JP7357978B2 - ｍＴＯＲ活性化剤を含む体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物及びこれを用いた逆分化効率の増進方法 - Google Patents

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Description

発明の詳細な説明
〔技術分野〕
本特許出願は、２０１９年１１月２９日に大韓民国特許庁に提出された大韓民国特許出願第１０－２０１９－０１５７３６１号に対して優先権を主張し、該特許出願の開示事項は本明細書に参照によって組み込まれる。
本発明は、ｍＴＯＲ（ｍａｍｍａｌｉａｎ ｔａｒｇｅｔ ｏｆ ｒａｐａｍｙｃｉｎ）活性化剤を含む体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物及びこれを用いた逆分化効率の増進方法に関し、さらに詳細には、体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる逆分化因子を形質導入させた後、ＭＨＹ１４８５（４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン）を処理することによって、誘導万能幹細胞への逆分化効率を増加させる方法に関する。
〔背景技術〕
幹細胞治療剤は、生産のためには、その供給源となる幹細胞の大量体外培養が必須である。また、幹細胞治療剤は、安全かつ経済的であってこそ、臨床で細胞治療剤として使用できる。しかしながら、現在のヒト全能性幹細胞の増殖培養方法は、動物由来支持細胞を用いるか、又は動物由来産物を含んでいる特殊ゲルを塗布した容器で培養するため、異種蛋白の汚染による安全性に対する懸念が発生し得る。また、高価の特殊ゲルを用いる増殖培養方法は、経済的な面から見れば、大量生産に適していない。
一方、ｍＴＯＲは、容量、時間、抑制の有無又は活性化の有無などの様々な条件及び方法によって、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化に影響を及ぼすことが知られている。例えば、既存の通念は、逆分化因子を体細胞に導入させる前にオートファジーが増加すると、大規模な細胞内再配列が起き、その後、細胞呼吸が減少しながら節約したＡＴＰを逆分化誘導に活用できるということである。
しかしながら、逆分化が抑制又は活性化される条件は、未だ明確に定義されずにいる。
〔発明の概要〕
〔発明が解決しようとする課題〕
本発明者らは、体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる逆分化因子を形質導入させた後にｍＴＯＲ活性化剤を処理すると、誘導万能幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ；ｉＰＳ）への逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率が顕著に上昇することを確認した。
そこで、本発明の目的は、ｍＴＯＲ活性化剤を含む、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物を提供することである。
本発明の他の目的は、体細胞にｍＴＯＲ活性化剤を処理して培養する培養段階を含む、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率の増進方法を提供することである。
本発明のさらに他の目的は、ｍＴＯＲ活性化剤の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進の用途に関することである。
〔課題を解決するための手段〕
本発明は、ｍＴＯＲ活性化剤を含む、体細胞から誘導万能幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ；ｉＰＳ）への逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率増進用組成物及びこれを用いた逆分化効率の増進方法に関する。
本発明者らは、体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる逆分化因子を形質導入させた後、ｍＴＯＲ活性化剤である４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミンを処理すると、誘導万能幹細胞への逆分化効率が顕著に上昇することを確認した。
以下、本発明をさらに詳細に説明する。
本発明の一態様は、ｍＴＯＲ活性化剤を含む、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物である。
本発明の一具現例において、前記ｍＴＯＲ活性化剤は、４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン又はその誘導体であるが、これに限定されるものではない。
ｍＴＯＲ活性化剤は、逆分化因子の導入後の逆分化機転においてｍＴＯＲを活性化させる物質を意味する。ｍＴＯＲ活性化剤は、ｍＴＯＲを活性化させる機転によってＣＸＣＲ２及びｃＭＹＣの発現を増加させ、オートファジーの活性を減少させる。前記機転により、ｍＴＯＲ活性化剤は逆分化効率を増進させる効果を呈する。したがって、ｍＴＯＲ活性化剤は、逆分化因子の導入後の逆分化機転においてｍＴＯＲを活性化させ得る物質であれば、制限なく使用可能である。
本発明の一具現例において、前記ＭＨＹ１４８５の処理濃度は、０．１～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～３．０ｕｇ／ｍＬ、又は０．８～３．０ｕｇ／ｍＬ、例えば、１．０～３．０ｕｇ／ｍＬであるが、これに限定されるものではない。
本発明の一具現例において、前記組成物は、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる群から選ばれる１種以上のタンパク質をコードする核酸配列をさらに含む。前記タンパク質は逆分化因子であって、体細胞に形質導入されて誘導万能幹細胞への逆分化を誘導する機能を果たすことができる。
