JP6922156B2 - 抗炎症用添加剤 - Google Patents
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Description
炎症はがん、生活習慣病、自己免疫性疾患、神経疾患、肥満、炎症性腸疾患、変形性関節症、リウマチ、サルコペニアなど非常に多くの疾患への関与が知られており、その解決が求められている。
炎症性サイトカインは血管浸透性を亢進して発熱,発赤や腫脹を引き起こす。またケモカインは白血球の走性を亢進して腫脹を引き起こす。マクロファージは生体の恒常性維持に重要な役割を担っているが、マクロファージの異常活性化により引き起こされる過剰な炎症反応は多くの疾患に作用する。そのため、抗炎症作用を有する素材の開発が求められている。
また、他にも尿路結石(非特許文献2)や腎結石の予防(非特許文献3)、歯垢形成の抑制効果(非特許文献4)などの報告もされている。抗炎症作用に関しては、ヒト大腸細胞やマクロファージでの炎症性サイトカイン抑制効果(非特許文献5)やラットのカラギニン足浮腫試験での浮腫抑制効果(非特許文献6)が報告されている。
一方で、フィチン酸自体の強烈なキレート作用は生体への刺激性が強く、ミネラルの吸収阻害や成長阻害を引き起こす悪影響も報告されているため、大量に摂取することは問題があるとも考えられる。
(1)アミノ態有機窒素化合物のアミノ基と、フィチン酸もしくはその塩のリン酸基とが結合したフィチン酸結合体を有効成分とする、抗炎症用添加剤、
(2)アミノ態有機窒素化合物がアミノ酸,ペプチドもしくはタンパク質、又はこれらの塩から選択される、前記(1)記載の抗炎症用添加剤、
(3)食品添加剤、医薬添加剤又は飼料添加剤である、前記(1)又は(2)記載の抗炎症用添加剤、
(4)アミノ態有機窒素化合物及びフィチン酸もしくはその塩の混合物をpH5.5以下に調整することにより、アミノ態有機窒素化合物のアミノ基とフィチン酸もしくはその塩のリン酸基とを結合させたフィチン酸結合体を得ることを特徴とする、抗炎症用添加剤の製造法、
(5)アミノ態有機窒素化合物及びフィチン酸もしくはその塩の混合物をpH5.5以下に調整することにより、アミノ態有機窒素化合物のアミノ基とフィチン酸もしくはその塩のリン酸基とを結合させたフィチン酸結合体を得ることを特徴とする、該アミノ態有機窒素化合物に抗炎症能を付与する方法。
本発明においてアミノ態有機窒素化合物は、分子中に窒素がアミノ基(-NH2)の状態で含まれる有機化合物を指す。アミノ態有機窒素化合物としては、タンパク質(ポリペプチド)、低分子ペプチド、アミノ酸等が挙げられる。該アミノ態有機窒素化合物は、それが含まれる天然物を用いることができるし、天然物の濃縮物又は精製物、あるいは合成化合物を用いることもできる。
フィチン酸はmyo-イノシトールの六リン酸エステルである。またフィチン塩としてはフィチン酸ナトリウムやフィチン酸カルシウムといったフィチン酸のアルカリ金属塩やアルカリ土類金属塩などが挙げられるが、これらの例示には限定されない。本発明ではフィチン酸とフィチン酸塩のいずれの形態でも用いることができ、取扱い性や組成物の製造工程を考慮して適宜選択することができる。
本発明に用いるフィチン酸は天然由来、たとえば米,大豆や小麦などの植物から抽出したものを用いることができる。また、化学合成法などにより合成して得られたものや試薬を用いることもできる。
本発明におけるフィチン酸結合体とは、上記のアミノ態有機窒素化合物とフィチン酸もしくはその塩とが結合したものであるが、カルシウムなどのカチオンを介した間接的なキレート結合ではなく、アミノ態有機窒素化合物のアミノ基とフィチン酸のリン酸基とが直接結合したものを指す(以下、「本結合体」と称する場合がある)。カチオンによるキレート結合を介したフィチン酸結合体の場合、これを経口で摂取した場合に胃酸で容易に結合が外れてしまうことが予見される。これはキレート結合が酸性条件下で容易に結合が外れるためである。
一方、本結合物は直接結合であるため、生体内においても比較的安定である。このような直接結合は、アミノ態有機窒素化合物とフィチン酸とを単に混合するだけでは生じず、自然界では種子に代表される植物由来の一部に限られる。
