JP7038462B2 - ヒト化抗il-1r3抗体 - Google Patents
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Description
本発明による用語「ウサギ」は、分類学上ウサギ目(taxonomic order)のメンバーの動物を意味し、それはファミリー(ノウサギおよびウサギ)およびナキウサギ科(Ochotonidae)(ナキウサギ)、好ましくはアナウサギ属(Oryctolagus)を含む。
a)CDR-H1、CDR-H2およびCDR-H3を含む相補性決定領域を含む重鎖可変領域(VH)であって、
CDR-H1領域が配列番号69~85の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR-H2領域が配列番号86~102の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR-H3領域が配列番号103~119の群から選択されるアミノ酸配列を含む、重鎖可変領域(VH)、ならびに
b)CDR-L1、CDR-L2およびCDR-L3を含む相補性決定領域を含む軽鎖可変領域(VL)であって、
CDR-L1領域が配列番号120~136の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR-L2領域が配列番号137~153の群から選択されるアミノ酸配列を含み、
CDR-L3領域が配列番号154~170および175の群から選択されるアミノ酸配列を含む、軽鎖可変領域(VL)
を含む、ヒト化抗体またはその断片もしくは誘導体に関する。
以下の実施例を図表と組み合わせて使用して、本発明を例証する。
アッセイ原理:
NUNC Maxisorp 384ウェルマイクロタイタープレートを、P013_03でコーティングする。ブロッキング過程後、B細胞上清由来特異的抗体は、抗原に結合し、次いで、POD標識抗体によって検出される。サンプルを、1:2希釈で試験する。
プレート:384ウェルNunc Maxisorpプレート;カタログ番号464718
タンパク質:P013-03(濃度1.5mg/ml;アッセイ濃度0.5μg/ml)
標準Ab:P013-02(濃度1mg/ml;開始アッセイ濃度2μg/ml)
検出Ab:抗ウサギIgG、ペルオキシダーゼに連結された種特異的全抗体(ロバ由来)(ECL);GE;カタログ番号NA9340;アッセイ希釈:1:5000
PBS:Buffers in a Box,Premixed PBS Buffer;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミン画分V;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Carl Roth;カタログ番号9127.2
TMB:TMB溶液;Life Technologies;カタログ番号SB02
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.1%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2%BSA、0.05%Tween
サンプル:Elisa緩衝液中に1:2希釈
1.384ウェルNUNC MaxisorpプレートにPBS中のP013-03(0.5μg/ml) 12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
2.洗浄緩衝液90μlで3回洗浄する。
3.各ウェルにブロッキング緩衝液90μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
4.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
5.Elisa緩衝液に1:2希釈の標準抗体または1:2希釈したサンプル12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
6.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
7.Elisa緩衝液中の1:5000 POD抗体12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
8.洗浄緩衝液で6回洗浄する。
9.TMB 15μLを添加する。
10.十分な発色後にHCl 15μLを添加する。
11.450nm/620nmで、吸光度を読み取る。
アッセイ原理:
NF-kB-REホタルルシフェラーゼレポーターを発現する293T/17-FR細胞を、ポリ-D-リジン-細胞培養プレートに播種する。P013の刺激後、293T/17-FR溶解物を、Steady-Glo Luciferase Assay Kitを使用して、活性化されたNF-kBについて試験する。機能的抗体を含む上清は、P013に結合し、NF-kB活性化を阻害し、それは低いシグナルで示される。サンプルを、P013溶液中に1:2希釈で試験する。
プレート:細胞プレート:384ウェルPDL Costar細胞培養プレート;カタログ番号3844
アッセイプレート:384ウェルlumitrac白色プレート;Corning;カタログ番号3572
細胞:293T/17-FR;アッセイ濃度250,000個細胞/ml
細胞継代がより高いほど、シグナルはより低い!
タンパク質:P013_05(濃度0.03mg/ml;アッセイ濃度115pg/ml;作業濃度230pg/ml)
標準Ab:P013_06(濃度0.2mg/ml;開始作業濃度6μg/ml)
キット:Steady-Glo Luciferase Assay System;Promega;カタログ番号E2510
細胞培地:DMEM培地;PAN Biotech;カタログ番号P04-04510
FCS:ウシ胎仔血清、HyClone;Thermo;カタログ番号St30070.03
293T/17-FR培地:DMEM培地、10%FCS、(+20μg/mlハイグロマイシンB、培養のためのみ)
馴化B細胞培地(MAB Discovery)
サンプル:DMEM培地+10%FCS中にP013_05を含む1:2希釈
1.細胞培養手順:毎月曜日(播種:5×106個細胞/T175フラスコ)および金曜日(播種:3×106個細胞/T175フラスコ)にトリプシン/EDTAを使用して(室温で30秒間のみインキュベートする)コンフルエント293T/17-FR細胞を分割する。
2.384ウェルPDLプレート(Corning カタログ#3844)にDMEM+10%FCS 25μL中の細胞(0.25×106個細胞/ml)を播種し、37℃および5%CO2で終夜インキュベートする。
3.培地を吸引し、馴化培地中に1:3希釈のサンプルもしくはP013_06を12.5μl添加し、または馴化培地のみを添加し、37℃および5%CO2で30分間インキュベートする(プログラム:3 Aspiration and sample transfer)
4.DMEM+10%FCS中のP013_05 12.5μlを添加し、37℃および5%CO2で5時間インキュベートする(プログラム:4_Add P013_05)。
