JP7067706B2 - 形質転換微生物及びその利用 - Google Patents

形質転換微生物及びその利用 Download PDF

Info

Publication number
JP7067706B2
JP7067706B2 JP2019514547A JP2019514547A JP7067706B2 JP 7067706 B2 JP7067706 B2 JP 7067706B2 JP 2019514547 A JP2019514547 A JP 2019514547A JP 2019514547 A JP2019514547 A JP 2019514547A JP 7067706 B2 JP7067706 B2 JP 7067706B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
gene
acid
microorganism
lignin
strain
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2019514547A
Other languages
English (en)
Other versions
JPWO2018199112A1 (ja
Inventor
英司 政井
直史 上村
健司 高橋
和典 園木
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nagaoka University of Technology
Hirosaki University NUC
Original Assignee
Nagaoka University of Technology
Hirosaki University NUC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nagaoka University of Technology, Hirosaki University NUC filed Critical Nagaoka University of Technology
Publication of JPWO2018199112A1 publication Critical patent/JPWO2018199112A1/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7067706B2 publication Critical patent/JP7067706B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • C12P7/44Polycarboxylic acids

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2017年4月25日出願の日本特願2017-86595号の優先権を主張し、その全記載は、ここに開示として援用される。
本発明は、ムコン酸又はプロトカテク酸が生産可能な形質転換微生物及び該形質転換微生物を利用したムコン酸又はプロトカテク酸の製造方法に関する。特に、本発明は、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物と、グアイアシルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物とを含むバイオマスを炭素源として増殖及びムコン酸又はプロトカテク酸の生産が可能な形質転換微生物に関する。
リグニンは植物の維管束細胞壁成分として存在する無定形高分子物質であって、フェニルプロパン系の構成単位が複雑に縮合したものであり、メトキシ基を含有することが化学構造上の大きな特徴になっている。リグニンは木質化した植物細胞を相互に膠着し、組織を強化する働きをしており、木材中に約18~36%、草本中には約15~25%存在する。そこで、木材を有効利用するために、リグニンを分解し、有用化合物を得ようとする試みが種々なされている。
一方、cis,cis-ムコン酸(以下、単にムコン酸とよぶ場合がある。)は、分子内に二重結合及びカルボキシ基が2個あることにより、反応性が高い化合物である。ムコン酸を出発物質とする種々のムコン酸誘導体が知られており、例えば、ラクトン、スルホン、ポリアミド、ポリエステル、チオエステル、付加ポリマーなどが挙げられる。このようなムコン酸誘導体は、様々な用途を有するものとして知られており、例えば、界面活性剤、難燃剤、UV光安定化剤、熱硬化性プラスチック、コーティング剤などとして使用され得る。
このように、ムコン酸は、種々の用途に供されるところ、リグニンからムコン酸を製造することができれば、資源の再生が達成され、非常に有用である。そこで、リグニン又はリグニンに由来する物質から、ムコン酸を製造する方法が試みられている。特にこのような方法として、微生物を用いたバイオコンバージョンが研究されている。
例えば、下記非特許文献1(該文献の全記載はここに開示として援用される。)には、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida)を宿主微生物として、染色体上のpcaH遺伝子及びpcaG遺伝子(以下、合わせてpcaHG遺伝子とよぶ場合がある。)並びにcatR遺伝子、catB遺伝子、catC遺伝子及びcatA遺伝子を破壊し、かつ、挿入したcatA遺伝子とaroY遺伝子とを、又はcatA遺伝子とaroY遺伝子とecdB遺伝子とを発現する形質転換微生物を作製し、該形質転換微生物をグルコースにより増殖させ、次いでp-クマル酸によりムコン酸を製造したことが記載されている。また、下記非特許文献2(該文献の全記載はここに開示として援用される。)には、スフィンゴビウム・スピーシーズ(Sphingobium species) SYK-6株がバニリン酸及びシリンガ酸を炭素源として増殖し得ることが記載されている。
C.W. Johnson et al., Metabolic Engineering Communications, 3, 111-119, 2016. T. Abe et al., Journal of Bacteriology, 187, 2030-2037, 2005.
確かに、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、p-クマル酸などのp-ヒドロキシフェニルリグニンに由来する芳香族化合物や、フェルラ酸などのグアイアシルリグニンに由来する芳香族化合物を代謝することができる。しかし、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、シリンギルリグニンに由来する芳香族化合物、例えば、シリンガ酸を代謝することができない。したがって、非特許文献1に記載の形質転換微生物を用いては、シリンギルリグニンを多く含むバイオマスを原材料としてムコン酸を製造することが実質的にできないという問題がある。
また、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、増殖のための炭素源として高価なグルコースを要求することから、非特許文献1に記載の形質転換微生物を用いるムコン酸の製造方法は経済性が悪いという問題がある。さらに、菌体増殖のためのグルコースと、ムコン酸生産の基質としてのp-クマル酸というように2種以上の炭素源が求められることから、これらの炭素源の総量を基準にして考えれば、非特許文献1に記載の形質転換微生物を用いるムコン酸の製造方法はムコン酸の収率が悪いという問題がある。
一方、非特許文献2に記載のスフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株によっては、バニリン酸及びシリンガ酸を炭素源としてムコン酸を製造することができない。
そこで、本発明は、シリンギルリグニンを多く含むバイオマスを原材料とすることができ、経済性が良好であり、かつ、収率が高いムコン酸の製造を可能にする微生物及び該微生物を利用したムコン酸の製造方法を提供することを、発明が解決しようとする課題とする。
本発明者らは、上記課題の解決を試みようとして、まずはシリンギルリグニンを多く含むバイオマスからムコン酸を製造することができる微生物について鋭意検討した。
図1に、非特許文献1に記載の形質転換微生物の代謝経路を示す。図1に示すように、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、宿主微生物がプロトカテク酸・3,4-開裂経路を経た分解を行うシュードモナス・プチダである。このことより、非特許文献1に記載の形質転換微生物によって効率よくムコン酸を製造しようとした場合、宿主微生物の染色体上のpcaHG遺伝子及びcatB遺伝子を欠失させ、さらに挿入したaroY遺伝子を発現させなければならない。こうすることによってはじめて、p-クマル酸などのp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物やフェルラ酸などのグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物をプロトカテク酸に一旦は収束して、ムコン酸へと変換することができるようになる。
しかし、図1に示されていないように、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、シリンガ酸などのシリンギルリグニンに由来する芳香族化合物をプロトカテク酸やムコン酸へと代謝することができず、さらにこれらを利用して増殖することもできない。また、非特許文献1に記載の形質転換微生物は、染色体上のpcaHG遺伝子を欠失していることから、微生物の増殖のために、グルコースなどのリグニン由来の芳香族化合物以外の基質を必要とする。
そこで、本発明者らは、鋭意検討を重ねたところ、シリンガ酸などのシリンギルリグニンに由来する芳香族化合物を代謝することができるスフィンゴモナド(Sphingomonad)科微生物に着眼するに至った。そして、本発明者らは、スフィンゴモナド科微生物の染色体上のプロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼ遺伝子を破壊した後、別途、外来遺伝子として挿入したaroY遺伝子、kpdB遺伝子、catA遺伝子などを発現する形質転換微生物を創作することに成功した。そして、驚くべきことに、本発明者らが作製した形質転換微生物は、シリンガ酸などのシリンギルリグニンに由来する芳香族化合物を利用して増殖する、すなわち、シリンギルリグニンに由来する芳香族化合物を資化することができつつも、グアイアシルリグニンやp-ヒドロキシフェニルリグニンに由来する芳香族化合物を利用してムコン酸を製造し得ることを見出した。このようにして、本発明者らは、本発明者らが作製した形質転換微生物を用いて、シリンギルリグニン、グアイアシルリグニン、p-ヒドロキシフェニルリグニンといった様々なタイプのリグニンに由来する芳香族化合物からムコン酸を製造する方法を創作することに成功した。
さらに驚くべきことに、本発明者らが作製した形質転換微生物を用いる方法は、これらのリグニン由来の芳香族化合物を炭素源として用いながらも、グルコース及びリグニン由来の芳香族化合物を基質として必要とする非特許文献1などに記載の形質転換微生物を用いる方法と比べて、ムコン酸の収率について同程度又はそれ以上であることを見出した。
本発明者らは、ムコン酸を製造し得る形質転換微生物を応用して、ムコン酸の中間体であるプロトカテク酸を製造し得る形質転換微生物を作製し、さらに該形質転換微生物を用いて、シリンギルリグニン、グアイアシルリグニン、p-ヒドロキシフェニルリグニンといった様々なタイプのリグニンに由来する芳香族化合物からプロトカテク酸を製造する方法を創作することに成功した。
リグニン由来の芳香族化合物は、廃資材などのバイオマスから得ることができる。特に、広葉樹にはシリンギルリグニンが多く含まれている。そこで、我が国に多く繁茂する広葉樹に由来するバイオマスは非常に安価に入手できることから、本発明者らが作製した形質転換微生物を用いるムコン酸やプロトカテク酸の製造方法は、非特許文献1に記載の形質転換微生物を用いる方法などと比べて経済的に有利な方法である。本発明は、これらの知見及び成功例に基づき完成された発明である。
したがって、本発明の一態様によれば、以下の(1)~(6)の形質転換微生物が提供される。
(1)宿主微生物が染色体上にプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有し、かつ、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物を資化するスフィンゴモナド(Sphingomonad)科微生物であり、
染色体上にある該プロトカテク酸分解酵素遺伝子が欠失しており、
挿入されたcatA遺伝子を発現し、かつ、
挿入されたaroY遺伝子又はaroY遺伝子及びkpdB遺伝子を発現する、
形質転換微生物。
(2)挿入された前記aroY遺伝子、前記kpdB遺伝子及び前記catA遺伝子は、同一プロモーターの制御下にある、(1)に記載の形質転換微生物。
(3)前記形質転換微生物は、挿入されたvanA遺伝子及びvanB遺伝子をさらに発現する、(1)~(2)のいずれか1項に記載の形質転換微生物。
(4)挿入された前記aroY遺伝子、前記kpdB遺伝子、前記catA遺伝子、前記vanA遺伝子及び前記vanB遺伝子は、同一プロモーターの制御下にある、(3)に記載の形質転換微生物。
(5)前記プロトカテク酸分解酵素遺伝子が、ligA遺伝子、ligB遺伝子、pcaG遺伝子、pcaH遺伝子及びpraA遺伝子からなる群から選ばれる遺伝子である、(1)~(4)のいずれか1項に記載の形質転換微生物。
(6)前記宿主微生物が、スフィンゴビウム・スピーシーズ(Sphingobium species)SYK-6株である、(1)~(5)のいずれか1項に記載の形質転換微生物。
本発明の別の一態様によれば、以下(7)のムコン酸の製造方法が提供される。
(7)p-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物と、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを、(1)~(6)のいずれか1項に記載の形質転換微生物に作用させることにより、ムコン酸を得る工程を含む、ムコン酸の製造方法。
本発明の別の一態様によれば、以下(8)の形質転換微生物が提供される。
(8)宿主微生物が染色体上にプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有し、かつ、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物を資化するスフィンゴモナド科微生物であり、かつ、
染色体上にある該プロトカテク酸分解酵素遺伝子が欠失している、
形質転換微生物。
本発明の別の一態様によれば、以下(9)のプロトカテク酸の製造方法が提供される。
(9)p-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物と、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを、(8)に記載の形質転換微生物に作用させることにより、プロトカテク酸を得る工程を含む、プロトカテク酸の製造方法。
本発明の一態様の形質転換微生物及び本発明の一態様の製造方法によれば、従前の微生物を用いる方法では困難又は不可能であったシリンギルリグニンを多く含むバイオマスを原材料として、安価かつ収率を維持又は改善して、ムコン酸やプロトカテク酸を製造することができる。したがって、本発明の一態様の形質転換微生物及び本発明の一態様の製造方法によれば、様々なタイプのリグニンを含むバイオマスや我が国で比較的入手が容易なバイオマスの有効利用の一環として、工業的規模でのムコン酸やプロトカテク酸の製造が期待できる。
図1は、非特許文献1のFig.1に記載のシュードモナス・プチダの代謝経路の概要図である。
以下、本発明の一態様である形質転換微生物及び製造方法の詳細について説明するが、本発明の技術的範囲は本項目の事項によってのみに限定されるものではなく、本発明はその目的を達成する限りにおいて種々の態様をとり得る。
(形質転換微生物の概要)
本発明の一態様である形質転換微生物は、宿主微生物の染色体上にある特定の遺伝子が欠失するように、宿主微生物を形質転換した微生物である。また、本発明の一態様である形質転換微生物は、さらに外来遺伝子として挿入したプロトカテク酸からのムコン酸の合成経路に関与する特定の遺伝子を発現するように、宿主微生物を形質転換しているか否かによって、2種類の態様がある。
本明細書における「遺伝子の欠失」は、遺伝子が正常に転写されないこと、遺伝子の発現によって産生されるべきタンパク質が正常に翻訳されないことなどのように、遺伝子が正常に機能せずに遺伝子の発現が妨げられていることを意味する。遺伝子の欠失は、例えば、遺伝子の全部又は一部が破壊、欠損、置換、挿入などにより遺伝子の構造が変化することによって生じ得る。ただし、遺伝子の欠失は、遺伝子の構造に変化が生じずに、例えば、遺伝子の制御領域をブロックするなどの手段によって遺伝子の発現が抑えられることによっても生じ得る。
本明細書における「遺伝子の発現」とは、転写や翻訳などを介して、遺伝子によってコードされるタンパク質が本来の構造や活性を有する態様で生産されることを意味する。また、本明細書における「遺伝子の過剰発現」とは、遺伝子が挿入されたことにより、宿主微生物が本来発現する量を超えて、該遺伝子によってコードされるタンパク質が生産されることを意味する。
(欠失又は挿入する遺伝子)
形質転換微生物について、宿主微生物は染色体上にプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有する。プロトカテク酸分解酵素遺伝子は、プロトカテク酸を分解する活性を有する酵素を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、ligA遺伝子、ligB遺伝子、pcaG遺伝子、pcaH遺伝子及びpraA遺伝子などが挙げられる。これらの遺伝子のうち、形質転換微生物は、宿主微生物の染色体上にあるプロトカテク酸分解酵素遺伝子の一部又は全部が欠失している。
ligA遺伝子及びligB遺伝子は、それぞれプロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼの小サブユニット及び大サブユニットを発現する遺伝子、又は一つのポリペプチドからなるプロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼを発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、それぞれ配列番号19及び20の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。プロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼは、例えば、スフィンゴビウム・スピーシーズ(Sphingobium species) SYK-6株などが保有し、プロトカテク酸から4-カルボキシ-2-ヒドロキシムコン酸-6-セミアルデヒドを生成する反応を触媒する活性を有し、Fe2+を補因子として要求する。
pcaH遺伝子及びpcaG遺伝子は、それぞれプロトカテク酸・3,4-ジオキシゲナーゼのβサブユニット及びαサブユニットを発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、それぞれ配列番号35及び36の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。プロトカテク酸・3,4-ジオキシゲナーゼは、例えば、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida) KT2440株などが保有し、プロトカテク酸から3-カルボキシムコン酸を生成する反応を触媒する活性を有し、Fe3+を補因子として要求する。
praA遺伝子は、プロトカテク酸・2,3-ジオキシゲナーゼを発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号37の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。プロトカテク酸・2,3-ジオキシゲナーゼは、例えば、パエニバシラス・スピーシーズ(Paenibacillus species) JJ-1b株などが保有し、プロトカテク酸から5-カルボキシ―2-ヒドロキシムコン酸-6-セミアルデヒドを生成する反応を触媒する活性を有する。
本発明の一態様の形質転換微生物(以下、形質転換微生物(1)とよぶ。)は、挿入されたcatA遺伝子を発現する。形質転換微生物(1)は、さらに挿入されたaroY遺伝子又はaroY遺伝子及びkpdB遺伝子を発現する。一方で、本発明の別の一態様の形質転換微生物(以下、形質転換微生物(2)とよぶ。)は、catA遺伝子、aroY遺伝子及びkpdB遺伝子のいずれも挿入されていない。すなわち、形質転換微生物(2)は、プロトカテク酸からムコン酸を製造することが実質的にできない。本明細書では、形質転換微生物(1)及び(2)をまとめて指すときには、単に「形質転換微生物」とよぶ。
catA遺伝子は、カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼ(Catechol 1,2-dioxygenase)を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号21の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼ(EC1.13.11.1)は、1,2-ジヒドロキシベンゼン・1,2-ジオキシゲナーゼなどともよばれる。カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼは、例えば、シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida) KT2440株が保有し、カテコールからcis,cis-ムコン酸を生成する反応を触媒する活性を有し、Fe3+を補因子として要求する。
カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼのアミノ酸配列(accession no.Q88I35)中にIntradiol dioxygenaseドメインを有する。該ドメインは [LIVMF]-x-G-x-[LIVM]-x(4)-[GS]-x(2)-[LIVMA]-x(4)-[LIVM]-[DE]-[LIVMFYC]-x(6)-G-x-[FY](Prosite entry no.P00083)からなり、配列中のYが補因子であるFe3+の結合に関わる。カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼのアミノ酸配列中のL137からY165が上記ドメインに相当する。
