JP6813356B2 - 細胞培養のための３次元繊維状スキャフォールド - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本願は、２０１２年２月２３日に提出された米国仮特許出願第６１／６０２，３３７号および２０１２年１１月８日に提出された米国仮特許出願第６１／７２３，９２２号に基づく優先権を主張する２０１３年２月２５日に提出された米国特許出願第１３／７７５，５３６号の一部係属出願であり、２０１３年８月２日に提出された米国仮特許出願第６１／８６１，６３２号に基づく優先権を主張するものである。

米国政府支援研究開発の説明
本発明は、米国国立衛生研究所による契約番号ＲＯ１ＣＡ１５２００５、および米国海軍研究事務所による契約番号Ｎ０００１４−１０−１−０８５４の国庫助成により行われた。米国政府は本発明に関して一定の権利を有する。

技術分野
本明細書に記載の発明は、３次元細胞培養スキャフォールドの分野に関する。

発明の背景
３次元（３Ｄ）培養は、生来のインビボ環境にある癌細胞を再現するので、腫瘍形成に寄与するプロセスを研究するための革新的アプローチをもたらす。腫瘍形成の重要性を仮定する裏付けデータの大部分は、２次元（２Ｄ）細胞培養系を用いて得られてきた。２Ｄにおける細胞は、腫瘍の３次元（３Ｄ）環境には相当しない、非自然的な機械的拘束および幾何的拘束を受ける。生化学的特性および機械的特性の間の複雑な相互作用は、２Ｄ培養において弱体化または損なわれることがあり、遺伝子発現およびタンパク質発現などの多くの重要な機能に影響を与えることがある。３Ｄ系の機械的特性、生化学的特性、および物理的特性に関する検討事項は、天然ＥＣＭを模倣することを目標としている。大きな利点の１つが、洗練された癌モデルの開発を可能にし得る、これらのパラメーターの制御により実現される迅速な実験的操作の可能性である。適切なプラットフォームと複合的な生物学的機能性を兼ね備えたテーラーメイドの３Ｄ細胞培養スキャフォールドにより、シグナル伝達経路の特異的誘導、異なる細胞型の選別、または癌細胞分化の制御が可能になるであろう。生体内と類似した構造的複雑性および機能的複雑性を保持する別個のしかし重要な特徴を全体に付与する既存の３Ｄ系の組合せにより、これらの３Ｄモデルはより洗練されるであろう。現在、腫瘍形成を研究するためのより現実的な腫瘍モデルおよび抗癌剤の効果的スクリーニングに対する大きなニーズが存在する。

最も一般的に使用される３Ｄモデルは、化学療法および放射線療法における種々の実験的研究に用いられ、医薬品開発、候補物質の有効性および安全性についてのハイスループットスクリーニング（ＨＴＳ）プログラムにおいて詳細に調べられているスフェロイドである。スフェロイドにより、微小転移巣でまたは固形腫瘍の血管新生が不十分な領域で観察されるのと類似した機能的特性および物質輸送特性が付与される（Hirschhaeuser et al., (2010) J. Biotechnol. 148: 3-15）。これらの特徴は細胞間相互作用および細胞−マトリックス相互作用の複雑さと組み合わさって、治療薬の取込み、浸透、分布、および生理活性に影響を与える。スフェロイドは広範な細胞型から生成され得る簡単な３Ｄ構造であり、接着細胞の性質に起因して凝集が形成され、通常、単一技術または共培養技術、例えば、いくつか例を挙げると、ハンギングドロップ法（hanging drop）、旋回培養法、またはコンクレイブ・プレート法（conclave plate method）などによって作成される（Pampaloni et al., (2007) Nat. Revs. Mol. Cell Biol. 8: 839-845; Timmins et al., Cell Tissue Res. 320: 207-210; Castaneda & Kinne (2000) J. Cancer Res. Clinical Oncol. 126: 305-310）。

このモデルの本質的な限界は、これが完全に細胞ベースであり、全体としてＥＣＭの機械的特徴を表していないことである。この問題に取り組むために、生物学的な、天然または合成の原料に由来する種々の基材（substrate）またはスキャフォールドが、スフェロイドの構築におけるハイドロゲル、フィルム、繊維、マイクロ流体デバイスにおけるマイクロ成形構造体（micromolded structure）、およびマイクロチップの形成に用いられてきた。例えば、肝細胞は、アルギン酸から作製されたスキャフォールド、ヒアルロン酸、ペプチドスキャフォールド、およびガラクトシル化メッシュ上で自己組織化してスフェロイドを形成する（Gurski et al., (2009) Biomaterials. 30: 6076; Gurski et al., (2010) Biomaterials. 31: 4248; Elkayam et al., (2006) Tissue Engineering 12: 1357-1368; Shin et al., (2012) Biotech. Letts. 34: 795-803; Wang et al., (2011) Biomacromolecules 12: 578-584; Chung et al., (2002) Biomaterials 23: 2827-2834; Ivascu & Kubbies (2007) Int. J. Oncol. 31: 1403-1413; Horning et al., (2008) Mol. Pharmaceutics 5: 849-862; Semino et al., (2003) Different.: Res. Biol. Diversity 71: 262-270; Chua et al., (2005) Biomaterials 26: 2537-2547）。

合成３Ｄ高分子スキャフォールド中へのスフェロイドの組込みは、抗癌剤をスクリーニングするためのモデルとして用いられている（Ho et al., (2010) Cancer Sci. 101: 2637-2643）。これらのスキャフォールドは、スフェロイドを支持することにより、例えば腫瘍と基底膜の間などの、天然ＥＣＭの形状（topography）の特徴と腫瘍との物理的相互作用を模倣する。

哺乳動物細胞と細胞内形状の相互作用は、機械的シグナル伝達刺激による細胞機能の制御における重要なシグナル伝達様式であることが証明されている。腫瘍細胞および対応する間質からなる腫瘍微小環境は、腫瘍形成の全ステージでＥＣＭの物理的構造と密接に関連している。合成基材の形状が細胞の遊走、分化、および遺伝子発現に影響を与えることが示されている。例えば、マイクロパターン化ＰＤＭＳ上で培養されたＳＡＬ／Ｎ癌線維芽細胞およびポリスチレンの周期的構造上で培養されたＣ６神経膠腫細胞は、種々の形状的刺激（topographical cue）に応答した形態、増殖、および遊走において差を示す（Tzvetkova-Chevolleau et al., (2008) Biomaterials 29: 1541-1551; Wang et al., (2006) J. Biomed. Mats. Res. Part A. 78A: 746-54）。

電界紡糸（electrospining）は、細胞培養用途のための高分子繊維状スキャフォールドの作製に用いられる多用途な技術である。電界紡糸により、多様な材料および製造技術を用いてナノメートルからマイクロメートルのサイズの繊維を含む整列されたまたは不織のメッシュのユニークな基質（matrix）の作製が可能になる（Zanatta et al., (2012) Brazilian J. Med. Biol. Res. 45: 125-130; Zanatta et al., (2012) J. Biomed. Nanotechnol. 8: 211 -218; Yu et al., (2012) Carbohydrate Polymers 90: 1016-1023; Tsai et al., (2012) PloS one. 7: e31200; Sundaramurthi et al., (2012) Biomedical Materials 7: 045005; Samavedi et al., (2012) Biomaterials; Meinel et al., (2012) Eur. J. Pharmaceut. Biopharmaceutics. 81: 1-13）。修飾された電界紡糸スキャフォールドが癌細胞において好ましい機能的応答をシミュレートすることが研究により示されている（Agudelo-Garcia et al., (2011) Neoplasia 13: 831-896; Johnson et al., (2009) Tissue Engineering Part C-Methods 15: 531-540; Xie & Wang (2006) Pharmaceut. Res.23: 1817-1826）。

本開示は、ポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（poly(lactic-co-glycolic acid）（ＰＬＧＡ）と、ポリ乳酸（ＰＬＡ）およびモノメトキシポリエチレングリコール（ｍＰＥＧ）のブロック共重合体との混合物を電界紡糸することにより製造される、３Ｐと名付けられた３Ｄナノ繊維状スキャフォールドの実施形態を包含する。３Ｐスキャフォールド上で培養された癌細胞は、スキャフォールドの形状および正味電荷に依存する、インビボの腫瘍と類似した類腫瘍（tumoroid）と名付けられる密な凝集体を形成した。３Ｐスキャフォールドにより、ビメンチンの上方制御およびＥ−カドヘリン発現の減少によって示されるような、腫瘍細胞の上皮間葉転換（ＥＭＴ）が誘導された。３Ｐをベースとした類腫瘍は、単層で成長させた同様の腫瘍細胞と比較して、より高い抗癌剤耐性を示した。ＥＲＫシグナル経路およびＰＩ３Ｋシグナル経路の阻害により、ＥＭＴ転換が妨げられ、類腫瘍の形成、直径、および数が減少した。

マウスの腫瘍から採取した穿刺吸引物（fine needle aspirate）は、本開示の３Ｐスキャフォールド上で培養された場合に類腫瘍を形成したが、直接播種によって形成された類腫瘍と比較して、抗癌剤への感受性がさらに大きく低減していた。したがって、３Ｐスキャフォールドにより、腫瘍細胞株からおよび生検から類腫瘍を作製するための優れたプラットフォームが実現される。このプラットフォームは、患者生検の培養、抗癌化合物の試験に用いることができ、これにより、個別化された癌治療のテーラーメイドが可能になる。