5.培養細胞を10分間室温に平衡化する。
6.Steady-Glo試薬25μlを添加し、ピペットで数回混合する(プログラム:6_Steady Glo)
7.384ウェルlumitrac白色プレート(Corningカタログ#3572)に、上清45μlを移動する前に5分間待つ(プログラム:7_Transfer 45μl)
8.Tecan Readerで発光を測定する:積分時間:0.5秒
アッセイ原理:
NUNC Maxisorp 384ウェルマイクロタイタープレートを、標的タンパク質でコーティングする。ブロッキング過程後、B細胞上清由来特異的抗体は、標的に結合し、次いで、POD標識抗体によって検出される。
プレート:384ウェルNunc Maxisorpプレート;カタログ番号464718
タンパク質:
切断したhuIL1RaP(P026_12;濃度0.96mg/mL;アッセイ濃度0.25μg/mL)
切断したmuIL1RaP(P026_13;濃度0.93mg/mL;アッセイ濃度0.25μg/mL)
切断したCD134(P026_14;濃度0.51mg/mL;アッセイ濃度0.25μg/mL)
切断したCD137(P026_15;バッチ2;濃度1.1mg/mL;アッセイ濃度1μg/mL)
標準Ab:
ヒトIL-1 RAcP/IL-1 R3抗体(P013_6/P026_08;濃度0.2mg/mLまたは0.399mg/mL;開始アッセイ濃度2μg/mL;huIL1RaPおよびmsIL1RaPに使用される)
MAB-14-0283(濃度0.6mg/mL;開始アッセイ濃度2μg/mL;CD134に使用される)
MAB-14-0285(濃度1mg/mL;開始アッセイ濃度2μg/mL;CD137に使用される)
検出Ab:
サンプル:抗ウサギIgG、ペルオキシダーゼに連結された種特異的Fab2断片(ロバ由来)(ECL);GE;カタログ番号NA9340;アッセイ希釈:ELISA緩衝液中に1:5000
MAb-14-0283およびMAb-0285の場合:抗ヒトIgG、ペルオキシダーゼに連結された種特異的Fab2断片(ヤギ由来)(HRP);AbD Serotec;カタログ番号STAR126P;アッセイ希釈:ELISA緩衝液中に1:5000
huIL1RaPおよびmsIL1RaPの場合:ペルオキシダーゼコンジュゲートされたAffiniPureロバ抗ヤギIgG(H+L);Jackson Immuno Research;カタログ番号705-035-003;アッセイ希釈:ELISA緩衝液中に1:5000
PBS:Buffers in a Box,Premixed PBS Buffer,10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミン画分V;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Carl Roth;カタログ番号9127.2
TMB:TMB溶液;Invitrogen;カタログ番号SB02
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.1%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2% BSA、0.05%Tween
サンプル:ELISA緩衝液中に1:4希釈
1.384ウェルNUNC Maxisorpプレートに、PBS中に希釈した0.25μg/mLまたは1μg/mLタンパク質12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
2.洗浄緩衝液90μLで3回洗浄する。
3.各ウェルにブロッキング緩衝液90μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
4.洗浄緩衝液90μLで3回洗浄する。プレートは、アルミホイルで密閉した乾燥状態で、-20℃で6週間まで保存することができる。
5.1:2希釈工程の標準抗体またはサンプル(ELISA緩衝液に希釈した)12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
6.洗浄緩衝液90μLで3回洗浄する。
7.ELISA緩衝液中の1:5000 POD抗体12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
8.洗浄緩衝液90μLで6回洗浄する。
9.TMB 15μLを添加する。
10.15分間の発色後にHCl 15μLを添加する。
11.450nm/620nmで、吸光度を読み取る。
アッセイ原理:
A549-NFκB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞(Signosis)を、384ウェルプレートにピペットで移し、終夜インキュベートする。2日目に、抗IL1R3抗体を、A549-NFkB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞に結合させ、次いで、その細胞を、IL-1(αまたはβ)の添加によって刺激する。これは、NFκBシグナル伝達経路の活性化によるルシフェラーゼ遺伝子の転写をもたらし、細胞溶解およびルシフェリンの添加によって測定することができる。抗体が、NFkB経路の活性化を阻害し、したがって発光シグナルを低下させ得るかどうかを試験する。
プレート:384ウェルローフランジ白色平底ポリスチレンTC処理無菌マイクロプレート;Corning;カタログ番号3570
タンパク質:
IL-1α(P026_09);組換えヒトIL-1アルファ/IL-1F1;10μg/mL;R&D Systems;カタログ番号200-LA-002
IL-1β(P026_10);組換えヒトIL-1ベータ/IL-1F2;25μg/mL;R&D Systems;カタログ番号200-LB-005
標準Ab:MAB-15-0115;MAB Discovery GmbH;2.51mg/ml;作業濃度10μg/ml
細胞:A549-NFκB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞;Signosis;カタログ番号SL-0014
培地:DMEM;PAN;カタログ番号P04-04510
FCS:ウシ胎仔血清South Africa Low IgG;Pan;カタログ番号1552-P120909
Pen/Strep:10,000Uペニシリン/ml;10mgストレプトマイシン/ml;PAN Biotech;カタログ番号P06-07100
剥離剤:トリプシン-EDTA 1x;Pan;カタログ番号P10-023100(T175の場合4mL/T75の場合2mL;およそ8分37℃)
細胞培地:DMEM、10%FCS、1%Pen/Strep
検出キット:Steady-Glo(商標)Luciferase Assay System;Promega;カタログ番号E2510
1.細胞培地中でA549-NFκB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞を培養する(1.7E+04個細胞/cm2で3日間;2.28E+04個細胞/cm2で2日間)。継代10回を超えない!
