JP6486683B2 - Her2阻害薬を用いた治療に対する応答を予測する方法 - Google Patents

Her2阻害薬を用いた治療に対する応答を予測する方法 Download PDF

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Description

本発明は、抗癌剤治療に対する患者の応答を予測する分野に関する。特に、本発明は、HER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測する方法に関する。
膜受容体HER2(ヒト上皮成長因子受容体2)は、上皮成長因子受容体(EGFR)ファミリーのメンバーである。185kDaのHER2腫瘍性タンパク質は、細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、及び、内因性チロシンキナーゼ活性を有する細胞内領域から成る(Bargman等、1986;Yamamoto等、1986)。HER2膜貫通糖タンパク質は、従って、細胞周期の進行を制御する遺伝子の転写の活性化をもたらすチロシンキナーゼ活性を有する。
HER2タンパク質の過剰発現は、特に、乳癌(世界中の癌を被る女性の主な死亡原因)、卵巣癌、結腸癌、膵癌、前立腺癌、及び胃癌を含む「HER2陽性」癌と呼ばれる種々の癌において同定されてきた。この過剰発現は、より大きな腫瘍の病原力、増加する再発のリスク、及び予後不良と関連がある。特に、浸潤性乳癌の30%のケースにおいてHER2タンパク質をコードする遺伝子は2倍から20倍を超えて増幅したこと、及び、この増幅は、患者の生存に対して非常に不良な予後と付随していることが研究により示されてきた(Slamon等、1987)。
しかし、HER2に対して作られた治療的抗体、特に、モノクローナル抗体トラスツズマブ(特に、F.Hoffmann−La Roche社、Basel、Switzerland及びGenentech社、South San Francisco、CAのHerceptin(登録商標)という名で販売)の開発は、この予後を変えることを可能にしてきた(De Laurentiis等、2005)。従って、HER2陽性乳癌を被る患者をトラスツズマブで治療することは、これらの患者の全生存率を非常に有意に上げることを可能にしてきた(Gianni等、2011)。
トラスツズマブはHER2陽性乳癌の治療において注目すべき進歩を構成するけれども、この抗体は、残念ながら全ての患者に対して効果的なわけではない。実際に、特定の患者は、一般的に転移の開始に続く年においてトラスツズマブ治療に対して抵抗性であるか又はトラスツズマブ治療に対して耐性ができる(Nahta等、2006)。
さらに、このタイプの治療は、非常に高価であるという欠点を有する。
従って、HER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者の応答を予測するための信頼できる方法を有することが有利であり、そのような方法は、治療処置を各患者に順応させること、あり得る副作用を回避すること、別の治療法を開発すること、及び、医療費を減らすことを可能にする。
特にいくつかの遺伝子の発現を決定することに基づき、HER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者の応答を予測することを目標とした方法は、従来技術において既知である。
例えば、国際出願WO2009/150127は、HER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測する方法を教示しており、該方法は、少なくとも4つの遺伝子の発現を決定するステップで構成されている。特に、この出願の発明者等は、トラスツズマブを用いた治療に対するHER2陽性乳癌を被る患者の応答を予測するために28の遺伝子の発現プロファイルを同定した(Vegran等、2009)。しかし、そのような方法は、特定の欠点を有し、例えば、長く且つ費用がかかり得る多数の遺伝子の発現の解析を必要とする。さらに、そのような方法は、患者から腫瘍試料の採取を必要とし、それは、外科手術手技を要して、近くの組織において悪性細胞の発生を促進する危険を冒す、(瘢痕等の)後遺症を残す、又は、有痛性であり得る。
特定の方法は、国際出願WO2006/041959において例示されているもの等、循環性癌細胞におけるHER2タンパク質のレベルを検出することに基づいている。しかし、これらの方法は、実行するのが困難であり、且つ、全ての医療センターには現在存在しない特定の高価な機器を要し得る。
従って、従来技術において既知の方法は、特に、実行するのが困難である、費用がかかる、及び/又は、非常に信頼できるというわけではないという欠点を有し得る。
従って、最大数の医療センターにおいて使用することができる、特に経済面、単純さ、速度、及び/又は信頼性という点で改善された特徴及び適用の条件を有した、HER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測する方法の必要性が残り、これらの方法は、特に、HER2関連病状、特にHER2陽性癌、特にHER2陽性乳癌を被る各患者に対して臨床医が最も適切な治療決定をするのを可能にする。
意外にも、本発明者等は、現在、トリステトラプロリンタンパク質(TTP)をコードする遺伝子においてサイレント多型を同定しており、その存在は、このタンパク質の減少した翻訳、及び、HER2阻害薬を用いた治療に対する応答の欠如と関連がある。
この関連は特に予想外である。実際、トリステトラプロリンタンパク質は、その半減期を減らすことによって、種々の癌において過剰発現した種々の遺伝子のmRNAの発現に対して負の調節をするということが研究によって示されてきた。これらのmRNAは、ARE−mRNAファミリー(3’非翻訳領域又は3’UTRにおいてAUリッチな要素を含有するmRNA)のメンバーであり、且つ、細胞分裂、アポトーシス、及び血管新生等の種々の細胞制御プロセスに関与する遺伝子の産物である。これらのARE−mRNAの発現の調節解除、すなわち、これらのARE−mRNAの過剰発現は、癌表現型を生じる。
従って、乳癌の場合において、トリステトラプロリンタンパク質によって調節される標的mRNAは、ARE−mRNAとして、uPA、MMPA及びuPARを含む種々の遺伝子の産物であるとして同定されてきた(Al−Souhibani等、2010)。
しかし、HER2の過剰発現は種々の癌(特に乳癌)において示されてきており、且つ、HER2は細胞周期の進行に関与しているけれども、HER2をコードするmRNAは、ARE−mRNAファミリーのメンバーではなく、トリステトラプロリンタンパク質の標的よりも重要でない物でさえある。
従って、第1の態様により、本発明は、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測するin vitro又はex vivoでの方法に関し、当該方法は、
i)前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対して、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するステップ、及び/又は、
ii)前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定するステップ、
を含む。
本発明の予測方法は、特に、以下の利点を有する。
−本発明の予測方法は、シンプル且つ高速である。特に、ステップi)は、患者からの腫瘍試料の採取を必要としない、従って、生検を行うことに関連する種々のリスク及び問題を回避するという利点を有する。実際、本発明の予測方法は、シンプルな分子生物学技術による患者からの通常の5から10mlの血液試料から実行することができる。本発明の予測方法は、単に、多くの医療センターにおいてすでに存在する標準的な分子生物学基盤を必要とする。さらに、ステップi)は、特に解析するのが容易な結果を提供するという利点を有する。ステップii)は、たった1つのタンパク質のレベルの解析のみを必要とするという利点を有する。
−本発明の予測方法は、信頼でき、再現でき、且つ安価である。
本発明の方法におけるステップi)及びii)の実行は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者の応答の予測を最適化するという利点を有する。
本発明のより優れた理解を可能にするために、特定の定義が提供される。明確に示されない限り、本願において使用される他の技術的用語も、その通常の意味において解釈されるべきである。
本発明と関連して、「HER2」は、erbB−2、ERBB2、又はNEUとも呼ばれる185KDaの腫瘍性タンパク質を意味する。特に、HER2は、アミノ酸配列SEQ ID番号1(NCBI reference:NP_004439.2)を有する。
本発明と関連して、「HER2阻害薬」は、HER2機能を有意に抑制する、特にHER2チロシンキナーゼ活性及び/又はHER2発現を有意に抑制する(DNA分子、干渉RNA分子等のRNA分子、ペプチド、タンパク質、抗体、抗体断片等を含む核酸分子等の)いかなる分子も意味する。
HER2機能、特にHER2チロシンキナーゼ活性及び/又はHER2発現の有意な抑制は、HER2阻害薬の非存在下での制御に関して、少なくとも10%、少なくとも15%、少なくとも20%、少なくとも25%、少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、特に少なくとも50%のHER2機能、特にHER2チロシンキナーゼ活性及び/又はHER2発現の減少に相当し得る。
Chen等による記事(2003)に記載されるように、前記HER2阻害薬は、HER2の細胞外ドメインに結合し、HER2のホモ二量体形成及び/若しくはヘテロ二量体形成を抑制し、HER2の細胞内ドメインに結合し、HER2のチロシンキナーゼドメインを抑制し、並びに/又は、HER2をコードする遺伝子の発現を抑制することができる。
特に、前記HER2阻害薬は、
−HER2細胞外ドメインに対して作られた抗体、特にトラスツズマブ(Herceptin(登録商標))、
−HER2に対して作られ、且つ、HER3等とのHER2のホモ二量体形成及び/又はヘテロ二量体形成を抑制する抗体、特に、モノクローナル抗体ペルツズマブ(2C4、Omnitarg(登録商標)とも呼ばれる)、
−抗HER2ワクチン、
−HER2チロシンキナーゼ活性の抑制剤、特にエモジン(3−メチル−1,6,8−トリヒドロキシアントラキノン)、クルクミン、OSI−774(Tarceva(登録商標))、ZD−1839(Iressa(登録商標))、CI−1033及びラパチニブ(Tykerb(登録商標)、GSK572016、GW572016、GlaxoSmithKline、Research Triangle Park、NC、USA)、
−HER2に対して作られた、特にHER2細胞外ドメインに対して作られた細胞内単鎖抗体であって、HER2の小胞体中の通過を回避するタイプの抗体、
−HER2をコードする遺伝子、特にアデノウイルスE1A遺伝子の転写の抑制剤、及び、
−アンチセンスオリゴヌクレオチド及びリボザイム等のHER2をコードするmRNAの翻訳の抑制剤、
から成る群から選択することができ、これらの種々のタイプのHER2阻害薬は、特に、Chen等による記事(2003)において例示されている。