本発明の一具現例において、前記体細胞は、ヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｈｕｍａｎ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ；ＨＵＶＥＣ）、ヒト線維芽細胞（Ｈｕｍａｎ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ；ＨＤＦ）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ；ＨＰＣ）からなる群から選ばれる１種以上である。
本発明の一具現例において、前記胎盤由来細胞は、ヒト絨毛膜板から分離されて培養された胎盤由来線維様細胞である。
本発明の一具現例において、前記組成物はＣＸＣＲ２の活性化剤をさらに含み、前記活性化剤はリガンド（ｌｉｇａｎｄ）であり、前記ＣＸＣＲ２のリガンドは、ＧＲＯ－α、ＧＲＯ－β、ＧＲＯ－γ、ＧＣＰ－２、ＮＡＰ－２、ＥＮＡ－７８及びＩＬ－８からなる群から選ばれる１種以上であり、例えば、ＧＲＯ－α又はＩＬ－８であるが、これに限定されるものではない。
本発明の一具現例において、前記組成物は、ヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）をさらに含む。
本明細書上における用語「ヒト胎盤由来細胞の条件化培地」とは、胎盤由来細胞をゼラチンコートのウェルプレート上に接種し、細胞培養液を添加して前記胎盤由来細胞を培養した後、培養液だけを回収することによって製造された培地のことを意味する。ヒト胎盤由来支持細胞は、ヒト胚幹細胞の未分化状態を維持するために使用できるものと究明され、その効用が台頭している。
具体的に、前記ＰＣＣＭ培地は、ヒト胎盤由来細胞を培養液の添加された細胞成長培地で培養する胎盤由来細胞の培養段階；及び、細胞成長培地から培養液を回収する培養液の回収段階を行うことによって提供されてよく、前記培養液は、ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ）／Ｆ－１２であってよく、血清代替剤をさらに含んでよい。ＰＣＣＭ培地にはＣＸＣＲ２のリガンドが含まれている。
本発明の他の態様は、次の段階を含む、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率の増進方法である：
体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる群から選ばれる１種以上のタンパク質をコードする核酸配列を形質導入する体細胞の形質変換段階；及び
前記形質変換された体細胞にｍＴＯＲ活性化剤を処理して培養する培養段階。
本発明の一具現例において、前記ｍＴＯＲ活性化剤は、４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン又はその誘導体であるが、これに限定されるものではない。
本発明の一具現例において、前記培養段階は、前記形質変換段階の後に行われる。
本発明の一具現例において、前記ＭＨＹ１４８５の処理濃度は、０．１～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～１０．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～５．０ｕｇ／ｍＬ、０．８～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．１～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．２～３．０ｕｇ／ｍＬ、０．５～３．０ｕｇ／ｍＬ、又は０．８～３．０ｕｇ／ｍＬ、例えば、１．０～３．０ｕｇ／ｍＬであるが、これに限定されるものではない。
本発明の一具現例において、前記体細胞は、ヒト臍帯静脈内皮細胞、ヒト線維芽細胞及びヒト胎盤由来細胞からなる群から選ばれる１種以上である。
本発明の一具現例において、前記胎盤由来細胞は、ヒト絨毛膜板から分離されて培養された胎盤由来線維様細胞である。
本発明の一具現例において、前記培養段階は、ＣＸＣＲ２の活性化剤の存在下で行われ、前記活性化剤はリガンド（ｌｉｇａｎｄ）であり、前記ＣＸＣＲ２のリガンドは、ＧＲＯ－α、ＧＲＯ－β、ＧＲＯ－γ、ＧＣＰ－２、ＮＡＰ－２、ＥＮＡ－７８及びＩＬ－８からなる群から選ばれる１種以上であり、例えば、ＧＲＯ－α又はＩＬ－８であるが、これに限定されるものではない。
本発明の一具現例において、前記培養段階は、ヒト胎盤由来細胞の条件化培地で行われる。
本発明の一具現例において、前記逆分化誘導方法は、体細胞の培養段階で形成されたコロニーから幹細胞を分離する幹細胞の分離段階をさらに含む。
本発明の実施例によれば、体細胞に逆分化因子を形質導入させた後にｍＴＯＲ活性化剤（ＭＨＹ１４８５）を処理すると、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率が増加する効果がある。特に、ｍＴＯＲ活性化剤は、ＰＣＣＭ培地を共に使用する場合に、最も優れた逆分化効率の増進効果を呈した。
〔発明の効果〕
本発明は、ｍＴＯＲ活性化剤を含む、体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率増進用組成物及びこれを用いた逆分化効率の増進方法に関する。前記方法は、体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる逆分化因子を形質導入させた後にｍＴＯＲ活性化剤を処理することによって、誘導万能幹細胞への逆分化効率を顕著に上昇させる効果がある。したがって、前記組成物及び方法は、効率よく体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化の誘導に用いることができる。
〔図面の簡単な説明〕
〔図１Ａ〕体細胞に逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）因子を形質導入させ、４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミンを処理しながら培養する過程を示す模式図である。