2.ウェル当たり培地25μL中のA549-NFκB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞40000個(濃度=1.6×106個細胞/mL)を、白色の細胞培養処理された平底384ウェルプレートに播く。37℃/5%CO2で終夜インキュベートする。
3.CyBioピペット操作ロボット(プログラム:フォルダP026/NFkB内の「Medium removal and sample transfer」)を使用して、プレートから培地を吸引し、培地中のサンプルまたは標準10μLをプレートに添加する。37℃/5%CO2で1時間インキュベートする。
4.CyBioピペット操作ロボット(プログラム:フォルダP026/NFκB内にある「Transfer from reservoir」)を使用して、培地中のIL-1(αまたはβ)(作業濃度0.2ng/mL;アッセイ濃度0.1ng/mL)10μLをプレートに添加し、37℃/5%CO2で5時間インキュベートする。
工程4を実行する前に、Steady-GloプロトコールにしたがってSteady-Glo緩衝液にSteady-Glo基質を溶解し、この溶液およびアッセイプレートを室温に平衡化する。
5.Steady-Gloミックス20μLを添加し、十分に混合して、適当な細胞溶解を保証する。室温で10分インキュベートする。
6.積分時間500msに設定したマイクロプレートリーダー(プログラム:Lumineszenz-384)を使用して、各ウェルの相対的発光単位を決定する。
アッセイ原理:
A549細胞を、384ウェルプレート中にピペットで移し、抗IL1R3抗体とインキュベートする。その後、細胞を、IL-1(αまたはβ)で刺激し、アッセイ培地中にIL-6を分泌させる。IL-6の量を、IL-6 ELISAによって測定する。
アッセイキット:DuoSet ELISAヒトIL-6;カタログ番号DY206-05(R&D Systems);DuoSetは、ヒトIL-6捕捉抗体(パーツ840113)、ヒトIL-6検出抗体(パーツ840114)、ヒトIL-6(パーツ840115)およびストレプトアビジン-HRP(パーツ8939755)からなる
プレート:384ウェル透明細胞培養処理プレート;Corning;カタログ番号3701 384ウェルMaxisorpプレート;Nunc;カタログ番号464718
PP-プレート:120μL 384ディープウェル「ダイヤモンド」プレート、透明;Axygen(Corning);カタログ番号P-384-120SQ-C
タンパク質:
IL-1α;組換えヒトIL-1アルファ/IL-1F1;R&D Systems;カタログ番号200-LA-002
IL-1β;組換えヒトIL-1ベータ/IL-1F2;R&D Systems;カタログ番号200-LB-005
rhIL1-ra/IL-1F3;R&D Systems;カタログ番号280-RA-010
標準Ab:ヒトIL-1RAcP/IL-1R3抗体;R&D Systems;カタログ番号AF676またはAF676-SP
培地:DMEM;PAN;カタログ番号P04-04510
FCS:ウシ胎仔血清South Africa Low IgG;Pan;カタログ番号1552-P120909
Pen/Strep:10,000Uペニシリン/ml;10mgストレプトマイシン/ml;PAN Biotech;カタログ番号P06-07100
PBS:Buffers in a Box,Premixed PBS Buffer,10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミン画分V;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Carl Roth;カタログ番号9127.2
TMB:TMB溶液;Invitrogen;カタログ番号SB02
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.1%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2%BSA、0.05%Tween
細胞培地:DMEM、10%FCS、1%Pen/Strep
細胞刺激
1.ウェル当たり培地25μL中のA549細胞6,000個(濃度=2.4×105個細胞/mL)を、細胞培養プレートに播く。37℃/5%CO2で終夜インキュベートする。
2. プレートから培地を吸引し、培地中のサンプルまたは標準12.5μLをプレートに添加する。37℃/5%CO2で3時間インキュベートする。
3.IL-1(αまたはβ)12.5μLをプレートに添加し(作業濃度0.2ng/mL;アッセイ濃度0.1ng/mL)、37℃/5%CO2で48時間インキュベートする。
4.培地を吸引し、コーティングおよびブロッキングされたElisaプレートに移動させる(工程9)。別法として、上清を、PP-プレート中で、-80℃で1週間まで保存することができる。
5.捕捉抗体をPBS中に2μg/mLの濃度に希釈する。1ウェル当たり12.5μLの希釈した捕捉抗体で384ウェルMaxisorpプレートを直ちにコーティングする。プレートを密閉し、室温で1時間インキュベートする。
6.各ウェルを吸引し、洗浄緩衝液で洗浄し、その過程を2回繰り返して、合計3回洗浄する。自動洗浄機を使用して各ウェルを洗浄緩衝液(90μL)で満たすことにより洗浄する。各工程において液体を完全に除去することが、優れた成績のために必須である。最後の洗浄後、プレートを吸引することによってまたは逆さにし、きれいな紙タオルに吸い取らせることによって少しの残りの洗浄緩衝液も除去する。
7.各ウェルにブロッキング緩衝液90μLを添加することによってプレートをブロッキングする。室温で最低1時間インキュベートする。
8.工程6のように吸引/洗浄を繰り返す。これでプレートは、サンプル添加の用意ができている。コーティングし、ブロッキングしたプレートは、乾燥状態で、-20℃で1か月間まで保存することができる。
9.ウェル当たり、ELISA緩衝液(EB)に希釈した高純度サンプルまたはIL-6標準12.5μLを添加する。カバーをかけ、室温で1時間インキュベートする。
10.Elisaプレート調製の工程6のように吸引/洗浄を繰り返す。
11.各ウェルにEBに希釈した検出抗体12.5μLを添加する。カバーをかけ、室温で1時間インキュベートする。
12.Elisaプレート調製の工程6のように吸引/洗浄を繰り返す。
13.各ウェルへElisa緩衝液に1:40希釈したストレプトアビジン-HRP 12.5μLを添加する。プレートにカバーをし、室温で20分間インキュベートする。直射光にプレートを置くことを避ける。
14.Elisaプレート調製の工程6のように吸引/洗浄を繰り返す。
15.各ウェルに基質溶液(TMB)15μLを添加する。室温で20分間インキュベートする。