前記HER2阻害薬は、当業者にはよく知られた技術に従って同定することができる。例えば、前記HER2阻害薬は、
−テストされることになる薬剤を、HER2を発現する細胞と接触させて置くステップ、
−HER2発現条件下で前記細胞を増殖させるステップ、
−HER2機能及び/又はHER2発現レベルを決定するステップ、
−前記テストされることになる薬剤の存在下と非存在下でのHER2機能、特にHER2チロシンキナーゼ活性及び/又はHER2発現レベルを比較するステップ、
で構成される方法によって同定することができ、前記テストされることになる薬剤の存在下でのHER2機能、特にチロシンキナーゼ活性及び/又はHER2発現レベルの有意の減少は、HER2阻害薬の存在を示している。
特に、前記HER2阻害薬は、HER2に対して作られた、特にHER2細胞外ドメインに対して作られた、並びに/又は、HER2のホモ二量体形成及び/若しくはヘテロ二量体形成を抑制し、さらに、トラスツズマブ(Herceptin(登録商標))及びペルツズマブ(2C4、Omnitarg(登録商標)とも呼ばれる)で構成される群から特に選択され、さらにより好ましくはトラスツズマブの抗体である。
本願において使用される場合、「抗体」という用語は、インタクトなモノクローナル抗体及びポリクローナル抗体、少なくとも2つのインタクトな抗体から形成される多特異性抗体(例えば二特異性抗体等)、並びに、所望の生物学的活性を有する限り抗体断片(例えばFab’、F’(ab)2、Fv、単鎖抗体等)を含む。
本発明に関連して、「タンパク質に対して作られた抗体」は、このタンパク質に特異的に結合するいかなる抗体も意味する。
抗体は、1)結合活性閾値を有する場合、及び/又は、2)関連するポリペプチドとは有意に交差反応しない場合に「特異的に結合している」と言われる。例えばScatchard解析(1949)によって、又は、表面プラズモン共鳴によって当業者は、抗体の結合親和性を容易に決定することができる。
本発明に関連して、「トリステトラプロリンタンパク質」は、ZFP36(亜鉛フィンガータンパク質36)又はTTP又はG0S24又はGOS24又はTIS11又はNUP475又はRNF162Aとも呼ばれるタンパク質、ARE−mRNA(3’UTR領域においてAUリッチな要素を含有するmRNA)結合タンパク質ファミリーのメンバーを意味する。特に、トリステトラプロリンタンパク質は、配列SEQ ID番号2(GenBank reference:AAA61240.1、NCBI reference:NP_003398.1)を有する。
本発明に関連して、「rs3746083多型部位」は、一塩基多型(SNP)が存在するヒトゲノム上の位置rs3746083を意味する。rs3746083多型部位のヌクレオチドは、ヌクレオチドA、C、G、又はTであり得、先祖ヌクレオチドは、Cヌクレオチドである(NCBI reference:NM_003407.2:367C>A;NM_003407.2:367C>G;NM_003407.2:367C>T)。
特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドは、配列SEQ ID番号3(NCBI reference:NM_003407.2)の位置367のヌクレオチドに相当する。
特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドは、配列SEQ ID番号3(NCBI reference:NM_003407.2)の位置367のヌクレオチドである。
本発明に関連して、「rs3746083多型」は、ヒトゲノム上の位置rs3746083に位置している一塩基多型(SNP)を意味する。rs3746083多型の対立遺伝子は、A、C、G、又はT対立遺伝子であり得、先祖対立遺伝子は、C対立遺伝子である(NCBI reference:NM_003407.2:367C>A;NM_003407.2:367C>G;NM_003407.2:367C>T)。特に、rs3746083多型は、配列SEQ ID番号3(NCBI reference:NM_003407.2)上の367C>T多型に相当する。
前記患者からの生物学的試料内のトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対して、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するステップi)は、酵素消化、配列決定、特異的ハイブリダイゼーション、及び/又は特異的増幅によって等、当業者にはよく知られたいかなる技術によっても実行することができる。
配列決定は、rs3746083多型部位にてヌクレオチドを有した患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAに対して、よく知られた技術を使用して、特に、自動配列決定装置を使用して実行することができる。
増幅は、特異的核酸プライマーを使用して、種々の既知の技術によって実行し、rs3746083多型部位にてヌクレオチドを有した患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAを増幅することができる。特に、そのようなプライマーは、rs3746083多型部位のヌクレオチドに隣接する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAの部分と特異的にハイブリッド形成する能力を持つ。
増幅技術の例として、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、鎖置換増幅(SDA)、リガーゼ連鎖反応(LCR)、及び、核酸配列ベース増幅(NASBA)に触れることができる。これらの技術は、商業的に入手可能な試薬及びプロトコルを使用して実行することができる。
ハイブリダイゼーションによる検出の方法は、多型を検出するために使用される相補的な核酸配列とrs3746083多型部位にてヌクレオチドを有した患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAとの特異的なハイブリッドの形成に基づいている。特に、検出技術は、rs3746083多型のC対立遺伝子、T対立遺伝子、A対立遺伝子、又はG対立遺伝子に特異的な核酸プローブの使用を含み、ハイブリッドの存在の検出が続く。プローブは、懸濁させるか、又は、基板若しくは支持体上、特にチップ上に固定化させることができる。プローブは、一般的に、ハイブリッドの検出を促進するようにマークされ、マーカーは、蛍光、化学発光、放射性、若しくは酵素のマーカー、染料、又はその他のものであり得る。
rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの欠如(rs3746083多型のC対立遺伝子の欠如)は、制限酵素HhaIを用いた酵素消化によって容易に検出することができる、rs3746083多型部位にてヌクレオチドを有した患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAの増幅に先行され得る、さらに、任意選択で、増幅され且つ消化された断片の配列決定が続き得る。実際に、rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの(rs3746083多型のC対立遺伝子の)欠如は、HhaI酵素制限部位を除去する。
ステップi)において得られた結果の評価は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者の応答を予測することを可能にする。
従って、本発明の予測方法において、患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対して、rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの欠如は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する前記患者による応答がないというリスクを示している。前記患者は、従って、前記治療に対して応答性ではないと予測される。
従って、本発明の予測方法において、患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対して、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する前記患者による応答がないというリスクを示している。前記患者は、従って、前記治療に対して応答性ではないと予測される。
従って、本発明の予測方法において、患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対して、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在は、rs3746083多型部位にてTヌクレオチドを欠く患者と比較して、特に、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の両方の対立遺伝子(両方のコピー)がrs3746083多型部位にてCヌクレオチドを含有する患者と比較して、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者による応答がないということのより高いリスクを示している。
従って、本発明の予測方法において、患者におけるrs3746083多型部位でのヘテロ接合性(T/C)の同定(トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の1つの対立遺伝子に対するrs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在、及び、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子のもう1つの対立遺伝子に対するrs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)は、rs3746083多型部位にてホモ接合性(C/C)を有する患者と比較して、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する患者による応答がないということのより高いリスクを示している。
rs3746083多型部位にてヘテロ接合性(T/C)を有する患者は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対して応答性ではないと予測される。
rs3746083多型部位にてホモ接合性(C/C)を有する患者は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対して応答性であると予測される。
従って、本発明の方法において、rs3746083多型部位のヌクレオチドが、前記患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対してCヌクレオチドである場合に、患者は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対して応答性であると予測される。
前記本発明の予測方法は、以下の