ネイキッド非修飾スキャフォールドおよび３Ｐスキャフォールドの走査型電子顕微鏡写真（ＳＥＭ）を示す図である。スキャフォールドは、ランダムに整列されたマットとして配置された繊維からなる。 ３ＰスキャフォールドのＦＴＩＲを示す図である。１７６０ｃｍ^−１のピークはＰＬＡ１０８７のカルボニル基に帰属することができ、１１８４ｃｍ^−１のピークはｍＰＥＧ、ＰＬＡ、およびＰＬＧＡの−Ｃ−Ｏ−Ｃ結合に帰属することができる。 ＰＬＡがｍＰＥＧと共重合していることを確認する３Ｐスキャフォールドの^１Ｈ ＮＭＲを示す図である。３．３ｐｐｍのシグナルの積分は、ｍＰＥＧ−ＯＨ上のメチル基の３つの等価な水素原子に帰属され、内部標準として用いられる。ＰＬＡブロックの分子量は２３．１ｋＤａである。 スキャフォールドを水に２４時間浸漬し、水の取込みが平衡に達したと見なされ後に測定した、ＦＭＮ（３Ｐ）、ＣＦＭＮ（３ＰＣ）、およびネイキッドスキャフォールドの体積膨張率（swelling volume ratio）（ＳＷＲ）を示す図である。ＳＷＲはスキャフォールドの親水能（hydrophilic potential）を示す。 ３Ｐスキャフォールド上で成長させたＬＬＣスフェロイド（ｎ＝１０）の２日目〜２０の平均サイズを示すグラフである。９６ウェルプレート中に置かれたスフェロイドは３Ｐスキャフォールド上で平均サイズ５ｍｍ^２に成長した。２０日目のスフェロイドの共焦点画像により、増殖細胞の密な層で囲まれた内部壊死性コアが示された。 スキャフォールド当たりのスフェロイドの平均数を示すグラフである。９６ウェルプレート上に置かれたスフェロイドは３Ｐスキャフォールド上で平均サイズ５ｍｍ^２に成長した。２０日目のスフェロイドの共焦点画像により、増殖細胞の密な層で囲まれた内部壊死性コアが示された。 ３Ｐスキャフォールドによりスフェロイド形成およびＥＭＴが誘導されることを示す図である。図は、Ｅ−カドヘリン抗体およびビメンチン抗体ならびにＤＡＰＩで免疫染色された、単層、ＰＬＧＡ、および３Ｐスキャフォールド上で培養したＬＬＣ細胞の蛍光画像を示す。細胞を３日間培養した後、マーカーの染色を行った。スフェロイドの染色は、間葉マーカーであるビメンチンについて陽性であり、上皮マーカーであるＥ−カドヘリンについて陰性であったが、単層およびＰＬＧＡスキャフォールド上の細胞では上皮マーカーの発現が維持されていた。 ３Ｐスキャフォールドによりスフェロイド形成およびＥＭＴが誘導されることを示す図である。図は、Ｅ−カドヘリン抗体およびビメンチン抗体ならびにＤＡＰＩで免疫染色された、単層、ＰＬＧＡ、および３Ｐスキャフォールド上で培養したＬＬＣ細胞の蛍光画像を示す。細胞を３日間培養した後、マーカーの染色を行った。スフェロイドの染色は、間葉マーカーであるビメンチンについて陽性であり、上皮マーカーであるＥ−カドヘリンについて陰性であったが、単層およびＰＬＧＡスキャフォールド上の細胞では上皮マーカーの発現が維持されていた。 阻害剤であるドキソルビシン、ＬＹ２９４００２、およびＵ０１２６に対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す図である。３Ｐスキャフォールド上で培養したＭＣＦ−７細胞への投与後の各阻害剤のＩＣ５０を示す。ＭＣＦ細胞（７×１０^３個）を単層および３Ｐスキャフォールド上で７日間培養した後、種々の濃度のＬＹ２９４００２およびＵ０１２６で４８時間処理した。細胞をカルセイン／ａｍおよび臭化エチジウムで染色した後、計数した。生存細胞の平均割合（±ＳＥＭ）が薬物濃度の関数としてプロットされ、３回の別個の実験での４連実験を表す。四角形のデータ点は単層を示し、ひし形のデータ点は３Ｐスキャフォールドを示す。図６Ａは、阻害剤ドキソルビシンに対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す。 阻害剤であるドキソルビシン、ＬＹ２９４００２、およびＵ０１２６に対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す図である。３Ｐスキャフォールド上で培養したＭＣＦ−７細胞への投与後の各阻害剤のＩＣ５０を示す。ＭＣＦ細胞（７×１０^３個）を単層および３Ｐスキャフォールド上で７日間培養した後、種々の濃度のＬＹ２９４００２およびＵ０１２６で４８時間処理した。細胞をカルセイン／ａｍおよび臭化エチジウムで染色した後、計数した。生存細胞の平均割合（±ＳＥＭ）が薬物濃度の関数としてプロットされ、３回の別個の実験での４連実験を表す。四角形のデータ点は単層を示し、ひし形のデータ点は３Ｐスキャフォールドを示す。図６Ｂは、阻害剤ＬＹ２９４００２に対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す。 阻害剤であるドキソルビシン、ＬＹ２９４００２、およびＵ０１２６に対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す図である。３Ｐスキャフォールド上で培養したＭＣＦ−７細胞への投与後の各阻害剤のＩＣ５０を示す。ＭＣＦ細胞（７×１０^３個）を単層および３Ｐスキャフォールド上で７日間培養した後、種々の濃度のＬＹ２９４００２およびＵ０１２６で４８時間処理した。細胞をカルセイン／ａｍおよび臭化エチジウムで染色した後、計数した。生存細胞の平均割合（±ＳＥＭ）が薬物濃度の関数としてプロットされ、３回の別個の実験での４連実験を表す。四角形のデータ点は単層を示し、ひし形のデータ点は３Ｐスキャフォールドを示す。図６Ｃは、阻害剤Ｕ０１２６に対するＭＣＦ−７細胞の用量依存的細胞毒性反応を示す。 ３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示すグラフである。４８時間培養の、単層上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差、およびＰＬＧＡ上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差。分化および発生（Ａ）ならびに細胞成長および増殖（Ｂ）において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群を示す。図７Ａは、分化および発生において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群の、３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示す。 ３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示すグラフである。４８時間培養の、単層上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差、およびＰＬＧＡ上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差。分化および発生（Ａ）ならびに細胞成長および増殖（Ｂ）において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群を示す。図７Ｂは、細胞成長および増殖において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群の、３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示す。 ３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示すグラフである。４８時間培養の、単層上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差、およびＰＬＧＡ上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差。図８Ａは、細胞外マトリックスおよび細胞接着において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群の、３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示す。 ３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示すグラフである。４８時間培養の、単層上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差、およびＰＬＧＡ上に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞における遺伝子発現の差。図８Ｂは、シグナル伝達経路において１倍を超える差を示した選択された遺伝子群の、３Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現と２Ｄ培養に関連するＥＭＴ遺伝子発現の比較を示す。 ２日後の単層と比較した３Ｐスキャフォールド上の腫瘍スフェロイドの成長に関連するＥＭＴ遺伝子発現を示すグラフである。 ２日後のＰＬＧＡと比較した３Ｐスキャフォールド上の腫瘍スフェロイドの成長に関連するＥＭＴ遺伝子発現を示すグラフである。 ３日後の単層と比較した３Ｐスキャフォールド上の腫瘍スフェロイドの成長に関連するＥＭＴ遺伝子発現を示すグラフである。 ３日後のＰＬＧＡと比較した３Ｐスキャフォールド上の腫瘍スフェロイドの成長に関連するＥＭＴ遺伝子発現を示すグラフである。 図１３〜図１７は、３Ｐスキャフォールド上での腫瘍生検材料の培養を示す図である。移植ＬＬＣ１マウス腫瘍のＦＮＡを３Ｐスキャフォールド上で表記の時間培養した。図１３は、３Ｐスキャフォールド上での腫瘍生検材料の培養を示す図である。移植ＬＬＣ１マウス腫瘍のＦＮＡを３Ｐスキャフォールド上で表記の時間培養した。細胞をカルセインＡＭ／ＥｔｈＤ−１で染色した。 ２日目〜５日目の３Ｐスキャフォールド上の生検類腫瘍（biopsy tumoroid）の平均サイズを示す図である。 固定し、Ｅ−カドヘリン、ビメンチン、およびＤＡＰＩで免疫染色した生検類腫瘍を示す図である。 ＣＤ３１、Ｆ４／８０、またはＳＭＡのいずれかとＣＥＡ、およびＤＡＰＩで二重免疫染色したＬＬＣ−１類腫瘍および生検類腫瘍を示す図である。 各１μＭのＬＹ２９４００２またはＵ０１２６で３日間処理した生検類腫瘍（２日目）を示す図である。３Ｐスキャフォールド上の生検類腫瘍（対照についてｎ＝１０、ＬＹ２９４００２についてｎ＝５５、およびＵ０１２６についてｎ＝５０）の平均サイズを示す。

本明細書により、各繊維がポリエチレングリコール−ポリ乳酸ブロック共重合体（ＰＥＧ−ＰＬＡ）およびポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）を含む、ランダムに配向した繊維を含む３次元スキャフォールド組成物が提供される。さらに、本明細書に記載の３次元スキャフォールドを使用する方法が提供される。明細書および特許請求の範囲で使用される用語の定義は以下の通りである。

定義
明細書および特許請求の範囲において、単数形は、本文中で明確に単数でないことが記載されていない限り、複数への言及も含む。例えば、用語「細胞」には、その混合物を含む、複数の細胞が含まれる。

「活性誘導体」などの用語は、癌細胞スフェロイドを成長させるために用いることができる３次元スキャフォールド組成物を形成する能力を保持している、修飾されたＰＥＧ−ＰＬＡ組成物またはＰＬＧＡ組成物を意味する。活性誘導体がこのように機能する能力を試験するためのアッセイは、本明細書に記載される。

対象または患者に言及する場合、用語「投与」には、経口、局所、静脈内、皮下、経皮（transcutaneous）、経皮（transdermal）、筋肉内、関節内（intra-joint）、非経口、細動脈内、皮内、脳室内、頭蓋内、腹腔内、病巣内、鼻腔内、直腸内、腟内、吸入、または埋込み式リザーバー（implanted reservoir）による投与を意味する。用語「非経口」は、皮下、静脈内、筋肉内、関節内（intra-articular）、腹腔内、滑膜内、胸骨内、髄腔内、肝臓内、病巣内、および頭蓋内への注射または点滴の技術が含まれる。

