JP6382488B2 - Solid phase peptide synthesis via side chain bonds - Google Patents
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Description
本発明はペプチドの合成に関する。 The present invention relates to peptide synthesis.
要約
ポリマーに側鎖を介して取付けられたヒドロキシアミノ酸、ヒドロキシアミノ酸アミド、ヒドロキシアミノアルコール又はヒドロキシアミノ酸を含む小ペプチドを出発樹脂として使用する固相ペプチド合成により、高純度のペプチド及びぺプタイボル(peptaibol)が得られた。
High purity peptides and peptaibols by solid phase peptide synthesis using hydroxy amino acids, hydroxy amino acid amides, hydroxy amino alcohols or small peptides containing hydroxy amino acids attached to the summary polymer via side chains as starting resins was gotten.
定義及び略号
「Hya」又は「ヒドロキシルアミノ酸」は、ヒドロキシル(-OH)基を含むアミノ酸を意味する。
N−末端又はアミノ末端は、ペプチド鎖中の最初のアミノ酸である。
C−末端又はカルボキシ末端は、ペプチド鎖中の最後のアミノ酸であり、下記のように示される。
Definitions and abbreviations “Hya” or “hydroxyl amino acid” mean an amino acid containing a hydroxyl (—OH) group.
The N-terminus or amino terminus is the first amino acid in the peptide chain.
The C-terminus or carboxy terminus is the last amino acid in the peptide chain and is shown below.
「P」又は「固体支持体」又は「樹脂」は、アミノ酸又はペプチドと反応又は連結するのに適当な官能基を含む不溶性材料を意味する。当該固体支持体又は樹脂は、当業界においてよく知られている。 “P” or “solid support” or “resin” means an insoluble material containing functional groups suitable for reacting or linking with amino acids or peptides. Such solid supports or resins are well known in the art.
「アルキル」、例えばC1-10-アルキル又はC1-6-アルキルは、分岐した、または分岐していない、十分に飽和した非環式炭化水素基(すなわち、二重結合又は三重結合を含まない、炭素及び水素から構成される)を意味する。幾つかの態様において、アルキルは置換されていても置換されていなくてもよい。アルキルには、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、tert−ブチル、ペンチル、へキシル、などが含まれるがこれらに限定されず、そして幾つかの態様においてはそれらのそれぞれは場合によっては置換されていてもよい。アルキル置換基には、C1-3−アルコキシ、ハロゲン(F、Cl、Br又はI)、ニトロ、アミノ、-SH及び-OHが含まれるがこれらに限定されない。 “Alkyl”, for example C 1-10 -alkyl or C 1-6 -alkyl, is a branched or unbranched, fully saturated acyclic hydrocarbon group (ie containing double or triple bonds). Not composed of carbon and hydrogen). In some embodiments, the alkyl may be substituted or unsubstituted. Alkyl includes, but is not limited to, methyl, ethyl, propyl, isopropyl, butyl, isobutyl, tert-butyl, pentyl, hexyl, and the like, and in some embodiments each of them is optionally May be substituted. Alkyl substituents include, but are not limited to, C 1-3 -alkoxy, halogen (F, Cl, Br or I), nitro, amino, —SH and —OH.
「取付け」は、不溶性支持体へのアミノ酸又はペプチド若しくはペプチド誘導体の連結(linking)を意味する。
「Hse」はホモセリンを意味し、「Hnv」はヒドロキシルノルバリンを意味する。
「SPPS」又は「固相ペプチド合成」は、本明細書に記載されているような樹脂の使用を伴うペプチドの合成を意味する。
「pNA」は4−ニトロアニリドを意味する。
「DME」はジメトキシエタンを意味する。
“Attachment” means the linking of an amino acid or peptide or peptide derivative to an insoluble support.
“Hse” means homoserine and “Hnv” means hydroxyl norvaline.
“SPPS” or “solid phase peptide synthesis” means the synthesis of peptides with the use of a resin as described herein.
“PNA” means 4-nitroanilide.
“DME” means dimethoxyethane.