−rs3746083多型部位のヌクレオチドが、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対してCヌクレオチドでない場合に、特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドが、前記患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対してTヌクレオチドである場合に、前記患者を非応答群に割り当てるステップ、又は、
−rs3746083多型部位のヌクレオチドが、前記患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対してCヌクレオチドである場合に、前記患者を応答群に割り当てるステップ、
をさらに含み得る。
本発明の方法は、rs3746083多型を有した連鎖不平衡の少なくとも1つの多型(特に、一塩基多型又はSNP)の検出を含み得る。そのようなrs3746083多型を有した連鎖不平衡の多型は、当業者にはよく知られたいかなる技術によっても同定することができる。
例えば、rs3746083多型を有した連鎖不平衡の多型の同定は、(a)複数の患者のrs3746083多型を含むか又は取り囲むゲノム領域の断片の増幅、(b)前記rs3746083多型を含むか又はそれに隣接するゲノム領域における第2の多型の同定、(c)前記rs3746083多型と前記第2の多型との連鎖不平衡の解析、及び、(d)前記rs3746083多型を有する連鎖不平衡の前記第2の多型の選択を含み得る。
本発明に関連して、「生物学的試料」は、患者からのいかなる生物学的試料も意味する。この用語は、いかなる生物学的液体、組織、細胞、若しくは臓器の試料、生検、又は、それらから得られるいかなる組織若しくは細胞培養物を含む。
特に、前記生物学的試料は、病理学的組織又は細胞、特に癌性及びより具体的にはHER2陽性の試料等、(病理学に特有である)「病理学的」生物学的試料であり得る。
「生物学的試料」という用語は、操作された、特に試薬によって、特定の要素の可溶化によって又は濃縮によって処理された試料も含む。従って、当業者にはよく知られた全ての技術によって、生物学的試料は、本発明の方法において使用する前に処理して、例えば、核酸又はタンパク質を単離及び/若しくは濃縮することができる。そのような技術の例として、(例えば機械的、物理的、化学的溶解等の)溶解、細胞濃縮、及び核酸希釈の技術に触れることができる。核酸は、酵素又は他の化学的若しくは物理的処理で処理して、核酸断片を生成することもできる。
特に、ステップi)において使用することができる前記生物学的試料は、前記患者の核酸、特にゲノムDNAを含み、全血、血清、又は血漿等の血液の試料、唾液試料、精液試料、及び尿試料で構成される群から選択することができる。
特に、ステップii)において使用することができる前記生物学的試料は、前記患者からのタンパク質を含み、血液試料、組織又は細胞の試料、特に、乳房組織又は細胞、特に、癌組織又は細胞、さらに特には、HER2−陽性癌組織又は細胞で構成される群から選択することができる。
「患者」という用語は、本願において使用される場合、いかなる個々の患者、特に、予測、予後、診断、又は治療が望まれるいかなるヒトも意味する。特に、患者は、女性、特にHER2陽性乳癌を被る女性である。
前記患者は、良性及び悪性腫瘍を含む、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療が有益である病態及び/又は疾患を被り得る。特に、前記患者は、HER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌を被る。
本発明に関連して、「HER2関連病態及び/又は疾患」という表現は、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療が有益であるいかなる病態及び/又は疾患も意味する。
本発明に関連して、「HER2陽性病態、特にHER2陽性癌」という表現は、HER2タンパク質が過剰発現される、すなわち、健康な患者若しくはこの病態を被っていない患者の細胞、組織、又は器官における発現のレベルに対して、この病態を被る患者の細胞、組織、又は器官において異常なレベルの発現を有するいかなる病態、特にいかなる癌も意味する。
HER2陽性癌は、特に、乳癌、卵巣癌、結腸癌、膵癌、前立腺癌、胃癌、子宮内膜癌、及び、非小細胞肺癌(NSCLC)を含む。
HER2陽性病態、特にHER2陽性癌を被る患者は、HER2に対して作られた抗体を使用した電気泳動的及び免疫学的技術、又は、特に固定されたパラフィン包埋の組織切片上のHER2をコードする遺伝子の増幅を検出するための色素産生インサイツハイブリダイゼーション(CISH(登録商標))技術等、当業者には既知のいかなる技術を使用しても同定することができる。例えば、色素産生インサイツハイブリダイゼーション(CISH(商標))によるホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織の切片におけるHER2遺伝子の増幅を検出するためのZymed Spot−Light(登録商標)、HER2 CISH Kit(商標)(Zymed Laboratories(登録商標)により販売)に触れることができる。
本発明の方法は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答する患者を、応答しない患者から区別するのを可能にする。
本発明に関連して、「少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に応答する患者」は、Response Evaluation Criteria in Solid Tumors (RECIST)に従った、前記阻害薬を用いて治療された場合に、HER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌、なお特には、HER2陽性乳癌の臨床的に有意な軽減を示すいかなる患者も意味する。
本発明に関連して、「少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に応答しない患者」は、Response Evaluation Criteria in Solid Tumors (RECIST)に従った、前記阻害薬を用いて治療された場合に、HER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌、なお特には、HER2陽性乳癌の臨床的に有意な軽減を示さないいかなる患者も意味する。
患者からの生物学的試料内のトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定するステップii)は、当業者には既知のいかなる技術によっても実行することができる。
そのような技術は、おそらく生物学的試料内に存在することになるトリステトラプロリンタンパク質と選択的に相互作用する能力を持つ結合剤と接触させて生物学的試料を置くことを含み得る。
結合剤は、抗体、特にポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体、さらに特には、トリステトラプロリンタンパク質に対して作られたモノクローナル抗体であり得る。
従って、トリステトラプロリンタンパク質のレベルは、トリステトラプロリンタンパク質に対して作られた抗体を使用した電気泳動的及び免疫学的技術によって決定することができる。例として、ウェスタンブロット、ELISA等の酵素テスト、ビオチン/アビジンタイプのテスト、放射免疫学的テスト、免疫電気泳動法、及び免疫沈殿法に触れることができる。これらの技術は、一般的に、トリステトラプロリンタンパク質と結合剤との、特に、抗原と、該抗原と反応した1つ又は複数の抗体との複合体の形成を検出するためのマーカーを含み、前記マーカーは、蛍光、化学発光、放射性、若しくは酵素のマーカー、染料、又はその他のものであり得る。
本発明の前記予測方法は、
iii)ステップii)において決定した前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルを、少なくとも1つの参照値と比較するステップをさらに含み得る。
このステップiii)は、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に患者が応答性であるか又は非応答性であるかを決定することに寄与する。
前記参照値は、特に、非限定的な様式で、
−参照閾値、
−ステップii)においてトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定した腫瘍組織に隣接する健康な組織において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値、
−少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性の患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値、又は
−少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性ではない患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値、
であり得る。
本発明に関連して、「等価の生物学的試料」は、ステップii)のものと生理学的に相当するいかなる生物学的試料も意味する。例えば、ステップii)の生物学的試料が癌性の乳房組織の試料である場合に、等価の生物学的試料は、好ましくはステップii)のものと同じ領域からの、乳房組織試料であり得る。
従って、例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、ステップii)においてトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定した腫瘍組織に隣接する健康な組織において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値よりも有意に低い場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性ではないと予測される。
従って、例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、ステップii)においてトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定した腫瘍組織に隣接する健康な組織において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値以上である場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性であると予測される。
従って、例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性の患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値よりも有意に低い場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性ではないと予測される。
