JP6960120B2 - 肝疾患治療剤及び肝疾患を治療する方法 - Google Patents

Description

本発明は、肝疾患治療剤及び肝疾患を治療する方法に関する。

急性肝炎は、急性のびまん性疾患で、黄疸、食欲不振、嘔気嘔吐、全身倦怠感、発熱等の症状を呈する。予後は一般に良好だが、約１〜２％の患者は劇症化し、一度劇症化すると高率で死亡する。上記肝炎の病因としては、主として肝炎ウイルスが知られている。この肝炎ウイルスを病因とする肝炎は、ウイルス自体が肝細胞を破壊するのではなく、ウイルスに感染した肝細胞が免疫学的機序により破壊されることにより起きると言われている（非特許文献１参照）。

一方、ウイルス以外を病因とする肝炎として、自己免疫性肝炎が知られている。この自己免疫性肝炎は、急性と慢性の両方の臨床症状があるが、何らかの機序により自己の肝細胞に対する免疫学的寛容が破綻し、自己免疫反応によって生じる疾患である。発症誘因として、先行する感染症や薬剤の関与も示唆されている。日本の自己免疫性肝炎患者数は約２万人程度で慢性肝炎の約１．８％を占めるとされる。自己免疫性肝炎による死亡例の中の約３０％は、診断から半年以内の死亡例であり、診断時の急性肝不全に対する処置が、予後の改善に重要とされる（非特許文献２参照）。炎症の慢性化により肝再生と結合組織の新生が繰り返された結果、コラーゲンを主体とする細胞外マトリックスの増加（肝線維化）がみられ、肝硬変に進展する。肝硬変の代償期から、更に高度な線維化を伴う非代償期へ進行した場合、既存の薬剤・治療法では十分に対処することができない。そのため従来とは作用機序の異なる新規治療薬の開発が望まれている。

間葉系幹細胞は、Ｆｒｉｅｄｅｎｓｔｅｉｎ（１９８２）によって初めて骨髄から単離された多分化能を有する前駆細胞である（非特許文献３参照）。間葉系幹細胞は、骨髄、臍帯、脂肪等の様々な組織に存在することが明らかにされており、間葉系幹細胞移植は、様々な難治性疾患に対する新しい治療方法として、期待されている（特許文献１〜２参照）。最近では、脂肪組織、胎盤、臍帯、卵膜などの胎児付属物の間質細胞に同等の機能を有する細胞が存在することが知られている。従って、間葉系幹細胞を間質細胞（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｒｏｍａｌ Ｃｅｌｌ）と称することもある。

特開２０１２−１５７２６３号公報 特表２０１２−５０８７３３号公報

肝臓専門医テキスト、ｐｐ．１８６−１９０、株式会社南江堂、２０１３年３月３０日発行 肝臓専門医テキスト、ｐｐ．２０５−２０８、株式会社南江堂、２０１３年３月３０日発行 Ｐｉｔｔｅｎｇｅｒ Ｆ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８４，ｐｐ．１４３−１４７（１９９９）

本発明は、上述のような状況の中、肝疾患の新規治療剤及び新規治療方法を提供することを目的とする。

上記課題を解決するために、本発明者らは、肝硬変の成因となる肝炎、特に自己免疫性肝炎に着目して、間質細胞の効果について検証した。また、細胞間情報伝達において重要な役割を担う細胞外小胞等の微小粒子に着目して、その作用メカニズムの解明に取り組んだ。その結果、間質細胞由来の微小粒子を含有する組成物が、肝疾患の治療に有効であることを見出した。すなわち本発明の要旨は、以下の通りである。

（１）間質細胞由来の微小粒子を含有する、肝疾患治療剤。
（２）上記微小粒子の平均粒子径が１，０００ｎｍ以下である、（１）記載の肝疾患治療剤。
（３）上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を含む（１）又は（２）記載の肝疾患治療剤。
（４）上記微小粒子が、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）である、（１）から（３）のいずれか記載の肝疾患治療剤。
（５）上記微小粒子が、ＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）からなる群から選択される少なくとも１種の因子を含有する、（１）から（４）のいずれか記載の肝疾患治療剤。
（６）上記間質細胞が、脂肪組織由来である、（１）から（５）のいずれか記載の肝疾患治療剤。
（７）上記肝疾患が、自己免疫性肝疾患である、（１）から（６）のいずれか記載の肝疾患治療剤。
（８）上記自己免疫性肝疾患が、自己免疫性肝炎（ＡＩＨ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＢＣ）又は原発性胆汁性肝硬変（ＰＳＣ）である、（７）記載の肝疾患治療剤。
（９）間質細胞由来の微小粒子を患者に投与することにより肝疾患を治療する方法。
（１０）上記微小粒子の平均粒子径が１，０００ｎｍ以下である、（９）記載の方法。
（１１）上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を患者に投与する、（９）又は（１０）記載の方法。
（１２）上記微小粒子が、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）である、（９）から（１１）のいずれか記載の方法。
（１３）上記微小粒子が、ＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）からなる群から選択される少なくとも１種の因子を含有する、（９）から（１２）のいずれか記載の方法。
（１４）上記間質細胞が、脂肪組織由来である、（９）から（１３）のいずれか記載の方法。
（１５）上記肝疾患が、自己免疫性肝疾患である、（９）から（１４）のいずれか記載の方法。
（１６）上記自己免疫性肝疾患が、自己免疫性肝炎（ＡＩＨ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＢＣ）又は原発性胆汁性肝硬変（ＰＳＣ）である、（９）から（１５）のいずれか記載の方法。