〔図１Ｂ〕ＭＨＹ１４８５の処理有無によるヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ，ＨＵＶＥＣ）、ヒト線維芽細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ，ＨＤＦ）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ，ＨＰＣ）におけるタンパク質の発現量を示すウェスタンブロットの分析結果である。
〔図１Ｃ〕ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対してＭＨＹ１４８５を処理した場合、オートファジーの抑制されたか否かを確認した免疫蛍光法（Ｉｍｍｕｎｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｓｓａｙ）の分析結果を示す写真である。
〔図２Ａ〕ＨＵＶＥＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。
〔図２Ｂ〕ＨＤＦ細胞に対してＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。
〔図２Ｃ〕ＨＰＣ細胞に対してＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。
〔図３〕ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５の処理有無及びＰＣＣＭ培地の使用有無による逆分化効率の差を比較したフラフである。
〔図４〕ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５を処理した場合とＰＣＣＭ培地を使用した場合における逆分化効率の差を相互比較したグラフである。
〔発明を実施するための形態〕
以下、本発明を下記の実施例を用いてより詳細に説明する。ただし、これらの実施例は、本発明を例示するためのもので、本発明の範囲を限定するためのものではない。
本明細書全般において、特定物質の濃度を示すために使用される「％」は、特記しない限り、固体／固体は（重量／重量）％、固体／液体は（重量／体積）％、そして液体／液体は（体積／体積）％である。
＜実施例１：ＭＨＹ１４８５による逆分化効率増進の有無の確認＞
ｍＴＯＲ（ｍａｍｍａｌｉａｎ ｔａｒｇｅｔ ｏｆ ｒａｐａｍｙｃｉｎ）活性化剤である４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン（ＭＨＹ１４８５、ＣＡＳ Ｎｕｍｂｅｒ ３２６９１４－０６－１）が逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率に影響を及ぼすか否かを確認するため、図１Ａのように、ヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ，ＨＵＶＥＣ、ＡＴＣＣ＃ＰＣＳ－１００－０１０）、ヒト線維芽細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ，ＨＤＦ、ＡＴＣＣ＃ＰＣＳ－２０１－０１２）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ，ＨＰＣ）にセンダイウイルス（Ｓｅｎｄａｉ ｖｉｒｕｓ；ＳｅＶ）システムを用いて逆分化因子（ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ、ＫＬＦ４；ＯＳＫＭ）を形質導入した。
その２４時間後に、ヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）又は成長培地（Ｇｒｏｗｔｈ Ｍｅｄｉｕｍ；ＧＭ）で、ＭＨＹ１４８５ ２ｕｇ／ｍＬを２４時間毎に１回ずつ３週間処理して１週間培養した後、マトリゲル（Ｍａｔｒｉｇｅｌ）コートの培養ディッシュ上に、ＭＨＹ１４８５と共にｍＴｅＳＲ培地を用いて一般の万能幹細胞培養条件で２週間逆分化を誘導した。
その後、ウェスタンブロットにてＣＸＣＲ２、ｍＴＯＲ及びｃＭＹＣの発現を確認し、幹細胞の標識マーカーに特異的なＴｒａ－６０にて染色し、オートファジー（ａｕｔｏｐｈａｇｉｃ ｆｌｕｘ）の活性を確認した。
図１Ｂから、ＭＨＹ１４８５を処理したとき、体細胞でＣＸＣＲ２、ｍＴＯＲ、ｃＭＹＣの発現が増加した反面、ＬＣ３ａ／ｂの発現は減少し、ｐ６２の発現が増加したことから、オートファジーが非活性化されたことが確認できた。
図１Ｃから確認できるように、免疫蛍光法（Ｉｍｍｕｎｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｓｓａｙ）を行い、ｍＴＯＲ抑制剤であるラマパイシン（Ｒａｐａｍｙｃｉｎ）を対照群としてＭＨＹ１４８５を処理したとき、体細胞においてＬＣ３ａ／ｂの発現が減少したことから、オートファジーが抑制されたことを検証した。
＜実施例２：逆分化効率の増進効果におけるＭＨＹ１４８５とＣＸＣＲ２刺激の相関関係の確認＞
図２Ａ～図２Ｃから確認できるように、ＭＨＹ１４８５を処理した場合に、処理しなかった場合に比べて全ての細胞における逆分化効率が増加した。また、逆分化効率は、ＧＭに比べてＰＣＣＭにおいてより優勢であった。
したがって、ＭＨＹ１４８５の処理によりオートファジーが非活性化され、逆分化効率が増加することを確認した。
図３及び表１から確認できるように、ＭＨＹ１４８５を処理していない群に比べて処理した群において逆分化効率が有意に高く示された。
図４及び表２から確認できるように、ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５を処理した群及びＰＣＣＭ培地で逆分化を誘導した群を、３種の細胞においてそれぞれ３つのディッシュ（ｄｉｓｈ）ずつ確認し、合計ｎ数９個で比較した結果、ＭＨＹ１４８５を処理した群において逆分化効率が有意に高かく示された。
したがって、前記結果は、ＰＣＣＭ培地を用いて得られる逆分化効率の増加効果に比しても、ＭＨＹ１４８５を処理することによって得られる逆分化効率の上昇効果が有意に高いことを示す。
