JP7046015B2 - ジカウイルス感染の治療のための方法及び組成物 - Google Patents
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Description
本開示の化合物は、イムシリンとして一般的に既知の9-デアザアデニン誘導体であり、その合成は、例えば、WO 03/80620、ならびにEvans et al.のTetrahedron 2000,56,3053及びJ.Org.Chem.2001,66(17),5723に記載されている(それらの各々は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる)。同様の構造の合成は、例えば、米国特許第5,985,848号、同第6,066,722号、同第6,228,741号、ならびにPCT公開第WO2003/080620号及び同第2008/030119号で考察されている(それらの各々は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる)。イムシリン誘導体は、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ(PNP)阻害剤として研究されている(Kicska et al.,J.Biol.Chem.2002,277,3219-3225及びKicska et al.,J.Biol.Chem.2002,277,3226-3231を参照されたい。それらの各々は参照によりその全体が本明細書に組み込まれる)。いくつかのイムシリンが、5´-メチルチオアデノシンホスホリラーゼ(MTAP)または5´-メチルチオアデノシンヌクレオシダーゼ(MTAN)阻害剤としても研究されている。そのような機序は、癌及び細菌感染の治療に関与している(の全体が参照により本明細書に組み込まれるWO 03/080620を参照されたい)。
本明細書で使用される場合、「本開示の化合物(複数可)」または「本発明の化合物(複数可)」という用語は、式Iの化合物を意味し、その塩(薬学的に許容される塩を含む)、互変異性型、水和物、及び/または溶媒和物を含み得る。ある特定の実施形態では、本開示の化合物は、化合物Aである。
本開示の化合物は、インビボ投与に好適な生物学的に適合する形態で対象に投与するための薬学的組成物に製剤化され得る。本開示は、薬学的に許容される担体との混合物中で本開示の化合物を含む薬学的組成物を提供する。薬学的に許容される担体は、組成物の他の成分と適合し、そのレシピエントに有害ではないという意味で許容されなければならない。本明細書で用いられる薬学的に許容される担体は、薬学的製剤用の材料として使用され、かつ鎮痛剤、緩衝剤、結合剤、崩壊剤、希釈剤、乳化剤、賦形剤、増量剤、流動促進剤、可溶化剤、安定剤、懸濁化剤、等張化剤、ビヒクル、及び増粘剤として組み込まれる、様々な有機または無機材料から選択されてもよい。酸化防止剤、芳香族化合物、着色剤、風味改良剤、防腐剤、及び甘味料などの薬学的添加剤もまた添加され得る。許容される薬学的担体の例としては、特に、カルボキシメチルセルロース、結晶セルロース、グリセリン、アラビアゴム、ラクトース、ステアリン酸マグネシウム、メチルセルロース、粉末、生理食塩水、アルギン酸ナトリウム、スクロース、デンプン、タルク、及び水が挙げられる。いくつかの実施形態では、「薬学的に許容される」という用語は、連邦政府もしくは州政府の規制機関によって承認されているか、またはU.S.Pharmacopeiaまたは動物、特にヒトにおける使用の関する他の一般に認められている薬局方に列挙されていることを意味する。
本開示の方法に従って、本開示の化合物は、有効量で対象に投与される(または対象の細胞と接触させられる)。この量は、インビボで確立された滴定曲線の分析ならびに本明細書に開示の方法及びアッセイを含む既知の手順に基づき、当業者によって容易に決定される。いくつかの実施形態では、有効量は、対象におけるジカウイルスのレベルを低下させ、かつ/または対象におけるウイルス粒子のレベルの増加を制限もしくは防止する。いくつかの実施形態では、有効量は、対象の体液中のジカウイルスのウイルス力価を低下させる。いくつかの実施形態では、有効量は、ウイルスRNAポリメラーゼなどの対象におけるジカウイルスのウイルスポリメラーゼの活性を阻害する。
AG129マウスモデルがこの研究で使用され、ジカウイルスのウイルスポリメラーゼ阻害剤の研究においてすでに使用されている。AG129マウスは、α/β(I型)及びγ(II型)インターフェロン受容体の両方を欠いている。AG129マウスは、ジカウイルス感染を受けやすく、結膜炎、神経障害及び疾患、測定可能なウイルス血症、後肢麻痺、及び死亡、ならびに感染の後期における猫背、無気力、及び興奮性を含む疾病の関連兆候を呈する。ジカウイルス感染の結果としての死亡は、一般に、ウイルス攻撃接種の用量に依存して、ウイルス攻撃接種の8日後から20~30日後に起こる。
