するための水溶液として、10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)を用いた。
具体的には、まず重酢酸-d4(分子量 : 64.08)をメスフラスコに6.4 mg秤取し、重水で10 mLにメスアップして、10 mM 重酢酸水溶液を調製する。別途、重酢酸ナトリウム-d3(分子量 : 85.05)をメスフラスコに17.0 mg秤取し、重水で20 mLにメスアップして、10 mM 重酢酸ナトリウム水溶液を調製する。両水溶液を混合して、pH 5.0に調製し、10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)とする。
アガロオリゴ糖に含まれるオリゴ糖は、一般に水溶液中で、末端の還元糖(3,6 anhydro-L-galactose)が環状のピラノース構造になる。これは、さらに1位の炭素(アノマー炭素)に結合する水酸基(アノメリックプロトン)が5位水酸基とシス配置の関係にあるα型アノマーと、トランス配置の関係にあるβ型アノマーとの平衡状態になる。アガロオリゴ糖を溶解するための水溶液として、還元末端糖をα型アノマーとβ型アノマーとの平衡状態に比較的早く調整することが好ましいが、本実験では、前夜に溶解し翌日に測定する実験スケジュール(放置時間15時間)に合わせて、その間に平衡状態になる条件として上記緩衝液を用いた。
・CRMを保管庫から出した後、速やかにデシケーター(乾燥剤:シリカゲル)に入れ、常圧で室温に戻るまで保った後、開封する。
・CRM を5 ~ 15 mg程度秤取した後、試験室環境(温度15~25℃、相対湿度20~80%)で30分以上放置する。
・測定試料(アガロオリゴ糖)を20.0±0.2 mg、及びCRMを1.0±0.1 mgとなるように、それぞれアルミ製のサンプルパンを用いてガラスバイアルに精密に秤取する。
・これに、ホールピペットを用いて、前記で調製した10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)1 mLを添加し、溶解させる。
・NMRチューブに、液高 約5 cm程度充填した後、保管庫内で、30℃で15時間保管する。
前記方法で調製した1H-qNMR測定用試料を保管庫から取り出し、NMR 装置に供して、平衡状態に達した1H-qNMR 測定を行った。1H-NMRスペクトルを図4に示す。
図4に示すように、アガロオリゴ糖に含まれる各種のオリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6 anhydro-L-galactoseのピラノース構造物)のα型アノマー及びβ型アノマーの各アノメリックプロトン(H-1)、並びに重水のプロトン、及びCRM(DSS-d6)のプロトンに各々由来するシグナルのピークが検出された。またこの時、測定条件に水消しのパルスシークエンスを入れて定量することも可能である。
3,6 anhydro-L-galactoseのα型アノマーのアノメリックプロトン(H-1)に由来するシグナルのピークは、アガロオリゴ糖の末端にない3,6 anhydro-L-galactoseのプロトンのシグナルと末端にあるα- 3,6 anhydro-L-galactoseのプロトンのシグナルとが重複している。これに対して、化学シフト値5.037-4.983 ppmで検出されるシグナルピークは、他成分の妨害がなく、アガロオリゴ糖に含まれる各オリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6 anhydro-L-galactose)のβアノメリックプロトン(H-1)に固有のシグナルのピークであることが確認された。また、S/Nが762.5であり、定量限界を定量用シグナルのS/Nが100以上とする判定基準をみたしていた。このことから、1H-qNMRを用いて、アガロオリゴ糖に含まれる還元末端糖の総量を測定するためには、3,6-anhydro-β-L-galactoseを標的分子として、そのβアノメリックプロトン(H-1)由来のシグナルを測定することが有用であるといえる。