aroY遺伝子は、プロトカテク酸・デカルボキシラーゼを発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号22の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。プロトカテク酸・デカルボキシラーゼ(EC 4.1.1.63)は、3,4-ジヒドロキシ安息香酸・カルボキシリアーゼ(3,4-dihydroxybenzoate carboxy-lyase)ともよばれる。プロトカテク酸・デカルボキシラーゼは、プロトカテク酸からカテコールを生成する反応を触媒する酵素であれば、特に限定されない。なお、3-O-メチルガリック酸から3-メトキシカテコールを生成する反応やガリック酸からピロガロールを生成する反応を触媒する活性を有する酵素についても、プロトカテク酸・デカルボキシラーゼとして使用できる可能性がある。また、バニリン酸脱炭酸酵素や4-ヒドロキシ安息香酸の脱炭酸酵素についても、プロトカテク酸を脱炭酸する可能性があることから、プロトカテク酸・デカルボキシラーゼとして使用できる可能性がある。プロトカテク酸・デカルボキシラーゼは、構造上は、UbiDドメイン(Domain architechture ID 10487953)を含むタンパク質群(UbiD スーパーファミリー)に分類される。
プロトカテク酸・デカルボキシラーゼの具体例としては、クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ(Klebsiella pneumoniae subsp.pneumoniae) A170-40株(ATCC 25597株)に由来するタンパク質(accession no.AB479384;AB479384タンパク質)などが挙げられる。AB479384タンパク質のアミノ酸配列と配列同一性の高いアミノ酸配列を有するタンパク質としては、Enterobacter cloacae MBRL1077株由来のprotocatechuate decarboxylase(accession no.AMJ70686;配列同一性 87.2%)、E.cloacae e1026株由来のprotocatechuate decarboxylase(accession no.CZU76022;配列同一性 85.7%)などのprotocatechuate decarboxylaseとして登録されているタンパク質などが挙げられるが、これらに限定されない。これらの酵素は、補因子としてMn2+、プレニル化フラビンモノヌクレオチド(prenylated flavin mononucleotide;prenyl-FMN)を要求する一連の酵素群として特徴付けられる。
kpdB遺伝子は、フラビン・プレニルトランスフェラーゼを発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、4-ヒドロキシ安息香酸・デカルボキシラーゼ・サブユニットBを発現する遺伝子などが挙げられ、具体的には配列番号23の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。UbiXファミリーの中にPhenolic acid(hydroxyarylic acid)decarboxylase subunitBがあり、その一つが4-ヒドロキシ安息香酸・デカルボキシラーゼ・サブユニットBである。なお、Phenolic acid decarboxylaseの中には、AroYやFdc(酵母由来のFerulic acid decarboxylase)のようにホモオリゴマーの酵素もあれば、4-ヒドロキシ安息香酸・デカルボキシラーゼやバニリン酸・デカルボキシラーゼのようにBCDサブユニットからなるヘテロオリゴマーの酵素がある。
フラビン・プレニルトランスフェラーゼは、ジメチルアリル一リン酸(DMAP)からジメチルアリル構造をフラビンモノヌクレオチド(FMN)のフラビン骨格へと結合し、prenyl-FMNを合成する反応を触媒する。
4-ヒドロキシ安息香酸・デカルボキシラーゼ・サブユニットBは、フラボプロテイン、UbiX/Pad1ファミリーに分類される酵素であることから、そのアミノ酸配列は、例えば、E.coli K-12株由来のFlavin prenyltransferase(UbiX)のアミノ酸配列(accession no.P0AG03)と配列同一性が50%であり;S.cerevisiae S288c由来のFlavin prenyltransferase(Pad1)のアミノ酸配列(accession no.P33751)と配列同一性が39.8%であり;B.subtilis 168株由来のPhenolic acid decarboxylase subunit B(BcdB)のアミノ酸配列(accession no.P94404)と配列同一性が54.5%である。White MDらの文献(Nature,522:502-506,2015;該文献の全記載はここに開示として援用される。)により、UbiXのアミノ酸配列中にFMNの結合に関わるS37及びR123、DMAPの結合に関わるY153及びR169が同定され、KpdBなどのUbiX/Pad1ファミリーに分類されるタンパク質のアミノ酸配列にもこれらFMN及びDMAPの結合に関わるアミノ酸残基が保存されている。
形質転換微生物(1)について、宿主微生物はシリンガ酸やシリンガアルデヒドなどのシリンギルリグニン由来の芳香族化合物を炭素源として増殖する(資化する)能力を有する。宿主微生物がシリンガ酸やシリンガアルデヒドなどのシリンギル核を有する芳香族化合物を唯一の炭素源として利用して増殖する能力を有するためには、宿主微生物は染色体上にシリンガ酸・デメチラーゼ遺伝子(例えばdesA)、3-O-メチルガリック酸・3,4-ジオキシゲナーゼ遺伝子(例えばdesZ)、3-O-メチルガリック酸・デメチラーゼ遺伝子(例えばvanAB、ligM)、2-ピロン―4,6-ジカルボン酸・ヒドロラーゼ遺伝子(例えばligI)、ガリック酸・ジオキシゲナーゼ遺伝子(例えばdesB)、4-オキサロメサコン酸・トートメラーゼ(例えばligU)、4-オキサロメサコン酸・ヒドラターゼ遺伝子(例えばligJ)、4-カルボキシ-4-ヒドロキシ-2-オキソアジピン酸・アルドラーゼ遺伝子(例えばligK)、オキサロ酢酸・デカルボキシラーゼ遺伝子(例えばligK)など、シリンガ酸をピルビン酸へと代謝するための酵素を生産する遺伝子を有することが好ましい。
上記遺伝子のうち、例えば、desA遺伝子は、シリンガ酸・デメチラーゼ(Syringate O-demethylase)を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号38の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。シリンガ酸・デメチラーゼは、例えば、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株などが保有し、シリンガ酸から3-O-メチルガリック酸を生成する反応を触媒する活性を有する。
また、前記VanABは、シリンガ酸を3-O-メチルガリック酸に変換することができるので、シリンガ酸・デメチラーゼとしても使用することができる。
また、宿主微生物は、染色体上に、プロトカテク酸分解酵素遺伝子に加えて、バニリン酸脱メチル化酵素を発現する遺伝子を有することが好ましい。宿主微生物がバニリン酸脱メチル化酵素を発現する遺伝子を染色体上に有していない場合は、バニリン酸脱メチル化酵素を発現する遺伝子を形質転換微生物(1)に挿入することが好ましい。バニリン酸脱メチル化酵素を発現する遺伝子は特に限定されないが、例えば、ligM遺伝子、vanA遺伝子及びvanB遺伝子などが挙げられる。
ligM遺伝子は、テトラヒドロ葉酸依存型バニリン酸/3-O-メチルガリック酸・O-デメチラーゼ(tetrahydrofolate-dependent vanillate/3-O-methylgallate O-demethylase)を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号24の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。
vanA遺伝子は、バニリン酸・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分(vanillate demethylase oxygenase component)を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号25の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。
バニリン酸・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分(EC 1.14.13.82)としては、例えば、シュードモナス・プチダ KT2440株由来のVanA(accession no.Q88GI6)などが挙げられる。バニリン酸・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分は、Oxidoreductase componentを介して供給されるNADH又はNADPH由来の電子と、分子状酸素から供給される酸素原子とを利用して、バニリン酸のメチルエーテル結合を開裂し、プロトカテク酸、ホルムアルデヒド及び水を生成する。
バニリン酸・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分は、そのアミノ酸配列中にRieske[2Fe-2S]iron-sulfur domain(W7-V107,PROSITE entry no.PS51296)を有し、該ドメイン中のC及びH(C47,H49,C66,H69)がFe-Sの結合に関わる。
vanB遺伝子は、バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分(vanillate demethylase oxidoreductase component)を発現する遺伝子であれば特に限定されないが、例えば、配列番号26の塩基配列を有する遺伝子などが挙げられる。
バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分(EC 1.14.13.82)としては、例えば、シュードモナス・プチダ KT2440株由来のVanB(accession no.Q88GI5)などが挙げられる。バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分は、NADH又はNADPHから電子を抜き取り、酸素添加酵素(オキシゲナーゼ)へと伝達する酸化還元酵素の一つとして知られている。バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分はバニリン酸・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分であるVanAにNADH又はNADPH由来の電子を伝達する。
バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分は、そのアミノ酸配列中に、2Fe-2S Ferredoxin type iron-sulfer binding domain(G229-I316、PROSITE entry no.PS51085)を有し、該アミノ酸配列中のC(C265、C270、C273、C303)がFe-Sの結合に関わる。また、バニリン酸・デメチラーゼ・オキドレダクターゼ成分は、そのアミノ酸配列中に、NAD-binding domain(L109-D201,Pfam entry no.PF00175)及びFerredoxin reductase type FAD-binding domain(M1-A101、PROSITE entory no.PS51384)を有する。
形質転換微生物について、宿主微生物が染色体上にdesA遺伝子とligM遺伝子を有することが好ましい。また、宿主微生物がdesA遺伝子とligM遺伝子を染色体上に有していない場合は、desA遺伝子とligM遺伝子を形質転換微生物に挿入することが好ましい。
挿入する遺伝子は、遺伝子を有する由来生物が本来保有する遺伝子(すなわち、野生型遺伝子)と完全に同一でなくともよく、少なくとも野生型遺伝子が発現するタンパク質(すなわち、野生型タンパク質)と同一の、又は近似する酵素学的性質を有するタンパク質を発現する遺伝子である限り、野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するDNAなどであってもよい。
本明細書における「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列」とは、野生型遺伝子の塩基配列を有するDNAをプローブとして使用し、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法、サザンブロットハイブリダイゼーション法などを用いることにより得られるDNAの塩基配列を意味する。
本明細書における「ストリンジェントな条件」とは、特異的なハイブリッドのシグナルが非特異的なハイブリッドのシグナルと明確に識別される条件であり、使用するハイブリダイゼーションの系と、プローブの種類、配列及び長さによって異なる。そのような条件は、ハイブリダイゼーションの温度を変えること、洗浄の温度及び塩濃度を変えることにより決定可能である。例えば、非特異的なハイブリッドのシグナルまで強く検出されてしまう場合には、ハイブリダイゼーション及び洗浄の温度を上げるとともに、必要により洗浄の塩濃度を下げることにより特異性を上げることができる。また、特異的なハイブリッドのシグナルも検出されない場合には、ハイブリダイゼーション及び洗浄の温度を下げるとともに、必要により洗浄の塩濃度を上げることにより、ハイブリッドを安定化させることができる。
ストリンジェントな条件の具体例としては、例えば、プローブとしてDNAプローブを用い、ハイブリダイゼーションは、5×SSC、1.0%(w/v) 核酸ハイブリダイゼーション用ブロッキング試薬(ロシュ・ダイアグノスティクス社)、0.1%(w/v) N-ラウロイルサルコシン、0.02%(w/v) SDSを用い、一晩(8~16時間程度)で行う。洗浄は、0.1~0.5×SSC、0.1%(w/v) SDS、好ましくは0.1×SSC 、0.1%(w/v) SDSを用い、15分間、2回行う。ハイブリダイゼーション及び洗浄を行う温度は65℃以上、好ましくは68℃以上である。
また、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するDNAとしては、例えば、コロニー若しくはプラーク由来の野生型遺伝子の塩基配列を有するDNA又は該DNAの断片を固定化したフィルターを用いて、上記したストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーションすることによって得られるDNAや0.5M~2.0MのNaCl存在下にて、40℃~75℃でハイブリダイゼーションを実施した後、好ましくは0.7~1.0MのNaCl存在下にて、65℃でハイブリダイゼーションを実施した後、0.1~1×SSC溶液(1×SSC溶液は、150mM 塩化ナトリウム、15mM クエン酸ナトリウム)を用い、65℃条件下でフィルターを洗浄することにより同定できるDNAなどを挙げることができる。プローブの調製やハイブリダイゼーションの方法は、Molecular Cloning:A laboratory Manual,2nd-Ed.,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor,NY.,1989、Current Protocols in Molecular Biology,Supplement 1-38,John Wiley&Sons,1987-1997(以下、これらの文献を参考技術文献とよぶ場合がある。該文献の全記載はここに開示として援用される。)などに記載されている方法に準じて実施することができる。なお、当業者であれば、このようなバッファーの塩濃度や温度などの条件に加えて、その他のプローブ濃度、プローブ長さ、反応時間などの諸条件を加味して、野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を有するDNAを得るための条件を適宜設定することができる。
ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含むDNAとしては、プローブとして使用する野生型遺伝子の塩基配列を有するDNAの塩基配列と一定以上の配列同一性を有するDNAが挙げられ、例えば、野生型遺伝子の塩基配列と80%以上、好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、91%以上、92%以上、93%以上、94%以上、95%以上、96%以上、97%以上、98%以上又は99%以上、さらに好ましくは99.5%以上の配列同一性を有するDNAが挙げられる。該配列同一性の上限は特に限定されず、典型的には100%である。
野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列としては、例えば、野生型遺伝子の塩基配列において1から数個、好ましくは1から50個、より好ましくは1から30個、さらに好ましくは1から20個、なおさらに好ましくは1、2、3、4、5、6、7、8、9又は10個程度の塩基の欠失、置換、付加などを有する塩基配列を含む。ここで、「塩基の欠失」とは配列中の塩基に欠落又は消失があることを意味し、「塩基の置換」は配列中の塩基が別の塩基に置き換えられていることを意味し、「塩基の付加」とは新たな塩基が挿入するように付け加えられていることを意味する。
野生型遺伝子の塩基配列に相補的な塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列によってコードされるタンパク質は、野生型遺伝子の塩基配列によってコードされるタンパク質が有するアミノ酸配列において1から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加などを有するアミノ酸配列を有するタンパク質である蓋然性があるが、野生型遺伝子の塩基配列によってコードされるタンパク質と同じ酵素活性を有するものである。
野生型タンパク質と同一の、又は近似する酵素学的性質を有するタンパク質は、そのアミノ酸配列が、野生型タンパク質が有するアミノ酸配列において1から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加などを有するアミノ酸配列からなるものであってもよい。ここで、アミノ酸配列の「1から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加」における「1から数個」の範囲は特に限定されないが、例えば、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19又は20個、好ましくは1、2、3、4、5、6、7、8、9又は10個程度、より好ましくは1、2、3、4又は5個程度を意味する。また、「アミノ酸の欠失」とは配列中のアミノ酸残基の欠落又は消失を意味し、「アミノ酸の置換」は配列中のアミノ酸残基が別のアミノ酸残基に置き換えられていることを意味し、「アミノ酸の付加」とは配列中に新たなアミノ酸残基が挿入するように付け加えられていることを意味する。
「1から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加」の具体的な態様としては、1から数個のアミノ酸が別の化学的に類似したアミノ酸で置き換えられた態様がある。例えば、ある疎水性アミノ酸を別の疎水性アミノ酸に置換する場合、ある極性アミノ酸を同じ電荷を有する別の極性アミノ酸に置換する場合などを挙げることができる。このような化学的に類似したアミノ酸は、アミノ酸毎に当該技術分野において知られている。具体例を挙げると、非極性(疎水性)アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニンなどが挙げられる。極性(中性)アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システインなどが挙げられる。陽電荷をもつ塩基性アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジンなどが挙げられる。また、負電荷をもつ酸性アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸などが挙げられる。
野生型タンパク質が有するアミノ酸配列において1から数個のアミノ酸の欠失、置換、付加などを有するアミノ酸配列としては、野生型タンパク質が有するアミノ酸配列と一定以上の配列同一性を有するアミノ酸配列が挙げられ、例えば、野生型タンパク質が有するアミノ酸配列と80%以上、好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、91%以上、92%以上、93%以上、94%以上、95%以上、96%以上、97%以上、98%以上又は99%以上、さらに好ましくは99.5%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列などが挙げられる。該配列同一性の上限は特に限定されず、典型的には100%である。
(配列同一性を算出するための手段)
塩基配列やアミノ酸配列の配列同一性を求める方法は特に限定されないが、例えば、通常知られる方法を利用して、野生型遺伝子や野生型遺伝子が発現する野生型タンパク質のアミノ酸配列と対象となる塩基配列やアミノ酸配列とをアラインメントし、両者の配列の一致率を算出するためのプログラムを用いることにより求められる。
2つの塩基配列やアミノ酸配列における一致率を算出するためのプログラムとしては、例えば、Karlin及びAltschulのアルゴリズム(Proc.Natl.Acad.Sci.USA 87:2264-2268、1990;Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:5873-5877、1993;該文献の全記載はここに開示として援用される。)が知られており、このアルゴリズムを用いたBLASTプログラムがAltschulなどによって開発されている(J.Mol.Biol.215:403-410、1990;該文献の全記載はここに開示として援用される。)。さらに、BLASTより感度よく配列同一性を決定するプログラムであるGapped BLASTも知られている(Nucleic Acids Res.25:3389-3402、1997;該文献の全記載はここに開示として援用される。)。したがって、当業者は例えば上記のプログラムを利用して、与えられた配列に対し、高い配列同一性を示す配列をデータベース中から検索することができる。これらは、例えば、米国National Center for Biotechnology Informationのインターネット上のウェブサイト(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)において利用可能である。