従って、例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性の患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値以上である場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性であると予測される。
例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性ではない患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値よりも有意に高い場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性であると予測される。
例えば、ステップii)において決定したトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に応答性ではない患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値に相当する参照値以下である場合に、患者は、前記少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブに応答性ではないと予測される。
参照値よりも有意に高いトリステトラプロリンタンパク質のレベルは、参照値に対して少なくとも15%、少なくとも20%、少なくとも25%、少なくとも30%、少なくとも35%高いレベルに相当し得る。
参照値よりも有意に低いトリステトラプロリンタンパク質のレベルは、参照値に対して少なくとも15%、少なくとも20%、少なくとも25%、少なくとも30%、少なくとも35%低いレベルに相当し得る。
本発明の方法は、前記患者からの生物学的試料における対照タンパク質のレベルを決定するステップも含み得る。前記対照タンパク質は、特に、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対して応答性である及び応答性ではない患者においてレベルが一定であるタンパク質であり得る。
本発明の予測方法は、特に前記患者由来の生物学的試料から、予測に有用な相加的なパラメータを少なくとも1つ決定するステップも含み得る。「予測に有用な相加的なパラメータ」という表現は、それだけでは予測に使用することはできないが、例えば、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に応答する患者と応答しない患者との間に有意に異なる値を示すとして記載され、且つ、本発明の方法によって決定した予測を確かめるのに有用であり得るいかなるパラメータも意味する。予測に有用な1つのそのような相加的なパラメータは、
−GPR22(Gタンパク質共役受容体22、特に、GenBank reference:NM_005295)、PEX19(ペルオキシソーム生合成因子19、特に、GenBank reference:NM_002857)、GRHL2(グレイニーヘッド(grainyhead)様2、特に、GenBank reference:NM_024915)、及び、DERL1(デルリン(Derlin)1、特に、GenBank reference:NM_024295)、HER2をコードする遺伝子(特に、GenBank reference:NM_004448)から成る群から選ばれた少なくとも1つの遺伝子の発現レベルであり得る。
本発明の前記予測方法は、
iv)ステップi)及び/又はステップii)において得た結果を評価することによって、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する前記患者の応答を予測するステップ、
をさらに含み得る。
別の態様によると、本発明は、患者におけるHER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌、なお特には、HER2陽性乳癌を治療するための薬物として使用するためのHER2阻害薬に関し、前記患者は、本発明の予測方法によって当該HER2阻害薬を用いた治療に応答性であると予測される。
本発明は、患者におけるHER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌、なお特には、HER2陽性乳癌を治療する薬物を製造するためのHER2阻害薬の使用にも関し、前記患者は、本発明の予測方法によって当該HER2阻害薬を用いた治療に応答性であると予測される。
本発明は、HER2関連病態及び/又は疾患、特にHER2陽性病態、さらに特にはHER2陽性癌、なお特には、HER2陽性乳癌を被る患者を治療するための方法にも関し、当該方法は、
−a)本発明の予測方法を実行することによって、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測するステップ、及び、
−b)ステップa)において少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対して応答性であると予測した前記患者に治療量のHER2阻害薬を投与するステップ、
を含む。
本発明に関連して、「治療量」は、HER2阻害薬の活性及び無毒な量を意味する。
これらの治療量は、前記HER2阻害薬の投与によって治療されようと努められたHER2関連病態及び/又は疾患に対する、特に、HER2陽性癌に対する、特にHER2陽性乳癌に対する、少なくとも1つのHER2阻害薬の投与の効果の評価を含むルーチンテストにより当業者によって決定することができる。
例えば、これらのテストは、特に、少なくとも1人の患者由来の少なくとも1つの生物学的試料からの、これらのHER2関連病態及び/又は疾患に特有である一組(生物学的及び/又は臨床的)のマーカーに対する、種々の量の前記HER2阻害薬(特にトラスツズマブ)の投与の定量的効果及び定性的効果両方の解析によって実行することができる。
本発明は、
−少なくとも1つのHER2阻害薬、及び
−HER2関連病態及び/又は疾患、特に、HER2陽性病態、さらに特には、HER2陽性癌、なお特にはHER2陽性乳癌を治療するための少なくとも1つの他の薬剤、
を、患者におけるHER2関連病態及び/又は疾患、特に、HER2陽性病態、さらに特には、HER2陽性癌、なお特にはHER2陽性乳癌を治療するための同時、別々、若しくは連続使用のための配合剤として含む製品にも関し、前記患者は、本発明の予測方法によって当該HER2阻害薬を用いた治療に応答性であると予測される。
本発明は、患者におけるHER2関連病態及び/又は疾患、特に、HER2陽性病態、さらに特には、HER2陽性癌、なお特にはHER2陽性乳癌を治療するための同時、別々、若しくは連続使用のための配合剤を調製するための、
−少なくとも1つのHER2阻害薬、及び
−HER2関連病態及び/又は疾患、特に、HER2陽性病態、さらに特には、HER2陽性癌、なお特にはHER2陽性乳癌を治療するための少なくとも1つの他の薬剤
の使用にも関し、前記患者は、本発明の予測方法によって当該HER2阻害薬を用いた治療に応答性であると予測される。
本発明に関連して、「HER2関連病態及び/又は疾患を治療するための薬剤」は、HER2関連病態及び/又は疾患を治療するためのいかなる化合物も意味する。
例として、HER2関連病態及び/又は疾患、特に、HER2陽性病態、さらに特には、HER2陽性癌、なお特にはHER2陽性乳癌を治療するための前記他の薬剤は、
−特に乳癌の場合にはタキサン(特にドセタキセル又はTaxotere(登録商標))、ドキソルビシン、5−フルオロウラシル、エピルビシン、又はシクロホスファミド等の化学療法の薬剤
−特に乳癌の場合にはタモキシフェン等のホルモン療法の薬剤、又は、
−放射線療法の薬剤
であり得る。
前記HER2阻害薬は、本発明の薬物及び配合剤において治療量で存在し得る。
前記HER2阻害薬、及び、HER2関連病態及び/又は疾患を治療するための前記他の薬剤は、本発明の配合剤において、100/1から1/100のモル比で存在し得る。
本発明の薬物及び配合剤は、特にHER2阻害薬の種類に従って、種々の経路によって投与することができる。本発明の薬物及び配合剤に使用することができる投与経路の例として、経口、直腸、皮膚、肺、経鼻、舌下、及び非経口の経路に触れることができる。
本発明による薬物及び配合剤は、薬剤的に許容可能な担体をさらに含み得る。
本発明に関連して、「薬剤的に許容可能な担体」は、医薬品における使用に適切ないかなる物質も意味する。
薬剤的に許容可能な担体の例として、ラクトース、(任意で加工された)デンプン、セルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、マンニトール、ソルビトール、キシリトール、ブドウ糖、硫酸カルシウム、リン酸カルシウム、乳酸カルシウム、デキストレート(dextrate)、イノシトール、炭酸カルシウム、グリシン、ベントナイト、ポリビニルピロリドン、及びその混合物に触れることができる。
本発明の薬物及び配合剤は、本発明の薬物又は配合剤の総重量に対して、重量により5%から99%、特に、重量により10%から90%、特に、重量により20%から75%という薬剤的に許容可能な担体の含有量を含み得る。
別の態様によると、本発明は、少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測するためのキットを目標として有し、当該キットは、
−rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段、及び/又は、
−トリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定する手段、さらに任意で、
−少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測するための前記手段を使用するための指示、
を含む。
rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段は、配列決定、増幅、及び/又はハイブリダイゼーションによってrs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するための核酸プライマー及び/又はプローブであり得る。
特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段は、
−rs3746083多型部位にヌクレオチドを有する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAを配列決定するための特異的なプライマー及び試薬、
−rs3746083多型部位にヌクレオチドを有する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAを増幅するための特異的なプライマー及び試薬であって、特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドに隣接する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAの一部と特異的にハイブリッド形成する能力を持つ核酸プライマー、
−ヒトゲノム上の位置rs3746083に位置している多型のC対立遺伝子、T対立遺伝子、A対立遺伝子、及びG対立遺伝子に対する特異的な核酸プローブ、並びに、多型を検出するために使用される相補的な核酸配列間の特異的ハイブリッドの形成を検出するための試薬、
で構成される群から選択することができる。
