JP6976508B2 - Test strips and methods for detecting tetracycline antibiotics in water using biosensors - Google Patents

Test strips and methods for detecting tetracycline antibiotics in water using biosensors Download PDF

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Description

本発明は、生物学的分析および検出の技術分野に属し、特にバイオセンサーを使用して水
中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙片および方法に関する。
The present invention belongs to the art of biological analysis and detection, and particularly relates to test strips and methods for detecting tetracycline antibiotics in water using biosensors.

工業化の進展や各種化学製品による水質汚濁の急激な発生に伴い、各種化学物質の数が急
増しており、人間の生活環境に大きな影響を与えており、環境汚染物質の増加の急性毒性
の解明が急務となっている。
With the progress of industrialization and the rapid occurrence of water pollution caused by various chemical products, the number of various chemical substances is rapidly increasing, which has a great impact on the human living environment, and elucidation of the acute toxicity of the increase in environmental pollutants. Is an urgent need.

テトラサイクリン系薬物(Tetracyclines、TCs)は、スペクトルが広く
、高効率の殺菌効果と抗菌効果があり、魚の病気を予防および治療するための医薬品とし
て、または魚の成長を促進する飼料添加物として広く使用されている。TCsはほとんど
のグラム陽性菌および陰性菌を阻害できるため、天然で安定しており、安価で使いやすく
、副治療薬が病気を防ぎ、飼料の変換率を高め、魚の成長を促進するための飼料添加物と
してよく使用される。しかしながら、薬物の長期使用、家畜および家禽製品中の残留物、
薬物耐性の増加、および環境における生態学的影響によって引き起こされた副作用は、国
内外で広範な懸念を引き起こす。米国FDAは、動物の筋肉組織内のテトラサイクリン、オ
キシテトラサイクリン、およびクロルテトラサイクリンの総残留量が2μg/ kgを超えない
ように明確に規定する。従来の化学分析方法では、微生物学的方法、高速液体クロマトグ
ラフィー(HPLC)、酵素結合免疫測定法(ELISA)、高速毛管電気泳動法(HPCE)、ラジ
オイムノアッセイ、蛍光測光などで、汚染物質の主成分の含有量を正確に定量できる。た
だし、環境や生物に対するさまざまな毒性物質の包括的な影響を直接的かつタイムリーに
反映することはできない。従来の動物毒性実験では、哺乳類と魚を被験対象として使用し
、毒物による生物への直接的な影響を反映することはできるが、方法が煩雑であり、試験
期間が長く、水質の急性毒性試験のニーズを満たすことができない。従来の毒性検出方法
の欠点を考慮して、国内外の研究者は、水生生物に対する環境汚染物質の毒性を監視する
ために使用される微生物、藻類、底生軟体動物、プランクトン、魚など、さまざまな生物
学的実験方法を確立し、細菌バイオセンサーは、その独特の生理学的特性と最新の光電検
出法と完全に一致するという特性のため、多くの注目を集めている。
Tetracyclines (TCs) have a wide spectrum, highly efficient bactericidal and antibacterial effects, and are widely used as medicines for the prevention and treatment of fish diseases or as feed additives that promote fish growth. ing. Because TCs can inhibit most Gram-positive and Gram-negative bacteria, they are naturally stable, cheap and easy to use, and feeds for adjuncts to prevent disease, increase feed conversion and promote fish growth. Often used as an additive. However, long-term use of drugs, residues in livestock and poultry products,
Increased drug resistance and side effects caused by ecological effects in the environment raise widespread concerns at home and abroad. The US FDA clearly stipulates that the total residual amount of tetracyclines, oxytetracyclines, and chlortetracyclines in animal muscle tissue should not exceed 2 μg / kg. Conventional chemical analysis methods include microbiological methods, high performance liquid chromatography (HPLC), enzyme binding immunoassay (ELISA), high speed capillary electrophoresis (HPCE), radioimmunoassay, and fluorescent photometry, which are the main contaminants. The content of the component can be accurately quantified. However, the comprehensive effects of various toxic substances on the environment and organisms cannot be directly and timely reflected. In conventional animal toxicity experiments, mammals and fish can be used as test subjects to reflect the direct effects of toxic substances on living organisms, but the method is complicated, the test period is long, and the acute toxicity test of water quality. Cannot meet the needs of. Given the shortcomings of traditional toxicity detection methods, domestic and foreign researchers have found a variety of microorganisms, algae, benthic soft animals, plankton, fish, etc. used to monitor the toxicity of environmental pollutants to aquatic organisms. Bacterial biosensors have received a lot of attention because of their unique physiological properties and their perfect match with the latest photoelectric detection methods.