本明細書において、（交換可能に使用される）用語「癌」、「癌細胞」、「新生物細胞」、「新生物」、「腫瘍」、および「腫瘍細胞」は、細胞増殖制御の著しい低下（すなわち、細胞分裂の調節解除）を特徴とする異常成長表現型を示すように、比較的自律的な成長を示す細胞を指す。新生物細胞は悪性であっても良性であってもよい。転移性の細胞または組織とは、細胞が隣接する身体構造に浸潤してこれを破壊できることを意味する。癌は、星状細胞腫、副腎皮質癌、虫垂癌、基底細胞癌、胆管癌、膀胱癌、骨癌、脳癌、脳幹神経膠腫、乳癌、子宮頸部癌、結腸癌、結腸直腸癌、皮膚Ｔ細胞リンパ腫、腺管癌、子宮内膜癌、脳室上衣腫、ユーイング肉腫、食道癌、眼癌、胆嚢癌、胃癌、消化器癌、胚細胞性腫瘍、神経膠腫、肝細胞癌、組織球増殖症、ホジキンリンパ腫、下咽頭癌、眼球内黒色腫、カポジ肉腫、腎癌、喉頭癌、白血病、肝臓癌、肺癌、リンパ腫、マクログロブリン血症、黒色腫、中皮腫、口腔癌、多発性骨髄腫、上咽頭癌、神経芽細胞腫、非ホジキンリンパ腫、骨肉腫、卵巣癌、膵臓癌、副甲状腺癌、陰茎癌、咽頭癌（pharyngeal cancer）、下垂体癌、前立腺癌、直腸癌、腎細胞癌、網膜芽細胞腫、横紋筋肉腫、肉腫、皮膚癌、小細胞肺癌、小腸癌、扁平細胞癌、胃癌、Ｔ細胞リンパ腫、精巣癌、咽喉癌（throat cancer）、胸腺腫、甲状腺癌、絨毛性腫瘍、尿道癌、子宮癌、子宮肉腫、膣癌、外陰癌、およびウィルムス腫瘍から選択されてもよい。ある実施形態では、癌は前立腺癌である。

本明細書において、「癌細胞スフェロイド」とは癌細胞の凝集体を指す。

用語「細胞」、「細胞株」、および「細胞培養」には、子孫が含まれる。さらに、計画的または偶発的な変異のため、全ての子孫のＤＮＡの内容が正確に同一でなくてもよいと理解される。元の形質転換された細胞においてスクリーニングされたものと同じ機能または生物学的特性を有する変異型の子孫が含まれる。本発明において、「宿主細胞」は通常、原核宿主または真核宿主である。

用語「キトサン」は、ランダムに分布した、β−（１−４）結合したＤ−グルコサミン（脱アセチル化単位）およびＮ−アセチル−Ｄ−グルコサミン（アセチル化単位）で構成される直鎖多糖を指す。平均して、市販のキトサンの分子量は３，８００〜２０，０００ダルトンである。ある実施形態では、キトサンの分子量は約３ｋＤａ〜約１２ｋＤａである。ある実施形態では、キトサンは水溶性であり、分子量は約１０ｋＤａである。

用語「コーティング」は、コーティングされる物体の完全な被覆を要求しないこと、および部分的被覆がこの用語に包含されることが理解されるべきである。

本明細書において、用語「含む」は、組成物および方法が、記載の要素を含むが、他の要素を除外するものではないことを意味することが意図される。「から実質的になる」とは、組成物および方法を定義するために用いられる場合、組合せにとって本質的な意義のある他の要素を除外することを意味するものとする。したがって、本明細書に記載の要素から本質的になる組成物は、単離方法および精製方法に由来する微量混入物ならびに薬学的に許容されるキャリア、例えばリン酸緩衝食塩水および保存剤などを除外しない。「からなる」とは、微量を超える他の成分の要素、および本発明の組成物を投与するための実質的な方法ステップを除外することを意味するものとする。これらの移行句のそれぞれによって定義される実施形態が本発明の範囲に含まれる。

「有効量」とは、有益な結果または所望の結果をもたらすのに十分な量である。有効量は、単回もしくは複数回の投与、適用、または単一もしくは複数の用量で投与され得る。

用語「繊維状スキャフォールド」は、本明細書中で、ランダムに配向した繊維によって形成された３次元構造を指す。ある実施形態では、電界紡糸法を用いてランダムに配向した繊維構造体が得られる。

用語「単離された」は、ポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体、またはそれらの断片が通常自然界で関連している、細胞またはその他の構成要素から分離されていることを意味する。本発明のある態様では、単離されたポリヌクレオチドは、その自然または天然の環境、例えば染色体上で通常関連している、３′側および５′側の近接ヌクレオチドから分離されている。当業者に明らかであるように、非天然のポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、または抗体、またはそれらの断片は、それらをその天然の対応物から区別するために「単離」する必要はない。さらに、「濃縮された」、「分離された」、または「希釈された」ポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、または抗体、またはそれらの断片は、体積当たりの分子の濃度または数が、それらの天然の対応物より、「濃縮された」ものでは大きく、「分離された」ものでは小さい点で、その天然の対応物から区別可能である。天然の対応物と一次配列において、または例えばグリコシル化パターンによって、異なっているポリヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、または抗体、またはそれらの断片は、その一次配列によって、またはグリコシル化パターンなどの別の特徴によって、天然の対応物から区別可能であるので、単離された形態で存在していなくてもよい。本明細書に開示される発明の各々について明白に記載されていないが、以下に開示される適切な条件下の組成物の各々について、上記実施形態の全てが本発明によって提供されると理解されるべきである。したがって、非天然ポリヌクレオチドは、単離された天然ポリヌクレオチドとは別個の実施形態として提供される。細菌細胞中で生成したタンパク質は、自然界で生成された真核細胞から単離された天然タンパク質とは別個の実施形態として提供される。

治療のための「哺乳動物」とは、ヒト、飼育動物および家畜、非ヒト霊長類、および動物園の動物、競技用の動物、または愛玩動物、例えばイヌ、ウマ、ネコ、乳牛などを含む、哺乳動物に分類される任意の動物を指す。

用語「微粒子」は、粉末、および顆粒物質などを指す。

「医薬組成物」とは、組成物をインビトロ、インビボ、またはエクスビボでの診断用途または治療用途に適したものにする、不活性または活性のキャリアと活性薬剤との組合せを含むことが意図される。

用語「薬学的に許容されるキャリアまたは賦形剤」は、一般的に安全、非毒性、且つ生物学的にまたはその他の点において有害ではない、医薬組成物の調製において有用なキャリアまたは賦形剤を意味し、動物用用途およびヒトの医薬的用途に許容可能なキャリアまたは賦形剤を含む。本明細書および特許請求の範囲において、「薬学的に許容されるキャリアまたは賦形剤」には、１つのおよび複数のそのようなキャリアまたは賦形剤の両方が含まれる。本明細書において、用語「薬学的に許容されるキャリア」は、リン酸緩衝食塩水溶液、水、エマルション、例えば水中油滴型または油中水滴型エマルション、および様々な種類の湿潤剤など、あらゆる標準的な医薬的キャリアを包含する。組成物はさらに、安定剤および保存剤を含んでいてもよい。

用語「薬学的に許容される塩」は、塩の薬学的用量が投与される対象に対してその対イオンが非毒性である任意の酸付加塩または塩基付加塩を指す。

用語「薬学的有効量」、「治療有効量」、または「治療有効用量」は、研究者、獣医、医師、または他の臨床医に探究されている組織、系、動物、またはヒトの生物学的応答または医学的応答を誘発できる化合物の量を指す。

用語「ＰＬＧＡ」は、２種の異なるモノマーである、グリコール酸および乳酸の環状二量体（１，４−ジオキサン−２，５−ジオン）のランダム開環共重合により合成されるポリ（乳酸−コ−グリコール酸）を指す。重合に用いられるラクチドとグリコリドとの比率に応じて、異なる形態のＰＬＧＡを得ることができ、通常これらは使用されるモノマーの比率に関して特定される（例えば、ＰＬＧＡ ７５：２５は、７５％乳酸および２５％グリコール酸の組成である共重合体であると特定される）。

用語「放出制御」、「持続放出」、「徐放性」、および「持効性」は、薬物の放出が即時的でない、任意の薬物含有製剤を互換的に指すことが意図され、すなわち、「放出制御」製剤では、経口投与により薬物が吸収プールに即時に放出されない。

本明細書で互換的に使用される「対象」、「個体」、または「患者」とは、脊椎動物、好ましくは哺乳動物、より好ましくはヒトを指す。哺乳動物には、マウス、サル、ヒト、家畜、競技用動物、および愛玩動物が含まれるが、これらに限定されない。

用語「治療有効量」には、投与された場合に、治療される状態または疾患の症状の１または複数の発生を防止するか、またはある程度軽減するのに十分な化合物の量が含まれる。治療有効量は、化合物、疾患または状態およびその重篤度、投与経路、投与の時間、排出速度、薬物の組合せ、処置する医師の判断、剤形、ならびに治療対象の年齢、体重、全身状態、性別、および／または食事によって異なり得る。

本明細書において、用語「治療する」、「治療」、およびその文法的バリエーションには、疾患もしくは状態の１または複数の付随する症状の強度を部分的または完全に遅らせること、軽減すること、緩和すること、もしくは低減すること、および／または疾患もしくは状態の１または複数の原因を軽減すること、緩和すること、もしくは妨げることを含む。本発明に係る治療は、防止的、予防的、緩和的、または改善的に適用され得る。

これらの用語および定義を用いて、本明細書により、ランダムに配向した繊維を含む３次元スキャフォールド組成物であって、繊維がポリエチレングリコール−ポリ乳酸ブロック共重合体（ＰＥＧ−ＰＬＡ）およびポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）を含む組成物が提供される。

ＰＥＧの化学構造はＨ−（Ｏ−ＣＨ_２−ＣＨ_２）_ｎ−ＯＨである。ＰＥＧは、分子量に応じてポリエチレンオキシド（ＰＥＯ）またはポリオキシエチレン（ＰＯＥ）としても知られる。ＰＥＧは通常、分子質量が２０，０００ｇ／ｍｏｌ未満のオリゴマーおよびポリマーを指す。ＰＥＧは、エチレンオキシドの重合により作製され、３００ｇ／ｍｏｌ〜１０，０００，０００ｇ／ｍｏｌの幅広い分子量にわたり市販されている。重合処理に用いる開始剤に応じて、異なる形態のＰＥＧも利用可能であり、最も一般的な開始剤は、単官能性メチルエーテルＰＥＧ、すなわちメトキシポリ（エチレングリコール）であり、ｍＰＥＧと略される。単分散、均一、または分離と呼ばれるより純粋なオリゴマーとして、低分子量ＰＥＧも利用可能である。ある実施形態では、本明細書に記載の３Ｐスキャフォールドおよび３ＰＣスキャフォールドの作製に使用されるＰＥＧは、分子量が約０．５ｋＤａ〜２０ｋＤａのモノメトキシグリコール（ｍＰＥＧ）である。本明細書には、ＰＥＧまたはｍＰＥＧの分子量が約０．５ｋＤａ、約１ｋＤａ、約２ｋＤａ、約３ｋＤａ、約４ｋＤａ、約５ｋＤａ、約６ｋＤａ、約７ｋＤａ、約８ｋＤａ、約９ｋＤａ、約１０ｋＤａ、約１１ｋＤａ、約１２ｋＤａ、約１３ｋＤａ、約１４ｋＤａ、約１５ｋＤａ、約１６ｋＤａ、約１７ｋＤａ、約１８ｋＤａ、約１９ｋＤａ、または約２０ｋＤａである実施形態が含まれる。ある実施形態では、ＰＥＧの分子量は約２ｋＤａである。