16.各ウェルに停止溶液(HCl、1M)15μLを添加する。プレートを穏やかにたたいて、完全な混合を確実にする。
17.450nmに設定したマイクロプレートリーダーを使用して各ウェルの光学密度を直ちに決定する。波長修正が利用可能な場合、540nmまたは570nmに設定する(プログラム:TMB stop 384 Cytokine)。修正せずに450nmで直接行った読み取りは、より高いおよびより低い精度になり得る。
アッセイ原理:
NUNC Maxisorp 384ウェルマイクロタイタープレートを、参照抗体Can04でコーティングする。この時間の間に、Hisタグ標的タンパク質を、試験する二次抗体および抗HIS-POD抗体とプレインキュベートする。その後、このプレインキュベーションミックスを、アッセイプレートに添加し、十分な発色時間後に、450nm/620nmで吸光度を測定する。
プレート:384ウェルNunc Maxisorpプレート;カタログ番号464718
コーティングAb:Can04(Mab Discovery GmbH;CEP Ab番号184;濃度1mg/ml;アッセイ濃度100ng/ml)
タンパク質:huIL1RaP-Hisタンパク質(P026_01;Fusion_1_Chain_Aホモ二量体huIL1RaP-Hisタグ;GeneArt;濃度3mg/ml;アッセイ濃度62.5ng/ml)
標準Ab:Can04(参照:「コーティングAb」;開始作業濃度3μg/ml)
陰性対照:Her2抗体(Lifespan;カタログ番号LS-C95808/26358;濃度225μg/mL;開始作業濃度3μg/ml)
検出Ab:抗His POD抗体(モノクローナル抗ポリヒスチジンペルオキシダーゼコンジュゲート;Sigma;カタログ番号A7058;濃度7.5mg/ml;アッセイ濃度:3.33μg/ml)
PBS:Buffers in a Box,Premixed PBS Buffer,10x;Roche Applied Sciences;カタログ番号11666789001
BSA:ウシ血清由来ウシ血清アルブミン画分V;Roche Applied Sciences;カタログ番号10735086001
Tween20:Tween20;Sigma-Aldrich;カタログ番号P1379
TMB:TMB溶液;Merck;カタログ番号CL07
HCl:1M Titripur塩酸;Merck;カタログ番号1090571000
ELISA緩衝液:PBS、0.5%BSA、0.05%Tween
洗浄緩衝液:PBS、0.05%Tween
ブロッキング緩衝液:PBS、2%BSA、0.05%Tween
12.プレインキュベーションミックスを調製し、室温で2時間インキュベートする。
a.プレインキュベーション(384ウェルプレート中)
i.ELISA緩衝液中の二次抗体希釈系列(希釈1:2;開始作業濃度3μg/ml)またはブランク10μlを、
ii.Hisタグタンパク質(アッセイ濃度62.5ng/ml)10μl、および
iii.抗His POD抗体(アッセイ濃度3.33μg/ml)10μlと混合し、室温で1時間インキュベートする。
13.その間に、PBS中のコーティング抗体(Can04;アッセイ濃度100ng/ml)20μLでNunc Maxisorpプレートをコーティングし、室温で1時間インキュベートする。
14.洗浄緩衝液90μlで3回洗浄する。
15.ブロッキング緩衝液90μlにより室温で1時間ブロッキングする。
16.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
17.ELISA緩衝液中のプレインキュベーションミックス20μlを室温で1時間添加する。
18.洗浄緩衝液で6回洗浄する。
19.TMB 25μLを添加する。
20.十分な発色後HCl 25μLを添加する。
21.450nm/620nmで吸光度を読み取る。
アッセイ原理:
IL12結合を、カウンタースクリーンとして使用する。HERタンパク質を、IL12タンパク質のようにリンカー、huFcおよびHisでタグ付けする(HER1は、His-Tagを持たない)。タグに結合する抗体は、両方のアッセイにおいて陽性であるが、抗原特異的抗体は、HERタンパク質にだけ結合し、IL12に結合しない。
プレート:384ウェルNunc Maxisorpプレート;カタログ番号464718
タンパク質:組換えヒトIL-12 Rβ1 Fcキメラ;R&D Systems;カタログ番号839-B1;アッセイ濃度0.5μg/mL
標準Ab:IL-12Rベータ1抗体;GeneTex;カタログ番号GTX103917;1mg/mL;開始アッセイ濃度500ng/mL(その後1:2希釈)
検出Ab:抗ウサギIgG、ペルオキシダーゼに連結された種特異的Fab2断片(ロバ由来)(ECL);GE;カタログ番号NA9340;アッセイ希釈:1:5000
サンプル:ELISA緩衝液中の希釈は、計画によって決まる(高濃縮されたIgGの場合、1:2希釈が推奨される)
1.384ウェルNUNC MaxisorpプレートにPBS中の0.5μg/mL HERタンパク質12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
2.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
3.各ウェルにブロッキング緩衝液90μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
4.洗浄緩衝液で3回洗浄する。プレートを、アルミホイルで密閉して-20℃で数週間凍結できる。
5.ELISA緩衝液に1:2希釈の標準抗体または希釈したサンプル12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。(凍結プレートは、サンプル適用の直前に解凍されるべきである)。
6.洗浄緩衝液で3回洗浄する。
7.ELISA緩衝液中の1:5000 POD抗体12.5μLを添加し、室温で1時間インキュベートする。
8.洗浄緩衝液で6回洗浄する。
9.TMB 15μLを添加する。
10.十分な発色後にHCl 15μLを添加する(計画よって決まる;他のアッセイより短くないIL12アッセイ)。
11.450nm/620nmで、吸光度を読み取る。
A549およびNIH-3T3細胞を、DMEM+10% FCS中で培養した。HEK-293細胞を、DMEM+15%FCS中でおよびSK-MEL-30をRPMI+10%FBS中で培養した。細胞を、Accumax(Sigma)を使用して採取し、PBSで洗浄し、染色緩衝液(BD Pharmingen)に再懸濁した。染色緩衝液中で抗IL-1R3抗体を、濃度10μg/ml、4℃で30分間、細胞とインキュベートした。SK-MEL-30細胞結合分析のEC50のために、細胞を、20μg/mlで開始する1:2希釈系列とインキュベートした。細胞を、染色緩衝液で洗浄し、Alexa-488標識したヤギ抗ヒト二次抗体(Dianova)と4℃で30分間インキュベートした。細胞を、染色緩衝液で洗浄し、1:100希釈したDRAQ7(Abcam)死細胞染色を含有する緩衝液に再懸濁した。細胞を、BD Accuri C6 Samplerフローサイトメーターを使用して分析した。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
