JP6741263B1 - 植物光合成促進剤 - Google Patents
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Abstract
Description
ステビアを含有する植物光合成促進剤。
項2.
前記ステビアが、ステビオール化合物、ステビア抽出物、及び酵素処理ステビアからなる群より選択される少なくとも1種である、項1に記載の植物光合成促進剤。
項3.
前記ステビアが、ステビオール、ステビオシド、レバウジオシドA、レバウジオシドB、レバウジオシドC、レバウジオシドD、レバウジオシドE、レバウジオシドF、レバウジオシドM、ステビオールビオシド、ルブソシド、及びズルコシドからなる群より選択される少なくとも1種である、項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
項4.
前記ステビアが、ステビア抽出物である、項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
項5.
前記ステビアが、酵素処理ステビアである、項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
項6.
項1〜5の何れか一項に記載の植物光合成促進剤を、植物若しくは植物の生育する土壌又は培養液に使用する、植物の光合成促進方法。
項7.
ステビアの植物光合成促進剤としての使用方法。
ステビア(学名:Stevia rebaudiana L.)は、世界中で天然甘味料、食品添加物等として使用されている、南アメリカ原産のキク科ステビア属の多年草である。ステビアの草丈は、通常、50cmから1m前後であり、その茎は白い細毛に覆われている。また、ステビアの別名は、アマハステビアである。
で表されるステビオール化合物のうち、R1及びR2がそれぞれ水素原子を示す化合物である。
ケトテトロース(エリトルロース)、アルドテトロース(エリトロース、トレオース)等のテトロース;
ケトペントース(リブロース、キシルロース)、アルドペントース(リボース、アラビノース、キシロース、リキソース)、デオキシ糖(デオキシリボース)等のペントース;
ケトヘキソース(プシコース、フルクトース、ソルボース、タガトース)、アルドヘキソース(アロース、アルトロース、グルコース、マンノース、グロース、イドース、ガラクトース、タロース)、デオキシ糖(フコース、フクロース、ラムノース)等のヘキソース;
セドヘプツロース等のヘプトース;又はこれらの誘導体等が挙げられる。
ステビア抽出物としては、キク料ステビアから抽出されたものであれば特に限定はない。ステビア抽出物として、例えば、ステビアの植物体(葉、茎、及び、根を含む)を、室温〜熱水で抽出することによって得られた抽出物、該抽出物を精製して得られたもの等が挙げられる。このステビア抽出物は、単独又は溶液等を含む希釈品である液体、粉末、顆粒品等の形態で用いることができる。ここで、ステビア抽出物は、1種又は2種以上のステビア抽出物を用いることができる。なお、市販されているステビア抽出物を使用することもできる。市販のステビア抽出物として、例えば、ファームA(登録商標、OATアグリオ株式会社製)、ステビロン(登録商標)TK(守田化学工業株式会社製)等が挙げられる。
ステビア処理物(ステビア誘導体ともいう。)は、天然のステビア、ステビアから得られた成分(単離成分、単離化合物)、又はステビア抽出物を、化学処理又は酵素処理することにより得られた成分をいう。
中でも、ステビアを酵素処理して得られた化合物(以下、「酵素処理ステビア」という。)は、ステビア又はステビア抽出物を、酵素で処理することによって得られた処理物であれば特に限定されない。酵素処理ステビアとして、例えば、ステビア抽出物にα−グルコシルトランスフェラーゼ等を用いてグルコースを付加して得られた処理物等が挙げられる。ここで、酵素処理ステビアは、1種又は2種以上の酵素処理ステビアを用いることができる。
大豆、小豆、そら豆、えんどう豆、インゲン豆、落花生等の豆類;
林檎、柑橘類、梨、葡萄、桃、梅、桜桃、胡桃、栗、アーモンド、バナナ、イチゴ等の果樹又は果実類;
キャベツ、トマト、ホウレンソウ、ブロッコリー、レタス、タマネギ、ネギ、ピーマン、ナス、ペッパー等の葉又は果菜類;
ニンジン、馬鈴薯、サツマイモ、サトイモ、大根、蓮根、カブ、ゴボウ、ニンニク等の根菜類;