試験紙は、検出コストが低く、操作が簡単などの独自の特点を有するので、様々な分野で
広く応用され、例えば、ラボで使用されるpH試験紙、ヨウ化カリウムでんぷん試験紙、
産業で使用される温度に敏感な試験紙、廃水検出試験紙、生活で使用される血糖試験紙な
どがある。試験紙を作成するための様々な材料および方法により、試験紙の検出分野およ
び検出感度も異なる。現在、全細胞バイオセンサーを使用してテストストリップを調製す
ることによって水中のテトラサイクリン抗生物質を検出する方法はない。
The test paper has unique features such as low detection cost and easy operation, so it is widely applied in various fields. For example, pH test paper used in laboratories, potassium iodide starch test paper, etc.
There are temperature-sensitive test strips used in industry, wastewater detection test strips, and blood glucose test strips used in daily life. Different materials and methods for making test strips also have different detection areas and detection sensitivities for test strips. Currently, there is no way to detect tetracycline antibiotics in water by preparing test strips using whole cell biosensors.

本発明は、全細胞バイオセンサーを使用して水中のテトラサイクリン抗生物質を検出する
ための試験片を調製するギャップを埋め、全細胞バイオセンサーを使用して水中のテトラ
サイクリン系抗生物質を検出する試験紙片および検出方法を提供することを目的とする。
本発明の技術的解決策は以下の通りである。
The present invention fills the gap in preparing a test piece for detecting tetracycline antibiotics in water using a whole cell biosensor and a piece of test paper for detecting tetracycline antibiotics in water using a whole cell biosensor. And to provide a detection method.
The technical solution of the present invention is as follows.

濾紙片、固定剤、増感剤、およびテトラサイクリンバイオセンサー菌接種物を含み、前記
テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物はEscherichia coli BL2
1/pMTLacZ株であり、Escherichia coli BL21/pMTL
acZ株が前記固定剤および増感剤によってラップされ前記濾紙片上に固定されるバイオ
センサーを使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙片である。
さらに、上記解決策では、前記Escherichia coli BL21/pMTL
acZ株の調製方法は、以下のことを含む。
The tetracycline biosensor inoculum includes a filter paper piece, a fixing agent, a sensitizer, and a tetracycline biosensor inoculum, which is Escherichia coli BL2.
It is a 1 / pMTLacZ strain and is Escherichia coli BL21 / pMTL.
A test strip that detects tetracycline antibiotics in water using a biosensor in which the acZ strain is wrapped with the fixative and sensitizer and immobilized onto the filter paper strip.
Further, in the above solution, the Escherichia coli BL21 / pMTL
The method for preparing the acZ strain includes the following.

(1)PCR法によりプラスミドpMTmCherryからStaphylococcu
s rostri RST11:Tn916とトランスポゾンTn10上のテトラサイク
リン媒介調節システムのpMTフラグメントの遺伝子シーケンスをクローニングし、
前記pMTプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンス
は、SEQ ID No.1およびSEQ ID No.2に示され:
SEQ ID No.1:TCGTGCCAGCTGCATTAAT
SEQ ID No.2:TTCACTTTTCTCTATCACTGATAGG、
表1 使用する株およびプラスミド
(1) From plasmid pMTmCherry to Staphylococcus by PCR method
s rostri RST11: Cloning the gene sequence of the pMT fragment of the tetracycline-mediated regulatory system on Tn916 and transposon Tn10.
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the pMT primer are described in SEQ ID No. 1 and SEQ ID No. Shown in 2:
SEQ ID No. 1: TCGTCGCCAGCTGGCATTAAT
SEQ ID No. 2: TTCACTTTTTCTCATCATCACTGATAGG,
Table 1 Strains and plasmids used

Figure 0006976508
Figure 0006976508

(2)プライマーポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用して、pCU19プラスミドか
らLacZ(368 bp)レポーター遺伝子フラグメントの遺伝子シーケンスをクロー
ニングし、アニーリング温度が65℃であり、プラスミドpMTmCherryからT7
フラグメント(220 bp)の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度
が60℃であり、LacZおよびT7ターミネーターシーケンスとの結合・融合によりL
acZ−T7融合フラグメント(568 bp)を得、プライマーを設計するときに、相
同フラグメントを添加する必要がある。
(2) Using the primer polymerase chain reaction (PCR), the gene sequence of the LacZ (368 bp) reporter gene fragment was cloned from the pCU19 plasmid, the annealing temperature was 65 ° C., and the plasmid pMTmCherry to T7.
The gene sequence of the fragment (220 bp) is cloned, the annealing temperature is 60 ° C., and L is L by binding and fusion with the LacZ and T7 terminator sequences.
When the acZ-T7 fusion fragment (568 bp) is obtained and the primer is designed, it is necessary to add the homologous fragment.