上記の各方法は、データベース中から配列同一性を示す配列を検索するために通常的に用いられ得るが、個別の配列の配列同一性を決定する手段としては、Genetyxネットワーク版 version 12.0.1(ジェネティックス社)のホモロジー解析を用いることもできる。この方法は、Lipman-Pearson法(Science 227:1435-1441、1985;該文献の全記載はここに開示として援用される。)に基づくものである。塩基配列の配列同一性を解析する際は、可能であればタンパク質をコードしている領域(CDS又はORF)を用いる。
(挿入する遺伝子の由来)
挿入する遺伝子は、挿入する遺伝子を保有する微生物などに由来する。挿入する遺伝子の由来生物としては、例えば、プロトカテク酸からムコン酸を製造することができる微生物やプロトカテク酸を資化することによって増殖可能な微生物などが挙げられる。
挿入する遺伝子の由来生物の具体例としては、ligM遺伝子及びdesA遺伝子についてはスフィンゴビウム・スピーシーズ、スフィンゴモナス・スピーシーズ、ノボスフィンゴビウム・アロマティシボランス、オルターエリスロバクター・スピーシーズ、エリスロバクターといったスフィンゴモナド目微生物やアルスロバクター・カステリ、アルスロバクター・スピーシーズといったアルスロバクター属微生物、レイフソニア・スピーシーズといったマイクロバクテリ科微生物、コクリア・ポラリス、コクリア・スピーシーズ、ネオマイクロコッカス・エスツアリ、ペニグルタミシバクター・ガンゴトリエンシス、シトロコッカス・スピーシーズ、テルシコッカス・スピーシーズといったマイクロコッカス科微生物、マイクロバクテリウム・スピーシーズといったマイクロバクテリア科微生物など;catA遺伝子についてはシュードモナス・プチダ、シュードモナス・エルギノーサ、シュードモナス・フルオレッセンス、シュードモナス・レイネケイといったシュードモナス属微生物やアシネトバクター・カルコアセチカス、アシネトバクター・ラジオレシステンスといったアシネトバクター属微生物、ロドコッカス・オパカス、ロドコッカス・ピリジニボラス、ロドコッカス・ロドクロウスなどロドコッカス属微生物など;aroY遺伝子及びkpdB遺伝子についてはクレブシエラ・ニューモニエ、クレブシエラ・オキシトカ、クレブシエラ・クアシニューモニエといったクレブシエラ属微生物やエンテロバクター・クロアカ、エンテロバクター・アエロゲネスといったエンテロバクター属微生物、セディメントバクター・ヒドロキシベンゾイカスなど;vanA遺伝子及びvanB遺伝子についてはシュードモナス・プチダ、シュードモナス・フルオレセンス、シュードモナス・レジノボランス、シュードモナス・エルギノーサといったシュードモナス属微生物やコマモナス・テストステロニ、コマモナス・チオオキシダンスといったコマモナス属微生物、アセトバクタ―・パツツリアヌス、アセトバクタ―・アセチ、アセトバクタ―・トロピカリスといったアセトバクタ―属微生物などが挙げられるが、これらに限定されない。
上記のとおり、挿入する遺伝子の由来生物は特に限定されないが、形質転換微生物において発現される遺伝子が宿主微生物の生育条件によって不活化せず、又は活性を示すために、遺伝子を挿入することによって形質転換すべき宿主微生物や宿主微生物と生育条件が近似する微生物であることが好ましい。
(遺伝子工学的手法による遺伝子のクローニング)
欠失及び挿入する遺伝子は、適当な公知の各種ベクター中に挿入することができる。さらに、このベクターを適当な公知の宿主微生物に導入して、遺伝子を欠失した、又は遺伝子を挿入した形質転換体(形質転換微生物)を作製できる。欠失する遺伝子は野生型遺伝子の全部又は一部が破壊、欠損、置換、挿入などにより遺伝子の構造が変化したものであることが好ましい。挿入する遺伝子は、野生型遺伝子と同一又は近似するタンパク質を発現する遺伝子であることが好ましい。
欠失及び挿入する遺伝子の取得方法、これらの遺伝子の塩基配列やこれらの遺伝子が発現するタンパク質のアミノ酸配列に関する情報の取得方法、各種ベクターの製造方法や形質転換微生物の作製方法などは、当業者にとって適宜選択することができる。また、本明細書では、形質転換や形質転換体にはそれぞれ形質導入や形質導入体を包含する。欠失及び挿入する遺伝子のクローニングの一例を非限定的に後述する。
例えば、欠失又は挿入する遺伝子に関連する野生型遺伝子を有する由来生物や種々の微生物から、常法、例えば、参考技術文献に記載の方法により、染色体DNAやmRNAを抽出することができる。抽出したmRNAを鋳型としてcDNAを合成することができる。このようにして得られた染色体DNAやcDNAを用いて、染色体DNAやcDNAのライブラリーを作製することができる。
例えば、挿入する遺伝子は、該遺伝子に関連する野生型遺伝子を有する由来生物の染色体DNAやcDNAを鋳型としたクローニングにより得ることができる。野生型遺伝子の由来生物は上記したとおりのものであり、具体的な例としては、遺伝子の種類によって、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株、シュードモナス・プチダ KT2440株及びクレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ A170-40株などを挙げることができるが、これらに限定されない。例えば、シュードモナス・プチダ KT2440株を培養し、得られた菌体から水分を取り除き、液体窒素中で冷却しながら乳鉢などを用いて物理的に磨砕することにより細かい粉末状の菌体片とし、該菌体片から通常の方法により染色体DNA画分を抽出する。染色体DNA抽出操作には、DNeasy Blood & TissueKit(キアゲン社)などの市販の染色体DNA抽出キットなどが利用できる。本明細書において、染色体DNAとゲノムDNAとは同義である。
次いで、染色体DNAを鋳型として、5’末端配列及び3’末端配列に相補的な合成プライマーを用いてポリメラーゼ連鎖反応(polymerase chain reaction;PCR)を行うことにより、DNAを増幅する。プライマーとしては、挿入する遺伝子を含むDNA断片の増幅が可能であれば特に限定されない。その例としては、catA遺伝子を増幅するものとして、シュードモナス・プチダ KT2440株のゲノム配列を参考として設計した配列番号11及び12で表されるプライマーなどが挙げられる。なお、このようなプライマーを用いると、目的遺伝子全長が増幅できる。別の方法として、ショットガンライブラリーからの目的遺伝子クローンのスクリーニングや、Inverse PCR、Nested PCR、5’RACE法、3’RACE法などの適当なPCRにより、目的の遺伝子断片を含むDNAを増幅させ、これらを連結させて全長の目的遺伝子を含むDNAを得ることなどができる。
また、欠失又は挿入する遺伝子を取得する方法は、上記したとおりに特に限定されず、遺伝子工学的手法によらなくとも、例えば、化学合成法を用いて遺伝子を構築することが可能である。
PCRにより増幅された増幅産物や化学合成した遺伝子における塩基配列の確認は、例えば、次のように行うことができる。まず、配列を確認したいDNAを通常の方法に準じて適当なベクターに挿入して組換え体DNAを作製する。ベクターへのクローニングには、In-Fusion HD Cloning Kit(タカラバイオ社)、TA Cloning Kit(インビトロジェン社)などの公知又は市販のキット;pAK405(Andreas Kaczmarczykら、Applied and Environmental Microbiology,2012, 78(10)3774-3777;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pMCL200(Gene,vol.162,p157-158,1995を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pJB866(Plasmid,vol.38,p35-51,1997を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pUC118(タカラバイオ社)、pQE30(キアゲン社)、pUC4K(Gene,vol.19、p259-268、1982を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pEX18Amp(Gene,vol.212,p77-86,1998を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pPS858(Gene,vol.212,p77-86,1998を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)、pUC119(タカラバイオ社)、pUC18(タカラバイオ社)、pBR322(タカラバイオ社)などの公知又は市販のプラスミドベクター;λEMBL3(ストラタジーン社)などの公知又は市販のバクテリオファージベクターなどが使用できる。
構築した組換え体DNAを大量に得たい場合は、組換え体DNAを、例えば、大腸菌(Escherichia coli)、好ましくは大腸菌 JM109株(タカラバイオ社)や大腸菌 DH5α株(タカラバイオ社)などに導入して形質転換し、次いで得られた形質転換体に含まれる組換え体DNAを、QIAGEN Plasmid Mini Kit(キアゲン社)などを用いて精製することができる。
組換え体DNAに挿入されている各遺伝子の塩基配列の決定は、ジデオキシ法(Methods in Enzymology、101、20-78、1983などを参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)などにより行う。塩基配列の決定の際に使用する配列解析装置は特に限定されないが、例えば、Li-COR MODEL 4200Lシークエンサー(アロカ社)、370DNAシークエンスシステム(パーキンエルマー社)、CEQ2000XL DNAアナリシスシステム(ベックマン社)などが挙げられる。そして、決定された塩基配列を元に、翻訳されるタンパク質のアミノ酸配列を知り得る。
(遺伝子を含む組換えベクターの構築)
欠失又は挿入する遺伝子を含む組換えベクター(組換え体DNA)は、欠失又は挿入する遺伝子を含むPCR増幅産物と各種ベクターとを、遺伝子の欠失又は発現が可能な形で結合することにより構築することができる。なお、欠失する遺伝子の場合は、組換えベクターを宿主微生物に導入して、相同組換えによって、組換えベクター中の遺伝子が宿主微生物中の遺伝子に置き換わるために、組換えベクターは欠失する遺伝子の上流及び下流の領域を含むことが好ましい。
非限定的な例として挿入する遺伝子を含む組換えベクターを作製する方法は、例えば、適当な制限酵素で挿入する遺伝子のいずれかを含むDNA断片を切り出し、該DNA断片を適当な制限酵素で切断したプラスミドベクターとを、In-Fusion HD Cloning Kit(タカラバイオ社)などの市販の組換えベクター作製キットなどを用いて連結することにより構築することができる。または、プラスミドベクターと相同的な配列を両末端に付加した遺伝子を含むDNA断片と、インバースPCRにより増幅したプラスミド由来のDNA断片とを、In-Fusion HD Cloning Kit(タカラバイオ社)などの市販の組換えベクター作製キットを用いて連結させることにより得ることができる。
欠失又は挿入する遺伝子を含む組換えベクターは、欠失又は挿入する遺伝子とプラスミドベクター由来の遺伝子(塩基配列)とを少なくとも含む。組換えベクターの一例としては、catA遺伝子及びaroY遺伝子を含む組換えベクター;catA遺伝子、aroY遺伝子及びkpdB遺伝子を含む組換えベクターなどが挙げられる。組換えベクターは、catA遺伝子、aroY遺伝子及びkpdB遺伝子に加えて、vanA遺伝子及びvanB遺伝子を含むことができる。また、組換えベクターは、上記した遺伝子以外の遺伝子を、本発明の課題解決を妨げない限りに含むものであってもよい。
組換えベクターは、異種遺伝子又は異種核酸配列を含むことが好ましい。異種遺伝子は宿主微生物に本来的に存在しない(not naturally occuring)遺伝子であれば特に限定されず、例えば、宿主微生物由来の核酸配列に依拠しない合成遺伝子、挿入する遺伝子と由来生物が相違する生物に由来する遺伝子、宿主微生物と相違する他の微生物、植物、動物、ウイルスなどの生物に由来する遺伝子などが挙げられる。宿主微生物がシュードモナス属微生物である場合の異種遺伝子の具体例としては、pUC118由来のDNA断片、例えば、ラクトースプロモーター領域(Plac)などが挙げられるが、これに限定されない。
(形質転換微生物の作製方法)
形質転換微生物の作製方法は特に限定されず、例えば、常法に従って、遺伝子の欠失又は挿入が実現する態様で宿主微生物に挿入する方法などが挙げられる。具体的には、挿入する遺伝子のいずれかを発現誘導プロモーター及びターミネーターの間に挿入したDNAコンストラクトを作製し、次いで該DNAコンストラクトによって宿主微生物を形質転換することなどにより、挿入する遺伝子を発現する形質転換微生物が得られる。又は、欠失する遺伝子並びに該遺伝子の上流及び下流の領域を含むDNAコンストラクトを作製し、次いで該DNAコンストラクトによって宿主微生物を形質転換することなどにより、遺伝子を欠失する形質転換微生物が得られる。本明細書では、宿主微生物を形質転換するために作製された組換えベクターをDNAコンストラクトと総称してよぶ。
DNAコンストラクトを宿主微生物に導入する方法は特に限定されないが、例えば、当業者に知られているとおりである、導入したDNAコンストラクトが自律的に増殖して遺伝子を発現するように宿主微生物に導入する方法;相同組換えを利用することによりDNAコンストラクトを宿主微生物の染色体上に直接的に挿入する方法などが挙げられる。
挿入する遺伝子を含むDNAコンストラクトを宿主微生物に導入する方法として、相同組換えを利用する方法では、染色体上の組換え部位の上流領域及び下流領域と相同な配列の間に、DNAコンストラクトを連結し、宿主微生物のゲノム中に挿入することができる。
形質転換微生物の作製に用いられるベクター-宿主系は、宿主微生物中において、挿入する遺伝子が発現し得る系又は染色体上の遺伝子が欠失し得る系であれば特に限定されないが、例えば、pJB866-スフィンゴモナド科微生物の系、pKT230(Gene,vol.16,p237-247,1981;該文献の全記載はここに開示として援用される。)-スフィンゴモナド科微生物の系などが挙げられる。
挿入する遺伝子を含むDNAコンストラクトは、宿主微生物の染色体に導入しない形で、自律的に増幅して、挿入する遺伝子を発現しても、宿主微生物の染色体に導入した形で挿入する遺伝子を発現しても、どちらでもよい。
DNAコンストラクトには、形質転換された細胞を選択することを可能にするためのマーカー遺伝子が含まれていてもよい。マーカー遺伝子は特に限定されず、例えば、カナマイシン、テトラサイクリン、アンピシリン、カルベニシリンなどの薬剤に対する薬剤耐性遺伝子などが挙げられる。マーカー遺伝子は、欠失する遺伝子の途中に、又は欠失する遺伝子に置換するように含まれていてもよい。
挿入する遺伝子を含むDNAコンストラクトは、遺伝子の種類によっては、宿主微生物中で遺伝子を発現することを可能にするプロモーター及びターミネーターに加えて、その他の制御配列(例えば、オペレーターなどの転写制御に関わるシス配列など)を含むことができる。
DNAコンストラクトの一実施態様は、例えば、後述する実施例に記載があるpTS082プラスミドベクター、pTS084プラスミドベクター及びpTS079プラスミドベクターなどが挙げられるが、これらに限定されない。
スフィンゴモナド科微生物への形質転換方法としては、当業者に知られる方法を適宜選択することができ、例えば、エレクトロポレーション(電気穿孔)法、接合伝達法などによって実施できる。
形質転換微生物を選択及び増殖させるための培地は、用いる宿主微生物とマーカー遺伝子とに応じて適切なものを用いる。例えば、宿主微生物としてスフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株を用い、マーカー遺伝子としてカナマイシン及びテトラサイクリンの耐性遺伝子を用いた場合は、形質転換微生物の選択及び増殖は、例えば、形質転換微生物をこれらの薬剤を含むLB培地で培養することなどによって実施できる。
形質転換微生物が作製されたことの確認は、例えば、遺伝子の欠失した形質転換微生物のみが生存し得る条件や挿入する遺伝子を発現する形質転換微生物のみが生存し得る条件下で形質転換微生物を培養することなどにより達成し得る。また、形質転換微生物を培養し、次いで培養後に得られた培養物におけるムコン酸の量が、同じ条件下で培養した宿主微生物の培養物におけるムコン酸の量よりも大きいことを確認することなどにより、形質転換微生物が作製されたことを確認することができる。
形質転換微生物が作製されたことの確認は、形質転換微生物から染色体DNAを抽出し、これを鋳型としてPCRを行い、形質転換が起きた場合に増幅が可能なPCR産物が生じることやPCR産物の特性や塩基配列を確認することなどにより行ってもよい。
例えば、欠失又は挿入する遺伝子のプロモーターの塩基配列に対するフォワードプライマーと、マーカー遺伝子の塩基配列に対するリバースプライマーとの組み合わせでPCRを行い、想定の長さの産物が生じることを確認する。
相同組換えにより形質転換を行う場合には、用いた上流側の相同領域より上流に位置するフォワードプライマーと、用いた下流側の相同領域より下流に位置するリバースプライマーとの組み合わせでPCRを行い、相同組換えが起きた場合に想定される長さの産物が生じることを確認することが好ましい。
(宿主微生物)
宿主微生物は、染色体上にプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有し、かつ、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物を資化するスフィンゴモナド科微生物であれば特に限定されず、例えば、染色体上にプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有し、かつ、シリンガ酸及びシリンガアルデヒドを利用して増殖するスフィンゴモナド科微生物である。このようなスフィンゴモナド科微生物としては、プロトカテク酸を分解することができるスフィンゴモナド科微生物であることが好ましく、プロトカテク酸分解酵素を欠失してもシリンガ酸又はシリンガアルデヒドを資化するスフィンゴモナド科微生物であることがより好まく、染色体上にligA遺伝子及びligB遺伝子を有するスフィンゴモナド科微生物がさらに好ましい。宿主微生物の具体的な好ましい態様は、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株、スフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス(Sphingomonas hengshuiensis) WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ(Novosphingobium sp.) PP1Y株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株といったスフィンゴモナド科微生物であり、より好ましくは染色体上にligA遺伝子及びligB遺伝子を有し、かつ、シリンガ酸及びシリンガアルデヒドを資化するスフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株である。
(欠失又は挿入する遺伝子の具体例)
欠失又は挿入する遺伝子として、ligA遺伝子、ligB遺伝子及びligM遺伝子の具体例は、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株が保有するligA遺伝子、ligB遺伝子及びligM遺伝子であり、それぞれの塩基配列は配列番号19~20及び24に記載のものである。catA遺伝子、vanA遺伝子及びvanB遺伝子の具体例は、シュードモナス・プチダ KT2440株が保有するcatA遺伝子、vanA遺伝子及びvanB遺伝子であり、それぞれの塩基配列は配列番号21及び25~26に記載のものである。aroY遺伝子の具体例は、クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ A170-40株が保有するaroY遺伝子であり、塩基配列は配列番号22に記載のものである。kpdB遺伝子の具体例は、クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシズ・ニューモニエ NBRC14940株が保有するkpdB遺伝子であり、塩基配列は配列番号23に記載のものである。また、これらの遺伝子が発現するタンパク質のアミノ酸配列は、それぞれ配列番号27~34に記載のものである。
スフィンゴビウム・スピーシーズ、シュードモナス・プチダ、クレブシエラ・ニューモニエ以外の微生物から欠失又は挿入する遺伝子を得る方法は特に限定されないが、例えば、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株が保有するligA遺伝子、ligB遺伝子及びligM遺伝子の塩基配列(配列番号19~20及び24);シュードモナス・プチダ KT2440株が保有するcatA遺伝子、vanA遺伝子及びvanB遺伝子の塩基配列(配列番号21及び25~26);クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ A170-40株が保有するaroY遺伝子の塩基配列(配列番号22);クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ NBRC14940株が保有するkpdB遺伝子の塩基配列(配列番号23)に基づいて、その他の微生物のゲノムDNA配列に対してBLAST相同性検索を行って、上記塩基配列と配列同一性の高い塩基配列を有する遺伝子を特定することにより得ることができる。また、その他の微生物の総タンパク質を基に、上記遺伝子が発現するタンパク質のアミノ酸配列(配列番号27~34)と配列同一性の高いアミノ酸配列を有するタンパク質を特定し、該タンパク質を発現する遺伝子を特定することにより得ることができる。得られた遺伝子が欠失又は挿入する遺伝子に相当することは、得られた遺伝子により由来生物を宿主微生物として形質転換し、宿主微生物に比してムコン酸の生産量が増強されていることで確認できる。
スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株、スフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ PP1Y株及びノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株はゲノム構成が近似していることから、これらそれぞれが有する遺伝子を挿入することにより、相互に形質転換できる蓋然性がある。例えば、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株から得られた遺伝子を、宿主微生物としてスフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ PP1Y株及びノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株に導入して形質転換することができる。また、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株から得られた遺伝子を、宿主微生物としてシュードモナス属微生物、クレブシエラ属微生物、エンテロバクター属微生物、大腸菌などに導入して、発現させることも可能である。なお、挿入する遺伝子は、宿主微生物に発現させるために、コドン、二次構造、GC含量などを最適化した遺伝子であってもよい。
(形質転換微生物の一実施態様)
形質転換微生物(1)の具体的一態様は、宿主微生物がスフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株、スフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ PP1Y株及びノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株からなる群から選ばれるスフィンゴモナド科微生物であって、染色体上にあるligA遺伝子及びligB遺伝子からなる群から選ばれる少なくとも1種の遺伝子が欠失し、挿入されたcatA遺伝子を発現し、かつ、挿入されたaroY遺伝子又はaroY遺伝子及びkpdB遺伝子を発現する、形質転換スフィンゴモナド科微生物である。また、形質転換微生物(1)の別の具体的一態様は、該形質転換スフィンゴモナド科微生物において、挿入されたvanA遺伝子及びvanB遺伝子を発現する、形質転換スフィンゴモナド科微生物である。なお、これらの形質転換スフィンゴモナド科微生物は、染色体上にligM遺伝子を有する場合、ligM遺伝子を発現するものであってもよい。
このような形質転換微生物(1)は、染色体上にあるligA遺伝子及び/又はligB遺伝子が欠失し、挿入されたcatA遺伝子を発現し、かつ、挿入されたaroY遺伝子又はaroY遺伝子及びkpdB遺伝子が発現するという態様を少なくともとることにより、非特許文献1に記載の形質転換微生物では不可能である、バニリン酸などのグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物や4-ヒドロキシ安息香酸などのp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物と、シリンガ酸などのシリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを炭素源として、増殖及びムコン酸の製造が可能である。後述する実施例に記載があるとおり、形質転換微生物のより好ましい態様は、さらに挿入されたvanA遺伝子及びvanB遺伝子を発現する形質転換微生物である。
形質転換微生物(1)の具体的態様は、後述する実施例に記載があるSME257/pTS084株などであるが、これらに限定されない。
形質転換微生物(2)の具体的一態様は、宿主微生物がスフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株、スフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ PP1Y株及びノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株からなる群から選ばれるスフィンゴモナド科微生物であって、染色体上にあるligA遺伝子及びligB遺伝子からなる群から選ばれる少なくとも1種の遺伝子が欠失した、前記形質転換スフィンゴモナド科微生物である。
このような形質転換微生物(2)は、染色体上にあるligA遺伝子及び/又はligB遺伝子が欠失したという態様を少なくともとることにより、バニリン酸などのグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物や4-ヒドロキシ安息香酸などのp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物と、シリンガ酸などのシリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを炭素源として、増殖及びプロトカテク酸の製造が可能である。
形質転換微生物(2)の具体的態様は、後述する実施例に記載があるSME257株などであるが、これらに限定されない。
プ ロトカテク酸はムコン酸の前駆体であるとともに、プロトカテク酸・2,3-、3,4-、4,5-環開裂代謝産物の前駆体でもあり、該代謝産物の中には、例えば2-ピロン-4,6-ジカルボン酸(例えば、特許第4658244号;該文献の全記載はここに開示として援用される。)などの合成樹脂原料としての用途を有するものもある。また、プロトカテク酸は、医薬、農薬、香料などに対する合成原料としての用途もある。
なお、特開2010-207094号公報(該文献の全記載はここに開示として援用される。)には、シュードモナス・プチダを宿主微生物として、染色体上のpcaHG遺伝子並びにプロトカテク酸5位酸化酵素遺伝子を破壊又は変異させ、かつ、挿入したtpaK遺伝子とtpaAa遺伝子とtpaAb遺伝子とtpaB遺伝子とtpaC遺伝子とを発現する形質転換微生物を作製し、該形質転換微生物をグルコースにより増殖させ、次いでテレフタル酸によりプロトカテク酸を製造したことが記載されている。しかし、特開2010-207094号公報には、リグニン又はリグニン由来の芳香族化合物によりプロトカテク酸を製造していない。実際、特開2010-207094号公報に記載の形質転換微生物は、シリンギルリグニンに由来する芳香族化合物、例えば、シリンガ酸を代謝することはできない。
(製造方法)
本発明の一態様の製造方法(以下、製造方法(1)とよぶ。)は、バニリン酸といったグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物とシリンガ酸やシリンガアルデヒドといったシリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを、形質転換微生物(1)に作用させることにより、ムコン酸を得る工程を少なくとも含む。この際、グアイアシルリグニン由来の芳香族化合物とともに、又はグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物に代えて、4-ヒドロキシ安息香酸といったp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物を形質転換微生物(1)に作用させてもよい。
本発明の別の一態様のムコン酸の製造方法(以下、製造方法(2)とよぶ。)は、バニリン酸といったグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物とシリンガ酸といったシリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを、形質転換微生物(2)に作用させることにより、プロトカテク酸を得る工程を少なくとも含む。この際、グアイアシルリグニン由来の芳香族化合物とともに、又はグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物に代えて、4-ヒドロキシ安息香酸といったp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物を形質転換微生物(2)に作用させてもよい。
本明細書では、製造方法(1)及び(2)をまとめて指すときには、単に「製造方法」とよぶ。
リグニン由来の芳香族化合物を形質転換微生物に作用させる方法は、リグニン由来の芳香族化合物と形質転換微生物とが接触して、形質転換微生物が有する酵素によってムコン酸又はプロトカテク酸が生産できる方法であれば特に限定されないが、例えば、リグニン由来の芳香族化合物を含有し、かつ、形質転換微生物の生育に適した培地を用いて、形質転換微生物に適した各種培養条件下で形質転換微生物を培養することによって、ムコン酸又はプロトカテク酸を製造する方法などが挙げられる。培養方法は特に限定されず、例えば、通気条件下で行う固体培養法や液体培養法などが挙げられる。なお、グアイアシルリグニン由来の芳香族化合物、p-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物及びシリンギルリグニン由来の芳香族化合物と形質転換微生物との接触の順序は特に限定されないが、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物に次いでグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物を形質転換微生物に接触させること、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物とグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はp-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物とを同時に形質転換微生物に作用させることのいずれかが好ましい。
培地は、宿主微生物を培養する通常の培地、すなわち、炭素源、窒素源、無機物、その他の栄養素を適切な割合で含有するものであれば、合成培地及び天然培地のいずれでも使用できる。宿主微生物はスフィンゴモナド科微生物であることから、後述する実施例に記載があるようなWx最少培地などを利用することができるが、特に限定されない。炭素源は、リグニン由来の芳香族化合物、糖や有機酸などのその他の炭素源又はこれらの組み合わせを用いることができる。ただし、培地成分には、ムコン酸又はプロトカテク酸の製造に関与する酵素の活性化に必要な成分、例えば、Fe2+が含まれることが好ましい。鉄イオン、マグネシウムイオンなどを化合物として培地に添加することができるが、ミネラル含有物として添加してもよい。
リグニン由来の芳香族化合物は、グアイアシルリグニン、シリンギルリグニン及びp-ヒドロキシフェニルリグニンのいずれかのリグニン並びにこれらのリグニンから誘導し得る芳香族化合物であれば特に限定されないが、例えば、グアイアシルリグニン、シリンギルリグニン及びp-ヒドロキシフェニルリグニンの分解物に相当する化合物などが挙げられ、具体的には、p-クマル酸、フェルラ酸、シリンガ酸、p-ヒドロキシ安息香酸、バニリン酸、プロトカテク酸などが挙げられる。リグニン由来の芳香族化合物は、リグニンのモデル化合物とされている化合物、例えば、グアイアシルグリセロール-β-グアイアシルエーテルなどを含む。リグニン由来の芳香族化合物は、リグニンを含むバイオマスや該バイオマスを前処理に供して抽出したものであることが好ましいが、該バイオマスとは関係なく化学的に合成及び精製したものであってもよい。リグニン由来の芳香族化合物は、上記したものの1種を単独で、又は2種以上を組み合わせて使用できる。
リグニンを含むバイオマス(以下、リグノセルロースとよぶ場合がある。)は特に限定されないが、例えば、草や木などの天然物、これら天然物に処理を加えて得られるもの、農業廃棄物などが挙げられるが、具体的には針葉樹や広葉樹などの木質系のバイオマスなどが挙げられる。例えば、広葉樹は、シリンギルリグニンを多く含むことが知られている。
リグノセルロースは、前処理の有無などによって、例えば、固体状、懸濁状、液体状などであり得る。例えば、リグノセルロースを粉砕したものを液体に加えて得られる懸濁液とすることもできる。
リグノセルロースは、リグニン抽出物であってもよい。リグニン抽出物としては、例えば、リグノセルロースの粉末化したものを、0.1%W/V~50%W/V、好ましくは1%W/V~20%W/Vとなるように、リグニンの抽出に適した溶媒中に懸濁した懸濁液などが挙げられる。また、リグニン抽出物は、該懸濁液を10℃~150℃、好ましくは20℃~130℃、より好ましくは20℃~80℃で、数時間~数日間、好ましくは1時間~6日間の抽出処理に供し、次いで抽出処理液から固形分を除いた液体状のリグニン抽出物、又は液体状のリグニン抽出物から溶媒を留去し、乾固することにより得られる、固体状のリグニン抽出物などであってもよい。
リグニン抽出物の調製方法は特に限定されないが、例えば、以下の方法などが挙げられる。すなわち、小型オートクレーブ装置(耐圧硝子工業株式会社、ポータブルリアクター TVS-1)のステンレスベッセルに2M NaOH 50mL、脱脂シラカバ木粉 1.5g、ニトロベンゼン 3mLを入れ、500rpmで攪拌しながら170℃で2.5時間処理する。60℃以下まで放冷し、遠心分離(6,000g、10min)により上清を回収する。得られた上清を、ジエチルエーテル抽出を3回繰り返す(水層を回収)。水層を塩酸で酸性化した後、ジエチルエーテル抽出を3回繰り返す(エーテル層を回収)。エーテル層に硫酸ナトリウムを加え、冷蔵庫内で一晩脱水処理する。エーテル層を回収し、抽出物を減圧乾固する。エーテル抽出物を、水酸化ナトリウムを加えながらイオン交換水に溶解し(pH≒9)、シラカバリグニン由来の芳香族化合物溶液とする。
リグニンの抽出や処理に適した溶媒は特に限定されず、例えば、水、ジオキサン、メタノール、イソプロパノールなどの低分子アルコール、ニトロベンゼン、ジエチルエーテル、ジメチルホルムアミドなどが挙げられる。
培養条件は、当業者により通常知られるスフィンゴモナド科微生物の培養条件を採用すればよく、例えば、培地の初発pHは5~10に調整し、培養温度は20℃~40℃、培養時間は数時間~数日間、好ましくは1~7日間、より好ましくは2~5日間など、適宜設定することができる。培養手段は特に限定されず、通気撹拌深部培養、振盪培養、静置培養などを採用することができる。ただし、desA遺伝子が発現するDesAの酵素活性及びligM遺伝子が発現するLigMの酵素活性を利用する場合、溶存酸素濃度は特に限定されないが、vanA遺伝子及びvanB遺伝子が発現するVanA及びVanBの酵素活性を利用する場合は溶存酸素が十分になるような条件下で培養することが好ましい。例えば、培地及び培養条件の一例として、後述する実施例に記載があるとおりの、炭素源としてシリンガ酸及びバニリン酸を含有するWx最少培地を用いた、30℃、180rpmでの1~5日間の振盪培養や撹拌培養などが挙げられる。なお、炭素源その他の成分は、培養開始後に適宜追加することができる。
培養終了後に培養物からムコン酸又はプロトカテク酸を取得する方法は特に限定されない。ムコン酸又はプロトカテク酸は培養液中に蓄積することから、培養物から濾過、遠心分離などの通常の固液分離操作により菌体と培養上清とを分離し、回収した培養上清からカラムを用いた固相抽出やムコン酸又はプロトカテク酸が可溶性のある溶媒を用いた溶媒抽出などによりムコン酸又はプロトカテク酸を抽出する。
抽出溶媒はムコン酸又はプロトカテク酸が溶解するものであれば特に限定されず、例えば、メタノール、エタノール、イソプロパノール、アセトンなどの有機溶媒;これらの有機溶媒と水とを混合させた含水有機溶媒などが挙げられる。抽出温度は特に限定されないが、例えば、室温から100℃に設定することができる。
ムコン酸の抽出方法の具体的一態様としては、例えば、Vardonらの方法(Green chemistry,vol.18,p3397-3413,2016;該文献の全記載はここに開示として援用される。)や該方法を一部変更した方法などが挙げられる。具体的には、培養上清に活性炭(12.5%(w/v)、100メッシュ)を添加し、1時間攪拌する。吸引ろ過により活性炭を除去し、ろ液を回収する。回収したろ液に塩酸を加え、pH≒2に調製した後、4℃で一晩静置する。吸引ろ過により沈殿物を回収し、沈殿物はイオン交換水で洗浄した後、吸引ろ過により回収し、減圧乾燥する。乾燥した固体をエタノールに懸濁し、吸引ろ過により不要物を除去し、ろ液を回収する。ろ液をエバポレーターで減圧乾固して、精製ムコン酸を得る。
プロトカテク酸の抽出方法の一態様としては、例えば、培養上清に塩酸を加え、pH≒2に調製した後、酢酸エチル等の有機溶媒によって抽出することが出来る。得られた抽出物を再結晶化またはイオン交換樹脂を用いることによってプロトカテク酸を得る方法が挙げられる。
ムコン酸若しくはプロトカテク酸の定性的又は定量的分析は特に限定されず、例えば、HPLCなどにより行うことができる。HPLC分離条件は当業者であれば適宜選択することができ、例えば、後述する実施例に記載がある条件で実施できる。
形質転換微生物を用いれば、ムコン酸又はプロトカテク酸を高収率で得ることができる。例えば、5mM バニリン酸及び5mM シリンガ酸を炭素源とした場合は35時間の培養で93%の収率(対理論収量)でムコン酸を得ることができ;5mM p-ヒドロキシ安息香酸及び5mM シリンガ酸を炭素源とした場合は35時間の培養で75%の収率(対理論収量)でムコン酸を得ることができ;シラカバリグニン由来芳香族化合物水溶液を炭素源とした場合は48時間の培養で16.5mg/Lのムコン酸を得ることができ;5mM バニリン酸及び5mM シリンガ酸を炭素源とした場合は42時間の培養で83%の収率(対理論収量)でプロトカテク酸を得ることができ;5mM p-ヒドロキシ安息香酸及び5mM シリンガ酸を炭素源とした場合は30時間の培養で75%の収率(対理論収量)でプロトカテク酸を得ることができる。
本発明の製造方法では、本発明の目的を達成し得る限り、上記した工程の前段若しくは後段又は工程中に、種々の工程や操作を加入することができる。
(ムコン酸及びプロトカテク酸の用途)
本発明の一態様の形質転換微生物や製造方法を利用して得られたムコン酸及びプロトカテク酸は、種々の産業上有用な化合物に変換することができ、例えば、界面活性剤、難燃剤、UV光安定化剤、熱硬化性プラスチック、コーティング剤などとしての利用が期待できるムコン酸誘導体の原料として利用することができる。具体的には、ムコン酸誘導体の一つであるアジピン酸は、ナイロン66(ポリアミドの一つ)として現実に利用されている。プロトカテク酸は、ムコン酸を製造するための原材料となり得るとともに、医薬、農薬、香料等の合成原料としての用途もある。また、プロトカテク酸は、プロトカテク酸・2,3-、3,4-、4,5-環開裂代謝産物の前駆体でもあり、該代謝産物の中には、例えば2-ピロン―4,6-ジカルボン酸(例えば、特許第4658244号;該文献の全記載はここに開示として援用される。)など合成樹脂原料としての用途を有するものもある。
以下、本発明を実施例によってさらに具体的に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではなく、本発明の課題を解決し得る限り、本発明は種々の態様をとることができる。
[1.Sphingobium sp.SME257株の作製]
以下の手順により、スフィンゴビウム・スピーシーズ(Sphingobium species)SYK-6株からプロトカテク酸 4,5-ジオキシゲナーゼ遺伝子(ligAB遺伝子)を破壊した変異株である、スフィンゴビウム・スピーシーズ SME257株を作製した。
スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株のゲノムDNAを鋳型として、配列番号1及び2のプライマー1及び2からなるプライマーセット並びに配列番号3及び4のプライマー3及び4からなるプライマーセットを用いたPCR法によって、プロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼ・小サブユニット(protocatechuate 4,5-dioxygenase;ligA)遺伝子の上流領域及びプロトカテク酸・4,5-ジオキシゲナーゼ・大サブユニット(protocatechuate 4,5-dioxygenase;ligB)遺伝子下流領域を得た。
得られたDNA断片と、予めBamHIで消化したpAK405プラスミドDNAとを、In-Fusion HD Cloning Kit(タカラバイオ株式会社)を用いて連結することによって、pAKDligABプラスミドDNAを得た。
pAKDligABプラスミドDNAを用いて、三親接合法により、スフィンゴビウム・スピーシーズ SYK-6株を形質転換した。形質転換体は、ナリジクス酸(Nal) 12.5mg/L及びカナマイシン(Km) 50mg/Lを含むLB寒天培地上で生育可能であるNal-Km耐性株として選抜した。得られたNal-Km耐性株を、Nal 12.5mg/L及びストレプトマイシン(Sm) 100mg/Lを含むLB液体培地に接種し、30℃で48時間振盪培養した。
得られた培養液をSm 100mg/Lを含むLB寒天培地上に塗抹し、30℃で72時間静置培養した。生育した複数のコロニーから、ゲノムDNAをそれぞれ抽出し、次いでPCR法によって、ゲノムDNA上のligAB遺伝子が欠失している形質転換体を、スフィンゴビウム・スピーシーズ SME257株としてスクリーニングした。
[2.シリンガ酸(SA)及びバニリン酸(VA)を炭素源としたプロトカテク酸(PCA)生産]
SME257株をLB液体培地 10mLに接種し、30℃で36時間振盪培養した。得られた培養液をWx緩衝液(KHPO 1.7g/L、NaHPO・12HO 9.8g/L及び(NHSO 1g/L)で洗浄した後、5mM VA、5mM SA及び1g/L Tryptoneを含むWx最少培地(KHPO 1.7g/L、NaHPO・12HO 9.8g/L、(NHSO 1g/L、MgSO・7HO 0.1g/L、FeSO・7HO 9.5mg/L、MgO 10.75mg/L、CaCO 2mg/L、ZnSO・7HO 1.44mg/L、MnSO・4HO 1.12mg/L、CuSO・5HO 0.25mg/L、CoSO・7HO 0.28mg/L、HBO 0.06mg/L及び12N HCl 51.3μL/L) 10mLに接種し、30℃で振盪培養した。
培養開始後、一定時間毎に、培養液の光学密度(optical density;OD)を測定し、さらに培養液を遠心分離して得た培養上清について、SA、VA及びPCAの濃度を測定した。