Nunc 384ウェルMaxisorpプレートを、PBS中に0.25μg/mlの濃度の組換えFcタグ付きhIL-1R3(Ser21-Glu359)で、室温で60分間コーティングした。プレートを、洗浄緩衝液(PBS、0.1%Tween)で3回洗浄し、PBS、0.2%BSA、0.05%Tweenで、室温で60分間ブロッキングした。洗浄緩衝液で3回洗浄した後、抗体を、6~0.03μg/mlの範囲(1:3希釈系列)の濃度でELISA緩衝液(PBS、0.5%BSA、0.05%Tween)に添加し、室温で60分間インキュベートした。プレートを、洗浄緩衝液で3回洗浄し、続いてELISA緩衝液中に1:5000希釈した抗ヒトIgGペルオキシダーゼ連結、種特異的F(ab)2断片(ヤギ、AbD Serotec)と室温で60分間インキュベーションした。TMB基質溶液(Invitrogen、15μl/ウェル)を添加する前に、プレートを洗浄緩衝液で6回洗浄した。5分間インキュベーションした後、停止溶液(1M HCl、15μl/ウェル)を添加し、吸光度(450nm/620nm)を、Tecan M1000プレートリーダーを使用して測定した。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
A-549-NFκB-RE-Luc(Signosis)を、培地25μL中に40,000個細胞/ウェルの細胞密度で384ウェル白色平底ポリスチレン組織培養処理マイクロプレート(Corning)に播種する前に、DMEM、10%FCS、1%Pen/Strep中で5日間培養した。細胞を、37℃/5%CO2で終夜インキュベートした。培地を、吸引によって除去し、モノクローナルまたはポリクローナル(ヤギ抗ヒトIL-1R3、AF676、R&D Systems)抗体を、培地10μl容積中に様々な濃度で添加し、37℃/5%CO2で60分間インキュベートした。組換えヒトIL-1αまたはIL-1β(R&D Systems)タンパク質を、0.1ng/mlの終濃度になるように培地10μlに添加し、プレートを、37℃/5%CO2で5時間インキュベートした。Steady-Glo(商標)(Promega)溶液20μlを、各ウェルに添加し、十分に混合し、プレートを、Tecan M1000プレートリーダーを使用して発光を測定する前に室温で10分間インキュベートした。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
A549細胞を、DMEM、10%FCS、1%Pen/Strepの培地25μL中に6000個細胞/ウェルの密度で384ウェル透明細胞培養処理プレート(Corning)に播種した。細胞を、37℃/5%CO2で終夜インキュベートした。培地を、吸引によって除去し、モノクローナルまたはポリクローナル(ヤギ抗ヒトIL-1R3、AF676、R&D Systems)抗体を、培地12.5μl容積中に様々な濃度で添加し、37℃/5%CO2で3時間インキュベートした。組換えヒトIL-1αまたはIL-1β(R&D Systems)タンパク質を、0.1ng/mlの終濃度になるように培地12.5μlに添加し、プレートを、37℃/5%CO2で48時間インキュベートした。細胞上清中の分泌されたヒトIL-6レベルを、製造業者の説明書にしたがってDuoSetヒトIL-6 ELISAキット(R&D Systems、カタログ番号DY206-05)を使用して測定した。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
HEK-Blue(商標)IL-33細胞(InvivoGen)を、培地15μl中に25,000個細胞/ウェルの細胞密度で384ウェル透明、平底、細胞培養処理マイクロプレート(Corning)に播種する前に、DMEM、10% FCS中で5日間培養した。様々な濃度のモノクローナルまたはポリクローナル(ヤギ抗ヒトIL-1R3、AF676、R&D Systems)抗体を、培地5μl容積に添加し、プレートを、37℃/5%CO2で60分間インキュベートした。組換えヒトIL-33(R&D Systems)タンパク質を、5ng/mlの終濃度になるように培地5μlに添加し、プレートを、37℃/5%CO2で終夜インキュベートした。細胞上清5μlを、2xQUANTI-Blue試薬(InvivoGen)20μlを含有する透明、平底ポリスチレンNBS(商標)マイクロプレート(Corning)に移した。プレートを、37℃で45分間インキュベートし、Tecan M1000プレートリーダーを使用して655nmで光学密度を測定した。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
HEK293/17-IF細胞(MAB Discovery GmbH)を、培地20μl中に30,000個細胞/ウェルの細胞密度で384ウェル白色、平底、細胞培養処理プレート(Corning)に播種する前に、DMEM、10% FCS、20μg/mlハイグロマイシン中で5日間培養した。細胞を、37℃/5%CO2で終夜インキュベートした。培地を吸引によって除去し、様々な濃度のモノクローナルまたはポリクローナル(ヤギ抗ヒトIL-1R3、AF676、R&D Systems)抗体を、培地10μl容積中に添加した。プレートを、37℃/5%CO2で60分間インキュベートした。組換えヒトIL-36g(R&D Systems)タンパク質を、15ng/mlの終濃度になるように培地10μlに添加し、プレートを、37℃/5%CO2で5時間インキュベートした。Steady-Glo(商標)(Promega)溶液20μlを、各ウェルに添加し、十分に混合し、プレートを、Tecan M1000プレートリーダーを使用して発光を読み取る前に室温で10分間インキュベートした。フィッティング曲線およびEC50算出を、Excel(Microsoft)およびXLfit(IDBS)を使用して行った。
抗IL-1R3抗体の機能を、IL-1α、IL-33またはIL-36αのいずれかを用いて異なる3つの細胞株において試験して、シグナル伝達に関してIL-1R3に依存的な3つのIL-1受容体(IL-1R1、R4またはR6)に関係するシグナル伝達経路に対する影響を決定した。