「酸感受性樹脂」は、アミノ酸又はペプチドとの反応又は連結に適する官能基を含む不溶性材料又は樹脂を意味し、これらは酸性処理によりペプチドから開裂されることができる。
「酸感受性保護基」は、酸性処理により又は酸性条件下でアミノ酸又はペプチド若しくはペプチド誘導体から開裂されうる保護基を意味する。
「ペプタイボル」(Peptaibol)は、ペプチドであってそのC−末端位置にアミノ酸又はアミノ酸アミドではなくアミノアルコールを含むものを意味する。
“Acid sensitive resin” means an insoluble material or resin containing functional groups suitable for reaction or linkage with an amino acid or peptide, which can be cleaved from the peptide by acidic treatment.
“Acid sensitive protecting group” means a protecting group that can be cleaved from an amino acid or peptide or peptide derivative by acidic treatment or under acidic conditions.
“Peptaibol” means a peptide that contains an amino alcohol rather than an amino acid or amino acid amide at its C-terminal position.
「段階的」(ステップ−バイ−ステップ;Step-by-step)は、ペプチド鎖中に含まれるアミノ酸のそれぞれが個別的に且つ逐次的に導入されるペプチド合成法を意味する。この方法は、中間精製工程を含んでも含まなくてもよい。
「保護されたペプチド」は、すべての官能基が保護基により保護されているか又はブロックされているペプチドを意味する。
「部分的に保護されたペプチド」は、少なくとも1個の官能基が保護基により保護されているか又はブロックされているペプチドを意味する。
“Step-by-step” means a peptide synthesis method in which each of the amino acids contained in the peptide chain is individually and sequentially introduced. This method may or may not include an intermediate purification step.
“Protected peptide” means a peptide in which all functional groups are protected or blocked by protecting groups.
“Partially protected peptide” means a peptide in which at least one functional group is protected or blocked by a protecting group.
固相ペプチド合成は伝統的に、C−末端アミノ酸のそのα−カルボキシル官能基を介しての適当な固体支持体への取付け、及び段々に成長するペプチド鎖におけるアミノ酸残基の逐次的付加によるペプチドのアミノ末端方向へのペプチド鎖の延長により行われる。数十万の発表及び特許がこの方法及びペプチド医薬の製造へのその適用を記載している。 Solid phase peptide synthesis traditionally involves the attachment of a C-terminal amino acid to its appropriate solid support via its α-carboxyl functional group, and the sequential addition of amino acid residues in a growing peptide chain. By extending the peptide chain in the direction of the amino terminus. Hundreds of thousands of publications and patents describe this method and its application to the production of peptide drugs.
C−末端カルボキシル官能基の取付けとは逆に、アミノ酸側鎖を介してのアミノ酸及びペプチドの適当な樹脂への取付け及びSPPSにおけるその応用が、非常に手短に、特に30未満の発表及び特許において記載されている。これらの発表の殆どが、Asp及びGluの側鎖カルボキシル官能基を介してのアミノ酸の取付けを記載している。 Contrary to the attachment of the C-terminal carboxyl functionality, attachment of amino acids and peptides to the appropriate resin via the amino acid side chain and its application in SPPS is very short, especially in less than 30 publications and patents. Have been described. Most of these publications describe the attachment of amino acids via the side chain carboxyl functionality of Asp and Glu.