棉、麻、ビート、ホップ、サトウキビ、テンサイ、オリーブ、ゴム、コーヒー、タバコ、茶等の加工用作物;
カボチャ、キュウリ、マクワウリ、スイカ、メロン等のウリ類;
オーチャードグラス、ソルガム、チモシー、クローバー、アルファルファ等の牧草類;
高麗芝、ベントグラス等の芝類;
ラベンダー、ローズマリー、タイム、パセリ、胡椒、生姜等の香料鑑賞用作物;
キク、バラ、カーネーション、蘭等の花卉類;
イチョウ、サクラ類、アオキ等の庭木;
トドマツ類、エゾマツ類、松類、ヒバ、杉、桧等の林木等が挙げられる。
実施例1では、ステビアとして、製品名:ファームA(登録商標)(OATアグリオ株式会社製)を使用する。
ファームAは、所定の比率にてステビア草地上部と水とを混合し、加熱した後、遠心分離により得られた液相を真空濃縮したものを、所定の期間、発酵処理を行って得られたものである。なお、このファームAは、ステビア抽出物及びステビア処理物であって、このファームAには、試験例3で示すように、ステビオール化合物が含まれている。
実施例2では、ステビアとして、製品名:ステビロン(登録商標)TK、守田化学工業株式会社製)を使用する。
ステビロンTKは、ステビア抽出物であって、ステビオール配糖体を80%以上含有する甘味料である。
ステビア製剤1
所定量の上記ファームA2mLと、展着剤であるTween(登録商標)80(東京化成工業株式会社製)200μLとに水を添加し、最終容積を2Lにしたステビア製剤1を得た。
比較製剤1
上記ファームAを除いた以外は、実施例1と同様にして比較製剤1を得た。
ステビア製剤2
所定量の上記ステビロンTK、及び肥料成分であるMgO 2%、WB(水溶性ホウ素) 0.5%、WMn(水溶性マンガン) 0.2%、WCa(水溶性カルシウム) 3%、Fe 0.2%、Cu 0.05%、及びZn 0.2%を含む肥料溶液2mLと、シリコーン系展着剤(製品名:まくぴか(登録商標)、石原バイオサイエンス株式会社製、ポリオキシエチレンメチルポリシロキサン)0.4mLとに水を添加し、最終容積を2Lにしたステビア製剤2を得た。
比較製剤2
上記のステビロンTKを含む肥料溶液2mLを除いた以外は、実施例2と同様にして比較製剤2を得た。
2017年11月1日に、OATアグリオ株式会社栽培研究センター内4号ハウスのドレンベットに、有限会社竹内園芸より購入したキュウリ苗(品種:穂木エクセレント620、台木ゆうゆう一輝)を株間50cmの一条植えにて定植した。定植後は、タンクミックス(登録商標)AB、養液土耕6号、又はOK−F−3(OATアグリオ株式会社製)を基本肥料として、土壌溶液EC値が1.5〜2.0dS/mとなるように給水濃度を調節した。また、給水量は、排液が少量確認される程度を目安として設定した。仕立てとしては、子づる3本のつるおろしとした。
12月5日に上記ステビア製剤1、及び比較製剤1を調製した。
ステビア製剤1及び比較製剤1を、5本のキュウリに対して、作物体地上部全体に均一にそれぞれ散布した。
翌日6日の10:00より12:00にかけて、第10葉の光合成速度を、植物光合成総合解析システムLI−6800(LI−COR, Inc.製)を用いて計測した。測定の際にはステビア製剤1、及び比較製剤1を処理したそれぞれの株を交互に計測した。ここで、植物光合成総合解析システムのチャンバー内の光強度は250、500、1,000、及び1,500μmol/m2/sに、CO2濃度は400μmol/molに、温度は20℃に、湿度は80%に、空気流量は800μmol/sに設定した。
得られた各条件の5株のデータより、中庸3株のデータを採用して、解析を行った。
比較製剤1を処理した株の測定結果(比較例1)と、ステビア製剤1を処理した株の測定結果(実施例1)とについて、スチューデントt−検定を用いて、比較解析を行った。その結果を、表1及び図1に示す。表中の測定値は平均±標準誤差で示す。
また、図中、**については、解析の結果、P<0.01であり、*については、P<0.05であることを示す。
ファームAを添加した実施例1は、比較例1(ファームA無添加)に比べて、いずれのチャンバー内光強度においても、光合成速度の向上が確認された。したがって、本発明の植物光合成促進剤は、ステビアを含有することで、キュウリの光合成を促進することがわかった。
2019年4月23日に、鹿児島大学農学部圃場(畝間100cm、畝高30cm、白ビニルマルチにて畝を被覆、10a(アール)あたり窒素4kg、リン酸6kg及びカリウム10kgを施用)に株間20〜30cmの間隔でサツマイモ苗(品種べにはるか)を定植した。