特に、トリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定する手段は、トリステトラプロリンタンパク質に対して作られ、特に、酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)又は放射免疫アッセイ(RIA)において使用することができる抗体であり得る。
本発明の予測キットは、緩衝液、試薬、マーカー、及び対照試料等、追加の要素をさらに含み得る。
前記少なくとも1つのHER2阻害薬を用いた治療に対する患者の応答を予測するための手段を使用するための指示は、特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドの同定、及び/又は、患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定した後に得た結果を解釈するのを可能にする。
例えば、患者におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対する、rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの欠如が、少なくとも1つのHER2阻害薬、特にトラスツズマブを用いた治療に対する前記患者による応答がないというリスクを示しているということを前記指示は示すことができる。前記患者は、次に、前記治療に応答性ではないと予測される。
別の態様によると、本発明は、患者における癌、特に、予後不良を有した癌のin vitro若しくはex vivoでの予後又は診断の方法に関し、当該方法は、
α)前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対する、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するステップを含む。
Brennan等による記事(2009)において例示されているように、前記癌は、トリステトラプロリンタンパク質が低発現される、すなわち、健康な患者若しくはこの癌を被っていない患者の細胞、組織、又は器官における発現のレベルに対して、この癌を被る患者の細胞、組織、又は器官において異常なレベルの発現を有するいかなる癌でもあり得る。
特に、前記癌は、肺、乳房、子宮、卵巣、外陰部、前立腺、精巣、気管、甲状腺、肝臓、胃、腸、結腸、直腸、膵臓、腎臓、膀胱、並びに、皮膚の癌、特に、甲状腺、肺、卵巣、子宮、並びに乳房の癌、腺腫、及び腺癌、さらに特には乳癌を含む群に含まれ得る。
本発明の予後又は診断の方法の特定の実施形態によると、前記癌は、予後不良を有した乳癌である。
本発明の予後又は診断の方法において、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対する、rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの欠如は、患者が、癌、特に、予後不良を有した癌、特に、予後不良を有した乳癌を被っているというリスクを示している。
本発明の予後又は診断の方法において、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対する、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在は、患者が、癌、特に、予後不良を有した癌、特に、予後不良を有した乳癌を被っているというリスクを示している。
従って、本発明の方法において、患者におけるrs3746083多型部位でのヘテロ接合性(T/C)の同定(トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の1つの対立遺伝子に対するrs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在、及び、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子のもう1つの対立遺伝子に対するrs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)は、患者が、癌、特に、予後不良を有した癌、特に、予後不良を有した乳癌を被っているというリスクを示している。
本発明の予後又は診断の方法は、特に以下の利点を有する。すなわち、
−本発明の予後又は診断の方法は、シンプル且つ高速である。ステップα)は、患者からの腫瘍試料の採取を必要としない、従って、生検を行うことに関連する種々のリスク及び問題を回避するという利点を有する。例えば、本発明の予後又は診断の方法は、シンプルな分子生物学技術による患者からの通常の5から10mlの血液試料から実行することができる。本発明の予後又は診断の方法は、多くの病院においてすでに存在する標準的な分子生物学基盤を必要とする。さらに、ステップα)は、特に解析するのが容易な結果を提供するという利点を有する。
−本発明の予後又は診断の方法は、信頼でき、再現でき、且つ安価である。
本発明の予後又は診断の方法は、特に前記患者由来の生物学的試料から、予後又は診断に有用な相加的なパラメータを少なくとも1つ決定するステップも含み得る。「予後又は診断に有用な相加的なパラメータ」という表現は、それだけでは予後又は診断に使用することはできないが、例えば、癌を被る患者と癌を被っていない患者との間に有意に異なる値を示すとして記載されてきており、且つ、本発明の方法によって決定した予後又は診断を確かめるのに有用であり得るいかなるパラメータも意味する。予後又は診断に有用な1つのそのような相加的なパラメータは、
−HER2陽性癌の場合にHER2をコードする遺伝子等、前記癌を被る患者において発現が調節される少なくとも1つの遺伝子の発現レベル
であり得る。
本発明は、特に予後不良を有した癌を被る患者を治療する方法にも関し、当該方法は以下の、
1)本発明の予後又は診断の方法を実行することによる、前記患者における癌の予後又は診断ステップ、
2)ステップ1)において特に予後不良を有した癌を被るとして診断した前記患者に対する治療量の抗癌剤の投与ステップ、
を含む。
本発明によると、「抗癌剤」は、癌及び/又は癌関連疾患を治療するためのいかなる化合物も意味する。例えば、前記抗癌剤は、
−特に乳癌の場合にはタキサン(特にドセタキセル又はTaxotere(登録商標))、ドキソルビシン、5−フルオロウラシル、エピルビシン、又はシクロホスファミド等の化学療法の薬剤
−特に乳癌の場合にはタモキシフェン等のホルモン療法の薬剤、又は、
−放射線療法の薬剤
であり得る。
特に、前記抗癌剤は、前記患者において診断された癌に適している。例えば、患者がHER2陽性乳癌を被っている場合に、前記薬剤は、タモキシフェン、ドセタキセル等であり得る。
別の態様によると、本発明は、患者における癌、特に予後不良を有した癌の予後又は診断のためのキットに関し、当該キットは、
−rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段、及び任意で、
−患者における癌、特に予後不良を有した癌の予後又は診断を確立するための前記手段を使用するための指示、
を含む。
rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段は、配列決定、増幅、及び/又はハイブリダイゼーションによってrs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するための核酸プライマー及び/又はプローブであり得る。
特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定する手段は、
−rs3746083多型部位にヌクレオチドを有する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAを配列決定するための特異的なプライマー及び試薬、
−rs3746083多型部位にヌクレオチドを有する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAを増幅するための特異的なプライマー及び試薬であって、特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドに隣接する患者のゲノムDNA、cDNA、又はRNAの一部と特異的にハイブリッド形成する能力を持つ核酸プライマー、
−ヒトゲノム上の位置rs3746083に位置している多型のC対立遺伝子、T対立遺伝子、A対立遺伝子、及びG対立遺伝子に対する特異的な核酸プローブ、並びに、多型を検出するために使用される相補的な核酸配列間の特異的ハイブリッドの形成を検出するための試薬、
で構成される群から選択することができる。
患者における癌、特に予後不良を有した癌の予後又は診断を確立するための前記手段を使用するための前記指示は、特に、rs3746083多型部位のヌクレオチドの同定後に得た結果を解釈するのを可能にする。
例えば、トリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子(少なくとも1つのコピー)、特に、両方の対立遺伝子(両方のコピー)に対する、rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの欠如は、患者が、癌、特に、予後不良を有した癌を被っているというリスクを示しているということを前記指示は示すことができる。
本発明の他の利点及び特徴が、以下の実施例から明らかになる。
これらの実施例は、例示のために与えられ、非限定的である。
乳癌細胞株におけるTTP(トリステトラプロリン)の発現を表した図であり、乳癌可溶化液及び不死化した乳房の細胞株における全TTPタンパク質の免疫ブロットである。(+++)は非常に高悪性度の乳癌細胞株であり、(+/−)は非悪性乳癌細胞株であり、(−)は非腫瘍性の乳房の細胞株である。 乳癌細胞株におけるVEGF(血管内皮増殖因子)及びIL8(インターロイキン8)の発現を表した図であり、それぞれqPCR及びELISAによって決定したmRNA並びに分泌性タンパク質VEGF及びIL8のレベルである。 乳癌細胞株におけるVEGF(血管内皮増殖因子)及びIL8(インターロイキン8)の発現を表した図であり、それぞれqPCR及びELISAによって決定したmRNA並びに分泌性タンパク質VEGF及びIL8のレベルである。 TTP−MDA231誘導性クローンを表した図であり、テトラサイクリンの除去後の3つのクローンにおける種々のレベルのTTPタンパク質誘導(低レベルのTTP=PA15、高レベルのTTP=PA1及びPA48)である。 TTP−MDA231誘導性クローンを表した図であり、TTP−MDA231クローンにおけるVEGF及びIL8 mRNA総量の定量的PCRである。*=p<0.05、**=p<0.01 shCTRL、sh62−TTP1、及びsh65−TTP2の配列の遺伝子導入によって得た安定なMCF7クローンを表した図であり、3つの異なるクローンにおける全TTPmRNAレベルの定量的PCRである。 shCTRL、sh62−TTP1、及びsh65−TTP2の配列の遺伝子導入によって得た安定なMCF7クローンを表した図であり、免疫ブロットによって検出した対応するTTPタンパク質レベルである。 shCTRL、sh62−TTP1、及びsh65−TTP2の配列の遺伝子導入によって得た安定なMCF7クローンを表した図であり、3つのクローンにおけるVEGF及びIL8のmRNAレベルの定量的PCRである。