前記で得られた1H-qNMR測定結果をもとに、前述する条件で1H-qNMR解析を行い、アガロオリゴ糖に含まれる各オリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6-anhydro-L-galactoseのピラノース構造物)のβ型アノマー(標的分子)、及びCRMのシグナル(定量用)の積分値を得た。
次いで、得られた積分値を、前述する計算式に当てはめて、測定試料(アガロオリゴ糖)中に含まれる標的分子(β型アノマー)の総量を算出した。
同じ測定試料を対象として、3つのサンプルについて測定した結果を、表1に示す。
この存在比から、前記測定試料(アガロオリゴ糖)中に含まれる還元末端糖(3,6-anhydro-L-galactose)の総量は、23.0%と算出することができる。
測定試料としてアガロビオース(2糖)を、定量基準物質(qNMR refarence)としてCRMであるDDS-d6を用いて、実験例1と同じ方法で1H-qNMR測定及び1H-qNMR解析を行い、アガロビオース(2糖)の還元末端糖(3,6-anhydro-L-galactose)の総量を1H-qNMRにより測定した。
アガロビオース(2糖)を被験試料として、実験例1(2)の記載に従って、試料を溶解する溶媒(試料溶媒)として10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)を用いて、1H-qNMR測定用試料を調製した。これを、NMRチューブに、液高 約5 cm程度充填した後、保管庫内で、30℃で0~15時間保管した。保管期間中、経時的にサンプリングし、前記1H-qNMR測定に供して、α型アノマーのH-1のシグナル強度(積分値)とβ型アノマーのH-1のシグナル強度(積分値)との比(α型アノマーとβ型アノマーとの比)から、両者の平衡状態を確認した。
Α型アノマーとβ型アノマーの平衡状態に対する温度の影響を確認するために、前記で採用した保管温度30℃に代えて、15℃、20℃、35℃、及び40℃を採用して、上記(1)と同様にして、β型アノマーの存在比(%)(α型アノマーとβ型アノマーの総量を100%とする)を求めた。結果を図7に示す。
図7に示すように、平衡状態にあるα型アノマーとβ型アノマーの存在比は、アガロビオース(2糖)を溶解した1H-qNMR測定用試料の温度(測定温度)によって変化するものの、両者には高い直線性があることが確認された。このことから、1H-qNMR測定及び解析には、1H-qNMR測定用試料を一定の温度に設定し、設定した温度に対応したα型アノマーとβ型アノマーの存在比を採用することが必要である。
実験例1では、(2)で調製した1H-qNMR測定用試料を、NMRチューブに液高 約5 cm程度充填した後、保管庫内にて、30℃で15時間保管した後、1H-qNMR測定に供した。
本実験例3では、被験試料の安定性を評価するために、NMRチューブに充填した1H-qNMR測定用試料を、前記と同条件でさらに24時間、及び48時間保管した後、実験例1と同様に1H-qNMR測定に供した。その結果、いずれの場合も、前記表1と同じ結果(標的分子であるβ型アノマーの還元末端糖の含量:16.2%、SD:0.0、RSD:0.3%)が得られた。
このことから、アガロオリゴ糖に含まれるオリゴ糖類は、10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)中で比較的長く安定してα型アノマーとβ型アノマーとが平衡状態を形成していることが確認された。このことから、10mM 重酢酸ナトリウム緩衝液(pH 5.0)は、1H-qNMRを用いて、β型アノマーを標的分子としてアガロオリゴ糖に含まれる各オリゴ糖類中の還元末端糖を定量するための溶解溶媒(試料溶媒)として有用である。
試験試料として、下記に示すアガロオリゴ糖含有組成物1及び2(アガロオリゴ糖に他成分を添加した混合物)を用い、また定量基準物質(qNMR refarence)としてCRMであるDDS-d6を用いて、実験例1と同じ方法で1H-qNMR測定及び1H-qNMR解析を行い、アガロオリゴ糖含有組成物中の還元末端糖(3,6-anhydro-L-galactose)の総量を1H-qNMRにより測定した。
