JP7341834B2 - 化粧料組成物及びその製造方法、並びに化粧料 - Google Patents
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項1
白金及び銀を含む複合粒子を含有する、化粧料組成物。
項2
前記複合粒子は、白金粒子及び銀粒子が凝集して形成される凝集粒子である、項1に記載の化粧料組成物。
項3
前記白金粒子及び前記銀粒子の合計質量100質量部に対し、前記白金粒子が10~90質量部含まれる、項2に記載の化粧料組成物。
項4
前記複合粒子は、10~500nmの平均粒子径を有する、項1~3のいずれか1項に記載の化粧料組成物。
項5
前記複合粒子は、水系溶媒に分散している、項1~4のいずれか1項に記載の化粧料組成物。
項6
前記複合粒子は、前記水系溶媒の全質量に対して1~500質量ppm含まれる、項5に記載の化粧料組成物。
項7
項1~6のいずれか1項に記載の化粧料組成物を含む化粧料。
項8
項1~6のいずれか1項に記載の化粧料組成物の製造方法であって、
複合粒子を調製する工程を備え、
前記複合粒子は、白金粒子の前駆体と銀粒子の前駆体とを混合することで得られる、製造方法。
硝酸銀0.104gと、クエン酸三ナトリウム二水和物0.130gとを980mLのイオン交換水(25℃)に溶解させ、30分間撹拌し、銀錯体を含む水溶液を調製した。このように得られた銀錯体を銀粒子の前駆体とした。
0.354gの塩化白金酸カリウム(K2PtCl4)を50mLの純水に溶解して、塩化白金酸カリウム水溶液を調製した。別途、0.215gのクエン酸ナトリウムを50mLの純水に溶解し、クエン酸ナトリウム水溶液を調製した。上記の塩化白金酸カリウム水溶液50mLを900mLの純水に加えた後、上記のクエン酸ナトリウム水溶液50mLを加え、約5分間100rpmで撹拌して反応させた。その後、50%クエン酸水溶液約1.0mL滴下することで液のpHを4に調整し、さらに60分間撹拌することで、白金粒子を含む水分散液を得た。ゼータ電位測定装置で測定した白金粒子の粒子径は100nmであった。また、TEM/EDS(HITACHI H-7100、加速電圧100kV)にて測定した白金粒子中の白金の純度は100%であった。上記方法で得られた分散液の白金濃度をICP-MSで確認したところ、白金粒子濃度は166質量ppmであった。この分散液を用いた各種試験においては、水で希釈して白金粒子濃度を100ppmとした分散液を用いた。
0.262gの硝酸銀(AgNO3)を50mLの純水に溶解して硝酸銀水溶液を調製した。別途、0.215gのクエン酸ナトリウムを50mLの純水に溶解し、クエン酸ナトリウム水溶液を調製した。上記の硝酸銀水溶液50mLを900mLの純水に加えた後、上記のクエン酸ナトリウム水溶液を50mL加え、約5分間100rpmで撹拌して反応させた。その後、50%クエン酸水溶液約1.0mL滴下することで液のpHを4に調整し、さらに60分間撹拌することで、銀粒子を含む水分散液を得た。ゼータ電位測定装置で測定した粒子径は100nmであった。また、TEM/EDSにて測定した銀粒子中の銀の純度は100%であった。上記方法で得られた分散液の銀粒子濃度をICP-MSで確認したところ、銀粒子濃度は166質量ppmであった。この分散液を用いた各種試験においては、水で希釈して銀粒子濃度を66ppmとした分散液を用いた。
比較例1の白金粒子の水分散液と、比較例2の銀粒子の水分散液とを、白金粒子と銀粒子の質量比率が6:4となるように混合した。この場合、白金濃度は100ppm、銀濃度は66ppmとなった。
(抗酸化性)
50μmol/Lの2,6-ジクロロフェノールインドフェノール(DCIP)水溶液と、35mmol/Lのクエン酸三ナトリウム水溶液とを等量混合してブランク液を準備した。このブランク液に、各実施例及び比較例で得た分散液を任意の量で滴下してサンプル液を調整し、該サンプル液の600nmにおける吸光度を測定した。この吸光度測定は、日本分光株式会社製の紫外可視分光光度計「V-650」を使用した。得られた吸光度から、前記ブランク液の吸光度(0.16)を基準とした低下率を計算し、この計算値から抗酸化性を評価した。