この実験で使用した薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)及びリバビリンであった。化合物を最大100μg/mLの濃度範囲で投与した。試験の直前にMEM中で化合物を調製した。ウイルス複製の阻害を、細胞変性効果に関する感染細胞の顕微鏡検査、ニュートラルレッド(NR)色素取り込みの増加(比色定量)、及びウイルス収量低下によって判定した。化合物で処置した非感染細胞を細胞傷害性対照のために上記のように分析した。ニュートラルレッド取り込み色素アッセイ及びウイルス収量低下アッセイによって分析されるように、EC50、EC90、及びSI(選択指標)値をVero76、Huh7、及びRD細胞で決定した。結果は、3つ以上の独立した実験から提示される(標準偏差は示されていない)。マレーシア株P6-740、ウガンダ株MR-766、及びプエルトリコ株PRVABC-59の3つのジカウイルス株を、このインビトロ研究で使用した。細胞を標準条件下で維持した。
この実験で使用した薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)及びリバビリンであった。化合物Aを150mg/kg/日及び300mg/kg/日で、各々を0.05mLの生理食塩水中でIM投与し、リバビリンを、75mg/kg/日及び50mg/kg/日で、各々を0.1mLの生理食塩水の体積中でIP投与した。1日用量のIMまたはIP投与を、各々の1日用量の2分の1の2回のIM/IP注射で達成した。ジカウイルスによる感染の4時間前に、マウスに化合物A及びリバビリンの第1の用量を投与し、感染後8日間処置を継続した。
本実施例では、実施例3に記載の研究からの生存マウスを、感染後28日目の再攻撃接種に供した。28日目に、処置群の唯一の生存マウスは、群1(8匹中7匹のマウス)、正常対照(群8、8匹中8匹のマウス)、ならびにウイルス偽処置群(群2、8匹中8匹のマウス及び群6、8匹中8匹のマウス)内に存在した。全ての生存マウス(正常対照を除く)に、第1の攻撃接種と同一のジカウイルスの攻撃接種を投与した。
この実験で使用した薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)であった。化合物Aを、0.05mLの生理食塩水の体積中300mg/kg/日でIM投与した。1日用量のIM投与を、各々の1日用量の2分の1の2回のIM注射で達成した。マウスに、ジカウイルスによる感染の1、3、5、または7日後に第1の用量の化合物Aを投与し、第1の投与後8日間処置を継続した(n=10のプラセボ及びn=4の正常対照を除き、各条件に対してn=8)。ジカウイルス(マレーシア、P6-740株)を0.1mLの体積の皮下注射を介して、マウス当たり100CCID50(103pfu)の攻撃接種用量で投与した。結果を図9~11に示す。
この実験に用いた薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)であった。本実施例で使用した非ヒト霊長類(NHP)動物は、人工的に繁殖されたインドアカゲザルであった。アカゲザルは、世界中で現在広まっているジカウイルスの系統による感染を受けやすいことが報告されている(Osuna,et al.,Nat Med,PMID 27694931,October 2016。そのような教示に関して参照により本明細書に組み込まれる)。アカゲザルモデルでは、ウイルス投与の2~3日後にピークウイルス血症が観察され、雄動物は、雌動物よりもわずかに大きなピークウイルス血症を示す。体温は、このモデル系では、一般的にウイルス血症負荷と相関する。感染後、ジカウイルスRNAは、血液、血漿または血清、母乳、羊水、精液、精漿、膣分泌物、脳脊髄液、尿、唾液などが挙げられるが、これらに限定されない対象の体液または組織において、ならびに組織(脳、神経組織、ならびに男性及び女性の両方の生殖組織を含む)において検出され得る。このモデルでは、ジカウイルス感染は、本実施例におけるジカウイルス株の投与では致命的ではない。さらに、アカゲザルにおいて、最初のジカウイルス感染が再感染に対する防御免疫を誘発することが示されている。
この実験に用いた薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)であった。本実施例で使用した非ヒト霊長類(NHP)動物は、実施例6に記載される通りであった。動物は、サルレトロウイルス、ヘルペスB、及びフィロウイルスに対して血清陰性であることが予めスクリーニングされている。20匹の動物(n=20)を本実施例で使用し、5群に分けた(表4を参照されたい)。4群の動物(群1~4;それぞれに対してn=4)を化合物Aで処置した。対照群(群5;n=4)には、製剤ビヒクルのみを投与した。群1~5の全ての動物に、ジカウイルスプエルトリコ分離株PRVABC-59を投与した。ジカウイルスを105PFUの用量で皮下投与した。全血を抽出することによって動物を研究過程全体を通して監視して、ジカウイルスの存在を監視した。血液に関して投与前ならびに0、1、2、3、4、5、7、10、14、及び21日目に、かつ薬物動態学的分析のために投与前ならびに0(化合物Aの第2の投与の約2時間後)及び1日目に、試料を採取した。血漿中のジカウイルスRNAレベルを測定した。