本発明によると、肝疾患の新規治療剤、肝疾患の新規治療方法を提供することができる。

図１は、ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では、対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、微小粒子の生成が抑制され、微小粒子の分泌量が有意に減少することを示す図である。 図２は、ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）と対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）の培養上清中の微小粒子中のサイトカイン量（ＩＬ−１０）をＥＬＩＳＡ法により測定した結果を示す図である。 図３は、ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）と対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）の培養上清中の微小粒子中のサイトカイン量（ＨＧＦ）をＥＬＩＳＡ法により測定した結果を示す図である。 図４は自己免疫性肝疾患のモデルマウスの血中ＡＳＴ値を測定して、自己免疫性肝疾患に対する脂肪由来間質細胞の治療効果を示した図である。ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では、対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、その治療効果が低減することを示している。 図５は自己免疫性肝疾患のモデルマウスの血中ＡＬＴ値を測定して、自己免疫性肝疾患に対する脂肪由来間質細胞の治療効果を示した図である。ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では、対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、その治療効果が低減することを示している。 図６は自己免疫性肝疾患のモデルマウスの肝組織に対する脂肪由来間質細胞の治療効果を示した図である。ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では、対照細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、リンパ球浸潤に対する治療効果が低減することを示している。

以下、本発明の肝疾患治療剤について詳細に説明する。

本発明の肝疾患治療剤は、間質細胞由来の微小粒子を含有する。本発明の肝疾患治療剤は、上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を含むことが好ましい。本発明の肝疾患治療剤において、微小粒子はどのような形態で含有されていてもよく、上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞の形態で含有することも含む。すなわち、本発明の肝疾患治療剤は、微小粒子を単独で含んでいてもよく、微小粒子とともに上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を含んでいてもよく、上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を単独で含有してもよい。さらに、本発明の効果を損なわない範囲で、その他の成分を含んでいてもよい。以下に本発明の疾患治療剤について詳細に説明する。

〈間質細胞〉
本発明における間質細胞とは、間葉系に属する細胞（骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、腱細胞、脂肪細胞等）への分化能を有し、この分化能を維持したまま増殖できる細胞を意味する。例えば骨髄、脂肪、血液、骨膜、真皮、臍帯、臍帯血、胎盤、羊膜、絨毛膜、脱落膜、筋肉、滑膜、滑液、歯髄、神経、月経血、末梢血等由来の間質細胞が挙げられ、好ましくは脂肪由来、更に好ましくは成人脂肪由来の間質細胞である。ここで、「由来の」とは、当該組織に含有される間質細胞であることを意味し、例えば脂肪由来間質細胞とは、脂肪組織に存在する、間葉系に属する細胞への分化能を有する細胞を意味する。

本発明における間質細胞は、処置される対象（被検体）と同種由来であってもよいし、異種由来であっても良い。本発明における間質細胞の種として、ヒト、ウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、ラビット、マウス、ラットが挙げられ、好ましくは処置される対象（被検体）と同種由来細胞である。本発明における間質細胞は、処置される対象（被検体）に由来、すなわち自家細胞であってもよいし、同種の別の対象に由来、すなわち他家細胞であっても良い。好ましくは他家細胞である。

本発明における間質細胞は、上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有することに加えて、例えば、成長特徴（例えば、継代から老化までの集団倍加能力、倍加時間）、核型分析（例えば、正常な核型、母体系統又は新生児系統）、フローサイトメトリー（例えば、ＦＡＣＳ分析）による表面マーカー発現、免疫組織化学及び／又は免疫細胞化学（例えば、エピトープ検出）、遺伝子発現プロファイリング（例えば、遺伝子チップアレイ；逆転写ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、従来型ＰＣＲ等のポリメラーゼ連鎖反応）、ｍｉＲＮＡ発現プロファイリング、タンパク質アレイ、サイトカイン等のタンパク質分泌（例えば、血漿凝固解析、ＥＬＩＳＡ、サイトカインアレイ）、代謝産物（メタボローム解析）、本分野で知られている他の方法等によって、特徴付けられてもよい。

本発明における間質細胞の取得方法、培養方法は特に限定されないが、例えば以下のような方法を用いることができる。すなわち、(a)間質細胞を含む組織を、酵素等で処理する工程、(b)上記酵素処理により得られた細胞懸濁液を適切な培養培地に懸濁して付着培養を行う工程、(c)浮遊細胞を除去する工程、(d)間質細胞を培養する工程等を含む方法により、間質細胞を取得、培養することができる。各工程について以下に、詳細に説明する。

工程(a)において、脂肪組織等の間質細胞を含む組織は、生理食塩水（例えばリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ））等を用いて、攪拌して沈降させること等により洗浄されていることが好ましい。この操作により、上記組織に含まれる夾雑物（デブリとも言い、例えば損傷組織、血液、赤血球等）を組織から除去する。したがって、洗浄及び沈降は一般に、上清からデブリが総体的に除去されるまで繰り返される。残存する細胞は、さまざまなサイズの塊として存在するので、細胞そのものの損傷を最小限に抑えながら解離させるため、洗浄後の細胞塊を、細胞間結合を弱めるか、又は細胞間結合を破壊する酵素（例えばコラゲナーゼ、ディスパーゼ、トリプシン等）で処理することが好ましい。使用する酵素の量及び処理期間は、使用される条件に依存して変わるが、当技術分野の技術常識の範囲で行うことができる。このような酵素処理に代えて、又は併用して、細胞塊を、機械的な攪拌、超音波エネルギー、熱エネルギー等の他の処理法で分解することができるが、細胞の損傷を最小限に抑えるため、酵素処理のみで行うことが好ましい。酵素を用いた場合、細胞に対する有害な作用を最小限に抑えるために、酵素による処理後は、培地等を用いて酵素を失活させることが望ましい。