前記LacZプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケン
スは、SEQ ID No.3およびSEQ ID No.4に示され、
SEQ ID No.3:CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAAATGA
CCATGATTACGCCAAGC
SEQ ID No.4:GTGGCAGCAGCCTAGGTTAACTATGCGG
CATCAGAGCAG、
前記T7プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンスは
、SEQ ID No.5およびSEQ ID No.6に示され、
SEQ ID No.5:TTAACCTAGGCTGCTGCC
SEQ ID No.6:TCATTAATGCAGCTGGCACGATTTCACA
CAGGAAACAGCTATGAC、
LacZ−T7の融合に用いられるプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方
向プライマーシーケンスは、SEQ ID No.7およびSEQ ID No.8に示
され、
SEQ ID No.7:CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAA
SEQ ID No.8:TCATTAATGCAGCTGGCAC、
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the LacZ primer are described in SEQ ID No. 3 and SEQ ID No. Shown in 4
SEQ ID No. 3: CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAAATGA
CCATGATTACGCCAAGC
SEQ ID No. 4: GTGGCAGCCACTAGGTTAACTATGCGG
CATCAGAGCAG,
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the T7 primer are described in SEQ ID No. 5 and SEQ ID No. Shown in 6
SEQ ID No. 5: TTAACCTAGGCTGCTGCC
SEQ ID No. 6: TCATTAATTGCAGCTGGCACGGATTTCACA
CAGGAAACAGCTAGAC,
The forward and reverse primer sequences of the primers used for the fusion of LacZ-T7 are described in SEQ ID No. 7 and SEQ ID No. Shown in 8
SEQ ID No. 7: CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAA
SEQ ID No. 8: TCATTAAGCAGCTGGCAC,

(3)前記のLacZ−T7およびpMTを相同リコンビナーゼで接続し、遺伝子フラグ
メントをPCR管に入れ、ピペットで静かにピペッティングして混合し、すべての液体を
低速で遠心管の底まで遠心する。キャリアには10−100 ngを使用する。キャリア
とインサートフラグメントのモル比は1:1〜1:10である。複数のフラグメントを接
続する場合、各フラグメントのモル比は1:1である。
pmols= (質量ng×1000)/(フラグメント長さbp×650daltons)

混合液を50℃で15分間反応させる。複数のフラグメントクローニングの場合、反応時
間を延長できるが、総時間は60分を超えないようにする必要がある。
(3) The above-mentioned LacZ-T7 and pMT are connected by a homologous recombinase, the gene fragment is placed in a PCR tube, gently pipetted with a pipette and mixed, and all the liquids are centrifuged at a low speed to the bottom of the centrifuge tube. Use 10-100 ng for the carrier. The molar ratio of carrier to insert fragment is 1: 1 to 1:10. When connecting multiple fragments, the molar ratio of each fragment is 1: 1.
pmols = (mass ng x 1000) / (fragment length bp x 650 daltons)
,
The mixture is reacted at 50 ° C. for 15 minutes. For multiple fragment clonings, the reaction time can be extended, but the total time should not exceed 60 minutes.

100μLの融解したEscherichia coli BL21コンピテントセルを
氷浴で取り、ターゲットDNA(プラスミドまたは使用、ライゲーション生成物)を加え
、静かに混合し、氷上で25分間放置する。ウォーターバスで42°Cで30〜45秒間ヒートシ
ョックを行い、すぐに氷浴に移して2分間放置する。500μLの抗生物質を含まない無
菌LB培地を遠心管に加え、混合して、37℃、200rpmで1時間復活する。様々な
体積の復活液を吸引し、Amp抗生物質を含むLB培地に均一に塗布し、プレートを上下
逆に37℃のインキュベーターに入れ、一晩培養する。
100 μL of thawed Escherichia coli BL21 competent cells are taken in an ice bath, target DNA (plasmid or use, ligation product) is added, mixed gently and left on ice for 25 minutes. Heat shock in a water bath at 42 ° C for 30-45 seconds, immediately transfer to an ice bath and leave for 2 minutes. Add 500 μL of sterile LB medium without antibiotics to the centrifuge tube, mix and revive at 37 ° C., 200 rpm for 1 hour. Aspirate various volumes of resurrection solution, apply evenly to LB medium containing Amp antibiotics, place the plate upside down in a 37 ° C. incubator and incubate overnight.

(4)培地上のスポットを選び、無菌の10μLピペットチップを使用して、アンピシリ
ン抗生物質を含むLB培地およびアンピシリン、20 mg/L X−galおよびテト
ラサイクリン抗生物質を含むLB培地にそれぞれ線を引いて、2つの培地で増殖し、アン
ピシリン、20mg/L X−galおよびテトラサイクリン抗生物質を含むLB培地で
青い斑点を増殖させる株をスクリーニングし、プライマーPCRを使用して組み換えプラ
スミドを同定し、アニーリング温度が53℃であり、プラスミドのコアフラグメントが3
590bpであることを確認する。
(4) Select a spot on the medium and use a sterile 10 μL pipette tip to draw a line on the LB medium containing ampicillin antibiotics and the LB medium containing ampicillin, 20 mg / L X-gal and tetracycline antibiotics, respectively. Strains that grow in two media and grow blue spots in LB medium containing ampicillin, 20 mg / L X-gal and tetracycline antibiotics are screened, recombinant plasmids are identified using primer PCR, and annealing temperature. Is 53 ° C and the core fragment of the plasmid is 3
Confirm that it is 590 bp.