(1)正常ヒト表皮細胞をHuMedia-KG2培地を用いて、マイクロプレートに5.0×104の細胞密度にて播種した。
(2)播種24時間後、培地を、各実施例及び比較例で調製した分散液を所定量(2.5質量%及び5質量%のいずれか)含むHuMedia-KG2培地に交換し、引き続き24時間培養を続けた。
(3)この培養後、培地をHank’s緩衝液に交換し、UVBを25mJ/cm2にて細胞に照射した。
(4)この照射後、培地を、各実施例及び比較例で調製した分散液を所定量(2.5質量%及び5質量%のいずれか)含むHuMedia-KG2培地に交換し、さらに24時間培養した。
(5)培養後の培地中のマーカー物質(IL-1α)を市販のキット(IL-1α、Human,ELISA,kit(R&Dsystems))を用いて定量し、抗炎症性を評価した。
(1)綿100%の標準白布0.4gに対し、各実施例及び比較例で調製した分散液0.2mLを含浸した。
(2)次いで、1/10濃度ニュートリエントブロスにて調製した黄色ブドウ球菌懸濁液0.2mLを接種し、菌数を計数した。
(3)その後、18時間培養し、菌数を計数した。各実施例及び比較例で調製した分散液の代わりに蒸留水を含浸したものを対照試料として、(3)の菌数について対照試料との差を抗菌活性値とした。
図1(a)は、実施例1で得られた分散液中の複合粒子のTEM画像を示している。また、比較として、図1(b)及び(c)にはそれぞれ、比較例1の白金粒子及び比較例2の銀粒子のTEM画像を示している。
三次元培養表皮を対象基材として、白金及び銀を含む複合粒子を含有する化粧料組成物(以下、試験用サンプルと表記)の抗炎症作用を以下の手順で評価した。
(1)PBS(-)(Ca及びMg非含有リン酸緩衝生理食塩水)を用いて、実施例1で得られた分散液の濃度が1質量%及び10質量%になるように希釈した。次いで、0.45μmフィルターを通して滅菌することにより、分散液濃度が1質量%及び10質量%である試験用サンプルを準備した。
(2)三次元培養表皮(LabCyte EPI-MODEL 24、6.4mmφ)の角層側から1%または10%の濃度に調製した試験用サンプルを50μL添加し、24時間培養した(表皮モデル付属のアッセイ培地を使用し、500μLとした)。
(3)試験用サンプルを除去した後、PBS(-)を用いて角層表面を洗浄し、600mJ/cm2のUV-Bを角層表面に照射した。
(4)再度、角層側から1質量%または10質量%の濃度に調製した試験用サンプルを50μL添加し、新鮮な培地500μLのもとで24時間培養した。
(5)培養上清を回収し、ELISA法(市販キット(IL-1α、Human、ELISA kit(R&Dsystems))によってIL-1α量を定量した。なお、Alamar blue assayによって細胞生存率を評価し、UV-B照射及び試験用サンプル添加によって細胞数に影響がないことは事前に確認した。
Claims (7)
- 白金粒子及び銀粒子を含む複合粒子を含有し、
前記複合粒子の全質量のうち白金及び銀の総量が80質量%以上であり、
前記複合粒子は、前記白金粒子及び前記銀粒子を含有する凝集粒子である、化粧料組成物。 - 前記白金粒子及び前記銀粒子の合計質量100質量部に対し、前記白金粒子が10~90質量部含まれる、請求項1に記載の化粧料組成物。
- 前記複合粒子は、10~500nmの平均粒子径を有する、請求項1又は2に記載の化粧料組成物。
- 前記複合粒子は、水系溶媒に分散している、請求項1~3のいずれか1項に記載の化粧料組成物。
- 前記複合粒子は、前記水系溶媒の全質量に対して1~500質量ppm含まれる、請求項4に記載の化粧料組成物。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載の化粧料組成物を含む化粧料。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載の化粧料組成物の製造方法であって、
複合粒子を調製する工程を備え、
前記複合粒子は、白金粒子の前駆体と銀粒子の前駆体とを混合することで得られる、製造方法。
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