健康なヒト対象において筋肉内注射(IM)によって投与される化合物Aの安全性、忍容性、及び薬物動態を評価するために、第1相二重盲検、プラセボ対照、用量範囲決定研究を実施した。研究を2つの部分で実施した。第1部では、対象は、IM投与を介して0.3mg/kg~10mg/kgの用量で化合物Aの単回用量を投与された。さらに、注射と関連する痛みの緩和に対するリドカイン投与(4mg/kgの用量で化合物Aと同時投与)の効果も評価した。第2部では、対象は、IM投与を介して2.5mg/kg/日、5mg/kg/日、または10mg/kg/日の用量で化合物Aを7日間(1日1回)投与された。50名の対象が、第1部において化合物Aの単回用量を投与され(12名がプラセボを投与された)、23名の対象が、第2部において化合物Aの複数回用量を投与された(6名の対象がプラセボを投与された)。様々な投与レジメンへの対象の割り当てを表5に示す。計画された全てのコホートが完了した。
化合物Aの血漿濃度時間プロファイルを、第2部の各対象に対して測定した(結果は、ng/mLの化合物Aとして表される)。第1の用量の投与前の1日目、ならびに第1の用量の化合物Aの投与後1、2、3、4、6、8、10、12、16、及び24時間、ならびに最後の用量の化合物Aの投与前の7日目、ならびに最後の用量の化合物Aの投与後1、2、3、4、6、8、10、12、16、24、36、48、72、及び96時間において、血液試料を採取した。血漿試料を血液試料から得て、化合物Aの濃度を決定した。
ジカウイルス感染は、性的接触を通じて拡大され得る。膣経路によるジカウイルス感染の動物モデルを使用して、感染様式に基づきジカウイルスのウイルス血症の差を決定した。本実施例で使用した非ヒト霊長類動物は、実施例6に記載されるような人工的に繁殖されたインドアカゲザルであった。雌動物(n=4)に、105PFUの用量(実施例6及び7の皮下投与のために使用したのと同じ用量)の膣内投与によって、ジカウイルスプエルトリコ分離株PRVABC-59を投与した。研究過程全体を通して、動物を視覚的に監視した。血液、CSF、及びCVL試料を採取して、ジカウイルスの存在を監視し、薬物動態学、薬力学、免疫活性化、及びウイルス学的パラメータを評価した。ジカウイルスRNAレベル、免疫活性化(21日目までのみ)、及びウイルス学的パラメータの決定のために、投与前ならびに0、1、2、3、4、5、7、10、14、21、及び28日目に、かつ薬物動態学的及び薬力学的分析のために、投与前ならびに0(化合物Aの第2の投与の約2時間後)、1、及び7日目に、血液試料を採取した。ジカウイルスRNAレベル及びウイルス学的パラメータの決定のために、CSF試料を0、7、14、21、及び28日目に(腰椎穿刺を介して)採取し、CVL試料を0、3、7、14、21、及び28日目に(頸膣スワブを介して)採取した。
この実験で使用される薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)である。本実施例で使用した非ヒト霊長類動物は、実施例6に記載されるような人工的に繁殖されたインドアカゲザルである。動物は、サルレトロウイルス、ヘルペスB、及びフィロウイルスに対して血清陰性であることが予めスクリーニングされる。15匹の動物(n=15)をこの研究で使用し、3群に分ける(表6を参照されたい)。動物の2つの群(群1及び2;それぞれに対してn=5)を、ジカウイルスによる膣内感染後の様々な時間において化合物Aで処置する。対照群(群3;n=5)は、同じ投与経路及び製剤ビヒクルのみによって、同じ用量のジカウイルスを投与される。群1~3の全ての動物に、研究の0日目にジカウイルスプエルトリコ分離株PRVABC-59を投与する。ジカウイルスを、105PFUの用量で膣内投与する。研究過程全体を通して、動物を視覚的に監視する。血液、CSF、及びCVL試料を採取して、ジカウイルスの存在を監視し、薬物動態学、薬力学、免疫活性化、及びウイルス学的パラメータを評価する。ジカウイルスRNAレベル、免疫活性化(21日目までのみ)、及びウイルス学的パラメータの決定のために、投与前ならびに0、1、2、3、4、5、7、10、14、21、及び28日目に、かつ薬物動態学的及び薬力学的分析のために、投与前ならびに0(化合物Aの第2の投与の約2時間後)、1、及び7日目に、血液試料を採取する。ジカウイルスRNAレベル及びウイルス学的パラメータの決定のために、CSF試料を0、7、14、21、及び28日目に(腰椎穿刺を介して)採取し、CVL試料を0、3、7、14、21、及び28日目に(頸膣スワブを介して)採取する。尿及び唾液などであるが、これらに限定されない他の体液の試料も、上記のスケジュールの1つに従って、または異なるスケジュールに従って採取され得る。