8月26日に、ステビア製剤2、及び比較製剤2を、それぞれ、およそ200mL/株にて10株の作物地上部に均一に散布した。
翌日27日の8:00より11:00にかけて、食害がなく、日陰になっていない箇所の個葉を、植物光合成総合解析システムLI−6800(LI−COR, Inc.製)を用いて計測した。測定の際には、ステビア製剤2及び比較製剤2を処理したそれぞれの株を3株ずつ交互に、合計9株の測定を行った。ここで、植物光合成総合解析システムのチャンバー内の光強度は100、500、及び1,000μmol/m2/sに、CO2濃度は400μmol/molに、温度は30℃に、湿度は80%に、空気流量は800μmol/sに設定した。
得られた各条件の9株のデータの内、比較製剤2を処理した株2株については、測定機器の不具合が確認されたため、測定結果より除外し、それ以外の測定結果を以降の解析に用いた。
比較製剤2を処理した株の測定結果(比較例2)と、ステビア製剤2を処理した株の測定結果(実施例2)とについて、スチューデントt−検定を用いて、比較解析を行った。その結果を、表2及び図2に示す。
ステビロンTKを含む肥料溶液を添加した実施例2は、比較例2(ステビロンTK無添加)に比べて、いずれのチャンバー内光強度においても、統計学的に有意な光合成速度の向上が確認された。したがって、本発明の植物光合成促進剤は、ステビアを含有することで、サツマイモの光合成を促進することがわかった。
ファームAについて、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)法により、ステビオール、ステビオシド、及びレバウジオシドAの含量を分析した。分析装置として、溶媒低圧グラジエントポンプPU−2089型、インテリジェントオートサンプラーAS−2051型、PDA検出器MD−2018型、及びカラムオーブンCO−2067より構成される液体クロマトグラフィー装置(日本分光株式会社製)を使用した。分析用カラムとしてはL−column 2 ODS, 5μm (size4.6×250mm、一般財団法人化学物質評価機構製)を用いた。移動相としては、ステビオールについては、0.1%リン酸(和光純薬株式会社製)を含有する水とアセトニトリルとの40:60の混合溶液、ステビオシド及びレバウジオシドAについては、0.1%リン酸を含有する水とアセトニトリルとの70:30の混合溶液を用いた。流速は、1mL/min、カラム温度は40℃とし、検出は210nmの紫外線吸収スペクトルと設定し、溶出を行い、各化合物由来のピークの検出及び定量を行った。ファームAの10倍希釈液を作成し、ろ過処理を行ったものを分析用試料とした。得られた吸収スペクトルピーク面積を、標準品を用いて作成した検量線における近似式に当てはめ、試料中濃度の算出を行った結果、下表3を得た。
ファームA中には、ステビオール及びステビオール配糖体が含有されることが確認された。
Claims (8)
- ステビアを含有する植物光合成促進剤。
- 前記ステビアが、ステビオール化合物、ステビア抽出物、及び酵素処理ステビアからなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1に記載の植物光合成促進剤。
- 前記ステビアが、ステビオール、ステビオシド、レバウジオシドA、レバウジオシドB、レバウジオシドC、レバウジオシドD、レバウジオシドE、レバウジオシドF、レバウジオシドM、ステビオールビオシド、ルブソシド、及びズルコシドからなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
- 前記ステビアが、ステビア抽出物である、請求項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
- 前記ステビアが、酵素処理ステビアである、請求項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
- 前記ステビアが、レバウジオシドである、請求項1又は2に記載の植物光合成促進剤。
- 請求項1〜6の何れか一項に記載の植物光合成促進剤を、植物若しくは植物の生育する土壌又は培養液に使用する、植物の光合成促進方法。
- 請求項1〜6の何れか1項に記載の植物光合成促進剤を植物に施用する方法。
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