同定に使用したプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケ
ンスは、SEQ ID No.9およびSEQ ID No.10に示され、
SEQ ID No.9:ACTGTCAATTTGATAGCGGG
SEQ ID No.10:ATTAATGCAGCTGGCACGA、
シーケンスを測定し、組み換えプラスミド株がEscherichia coli BL
21/pMTLacZであることを確認する。
The forward and reverse primer sequences of the primers used for identification are described in SEQ ID No. 9 and SEQ ID No. Shown in 10
SEQ ID No. 9: ACTGTCAATTGTGATAGCGGG
SEQ ID No. 10: ATTAAGCAGCTGGCACGA,
The sequence was measured and the recombinant plasmid strain was Escherichia coli BL.
Confirm that it is 21 / pMTLacZ.

さらに、上記解決策では、前記固定剤は10%ラクトースである。 Further, in the above solution, the fixative is 10% lactose.

さらに、上記解決策では、前記増感剤はPMBの1/4LB培地である。 Further, in the above solution, the sensitizer is 1/4 LB medium of PMB.

本発明は、上記試験紙片の調製方法をさらに提供し、この方法は、
(a)濾紙片ベースを用意し、必要なサイズ、好ましくはlcm×4cmにカットすること
と、
(b)Escherichia coli BL21/pMTLacZ細菌および10%ラ
クトースおよびPMBの1/4 LB培地を一定の割合で混合させることと、
(c)Escherichia coli BL21/pMTLacZ細菌および10%ラ
クトースおよびPMBの1/4 LB培地の混合物を試験紙ベース上に滴下することと、
(d)試験紙を凍結乾燥機に入れ固定することと、を含む。
さらに、前記Escherichia coli BL21/pMTLacZ細菌および
10%ラクトースおよびPMBの1/4 LB培地の混合物の投与割合範囲は、3〜4m
gの菌粉に対して100μLの10%ラクトースおよびPMBの1/4LB培地を混合す
る。
The present invention further provides a method for preparing the above-mentioned test paper piece, which method is:
(a) Prepare a filter paper piece base and cut it to the required size, preferably lcm x 4 cm.
(b) Mixing Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria and 10% lactose and 1/4 LB medium of PMB in a fixed ratio, and
(c) Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria and a mixture of 10% lactose and 1/4 LB medium of PMB are added dropwise onto a test strip base.
(d) Includes putting the test paper in a lyophilizer and fixing it.
Further, the administration ratio range of the mixture of Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria and 10% lactose and 1/4 LB medium of PMB is 3 to 4 m.
Mix 100 μL of 10% lactose and 1/4 LB medium of PMB with respect to g of the fungus.

さらに、前記凍結乾燥機での固定時間は4時間である。
本発明は、上記試験紙片を使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する方法を
さらに提供する。
測定する100μLの水サンプルおよび900μLのLB培地の混合液を復活し(約13
−18分)、復活した後、前記試験紙に入れ、試験紙上の青の強度を検出する。
さらに、初期の発色および1.5時間後の色強度の比較により、色強度を得、該水体の6
種類のテトラサイクリン系抗生物質の検出を実現する。
さらに、選択可能に、
検出するには、カメラで発色写真を取得し、コンピューターに転送してImageJソフ
トウェアを使用して青色の強度を取得する。
Further, the fixing time in the freeze-dryer is 4 hours.
The present invention further provides a method for detecting a tetracycline antibiotic in water using the test strip.
Revive the mixture of 100 μL water sample to be measured and 900 μL LB medium (approximately 13).
-18 minutes), after revival, put it in the test paper and detect the intensity of blue on the test paper.
Furthermore, the color intensity was obtained by comparing the initial color development and the color intensity after 1.5 hours, and 6 of the water body was obtained.
Achieves detection of various types of tetracycline antibiotics.
In addition, selectable,
To detect, take a color picture with a camera, transfer it to a computer and use ImageJ software to get the intensity of the blue color.

従来技術と比較すると、本発明の有益な効果は以下の通りである。
(1)本発明のpMTLacZプラスミドは、様々なテトラサイクリン系抗生物質によっ
て誘導できる、発明者が独自に設計した合成プラスミドであり、pMTLacZプラスミ
ドは、異なる濃度のテトラサイクリンの誘導下で異なる量のβ−ガラクトシダーゼを生成
し、試験紙片上に固定されたX−gal発色剤を分解でき、サンプル中のテトラサイクリ
ン系抗生物質の濃度を直観的に示す。
(2)本発明の試験紙片は、有機化学試薬を導入することなく、水体中の6種類のテトラ
サイクリン系抗生物質(テトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、クロルテトラサイ
クリン、ドキシサイクリン、ミノサイクリンおよびメトキシテトラサイクリン)の含有量
を同時に効果的に検出できる。
(3)本発明の検出方法は、単純、高速、直観的、正確で、持ち運びが容易で、環境に優
しく、適用範囲が広く、コストが低く、普及および使用が容易である。
Compared with the prior art, the beneficial effects of the present invention are as follows.
(1) The pMTLacZ plasmid of the present invention is a synthetic plasmid originally designed by the inventor that can be induced by various tetracycline antibiotics, and the pMTLacZ plasmid is a different amount of β-galactosidase under the induction of different concentrations of tetracycline. The X-gal color-developing agent immobilized on the test paper piece can be decomposed, and the concentration of the tetracycline antibiotic in the sample is intuitively shown.
(2) The test paper piece of the present invention simultaneously contains 6 types of tetracycline antibiotics (tetracycline, oxytetracycline, chlortetracycline, doxicycline, minocycline and methoxytetracycline) in an aqueous body without introducing an organic chemical reagent. Can be detected effectively.
(3) The detection method of the present invention is simple, fast, intuitive, accurate, easy to carry, environmentally friendly, versatile, low cost, easy to disseminate and use.