この実験で使用される薬剤は、化合物A(AがNH2であり、BがHCL塩としてのHである、式Iの化合物)である。本実施例で使用される非ヒト霊長類(NHP)動物は、実施例6に記載される通りである。動物は、サルレトロウイルス、ヘルペスB、及びフィロウイルスに対して血清陰性であることが予めスクリーニングされる。20匹の動物(n=20)をこの研究で使用し、5群に分ける(表7を参照されたい)。動物の3つの群(群1~3;それぞれに対してn=5)を、ジカウイルスによる感染後の様々な時間において化合物Aで処置する。対照群(群4;n=5)は、同じ用量のジカウイルス及び製剤ビヒクルのみを投与される。群1~4の全ての動物に、研究の0日目にジカウイルスプエルトリコ分離株PRVABC-59を投与する。ジカウイルスを、105PFUの用量で皮下投与する。研究過程全体を通して、動物を視覚的に監視する。血液試料を採取して、ジカウイルスの存在を監視し、薬物動態学、薬力学、免疫活性化、及びウイルス学的パラメータを評価する。ジカウイルスRNAレベル、免疫活性化及びウイルス学的パラメータの決定のために、投与前ならびに0、1、2、3、4、5、7、10、14、及び21日目に、かつ薬物動態学的及び薬力学的分析のために、投与前ならびに0(化合物Aの第2の投与の約2時間後)、1、及び7日目に、血液試料を採取する。
ウイルス
ジカウイルスのMR-766分離株は、1947年4月にウガンダのジカ森林のセンチネルアカゲザルから採取され、P6-740株は、1966年7月にマレーシアの蚊から採取された。これら2つのジカウイルス株は、Robert B.Tesh(University of Texas Medical Branch,Galveston,TX)によって寄贈された。ジカウイルスPRVABC-59株は、2015年12月にヒト患者の血液からプエルトリコで分離された。このウイルスは、もともとBarbara Johnson(Centers for Disease Control and Prevention,Fort Collins,CO)によって提供された。ジカウイルス株KF993678は、最近タイで休暇を過ごしたヒト患者の血液から2103年にカナダで分離された。ウイルス株は、Vero細胞中で1回または2回増幅し、MR-766、P 6-740、及びPRVABC-59のそれぞれに対して107.7、106.7、107.5の50%細胞培養感染量(CCID50)/mLの力価を有した。マレーシアP6-740株をAG129マウスの致死率に関して滴定し、本動物研究のために使用した。
ジカウイルス感染及び疾患のマウスモデルを特徴付けた。8~10週齢の雌及び雄のAG129マウスを、ジカウイルス(P6-740)に皮下(s.c.)感染させた。ウイルスの用量滴定を実施して、モデルの特徴付け及び抗ウイルス/ワクチン研究のためのウイルスの好適な攻撃接種用量を決定した。
50~100mgの新たに単離した組織を、1mLのTRI試薬(Sigma-Aldrich,St.Louis,MO)中の乳棒で粉砕し、全RNAを抽出した。液体試料からウイルスRNAを抽出するために、製造業者の説明書(Qiagen,Valencia,CA)に従って、QIAamp Viral RNA Mini Spinキットを使用した。抽出されたRNAをヌクレアーゼフリー水で溶出し、Co-Diagnostics,Inc.(Bountiful,UT)によって開発されたLogix Smart Zika Testを使用して定量的リアルタイムRT-PCRによって増幅した。FAMフルオロフォア及びDABCYL消光剤で標識されたプライマー及びRapid Probeの組を含有する5μLのマスターミックスを、2~5μLのRNA及び適切な体積の水と混合して、最終反応体積を10μLにした。RNAを最初に55℃で10分間逆転写させ、続いて95℃で20秒間加熱することによって鎖分離した。PCR反応は、95℃で1秒間、55℃で20秒間の40サイクルからなった。増幅領域に及ぶ合成RNAを用いて標準曲線を生成し、それを、未知の試料のゲノム当量の数を計算するために使用した。
フローサイトメトリを、Osuna,et al.(Nat Med,PMID 27694931,October 2016)に記載されるように実施し、それはそのような教示に関して参照により本明細書に組み込まれる。