OD測定には600nmの波長を使用し、GeneQuant 100(GEヘルスケア・ジャパン株式会社)を用いてOD600値を測定した。SA、VA及びPCAの濃度は、高速液体クロマトグラフ(Acquity ultraperformance liquid chromatography system;日本ウォーターズ株式会社)を用いて測定した。カラムはTSKgel ODS-140HTP column(径 2.1mm、長さ 100mm、粒径 2.3μm;東ソー株式会社)を使用し、30℃で保温した。勾配(グラジエント)溶離モード(溶媒A:99.9%(v/v)HO、0.1%(v/v)HCOOH、溶媒B:99.9%(v/v)CHCN、0.1%(v/v)HCOOH)を使用し、溶媒Aを99%、溶媒Bを1%で平衡化した後、分析を開始して3分後から6分後にかけて溶媒Bの割合を25%まで上昇させ、次いで1分かけて溶媒Bの割合を1%まで低下させた。移動相の流速は0.5mL/minとし、測定波長はSAについて270nmとし、VA及びPCAについて260nmとした。
培養時間0、6、18、30及び42時間後のOD600値、SA濃度、VA濃度及びPCA濃度の測定結果をまとめたものを表1に示す。
Figure 0007067706000001
表1が示すとおり、SME257株は、SAを利用して増殖し、かつ、VAからPCAを経時的に生産した(理論収量に対する収率は83%)。
[3.SA及び4-ヒドロキシ安息香酸(HBA)を炭素源としたPCA生産]
SME257株を、LB液体培地 10mLに接種し、30℃で36時間振盪培養した。得られた培養液をWx緩衝液で洗浄した後、5mM HBA、5mM SA及び1g/L Tryptoneを含むWx最少培地10mLに接種し、30℃で振盪培養した。
培養開始後、一定時間毎に、培養液のOD600を測定し、さらに培養液を遠心分離して得た培養上清について、SA、HBA及びPCAの濃度を測定した。OD600測定並びにSA、HBA及びccMAの濃度測定は上記2に記載の方法と同様に行った。
培養時間0、6、18及び30時間後のOD600値、SA濃度、HBA濃度及びPCA濃度の測定結果をまとめたものを表2に示す。
Figure 0007067706000002
表2が示すとおり、SME257株は、SAを利用して増殖し、かつ、HBAからPCAを経時的に生産した(理論収量に対する収率は75%)。
[4.SME257/pTS084株の作製]
以下の手順により、aroY遺伝子、kpdB遺伝子、catA遺伝子、vanA遺伝子及びvanB遺伝子を発現するプラスミドであるpTS084プラスミドDNAを用いて、スフィンゴビウム・スピーシーズ SME257株を形質転換し、SME257/pTS084株を作製した。
クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ(Klebsiella pneumoniae subspecies pneumoniae) A170-40株のゲノムDNAの部分断片を鋳型として、配列番号5及び6のプライマー5及び6からなるプライマーセットを用いたPCR法によって、プロトカテク酸・デカルボキシラーゼ(protocatechuate decarboxylase;aroY)遺伝子を含む約1.5kbpのDNA断片を得た。得られたDNA断片をKpnIで消化し、予めKpnIで消化したpMCL200プラスミドDNAにクローニングすることにより、pTS036プラスミドDNAを得た。
クレブシエラ・ニューモニエ・サブスピーシーズ・ニューモニエ NBRC14190株のDNAを鋳型として、配列番号7及び8のプライマー7及び8のプライマーセットを用いたPCR法によって、4-ヒドロキシ安息香酸・デカルボキシラーゼ・サブユニットB(4-hydroxybenzoate decarboxylase subunit B;kpdB)遺伝子を含む約0.6kbpのDNA断片を増幅した。増幅したDNA断片の両末端を平滑化処理に供し、次いでXbaIで消化した後、予め平滑化処理したpTS036プラスミドDNAに連結することにより、pTS052プラスミドDNAを得た。pTS052プラスミドDNAとしては、pTS036プラスミドDNAに含まれるaroY遺伝子と順方向にkpdB遺伝子が連結されたクローンとして選択して得た。
pTS052プラスミドDNAを鋳型として、配列番号9及び10のプライマー9及び10からなるプライマーセットを用いたPCR法により、aroY遺伝子及びkpdB遺伝子を含む約2.2kbpのDNA断片を増幅した。増幅したDNA断片を、予めBamHI及びEcoRIで消化したpJB866プラスミドDNAにInfusion HD Cloning Kitを用いて連結することにより、pTS074プラスミドDNAを得た。
シュードモナス・プチダ(Pseudomonas putida) KT2440株のゲノムDNAを鋳型として、配列番号11及び12のプライマー11及び12からなるプライマーセットを用いたPCR法により、カテコール・1,2-ジオキシゲナーゼ(catechol 1,2-dioxygenase;catA)遺伝子を含む約1.0kbpのDNA断片を得た。得られたDNA断片を、予めSacIで消化したpTS074プラスミドDNAにInfusion HD Cloning Kitを用いて連結することにより、pTS079プラスミドDNAを得た。
pUC118プラスミドDNAを鋳型として、配列番号13及び14のプライマー13及び14からなるプライマーセットを用いたPCR法によって、ラクトースプロモーター領域(Plac)を含む約200bpのDNA断片を得た。得られたDNA断片を、pTS079プラスミドDNAのNotIサイトにInfusion HD Cloning Kitを用いてクローニングすることにより、pTS082プラスミドDNAを得た。
シュードモナス・プチダ KT2440株のゲノムDNAを鋳型として、配列番号15及び16のプライマー15及び16からなるプライマーセットを用いたPCR法によって、バニレート・デメチラーゼ・オキシゲナーゼ成分(vanillate demethylase oxygenase component;vanA)遺伝子及びバニレート・デメチラーゼ・オキシドレダクターゼ成分(vanillate demethylase oxidoreductase component;vanB)遺伝子を含む約2.0kbpのDNA断片を得た。得られたDNA断片を、SacI及びSmaIで消化し、予めSacI及びSmaIで消化したpQE30プラスミドDNAと連結することにより、pKY001プラスミドDNAを得た。
pKY001プラスミドDNAを鋳型として、配列番号17及び18のプライマー17及び18からなるプライマーセットを用いたPCR法により、vanA遺伝子及びvanB遺伝子を含む約2.0kbpのDNA断片を増幅した。増幅したDNA断片を、予めNotIで消化したpTS082プラスミドDNAとInfusion HD Cloning Kitを用いて連結することにより、pTS084プラスミドDNAを得た。
得られたpTS084プラスミドDNAを用いて、スフィンゴビウム・スピーシーズ SME257株を形質転換することにより、SME257/pTS084株を作製した。
[5.SA及びVAを炭素源としたcis,cis-ムコン酸(ccMA)生産]
SME257/pTS084株を、テトラサイクリン(Tc) 12.5mg/Lを含むLB液体培地 10mLに接種し、30℃で36時間振盪培養した。得られた培養液をWx緩衝液(KHPO 1.7g/L、NaHPO・12HO 9.8g/L及び(NHSO 1g/L)で洗浄した後、Tc 12.5mg/L、5mM VA、5mM SA及び1g/L Tryptoneを含むWx最少培地(KHPO 1.7g/L、NaHPO・12HO 9.8g/L、(NHSO 1g/L、MgSO・7HO 0.1g/L、FeSO・7HO 9.5mg/L、MgO 10.75mg/L、CaCO 2mg/L、ZnSO・7HO 1.44mg/L、MnSO・4HO 1.12mg/L、CuSO・5HO 0.25mg/L、CoSO・7HO 0.28mg/L、HBO 0.06mg/L及び12N HCl 51.3μL/L) 10mLに接種し、30℃で振盪培養した。
培養開始後、一定時間毎に、培養液のOD600を測定し、さらに培養液を遠心分離して得た培養上清について、SA、VA及びccMAの濃度を測定した。OD600測定並びにSA、VA及びccMAの濃度測定は上記2に記載の方法と同様に行った。
培養時間0、5、10、20及び35時間後のOD600値、SA濃度、VA濃度及びccMA濃度の測定結果をまとめたものを表3に示す。
Figure 0007067706000003
表3が示すとおり、SME257/pTS084株は、SAを利用して増殖し、かつ、VAからccMAを経時的に生産した(理論収量に対する収率は93%)。
[6.SA及びHBAを炭素源としたccMA生産]
SME257/pTS084株を、Tc 12.5mg/Lを含むLB液体培地 10mLに接種し、30℃で36時間振盪培養した。得られた培養液をWx緩衝液で洗浄した後、Tc 12.5mg/L、5mM HBA、5mM SA及び1g/L Tryptoneを含むWx最少培地10mLに接種し、30℃で振盪培養した。
培養開始後、一定時間毎に、培養液のOD600を測定し、さらに培養液を遠心分離して得た培養上清について、SA、HBA及びccMAの濃度を測定した。OD600測定並びにSA、HBA及びccMAの濃度測定は上記2に記載の方法と同様に行った。
培養時間0、5、10、20及び35時間後のOD600値、SA濃度、HBA濃度及びccMA濃度の測定結果をまとめたものを表4に示す。
Figure 0007067706000004
表4が示すとおり、SME257/pTS084株は、SAを利用して増殖し、かつ、HBAからccMAを経時的に生産した(理論収量に対する収率は75%)。
[7.シラカバリグニン由来芳香族化合物を炭素源としたccMA生産]
常法に従い、シラカバ木粉をアルコール-ベンゼン抽出処理に供し、次いで処理後のシラカバ木粉1.5gをアルカリニトロベンゼン酸化分解処理及びジエチルエーテル抽出処理に供した(木質科学実験マニュアル、日本木材学会編、文永堂出版を参照;該文献の全記載はここに開示として援用される。)。ニトロベンゼン酸化分解後のアルカリ溶液をジエチルエーテル抽出処理し、得られた水層を酸性化処理に供し、さらにジエチルエーテル抽出処理に供した。エーテル層として得られたジエチルエーテル抽出物をシラカバリグニン由来芳香族化合物とし、シラカバリグニン由来芳香族化合物水溶液(pH≒9)を炭素源として添加したWx培地におけるccMA生産を評価した。
SME257/pTS084株を、Tc 12.5mg/Lを含むLB液体培地 10mLに接種し、30℃で36時間振盪培養した。得られた培養液をWx緩衝液で洗浄した後、Tc 12.5mg/L及び0.1g/L Tryptoneを含むWx最少培地10mLに接種し、炭素源としてシラカバリグニン由来芳香族化合物水溶液 5μLを添加し、30℃で振盪培養した。培養4時間毎にシラカバリグニン由来芳香族化合物水溶液 5μLを追添加した。
培養開始後、一定時間毎に、培養液のOD600を測定し、さらに培養液を遠心分離して得た培養上清について、ccMA濃度を測定した。ccMAの濃度測定は上記2に記載の方法と同様に行い、高速液体クロマトグラフでの分離条件は溶媒Aを99%、溶媒Bを1%で平衡化した後、分析を開始して3分後から6分後にかけて溶媒Bの割合を25%まで上昇させ、次いで1分かけて溶媒Bの割合を99%まで上昇させて1分間保持し、その後、1分かけて溶媒Bの割合を1%まで低下させた。移動相の流速は0.5mL/minとし、測定波長はccMAについて260nmとした。
培養時間0、12、24及び48時間後のccMA濃度の測定結果をまとめたものを表5に示す。
Figure 0007067706000005
表5が示すとおり、SME257/pTS084株は、シラカバリグニン由来芳香族化合物を利用して増殖し、かつ、ccMAを経時的に生産した。
配列表に記載の配列は以下のとおりである:
[配列番号1]プライマー1
ATCCGCCCTAGTGGACGAATGGTCCTCTCTTTAGTGATTTCG
[配列番号2]プライマー2
CGACTCTAGAGGATCAGATTTCGGACGACGAGATCC
[配列番号3]プライマー3
TCGTCCACTAGGGCGGATCGACATTC
[配列番号4]プライマー4
CGGTACCCGGGGATCAGGTGCCGAGCGGCCCG
[配列番号5]プライマー5
AGCTGGTACCATTAAAGAGGAGAAATTAACTATGACCGCACCGATTCAG
[配列番号6]プライマー6
AGCTGGTACCTTATTTTGCGCTACCCTGGTT
[配列番号7]プライマー7
AGCTGAATTCATTAAAGAGGAGAAATTAACTATGAAACTGATTATTGGGATGACG
[配列番号8]プライマー8
AGCTTCTAGATTATTCGATCTCCTGTGCAAAT
[配列番号9]プライマー9
GAAGCTTCGTGGATCATTAAAGAGGAGAAATTAACTATGACCGCACCGATT
[配列番号10]プライマー10
ACGTCTCGAGGAATTCTTATTCGATCTCCTGTGCAAAT
[配列番号11]プライマー11
CGGCCGCGGTACCAGTTAAAGAGGAGAAATTAACTATGACCGTGA
[配列番号12]プライマー12
CTAGATACCTAGGTGTCAGCCCTCCTGCAACGCC
[配列番号13]プライマー13
ATGTGAATTGCGGCCAGCGCCCAATACGCAAACC
[配列番号14]プライマー14
ACTGGTACCGCGGCCGCGTAATCATGGTCATAGCTGTTTC
[配列番号15]プライマー15
ATGCGAGCTCATGTACCCCAAAAACACCT
[配列番号16]プライマー16
ATGCCCGGGTCAGATGTCCAGCACCAGCA
[配列番号17]プライマー17
CATGATTACGCGGCCATTAAAGAGGAGAAATTAAC
[配列番号18]プライマー18
ACTGGTACCGCGGCCTCAGATGTCCAGCACCAGCA
[配列番号19]ligA遺伝子
ATGACCGAGAAGAAAGAGAGAATCGACGTTCACGCCTATCTCGCCGAGTTTGACGACATTCCCGGCACCCGCGTGTTCACCGCCCAGCGCGCGCGCAAGGGCTATAATCTCAACCAGTTCGCGATGAGCCTGATGAAGGCCGAGAACCGCGAGCGGTTCAAGGCCGACGAGAGCGCCTATCTGGACGAGTGGAACCTCACGCCCGCCGCCAAGGCCGCCGTGCTGGCCCGCGACTACAATGCGATGATCGACGAGGGCGGGAATGTCTATTTCCTGTCCAAGCTGTTCTCGACCGACGGCAAGAGCTTCCAGTTCGCCGCCGGCTCGATGACCGGCATGACTCAGGAAGAATATGCACAGATGATGATCGATGGCGGCCGTTCGCCCGCGGGTGTGCGCTCGATCAAGGGAGGCTACTGA
[配列番号20]ligB遺伝子
ATGGCACGCGTTACCACGGGCATCACGTCCAGCCACATTCCCGCGCTCGGCGCGGCCATCCAGACCGGCACCAGCGACAATGATTACTGGGGCCCGGTGTTCAAGGGCTACCAGCCGATCCGCGACTGGATCAAGCAGCCCGGCAACATGCCGGACGTCGTGATCCTGGTCTATAACGACCATGCCTCGGCCTTCGACATGAACATCATCCCGACCTTCGCGATCGGCTGCGCGGAAACGTTCAAGCCCGCCGACGAGGGATGGGGCCCGCGCCCGGTGCCCGACGTGAAGGGCCATCCGGACCTTGCCTGGCACATCGCCCAGAGCCTGATCCTCGACGAGTTCGACATGACCATCATGAACCAGATGGACGTCGATCATGGCTGCACCGTGCCGCTCTCGATGATCTTCGGCGAGCCCGAGGAATGGCCGTGCAAGGTCATCCCCTTCCCGGTCAATGTCGTCACTTATCCGCCGCCGTCGGGCAAGCGCTGCTTCGCGCTCGGTGACAGCATCCGCGCCGCGGTCGAGAGCTTCCCGGAAGACCTCAACGTCCATGTCTGGGGCACCGGCGGCATGAGCCACCAGCTTCAGGGCCCGCGCGCCGGCCTCATCAACAAGGAGTTCGACCTGAACTTCATCGACAAGCTGATCAGCGACCCCGAGGAGCTGAGCAAGATGCCGCACATCCAGTATCTGCGCGAAAGCGGATCGGAAGGCATCGAGCTGGTCATGTGGCTCATCATGCGCGGCGCGCTGCCGGAGAAGGTGCGGGATCTCTACACCTTCTATCACATCCCGGCCTCCAACACCGCGCTCGGCGCGATGATCCTGCAGCCGGAGGAGACCGCAGGTACACCGCTCGAACCGCGCAAGGTGATGAGCGGACACAGCCTGGCCCAGGCCTGA
[配列番号21]catA遺伝子
ATGACCGTGAAAATTTCCCACACTGCCGACATTCAAGCCTTCTTCAACCGGGTAGCTGGCCTGGACCATGCCGAAGGAAACCCGCGCTTCAAGCAGATCATTCTGCGCGTGCTGCAAGACACCGCCCGCCTGATCGAAGACCTGGAGATTACCGAGGACGAGTTCTGGCACGCCGTCGACTACCTCAACCGCCTGGGCGGCCGTAACGAGGCAGGCCTGCTGGCTGCTGGCCTGGGTATCGAGCACTTCCTCGACCTGCTGCAGGATGCCAAGGATGCCGAAGCCGGCCTTGGCGGCGGCACCCCGCGCACCATCGAAGGCCCGTTGTACGTTGCCGGGGCGCCGCTGGCCCAGGGCGAAGCGCGCATGGACGACGGCACTGACCCAGGCGTGGTGATGTTCCTTCAGGGCCAGGTGTTCGATGCCGACGGCAAGCCGTTGGCCGGTGCCACCGTCGACCTGTGGCACGCCAATACCCAGGGCACCTATTCGTACTTCGATTCGACCCAGTCCGAGTTCAACCTGCGTCGGCGTATCATCACCGATGCCGAGGGCCGCTACCGCGCGCGCTCGATCGTGCCGTCCGGGTATGGCTGCGACCCGCAGGGCCCAACCCAGGAATGCCTGGACCTGCTCGGCCGCCACGGCCAGCGCCCGGCGCACGTGCACTTCTTCATCTCGGCACCGGGGCACCGCCACCTGACCACGCAGATCAACTTTGCTGGCGACAAGTACCTGTGGGACGACTTTGCCTATGCCACCCGCGACGGGCTGATCGGCGAACTGCGTTTTGTCGAGGATGCGGCGGCGGCGCGCGACCGCGGTGTGCAAGGCGAGCGCTTTGCCGAGCTGTCATTCGACTTCCGCTTGCAGGGTGCCAAGTCGCCTGACGCCGAGGCGCGAAGCCATCGGCCGCGGGCGTTGCAGGAGGGCTGA
[配列番号22]aroY遺伝子
ATGACCGCACCGATTCAGGATCTGCGCGACGCCATCGCGCTGCTGCAACAGCATGACAATCAGTATCTCGAAACCGATCATCCGGTTGACCCTAACGCCGAGCTGGCCGGTGTTTATCGCCATATCGGCGCGGGCGGCACCGTGAAGCGCCCCACCCGCATCGGGCCGGCGATGATGTTTAACAATATTAAGGGTTATCCACACTCGCGCATTCTGGTGGGTATGCACGCCAGCCGCCAGCGGGCCGCGCTGCTGCTGGGCTGCGAAGCCTCGCAGCTGGCCCTTGAAGTGGGTAAGGCGGTGAAAAAACCGGTCGCGCCGGTGGTCGTCCCGGCCAGCAGCGCCCCCTGCCAGGAACAGATCTTTCTGGCCGACGATCCGGATTTTGATTTGCGCACCCTGCTTCCGGCGCCCACCAACACCCCTATCGACGCCGGCCCCTTCTTCTGCCTGGGCCTGGCGCTGGCCAGCGATCCCGTCGACGCCTCGCTGACCGACGTCACCATCCACCGCTTGTGCGTCCAGGGCCGGGATGAGCTGTCGATGTTTCTTGCCGCCGGCCGCCATATCGAAGTGTTTCGCCAAAAGGCCGAGGCCGCCGGCAAACCGCTGCCGATAACCATCAATATGGGTCTCGATCCGGCCATCTATATTGGCGCCTGCTTCGAAGCCCCTACCACGCCGTTCGGCTATAATGAGCTGGGCGTCGCCGGCGCGCTGCGTCAACGTCCGGTGGAGCTGGTTCAGGGCGTCAGCGTCCCGGAGAAAGCCATCGCCCGCGCCGAGATCGTTATCGAAGGTGAGCTGTTGCCTGGCGTGCGCGTCAGAGAGGATCAGCACACCAATAGCGGCCACGCGATGCCGGAATTTCCTGGCTACTGCGGCGGCGCTAATCCGTCGCTGCCGGTAATCAAAGTCAAAGCAGTGACCATGCGAAACAATGCGATTCTGCAGACCCTGGTGGGACCGGGGGAAGAGCATACCACCCTCGCCGGCCTGCCAACGGAAGCCAGTATCTGGAATGCCGTCGAGGCCGCCATTCCGGGCTTTTTACAAAATGTCTACGCCCACACCGCGGGTGGCGGTAAGTTCCTCGGGATCCTGCAGGTGAAAAAACGTCAACCCGCCGATGAAGGCCGGCAGGGGCAGGCCGCGCTGCTGGCGCTGGCGACCTATTCCGAGCTAAAAAATATTATTCTGGTTGATGAAGATGTCGACATCTTTGACAGCGACGATATCCTGTGGGCGATGACCACCCGCATGCAGGGGGACGTCAGCATTACGACAATCCCCGGCATTCGCGGTCACCAGCTGGATCCGTCCCAGACGCCGGAATACAGCCCGTCGATCCGTGGAAATGGCATCAGCTGCAAGACCATTTTTGACTGCACGGTCCCCTGGGCGCTGAAATCGCACTTTGAGCGCGCGCCGTTTGCCGACGTCGATCCGCGTCCGTTTGCACCGGAGTATTTCGCCCGGCTGGAAAAAAACCAGGGTAGCGCAAAATAA
[配列番号23]kpdB遺伝子
ATGAAACTGATTATTGGGATGACGGGGGCCACCGGGGCACCGCTTGGGGTGGCATTGCTGCAGGCGCTGCGCGATATGCCGGAGGTGGAAACCCATCTGGTGATGTCGAAATGGGCCAAAACCACCATCGAGCTGGAAACGCCCTGGACGGCGCGCGAAGTGGCCGCGCTGGCGGACTTTTCCCACAGCCCGGCAGACCAGGCCGCCACCATCTCATCCGGTTCATTTCGTACCGACGGCATGATCGTTATTCCCTGCAGTATGAAAACGCTTGCAGGCATTCGCGCGGGTTATGCCGAAGGACTGGTGGGCCGCGCGGCGGACGTGGTGCTCAAAGAGGGGCGCAAGCTGGTGTTGGTCCCGCGGGAAATGCCGCTCAGCACGATCCATCTGGAGAACATGCTGGCGCTGTCCCGCATGGGCGTGGCGATGGTCCCGCCGATGTCAGCTTACTACAACCACCCGGAGACGGTTGACGATATCACCAATCATATCGTCACCCGGGTGCTGGATCAGTTTGGCCTCGACTATCACAAAGCGCGCCGCTGGAACGGCTTGCGCACGGCAGAACAATTTGCACAGGAGATCGAATAA