本発明者の知識では、側鎖ヒドロキシル官能基を介してのアミノ酸の側鎖取付け及びペプチド合成における応用は限定されている:Fmoc-Hya-pNA(式A1)の側鎖取付け[A. Bernhardt, M. Drewello and M. Schutkowski, The solid-phase synthesis of side-chain-phosphorylated peptide-4-nitroanilides J. Peptide Res. 50, 1997. 143-152]及び短いニトロアニリド基質の合成のためのそれらの使用、環状ペプチド調製における応用のためのマイクロウエーブの助けによる2−クロロトリチル樹脂上でのFmoc-Hya-O‐アリルエステルの合成(式A2 [L. Rizzi, K. Cendic, N. Vaiana, S. Romeo, Alcohols immobilization onto 2-chlorotritylchloride resin under microwave irradiation, Tetrahedron Letters 52 (2011) 2808-2811 ])、及びTyr-フェノキシ官能基のMitsunobu酸化還元アルキル化によるベンジル型の樹脂上に取付けられたFmoc-Tyr-O-メチルエステルの合成(式A3 [C. Cabrele, M. Langer and A. G. Beck-Sickinger, Amino Acid Side Chain Attachment Approach and Its Application to the Synthesis of Tyrosine-Containing Cyclic Peptides, J. Org. Chem. 1999, 64, 4353-4361])及び短い環状ペプチドの合成のためのそれらの応用。 The inventor's knowledge has limited side chain attachment of amino acids via the side chain hydroxyl function and application in peptide synthesis: side chain attachment of Fmoc-Hya-pNA (formula A1) [A. Bernhardt, M. Drewello and M. Schutkowski, The solid-phase synthesis of side-chain-phosphorylated peptide-4-nitroanilides J. Peptide Res. 50, 1997. 143-152] and their use for the synthesis of short nitroanilide substrates Synthesis of Fmoc-Hya-O-allyl ester on 2-chlorotrityl resin with the aid of microwave for application in cyclic peptide preparation (formula A2 [L. Rizzi, K. Cendic, N. Vaiana, S. Romeo, Alcohols immobilization onto 2-chlorotritylchloride resin under microwave irradiation, Tetrahedron Letters 52 (2011) 2808-2811]) -O-methyl ester synthesis ( Formula A3 [C. Cabrele, M. Langer and AG Beck-Sickinger, Amino Acid Side Chain Attachment Approach and Its Application to the Synthesis of Tyrosine-Containing Cyclic Peptides, J. Org. Chem. 1999, 64, 4353-4361]) And their application for the synthesis of short cyclic peptides.
本発明者の知識では、Hse及びHypの側鎖取付けは開示されていない。更に、保護されたペプチド、保護されたペプチドフラグメント並びに保護されたペプチドアミド及びぺプタイボル(peptaibol)の固相合成のための酸感受性樹脂上に側鎖取付けされたHyaの応用は報告されていない。 The inventor's knowledge does not disclose Hse and Hyp side chain attachment. Furthermore, the application of Hya side chain mounted on acid sensitive resins for solid phase synthesis of protected peptides, protected peptide fragments and protected peptide amides and peptaibols has not been reported.
固相ペプチド合成
1つの態様において、医薬的に興味あるペプチド酸、ペプチドアミド、及びペプタイボル(peptaibol)の改良された合成が提供される。
Solid Phase Peptide Synthesis In one embodiment, an improved synthesis of pharmaceutically interesting peptide acids, peptide amides, and peptaibols is provided.
本発明の1つの観点において、ヒドロキシアミノ酸をそのアミノ酸側鎖を介して、又は配列中にヒドロキシアミノ酸を含む小ペプチドをトリチル又はベンズヒドリル型の樹脂上に取付けて式I〜IVのアミノ酸−樹脂接合体又はペプチド樹脂接合体を生じさせることにより、ペプチドが高い収率及び純度で非常に効果的に製造された。ここで、式I〜IV中、Pは、固相ペプチド合成において使用される支持体から選択され、Pr1は、H又はFmoc、Boc、Trt、Dde及びAllocから選択されるアミノ保護基であり、Pr2は、Trt、Clt、Mmt、Mtt、Dpm及びtBuから選択される酸感受性ヒドロキシ保護基であり、Hyaは、D- 若しくは L-Ser、Thr、Tyr、Hse、Hyp、Hnvなどから選択されるヒドロキシアミノ酸であり、そしてAは、OH、OTrt、OClt、OMmt、OMtt、ODpm及びOtBuから選択される酸感受性アルコキシ基、NH2、NHR1、NR1R2(ここで、R1及びR2は独立に、アルキル基又は配列中に1〜10個のアミノ酸を含む保護された若しくは半保護されたペプチドである。 In one aspect of the present invention, amino acid-resin conjugates of formulas I-IV with a hydroxy amino acid attached via its amino acid side chain or a small peptide containing a hydroxy amino acid in sequence on a trityl or benzhydryl type resin Alternatively, peptides were produced very effectively in high yield and purity by generating peptide resin conjugates. Here, in Formulas I-IV, P is selected from the support used in solid phase peptide synthesis and Pr 1 is an amino protecting group selected from H or Fmoc, Boc, Trt, Dde and Alloc. , Pr 2 is an acid sensitive hydroxy protecting group selected from Trt, Clt, Mmt, Mtt, Dpm and tBu, and Hya is selected from D- or L-Ser, Thr, Tyr, Hse, Hyp, Hnv, etc. And A is an acid-sensitive alkoxy group selected from OH, OTrt, OClt, OMmt, OMtt, ODpm and OtBu, NH 2 , NHR 1 , NR 1 R 2 (where R 1 and R 2 is independently an alkyl group or a protected or semi-protected peptide containing 1 to 10 amino acids in the sequence.