まず、例えばアミノ態有機窒素化合物とフィチン酸もしくはその塩を水系下に混合して混合物を得て、両化合物を共存させる。次に、該混合物のpHを5.5以下の酸性に調整する。該pHの上限はさらに5以下、4.5以下、4以下、3.5以下又は3以下とすることが好ましい。該pHの下限は特に限定されないが、1以上とすることができる。pH調製後、必要により撹拌しつつ当該pHを維持する。維持時間は特に限定されないが、本結合体が生成するために十分な時間維持すればよく、例えば10分間〜24時間、好ましくは10分間〜3時間程度維持する。次に、当該pHのまま、あるいは必要によりアルカリでpHをよりアルカリ性側に上げ、例えばpH6〜8程度に中和してから、混合物を遠心分離して、沈殿物を回収することにより、本結合体を含む画分を得る。
本発明の抗炎症用添加剤は、上記の本結合体を有効成分とするものであり、本結合体そのものを抗炎症用添加剤として用いることができ、また必要により賦形剤等の他原料を混合することもできる。また抗炎症作用を有する他の有効成分を組み合わせることもできる。
以下の通り、タンパク質へのフィチン酸修飾を行い、タンパク質−フィチン酸結合体を調製した。
0.792%水溶液濃度になるように6.3Lのカゼインナトリウムと分離大豆タンパクの2種類の水溶液をそれぞれ調製し、塩酸によりpH2に調整した。水酸化ナトリウムによりpH7に調整した400μMのフィチン酸ナトリウム水溶液を6.3L混和させた。ただちに塩酸によりpH2に再調整し、室温で30分間攪拌した。6,000gで15分間遠心分離した後、沈殿を回収した。該沈殿を10倍希釈したリン酸緩衝生理食塩水(PBS(-)溶液)で洗浄した後、再度6,000gで15分間遠心分離を行い、沈殿を回収した。該沈殿を凍結乾燥し、カゼインナトリウムと分離大豆タンパクにフィチン酸がそれぞれ結合した修飾体1、修飾体2を得た。
酸性領域ではフィチン酸とカチオンとの結合が起こらずフィチン酸のリン酸基が遊離している。一方でタンパク質の等電点以下の酸性領域ではタンパク質はアミノ基がプラス電荷にチャージされており、これらが直接結合してタンパク質とフィチン酸の結合体が沈殿として生じたと考えられる。
以下の通り、カゼインナトリウムと分離大豆タンパク、実施例1で得られた修飾体1、修飾体2の人工消化処理物を調製した。
2.5%水溶液濃度になるように、カゼインナトリウム、分離大豆タンパク、修飾体1、修飾体2の4種類の水溶液を調製し、塩酸によりpH2に調整した。ペプシンを対基質1%添加して、37℃で2時間反応させた。
水酸化ナトリウムによりpH8に調整後、トリプシンを対基質1.7%、α−キモトリプシンを対基質0.03%添加して、37℃で2時間反応させた。5分間の煮沸で酵素を失活させた後、1,000gで10分間の遠心分離を行い、上清を回収後に凍結乾燥して4種類の人工消化物を得た。
以下の通り、実施例2で得られた4種類の人工消化物について、フィチン態リン含量の測定を行った。
タンパク質含量が2%程度になるように水溶液を8ml調製した。該水溶液に15%トリクロロ酢酸水溶液を2ml加えて15分間攪拌した。該水溶液を3,000gで15分間遠心分離した後に上清を0.45μmフィルターで濾過した。
該上清5mlに3mlの1% FeCl3・6H2Oおよび5% Na2SO4(in 1M 塩酸)溶液を加え、30分間煮沸した。次に該溶液を遠心分離して上清を除去した後、沈殿に3%トリクロロ酢酸水溶液を5ml加えて攪拌した。
該溶液を遠心分離して上清を除去した後、沈殿に0.17M塩酸を5ml加えて攪拌した。該溶液を遠心分離して上清を除去した後、沈殿に温めた超純水を5ml加えて攪拌した。
該溶液を遠心分離して上清を除去した後、沈殿に60%過塩素酸を0.5ml加えて懸濁させた。重量測定した試験管に該溶液を分注して、180℃で2時間加熱した。
次に2Mの塩酸を2ml加えた後、30分間煮沸した。該溶液にフェノールフタレインを加えた後に20%水酸化ナトリウムで中和して試験管の重量を測定した。