[配列番号24]ligM遺伝子
ATGTCGGCACCTACCAATCTTGAACAAGTGCTTGCCGCCGGCGGCAACACCGTCGAAATGCTGCGCAACAGCCAGATCGGTGCCTATGTGTATCCGGTGGTGGCGCCGGAATTCTCCAACTGGCGCACCGAGCAGTGGGCATGGCGCAATTCGGCAGTGCTCTTCGACCAGACCCACCACATGGTCGACCTCTACATCCGTGGCAAGGACGCGCTGAAGCTGCTCTCCGACACGATGATCAACTCGCCCAAGGGCTGGGAGCCCAACAAGGCGAAGCAGTACGTGCCCGTGACGCCTTATGGCCATGTCATCGGCGACGGCATCATCTTCTACCTCGCCGAGGAAGAGTTCGTGTATGTCGGCCGCGCGCCGGCCGCCAACTGGCTGATGTATCATGCGCAGACCGGCGGTTATAACGTCGACATCGTGCATGACGACCGCTCGCCGAGCCGCCCGATGGGCAAGCCGGTGCAGCGCATCTCCTGGCGCTTCCAGATCCAGGGCCCGAAGGCCTGGGACGTGATCGAGAAGCTGCACGGCGGCACGCTCGAGAAGCTCAAATTCTTCAACATGGCCGAGATGAACATCGCCGGTATGAAGATCCGCACCCTGCGTCACGGCATGGCCGGCGCGCCGGGTCTCGAGATCTGGGGTCCCTACGAAACCCAGGAGAAGGCCCGCAACGCGATCCTCGAGGCAGGCAAGGAATTCGGCCTCATCCCGGTCGGTTCGCGCGCCTATCCGTCCAACACGCTGGAATCCGGCTGGATCCCGAGCCCGCTGCCGGCCATCTACACCGGCGACAAGCTCAAGGCCTATCGCGAGTGGCTGCCGGCCAACAGCTATGAGGCGAGCGGCGCCATCGGCGGTTCGTTCGTGTCCAGCAACATCGAGGACTATTACGTCAATCCCTACGAGATCGGCTATGGTCCCTTCGTGAAGTTCGACCACGACTTCATCGGCCGCGACGCTCTCGAGGCGATCGACCCGGCCACGCAGCGCAAGAAGGTCACGCTGGCCTGGAACGGCGACGACATGGCGAAGATCTACGCTTCGCTGTTCGACACCGAGGCCGACGCGCACTACAAGTTCTTCGACCTGCCGCTGGCCAATTATGCCAACACCAACGCCGACGCCGTGCTCGACGCGGCCGGCAACGTGGTCGGCATGTCGATGTTCACCGGCTATTCCTACAACGAGAAGCGCGCGCTTTCGCTCGCGACGATCGACCACGAGATCCCCGTCGGCACCGAGCTGACGGTCCTGTGGGGCGAGGAAAATGGCGGTACGCGCAAGACCACGGTCGAGCCGCACAAGCAGATGGCCGTGCGCGCCGTCGTGAGCCCGGTCCCCTATTCGGTGACCGCGCGCGAGACGTACGAAGGCGGCTGGCGCAAGGCTGCCGTCACGGCCTGA
[配列番号25]vanA遺伝子
ATGTACCCCAAAAACACCTGGTACGTCGCCTGCACCCCCGATGAGATCGCCACCAAACCCCTGGGCCGGCAGATCTGCGGGGAAAAAATCGTGTTCTACCGCGCCCGCGAGAACCAAGTAGCCGCCGTCGAGGACTTCTGCCCGCACCGCGGCGCACCGTTGTCGTTGGGCTATGTCGAGGACGGCAACCTGGTGTGCGGCTACCACGGCCTGGTGATGGGTTGCGACGGCAAGACCGTGTCGATGCCGGGCCAACGGGTGCGTGGCTTCCCCTGCAACAAGACCTTTGCGGCCGTCGAGCGCTATGGCTTCATCTGGGTCTGGCCCGGTGACCAGGCGCAGGCCGACCCGGCGCTGATTCCGCATCTGGAATGGGCGGTGAGTGATGAGTGGGCCTACGGCGGCGGGCTGTTCCACATCGGTTGCGACTACCGCCTGATGATCGACAACCTCATGGACCTCACCCATGAAACCTATGTGCACGCCTCCAGCATCGGCCAGAAGGAGATCGACGAGGCACCGCCGGTCACCACCGTCACCGGCGACGAAGTGGTCACCGCCCGGCACATGGAAAACATCATGGCGCCACCGTTCTGGCGCATGGCCTTGCGTGGCAATGGCCTGGCCGACGATGTACCAGTGGACCGCTGGCAGATCTGCCGTTTCACCCCACCTAGCCATGTGCTGATCGAAGTGGGTGTAGCGCATGCCGGCAAGGGCGGCTACCACGCCGAGGCACAGCATAAGGCGTCGAGCATCGTGGTCGACTTCATCACCCCTGAGAGCGATACCTCTATCTGGTACTTCTGGGGCATGGCGCGCAACTTCGCTGCGCACGACCAGACCCTGACCGACAACATTCGTGAGGGCCAGGGCAAGATTTTCAGCGAAGACCTGGAAATGCTCGAACGCCAGCAGCAGAACCTGCTGGCCCACCCCGAGCGCAACTTGCTGAAGCTGAATATCGACGCCGGCGGCGTGCAGTCACGCAAAGTGCTGGAGCGGATCATCGCCCAAGAGCGTGCGCCGCAGCCGCAACTGATCGCCACCAGCGCCAACCCTGCCTGA
[配列番号26]vanB遺伝子
ATGATCGATGCCGTAGTGGTATCCCGTAACGATGAAGCGCAGGGTATCTGCAGCTTCGAGCTGGCCGCGGCAGATGGCAGCCTGCTGCCGGCGTTCAGCGCCGGCGCCCATATCGACGTGCACCTGCCCGACGGGCTGGTGCGCCAGTATTCGCTGTGCAACCACCCCGAAGAACGCCATCGCTATCTGATTGGCGTACTCAACGACCCGGCTTCGCGGGGCGGTTCTCGTAGCCTGCACGAACAGGTGCAAGCCGGTGCCCGGCTGCGTATCAGTGCGCCGCGCAACCTGTTCCCGCTGGCCGAGGGTGCGCAGCGCAGTTTGCTGTTTGCTGGCGGTATCGGCATTACCCCAATCCTGTGCATGGCCGAGCAGCTGTCCGACAGCGGCCAGGCCTTCGAGCTGCACTACTGTGCCCGCTCCAGCGAGCGTGCGGCGTTTGTCGAGCGGATCCGCAGCGCGCCGTTCGCTGATCGGCTGTTCGTGCATTTTGACGAGCAGCCGGAAACGGCGCTGGACATCGCCCAGGTGCTGGGCAACCCGCAAGATGATGTGCACCTGTATGTATGCGGGCCCGGCGGGTTCATGCAGCATGTGCTGGACAGCGCGAAGGGGCTGGGCTGGCAGGAGGCCAACCTGCACCGCGAGTACTTCGCCGCAGCACCGGTGGATGCCAGCAACGATGGCAGTTTCGCGGTGCAGGTGGGCAGCACGGGACAGGTGTTCGAGGTGCCAGCCGACCGGACCGTGGTGCAGGTGCTGGAAGAGAATGGTATCGAGATCGCCATGTCGTGCGAGCAGGGTATTTGCGGCACCTGCCTGACACGCGTGCTGCAGGGCACACCGGACCATCGCGATCTGTTTCTCACCGAAGAGGAACAGGCCCTGAACGATCAGTTCACGCCCTGCTGCTCGCGCTCGAAGACGCCGCTGCTGGTGCTGGACATCTGA
[配列番号27]LigA
MTEKKERIDVHAYLAEFDDIPGTRVFTAQRARKGYNLNQFAMSLMKAENRERFKADESAYLDEWNLTPAAKAAVLARDYNAMIDEGGNVYFLSKLFSTDGKSFQFAAGSMTGMTQEEYAQMMIDGGRSPAGVRSIKGG
[配列番号28]LigB
MARVTTGITSSHIPALGAAIQTGTSDNDYWGPVFKGYQPIRDWIKQPGNMPDVVILVYNDHASAFDMNIIPTFAIGCAETFKPADEGWGPRPVPDVKGHPDLAWHIAQSLILDEFDMTIMNQMDVDHGCTVPLSMIFGEPEEWPCKVIPFPVNVVTYPPPSGKRCFALGDSIRAAVESFPEDLNVHVWGTGGMSHQLQGPRAGLINKEFDLNFIDKLISDPEELSKMPHIQYLRESGSEGVELVMWLIMRGALPEKVRDLYTFYHIPASNTALGAMILQPEETAGTPLEPRKVMSGHSLAQA
[配列番号29]CatA
MTVKISHTADIQAFFNRVAGLDHAEGNPRFKQIILRVLQDTARLIEDLEITEDEFWHAVDYLNRLGGRNEAGLLAAGLGIEHFLDLLQDAKDAEAGLGGGTPRTIEGPLYVAGAPLAQGEARMDDGTDPGVVMFLQGQVFDADGKPLAGATVDLWHANTQGTYSYFDSTQSEFNLRRRIITDAEGRYRARSIVPSGYGCDPQGPTQECLDLLGRHGQRPAHVHFFISAPGHRHLTTQINFAGDKYLWDDFAYATRDGLIGELRFVEDAAAARDRGVQGERFAELSFDFRLQGAKSPDAEARSHRPRALQEG
[配列番号30]AroY
MTAPIQDLRDAIALLQQHDNQYLETDHPVDPNAELAGVYRHIGAGGTVKRPTRIGPAMMFNNIKGYPHSRILVGMHASRQRAALLLGCEASQLALEVGKAVKKPVAPVVVPASSAPCQEQIFLADDPDFDLRTLLPAPTNTPIDAGPFFCLGLALASDPVDASLTDVTIHRLCVQGRDELSMFLAAGRHIEVFRQKAEAAGKPLPITINMGLDPAIYIGACFEAPTTPFGYNELGVAGALRQRPVELVQGVSVPEKAIARAEIVIEGELLPGVRVREDQHTNSGHAMPEFPGYCGGANPSLPVIKVKAVTMRNNAILQTLVGPGEEHTTLAGLPTEASIWNAVEAAIPGFLQNVYAHTAGGGKFLGILQVKKRQPADEGRQGQAALLALATYSELKNIILVDEDVDIFDSDDILWAMTTRMQGDVSITTIPGIRGHQLDPSQTPEYSPSIRGNGISCKTIFDCTVPWALKSHFERAPFADVDPRPFAPEYFARLEKNQGSAK
[配列番号31]KpdB
MKLIIGMTGATGAPLGVALLQALRDMPEVETHLVMSKWAKTTIELETPWTAREVAALADFSHSPADQAATISSGSFRTDGMIVIPCSMKTLAGIRAGYAEGLVGRAADVVLKEGRKLVLVPREMPLSTIHLENMLALSRMGVAMVPPMPAYYNHPETVDDITNHIVTRVLDQFGLDYHKARRWNGLRTAEQFAQEIE
[配列番号32]LigM
MSAPTNLEQVLAAGGNTVEMLRNSQIGAYVYPVVAPEFSNWRTEQWAWRNSAVLFDQTHHMVDLYIRGKDALKLLSDTMINSPKGWEPNKAKQYVPVTPYGHVIGDGIIFYLAEEEFVYVGRAPAANWLMYHAQTGGYNVDIVHDDRSPSRPMGKPVQRISWRFQIQGPKAWDVIEKLHGGTLEKLKFFNMAEMNIAGMKIRTLRHGMAGAPGLEIWGPYETQEKARNAILEAGKEFGLIPVGSRAYPSNTLESGWIPSPLPAIYTGDKLKAYREWLPANSYEASGAIGGSFVSSNIEDYYVNPYEIGYGPFVKFDHDFIGRDALEAIDPATQRKKVTLAWNGDDMAKIYASLFDTEADAHYKFFDLPLANYANTNADAVLDAAGNVVGMSMFTGYSYNEKRALSLATIDHEIPVGTELTVLWGEENGGTRKTTVEPHKQMAVRAVVSPVPYSVTARETYEGGWRKAAVTA
[配列番号33]VanA
MYPKNTWYVACTPDEIATKPLGRQICGEKIVFYRARENQVAAVEDFCPHRGAPLSLGYVEDGNLVCGYHGLVMGCDGKTVSMPGQRVRGFPCNKTFAAVERYGFIWVWPGDQAQADPALIPHLEWAVSDEWAYGGGLFHIGCDYRLMIDNLMDLTHETYVHASSIGQKEIDEAPPVTTVTGDEVVTARHMENIMAPPFWRMALRGNGLADDVPVDRWQICRFTPPSHVLIEVGVAHAGKGGYHAEAQHKASSIVVDFITPESDTSIWYFWGMARNFAAHDQTLTDNIREGQGKIFSEDLEMLERQQQNLLAHPERNLLKLNIDAGGVQSRKVLERIIAQERAPQPQLIATSANPA
[配列番号34]VanB
MIDAVVVSRNDEAQGICSFELAAADGSLLPAFSAGAHIDVHLPDGLVRQYSLCNHPEERHRYLIGVLNDPASRGGSRSLHEQVQAGARLRISAPRNLFPLAEGAQRSLLFAGGIGITPILCMAEQLSDSGQAFELHYCARSSERAAFVERIRSAPFADRLFVHFDEQPETALDIAQVLGNPQDDVHLYVCGPGGFMQHVLDSAKGLGWQEANLHREYFAAAPVDASNDGSFAVQVGSTGQVFEVPADRTVVQVLEENGIEIAMSCEQGICGTCLTRVLQGTPDHRDLFLTEEEQALNDQFTPCCSRSKTPLLVLDI
[配列番号35]pcaH遺伝子
ATGCCCGCCCAGGACAACAGCCGCTTCGTGATCCGTGATCGCAACTGGCACCCTAAAGCCCTTACGCCTGACTACAAGACCTCCGTTGCCCGCTCGCCGCGCCAGGCACTGGTCAGCATTCCGCAGTCGATCAGCGAAACCACTGGTCCGGACTTTTCCCATCTGGGCTTCGGCGCCCACGACCATGACCTGCTGCTGAACTTCAATAACGGTGGCCTGCCCATTGGCGAGCGCATCATCGTCGCCGGCCGTGTCGTCGACCAGTACGGCAAGCCTGTGCCGAACACTTTGGTGGAGATGTGGCAAGCCAACGCCGGCGGCCGCTATCGCCACAAGAACGATCGCTACCTGGCGCCCCTGGACCCGAACTTCGGTGGTGTTGGGCGGTGTCTGACCGACCGTGACGGCTATTACAGCTTCCGCACCATCAAGCCGGGCCCGTACCCATGGCGCAACGGCCCGAACGACTGGCGCCCGGCGCATATCCACTTCGCCATCAGCGGCCCATCGATCGCCACCAAGCTGATCACCCAGTTGTACTTCGAAGGTGACCCGCTGATCCCGATGTGCCCGATCGTCAAGTCGATCGCCAACCCGCAAGCCGTGCAGCAGTTGATCGCCAAGCTCGACATGAGCAACGCCAACCCGATGGACTGCCTGGCCTACCGCTTTGACATCGTGCTGCGCGGCCAGCGCAAGACCCACTTCGAAAACTGCTGA
[配列番号36]pcaG遺伝子
ATGCCAATCGAACTGCTGCCGGAAACCCCTTCGCAGACTGCCGGCCCCTACGTGCACATCGGCCTGGCCCTGGAAGCCGCCGGCAACCCGACCCGCGACCAGGAAATCTGGAACTGCCTGGCCAAGCCAGACGCCCCGGGCGAGCACATTCTGCTGATCGGCCACGTATATGACGGAAACGGCCACCTGGTGCGCGACTCGTTCCTGGAAGTGTGGCAGGCCGACGCCAACGGTGAGTACCAGGATGCCTACAACCTGGAAAACGCCTTCAACAGCTTTGGCCGCACGGCTACCACCTTCGATGCCGGTGAGTGGACGCTGCAAACGGTCAAGCCGGGTGTGGTGAACAACGCTGCTGGCGTGCCGATGGCGCCGCACATCAACATCAGCCTGTTTGCCCGTGGCATCAACATCCACCTGCACACGCGCCTGTATTTCGATGATGAGGCCCAGGCCAATGCCAAGTGCCCGGTGCTCAACCTGATCGAGCAGCCGCAGCGGCGTGAAACCTTGATTGCCAAGCGTTGCGAAGTGGATGGGAAGACGGCGTACCGCTTTGATATCCGCATTCAGGGGGAAGGGGAGACCGTCTTCTTCGACTTCTGA
[配列番号37]praA遺伝子
ATGTCACTGGAAATGGCTTTGTTAGCCGCGCATGTCCCAAGCATTTGTCATGAATCTAATGTGCCTGATTTCCAACAGGATTTGGTCAAGGGGCTGAAGCAGATGCGGGACCGCATCAACGAGCTTCAGACAGATGTGATTTTGCTGATGTCCTGCCACTTTCCGGCAACCTTTCATCACTATGTGGATGCAACACCGCGGCATACCGGCATATTAACGGCGATGGAGTGTCCGGATCTGATCTCGGACGTACCGTATGACTATCCTGGGGATGAGGAGCTGGCGCGTAAGCTGGTAACCGCGGGCCAAGAGGCAGGCCTTCCCATCGTGGAGATCAATGATCCGACTTACATTTGGGATTACGGTACCGTCGTTCCGCTGCGGTACTTGGTTCCGAACCAAGACAAATCGGTCATCAGCTTGTCGGTATGCTGGGCTTCCAGCCTGGAGGAATCGTACCAGTGGGGCGTTCAAATCGGCAAGGTGCTGAGGGAAAGCGAGAAGCGGGCGGTGTTCATCAGCAGCGGCGCTTTATCTCACAACTTGGTCCGGGGACGTCACCATATGCCGAGCCGCTCCGAGCAAGCCATGGATAACCAATTCATCGAATATTTACTGAACGGAGATTATAACGCTGCCCGTGAAATGCTAAACCAATATGCGCGTATTGCGGGTGTGGAATCCGGAGGACGCCATCTGGCCGCCTTGCTGGGTGTGCTGGATGATAAGCAGCGCGCCGAGTTTTGGGGATACGGCCAATCTTCCGGCAGCGGCAACGCCATTATCTCGTTTGTATCATGA
[配列番号38]desA遺伝子
ATGGCGAAAAGTCTTCAAGATGTGCTGGACAATGCCGGAAATGCAGTCGATTTCCTGCGCAACCAGCAGACCGGCCCGAACGTCTATCCCGGCGTCCCGGCGGAATATTCCAACTGGCGCAACGAGCAGCGCGCATGGGCCAAGACCGCCGTGCTCTTCAACCAGAGCTACCACATGGTCGAGCTGATGGTCGAAGGCCCCGACGCCTTCGCCTTCCTCAACTATCTCGGCATCAACAGCTTCAAGAACTTCGCGCCCGGCAAGGCCAAGCAGTGGGTTCCGGTGACGGCCGAGGGCTATGTCATCGGCGACGTGATCCTGTTCTATCTCGCCGAGAACCAGTTCAACCTCGTCGGCCGCGCGCCGGCCATCGAGTGGGCCGAGTTCCATGCCGCCACCGGCAAGTGGAACGTGACGCTCACCCGTGACGAGCGCACCGCGCTGCGCACCGACGGCGTGCGTCGCCACTATCGCTTCCAGCTGCAGGGCCCCAACGCCATGGCGATCCTAACGGACGCGATGGGCCAGACCCCGCCGGACCTCAAATTCTTCAACATGGCGGACATCCAGATCGCCGGGAAGACCGTCGGCGCGCTGCGTCACGGCATGGCCGGTCAGCCGGGCTATGAGCTCTATGGTCCCTGGGCGGATTATGAGGCGGTTCATTCGGCGCTGGTCGCGGCCGGCAAGAACCATGGGCTGGCGCTCGTCGGCGGCCGTGCCTATTCGTCCAACACGCTGGAATCCGGCTGGGTGCCCTCGCCGTTCCCGGGCTATCTCTTCGGCGAAGGCTCGGCCGACTTCCGCAAGTGGGCCGGCGAGAACAGCTATGGCGCCAAGTGCTCCATCGGCGGTTCCTATGTGCCCGAGAGCCTGGAAGGCTATGGCCTGACGCCCTGGGACATCGGCTATGGCATCATCGTCAAGTTCGACCATGACTTCATCGGCAAGGAAGCGCTGGAGAAGATGGCGAACGAGCCGCACCTCGAGAAGGTGACGCTGGCGCTGGACGACGAGGACATGCTGCGCGTGATGAGCAGCTATTTCTCGGACTCCGGTCGTGCGAAATATTTCGAGTTCCCGAGCGCGGTCTACTCGATGCACCCCTATGACTCGGTGCTGGTCGACGGCAAGCATGTCGGCGTCTCGACCTGGGTCGGCTACTCGTCGAACGAGGGCAAGATGCTCACGCTCGCGATGATCGATCCCAAATATGCCAAGCCCGGCACGGAAGTCTCGCTGCTCTGGGGCGAGCCCAATGGCGGCACCTCCAAGCCGACCGTCGAGCCGCACGAGCAGACGGAGATCAAGGCGGTCGTGGCGCCGGTGCCGTACTCGGCCGTGGCGCGCACGGGCTATGCCGACAGCTGGCGCACCAAGAAGGCCTGA
本発明の一態様の形質転換微生物や製造方法によって、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物や広葉樹由来のシリンギルリグニンを含むバイオマスなどから、ムコン酸やプロトカテク酸が得られる。ムコン酸やプロトカテク酸は、種々の産業上有用な化合物に変換することができ、例えば、界面活性剤、難燃剤、UV光安定化剤、熱硬化性プラスチック、コーティング剤、医薬品、農薬、香料などの原料として利用することができる。