*=p<0.05、**=p<0.01 誘導性MDA231−TTPクローンの増殖に対するTTP発現の効果を表した図であり、テトラサイクリンの存在下又は非存在下での誘導性TTP−MDA231クローンPA1及びPA15の増殖テストである。誘導後のTTP発現レベルが示されている(TTP+++=高レベル、及び、TTP+=低レベル)。 安定なshTTP−MCF7クローンの増殖に対するTTP発現の効果を表した図であり、細胞形態である。 安定なshTTP−MCF7クローンの増殖に対するTTP発現の効果を表した図であり、scCTRLに対する2つの安定なshTTP−MCF7クローンの増殖テストである。 乳癌細胞株におけるTTPの比較上の発現を表した図であり、免疫ブロットによって解析した乳癌及びHEK293の細胞株のタンパク質抽出である。 乳癌細胞株におけるTTPの比較上の発現を表した図であり、定量的PCRによって定量化された同じ細胞株における対応するmRNAレベルである。 Hs578T細胞におけるrs3746083多型部位のヌクレオチドの同定(特に、rs3746083多型部位のTヌクレオチドの検出)を表した図であり、MDA231並びにHs578Tの細胞から得たゲノムDNA及びcDNAのTTPコード領域のシーケンスクロマトグラム並びにPCR解析である。 Hs578T細胞におけるrs3746083多型部位のヌクレオチドの同定(特に、rs3746083多型部位のTヌクレオチドの検出)を表した図であり、酵素HhaIで切断したPCR断片の消化の図及び解析である。 Hs578T細胞におけるrs3746083多型部位のヌクレオチドの同定(特に、rs3746083多型部位のTヌクレオチドの検出)を表した図であり、野生型(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)及び配列変異体(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)に対するMFOLDソフトウェアによって予測した二次mRNA構造である。 Hs578T細胞におけるrs3746083多型部位のヌクレオチドの同定(特に、rs3746083多型部位のTヌクレオチドの検出)を表した図であり、MCF7、Hs578t、及びMDAの細胞のDRB(5,6−ジクロロ−1−D−リボフラノシルベンズイミダゾール)動態によって決定したTTP mRNA半減期である。 翻訳に対する野生型TTP(wt)(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)又は変異体TTP(var)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の効果を表した図であり、野生型(wt)及び変異体(var)のTTP−Myc発現プラスミドのin vitroでの翻訳である。 翻訳に対する野生型TTP(wt)(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)又は変異体TTP(var)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の効果を表した図であり、HEK293細胞において遺伝子導入した野生型及び変異体のTTP配列を保有した増加する量のTrexプラスミド(50ng、100ng、200ng)である。タンパク質可溶化液を、免疫ブロットによって解析した。2つの独立したDNA調製を200ngの濃度で使用した。試料間での比較を、(材料及び方法のセクションにおいて説明されるように)遺伝子導入の効率を計算した後に実行した。 標的遺伝子の安定性に対する変異体TTP対立遺伝子(T対立遺伝子、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の機能効果を表した図であり、空のベクター、野生型TTP遺伝子又は変異体TTP遺伝子(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)を含有する発現ベクターの遺伝子導入後のVEGF mRNAの3’UTRと共役したルシフェラーゼレポーター遺伝子の活性度のアッセイである。平均の相対ルシフェラーゼ活性度を、4つの独立した遺伝子導入に基づき計算した。 標的遺伝子の安定性に対する変異体TTP対立遺伝子(T対立遺伝子、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の機能効果を表した図であり、野生型又は変異体TTPのコンストラクトを用いた遺伝子導入後の内在性VEGF mRNAの半減期のDRB動態及び測定値である。 標的遺伝子の安定性に対する変異体TTP対立遺伝子(T対立遺伝子、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の機能効果を表した図であり、DRB処置の3時間後の内在性サイクリンD1mRNAに対する野生型TTP及び変異体TTPの効果である。0時間でのmRNAの量は、参照値(100%)とみなされる。
I. 材料及び方法
I.1 プラスミドの構築
MDA231細胞におけるTET−Offアプローチ(TET:テトラサイクリン)に対して、pREV−TTPコンストラクトを、pREVプラスミド(Clontech)のHindIII制限部位においてTTP cDNAの領域のコード化に対応する1kbのDNA断片を挿入することによって得た(Essafi−Benkhadir等、2007)。野生型配列(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)及びヒトTTPの配列変異体(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)を含有するpcDNA4/TO/myc−HysA(Trex−TTP)コンストラクトを、センスプライマー(5’CCACTCTCGGCCGACACCCC−3’)及びアンチセンスプライマー(5’−GTCACTCAGAAACAGAGATGCG−3’)を用いてHs578T細胞のcDNAから直接1kbの領域を増幅することによって、並びに、その断片をpCR2.1−TOPOベクター(Invitrogen社)内に挿入することによって作製した。TTP cDNA断片を、次に、pcDNA4/TO/myc−HysAベクター(Invitrogen社)内にEcoRI制限部位にて挿入した。2つの独立したプラスミド調製を、各コンストラクトに対して得た。
I.2 RNA調製及び定量的PCRによる解析
TRIzol試薬(Invitrogen社)を用いて全RNAを抽出した。Superscript First−Strand Synthesis System kit(QIAGEN社、Hilden、Germany)を使用し、第1のDNA鎖の合成を刺激するためにOligo(dt)プライマーを用いて、2マイクログラムの全RNAを逆転写に使用した。リアルタイムPCRに対して、TaqMan Gene Expression Assay kit(Applied Biosystems社)及びqPCRCore kit(Eurogentec社)を使用した。細胞株におけるTTP、VEGF、及びIL8のmRNAの相対発現を計算するために、2[ddC(T)]方法を使用し(Schmittgen、2008)、さらに、RPLP0遺伝子(Essafi−Benkhadir等、2007)を、標準化のために使用した。mRNAの安定性を計算するために、25μg/mlの5,6−ジクロロ−1−D−リボフラノシルベンズイミダゾール(DRB)を、培養した乳癌細胞に添加し、続いて、種々の時間に該細胞からRNAを抽出した。培養液へのDRBの添加前の0時間での各mRNAの相対量を、100%に設定した。
I.3 細胞培養、切断、及びルシフェラーゼテスト
乳癌細胞株MDA231、Hs578T、MCF7、T47D、及びMCF10、並びに、ヒト胚性腎臓細胞株HEK293を、以前に記載されたように培養した(Essafi−Benkhadir等、2007、Eckert等、2004)。RAW264.7細胞を、37℃の5%COの加湿した大気において、ウシ胎仔血清を追加したDulbecco’s Modified Eagle’s Mediumにおいて増殖し、10ng/mlの濃度のリポ多糖(LPS)(Sigma Aldrich社)で刺激した。TTP抗体を、ヒト型TTPを遺伝子導入されたLPSで刺激されたRAW264.7細胞及びHEK293細胞のタンパク質抽出物に対する免疫ブロット解析によって検証した(Lay等、1999)。安定なクローンを、pREV−TTPプラスミドにLipofectamine(商標)2000(Invitrogen社)を遺伝子導入することによって取得し、さらに、ハイグロマイシン耐性クローンを、培養液からのテトラサイクリンの除去後に免疫ブロットによってスクリーニングした。MCF7細胞におけるTTPの不活性化を、細胞にLipofectamine及びMISSION(商標)shRNAレンチウイルスプラスミド(SIGMA社)を遺伝子導入することによって得た。耐性クローンの選択を、培養液にピューロマイシンを添加することによって実行し、さらに、選択したクローンのスクリーニングを、qPCRによって実行した。
翻訳に対するTTP rs3746083多型の機能テストを、リン酸カルシウム法を使用して、野生型TTP(wt)(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)及び変異体TTP(var)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)に相当するプラスミドを遺伝子導入したHEK293細胞に対して実行した(Essafi−Benkhadir等、2007)。そのテストを、野生型TTP配列及び配列変異体を保有する種々の量のpcDNA4/TO/myc−HysA(各コンストラクトに対して2つの独立した調製)で二回実行した。同時に、ルシフェラーゼレポーター遺伝子を発現するプラスミド(プラスミドpGL3)300ngを、各ウェルにおける遺伝子導入の効率の独立した対照として同時導入した。テストを、以前に記載されたように実行した(Essafi−Benkhadir等、2007)。遺伝子導入の効率を、タンパク質量に対して標準化したルシフェラーゼレベルから計算した。同じレベルの遺伝子導入の効率(差<20%)を示した細胞のみを解析した。レムリ(laemmli)溶解液を細胞に添加した。抽出物のタンパク質を、SDS−PAGEによって分離し、続いて、フッ化ポリビニリデン膜(Immobilon−P;Millipore社、Billerica、MA)上に移した。免疫反応性タンパク質は、Enhanced Chemiluminescence検出システム(ECL;Pierce Chemical社、IL)を用いて明らかにされる。
I.4 仔牛腸由来のアルカリホスファターゼ(CIAP)を用いた治療
CIAP(New England Biolabs社、Ipswich、MA)を用いた実験に対して、解析前の24時間、MDA231細胞からテトラサイクリンを取り除いた。細胞を、続いて、溶解緩衝液(1%Triton X−100、50mM Tris、pH8.5、100mM NaCl、及び0.5mM EDTA)において溶解した。CIAP(35U)を、1時間37℃の可溶化液に添加した。レムリ溶解緩衝液を添加することによって反応を中止させた。
I.5 VEGF及びIL−8分泌の測定