100μlの試料溶液と検量線用標準液(KH2PO4, 0〜200μg/ml)に超純水を400μl加えて攪拌した。60%過塩素酸を50μl加えて攪拌した。
バナジン酸アンモニウム溶液(メタバナジン酸アンモニウム1.17gを温めた超純水に溶解、冷却後に60%過塩素酸を20ml加え、MiliQで500mlにメスアップ)を該溶液に150μl加えて攪拌した。3.53%モリブデン酸アンモニウム溶液(モリブデン酸アンモニウム35.3gを超純水に溶解し、1Lにメスアップ)を該溶液に300μl加えて攪拌した。
該溶液を室温で30分間静置後、96穴プレートに200μl分注し、420nmの吸光度を測定した。フィチン酸測定溶液から算出された全リン量からフィチン酸(MW=660.8)の含量を換算して算出した。測定結果を表1に示した。
表1の通り、フィチン酸結合修飾を行ったカゼインナトリウムを原料とする修飾体1、分離大豆タンパクを原料とする修飾体2のいずれにおいても、人工消化後のフィチン酸含量が未修飾のタンパク質よりも高値であることが認められた。すなわち、これらの修飾体はタンパク質とフィチン酸の結合が為されていること、そして人工消化後でもタンパク質とフィチン酸との結合が維持されていることが示された。
実施例2で得られた人工消化物のマクロファージに対する抗炎症作用の評価を行うため、下記の手法により細胞培養を行った。
マウスマクロファージ細胞として「J774.1細胞」(理化学研究所より提供)を使用した。また「RPMI-1640」培地(和光純薬(株)製)に終濃度10%となるようにウシ血清を添加し、抗生物質として終濃度100IU/mlペニシリン及び100μg/mlストレプトマイシンを添加して細胞培養用培地とした。
J774.1細胞を細胞培養用培地にて37℃、5%CO2条件下で培養し、10cmシャーレでコンフルエントになるまで培養を行った。コンフルエントに達した細胞を回収し、2.5×105個/mlになるように希釈し、24穴細胞培養用プレートに1mlずつ添加した。
37℃、5%CO2条件下で24時間培養し、培地をアスピレーターにて除去した。除去後、終濃度5μg/mlになるように調製した人工消化物を350μl、及び炎症誘導物質として「Pam3CSK4」(InvivoGen社製)を終濃度10ng/mlになるように350μl添加し、37℃、5%CO2条件下で24時間培養した。その後、培養上清を200μl回収した。
以下の通り、実施例4で細胞培養した各培地中の炎症性サイトカインIL-6濃度をELISA法により測定した。
「Purified rat anti-mouse IL-6」(1次抗体)、「Biotinylated rat anti-mouse IL-6」(2次抗体)、「Recombinant mouse IL-6」(標準IL-6)及び「Streptavidin-Alkalin Phosphate」は、すべてBD Biosciences社から購入し使用した。
1次抗体を0.1M Na2HPO4 buffer(pH9.0)で0.5μg/mlになるように調製したものを96ウェルマイクロプレートに50μl/wellずつ添加し、室温で2時間静置した。次にPBS-Tween20(PBS-T)で3回洗浄し、十分に水切りを行った。
その後、3% BSA in PBS-Tを100μl/wellずつ添加し、室温で1時間静置後、PBS-Tで3回洗浄し、十分に水切りを行った。PBS-Tで適宜希釈した培養上清サンプルを50μl/wellずつ添加し、4℃で24時間放置後、PBS-Tで3回洗浄し、十分に水切りを行った。
PBS-Tで0.5μg/mlに調製した2次抗体を50μl/wellずつ添加し、アルミホイルで遮光して室温で1時間静置後、PBS-Tで3回洗浄し、十分に水切りを行った。「Streptavidin-Alkalin Phosphate in PBS-T」を50μl/wellずつ添加し、アルミホイルで遮光して室温で1時間静置後、PBS-Tで3回洗浄し、十分に水切りを行った。