Claims (5)

  1. 宿主微生物が染色体上にligA遺伝子及びligB遺伝子からなる群から選ばれるプロトカテク酸分解酵素遺伝子を有し、かつ、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物を資化するスフィンゴビウム・スピーシーズ(Sphingobium species) SYK-6株、スフィンゴビウム・スピーシーズ 66-54株、スフィンゴモナス・ヘングシュイエンシス(Sphingomonas hengshuiensis) WHSC-8株、ノボスフィンゴビウム・スピーシーズ(Novosphingobium sp.) PP1Y株又はノボスフィンゴビウム・スピーシーズ AAP93株であり、
    染色体上にある該プロトカテク酸分解酵素遺伝子が欠失しており、
    挿入されたcatA遺伝子を発現し、かつ、
    挿入されたaroY遺伝子又はaroY遺伝子及びkpdB遺伝子を発現する、
    形質転換微生物。
  2. 挿入された前記aroY遺伝子、前記kpdB遺伝子及び前記catA遺伝子は、同一プロモーターの制御下にある、請求項1に記載の形質転換微生物。
  3. 前記形質転換微生物は、挿入されたvanA遺伝子及びvanB遺伝子をさらに発現する、請求項1に記載の形質転換微生物。
  4. 挿入された前記aroY遺伝子、前記kpdB遺伝子、前記catA遺伝子、前記vanA遺伝子及び前記vanB遺伝子は、同一プロモーターの制御下にある、請求項3に記載の形質転換微生物。
  5. p-ヒドロキシフェニルリグニン由来の芳香族化合物及び/又はグアイアシルリグニン由来の芳香族化合物と、シリンギルリグニン由来の芳香族化合物とを、請求項1~のいずれか1項に記載の形質転換微生物に作用させることにより、ムコン酸を得る工程を含む、ムコン酸の製造方法。
JP2019514547A 2017-04-25 2018-04-24 形質転換微生物及びその利用 Active JP7067706B2 (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2017086595 2017-04-25
JP2017086595 2017-04-25
PCT/JP2018/016675 WO2018199112A1 (ja) 2017-04-25 2018-04-24 形質転換微生物及びその利用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2018199112A1 JPWO2018199112A1 (ja) 2020-04-23
JP7067706B2 true JP7067706B2 (ja) 2022-05-16