プラーク減少アッセイを以下に記載するように実施した。簡潔に、NHP血漿試料を採取し、熱不活性化し、-80℃で保存した。NHP血漿及び陽性対照のZIKV中和血清(既知の力価の)を連続希釈した。未希釈及び希釈試料を、等体積の2,000PFU/mLのZIKV(プエルトリコPRVABC59)に添加した。ウイルス-抗体混合物を37℃で1時間インキュベートし、その後、Vero細胞を播種したコンフルエントな6ウェル組織培養皿の各ウェルに100μL(100PFU ZIKV)を添加した。37℃で1時間のウイルス吸着後、補充された最小必須培地(MEM)中1%不活性寒天で細胞を覆った。感染後4日目に、1%寒天を含むMEM中の0.02%(重量/体積)ニュートラルレッドを用いたさらなる覆いを追加し、翌日プラークを計数及び記録した。アッセイは3重で実施し、対照ウェルも組み込んだ。中和抗体力価を、90%プラーク減少(PRNT90)をもたらした血漿の最大希釈として表した。
Wilcoxonログランク生存分析を使用して生存データを分析し、Bonferroni群比較(Prism 5,GraphPad Software,Inc)を用いた一方向ANOVAを使用して、他の全ての統計分析を実施した。
Claims (21)
- 前記疾病または病態は、発熱、皮膚発疹、結膜炎、筋肉及び関節の痛み、倦怠感、頭痛、神経学的合併症、自己免疫合併症、ギラン・バレー症候群、小頭症、または上記の組み合わせである、請求項1に記載の医薬組成物。
- 前記体液は、血液、血漿、血清、羊水、母乳、精液、精漿、膣分泌物、脳脊髄液、尿、または唾液である、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記組織は、胚、胎児、胎盤、肝臓、腎臓、脾臓、脳、精巣、または子宮である、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記ジカウイルスのさらなる伝染が低減される、請求項4または5に記載の医薬組成物。
- 前記対象は、追加のウイルスに感染している、請求項1~6のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記追加のウイルスは、ヤブカ(Aedes)属の蚊によって伝染される、請求項7に記載の医薬組成物。
- 1つ以上の追加の抗ウイルス剤をさらに含む、請求項1~8のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物は、前記対象が前記ジカウイルスに感染する前に、前記対象がジカウイルスに感染した後に、または前記対象がジカウイルスに感染した後かつ前記ジカウイルス感染が検出され得る前に、前記対象に投与される、請求項1~9のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 単回用量の式Iの前記化合物が治療過程中に投与される、請求項1~10のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記単回用量が、前記単回用量を含有する単回医薬組成物として、または前記単回用量が、前記単回用量を複数回投与のための量に分割することにより得られる量をそれぞれ含有する複数の医薬組成物として投与される、請求項11に記載の医薬組成物。
- 2回分以上の用量の式Iの前記化合物が治療過程中に投与される、請求項1~10のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 各用量が、単回医薬組成物として、または各用量が、前記各用量を複数回投与のための量に分割することにより得られる量をそれぞれ含有する複数の医薬組成物として投与される、請求項13に記載の医薬組成物。
- 各用量における前記式Iの前記化合物の量は同じではない、請求項13または14に記載の医薬組成物。
- 前記治療過程は、少なくとも1つの用量を負荷用量として、かつ少なくとも1つの用量を維持用量として投与することを含む、請求項13~15のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記負荷用量は200mg/kgであり、および前記少なくとも1つの維持用量は50mg/kgである、前記負荷用量は150mg/kgであり、および前記少なくとも1つの維持用量は38mg/kgである、または前記負荷用量は100mg/kgであり、および前記少なくとも1つの維持用量が25mg/kgである、請求項16に記載の医薬組成物。
- 前記有効量は、少なくとも334mg/kgである、請求項16に記載の医薬組成物。
- 前記有効量は334mg/kg~650mg/kgである、請求項16に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物は、静脈内投与、筋肉内投与、非経口投与、経口投与、または上記の組み合わせによって投与される、請求項1~19のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物は、薬学的に許容される担体をさらに含む、請求項1~20のいずれか1項に記載の医薬組成物。
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