工程(a)により得られる細胞懸濁物は、凝集状の細胞のスラリー又は懸濁物、ならびに各種夾雑細胞、例えば赤血球、平滑筋細胞、内皮細胞、及び線維芽細胞を含む。従って、続いて凝集状態の細胞とこれらの夾雑細胞を分離、除去してもよいが、後述する工程(c)での浮遊細胞等の除去により、除去可能であることから、当該分離、除去は割愛しても良い。夾雑細胞を分離、除去する場合、細胞を上清と沈殿に強制的に分ける遠心分離によって達成し得る。得られた夾雑細胞を含む沈殿は、生理学的に適合する溶媒に懸濁させる。懸濁状の細胞には、赤血球を含む恐れがあるが、後述する個体表面への接着による選択により、赤血球は除外されるため、溶解する工程は必ずしも必要ではない。赤血球を選択的に溶解する方法として、例えば、塩化アンモニウムによる溶解による高張培地又は低張培地中でのインキュベーション等、当技術分野で周知の方法を使用することができる。溶解後、例えば濾過、遠心沈降、又は密度分画によって溶解物を所望の細胞から分離してもよい。

工程(b)において、懸濁状の細胞において、間質細胞の純度を高めるために、１回もしくは連続して複数回洗浄し、遠心分離し、培地に再懸濁してもよい。この他にも、細胞を、細胞表面マーカープロファイルを基に、又は細胞のサイズ及び顆粒性を基に分離しても良い。

再懸濁において用いる培地は、間質細胞を培養できる培地であれば特に限定されないが、例えば、動物細胞用の基礎培地に、血清及び／又は血清代替物等を添加して作製することができる。また、間質細胞の培養に適した培地として市販されているものを用いてもよい。なお、本発明においては間質細胞やその培養上清を動物（ヒトを含む）の疾患の治療のために用いるため、できるだけ生物由来原料を含まない培地（例えば、無血清培地）であることが好ましい。特に異種由来成分を含まない（ゼノフリー）培地が好ましい。

上記基礎培地の組成は、培養するべき細胞の種類に応じて適宜選択することができる。例えば、イーグル培地のような最小必須培地（ＭＥＭ）、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、最小必須培地α（ＭＥＭ−α）、間葉系細胞基礎培地（ＭＳＣＢＭ）、Ｈａｍ’ｓ Ｆ−１２及びＦ−１０培地、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、Ｗｉｌｌｉａｍｓ培地Ｅ、ＲＰＭＩ−１６４０培地、ＭＣＤＢ培地、１９９培地、Ｆｉｓｈｅｒ培地、Ｉｓｃｏｖｅ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）、ＭｃＣｏｙ改変培地等が挙げられる。

血清は、例えば、ヒト血清、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、ウシ血清、仔ウシ血清、ヤギ血清、ウマ血清、ブタ血清、ヒツジ血清、ウサギ血清、ラット血清等があるがこれらに限定されない。血清を用いる場合、基礎培地に対して、０．５％〜１５％、好ましくは、５％〜１０％を添加しても良い。

基礎培地に加える上記血清代替物としては、例えば、アルブミン、トランスフェリン、脂肪酸、インスリン、亜セレン酸ナトリウム、コラーゲン前駆体、微量元素、２−メルカプトエタノール、３’−チオールグリセロール等が挙げられる。

上記基礎培地には、必要に応じて、さらにアミノ酸、無機塩類、ビタミン類、増殖因子、抗生物質、微量金属類、幹細胞分化誘導剤、抗酸化剤、炭素源、塩、糖、糖前駆体、植物由来加水分解物、サーファクタント、アンモニア、脂質、ホルモン、緩衝剤、指示薬、ヌクレオシド、ヌクレオチド、酪酸、有機物、ＤＭＳＯ、動物由来生成物、遺伝子誘導剤、細胞内ｐＨの調節剤、ベタイン、浸透圧保護剤、鉱物等の物質を添加しても良いが、これらの物質に限定されない。これらの物質の使用濃度は特に限定されず、通常の哺乳動物細胞用培地に用いられる濃度で用いることができる。

上記アミノ酸としては、例えば、グリシン、Ｌ−アラニン、Ｌ−アルギニン、Ｌ−アスパラギン、Ｌ−アスパラギン酸、Ｌ−システイン、Ｌ−シスチン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−グルタミン、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−リジン、Ｌ−メチオニン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−プロリン、Ｌ−セリン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−チロシン、Ｌ−バリン等が挙げられる。

上記無機塩類としては、例えば、塩化カルシウム、硫酸銅、硝酸鉄（ＩＩＩ）、硫酸鉄、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カリウム、炭酸水素ナトリウム、塩化ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム等が挙げられる。

上記ビタミン類としては、例えば、コリン、ビタミンＡ、ビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＢ３、ビタミンＢ４、ビタミンＢ５、ビタミンＢ６、ビタミンＢ７、ビタミンＢ１２、ビタミンＢ１３、ビタミンＢ１５、ビタミンＢ１７、ビタミンＢｈ、ビタミンＢｔ、ビタミンＢｘ、ビタミンＣ、ビタミンＤ、ビタミンＥ、ビタミンＦ、ビタミンＫ、ビタミンＭ、ビタミンＰ等が挙げられる。

その他、基礎培地に添加できる具体的な物質としては、塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、内皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、上皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）等の増殖因子；ペニシリン、ストレプトマイシン、ネオマイシン硫酸塩、アンホテリシンＢ、ブラストサイジン、クロラムフェニコール、アモキシシリン、バシトラシン、ブレオマイシン、セファロスポリン、クロルテトラサイクリン、ゼオシン及びピューロマイシン等の抗生物質；グルコース、ガラクトース、フルクトース、スクロース等の炭素源；マグネシウム、鉄、亜鉛、カルシウム、カリウム、ナトリウム、銅、セレン、コバルト、スズ、モリブデン、ニッケル、ケイ素等の微量金属；β−グリセロリン酸、デキサメタゾン、ロシグリタゾン、イソブチルメチルキサンチン、５−アザシチジン等の幹細胞分化誘導剤；２−メルカプトエタノール、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ、Ｎ−アセチルシステイン等の抗酸化剤；アデノシン５’−一リン酸、コルチコステロン、エタノールアミン、インスリン、還元型グルタチオン、リポ酸、メラトニン、ヒポキサンチン、フェノールレッド、プロゲステロン、プトレシン、ピルビン酸、チミジン、トリヨードチロニン、トランスフェリン、ラクトフェリン等が挙げられる。