0.2mg/mlの4−二トロフェニルリン酸2ナトリウムin 1Mジエタノールアミンbufferを50μl/wellずつ入れて、アルミホイルで遮光して20分間静置後、マイクロプレートリーダーにて405nm(参考波長492nm)の吸光度を2回測定し、平均値を算出した。測定結果を図1に示した。
各人工消化物の抗炎症作用を検証した結果、図1に示すようにカゼインナトリウム人工消化物は、ポジティブコントロールのIL-6産生量と比較しても変化は見られず、抗炎症作用は認められなかった。
一方、修飾体1人工消化物ではIL-6産生量が大きく低下しており、抗炎症作用を獲得させることができた。
また、分離大豆タンパク人工消化物はフィチン酸修飾前でもIL-6産生量が抑制されているが、修飾体2人工消化物ではIL-6産生量がさらに大きく低下しており、フィチン酸を修飾することで抗炎症作用が増強されていることが示された。
生体内での抗炎症作用を評価するため、デキストラン硫酸ナトリウム(DSS)を用いたマウスの腸管炎症モデルの動物試験を行った。
マウス(C57BL/6、雌、7週齢)は日本SLC社より購入し、順化中の飼料は「CRF-1」(オリエンタル酵母工業(株)製)を、試験期間中はAIN93G組成食を与えた。飲水はイオン交換水を与えた。
飼料、飲料共にマウスに自由摂食させ、12時間周期の明期の下飼育した。全ての動物は3日間予備飼育してから本実験に用い、未投与群(n=6),DSS投与群(n=6),修飾体1群(n=6),フィチン酸群(n=6)の4群に分けた。
順化後に5日間、未投与群とDSS投与群はイオン交換水を、修飾体1群は実施例2に記載した修飾体1人工消化物の0.5%水溶液を、フィチン酸群は0.0285%フィチン酸ナトリウム水溶液を、自由飲水させた。
その後、DSS投与群、修飾体1群、フィチン酸群の自由飲水の溶液中に、DSS(MP Biochemicals社より購入、Mw36,000-50,000)を2.25%添加して自由飲水させた。図2に15日間の試験期間中における各群の体重変化を示した。
解剖はDSS投与開始から11日後に行った。解剖では大腸組織を回収した後、RNAの抽出を行い、炎症性サイトカイン(TNF-α、IL-1β、IL-6)の発現量を測定した。各サイトカインの測定結果を図3〜5に示した。
図2に示した通り、DSSの自由飲水により腸管炎症が引き起こされ、DSS投与群では体重が著しく減少した。一方、フィチン酸群では体重減少の抑制効果が少し見られた。しかし、フィチン酸群と等量のフィチン酸が修飾された修飾体1群では、フィチン酸群よりも強い体重減少抑制効果が確認された。
また、図3〜5に示した通り、炎症性サイトカインの発現では、フィチン酸群ではTNF-α、IL-6では効果が無かったのに対し、修飾体1群では全てのサイトカインにおいてフィチン酸群よりも強い発現抑制効果を示した。すなわち、生体内ではフィチン酸単体では抗炎症作用は薄いが、等量であってもタンパク質とフィチン酸との結合体にすることで、より顕著な抗炎症作用を示していた。
Claims (4)
- アミノ態有機窒素化合物としてタンパク質のアミノ基と、フィチン酸もしくはその塩のリン酸基とが結合したフィチン酸結合体を有効成分とする、食品添加剤、生体内医薬添加剤又は飼料添加剤である、抗炎症用添加剤。
- アミノ態有機窒素化合物としてタンパク質及びフィチン酸もしくはその塩の混合物をpH5.5以下に調整することにより、該タンパク質のアミノ基と該フィチン酸もしくはその塩のリン酸基とを結合させたフィチン酸結合体を得ることを特徴とする、食品添加剤、生体内医薬添加剤又は飼料添加剤である、抗炎症用添加剤の製造法。
- 該混合物にリパーゼが添加される場合を除く、請求項2記載の抗炎症用添加剤の製造法。
- アミノ態有機窒素化合物としてタンパク質及びフィチン酸もしくはその塩の混合物をpH5.5以下に調整することにより、該タンパク質のアミノ基と該フィチン酸もしくはその塩のリン酸基とを結合させたフィチン酸結合体を得ることを特徴とする、該タンパク質に食品添加剤、生体内医薬添加剤又は飼料添加剤として用いるための抗炎症能を付与する方法。
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