遺伝子フラグメントのゲル電気泳動図であり、そのうち、図aは組み換えプラスミドで使用される遺伝子フラグメントであり、図bは組み換えプラスミド確認フラグメントである。It is a gel electrophoresis diagram of a gene fragment, of which FIG. A is a gene fragment used in a recombinant plasmid, and FIG. B is a recombinant plasmid confirmation fragment. Escherichia coli BL21/pMTLacZ菌の発色原理および効果であり、そのうち、図aは組み換えプラスミド発色原理であり、図bはx−gal化学反応であり、図cは発色結果図である。Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacterium color development principle and effect, of which FIG. a is a recombinant plasmid color development principle, FIG. B is an x-gal chemical reaction, and FIG. C is a color development result diagram. pMTLacZプラスミド遺伝子マップである。pMTLacZ plasmid gene map. Escherichia coli BL21/pMTLacZ菌の試験紙の調製流れである。It is a preparation flow of the test paper of Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria. Escherichia coli BL21/pMTLacZ菌の試験紙により6種類のテトラサイクリン系抗生物質を検出するカラーカードである。It is a color card that detects 6 kinds of tetracycline antibiotics with a test paper of Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria. Escherichia coli BL21/pMTLacZ菌の試験紙により水体の6種類のテトラサイクリン系抗生物質を検出する図である。It is a figure which detects 6 kinds of tetracycline antibiotics of an aqueous body by the test paper of Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria. 本発明の検出方法のフローチャートである。It is a flowchart of the detection method of this invention.

1、Escherichia coli BL21/pMTLacZ株の調製:
(1)プライマーポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用してプラスミドpMTmChe
rryからStaphylococcus rostri RST11:Tn916およ
びトランスポゾンTn10上のテトラサイクリン媒介調節システムのpMTフラグメント
(5256 bp)の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度は55℃で
ある(図1)。使用するプラスミドは表1に示される。
前記pMTプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンス
は、SEQ ID No.1およびSEQ ID No.2に示され、
SEQ ID No.1:TCGTGCCAGCTGCATTAAT
SEQ ID No.2:TTCACTTTTCTCTATCACTGATAGG、
表1 使用する株およびプラスミド
1. Preparation of Escherichia coli BL21 / pMTLacZ strain:
(1) plasmid pMTmChe using primer polymerase chain reaction (PCR)
The gene sequence of the pMT fragment (5256 bp) of the tetracycline-mediated regulatory system on Staphylococcus rostri RST11: Tn916 and transposon Tn10 was cloned from rry and the annealing temperature was 55 ° C. (FIG. 1). The plasmids used are shown in Table 1.
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the pMT primer are described in SEQ ID No. 1 and SEQ ID No. Shown in 2
SEQ ID No. 1: TCGTCGCCAGCTGGCATTAAT
SEQ ID No. 2: TTCACTTTTTCTCATCATCACTGATAGG,
Table 1 Strains and plasmids used


Figure 0006976508

Figure 0006976508


(2)プライマーポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用して、pCU19プラスミドか
らLacZ(368 bp)レポーター遺伝子フラグメントの遺伝子シーケンスをクロー
ニングし、アニーリング温度が65℃であり、プラスミドpMTmCherryからT7
フラグメント(220 bp)の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度
が60℃であり、LacZおよびT7ターミネーターシーケンスとの結合・融合によりL
acZ−T7融合フラグメント(568 bp)を得、プライマーを設計するときに、相
同フラグメントを添加する必要がある(図1)。

(2) Using the primer polymerase chain reaction (PCR), the gene sequence of the LacZ (368 bp) reporter gene fragment was cloned from the pCU19 plasmid, the annealing temperature was 65 ° C., and the plasmid pMTmCherry to T7.
The gene sequence of the fragment (220 bp) is cloned, the annealing temperature is 60 ° C., and L is L by binding and fusion with the LacZ and T7 terminator sequences.
An acZ-T7 fusion fragment (568 bp) is obtained and a homologous fragment needs to be added when designing the primer (FIG. 1).