他の態様において、本発明者は、天然のヒドロキシアミノ酸に由来するアミノアルコールから選択される式III〜VI(式中、P、X、V、Z及びPr1は上に定義したとおりであり、R3及びR4はアルキル、アリール又はアラルキル基であり、そしてPr2はトリチル、ベンズヒドリル又はベンジル型の酸感受性保護基である)の樹脂結合アミノアルコールを用いる固相合成によりペプタイボル(peptraibol)例えばオクトレオチド(octreotide)が得られたことを開示する。 In other embodiments, the inventor has Formulas III-VI selected from amino alcohols derived from natural hydroxy amino acids, wherein P, X, V, Z and Pr 1 are as defined above; R 3 and R 4 are alkyl, aryl or aralkyl groups, and Pr 2 is a trityl, benzhydryl or benzyl type acid sensitive protecting group) by solid phase synthesis using a resin bound amino alcohol, such as peptraibol eg octreotide Disclose that (octreotide) was obtained.
更に、本件発明者は、式I〜IVの樹脂の応用により調製されたペプチドは、ヒドロキシアミノ酸の側鎖ヒドロキシル官能基を介してトリチル型の樹脂上に取付けられる場合、穏和な酸性処理により当該樹脂から開裂されることができ、そしてこの場合tBu及びベンジル型の側鎖保護基はそのまま残ることを最初に開示する。1つの観点において、樹脂からの開裂は、1〜3%の酸溶液、例えばTFA、希釈HCl溶液による処理により、場合によっては溶剤中スカベンジャーを添加して生じさせる。1つの観点において、開裂は、溶剤、例えばDCM又はアセトン中で行うことができる。そのような部分的に保護されたペプチドは、溶液中又は固相上でのフラグメント縮合による更に長いペプチドの合成において有用であることが見出された。本発明の方法は、この明細書に記載される樹脂の応用の多様性を拡張し、そしてまた、得られる医薬ペプチド純度に有意な改良をもたらし、そして同時にそれらの合成のコストを実質的に低下させる。 Furthermore, the present inventors have found that when a peptide prepared by application of a resin of formulas I-IV is attached on a trityl-type resin via the side chain hydroxyl function of a hydroxy amino acid, the resin is subjected to mild acid treatment. It is first disclosed that tBu and benzyl-type side chain protecting groups remain intact. In one aspect, cleavage from the resin occurs by treatment with a 1-3% acid solution such as TFA, dilute HCl solution, optionally with the addition of a scavenger in a solvent. In one aspect, the cleavage can be performed in a solvent such as DCM or acetone. Such partially protected peptides have been found useful in the synthesis of longer peptides by fragment condensation in solution or on the solid phase. The method of the present invention extends the versatility of application of the resins described herein, and also provides a significant improvement in the purity of the resulting pharmaceutical peptides and at the same time substantially reduces the cost of their synthesis. Let
医薬的に興味ある若干のペプチドが、この明細書に記載される新規な方法の代表として、溶液中及び固相上での段階的(ステップ−バイ−ステップ)方法又はフラグメント縮合、あるいはそれらの組合せにより製造された。下記の例は代表例であり、他のペプチドへの応用はなんら限定されない。 Some peptides of pharmaceutical interest represent step-by-step methods or fragment condensation in solution and on the solid phase, or combinations thereof, as representative of the novel methods described herein Manufactured by. The following examples are representative examples, and application to other peptides is not limited at all.
ランレオチド(Lanreotide):
1つの態様において、ランレオチドは、下記に示すように、樹脂に結合したThr-アミドを用いた固相合成によって製造された。
Lanreotide :
In one embodiment, lanreotide was produced by solid phase synthesis using a resin-bound Thr-amide as shown below.