健康なドナー3名の刺激していないPBMC(500,000個/ウェル)の生存率に対する抗hIL-1R3抗体MAB-16-0030の影響を、従来通りのMTT低減アッセイを使用して試験した。簡潔には、PBMC(200μL)を、培地単独またはMAB-16-0030(20μg/mL)のいずれかとインキュベートした。24時間、3日間および5日間の後に、PBMCを、ELISAリーダーで、570nMで吸光度を測定する前に、MTT(20μL)と2時間インキュベートした。吸光度とMTTを変換する生存可能な細胞との間の公知の直線性を使用して、生存可能な細胞の数を、培地単独を100%に設定した対照として使用して算出した。MTT分析と同日に、同じ条件下でインキュベートした同一ドナー由来のPBMCの上清を採取し、その後IL-6産生についてアッセイして(Duoset ELISA、RnD Systems)、MAB-16-0030単独のあらゆる可能性がある刺激効果を評価した。
健康なドナーから新たに単離したPBMCを使用して、多様な抗原で刺激したヒト細胞に対するMAB-16-0030の影響を評価した。全ての刺激について、実験を、50,0000個PBMC/ウェルを使用して実施し、合計容積200μLで刺激した。細胞を播種し、刺激前に培地単独、MAB-16-0030(20~0.1μg/mL)またはIL-1Ra(10μg/mL)のいずれかと1時間インキュベートした。以下の刺激を使用した;LPS(10ng/mL、24時間、RPMI FCSを含まない)、抗ヒトCD3/CD28(1.25μg/mL;0.5μg/mL(eBioscience)3日間、RPMI 10%FCS)、IL-12/-33(2ng/mL;20ng/mL(PeproTech;RnD Systems))、3日間、RPMI 10% FCS)、または熱不活化カンジダアルビカンス(0.5×106個/mL、5日間、RPMI 10%FCS)。刺激後に上清を採取し、製造業者のプロトコールにしたがってDuoset ELISA(RnD Systems)を使用してサイトカイン産生についてアッセイした。
熱不活化カンジダアルビカンスを使用して、全血を刺激した。健康なドナーから新たに採取した血液(EDTAチューブ)を、微量遠心チューブに分注し(250μL/チューブ)、カンジダアルビカンス(0.5×106個/mL)による刺激の前に、最終容量1mLになるように培地単独(RPMI、FCSを含まない)、MAB-16-0030(20~0.1μg/mL)またはIL-1Ra(10μg/mL)のいずれかと1時間プレインキュベートした。インキュベーション(37℃、5%CO2)24時間後に上清を採取し、ELISA(Duoset、RnD Systems)によってサイトカイン産生についてアッセイした。
健康な、適合しないドナー由来のPBMCを、培地単独、MAB-16-0030(20~1μg/mL)またはIL-1Ra(10μg/mL)のいずれかと比1:1に混合し(250,000個/ドナー)、5日間インキュベートした(RPMI、10%FCS)。サイトカイン産生を、製造業者のプロトコールにしたがってQuansysマルチプレックスプラットホームを使用してアッセイした。
可変領域(VR)の完全な配列:
重鎖:完全なVH:配列番号1~34および配列番号173
軽鎖:完全なVL:配列番号35~68および配列番号174
相補性決定領域(CDR):
重鎖:
CDRH1:配列番号69~85
CDRH2:配列番号86~102
CDRH3:配列番号103~119
軽鎖:
CDRL1:配列番号120~136
CDRL2:配列番号137~153
CDRL3:配列番号154~170および175
定常領域(CR):
軽鎖:CR-L:配列番号171
重鎖:CR-H:配列番号172
以下の図において、AF676は、以下のリンクから購入した市販のポリクローナル抗体調製物である:
https://www.rndsystems.com/products/human-il-1-racp-il-1-r3-antibody_af676
384マイクロタイタープレートを、IL-1R3のヒト細胞外ドメインを表すヒトIl-1R3タンパク質でコーティングした(0.5mg/ml、少なくとも1時間)。徹底的な洗浄工程に続くブロッキング工程の後、抗体を添加し(ウェル当たり12.5μl)、室温で1時間インキュベートした。結合していない抗体を、徹底的に洗い流した。結合している抗体の量を、ペルオキシダーゼ標識した抗ヒト検出抗体と共にマイクロタイタープレートをインキュベートする(室温で1時間)ことによって同定した。ペルオキシダーゼ反応を、TMBを添加することによって開始し、450nm/620nmで吸光度を測定した。
ヒトIL-1R3に特異的な結合を確実にするために、同一の特徴を持つIL12タンパク質を使用するカウンタースクリーンを並行して実行した。アッセイの設定は、上記と同一であった。ヒトIL-1R3に結合するが、IL12に結合しないB細胞上清は、活性であると考えられてきた。
HEK293T/17-FR細胞に、pGL4.32[luc2P/NF-κB-RE/Hygro]ベクター(Promega)を安定にトランスフェクトし、384ウェルPDL Costar Cell Cultureプレートに播種し、続いて抗体と30分インキュベーションした。次いで、NF-kB活性を製造業者のプロトコールにしたがってSteady-Glo Luciferase Assay Kit(Promega)を使用して決定する前に、細胞を、IL-1βで5時間刺激した。
A549-NFkB-RE-Lucを安定にトランスフェクトした細胞(Signosisから購入した)を、3日間培養した(1.7E+04細胞/cm3)。384ウェルローフランジ白色平底ポリスチレンTC処理マイクロタイタープレート(Corning)を、ウェル当たり4×104個細胞で満たした。10時間の培養期間後に、細胞を抗体と1時間インキュベートし、その後細胞をIL-1β 10μlでさらに5時間刺激した。NFkBモジュレーションを、Steady-Glo(商標)Luciferase Assay System(Promega)で、刺激していない細胞に対する各ウェルの相対的発光単位を決定することによって測定した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体を、フローサイトメトリーを使用して異なるIL-1R3受容体密度を持つ細胞株への結合について試験した。ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、IL-1R3低および高発現細胞株に結合する。抗体は、マウスNIH-3T3細胞に結合しない。実験は、実施例8に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体のEC50細胞結合値を、フローサイトメトリーを使用してIL-1R3高発現細胞株SK-MEL-30への結合によって決定した。ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体MAB-16-0030およびMAB-16-0149は、それぞれ307および306ng/mlの細胞結合を示す。実験は、実施例8に記述される方法にしたがって実施した。