前記LacZプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケン
スは、SEQ ID No.3およびSEQ ID No.4に示され、
SEQ ID No.3:CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAAATGA
CCATGATTACGCCAAGC
SEQ ID No.4:GTGGCAGCAGCCTAGGTTAACTATGCGG
CATCAGAGCAG、
前記T7プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンスは
、SEQ ID No.5およびSEQ ID No.6に示され、
SEQ ID No.5:TTAACCTAGGCTGCTGCC
SEQ ID No.6:TCATTAATGCAGCTGGCACGATTTCACA
CAGGAAACAGCTATGAC、
融合LacZ−T7所用プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマ
ーシーケンスは、SEQ ID No.7およびSEQ ID No.8に示され、
SEQ ID No.7:CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAA
SEQ ID No.8:TCATTAATGCAGCTGGCAC、
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the LacZ primer are described in SEQ ID No. 3 and SEQ ID No. Shown in 4
SEQ ID No. 3: CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAAATGA
CCATGATTACGCCAAGC
SEQ ID No. 4: GTGGCAGCCACTAGGTTAACTATGCGG
CATCAGAGCAG,
The forward primer sequence and the reverse primer sequence of the T7 primer are described in SEQ ID No. 5 and SEQ ID No. Shown in 6
SEQ ID No. 5: TTAACCTAGGCTGCTGCC
SEQ ID No. 6: TCATTAATTGCAGCTGGCACGGATTTCACA
CAGGAAACAGCTAGAC,
The forward and reverse primer sequences of the fused LacZ-T7 primer are described in SEQ ID No. 7 and SEQ ID No. Shown in 8
SEQ ID No. 7: CTATCAGTGATAGAGAAAAGTGAA
SEQ ID No. 8: TCATTAAGCAGCTGGCAC,

(3)前記のLacZ−T7およびpMTを相同リコンビナーゼで接続し、遺伝子フラグ
メントをPCR管に入れ、ピペットで静かにピペッティングして混合し、すべての液体を
低速で遠心管の底まで遠心する。キャリアには10−100 ngを使用する。キャリア
とインサートフラグメントのモル比は1:1〜1:10である。複数のフラグメントを接
続する場合、各フラグメントのモル比は1:1である。
pmols= (質量ng×1000)/(フラグメント長さbp×650daltons)

混合液を50℃で15分間反応させる。複数のフラグメントクローニングの場合、反応時
間を延長できるが、総時間は60分を超えないようにする必要がある。
(3) The above-mentioned LacZ-T7 and pMT are connected by a homologous recombinase, the gene fragment is placed in a PCR tube, gently pipetted with a pipette and mixed, and all the liquids are centrifuged at a low speed to the bottom of the centrifuge tube. Use 10-100 ng for the carrier. The molar ratio of carrier to insert fragment is 1: 1 to 1:10. When connecting multiple fragments, the molar ratio of each fragment is 1: 1.
pmols = (mass ng x 1000) / (fragment length bp x 650 daltons)
,
The mixture is reacted at 50 ° C. for 15 minutes. For multiple fragment clonings, the reaction time can be extended, but the total time should not exceed 60 minutes.

100μLの融解したEscherichia coli BL21コンピテントセルを
氷浴で取り、ターゲットDNA(プラスミドまたは使用、ライゲーション生成物)を加え
、静かに混合し、氷上で25分間放置する。ウォーターバスで42°Cで30〜45秒間ヒートシ
ョックを行い、すぐに氷浴に移して2分間放置する。500μLの抗生物質を含まない無
菌LB培地を遠心管に加え、混合して、37℃、200rpmで1時間復活する。様々な
体積の復活液を吸引し、Amp抗生物質を含むLB培地に均一に塗布し、プレートを上下
逆に37℃のインキュベーターに入れ、一晩培養する。
100 μL of thawed Escherichia coli BL21 competent cells are taken in an ice bath, target DNA (plasmid or use, ligation product) is added, mixed gently and left on ice for 25 minutes. Heat shock in a water bath at 42 ° C for 30-45 seconds, immediately transfer to an ice bath and leave for 2 minutes. Add 500 μL of sterile LB medium without antibiotics to the centrifuge tube, mix and revive at 37 ° C., 200 rpm for 1 hour. Aspirate various volumes of resurrection solution, apply evenly to LB medium containing Amp antibiotics, place the plate upside down in a 37 ° C. incubator and incubate overnight.

(4)培地上のスポットを選び、無菌の10μLピペットチップを使用して、アンピシリ
ン抗生物質を含むLB培地およびアンピシリン、20 mg/L X−galおよびテト
ラサイクリン抗生物質を含むLB培地にそれぞれ線を引いて、2つの培地で増殖し、アン
ピシリン、20mg/L X−galおよびテトラサイクリン抗生物質を含むLB培地で
青い斑点を増殖させる株をスクリーニングし、プライマーPCRを使用して組み換えプラ
スミドを同定し、アニーリング温度が53℃であり、プラスミドのコアフラグメントが3
590bpであることを確認する(図1)。
(4) Select a spot on the medium and use a sterile 10 μL pipette tip to draw a line on the LB medium containing ampicillin antibiotics and the LB medium containing ampicillin, 20 mg / L X-gal and tetracycline antibiotics, respectively. Strains that grow in two media and grow blue spots in LB medium containing ampicillin, 20 mg / L X-gal and tetracycline antibiotics are screened, recombinant plasmids are identified using primer PCR, and annealing temperature. Is 53 ° C and the core fragment of the plasmid is 3
Confirm that it is 590 bp (Fig. 1).