ヒトインスリンB鎖:
任意には、ヒトインスリンB鎖は、SPPSにより合成された。1つの観点において、合成は、4−メトキシベンズヒドリル樹脂を用いて、実施例に記載されるような樹脂に結合したThr-t-ブチルから始まる。任意には、合成はまた、固相上で1−8部分保護されたBoc-Phe-Val-Asn(Trt)-Gln(Trt)-His(Trt)-Leu-Cys(Trt)-Gly-OH フラグメントを樹脂に結合した9−30フラグメントとの縮合により行うことができ、或いは部分的に保護された9−30フラグメントの樹脂からの開裂の後、1−8フラグメント及び9−30フラグメントの溶液中での縮合により行うことができる。
Human insulin B chain :
Optionally, human insulin B chain was synthesized by SPPS. In one aspect, the synthesis begins with Thr-t-butyl coupled to a resin as described in the Examples using 4-methoxybenzhydryl resin. Optionally, the synthesis also includes 1-8 partially protected Boc-Phe-Val-Asn (Trt) -Gln (Trt) -His (Trt) -Leu-Cys (Trt) -Gly-OH on the solid phase. The fragment can be performed by condensation with a 9-30 fragment attached to the resin, or after cleavage of the partially protected 9-30 fragment from the resin, in a solution of 1-8 and 9-30 fragments Can be carried out by condensation.
サケカルシトニン:
任意には、サケカルシトニンは、樹脂に結合したFmoc-Thr-Pro-NH2からの合成を開始することにより製造することができる。次に、ペプチド鎖はFmoc-アミノ酸を用いて延長される。
Salmon calcitonin :
Optionally, salmon calcitonin can be produced by initiating synthesis from Fmoc-Thr-Pro-NH 2 bound to a resin. The peptide chain is then extended using Fmoc-amino acids.
任意には、樹脂に結合したサケカルシトニンは、2〜4フラグメントを用いて、上に示すように樹脂上での、又は下に示すように溶液中での、フラグメント縮合により製造される。 Optionally, salmon calcitonin bound to the resin is prepared by fragment condensation on the resin as shown above or in solution as shown below, using 2-4 fragments.
オクトレオチド(Octreotide):
他の態様において、オクトレオチドは、下に示すようにスレオニノール(threoninol )の側鎖を介しての4−メトキシベンズヒドリル樹脂へのFmoc-threoninol-OTrt の取付け、それに続くFmoc-アミノ酸を用いてのオクトレオチド鎖の集合、及び最後に逐次的又は同時的Cys−酸化を用いる樹脂からのオクトレオチドの開裂により効率的に合成された。Fmoc-スレオニノール-OTrtは、適当な樹脂上のスレオニノールのヒドロキシメチル基を介して樹脂上に取付けられ得るFmoc-Thr(tBu)-オールに比べて非常に製造しやすい。この理由は、Fmoc-Thr(tBu)-オールの製造のための出発材料として使用されるH-Thr(OtBu)-オールが、樹脂上への側鎖を介してのスレオニノールの取付けに使用されるFmoc-スレオニノール-OTrtに比べて非常に製造しにくいからである。
Octreotide :
In another embodiment, octreotide is attached to Fmoc-threoninol-OTrt to 4-methoxybenzhydryl resin via the side chain of threoninol as shown below, followed by Fmoc-amino acid It was efficiently synthesized by assembly of octreotide chains and finally cleavage of octreotide from the resin using sequential or simultaneous Cys-oxidation. Fmoc-threoninol-OTrt is much easier to manufacture than Fmoc-Thr (tBu) -ol, which can be mounted on the resin via the hydroxymethyl group of threoninol on a suitable resin. This is because H-Thr (OtBu) -ol, which is used as a starting material for the production of Fmoc-Thr (tBu) -ol, is used to attach threoninol via a side chain onto the resin. This is because it is very difficult to produce compared to Fmoc-threoninol-OTrt.