本発明における間質細胞に好適な無血清培地としては、市販の無血清培地が挙げられる。例えば、ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社、Ｌｏｎｚａ社、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社、Ｖｅｒｉｔａｓ社、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社及びＣｏｒｎｉｎｇ社等から間質細胞用として予め調製された培地として提供されているもの等が挙げられる。

続いて、間質細胞を分化させずに培養容器等の固体表面上で、上述の適切な培地を使用して、適切な細胞密度及び培養条件で培養する。固体表面を有する培養容器の形状は特に限定されないが、シャーレやフラスコ等が好適に用いられる。本発明における間質細胞の培養条件は、それぞれの間質細胞に適した方法であれば特に限定されず、従来と同様の方法が用いられる。通常、３０℃〜３７℃の温度、２％〜７％ＣＯ_２環境下、５％〜２１％Ｏ_２環境下で行われる。また、間質細胞の継代の時期及び方法もそれぞれの細胞に適していれば特に限定されず、細胞の様子を見ながら、従来と同様に行うことができる。

工程(c)において、培養容器の固体表面に非付着状態の浮遊細胞及び細胞の破片等を除去し、生理食塩水（例えばリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ））等を用いて付着細胞を洗浄する。本発明では、最終的に培養容器の固体表面に付着した状態で留まる細胞を間質細胞の細胞集団として選択することができる。

工程(d)において、間質細胞の培養を行う。培養方法は、それぞれの細胞に適した方法であれば特に限定されず、従来と同様の方法が用いられる。通常、３０℃〜３７℃の温度、２％〜７％ＣＯ_２環境下、５％〜２１％Ｏ_２環境下で行われる。また、間質細胞の継代の時期及び方法もそれぞれの間質細胞に適していれば特に限定されず、間質細胞の形態を観察しながら、従来と同様に行うことができる。培養に用いる培地としては、工程（ｂ）と同様のものを用いることができる。なお、細胞の全培養期間に渡って無血清培地等を用いて行われてもよい。

〈間質細胞由来の微小粒子〉
本発明における間質細胞由来の微小粒子は、間質細胞から得られる微小粒子であり、間質細胞により産生される。本発明における間質細胞由来の微小粒子は、間質細胞中に含まれるものでもよく、間質細胞培養上清中に含まれるものでもよく、間質細胞中もしくは間質細胞培養上清から単離された微小粒子でもよい。すなわち、本発明における間質細胞由来の微小粒子は、いかなる形態であってもよく、微小粒子自体であることは勿論、微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞の形態であってもよい。微小粒子の単離方法としては、超遠心法、精密濾過法、抗体による捕捉、マイクロ流体システムの利用等が挙げられる。単離された微小粒子は、間質細胞等の細胞を含んでいてもよく、また、間質細胞培養培地を含んでいてもよい。

本発明における間質細胞由来の微小粒子は、間質細胞を上述の培地を用いて培養して得られる培養上清から回収することができる。培養上清を回収する場合には、例えば、間質細胞を培養容器中でサブコンフルエント又はコンフルエントの状態にし、新しい培地へと交換してから、更に１〜５日間培養を行って、その培養上清を回収することができる。この培養上清を、本発明の肝疾患治療剤として用いることもできるが、微小粒子を超遠心分離法、密度勾配遠心法、各種微小粒子分離キット等により分離して、それを本発明の肝疾患治療剤の材料として用いることもできる。
本発明の肝疾患治療剤は、上記微小粒子に加えて、上記微小粒子を包含する、又は分泌する能力を有する間質細胞自体を含んでいてもよい。なお、肝疾患治療剤が上記微小粒子を包含する、又は分泌する能力を有する間質細胞を含む場合には、上記間質細胞を含むことで、同時に上記微小粒子を含むという要件を満たすこととなるとも解釈できる。

本発明における間質細胞由来の微小粒子は、典型的には間質細胞から放出される、電子顕微鏡で確認することができるサイズの小胞である。微小粒子のサイズとしては、平均粒子径が約１ｎｍ以上１，０００ｎｍ以下であり、１０ｎｍ以上５００ｎｍ以下であることが好ましく、３０ｎｍ以上２００ｎｍ以下であることが更に好ましい。ここで、平均粒子径とは、動的光散乱法又は電子顕微鏡での測定による各粒子の直径の平均値である。上記微小粒子は、生体分子を囲む脂質二重層を有することができる。また、上記微小粒子としては、例えば、膜粒子、膜小胞、微小胞、ナノ小胞、微小小胞体（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅｓ、平均粒子径３０〜１，０００ｎｍ）、エクソソーム様小胞、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ、平均粒子径３０〜２００ｎｍ）、エクトソーム様小胞、エクトソーム（ｅｃｔｏｓｏｍｅ）又はエキソベシクル等が挙げられ、好ましくはエクソソームである。異なる種類の間質細胞由来の微小粒子は、細胞内起源、スクロース中での微小粒子の密度、形状、沈降速度、脂質組成、タンパク質マーカー及び分泌の様式（即ち、シグナル（誘導性）後又は自発的（構成的））に基づいても区別される。微小粒子は、例えば、密度勾配遠心法では、１．０〜１．５ｇ／ｍＬ、好ましくは１．１〜１．３ｇ／ｍＬに分画される。さらに、微小粒子はその構成脂質としてフォスファチジルセリン、コレステロール、スフィンゴミエリン及びセラミドのいずれかを含有する。