組換えヒトIL-1R3タンパク質に対するヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体の結合を、生化学的ELISAで試験した。例示した抗体は、それぞれ16.3ng/mlおよび29.1ng/mlのEC50結合値を示す。実験は、実施例9に記述される方法にしたがって実施した。
IL-1aおよびIL-1bの機能的中和を、それぞれ0.1ng/ml IL-1aおよびIL-1bで刺激したA549-NFkB-RE-Luc細胞を使用して細胞ベースの遺伝子レポーターアッセイで試験した。ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、ヤギ抗ヒトIL1-R3ポリクローナル抗体AF676(R&D Systems)のものより優れたEC50値を示す。実験は、実施例10に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体による、IL-1aおよびIL-1bに媒介されるIL-6の細胞放出の中和を、A-549細胞を使用して試験した。EC50値は、ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、ヤギ抗ヒトIL1-R3ポリクローナル抗体AF676(R&D Systems)のものより優れていることを実証する。実験は、実施例11に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体による、IL-33に媒介される細胞シグナル伝達の中和を、IL-33に刺激される遺伝子レポーターHEK-Blue-IL33(商標)細胞(InvivoGen)を使用して試験した。EC50値は、ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、ヤギ抗ヒトIL1-R3ポリクローナル抗体AF676(R&D Systems)のものより優れていることを実証する。実験は、実施例12に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体による、IL-36に媒介される細胞シグナル伝達の中和を、IL-36gに刺激される遺伝子レポーターHEK-293/17-IF細胞を使用して試験した。典型的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、ヤギ抗ヒトIL1-R3ポリクローナル抗体AF676(R&D Systems)のものより優れたEC50値を示す。実験は、実施例13に記述される方法にしたがって実施した。
IL-1a、IL-33およびIL-36aに媒介される細胞のサイトカイン放出の中和を、特定のIL-1a、IL-33およびIL-36a依存的な細胞系を使用して試験した。本発明による代表的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体(MAB-16-0030)によるサイトカイン放出の阻害を試験し、IL-1Raと比較した。本発明による抗体は、3つ全ての刺激に媒介されるサイトカイン放出を阻害し得るが、IL-1Raは、IL-1aに媒介されるサイトカイン放出にのみ影響を及ぼした。実験は、実施例14に記述される方法にしたがって実施した。
免疫細胞への抗体の結合は、例えばアポトーシスシグナル伝達経路の直接的な誘導、過剰なサイトカイン放出の刺激または抗体依存性細胞傷害(ADCC)による細胞枯渇および有害効果をもたらし得る。ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、PBMCの生存率に直接影響を及ぼすことを排除するために、3名のドナーのPBMCの生存率およびIL-6放出を、異なる濃度の本発明による代表的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体(MAB-16-0030)と1、3および5日間インキュベーションした後に、調査した。生存率もIL-6放出も、MAB-16-0030による影響を受けなかった。これらの結果は、ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、付随的な細胞枯渇および細胞有害効果を誘導することなく免疫細胞に対するIL-1R3機能を遮断することを支持する。実験は、実施例15に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、特定または複合刺激で刺激されたPBMCの活性化を阻害するかどうか試験するために、10名のドナーのPBMCを、LPS、熱不活化カンジダアルビカンス、IL-12/IL-33または抗CD3/CD28抗体で刺激した。本発明による代表的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、試験した全ての刺激によって媒介されるサイトカイン放出を阻害することができた。実験は、実施例16に記述される方法にしたがって実施した。
ヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体が、全血における免疫細胞の活性化を阻害するかどうか試験するために、8名のドナーの全血を、熱不活化カンジダアルビカンスで刺激した。図に示した本発明による代表的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、カンジダに誘導されるIL-6サイトカイン放出を阻害することができた。実験は、実施例17に記述される方法にしたがって実施した。
多様なサイトカインの放出を遮断するヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体の能力を、健康な、適合しないドナーのPBMCを使用して混合リンパ球反応(MLR)で試験した。図に示した本発明による代表的なヒト化抗IL-1R3 IgG1-LALA抗体は、IFNg、IL-6、TNF-a、IL-13、IL-17およびIL-10の放出を阻害することができた。実験は、実施例18に記述される方法にしたがって実施した。
Claims (17)
- IL-1R3に特異的に結合するヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、
以下:
(1)配列番号77に記載のCDR-H1、配列番号94に記載のCDR-H2、配列番号111に記載のCDR-H3、配列番号128に記載のCDR-L1、配列番号145に記載のCDR-L2および配列番号162に記載のCDR-L3、