細胞上清におけるVEGF及びIL−8の存在を、ヒトVEGF及びIL−8に対する酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)キット(Pierce Biotechnology社、Rockford、IL)を使用して測定した。
I.6 患者及び関連研究
乳癌を有した92人の女性、及び、対照として89人の女性を、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在に対して解析した。癌を被る患者全てが、HER2遺伝子(HER2陽性)の増幅と共に非常に高悪性度の腫瘍を有し、全員を、HER2に対して作られたモノクローナル抗体であるHerceptin(登録商標)(トラスツズマブ)を用いて治療した。ゲノムDNAを、標準的な技術を使用して末梢血白血球から抽出した。SNP NM_003407.2:367C>T(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)に対して、1つの400bpの増幅産物を、プライマー103F(5’−CGACCATGGAGGGACTGAG−3’)及び103R(5’−GCCCTGGAGGTAGAACTTGT)を使用して、及び、以下のPCR条件、すなわち、50μlのPCR反応量における200ngのゲノムDNA、50pMの各プライマー、200μMの各dNTP、1X緩衝液、0.9ユニットのTaqポリメラーゼ(AmpliTaq Gold−Applied Biosystems社、Foster City、CA、USA)、及び1.5mM MgClに従うことによって生じた。95℃での10分間の最初の変性の後、95℃で45秒間、62℃で45秒間、72℃で45秒間、次に、72℃で10分間最後の伸長という35の増幅サイクルが続いた。rs3746083遺伝子座での変異体のT対立遺伝子の有無(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在;NM_003407.2:367C>T)は、(製造者、すなわちNew England BioLabs社の指示に従い)制限酵素HhaIを用いた消化によって評価される。酵素消化の後、試料は、3%アガロースゲル上に堆積される。
I.7 統計学的解析
対立遺伝子頻度は、遺伝子型データから推定される。患者群及び対照群は、統計学的有意性の基準としてp=0.05を規定することによってFisher直接確率法と比較される。Hardy−Weinberg平衡が、対照群においても患者群においてもカイ二乗検定を用いてテストされる。臨床研究のために、腫瘍パラメータをANOVAによって比較した。生存推定を、Kaplan−Meier法を使用して計算した。生存期間の差を、ログランク検定を使用して評価した。カイ二乗検定を使用して、患者の遺伝子型と、(血液学的、消化性)毒性と、トラスツズマブに基づく治療に対する応答との関連性を決定した。
II.結果
II.1 乳癌細胞株におけるTTP、VEGF、及びIL8の発現
TTPタンパク質のレベルを、いくつかの乳癌細胞株:MDA231、Hs578T、MCF7、及びT47Dにおいて免疫ブロットによって解析した。MDA231及びHs578Tは、非常に高悪性度の細胞株であり、間葉系の表現型、(「トリプルネガティブ」表現型とも呼ばれる)エストロゲン並びにプロゲステロン受容体及びHER2受容体の発現の欠如によって特徴づけられる一方で、MCF7及びT47Dは、より悪性度の低い上皮系の表現型、HER2タンパク質の増幅がないエストロゲン及びプロゲステロン受容体の発現を有する(Eckert等、2004)。TTPタンパク質の期待されるサイズは、35kDaであるが、市販の抗体(Suswam等、2008、Al−Souhibani等2010)も「ハウス(house)」抗体(Essafi−Benkhadir等、2007)も使用した従来のSDS−PAGE免疫ブロット解析の間に45kDaから47kDaのバンドの形状で移動することが頻繁にある。2つの癌細胞株、MDA231及びHs578Tは、期待されたサイズのタンパク質を発現しなかったが、MCF7及びT47D細胞は、非腫瘍形成性の不死化した乳房の細胞株であるMCF10のものに匹敵するレベルで発現したということを観察した(図1A)。トリプルネガティブ細胞(MDA231及びHs578T)におけるVEGF及びIL8等の血管新生因子の、より悪性度の低い細胞株(MCF7及びT47D)よりも高い産生と、TTPタンパク質の発現の欠如が関連があるかどうかを調べた。そのためにも、4つの細胞株において、これらの因子のmRNAのレベルを定量的リアルタイムPCRによって決定し、さらに、分泌されたタンパク質のレベルをELISAによって決定した。MDA231及びHs578T細胞は、TTPタンパク質を発現しないが、mRNA及びタンパク質両方に関して大量のVEGF及びIL8を産生する(図1B及び1C)。これらのデータは、TTPレベルと乳腺腫瘍細胞の病原力との相互関係の基礎をなす。
II.2 TTPの発現の調節は、比較的に悪性度の低い又は非常に高悪性度の乳癌細胞において血管新生因子の発現に影響を与える
乳癌におけるTTPタンパク質と血管新生因子との相互関係を研究するために、Myc−エピトープのタグをつけたテトラサイクリン誘導TTP遺伝子を安定的に遺伝子導入したMDA231/TET−OFF細胞のクローンを作製した。HeLa/TTP細胞に対して以前に観察されたように、TET−OFFモデルは、細胞増殖に関与する遺伝子の研究に対してより適しており、さらに、偽陽性クローンの選択を回避する(Suswam等、2008)。テトラサイクリンの存在下では、TTPタンパク質は発現されない。培地からテトラサイクリンを除去することによって、TTP誘導が可能になる。TTPタンパク質の弱誘導性の発現を有した1つのクローン(PA15)、及び、高誘導性の発現を有した2つのクローン(PA1及びPA48)を得た(図2A)。VEGF及びIL8のmRNAの産生に対するTTPタンパク質の効果を示すために、定量的リアルタイムRT−PCRを実行し、VEGF及びIL8のmRNAの発現に対するTTPタンパク質の用量依存的な効果を観察した(図2B)。この実験によって、血管新生因子のmRNAのレベルの減少はTTPタンパク質のレベル次第であるということが確かめられている。
TTPタンパク質の発現と血管新生因子の産生との相互関係を評価するために、MDA231細胞に対して得たデータを、相補的なアプローチの手段、すなわち、タンパク質を正常に発現するMCF7乳癌細胞株におけるTTPタンパク質発現の不活性化(サイレンシング)によって確かめた。以前観察したように、MCF7細胞は上皮形態を有し、TTPタンパク質の明確に検出可能なレベルによって特徴づけられる。
2つの非依存的なsh−RNA(sh62.TTP及びsh65.TTP)を発現する2つのクローンは、対照(sh−ctrl)に対するTTP mRNAレベルの30%及び40%の減少をそれぞれ有する(図3A)。免疫ブロット解析は、TTPレベルにおける明白な減少を確かめている(図3B)。TTPタンパク質における減少と同時に、VEGF及びIL8のmRNAのレベルにおける増加を、sh62.TTP細胞及びsh65.TTP細胞において観察し、それによって、TTPレベルとVEGF及びIL8のレベルとの逆相関が確かめられる(図3C)。
II.3 乳癌細胞の増殖に対するTTPの効果
TTPタンパク質の発現によって調節することができる別の腫瘍形成表現型は、癌細胞の増殖速度である(Brennan等、2009)。それぞれ高レベル及び低レベルでTTPタンパク質を発現する2つのMDA231クローン(PA1及びPA15)において、増殖速度における減少は、TTPタンパク質の発現次第である(図4A)。MDA231クローンの増殖の間(4日間まで)に、神経膠腫又はHeLa細胞に対して観察されたように(Suswam等、2008、Brennan等、2009)、形態学的変化も細胞死又はアポトーシスにおける増加も注目することはなかった。さらに、安定なMCF7−TTPノックダウンクローン(sh62−TTP1及びsh65−TTP2)を使用して、増殖に対するTTPタンパク質発現の効果を確かめた。形態学的観点から、これらのクローンは、コロニーの形状で増殖する能力、上皮間葉転換におけるTTPタンパク質の損失の関与を実証し得る効果を有する(Gebeshuber等、2009)(図4B)。2つのクローン(sh62−TTP1及びsh65−TTP2)は、用量依存的TTPタンパク質の消失と相関した増殖速度における有意な増加を示した(図4C)。VEGF及びIL8のmRNAの発現に対して先に記載したように、増殖に対する用量依存的効果を観察した。
II.4 乳癌におけるTTP発現
全てを考慮した上で、本データは、2つの血管新生因子、VEGF及びIL8の産生、並びに、乳癌細胞増殖の調節におけるTTPタンパク質レベルの重大な役割を明白に指摘している。これらの結果は、乳癌におけるTTPタンパク質発現の頻繁な抑制を示す発表されたデータを明白に実証している。その結果、TTPタンパク質は、腫瘍の悪性度に対する予後因子として提案された(Brennan等、2009)。乳癌に対する予後因子としてTTPタンパク質発現速度を使用する可能性は非常に将来有望であるため、上記の乳癌細胞株におけるTTP mRNA及びTTPタンパク質レベルの相対量をテストし、mRNAのレベルとTTPタンパク質のレベルとの相互関係を示した。MCF7、MDA231、T47D、及びHs578T細胞をテストし、さらに、ヒト胚性腎臓細胞(HEK293)を、これらの細胞がTTPタンパク質の発現に対して負であるとして記載されてきた(Lay等、1999)ことを考慮に入れ、負の対照として使用した。図5Aにおいて示されているように、TTPタンパク質は、MCF7及びT47D細胞において明白に検出することができる一方で、HEK293、MDA231、及びHs578T細胞においては欠如しているか又は弱く発現されている。TTP mRNAを、ΔΔCT法を使用して解析した。MCF7細胞におけるmRNAレベルは、参照値(100%)としてみなした。最も低いTTP mRNAレベルを、MDA231細胞において発見し、有意なTTP mRNAレベルを、MCF7及びT47D細胞において検出した。意外にも、前記タンパク質を発現しないHs578T細胞が、検出可能なレベルのTTP mRNAを明白に有している(図5B)。これらのデータは、mRNAの発現レベルとTTPタンパク質の発現レベルとの相互関係の明らかな欠如を示している。この相互関係の欠如は、TTP mRNAのより短い半減期によるもの、又は、そのmRNAの翻訳レベルの相違によるものであり得る。
II.5 TTP遺伝子の遺伝子解析