同定に使用したプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケ
ンスは、SEQ ID No.9およびSEQ ID No.10に示され、
SEQ ID No.9:ACTGTCAATTTGATAGCGGG
SEQ ID No.10:ATTAATGCAGCTGGCACGA、
シーケンスを測定し、組み換えプラスミド株がEscherichia coli BL
21/pMTLacZであることを確認する。pMTLacZプラスミドマップは図3に
示される。
The forward and reverse primer sequences of the primers used for identification are described in SEQ ID No. 9 and SEQ ID No. Shown in 10
SEQ ID No. 9: ACTGTCAATTGTGATAGCGGG
SEQ ID No. 10: ATTAAGCAGCTGGCACGA,
The sequence was measured and the recombinant plasmid strain was Escherichia coli BL.
Confirm that it is 21 / pMTLacZ. The pMTLacZ plasmid map is shown in FIG.

テトラサイクリンカラーカードの調製:
水体の6種類のテトラサイクリンを検出する場合、テトラサイクリンカラーカードが必要
であり、バイオセンサー細菌が固定された試験紙を異なる濃度のテトラサイクリン溶液で
測定し、カメラで発色写真を取得し、コンピューターに転送してImageJソフトウェ
アにより発色強度を取得する(図5)。
Preparation of Tetracycline Color Card:
To detect 6 types of tetracycline in water, a tetracycline color card is required, a test strip with biosensor bacteria is measured with different concentrations of tetracycline solution, a color photograph is taken with a camera, and it is transferred to a computer. The color intensity is acquired by ImageJ software (Fig. 5).

テトラサイクリン検出:
復活したEscherichia coli BL21/pMTLacZ菌試験紙を測定
する水サンプルに入れ、150分間反応した直後の光量を読み取り、そしてX−galを
滴下して1.5時間待ち、バイオセンサーと水中のテトラサイクリン系抗生物質の反応が
完了した後、再び発色を読み取り、構築されたテトラサイクリンカラーカードの色度で算
出し、該水サンプルのテトラサイクリンの含有量を評価する(図7)。この新規な試験紙
の正確性および信頼性を証明するために、2種類の池の水(表2)で250μg/Lオキ
シテトラサイクリンおよび100μg/Lドキシサイクリンをそれぞれ準備し、それぞれ
Escherichia coli BL21/pMTLacZ菌試験紙のテストを実施
した。その結果、該試験紙の結果が安定し再現性があることを示した。したがって、この
方法は信頼性よく実現可能性があり、実用的な価値がある(図6)。
表2 池の水の物理的および化学的特性
Tetracycline detection:
Place the resurrected Escherichia colli BL21 / pMTLacZ bacterium test strip in a water sample to measure, read the amount of light immediately after the reaction for 150 minutes, drop X-gal and wait for 1.5 hours, then wait 1.5 hours for a biosensor and a tetracycline antibiotic in water. After the reaction of the substance is completed, the color development is read again, calculated by the chromaticity of the constructed tetracycline color card, and the tetracycline content of the water sample is evaluated (FIG. 7). To prove the accuracy and reliability of this novel test strip, 250 μg / L oxytetracycline and 100 μg / L doxycycline were prepared in two types of pond water (Table 2), respectively, and Escherichia coli BL21 / pMTLacZ bacteria were prepared, respectively. A test strip was tested. As a result, it was shown that the result of the test paper was stable and reproducible. Therefore, this method is reliable, feasible and of practical value (Fig. 6).
Table 2 Physical and chemical properties of pond water


Figure 0006976508

Figure 0006976508

上記の実施例の説明は、本発明の方法およびその精神を理解するためのものである。当業
者にとって、本発明の原理から逸脱することなく、本発明をいくつかの改良および修正を
加えて実施することもでき、これらの改良および修正はすべて本発明の保護範囲に含まれ
ることは言うまでもない。
[配列表]
The description of the above examples is for understanding the method of the present invention and its spirit. It goes without saying that those skilled in the art may also implement the invention with some modifications and modifications without departing from the principles of the invention, all of which are within the scope of protection of the invention. stomach.
[Sequence list]

SEQUENCE LISTING

<110> 南京▲農業▼大学

<120> バイオセンサーを使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙
片および方法

<130> 無

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、pMTプライマーとしてのF−プライマー
<400> 1
tcgtgccagc tgcattaat 19


<210> 2
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(25)
<223>実験の要求に応じて設計し、pMTプライマーとしてのR−プライマー
<400> 2
ttcacttttc tctatcactg atagg 25


<210> 3
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(45)
<223>実験の要求に応じて設計し、LacZプライマーとしてのF−プライマー
<400> 3
ctatcagtga tagagaaaag tgaaatgacc atgattacgc caagc 45


<210> 4
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(39)
<223>実験の要求に応じて設計し、LacZプライマーとしてのR−プライマー
<400> 4
gtggcagcag cctaggttaa ctatgcggca tcagagcag 39


<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(18)
<223>実験の要求に応じて設計し、T7プライマーとしてのF−プライマー
<400> 5
ttaacctagg ctgctgcc 18


<210> 6
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(45)
<223>実験の要求に応じて設計し、T7プライマーとしてのR−プライマー
<400> 6
tcattaatgc agctggcacg atttcacaca ggaaacagct atgac 45