本発明における間質細胞由来の微小粒子は、タンパク質、脂肪酸、ｍｉＲＮＡ等の核酸を含む。

上記タンパク質、脂肪酸としては、例えば、ＩＬ−１０、ＨＧＦ（Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ）、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ペラルゴン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、イソペンタデカン酸、パルミチン酸、イソパルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、イソステアリン酸、オレイン酸、エライジン酸、リノール酸、ノナデシル酸、イソノナデシル酸、アラキジン酸、１１Ｚ−ｅｉｃｏｓｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、Ｄｉｈｏｍｏ−γ−ｌｉｎｏｌｅｎｉｃ ａｃｉｄ、アラキドン酸、エルカ酸、１３Ｚ， １６Ｚ−Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、１３Ｚ， １６Ｚ，１９Ｚ−Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、アドレン酸、Ｃｌｕｐａｎｏｄｏｎｉｃ ａｃｉｄ等、好ましくはＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ペラルゴン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、イソペンタデカン酸、パルミチン酸、イソパルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、イソステアリン酸、オレイン酸、エライジン酸、リノール酸、アラキジン酸、１１Ｚ−ｅｉｃｏｓｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、アラキドン酸、エルカ酸、１３Ｚ， １６Ｚ−Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、更に好ましくはＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、ハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）、ミリスチン酸、ペンタデカン酸、パルミチン酸、マルガリン酸、Ｉｓｏｈｅｐｔａｄｅｃａｎｏｉｃ ａｃｉｄ、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸、ノナデシル酸、エルカ酸、１３Ｚ， １６Ｚ−Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄ、特に好ましくはＩＬ−１０、ＨＧＦ、パルミチン酸、マルガリン酸、ステアリン酸、オレイン酸、１３Ｚ， １６Ｚ−Ｄｏｃｏｓａｄｉｅｎｏｉｃ ａｃｉｄが挙げられ、これらを含む微小粒子であることが好ましい。

〈その他の成分〉
本発明の肝疾患治療剤は、本発明の効果を損なわない範囲であれば、その用途や形態に応じて、常法に従い、薬学的に許容される担体や添加物を含有させてもよい。このような担体や添加物としては、例えば、等張化剤、増粘剤、糖類、糖アルコール類、防腐剤（保存剤）、殺菌剤又は抗菌剤、ｐＨ調節剤、安定化剤、キレート剤、油性基剤、ゲル基剤、界面活性剤、懸濁化剤、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、発泡剤、流動化剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、溶解補助剤、抗酸化剤、甘味剤、酸味剤、着色剤、呈味剤、香料又は清涼化剤等が挙げられるが、これらに限定されない。代表的な成分として例えば次の担体、添加物等が挙げられる。

担体：例えば、水、含水エタノール等の水性担体。
等張化剤（無機塩）：例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム等。
多価アルコール：例えば、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等。
増粘剤：例えば、カルボキシビニルポリマー、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、メチルセルロース、アルギン酸、ポリビニルアルコール（完全、又は部分ケン化物）、ポリビニルピロリドン、マクロゴール等。
糖類：例えば、シクロデキストリン、ブドウ糖等。
糖アルコール類：例えば、キシリトール、ソルビトール、マンニトール等。これらはｄ体、ｌ体又はｄｌ体のいずれでもよい。
防腐剤、殺菌剤又は抗菌剤：例えば、ジブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、塩酸アルキルジアミノエチルグリシン、安息香酸ナトリウム、エタノール、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、グルコン酸クロルヘキシジン、クロロブタノール、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、トロメタモール、デヒドロ酢酸ナトリウム、パラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル、パラオキシ安息香酸ブチル、硫酸オキシキノリン、フェネチルアルコール、ベンジルアルコール、ビグアニド化合物（具体的には、塩酸ポリヘキサニド（ポリヘキサメチレンビグアニド）等）、グローキル（ローディア社製商品名）等。
ｐＨ調節剤：例えば、塩酸、ホウ酸、アミノエチルスルホン酸、イプシロン−アミノカプロン酸、クエン酸、酢酸、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸ナトリウム、ホウ砂、トリエタノールアミン、モノエタノールアミン、ジイソプロパノールアミン、硫酸、硫酸マグネシウム、リン酸、ポリリン酸、プロピオン酸、シュウ酸、グルコン酸、フマル酸、乳酸、酒石酸、リンゴ酸、コハク酸、グルコノラクトン、酢酸アンモニウム等。
安定化剤：例えば、ジブチルヒドロキシトルエン、トロメタモール、ナトリウムホルムアルデヒドスルホキシレート（ロンガリット）、トコフェロール、ピロ亜硫酸ナトリウム、モノエタノールアミン、モノステアリン酸アルミニウム、モノステアリン酸グリセリン、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等。
油性基剤：例えば、オリーブ油、トウモロコシ油、大豆油、ゴマ油、綿実油等の植物油；中鎖脂肪酸トリグリセリド等。
水性基剤：例えば、マクロゴール４００等。
ゲル基剤：例えば、カルボキシビニルポリマー、ガム質等。
界面活性剤：例えば、ポリソルベート８０、硬化ヒマシ油、グリセリン脂肪酸エステル、セスキオレイン酸ソルビタン等。
懸濁化剤：例えば、サラシミツロウや各種界面活性剤、アラビアゴム、アラビアゴム末、キサンタンガム、大豆レシチン等。
結合剤：例えば、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール等。
賦形剤：例えば、ショ糖、乳糖、デンプン、コーンスターチ、結晶セルロース、軽質無水ケイ酸等。
滑沢剤：例えば、ショ糖脂肪酸エステル、ステアリン酸マグネシウム、タルク等。
崩壊剤：例えば、低置換度ヒドロキシプロピルセルロース、クロスポビドン、クロスカルメロースナトリウム等。
発泡剤：例えば、炭酸水素ナトリウム等。
流動化剤：例えば、メタケイ酸アルミン酸ナトリウム、軽質無水ケイ酸等。