ポリ乳酸またはポリラクチド（ＰＬＡ）（（Ｃ_３Ｈ_４Ｏ_２）_ｎ）は、コーンスターチ、タピオカの根、小片、もしくはデンプン、またはサトウキビなどの再生可能な資源に由来する熱可塑性脂肪族ポリエステルである。Ｌ−ラクチドおよびＤ−ラクチドのラセミ混合物の重合によって、通常、非結晶であるポリ−ＤＬ−ラクチド（ＰＤＬＬＡ）が合成される。立体特異的触媒の使用により、結晶性を示すことが分かっているヘテロタクチックポリ乳酸を得ることができる。結晶化度、および多くの重要な特性は、使用されるＤエナンチオマーとＬエナンチオマーとの比率によって主に制御され、それより低い程度で、使用される触媒の種類によって制御される。乳酸のキラルな性質のため、複数の異なる形態のポリラクチドが存在する。すなわち、ポリ−Ｌ−ラクチド（ＰＬＬＡ）は、Ｌ，Ｌ−ラクチド（Ｌ−ラクチドとしても知られる）の重合によって生じる生成物である。ＰＬＬＡの結晶化度は約３７％であり、ガラス転移温度は６０℃〜６５℃、融解温度は１７３℃〜１７８℃、引張係数は２．７〜１６Ｇｐａである。したがって、本明細書に記載の３Ｐスキャフォールドおよび３ＰＣスキャフォールドは、Ｄ−エナンチオマーのみ、Ｌ−エナンチオマーのみ、またはＤ−エナンチオマーとＬ−エナンチオマーの混合物、を有するポリ乳酸組成物を含み得る。ある実施形態では、３Ｐ組成物または３ＰＣ組成物の作製に用いられるポリ乳酸組成物には、Ｄ−エナンチオマーとＬ−エナンチオマーのラセミ混合物が含まれる。

ＰＬＧＡは、２つの異なるモノマーである、グリコール酸の環状二量体および乳酸の環状二量体（１，４−ジオキサン−２，５−ジオン）のランダム開環共重合により合成される。この重合体の作製に用いられる一般的な触媒としては、２−エチルヘキサン酸スズ（ＩＩ）、スズ（ＩＩ）アルコキシド、またはアルミニウムイソプロポキシドが挙げられる。重合において、（グリコール酸または乳酸の）連続的モノマー単位がエステル結合によりＰＬＧＡ中で結合されることにより、線状脂肪族ポリエステルが生成物として生じる。重合に用いられたラクチドとグリコリドとの比率に応じて、異なる形態のＰＬＧＡを得ることができる。すなわち、これらは通常、使用されるモノマーの比率に関して特定される（例えば、ＰＬＧＡ ７５：２５は、７５％乳酸および２５％グリコール酸の組成である共重合体であると特定される）。ある実施形態では、ＰＬＧＡは約８５％の乳酸および約１５％のグリコール酸を含む。さらに、本明細書には、ＰＬＧＡにおける乳酸とグリコール酸との比率がおよそ７５：２５、８０：２０、８５：１５、９０：１０、および９５：５である実施形態が含まれる。

ある実施形態では、３Ｐスキャフォールドは、ポリ（ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）ランダム共重合体およびポリラクチド−ポリ（エチレングリコール）（ＰＬＡ−ＰＥＧ）ブロック共重合体で主に構成される。特定の別の実施形態では、３Ｐスキャフォールドにはキトサンがさらに含まれる。キトサンは、３Ｐスキャフォールド上にコーティングされてもよい。キトサンコーティングされたスキャフォールドは、本明細書中で３ＰＣスキャフォールドと呼ばれる。繊維重合体は、ＰＬＧＡと混合したｍＰＥＧおよびＰＬＡの開環重合により構築することができ、電界紡糸することができる。ＰＬＧＡおよびＰＬＡはいずれも、良好な機械的特性、制御された分解性、および優れた生体適合性を有するので、組織工学用途および薬物送達用途のための電界紡糸において広く用いられている［Zhou H, et al., Fabrication aspects of PLA-CaP/PLGA-CaP composites for orthopedic applications: A review. Acta biomaterialia. 2012;8:1999-2016; Xin XJ, et al., Continuing differentiation of human mesenchymal stem cells and induced chondrogenic and osteogenic lineages in electrospun PLGA nanofiber scaffold. Biomaterials. 2007;28:316-25; Kim K, et al. Incorporation and controlled release of a hydrophilic antibiotic using poly(lactide-co-glycolide)-based electrospun nanofibrous scaffolds. Journal of Controlled Release. 2004;98:47-56］。ＰＥＧは繊維の親水性を修飾および増大するために用いられ、さらに非毒性且つ非免疫原性である。ＰＥＧのタンパク質耐性特性は、付与された非イオン性電荷、および立体反発を容易にすることによりタンパク質の吸着を最小限に抑える高い排除体積に起因する。スフェロイド形成の典型的な方法では、同様な非接着性表面修飾が用いられる。

ある実施形態では、各スキャフォールド繊維におけるＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡとの比率はおよそ１：４である。別の実施形態では、各スキャフォールド繊維におけるＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡとの比率はおよそ１：１０である。さらに別の実施形態では、各スキャフォールド繊維におけるＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡとの比率はおよそ１：２、１：３、１：４、１：５、１：６、１：７、１：８、１：９、１：１０、または１：２０である。

ＰＥＧ−ＰＬＡおよびＰＬＧＡは、当業者に公知の任意の方法により繊維へと形成することができる。ある実施形態では、ＰＥＧ−ＰＬＡおよびＰＬＧＡの溶液を電界紡糸してＰＥＧ−ＰＬＡ−ＰＬＧＡ繊維を形成する。スキャフォールド繊維は、約０．３μｍ〜約１０μｍの繊維直径、またはより好ましくは、約０．６９μｍ〜約４．１８μｍの繊維直径を与える、任意の電圧、流速、および距離で電界紡糸され得る。ある実施形態では、ＰＥＧ−ＰＬＡおよびＰＬＧＡの溶液は、高電圧電源を用いて、１６ｋＶの正電圧、０．２ｍｌ／時の流速、および１３ｃｍの距離で電界紡糸される。繊維は、アルミニウム被覆された銅プレート上に約７０ｍｍの固定距離で回収される。本発明はさらに、約６０ｍｍ〜約８０ｍｍの固定距離で電界紡糸された繊維を回収することにより作製された３Ｐスキャフォールドまたは３ＰＣスキャフォールドを含む。

得られた３Ｐスキャフォールドまたは３ＰＣスキャフォールドは、細孔を有する３次元繊維状スキャフォールドである。ある実施形態では、スキャフォールドは、直径が約２０μｍ未満の細孔を含む。別の実施形態では、３Ｐスキャフォールドまたは３ＰＣスキャフォールドは直径が約１５μｍ未満、約１０μｍ未満、または約５μｍ未満の細孔を含む。

３Ｐスキャフォールド上で成長させた癌細胞がスフェロイドを形成するということが本発明の驚くべき発見である。以下の実施例に、細胞増殖、スフェロイド形成、および治療薬の有効性に対する３Ｐスキャフォールドの影響の分析を示す。種々の癌細胞株を用いて、スキャフォールド上でのスフェロイド形成が、癌転移中に再出現する胚性プログラムである上皮間葉転換（ＥＭＴ）を誘導することが確認された。経路特異的阻害剤を用いてＥＭＴ転換のシグナル伝達を調べ、これらの経路がスキャフォールド上でのスフェロイド形成およびＥＭＴ誘導に関わることを示した。遺伝子発現分析により、転換に関与する分子機構およびシグナル伝達経路を解明し、このプロセスに関連する主要遺伝子を特定した。さらに、癌細胞の成長および分化を抑制するためのＥＭＴの制御修飾物質としての既知の抗腫瘍剤を用いて、スキャフォールドが薬理学的有効性をモニタリングする能力を分析した。したがって、実施例は、本明細書に記載の３Ｐスキャフォールドが、腫瘍形成のプロセスを研究するためのプラットフォームとして利用可能であり、癌治療のための薬物のハイスループットスクリーニングにおける中間意志決定ステップとして抗癌治療の評価に使用可能であることを示す。

したがって、本明細書により、３Ｐスキャフォールドを用いて癌治療の有効性について医薬品をスクリーニングする方法が提供される。これらの方法では、３Ｐスキャフォールドに癌細胞を播種し、スフェロイドを形成させ、所定の期間、スキャフォールド中の細胞に医薬品を投与する。その後、死滅癌細胞および生存癌細胞を定量化し、癌治療についての医薬品の有効性を決定する。さらに、本明細書により、癌細胞スフェロイドを成長させる方法、組織培養方法、組織再生方法、関節炎の治療方法、および創傷治療の方法が提供される。

さらに、上記は本発明の好ましい実施形態に関連すること、および本発明の範囲から逸脱することなくその中で多くの変更が可能であることが理解されるべきである。以下の実施例で本発明をさらに説明するが、これらの実施例は如何なる点においても本発明の範囲を限定するものと解釈されるべきではない。反対に、本発明の趣旨および／または添付の特許請求の範囲から逸脱することなく、本明細書の記載を理解した当業者に示唆され得る、それらの種々の別の実施形態、変更例、および同等物が可能であると明確に理解されるべきである。本明細書中で参照される全ての特許、特許出願、および刊行物の全体をあらゆる目的のために参照により援用する。

実施例１
３Ｐスキャフォールドおよび３ＰＣスキャフォールドの作製および特徴解析
適当な有機溶媒に溶解したブロック共重合体であるｍＰＥＧ／ＬＡおよびＰＬＧＡを電界紡糸することにより３Ｐスキャフォールドを構築した。さらに、３Ｄ環境の影響を比較するためにＰＬＧＡ非修飾スキャフォールドを構築した。より具体的には、開環重合によりメトキシＰＥＧ−ＰＬＡを調製した。簡潔に述べると、３，６−ジメチル−１，４−ジオキサン−２，５−ジオン（ＬＡ）（Ｆｉｓｈｅｒ社）を真空オーブン中、４０℃で一晩乾燥した。１グラムのモノメトキシポリ（エチレングリコール）（ｍＰＥＧ）（ＭＷ ２０００、Ｓｉｇｍａ社）を乾燥させた１００ｍＬ三つ口丸底フラスコに添加し、真空下、８０℃で２時間撹拌した。（それぞれ、３Ｐ １：４スキャフォールドおよび３Ｐ １：１０スキャフォールドを作製するため）４グラムまたは１０グラムの乾燥ＬＡモノマー、および０．２ｗｔ％のオクタン酸第一スズ（Ｓｎ（Ｏｃｔ）２）（Ｓｉｇｍａ社）をアルゴンガスの保護下でフラスコに添加した。混合物を２０ｍｌの無水トルエンに溶かし、アルゴンガス下、１４０℃で５時間加熱した。重合体溶液を氷冷ジエチルエーテルに添加することにより、ジブロック共重合体の固体生成物を得た。生成物を、精製のために、ジクロロメタンに溶解して冷ジエチルエーテルで沈殿させ、これを２回繰り返した。最終共重合体を真空オーブン中、５０℃で４８時間乾燥した。