<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(24)
<223>実験の要求に応じて設計し、融合LacZ-T7プライマーとしてのF−プライマー
<400> 7
ctatcagtga tagagaaaag tgaa 24


<210> 8
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、融合LacZ-T7プライマーとしてのR−プライマー
<400> 8
tcattaatgc agctggcac 19


<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(20)
<223>実験の要求に応じて設計し、鑑定用プライマーとしてのF−プライマー
<400> 9
actgtcaatt tgatagcggg 20


<210> 10
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、鑑定用プライマーとしてのR−プライマー
<400> 10
attaatgcag ctggcacga 19
SEQUENCE LISTING

<110> Nanjing ▲ Agriculture ▼ University

<120> Test strips and methods for detecting tetracycline antibiotics in water using biosensors

<130> No

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (19)
<223> F-primer as a pMT primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 1
tcgtgccagc tgcattaat 19


<210> 2
<211> 25
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (25)
<223> R-primer as a pMT primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 2
ttcacttttc tctatcactg atagg 25


<210> 3
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (45)
<223> F-primer as LacZ primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 3
ctatcagtga tagagaaaag tgaaatgacc atgattacgc caagc 45


<210> 4
<211> 39
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (39)
<223> R-primer as LacZ primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 4
gtggcagcag cctaggttaa ctatgcggca tcagagcag 39


<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (18)
<223> F-primer as a T7 primer designed according to the requirements of the experiment.
<400> 5
ttaacctagg ctgctgcc 18


<210> 6
<211> 45
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (45)
<223> R-primer as a T7 primer designed according to the requirements of the experiment.
<400> 6
tcattaatgc agctggcacg atttcacaca ggaaacagct atgac 45


<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (24)
<223> F-primer as a fusion LacZ-T7 primer designed according to the requirements of the experiment.
<400> 7
ctatcagtga tagagaaaag tgaa 24


<210> 8
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (19)
<223> R-primer as a fused LacZ-T7 primer designed according to the requirements of the experiment.
<400> 8
tcattaatgc agctggcac 19


<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (20)
<223> F-primer as an appraisal primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 9
actgtcaatt tgatagcggg 20


<210> 10
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial sequence

<221> misc_feature
<222> (1) .. (19)
<223> R-primer as an appraisal primer designed according to the requirements of the experiment
<400> 10
attaatgcag ctggcacga 19

Claims (1)

水中のテトラサイクリン系抗生物質の検出するための、テトラサイクリンバイオセンサTetracycline biosensor for detecting tetracycline antibiotics in water
ー菌接種物を含む試験紙の調製方法であって、-A method for preparing test strips containing bacterial inoculum.
前記調製方法は、 The preparation method is
10%ラクトースおよびポリミキシンB(PMB)の1/4LB培地にテトラサイクリンTetracycline in 1/4 LB medium of 10% lactose and polymyxin B (PMB)
バイオセンサー菌接種物を懸濁した懸濁液を調製する工程、The process of preparing a suspension in which a biosensor inoculum is suspended,
前記懸濁液を濾紙片に滴下して乾燥させて前記試験紙を調製する工程を含み、Including the step of preparing the test paper by dropping the suspension onto a piece of filter paper and drying it.
前記試験紙において前記テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物は、前記ラクトースおIn the test paper, the tetracycline biosensor inoculum is the lactose.
よび前記ポリミキシンB(PMB)の1/4LB培地によってラップされ、前記濾紙片上And wrapped in 1/4 LB medium of the polymyxin B (PMB) and on the filter paper piece
に固定されており、Is fixed to
前記テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物は、Escherichia coli The tetracycline biosensor inoculum is Escherichia coli.
BL21に対して、pMTLacZプラスミドを導入した、Escherichia Escherichia into which the pMTLacZ plasmid was introduced into BL21
coli BL21/pMTLacZ組換え株であり、coli BL21 / pMTLacZ recombinant strain,
前記pMTLacZプラスミドは図3に示される構造を有し、Ampr遺伝子、Tet The pMTLacZ plasmid has the structure shown in FIG. 3, and the Ampr gene, Tet.
R遺伝子、TetO遺伝子、TetM遺伝子、およびLacZ遺伝子を含み、Includes R gene, TetO gene, TetM gene, and LacZ gene,
前記Escherichia coli BL21/pMTLacZ組換え株は、異な The Escherichia coli BL21 / pMTLacZ recombinant strain is different.
る濃度のテトラサイクリンの誘導下で異なる量のβ−ガラクトシダーゼを生成する株であA strain that produces different amounts of β-galactosidase under the induction of a high concentration of tetracycline.
り、the law of nature,
試験する水およびLB培地の混合液に、前記試験紙およびX−galを入れて反応させ The test paper and X-gal are put into a mixture of water and LB medium to be tested and reacted.
ると、前記試験する水中にテトラサイクリン系抗生物質が存在する場合に前記試験紙は青Then, when the tetracycline antibiotic is present in the water to be tested, the test paper is blue.
に発色することを特徴とする、Characterized by developing color,
前記調製方法。The preparation method.
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