本発明の肝疾患治療剤は、間質細胞由来の微粒子及び／又は間質細胞、並びに上述した成分を、後述する生理食塩水等にて懸濁、混合して得られる。

本発明の肝疾患治療剤は、目的に応じて種々の形態、例えば、固形剤、半固形剤、液剤等の様々な剤形で提供することができる。例えば、固形剤（錠剤、粉末、散剤、顆粒剤、カプセル剤等）、半固形剤［軟膏剤（硬軟膏剤、軟軟膏剤等）、クリーム剤等］、液剤［ローション剤、エキス剤、懸濁剤、乳剤、シロップ剤、注射剤（輸液剤、埋め込み注射剤、持続性注射、用時調製型の注射剤を含む）、透析用剤、エアゾール剤、軟カプセル剤、ドリンク剤等］、貼付剤、パップ剤等の形態で利用できる。また、本発明の肝疾患治療剤は、油性又は水性のビヒクル中の溶液又は乳液等の形態でも利用できる。さらに、本発明の肝疾患治療剤は噴霧により、患部に適用することもでき、本発明の肝疾患治療剤は噴霧した後に患部でゲル化もしくはシート化される形態でも利用できる。本発明の肝疾患治療剤は上記間葉系幹細胞をシート状または立体構造体とした後に、患部に適用することもできる。

本発明の肝疾患治療剤は、生理食塩液、日局生理食塩液、５％ブドウ糖液、ブドウ糖注射液等、または、ＤＭＥＭ等の細胞培養培地を用いて、懸濁もしくは希釈して用いることができ、好ましくは生理食塩液、５％ブドウ糖液である。

本発明の肝疾患治療剤が液剤である場合、肝疾患治療剤のｐＨは、医薬上、薬理学的に（製薬上）又は生理学的に許容される範囲内であれば特に限定されるものではないが、一例として、２．５〜９．０、好ましくは３．０〜８．５、更に好ましくは３．５〜８．０となる範囲が挙げられる。

本発明の肝疾患治療剤が液剤である場合、肝疾患治療剤の浸透圧については、生体に許容される範囲内であれば、特に制限されない。本発明の組成物の浸透圧比の一例として、好ましくは０．７〜５．０、更に好ましくは０．８〜３．０、特に好ましくは０．９〜１．４となる範囲が挙げられる。浸透圧の調整は無機塩、多価アルコール、糖アルコール、糖類等を用いて、当該技術分野で既知の方法で行うことができる。浸透圧比は、第十五改正日本薬局方に基づき２８６ｍＯｓｍ（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）の浸透圧に対する試料の浸透圧の比とし、浸透圧は日本薬局方記載の浸透圧測定法（氷点降下法）を参考にして測定する。なお、浸透圧比測定用標準液（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）は、塩化ナトリウム（日本薬局方標準試薬）を５００〜６５０℃で４０〜５０分間乾燥した後、デシケーター（シリカゲル）中で放冷し、その０．９００ｇを正確に量り、精製水に溶かし正確に１００ｍＬとして調製するか、市販の浸透圧比測定用標準液（０．９ｗ／ｖ％塩化ナトリウム水溶液）を用いる。

本発明の肝疾患治療剤の対象への投与経路は、経口投与、皮下投与、筋肉内投与、静脈内投与、動脈内投与、髄腔内投与、腹腔内投与、舌下投与、経直腸投与、経腟投与、眼内投与、経鼻投与、吸入、経皮投与、インプラント、肝表面への噴霧及びシート等の貼付による直接投与等が挙げられるが、本発明の肝疾患治療剤の有効性の観点から、好ましくは、インプラント、肝表面への噴霧及びシート等の貼付による直接投与、肝動脈内投与及び静脈内投与であり、対象者の負担の軽減の観点から、更に好ましくは、静脈内投与である。

本発明の肝疾患治療剤において、微小粒子を分泌する間質細胞を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の肝疾患治療剤の剤形等によって異なりうるが、十分な肝疾患治療剤の治療効果を奏する観点からは、その量は多い方が好ましい傾向にあり、一方、副作用の発現を抑制する観点からはその量は少ない方が好ましい傾向にある。通常、成人に投与する場合には、細胞数として、１ｘ１０^３〜１ｘ１０^１２個／回、好ましくは１ｘ１０^４〜１ｘ１０^１１個／回、更に好ましくは１ｘ１０^５〜１ｘ１０^１０個／回、特に好ましくは５ｘ１０^６〜１ｘ１０^９個／回である。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の肝疾患治療剤が、微小粒子を分泌する間質細胞を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の肝疾患治療剤の剤形等によって異なりうるが、通常、成人に投与する場合には、細胞数として、１ｘ１０〜５ｘ１０^１０個／ｋｇ、好ましくは１ｘ１０^２〜５ｘ１０^９個／ｋｇ、更に好ましくは１ｘ１０^３〜５ｘ１０^８個／ｋｇ、特に好ましくは１ｘ１０^４〜５ｘ１０^７個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の肝疾患治療剤が、単離された微小粒子又は微小粒子を含む間質細胞培養上清を含む場合、その用量（投与量）は、患者の状態（体重、年齢、症状、体調等）、及び本発明の肝疾患治療剤の剤形等によって異なりうるが、通常、成人に投与する場合には、微小粒子として、１ｘ１０^４〜５ｘ１０^１３個／ｋｇ、好ましくは１ｘ１０^５〜５ｘ１０^１２個／ｋｇ、更に好ましくは１ｘ１０^６〜５ｘ１０^１１個／ｋｇ、特に好ましくは１ｘ１０^７〜５ｘ１０^１０個／ｋｇである。なお、本用量を１回量として、複数回投与してもよく、本用量を複数回に分けて投与しても良い。