次いで、ポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＭＷ ５０ｋＤａ〜７０ｋＤａ、８５：１５、Ｓｉｇｍａ社）および上記のｍＰＥＧ−ＰＬＡ重合体を、ジクロロメタンおよびクロロホルムの溶液（８０／２０、ｖ／ｖ）に溶解した。簡潔に述べると、１．２グラムのＰＬＧＡおよび０．３グラムのｍＰＥＧ−ＰＬＡを用いて３Ｐスキャフォールドを構築した。高電圧電源（Ｇａｍｍａ Ｈｉｇｈ Ｖｏｌｔａｇｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ社、米国）を用いて、１６ｋＶの正電圧、０．２ｍｌ／時の流速、および１３ｃｍの距離で溶液を電界紡糸した。アルミニウムで被覆された銅プレート上に７０ｍｍの固定距離で繊維を回収した。

ある実施形態では、ｍＰＥＧおよびＰＬＡを真空下に置いて乾燥した（ｍＰＥＧは８００℃、ＰＬＡは５００℃で乾燥した）。湿気を完全に除去するために温度を少なくとも１時間維持した。１：１０（ＰＥＧ：ＰＬＡ）濃縮物を作製するために、２０ｍｌのトルエンおよび１０μｌのＴＥＨに０．５のｍＰＥＧおよび５グラムのＰＬＡを添加した。１：４では、１グラムのｍＰＥＧおよび４グラムのＰＬＡを用いた。混合物を、アルゴン下、１４０℃で５時間、室温で撹拌した。溶液を一晩かけて室温まで放冷した。６０ｍｌの氷冷ジエチルエーテルを用いてｍＰＥＧ／ＰＬＡ共重合体を沈殿させた。このｍＰＥＧ／ＰＬＡ溶液を冷ジエチルエーテルに滴下した。溶液は透明から混濁へと変化した。次いで、溶液を氷上で２．５時間撹拌した。続いて、フラスコの底に形成された粘着性の沈殿物を取り出し、１０ｍｌのクロロホルムに溶解した後、エーテル中に沈殿させた。これを２回繰り返した。生成物をガラスバイアル中に回収し、真空オーブン中、５０℃で少なくとも２日間乾燥させた。１．３７５グラムのＰＬＧＡおよび０．０７５グラムの１：１０ ｍＰＥＧ−ＰＬＡ重合体を５ｍｌのジクロロメタンおよびクロロホルム（８０：２０ ｖ／ｖ）の溶液に添加した。０．３グラムのＰＬＧＡおよび１．２グラムの１：４ ｍＰＥＧ−ＰＬＡ重合体を５ｍｌのジクロロメタンおよびクロロホルム（８０：２０ ｖ／ｖ）の溶液に添加した。この溶液を３日間、再度重合させた後、１４ＫＶの正電圧および０．２ｍｌ／ｈｒの流速で電界紡糸した。

ある実施形態では、３Ｐスキャフォールドをキトサン（９０％脱アシル化）でディープコーティングした。より具体的には、３Ｐスキャフォールドを８ｍｍ^２の正方形に切断し、ＵＶで滅菌した。次いで、０．１％キトサンを含む０．５％酢酸溶液に一晩浸漬することにより３Ｐスキャフォールドをディープコーティングした。スキャフォールドを、細胞培養に用いる前にＰＢＳで３回洗浄した。これらのキトサンコーティングスキャフォールドを、本明細書では３ＰＣスキャフォールド、ＣＭＮスキャフォールド、またはＣＦＭＮスキャフォールドと呼ぶ。これらの名称はそれぞれ３ＰＣスキャフォールドを指す。

スキャフォールドにより、細胞間の良好な空間的相互接続性、高い表面積対体積比、および流体輸送のための良好な多孔度がもたらされた。スキャフォールドの細孔サイズ、直径、および厚さに影響を与えるパラメーターとしては、電圧、針の回収距離、および溶媒中の重合体の濃度が挙げられる。３Ｐスキャフォールドの走査型電子顕微鏡観察（ＳＥＭ）により、結合して高度に多孔性のメッシュを形成するランダムに整列した繊維が示された（図１）。繊維の直径は０．６９μｍ〜４．１８μｍであり、ネイキッドなスキャフォールドでは０．６１μｍ〜４．９５μｍであり、ほとんどが細胞より小さい（＜１０μｍ）サイズの細孔を有していた。

３ＰスキャフォールドのＦＴＩＲは１７６０ｃｍ^−１に強い吸収を示し、これはｍＰＥＧ、ＰＬＡ、およびＰＬＧＡそれぞれの−Ｃ＝Ｏ伸縮に帰属された。Ｃ−Ｏ−Ｃバンドの伸縮は１０８７ｃｍ^−１および１１８４ｃｍ^−１に示される。２８５０および２９５０のピークは−ＣＨ_２伸縮を表す（図２Ａ）。ｍＰＥＧ／ＰＬＡおよびＰＬＧＡは基本的に同じ官能基を有するため、これらのＦＴＩＲは同様な特徴的ピークを示す。Ｑ３．３９ｐｐｍでのＬＡの末端メトキシプロトンシグナルの強度を用いて、^１Ｈ核磁気共鳴分光法によりジブロック共重合体の分子量を決定した。繰り返しＰＥＧ−ＬＡ単位の重量比は、特徴的ピークの積算値から７．０８と計算され、分子量は２３，１００Ｄａと決定された。

Ｑ３．３９ｐｐｍでのｍＰＥＧの末端メトキシプロトンシグナルの強度を用いて、１Ｈ核磁気共鳴分光法によりジブロック共重合体の分子量を決定した。繰り返しＰＥＧ−ＬＡ単位の重量比は、特徴的ピークの積算値から計算された。図２Ｂに示されるように、１Ｈ ＮＭＲにより、ＰＬＡがｍＰＥＧと共重合していることが確認された。

ＭＮ（３Ｐ）、ＣＭＮ（３ＰＣ）、およびネイキッドスキャフォールドの体積膨張率（ＳＷＲ）は、スキャフォールドを水に２４時間浸漬し、水の取込みが平衡に達したと見なされた後、測定された。ＳＷＲはスキャフォールドの親水能を示す。結果を図３に示す。

実施例２
３Ｐスキャフォールド上でのスフェロイドの形成および成長
乳癌細胞ＭＣＦ−７、乳癌細胞ＭＤＡ−ＭＢ、乳癌細胞ＭＣＦ−１０Ａ、前立腺癌細胞ＰＣ３、黒色腫細胞Ｂ１６、卵巣癌細胞ＢＧ−１、およびルイス肺癌細胞ＬＬＣは全て、３Ｐスキャフォールド上でスフェロイドを成長させた。ある実施形態では、ＬＬＣ細胞（５×１０^３個）を単層、ネイキッドスキャフォールド、および３Ｐスキャフォールド上で１日目〜５日目まで培養した。単層およびネイキッドスキャフォールド上の細胞はスフェロイドを形成しなかったが、３Ｐスキャフォールド上の細胞は３日目からスフェロイドを形成し、５日目まで連続的にサイズが大きくなっていた。カルセインＡＭ／ＥｔｈＤ−１を用いて、生存細胞（緑）および死滅細胞（赤）について細胞を染色して、３Ｐスキャフォールド上の複数の生存細胞スフェロイドが示された（未掲載データ）。

３Ｐスキャフォールド上で成長した細胞のＳＥＭ分析により、固着および安定化を可能にするスフェロイドの中およびスフェロイド周囲への繊維の初期の絡み合いが示された（未掲載データ）。スフェロイドの走査型電子顕微鏡観察を以下のように行った。ＬＬＣスフェロイド（細胞数５×１０^３）をスキャフォールド上で３日間培養した。２．５％グルタルアルデヒドを含む０．２Ｍカコジル酸バッファー（ｐＨ７．１）の５０：５０（ｖ／ｖ）溶液中で、２４時間、スキャフォールドを固定した。スキャフォールドをバッファー中で洗浄した後、１％四酸化オスミウムのカコジル酸バッファー中で、４０℃にて１時間脱水した。スキャフォールドをカコジル酸バッファー中で洗浄した後、濃度１０％、３５％、５０％、７０％、９５％、および１００％のエタノール上昇系列で１０分間さらに脱水した。最後の脱水を、ヘキサメチルジシラザン（ＨＭＤＳ）中で１０分間行った。試料を風乾した後、アルゴンガス下で３０秒間、１９．３２／ｃｍ^３の密度で、金でスパッタリングコーティングした。スキャフォールドのＳＥＭを、Ｊｅｏｌ ＪＳＭ ６４９０走査型電子顕微鏡で観察した。スフェロイドの直径を計算するために、スキャフォールド全体の完全な平面画像をスキャンした。Ｉｍａｇｅ Ｊソフトウェアを用いて全てのスフェロイドの直径を測定した。

特にＭＣＦ−７スフェロイドの分析により、滑らかな表面、密な細胞間結合、および識別不能な細胞境界が明らかになった。スフェロイドは、スフェロイド／繊維複合体を形成する絡まった繊維を有し、表面上で平らになっているようであった。特に、細胞は、非修飾ＰＬＧＡスキャフォールド上および単層上で増殖したが、スフェロイドを形成しなかった。

図４は、２日目から２０日目の３Ｐスキャフォールド（ｎ＝１０）上でのＬＬＣスフェロイドの平均サイズ（図４Ａ）およびスキャフォールド当たりのスフェロイドの平均数（図４Ｂ）を示す。９６ウェルプレート中に置かれた３Ｐスキャフォールド上で成長したスフェロイドの平均サイズは５ｍｍ^２であった。２０日目のスフェロイドの共焦点画像により、増殖細胞の密な層に囲まれた内部壊死性コアが示された（未掲載データ）。スフェロイド形成に必須なパラメーターは、細胞型、濃度、および最初の細胞播種からの時間に依存した。細胞濃度が高いほど、スフェロイドが速く形成され、その結果、経時的に直径および数が増大することが観察され、これは全ての細胞型で観察された（図４）。スフェロイドのＳＥＭにより、周辺に識別不能な細胞境界を有する密な細胞の凝集体が示された。