(2)配列番号79に記載のCDR-H1、配列番号96に記載のCDR-H2、配列番号113に記載のCDR-H3、配列番号130に記載のCDR-L1、配列番号147に記載のCDR-L2および配列番号175に記載のCDR-L3、ならびに
(3)配列番号81に記載のCDR-H1、配列番号98に記載のCDR-H2、配列番号115に記載のCDR-H3、配列番号132に記載のCDR-L1、配列番号149に記載のCDR-L2および配列番号166に記載のCDR-L3
からなる群から選択される3つの重鎖CDRと3つの軽鎖CDR
を含む、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、抗体またはその抗原結合断片が、以下:
(1)配列番号26に記載の重鎖可変(VH)領域、
(2)配列番号28に記載のVH領域、および
(3)配列番号30に記載のVH領域
からなる群から選択されるVH領域と少なくとも90%同一であるVH領域を含む、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 請求項1または2に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、抗体またはその抗原結合断片が、以下:
(1)配列番号60に記載の軽鎖可変(VL)領域、
(2)配列番号174に記載のVL領域、および
(3)配列番号64に記載のVL領域
からなる群から選択されるVL領域と少なくとも90%同一であるVL領域を含む、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 請求項2に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、抗体またはその抗原結合断片が、以下:
(1)配列番号26に記載の重鎖可変(VH)領域、
(2)配列番号28に記載のVH領域、および
(3)配列番号30に記載のVH領域
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むVH領域を含む、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 請求項3に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、抗体またはその抗原結合断片が、以下:
(1)配列番号60に記載の軽鎖可変(VL)領域、
(2)配列番号174に記載のVL領域、および
(3)配列番号64に記載のVL領域
からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むVL領域を含む、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 前記抗体またはその抗原結合断片が、IL-1R3に誘導されるNFkB活性を阻害する、請求項1~5のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体またはその抗原結合断片が、IL-1アルファ、IL-1ベータ、IL-33およびIL-36に刺激されるNFkB活性を阻害する、請求項1~6のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体またはその抗原結合断片が、IL-1β/IL-1R1/IL-1RAcP、IL-1α/IL-1R1/IL-1RAcP IL-33/ST2/IL-1RAcP、および/またはIL-36/Il-36R/IL-1RAcPからなる群から選択される複合体によって刺激されるNFkB活性を阻害する、請求項1~7のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- A549-NFkB-RE-Luc細胞溶解物において、前記抗体またはその抗原結合断片が、10μg/mlの濃度で、0.1ng/mlのヒトIL-1アルファ、ヒトIL-1ベータ、IL-33および/またはIL-36で刺激したNFkB発現を、前記抗体またはその抗原結合断片を含まない同じアッセイに対して50%以上、60%以上、70%以上、80%以上、90%以上、または95%以上阻害する、請求項1~8のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体またはその抗原結合断片が、NF-kBレポーター遺伝子の制御下にあるルシフェラーゼをトランスフェクトしたHEK293T/17細胞においてIL-1アルファ、IL-1ベータ、IL-33およびIL-36それぞれに刺激されるルシフェラーゼ活性を阻害する、請求項1~9のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記抗体またはその抗原結合断片が、ヒトIgG1 Fc領域のL234AおよびL235AまたはヒトIgG4 Fc領域のS228PおよびL235Eで少なくともアミノ酸置換を含む、請求項1~10のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- IL-1R3に媒介される疾患を処置するのに使用するための、請求項1~11のいずれかに記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- IL-1R3に媒介される疾患が、肺がん、非小細胞肺(NSCL)がん、細気管支肺
胞細胞肺がん、骨がん、膵臓がん、皮膚がん、頭頸部のがん、皮膚もしくは眼内黒色腫、卵巣がん、直腸がん、肛門部のがん、胃がん、胃部がん、大腸がん、乳がんおよび子宮がんからなる群から選択される、請求項12に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 薬学的に許容される担体および治療有効量の請求項1~13のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合断片を含む、医薬組成物。
- IL-1R3に媒介される疾患を処置するのに使用するための、請求項14に記載の医薬組成物。
- IL-1R3に媒介される疾患が、肺がん、非小細胞肺(NSCL)がん、細気管支肺胞細胞肺がん、骨がん、膵臓がん、皮膚がん、頭頸部のがん、皮膚もしくは眼内黒色腫、卵巣がん、直腸がん、肛門部のがん、胃がん、胃部がん、大腸がん、乳がんおよび子宮がんからなる群から選択される、請求項14または15に記載の医薬組成物。
- 1つもしくは複数の細胞傷害性、細胞増殖抑制または標的化抗がん化合物と組み合わせたがんの処置に使用するための、請求項1から13のいずれか一項に記載のヒト化抗体もしくはその抗原結合断片または請求項14から16のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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