本発明の肝疾患治療剤は、１又は２以上の他の薬剤と共に投与してもよい。他の薬剤としては、肝臓の治療薬として用いることができる任意の剤を薬剤が挙げられ、たとえば、Ｂ型肝炎治療薬（ラミブジン、アデホビル、エンテカビル、テノホビル等）、インターフェロン製剤（インターフェロンα、インターフェロンα−２ｂ、インターフェロンβ、ペグインターフェロンα−２ａ、ペグインターフェロンα−２ｂ等）、Ｃ型肝炎治療薬（リバビリン、テラピレビル、シメプレビル、バニプレビル、ダクラタスビル、アスナプレビル、ソホスブビル等）、副腎皮質ステロイド（プレドニゾロン、メチルプレドニゾロンコハク酸エステルナトリウム等）、抗凝固剤（乾燥濃縮人アンチトロンビンIII、ガベキサートメシル酸塩、トロンボモデュリンα等）、解毒剤（エデト酸カルシウム二ナトリウム水和物、グルタチオン、ジメチカプロール、チオ硫酸ナトリウム水和物、スガマデスクナトリウム等）、人血清アルブミン、肝臓抽出エキス、ウルソデオキシコール酸、グリチルリチン酸、アザチオプリン、ベザフィーブラート、アミノ酸（グリシン、Ｌ−システイン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−バリン、Ｌ−トレオニン、Ｌ−セリン、Ｌ−アラニン、Ｌ−メチオニン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−リシン、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−アルギニン及びこれらの塩等）、ビタミン（トコフェロール、フラビンアデニンジヌクレオチド、リン酸チアミンジスルフィド、ピリドキシン、シアノコバラミン及びこれらの塩等）、抗生物質（スルバクタムナトリウム、セフォペラゾンナトリウム、メロペネム水和物、塩酸バンコマイシン等）等が挙げられる。

本発明の肝疾患治療剤は、自己免疫性肝炎（ＡＩＨ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＢＣ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＳＣ）等の自己免疫性肝疾患に対して、用いることができる。

本発明は、間質細胞由来の微小粒子を患者に投与することにより肝疾患を治療する方法も含む。本発明の方法によると、肝疾患、特に自己免疫性肝疾患を効果的に治療することができる。具体的には、本発明の治療方法は、上述した本発明の肝疾患治療剤を患者に投与する方法である。本発明の肝疾患治療剤については、前項の記載内容をそのまま適用できる。

本発明の方法において、上記微小粒子の平均粒子径は１，０００ｎｍ以下であることが好ましい。また、本発明の方法は、上記微小粒子を含有又は分泌する能力を有する間質細胞を患者に投与する方法であることが好ましい。さらに、上記微小粒子は、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）であり、ＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）からなる群から選択される少なくとも１種の因子を含有することが好ましい。上記間質細胞は、脂肪組織由来であることが好ましく、自己免疫性肝疾患の中でも、自己免疫性肝炎（ＡＩＨ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＢＣ）又は原発性胆汁性肝硬変（ＰＳＣ）に対して、本発明の治療方法は顕著な効果を奏する。

以下に本発明を実施例に基づいて更に詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。

［脂肪由来間質細胞の調製及び培養］
脂肪由来間質細胞を、健常人ドナーから脂肪吸引法で採取した皮下脂肪組織を用いて調製した。具体的には、皮下脂肪組織を、リン酸緩衝食塩水溶液で洗浄し、ＩＩ型コラゲナーゼ（溶媒は生理食塩水溶液（５ｍｇ／ｍＬ））を加え、３７℃で３０分間処理した。上記コラゲナーゼを、ＤＭＥＭ−１０％ＦＢＳを添加して不活性化した後、細胞懸濁物を遠心分離して細胞の沈殿を得た。さらに、上記細胞沈殿を、１％アンピシリン−ストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ−１０％ＦＢＳに再懸濁し、２ｘ１０^４〜３ｘ１０^４細胞／ｃｍ^２となるように懸濁し、プレーティングした。細胞を３７℃で２４時間、５％ＣＯ_２雰囲気中で培養し、脂肪由来間質細胞を得た。

［ｎＳＭａｓｅ２のノックダウンによる微小粒子の生成抑制］
脂肪由来間質細胞のｎｅｕｔｒａｌ ｓｐｈｉｎｇｏｍｙｅｌｉｎａｓｅ２（ｎＳＭａｓｅ２）をｓｈＲＮＡ ｖｅｃｔｏｒのトランスフェクションによりノックダウンしたＫＤ−ｈＡＳＣを作製した。対照細胞としては、脂肪由来間質細胞にｃｏｎｔｒｏｌ ｖｅｃｔｏｒのトランスフェクションを行ったｍｏｃｋ−ｈＡＳＣを用いた。ＫＤ−ｈＡＳＣ及びｍｏｃｋ−ｈＡＳＣからの微小粒子の分泌量を常法により測定し、比較を行った（図１）。また、ＫＤ−ｈＡＳＣ及びｍｏｃｋ−ｈＡＳＣの培養上清をそれぞれ回収した。回収した培養上清をフィルター（０．２２μｍ、メルクミリポア）でろ過した後、遠心（３５，０００ｒｐｍ、７０分、４℃、ＢＥＣＫＭＡＮ Ｏｐｔｉｍａ ＸＥ−９０）により微小粒子を回収し、それぞれの微小粒子中のサイトカイン量（ＩＬ−１０及びＨＧＦ；Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ）をＥＬＩＳＡ法により測定した（図２、図３）。