ＬＬＣ細胞に注目すると、３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞が種々のサイズのスフェロイドを形成することが観察された。５×１０^３個の２日目から２０日目の平均サイズはそれぞれ４８．３±７．８μｍから９４５．４４μｍ±２８．８であり、平均スフェロイド数は２０．４９±２．０１から５２．７６±３．８６に増えた（未掲載データ）。スフェロイドは、容易に剥離して長期培養のための新しいウェルまたはスキャフォールドに移植可能であった。

通常は、腫瘍スフェロイドは、内向きおよび外向きの拡散勾配により定義される球状の増殖形状を示す。酸素および新鮮な成長培地の拡散能力を超えると、最も内側の細胞は静止状態になり、アポトーシスまたはネクローシスにより死滅する。このような結果が、直径が５００μｍを超えた２０日目のスフェロイドで観察された。死滅細胞を赤、生存細胞を緑に染めるカルセインＡＭ／ＥｔｈＤ−１生存／死滅アッセイを用いて、スフェロイド内の細胞の生存率を評価した。このアッセイにより、周辺の細胞が死滅細胞の内部コアを取り囲んでいるようであることが示された（未掲載データ）。

実施例３
形状と化学の特有の組合せによりスフェロイド形成が可能になる
スフェロイド形成に対する形状および化学の影響を調べるために、ＰＬＧＡ、ＰＬＡおよびＰＬＧＡ／ＰＥＧ、ＰＬＡ／ＰＥＧ、ならびにＰＬＧＡ／ＰＬＡ／ＰＥＧでコーティングしたガラス製カバースリップ上でＬＬＣ細胞を培養した。細胞は全ての基材上で増殖するが、ＰＬＧＡ／ＰＬＡ／ＰＥＧカバースリップ上でのみスフェロイドへと自己組織化することが観察された。しかし、これらのスフェロイドは、より数が少なく、３日目にカバースリップから基材を分離した際に容易に解離した。ＰＬＡ／ＰＥＧ構造体上の細胞は、３Ｐスフェロイドで観察された明確な形および構造を欠く、巨大な組織化されていない（disorganized）細胞凝集体を成長させた。

スフェロイド形成に対する表面化学の影響をさらに解明するために、複合３Ｐ／キトサンスキャフォールドを前述したように構築した（本明細書中で３ＰＣスキャフォールドまたはＣＭＮスキャフォールドと呼ばれる）。細胞は増殖するが、スフェロイドは形成しないことが観察された（未掲載データ）。生理学的ｐＨで正電荷を付与してスキャフォールドの親水性特性を増大させる天然の多糖であるため、キトサンを用いた。

３Ｐスキャフォールド上でのスフェロイドの形成および維持は、３Ｐ ＥＣＭ様スキャフォールドと細胞との間で動的に伝達された形状的刺激および化学的刺激によってスフェロイド形成が導かれたという観察を裏付けている。単層培養用にコーティングされた通常の組織培養プレート（ＴＣＰ）に移植したスフェロイドは、プレートに接着し、スフェロイドから成長することが観察された。ＬＬＣ細胞はスフェロイドから徐々に、１日目から４日目まででそれぞれ０、０．６７±０．１、１．４±０．１４、２．１±０．２９ｍｍ離れ、最終的にコンフルエントな単層を形成した（未掲載データ）。新しいスキャフォールドに移植されたスフェロイドでは、それらの形態および形が同じ期間にわたって維持された。形状および化学に加え、２Ｄ環境中には存在するが３Ｐスキャフォールド中には存在しないその他の刺激、例えば、基材の密度および弾性、細胞極性、ならびに２Ｄ環境が及ぼす非天然の制約に応答したスフェロイド内の圧力勾配の差などの因子が、ＴＣＰ上での外向きの遊走の誘導に関与している可能性がある。

実施例４
スフェロイド形成はＥＭＴシグナル伝達を誘導する
３Ｐスキャフォールドが腫瘍細胞を誘導して、無血管腫瘍の微小転移巣に類似した多細胞スフェロイドを形成したという発見に基づき、スキャフォールド上でのスフェロイド形成がＬＬＣ肺癌細胞株においてＥＭＴを誘導するかどうかを調べた。続いて、結果を、ＰＬＧＡスキャフォールド上で成長させた細胞および単層培養中で成長させた細胞と比較した。分子レベルでは、上皮間葉転換（ＥＭＴ）は、細胞間接着分子であるＥ−カドヘリンの減少および間葉マーカーであるビメンチンの転写誘導によって定義される。

これらの実験を行うために、ＬＬＣスフェロイドを４日間培養した（播種密度５×１０^３個）。スフェロイドを４％パラホルムアルデヒドで２０分間固定し、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を用いて２５℃で２０分間透過処理し、３％ＢＳＡを用いてブロッキングした。細胞をビメンチン抗体またはＥ−カドヘリン抗体と一晩インキュベートした後、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５５５またはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８結合型抗マウス二次抗体およびＤＡＰＩとインキュベートした。Ｏｌｙｍｐｕｓ社製ＢＸ５１顕微鏡を用いて細胞を観察した。

図５Ａに示されるように、スキャフォールド上で成長させたスフェロイドは３日目にビメンチンの発現を示したが、単層培養中またはＰＬＧＡスキャフォールド上で培養した細胞ではビメンチン発現は観察されなかった。さらに、スフェロイドは、３Ｐスキャフォールド上ではＥ−カドヘリンの発現が消失したが、単層およびＰＬＧＡスキャフォールド上で培養した細胞ではこの発現が保持されている（図５Ｂ）。このことは、スフェロイド形成が、ＥＭＴを定義する特徴である浸潤能および腫瘍形成能の増大に関連していることを示唆しており、これは３Ｐ環境の状況で現れるようである。ＥＭＴ誘導のタイムラインを決定するために、ＬＬＣ細胞を３Ｐスキャフォールド上で培養し、培養１日目から４日目まで、ビメンチンおよびＥ−カドヘリンの染色を行った。ＥＭＴは３日目に開始し、４日目まで続き、スフェロイドへの細胞の自己組織化に関連していることが観察された（未掲載データ）。

実施例５
薬理学的介入はスフェロイド形成を抑制してＥＭＴシグナル伝達を妨害する
ＥＭＴの制御修飾物質としての既知の抗腫瘍剤の効果を調べるために、ＭＣＦ−７細胞およびＬＬＣ細胞をホスホチジルイノシトール−３キナーゼ（ＰＩ３Ｋ）経路阻害剤であるＬｙ２９４００２およびマイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ）経路阻害剤であるＵ０１２６で処理した。スフェロイド形成をこれらの薬物で阻害できるかどうかを決定するために、ＭＣＦ−７細胞を、３Ｐスキャフォールド上で２４時間培養した後にＬｙ２９４００２およびＵ０１２６で処理し、４日目のスフェロイド形成を観察した。全ての抗腫瘍剤が、３Ｐスキャフォールド上でのスフェロイドの形成および増殖を防止した（未掲載データ）。さらに、これらの化合物は、ＰＬＧＡスキャフォールド単独上で培養した細胞および単層上で培養した細胞で観察されたのと同様に、細胞中のＥ−カドヘリン発現は維持しながら、ビメンチンの下方制御に効果的であった。これらの薬剤による処理が、完全に形成されたスフェロイドにおいてＥＭＴを調節解除するかどうかを決定するために、培養したＬＬＣスフェロイドに４日目に同濃度の薬物を投与した。ビメンチン発現の欠如と同時にＥ−カドヘリン発現が再度観察され、ＥＭＴ阻害が示唆された。予想された通り、非処理スフェロイドはＥＭＴマーカー発現に対して陽性であった。これらの発見は、ＰＩ３Ｋシグナル伝達およびＭＡＰＫシグナル伝達の両方が、３Ｐスキャフォールド上でのスフェロイド形成およびＥＭＴ発現に必要な性質である細胞骨格の再編成および細胞間接着に寄与する重要な経路であることを意味している。

実施例６
３Ｐスキャフォールドを用いた薬物有効性分析
腫瘍を治療するための治療有効性をモニタリングする３Ｐスキャフォールドの能力を評価するために、ＬＬＣスフェロイドを種々の濃度のＰＩ３Ｋ経路阻害剤Ｌｙ２９４００２（１．０μΜ、０．１μΜ、および０．０１μΜ）で処理し、２４時間から９６時間にわたるスフェロイドの生存率を評価した。スフェロイドのサイズおよび数の測定により、非処理スフェロイドと比較して、処理されたスフェロイドにおける用量依存的な細胞毒性反応が明らかになった。処理の２４時間後、濃度１．０μＭ、０．１μＭ、または０．０１μＭのＬｙ２９４００２で処理されたスフェロイドは、非処理スフェロイドと比較して、平均してそれぞれ３７．３±８．４％、２２．０±１０．９％、および１７±１２．５％のサイズ減少を示した。

処理の４８時間後では、スフェロイドサイズはそれぞれ平均５１．２±６．７３％、３２．６±５．９７％、および２８．９±９．３％減少し、処理の９６時間後では、０．０１μＭで処理された細胞は６３±５．９％減少したが、１．０μＭ、０．１μＭの阻害剤で処理された細胞は死滅したようであった。スフェロイドの数は、処理の２４時間後のそれぞれ３７．４±３．８％、２６．８±４．３８％、および１４．５±８．５２％から、４８時間後のそれぞれ６１．７±２．９２％、５２．６±２．９３％、および４０．３±２．４４％に有意に減少していた。処理の９６時間後には、０．０１μＭの阻害剤で処理されたスフェロイドは９３．３±０．４８％減少したが、１．０μＭ、０．１μＭの阻害剤で処理されたスフェロイドは消失していた。