Blank test Food 20mg +アガロオリゴ糖(AG122012) 20mg
[アガロオリゴ糖含有組成物2]
Blank Capsule(1個)+ Blank test Food 100mg + アガロオリゴ糖(AG122012) 100mg
試験試料として、下記に示すアガロオリゴ糖含有組成物3及び4(アガロオリゴ糖に他成分を添加した混合物)を用い、また定量基準物質(IS)としてCRMであるDDS-d6を用いて、実験例1と同じ方法で1H-qNMR測定及び1H-qNMR解析を行い、アガロオリゴ糖含有組成物中の還元末端糖(3,6-anhydro-L-galactose)の総量を1H-qNMRにより測定した。
グルコサミン+アガロオリゴ糖:アガロオリゴ糖含有割合 22.1mg/100mg
[アガロオリゴ糖含有組成物4]
トトノエール:アガロオリゴ糖含有割合 13.3mg/100mg
測定試料として実験例1で使用した測定試料と同一ロットのアガロオリゴ糖(20.121mg)を、また定量基準物質(IS)としてCRMであるDSS-d6(1.0073mg)を用いて、各オリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6-anhydro-L-galactose)の総量を、13C-qNMRを用いて定量した。なお、13C-qNMR測定用試料の調製は、実験例1の(1)及び(2)に記載する方法を用いた。
図11に示すように、アガロオリゴ糖に含まれる各オリゴ糖類の末端に位置する還元糖(3,6-anhydro-L-galactoseのピラノース構造物)のβ型アノマーの炭素のうちC-1,C-3,及びC-4、並びにCRMの炭素に各々由来するシグナルのピークは、α型アノマーおよびアガロオリゴ糖の他のシグナルに重なることなく、分離して検出された。
その結果、標的分子であるβ型アノマーのC-1,C-3及びC-4に由来するシグナルから、アガロオリゴ糖に含まれる還元末端糖の総量が算出された(16.7%、SD:0.10、RSD:0.49%)。この総量は、実験例1において1H-qNMRを用いて定量した総量とほぼ同一であった。
このことから、アガロオリゴ糖中に含まれる還元末端糖の総量は、1H-qNMRだけでなく、13C-qNMRを用いても定量できることが示された。
Claims (4)
- アガロオリゴ糖を含有する組成物に含まれるオリゴ糖類の還元末端糖を定量的に分析する方法であり、下記の工程を有することを特徴とする方法:
(0)前記アガロオリゴ糖含有組成物をpH3~8の水溶性緩衝液に溶解し、静置して、オリゴ糖類のα型還元末端糖(α型アノマー)とβ型還元末端糖(β型アノマー)とを平衡状態にする工程、
(1)α型還元末端糖(α型アノマー)とβ型還元末端糖(β型アノマー)とが平衡状態にあるアガロオリゴ糖含有組成物を、定量NMRに供する工程、
(2)定量NMRにて、β型アノマーのアノマー炭素に結合したプロトン(アノメリックプロトン)に由来する化学シフト値5.037-4.983 ppmで検出されるシグナル、又はβ型アノマーのC-1, C-3及びC-4の少なくとも1つの炭素に由来するシグナルを測定し、アガロオリゴ糖含有組成物中のβ型アノマーの含量を算出する工程、及び
(3)前記工程で算出されるアガロオリゴ糖含有組成物中のβ型アノマーの含量と、当該アガロオリゴ糖含有組成物におけるα型アノマーとβ型アノマーとの存在比から、アガロオリゴ糖含有組成物中のα型アノマーとβ型アノマーの総量を算出する工程。 - 前記オリゴ糖類が、アガロビオース、アガロテトラオース、アガロヘキサオース、アガロオクタオース、アガロデカオース、及びこれらの修飾体よりなる群から選択される少なくとも1種であり、
前記修飾体が、前記オリゴ糖類が有する水酸基の少なくとも1つがアルコキシ化したアルコキシ体、硫酸化した硫酸化体、及びアセチル化したアセチル体である、請求項1に記載する定量方法。 - 前記還元末端糖が3,6-anhydro-L-galactoseである、請求項1又は2に記載する定量方法。
- 前記水溶性緩衝液が、pH4~6の5~20mM酢酸緩衝液である、請求項1~3のいずれかに記載する定量方法。
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