Family

ID=63919071

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2019514547A Active JP7067706B2 (ja) 2017-04-25 2018-04-24 形質転換微生物及びその利用

Country Status (2)

Country Link
JP (1) JP7067706B2 (ja)
WO (1) WO2018199112A1 (ja)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110317760B (zh) * 2019-07-22 2020-09-29 肇庆学院 一株PAHs-重金属复合污染降解/吸附菌及其在环境污染修复中的应用
JP2023074007A (ja) * 2021-11-16 2023-05-26 花王株式会社 ジヒドロキシフェニルアラニンの製造方法
WO2023190564A1 (ja) * 2022-03-29 2023-10-05 国立研究開発法人理化学研究所 メタクリル酸の製造方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010207094A (ja) 2009-03-06 2010-09-24 Genaris Inc プロトカテク酸の製造法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010207094A (ja) 2009-03-06 2010-09-24 Genaris Inc プロトカテク酸の製造法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Journal of Bacteriology, 2005, Vol.187, p.2030-2037
Metabolic Engineering Communications, 2016, Vol.3, p.111-119
菊地晟弘,他,リグニン由来フェノール類を原料としたムコン酸生産,日本農芸化学会大会講演要旨集,2016, 発表番号2A028

Also Published As

Publication number Publication date
WO2018199112A1 (ja) 2018-11-01
JPWO2018199112A1 (ja) 2020-04-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10597685B2 (en) Host cells and methods for oxidizing aromatic amino acids
JP7049408B2 (ja) 3-ヒドロキシプロピオン酸によって発現が誘導されるプロモーターシステム及びそれを用いた3-ヒドロキシプロピオン酸の生物学的生産方法
JP2010207094A (ja) プロトカテク酸の製造法
JP7067706B2 (ja) 形質転換微生物及びその利用
WO2007129465A1 (ja) 補酵素合成強化によるヒドロキシカルボン酸類の生産方法
JP5142268B2 (ja) 改良型没食子酸合成酵素および没食子酸の製造法
Wang et al. A new approach for efficient synthesis of phenyllactic acid from L‐phenylalanine: pathway design and cofactor engineering
JP5140848B2 (ja) 没食子酸の製造法
KR102149044B1 (ko) 2-히드록시 감마 부티로락톤 또는 2,4-디히드록시-부티레이트 의 제조 방법
Ryu et al. Isoeugenol monooxygenase and its putative regulatory gene are located in the eugenol metabolic gene cluster in Pseudomonas nitroreducens Jin1
KR101163542B1 (ko) 이소유제놀로부터 생물전환된 바닐린 제조방법
JP2011067139A (ja) 組換えベクター、形質転換体、及び2h−ピラン−2−オン−4,6−ジカルボン酸の製造方法
US11845972B2 (en) Muconic acid-producing transformed microorganism and use thereof
JP7083124B2 (ja) ムコン酸産生形質転換微生物及びその利用
WO2022210236A1 (ja) バニリン酸産生形質転換微生物及びその利用
WO2018199111A1 (ja) ムコン酸産生形質転換微生物及びその利用
JP5789366B2 (ja) 新規なスチレンモノオキシゲナーゼ、その製造方法、およびこれを利用する光学活性なスチレンオキシドの製造方法
JP2005278414A (ja) 1,3−プロパンジオール及び3−ヒドロキシプロピオン酸を製造する方法
JP2024109093A (ja) アセトバニロン変換酵素遺伝子及びそれを用いた有用物質生産
JP2024517485A (ja) フェニルプロパノイド化合物の生合成
JP2006246701A (ja) 中央代謝系の酵素活性が増強された酢酸菌、及び該酢酸菌を用いた食酢の製造方法
JP5678356B2 (ja) フェノール酸の製造法
JP2017121203A (ja) ジヒドロキシナフタレンの製造方法
JP5935225B2 (ja) 酵素を利用したフェニルプロパン系化合物の製造方法
WO2015119281A1 (ja) 酵素を利用したフェニルプロパン系化合物中間体の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20191122

AA64 Notification of invalidation of claim of internal priority (with term)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A241764

Effective date: 20200204

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20200220

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20200220

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20210317

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20220125

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20220310

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20220405

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20220415

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7067706

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150