ＥＭＴの化学療法による防止をモニタリングするためのツールとしての３Ｐスキャフォールドの有用性をさらに探索するために、ＭＣＦ−７乳癌細胞を、スフェロイド形成を防止するためにドキソルビシンならびにＬｙ２９４００２阻害剤およびＵ０１２６阻害剤で処理し、単層２Ｄ培養における反応と比較した、用量依存的反応の差について調べた。前述したように、ＭＣＦ−７スフェロイドを阻害剤で処理すると３Ｐスキャフォールド上でのスフェロイド形成が抑制される。薬物のＩＣ５０は、薬物が生物学的機能または生化学的機能を阻害する半数致死量として定義される。処理細胞の連続的な生存率測定により、３Ｐスキャフォールド上の細胞と単層培養上の細胞との間で有意に異なる細胞毒性反応が明らかになった。４８時間の薬物誘導後、ＭＣＦ−７細胞の生存率は有意に低く、３Ｐスキャフォールド上で培養された細胞より高い感受性を２Ｄ単層培養で示した。ドキソルビシンのＩＣ５０は、単層上では０．６μＭであり、３Ｐスキャフォールド上では１２．０μＭであった。Ｕ０１２６のＩＣ５０は単層上では１０．６ｎｍであったが、３Ｐスキャフォールド上でのＵ０１２６のＩＣ５０は１０５．９ｎｍであった。ＬＹ２９４００２のＩＣ５０は、単層では０．１３μＭであったが、３Ｐスキャフォールドでは１．１５μＭであった（図６Ａ〜図６Ｃ）。

スフェロイド培養物中における抗癌剤に対する感受性の低下は、多細胞レベルで作用する微小環境メカニズムおよび合成インビトロ３Ｄ条件の機能に関連する要因に起因する可能性があることが提唱されている。これらの要因により、スフェロイド内部への薬物の浸透が制限され得るので、ドキソルビシンの内因的自家蛍光能を用いて、拡散の制限が薬物耐性の要因であるかどうかを評価した。ＭＣＦ−７スフェロイドを３Ｐスキャフォールド上で２時間、１０μＭドキソルビシンの存在下でインキュベートした後、２時間後には薬物がスフェロイドに完全に浸透していることが観察され（未掲載データ）、このことは、３Ｐ系における薬物耐性が薬物輸送への影響だけでは説明できないことを示唆している。

実施例７
遺伝子発現分析
ＥＭＴは、腫瘍転移に関連する主要なプロセスであり、遺伝子発現の全体的変化が関与し得る。スフェロイド形成により、３Ｐスキャフォールド上ではＥＭＴが誘導されたが、ＰＬＧＡまたは単層培養上ではＥＭＴが誘導されなかったので、関与する基本的分子的機構を決定するために遺伝子発現分析を行った。この分析ではｆｏｃｕｓｅｄ ＥＭＴ ｍｉｃｒｏａｒｒａｙを用いて、細胞の遊走、運動性、および形態形成を仲介する細胞表面受容体、細胞外マトリックスタンパク質、細胞骨格タンパク質；細胞の分化、発生、成長、および増殖を制御するタンパク質；ならびにＥＭＴおよびそれに関連する全プロセスに寄与するシグナル伝達タンパク質および転写因子タンパク質、をコードする８４個の遺伝子の発現を調べた。

３Ｐスキャフォールド、ＰＬＧＡスキャフォールド、および単層上で培養したＬＬＣ細胞から４８時間目のトータルＲＮＡを単離した。１倍発現（one-fold expression）を用いて、ＰＬＧＡ上に対して３Ｐ上で、および単層上に対して３Ｐ上で、スフェロイドとして成長させたＬＬＣ細胞間の差を評価し、前述したオントロジー的分類（ontological grouping）で示した。４８時間の時点で上方制御された遺伝子の数は、同じ時点で下方制御された遺伝子より多かった。分析した遺伝子中、単層に対して３Ｐでは、７９％が上方制御され、２１％が下方制御されたが、ＰＬＧＡに対して３Ｐでは６０．６％が上方制御され、３９．４％が下方制御された（図７〜図１２）。

遺伝子発現レベルは、培養条件および生物学的分類に依存した。例えば、ＥＭＴ分化および発生の遺伝子の倍率差は、単層に対して３Ｐスキャフォールド上で培養した細胞と、ＰＬＧＡに対して３Ｐ上で培養した細胞との間で、他の遺伝子グループで観察された差と比較して大きいようである。ＥＭＴは分化転換プログラムであるので、これらの結果は、多細胞スフェロイドと結合した３Ｐスキャフォールドからの複合的な刺激によりＥＭＴ誘導が促進されるのに対して、２Ｄ単層環境はＬＬＣ細胞の分化への圧力がそれほど強くないという観察結果を裏付けている。

ＥＭＴには、高度に相互接続されたネットワークを形成する複数の細胞内シグナル伝達経路が関わっている。ここで、ネットワーク経路により、発現に差のある遺伝子間の予想される関係が明らかになる。Ｅ−カドヘリン（Ｃｄｈ１）などの主要な上皮マーカーの転写抑制、ならびにビメンチン（Ｖｉｍ）およびフィブロネクチン（Ｆｎ１）などの間葉マーカーの上方制御が観察された。ＥＭＴは連続的であるので、上記の時系列実験の４８時間目に観察されるような関連タンパク質の発現の２４時間前に遺伝子の誘導が起こっていると考えられる。ＴＧＦ−β遺伝子、Ｎｏｔｃｈ遺伝子、およびＷＮＴ遺伝子の上方制御が観察され、これらの遺伝子は、ＥＭＴ発現を制御する３つの主要経路を促進し、Ｓｔａｔ３、Ｇｓｋ３ｂ、ならびに転写因子であるＴｗｉｓｔおよびＳｎａｉ１などの主要メディエーターの活性化に関与する。転写制御因子のネットワークが存在するので、転写因子１および４（ＴＣＦｌ１およびＴＣＦ４）ならびにエストロゲン受容体１（ＥＳＲ１）などの他の転写因子も影響を受けるであろう。これらの経路の遺伝子の活性化により、さらに細胞外マトリックスおよび細胞接着において役割を果たす遺伝子であるインテグリン（ｌｔｇａｖ）およびメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ９）、ならびにケラチン（Ｋｒｔ７）およびプレクストリンホモロジー（Ｐｌｅｋ２）などの細胞骨格リモデリングに関わる遺伝子の発現が制御される。

実施例８
３ＰＣスキャフォールドの特徴解析
電界紡糸された３ＰＣスキャフォールド上で成長させた場合、腫瘍細胞が基本的形態を維持していることがＳＥＭにより示された。さらに、Ｋｉ−６７アッセイおよび生存率アッセイにより、３ＰＣスキャフォールド上で成長させた場合（最大３日間）、腫瘍細胞が増殖し、生存可能であることが示された。３ＰＣスキャフォールド上で成長させた腫瘍細胞は、単層上で成長させた細胞と比較して、ドキソルビシンに対する感受性が低かった。このことは、２Ｄ研究の結果が信頼できないことを示唆している。さらに、ＰＬＧＡネイキッドスキャフォールドは生体適合性があり、高い腫瘍形成能を示すことが判明した。これらの観察結果から、これらの３Ｄマトリックスを癌研究のモデルとして用いることができると結論付けることができる。

実施例９
移植マウス腫瘍の穿刺吸引物（ＦＮＡ）の培養
ＬＬＣ１細胞（５×１０^５個）を野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウス（米国国立癌研究所）の側腹に皮下注射した。腫瘍形成を２週間モニタリングした後、穿刺吸引により腫瘍生検を採取した。簡潔に述べると、回転運動を利用して２３ゲージの針を腫瘍に挿入し、組織培養培地を満たしたシリンジを取り付けて内容物を滅菌管中に排出することにより、組織サンプルを針から洗い流した。この処理を２回繰り返した。３つの採取した腫瘍試料をプールし、単一細胞懸濁液をスキャフォールド上で培養した。

３Ｐスキャフォールド上で成長させた腫瘍生検の化学感受性
３Ｐスキャフォールドを腫瘍生検の培養に利用できるかどうかを決定するために、移植マウス腫瘍のＦＮＡの単一細胞懸濁液を３Ｐスキャフォールド上で培養した。図１３および図１４に示されるように、生検誘導類腫瘍（ＢＩＴ）の平均直径は、１日目から５日目で、腫瘍細胞株を用いた実験で観察された割合とほぼ同じ割合で大きくなった。ＢＩＴの免疫染色により、ＥＭＴの誘導を示唆する、Ｅ−カドヘリンの発現減少およびビメンチンの発現増大が示された（図１５）。腫瘍細胞に加え、インビボの腫瘍微小環境（ＴＭＥ）に典型的な（Mallela et al., (2013) Stem Cells 31: 1321-1329）間質細胞の存在について、各細胞表面マーカーに対する抗体を用いた免疫染色によりＢＩＴを調べた。

ＢＩＴは、腫瘍細胞マーカー、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、マクロファージマーカーであるＦ４／８０、内皮前駆細胞マーカーであるＣＤ３１、および癌関連線維芽細胞マーカーである平滑筋アクチン（ＳＭＡ）について陽性であることが見出され、このことは、ＴＭＥの間質成分の存在を示している（図１６）。対照として用いたＬＬＣ１類腫瘍はＣＥＡのみを発現した。

３Ｐスキャフォールド上で培養した生検類腫瘍が薬物感受性の評価に利用可能であるかどうかを決定するために、ＦＮＡ類腫瘍を、阻害剤であるＬＹ２９４００２およびＵ０１２６の存在下または非存在下で培養した。その結果、類腫瘍のサイズおよび用量依存的な細胞毒性の低減により明らかにされたように、阻害剤がＢＩＴの成長調節において有効であることが示された。しかし、ＬＹ２９４００２およびＵ０１２６のＩＣ_５０は１ｍＭを超えており（図１７）、ＢＩＴの薬物に対する耐性はＬＬＣ１に基づく類腫瘍より高いことが示された。３Ｐシステムにおける生検類腫瘍の薬物耐性の増大は、薬物の取込み不足によるものではなかった。

本開示は、「類腫瘍」と呼ばれる腫瘍細胞の微小転移性の小型凝集体の形成を誘導する３Ｐ繊維状スキャフォールドの実施形態を包含する。適切な因子を含む成長培地を用いてこれらのスキャフォールド上に播種された癌細胞は、インビボ腫瘍形成に特徴的なＥＭＴを示す類腫瘍として成長する。さらに、このプラットフォームにより、特異的な因子、遺伝子発現、および浸潤能の変化を特定するための腫瘍細胞および間質細胞の共培養も可能になる。