図１に示す通り、ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では微小粒子の生成が抑制され、対照細胞（ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、微小粒子の分泌量が有意に減少することが明らかとなった。また、図２及び３に示す通り、ｎＳＭａｓｅ２をノックダウンした細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ）では、微小粒子の生成抑制により培養上清中の微小粒子由来サイトカイン（ＩＬ−１０及びＨＧＦ）が対照細胞（ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ）と比較して、減少することも明らかとなった。なお、ｍｏｃｋ―ｈＡＳＣ及びＫＤ―ｈＡＳＣ由来微小粒子の平均粒子径は、それぞれ１５５±３及び１５５±６ｎｍであった（平均±標準誤差、ｎ＝３）。

［微小粒子（エクソソーム）の分析］
間質細胞の培養上清（無血清培地）１００ｍＬにＴｏｔａｌ Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｉｎｃ．、品番：４４７８３５９）を５０ｍＬ加え、充分に転倒混和した。冷蔵庫（２〜８℃）で一晩保存した後、遠心分離（１０，０００×ｇ、１時間、２〜８℃）し、その上清を除去した。その時発生した沈渣を５００μＬのＰＢＳで懸濁し、この懸濁液を微小粒子（エクソソーム）含有懸濁液とした。微小粒子（エクソソーム）含有懸濁液１５０μＬに２０％トリクロロ酢酸（ｔｒｉｃｈｌｏｒｏａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ（ＴＣＡ）、和光純薬工業（株）製）を１５０μＬ加え、タンパク質を凝集させ沈殿させた。得られた沈殿全量にトリス塩酸緩衝液（Ｔｒｉｓ Ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ Ａｃｉｄ Ｂｕｆｆｅｒ（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ）、ｐＨ８．５）２０μＬを加えて、沈殿を溶解した。さらに、０．０１％のトリプシン（ｔｒｙｐｓｉｎ、アプロサイエンス社製）を含むトリスバッファー（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０）を加え、３７℃で２０時間反応させた。その後、得られたサンプル溶液をＬＣ−ＭＳ／ＭＳ（ＬＣ：Ｍｉｃｈｒｏｍ ＢｉｏＲｅｓｏｕｒｃｅｓ社製、ＭＳ：ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）で分析を行ったところ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）が検出された。

［自己免疫性肝炎モデルマウスを用いた治療効果の確認］
マウス（ＢＡＬＢ／ｃＡ、日本クレア）にコンカナバリンＡ（ｓｉｇｍａ−ａｌｄｒｉｃｈ）を２０ｍｇ／ｋｇ、単回投与する事で、自己免疫性肝炎を誘発した。この自己免疫性肝炎を誘発したマウスに、上記と同様に調製を行った脂肪由来間質細胞（Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣ：１ｘ１０^６細胞／回）、又は微小粒子生成抑制処理した脂肪由来間質細胞（ＫＤ−ｈＡＳＣ；１ｘ１０^６細胞／回）を単回静脈内投与し、肝障害の評価を行った。なお、比較対象として、細胞を投与しない動物（Ｃｏｎｔｒｏｌ）と健常動物（Ｎｏｒｍａｌ）を設けた。肝障害のマーカーの測定結果を図４（ＡＳＴ）及び図５（ＡＬＴ）に示す。なお、ＡＳＴ及びＡＬＴはそれぞれ、生化学自動分析装置により測定した。また、それぞれのマウスの肝組織のＨ／Ｅ染色の結果を図６に示す。

健常マウス（Ｎｏｒｍａｌ）と比較して、肝障害のマーカーである、ＡＳＴ及びＡＬＴはコンカナバリンＡを投与することにより上昇したが（Ｃｏｎｔｒｏｌ）、Ｍｏｃｋ−ｈＡＳＣを投与することにより、その上昇は顕著に抑制された。これに対して、微小粒子生成抑制処理した間質細胞を投与したマウスでは（ＫＤ−ｈＡＳＣ）、ＡＳＴ及びＡＬＴの上昇を抑制する効果は低かった。また、図６に示す通り、コンカナバリンＡで自己免疫性肝炎を誘発したマウスの肝組織ではリンパ球浸潤が見られるのに対して、ＣＯＮＴ−ｈＡＳＣを投与したマウスにおいてはリンパ球浸潤が抑制されていた。これに対して、微小粒子生成抑制処理した間葉系幹細胞を投与したマウスでは（ＫＤ−ｈＡＳＣ）、リンパ球浸潤を抑制する効果は弱かった。以上より、微小粒子の生成を抑制することで、脂肪由来間質細胞による自己免疫性肝炎に対する治療効果が顕著に低減することがわかった。

以上の結果から、脂肪由来間質細胞は、自己免疫性肝炎に対する顕著な治療効果を有し、その治療効果は微小粒子の生成を抑制することにより低減することから、微小粒子が脂肪由来間質細胞による治療効果の中心的役割を示していることが示唆された。

本発明により、新規な肝疾患治療剤及び肝疾患の新規治療方法が提供される。

Claims (4)

1. ＩＬ−１０、ＨＧＦ、アポリポプロテインＡ−２（Ａｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ Ａ−２）、色素上皮由来因子（Ｐｉｇｍｅｎｔ ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ−ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ（ＰＥＤＦ）、ＳＥＲＰＩＮＦ１）、及びハプトグロビン（Ｈａｐｔｏｇｌｏｂｉｎ）からなる群から選択される少なくとも１種の因子を含有する、単離された脂肪組織由来間質細胞由来の微小粒子を含有し、脂肪組織由来間質細胞は含まない、自己免疫性肝疾患治療剤。
2. 上記微小粒子の平均粒子径が１，０００ｎｍ以下である、請求項１記載の自己免疫性肝疾患治療剤。
3. 上記微小粒子が、エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）である、請求項１又は２記載の自己免疫性疾患治療剤。
4. 上記自己免疫性肝疾患が、自己免疫性肝炎（ＡＩＨ）、原発性胆汁性肝硬変（ＰＢＣ）又は原発性胆汁性肝硬変（ＰＳＣ）である、請求項１から３のいずれか１項に記載の自己免疫性肝疾患治療剤。

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