体細胞に逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）因子を形質導入させ、４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミンを処理しながら培養する過程を示す模式図である。 ＭＨＹ１４８５の処理有無によるヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ，ＨＵＶＥＣ）、ヒト線維芽細胞（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ，ＨＤＦ）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ，ＨＰＣ）におけるタンパク質の発現量を示すウェスタンブロットの分析結果である。 ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対してＭＨＹ１４８５を処理した場合、オートファジーの抑制されたか否かを確認した免疫蛍光法（Ｉｍｍｕｎｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｓｓａｙ）の分析結果を示す写真である。 ＨＵＶＥＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。 ＨＤＦ細胞に対してＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。 ＨＰＣ細胞に対してＭＨＹ１４８５の処理有無及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（Ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｍｅｄｉａ；ＰＣＣＭ）の使用有無による逆分化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）効率の差を比較した写真である。 ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５の処理有無及びＰＣＣＭ培地の使用有無による逆分化効率の差を比較したフラフである。 ＨＵＶＥＣ、ＨＤＦ及びＨＰＣ細胞に対して、ＭＨＹ１４８５を処理した場合とＰＣＣＭ培地を使用した場合における逆分化効率の差を相互比較したグラフである。

Claims (8)

  1. ４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｃｅｌｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｍｅｄｉｕｍ；ＰＣＣＭ）を含む、体細胞から誘導万能幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ；ｉＰＳ）への逆分化効率増進用組成物。
  2. 前記組成物は、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる群から選ばれる１種以上のタンパク質をコードする核酸配列をさらに含む、請求項１に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物。
  3. 前記体細胞は、ヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｈｕｍａｎ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ；ＨＵＶＥＣ）、ヒト線維芽細胞（Ｈｕｍａｎ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ；ＨＤＦ）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ；ＨＰＣ）からなる群から選ばれる１種以上である、請求項１に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物。
  4. 前記組成物は、ＣＸＣＲ２の活性化剤をさらに含む、請求項１に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率増進用組成物。
  5. 次の段階を含む、体細胞から誘導万能幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ Ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ；ｉＰＳ）への逆分化効率の増進方法：
    体細胞にＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ｃ－Ｍｙｃ及びＫＬＦ４からなる群から選ばれる１種以上のタンパク質をコードする核酸配列を形質導入する体細胞形質変換段階；及び
    前記形質変換された体細胞に４，６－ジ－４－モルホリニル－Ｎ－（４－ニトロフェニル）－１，３，５－トリアジン－２－アミン及びヒト胎盤由来細胞の条件化培地（ｐｌａｃｅｎｔａ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｃｅｌｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｍｅｄｉｕｍ；ＰＣＣＭ）を処理して培養する培養段階。
  6. 前記体細胞は、ヒト臍帯静脈内皮細胞（Ｈｕｍａｎ Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ Ｖｅｉｎ Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ Ｃｅｌｌｓ；ＨＵＶＥＣ）、ヒト線維芽細胞（Ｈｕｍａｎ Ｄｅｒｍａｌ Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ；ＨＤＦ）及びヒト胎盤由来細胞（Ｈｕｍａｎ Ｐｌａｃｅｎｔａ ｄｅｒｉｖｅｄ Ｃｅｌｌｓ；ＨＰＣ）からなる群から選ばれる１種以上である、請求項５に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率の増進方法。
  7. 前記培養段階は、ＣＸＣＲ２の活性化剤の存在下で行われる、請求項５に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率の増進方法。
  8. 前記逆分化誘導方法は、培養段階で形成されたコロニーから誘導万能幹細胞を分離する細胞分離段階をさらに含む、請求項５に記載の体細胞から誘導万能幹細胞への逆分化効率の増進方法。
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