類腫瘍は、天然ＥＣＭにおいて腫瘍進行を促進する刺激と同様の生化学的刺激、ナノ形状的刺激、および機械的刺激に反応することが可能である（Fischbach et al., (2007) Nat. Methods 4: 855-860）。本開示の３Ｐプラットフォームは、腫瘍細胞と幹細胞ニッチの構成成分である間質細胞とを同時に標的とする治療戦略の評価に用いることができる（Ballangrud et al., (1999) Clin. Cancer Res. 5: 3171s-3176s）。３Ｐプラットフォームはさらに、生検に由来する患者自身の細胞を培養して、種々の抗癌化合物を用いてそれらをエクスビボで試験し、その患者に由来する特定の腫瘍細胞に対して最も効果的な治療剤を選択して有効用量を決定することにより個別化された治療をテーラーメイドするための、ポイント・オブ・ケア・デバイスにおける使用に適応させることができる。単層培養と対比して、３Ｐスキャフォールド上でのＬｙ２９４００２またはＵ０１２６を用いた類腫瘍の処理により、スキャフォールド上の場合にＭＣＦ７細胞のより高い薬物耐性が示された。３Ｐ培養物のＩＣ_５０値は、単層培養物より、Ｌｙ２９４００２阻害剤で１０倍高く、Ｕ０１２６阻害剤で１００倍高かった。これらの結果は、単層培養で成長させた腫瘍細胞と比較して、３Ｄ類腫瘍として成長させた腫瘍細胞がほとんどの細胞毒性薬物に対して多細胞的耐性を発達させることを示す他の研究による他の報告と類似している（Kobayashi et al., (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 90: 3294-3298; Desoize et al., (1998) Bull. Cancer 85: 785）。例えば、マウス乳腺腫瘍細胞のインビボ薬物耐性バリアントＥＭＴ−６は、単層として培養された場合には耐性を失ったが、インビボで固形腫瘍としてまたはインビトロで類腫瘍として再度成長させた場合には耐性を回復した（Teicher et al. (1990) Science 247: 1457-1461）。３Ｄ培養と単層培養との間に差がある理由はまだ分かっていない。３Ｐ類腫瘍内での栄養素、酸素、および薬物に対する病態生理学的な勾配ならびに不均一な細胞集団の同心円状の配置がＲＮＡ発現およびタンパク質発現に影響を与え得る。例えば、類腫瘍の壊死性コア近くの静止細胞は、サイクリン依存性キナーゼ阻害剤ｐ２７Ｋｉｐ１を上方制御し、これにより細胞がＧ０／Ｇ１期で停止し、細胞周期抵抗性が誘発されるということが報告されている（St Croix et al. (1996) Nat. Med. 2: 1204-1210）。ｐ２７Ｋｉｐ１の発現は、単層培養中より類腫瘍培養中で１５倍多い。さらに、Ｂｃｌ−２経路を介したアポトーシスの阻害（Zhang et al., (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 92: 6161-6165）ならびにＤＮＡミスマッチ修復タンパク質であるＰＭＳ２およびトポイソメラーゼ１１の下方制御（Francia et al., (2004) Mol. Cell Biol. 24: 6837-6849; Olive et al., (1991) Int. J. Radiat Biol. 60: 453-466）が、類腫瘍中の腫瘍細胞を抗腫瘍剤に対して非感受性にする機構として提唱されている。現在、この耐性は物質輸送の欠損の結果ではないことが分かっている。これは、薬物浸透が効率的であっても類腫瘍は依然として単層培養より高い薬物耐性を示すことを示す他の薬物浸透データとも一致する（Erianson et al., (1992) Cancer Chemotherapy Pharmacol. 29: 343-353; Ho et al. (2010) Cancer Sci. 101: 2637-2643）。これらのデータは、３Ｐスキャフォールド上の類腫瘍の成長が、細胞の表現型およびシグナル伝達の変化により細胞挙動および薬物耐性の制御のための重要な刺激が付加される生理学的成長条件を反映していることを示している。

腫瘍と間質との相互作用は、癌の成長、分化、転移、および薬物耐性獲得に影響を与える。本開示の３Ｐスキャフォールドが抗癌剤スクリーニングの適切なインビトロモデルであるかどうかを決定するために、腫瘍生検試料をスキャフォールド上で培養した。３Ｐスキャフォールドは、生検由来の腫瘍細胞および間質細胞の両方の成長をサポートした。したがって、このインビトロプラットフォームは、インビボでの腫瘍成長を模倣している。さらに、生検由来類腫瘍（ＢＩＴ）は、癌細胞株由来の類腫瘍と比べて、ＭＥＫ阻害剤およびＰＩ３Ｋ阻害剤への耐性が高いことが予想外に見出された。

したがって、細胞株由来の類腫瘍は異なる薬物感受性プロファイルを示すが、これらはインビボの条件を正確に反映していない。しかし、本開示の３Ｐスキャフォールド上で培養した生検由来類腫瘍で得られた結果は、生検した腫瘍から得られるような腫瘍細胞と間質細胞の共培養により、インビボの状態をより良く反映する類腫瘍が得られることを示唆している。化学感受性に対するこれらの腫瘍／間質の影響は、実際の患者腫瘍生検を成長させて抗癌剤の有効性を試験するために３Ｐスキャフォールドなどの３Ｄプラットフォームを用いることの利点を強く示している。

したがって、本開示のスキャフォールドに基づくプラットフォームにより、カスタマイズまたは個別化された抗癌治療の開発に有用なアプローチが実現される。したがって、腫瘍生検を３Ｐスキャフォールド上で培養し、ＢＩＴへと分化させた後、一連の抗癌剤を用いてスクリーニングすることにより特定の癌患者のための最も効果的な薬物の組合せを決定することができると考えられる。そのような結果は１週間以内に得ることができる。

遺伝学、ゲノム科学、および関連技術の急速な進歩により、予後の向上および毒性の低下を目的とした患者の腫瘍およびその微小環境の分子的特徴解析に基づく個別化された癌治療の新たな時代が期待される［８５］。腫瘍の不均一性、ほとんどのゲノム異常に対する効果的薬物の欠如、および分子的試験の技術的制限が、現在のアプローチが抗癌剤への反応を予測することの妨げとなっている。３Ｐスキャフォールドにより、罹患動物内の腫瘍で見られる生理学的および薬学的な反応を厳密に模倣する類腫瘍が提供されるので、薬物スクリーニングおよびカスタマイズされた癌療法に有用である。

Claims (5)

1. （ｉ）ランダムに配向した繊維の３次元スキャフォールドであって、前記繊維は、ポリエチレングリコール−ポリ乳酸ブロック共重合体（ＰＥＧ−ＰＬＡ）およびポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）を含む混合物から電界紡糸される、スキャフォールド；および
   （ｉｉ）動物またはヒトの腫瘍から採取され、単一細胞化された、癌細胞および間質細胞の集団を含む細胞の集団であって、前記細胞の集団は、細胞培養培地中で事前にインキュベーションされることなく、前記スキャフォールド上に播種されている、細胞の集団
   を含み、
   前記ＰＥＧ−ＰＬＡは、ＰＥＧとＰＬＡを１：４〜１：１０の重量比で含み、
   前記混合物は、ＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡを１：２〜１：１０の重量比で含み、
   前記繊維の繊維直径は、０．６９μｍ〜４．１８μｍであり、
   前記スキャフォールドは、直径１０μｍ未満の細孔を含む
   組成物。
2. 前記組成物が細胞培養培地中でインキュベートされ、前記細胞の集団が類腫瘍である、請求項１に記載の組成物。
3. 前記類腫瘍が、前記動物またはヒト対象の腫瘍から単離されたが前記スキャフォールドの非存在下で培養された前記細胞の集団と比較して治療剤に対する耐性が増大している細胞の集団を含む、請求項２に記載の組成物。
4. （ｉ）ランダムに配向した繊維の３次元スキャフォールドに、動物またはヒトの腫瘍から取り出され、単一細胞化された、癌細胞および間質細胞の集団を含む細胞の集団を播種すること、ここで前記ランダムに配向した繊維のスキャフォールドは、ポリエチレングリコール−ポリ乳酸ブロック共重合体（ＰＥＧ−ＰＬＡ）およびポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）を含む混合物から電界紡糸されたものであり、前記細胞の集団は、細胞培養培地中で事前にインキュベーションされることなく、前記スキャフォールド上に播種され；および
   （ｉｉ）前記播種された細胞の増殖が可能な条件下で、細胞培養培地中にて、前記播種されたスキャフォールドをインキュベートすることにより、類腫瘍を作製すること
   を含み、
   前記ＰＥＧ−ＰＬＡは、ＰＥＧとＰＬＡを１：４〜１：１０の重量比で含み、
   前記混合物は、ＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡを１：２〜１：１０の重量比で含み、
   前記繊維の繊維直径は、０．６９μｍ〜４．１８μｍであり、
   前記スキャフォールドは、直径１０μｍ未満の細孔を含む
   類腫瘍の作製方法。
5. 動物またはヒトの腫瘍の細胞の増殖を調節する化合物を同定する方法であって、
   （ｉ）（ａ）ランダムに配向した繊維の３次元スキャフォールドに、動物またはヒトの腫瘍から取り出され、単一細胞化された、癌細胞および間質細胞の集団を含む細胞の集団を播種すること、ここで前記ランダムに配向した繊維のスキャフォールドは、ポリエチレングリコール−ポリ乳酸ブロック共重合体（ＰＥＧ−ＰＬＡ）およびポリ（乳酸−コ−グリコール酸）（ＰＬＧＡ）を含む混合物から電界紡糸されたものであり、前記細胞の集団は、細胞培養培地中で事前にインキュベーションされることなく、前記スキャフォールド上に播種され；および
   （ｂ）前記播種された細胞の増殖が可能な条件下で、細胞培養培地中にて、前記播種されたスキャフォールドをインキュベートすることにより、類腫瘍を作製すること
   により類腫瘍を作製すること；
   （ｉｉ）前記類腫瘍を、前記類腫瘍の細胞の増殖を調節する可能性が疑われる化合物と接触させること；
   （ｉｉｉ）前記化合物と接触した前記類腫瘍の細胞の増殖を、前記化合物と接触していない類腫瘍の細胞の増殖と比較することにより、前記化合物が前記類腫瘍の細胞の増殖を調節するかどうかを決定すること
   を含み、
   前記ＰＥＧ−ＰＬＡは、ＰＥＧとＰＬＡを１：４〜１：１０の重量比で含み、
   前記混合物は、ＰＥＧ−ＰＬＡとＰＬＧＡを１：２〜１：１０の重量比で含み、
   前記繊維の繊維直径は、０．６９μｍ〜４．１８μｍであり、
   前記スキャフォールドは、直径１０μｍ未満の細孔を含む
   方法。