Hs578T細胞におけるTTPタンパク質のレベルとmRNAのレベルとの相互関係の欠如を研究するために、ゲノムDNA上のTTPタンパク質をコードする領域を配列決定し、さらに、MCF7細胞のゲノムDNAを対照として使用した。アルギニンに対応するコドンを修飾してCGCをCGT(R103R)に形質転換する一塩基多型(SNP)を、Hs578T細胞において検出した(rs3746083=NM_003407.2:367C>T、rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)。乳癌を被る女性の群(92人:患者群)、及び、対照としての女性の群(89人:対照群)を研究することによって、症例対照研究を実行して、乳房発癌における367C>T変異体(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)が果たす役割を評価した。患者全てが、HER2遺伝子の増幅と共に非常に高悪性度の腫瘍を有し(HER2陽性)、症例全てを、HER2に対して作られたモノクローナル抗体であるHerceptin(登録商標)(トラスツズマブ)を用いて治療した(Hall等、2009)。患者群において13のrs3746083多型部位でのC/Tヘテロ接合体を同定し(T対立遺伝子の頻度=14.1%)、且つ、対照群において5つのrs3746083多型部位でのC/Tヘテロ接合体を同定した(T対立遺伝子の頻度=5.6%)。表1におけるrs3746083多型のC及びT対立遺伝子の対立遺伝子頻度は、患者群におけるT対立遺伝子の頻度の増加を明らかにしたが、統計学的有意性の閾値には達していない(カイ二乗検定p=0.095、Fisher検定を使用して確証p=0.080、OR=2.7、CI95%[0.9−10.3])。さらに、367C>T変異体(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)が、生存率等の他の臨床パラメータと付随し得るかどうかを調べた。生存率との相互関係は同定されなかった。しかし、rs3746083多型のT対立遺伝子の異なる分布を、Herceptin(登録商標)(トラスツズマブ)を用いた治療に対する患者の応答に関して観察した。表2において示されているように、rs3746083多型のT対立遺伝子は、Herceptin(登録商標)(トラスツズマブ)に耐性の患者の群において、統計学的に有意な値(カイ二乗検定p=0.010、Fisher検定を使用して確証p=0.0093、OR=8.0、CI95%[1.9−33.4])を有して、対照群よりも明瞭に高頻度であった。これらのデータは、TTPタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子に対するrs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在がTTPタンパク質発現に対して機能的効果を有し、さらに、トラスツズマブ(Herceptin(登録商標))治療に対する患者の差次的な反応に関連があるということを示している。
Figure 0006486683
Figure 0006486683
II.6 367C>T遺伝子変異体(NM_003407.2)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)の機能解析
遺伝子解析の間に得た結果を考慮して、367C>T変異体(NM_003407.2)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)が、Hs578T細胞において観察したmRNAのレベルとTTPタンパク質のレベルの間の相違の原因であり得るかどうかを調べた。第一に、367C>Tの変化(NM_003407.2)が、mRNAの安定性又はタンパク質の翻訳に干渉することによって遺伝子の発現に影響を与え得るかどうかを調べた(Sauna、2007)。Hs578T細胞から得たTTP cDNAのPCR解析は、これらの細胞における、MDA231細胞と比較して異常な別の転写物の存在を明らかにしなかった(図6A)。野生型(C対立遺伝子)(wt)も変異体対立遺伝子(T対立遺伝子)(var)も転写されたことを検証するために、rs3746083多型部位のヌクレオチドの同定を、一方で、酵素HhaIを用いた消化を解析することによって、もう一方で、Hs578T細胞から得たゲノムDNA及びcDNAから生じるPCR産物を配列決定することによって実行した。2つの技術によって、Hs578T細胞において、(rs3746083多型の)T対立遺伝子が、野生型(rs3746083多型の)C対立遺伝子よりも発現されたことが示された(図6A及び6B)。さらに、MFoldプログラム(http://rna.tbi.univie.ac.at/cgi−bin/RNAfold.cgi)を使用したTTP mRNA構造の予測解析によって、(rs3746083多型の)C対立遺伝子に対応するmRNA分子に対して、(rs3746083多型の)T対立遺伝子に対応するmRNA分子のより安定な二次構造が示された(図6C)。TTP mRNAの半減期は、MCF7及びMDA231の細胞において18分であり、さらに、Hs578T細胞においては21分である(図6D)。非常に安定なRNA構造は、対応するmRNAの翻訳レベルに影響を与え得るため、非常に安定及び豊富なmRNA分子は、より低いタンパク質レベルに付随し得ることを仮定した(Nackley等、2006)。この仮説を機能的にテストするために、in vitroでの転写/翻訳実験を、野生型対立遺伝子(rs3746083多型のC対立遺伝子)に対しても、変異体対立遺伝子(rs3746083多型のT対立遺伝子)に対してもタグをつけたTTPコンストラクトを使用して実行した。従って、野生型TTP遺伝子(wt)(rs3746083多型部位でのCヌクレオチドの存在)の翻訳レベルは、変異体TTP遺伝子(var)(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)よりも高い(図7A)。これらのデータを確かめるために、両方の全長コード領域(rs3746083多型の野生型C対立遺伝子及び変異体T対立遺伝子)を真核生物発現ベクターpcDNA4/TO/myc−Hisにおいてクローン化することによって実験モデルを開発し、TTP陰性HEK293細胞株における一過性導入まで進めた。ルシフェラーゼレポーター遺伝子を、遺伝子導入効率の制御として同時導入した。種々の量のTTPプラスミド(100、200、及び500ngのDNA/10細胞)を用いた実験を実行して、ルシフェラーゼ転写及び/又は安定性に影響を与えないか、又は、大量の細胞死を誘導しない最適なTTP濃度を決定した。細胞死に対する効果は観察されなかったが、500ngの遺伝子導入は、ルシフェラーゼ活性に有意に影響を与えたため、野生型コンストラクト(rs3746083多型のC対立遺伝子)に対しても、TTP変異体(rs3746083多型のT対立遺伝子)に対しても除外した。匹敵する遺伝子導入効率によって特徴づけられた試料のみを比較することによって、100又は200ngの発現プラスミドが遺伝子導入された場合に、野生型TTPプラスミド(rs3746083多型のC対立遺伝子)が変異体TTPプラスミド(rs3746083多型のT対立遺伝子)よりも多くの量のタンパク質を産生したということを示す(図7B)。
野生型(rs3746083多型のC対立遺伝子)コンストラクトと、変異体(rs3746083多型のT対立遺伝子)TTPコンストラクトとの差をさらに研究するために、機能解析を実行し、ルシフェラーゼレポーター遺伝子の下流でクローン化されるよく知られたTTPタンパク質の標的であるVEGF3’UTRに対する両方のプラスミドの効果をテストした(Essafi−Benkhadir等、2007)。HEK293細胞に野生型TTP遺伝子を遺伝子導入した場合に、対照(pcDNA4/TO/myc−His空のベクター)に対して、ルシフェラーゼ活性の減少を観察したが、TTPの変異型の遺伝子導入は、空のベクターの遺伝子導入後に得たものと同等のルシフェラーゼ活性を与えるということに留意する(図8A)。これらの結果を確認するために、内在性VEGF mRNAの半減期を、HEK293細胞において検証した。野生型TTPプラスミドの遺伝子導入の24時間後に有意な差を得た。TTPの変異型の遺伝子導入は、VEGF mRNAの半減期に対して有意に影響を与えなかった(図8B)。これらのデータを確かめるために、DRBを使用して転写を抑制し、さらに、サイクリンD1の発現を検証した。サイクリンD1mRNAは、TTPタンパク質の別の内在性標的である(Marderosian等、2006)。図8Cにおいて示されているように、3時間のDRB処置の後、サイクリンD1mRNAの量は、野生型TTP遺伝子の遺伝子導入後のみ減少し、TTPの変異型は効果を有さなかった。これらのデータ全てが、rs3746083多型のT対立遺伝子(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)に対応するTTP mRNAの形状は、in vitro及びin vivoで同じ効率で翻訳されず、より低いタンパク質レベルを生じたことを示している。rs3746083多型のT対立遺伝子(rs3746083多型部位でのTヌクレオチドの存在)に対応するTTP mRNAの存在は、より低いタンパク質レベルによって表され、標的mRNAの半減期の増加をもたらす。
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Claims (2)

  1. トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に対する患者の応答を予測するin vitro又はex vivoでの方法であって、
    i)前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質をコードする遺伝子の少なくとも1つの対立遺伝子、特に、両方の対立遺伝子に対して、rs3746083多型部位のヌクレオチドを同定するステップであり、前記rs3746083部位にてC/Cのホモ接合性を有する前記患者は、前記トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に対して応答性であると予測される、ステップ、及び/又は、
    ii)前記患者からの生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルを決定し、さらに、前記トリステトラプロリンタンパク質のレベルを少なくとも1つの参照値と比較するステップであり、前記生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、ステップii)においてトリステトラプロリンタンパク質のレベルが決定された腫瘍組織に隣接する健康な組織において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値、又は、トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に応答性の患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値である前記参照値以上である場合、前記患者は、前記トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に対して応答性であると予測されるか、又は、前記生物学的試料におけるトリステトラプロリンタンパク質のレベルが、トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に応答性ではない患者の群に対する、等価の生物学的試料において決定されたトリステトラプロリンタンパク質のレベルの平均値である前記参照値よりも有意に高い場合、前記患者は、前記トラスツズマブ又はペルツズマブを用いた治療に対して応答性であると予測される、ステップ、
    を含み、前記患者は、HER2陽性癌を被っている、方法。
  2. 前記患者は、HER2陽性乳癌を被っている、請求項1に記載の方法。
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