エキセナチド(Exenatide):
他の例において、Fmoc-Ser-NH2は、その側鎖を介してトリチル樹脂に取付けられ、そしてエキセナチドの合成のために使用される。この合成は、下記のように、穏和な酸性処理による樹脂からの、部分的の保護されたエキセナチドフラグメントの開裂の後に溶液中で又は固相上で、段階的(ステップ−バイ−ステップ)態様により、又はフラグメント縮合により、実施することができる。この方法によれば、多くのPro及びGly残基を含むペプチドの合成の間に典型的に生成される殆どの不純物が完全に回避され、そして高純度のペプチドが得られる。この方法はまた、当業界において知られている他の方法を用いるペプチドアミドリンカーからのペプチドの開裂から生ずる不純物の完全な回避を可能にする。上記の当業界で知られている方法は、ペプチドの収率及び純度を有意に低下させる。
Exenatide :
In other examples, Fmoc-Ser-NH 2 is attached to the trityl resin via its side chain and used for the synthesis of exenatide. This synthesis is performed in a step-by-step manner, either in solution or on solid phase after cleavage of the partially protected exenatide fragment from the resin by mild acid treatment, as described below. Or by fragment condensation. According to this method, most impurities typically produced during the synthesis of peptides containing many Pro and Gly residues are completely avoided and high purity peptides are obtained. This method also allows complete avoidance of impurities resulting from cleavage of the peptide from the peptide amide linker using other methods known in the art. The above-described methods known in the art significantly reduce peptide yield and purity.
1つの観点において、エキセナチドは、部分的に保護されたペプチド12−39を樹脂から開裂させ、そしてそれを、下に示すように溶液中で、部分的に保護された1−11フラグメントと縮合させることにより製造することができる。或いは、フラグメント1−13及びフラグメント14−39を用いて縮合を行い、保護されたエキセナチドを得ることができる。 In one aspect, exenatide cleaves partially protected peptide 12-39 from the resin and condenses it with the partially protected 1-11 fragment in solution as shown below. Can be manufactured. Alternatively, condensation can be performed using fragment 1-13 and fragment 14-39 to give the protected exenatide.
プラムリンチド(Pramlintide):
この方法はまた、アミリン(amylin)ペプチドの製造においても非常に効果的に使用される。1つの観点において、アミリン又はその誘導体、例えばプラムリンチドのC−末端Ser、Thr又はTyr残基の1つを用いて側鎖の取付けを行うことができる。合成は、溶液中又は固相上での段階的(ステップ−バイ−ステップ)態様により又はフラグメント縮合により行うことができる。シュードプロリン(pseudoprolines)(Ψ, Mutter et al, Peptide Res. (1995 8, 145) を参照のこと)を成長中のペプチド鎖に導入することにより、合成が加速され、そして得られるペプチドの純度が改良される。
Pramlintide :
This method is also very effectively used in the production of amylin peptides. In one aspect, side chain attachment can be accomplished using one of the C-terminal Ser, Thr or Tyr residues of amylin or its derivatives, such as pramlintide. The synthesis can be carried out in a step-by-step manner in solution or on the solid phase or by fragment condensation. By introducing pseudoprolines (see Ψ, Mutter et al, Peptide Res. (1995 8, 145)) into the growing peptide chain, synthesis is accelerated and the purity of the resulting peptide is increased. Improved.
或いは、プラムリンチドの合成は、プラムリンチドの純度及び収率に関して同様の成功をもって、液相中で行うことができる。1つの態様において、Fmoc-Tyr-NH2の側鎖を介して樹脂の結合した保護されたペプチドは、tBu−型の側鎖保護基をそのまま残して、穏和な酸性処理を用いてペプチド鎖の種々の位置で、樹脂から定量的に開裂させることができる。1つの例において、下に示すように、2−クロロトリチル樹脂上で調製された部分的に保護された1−10フラグメントが、部分的に保護された11−37フラグメントアミドと、段階的(ステップ−バイ−ステップ)態様で成功裏に縮合された。 Alternatively, the synthesis of pramlintide can be performed in the liquid phase with similar success with respect to the purity and yield of pramlintide. In one embodiment, the protected peptide bound by the resin via the side chain of Fmoc-Tyr-NH 2 is used to leave the tBu-type side chain protecting group intact and use mild acid treatment to remove the peptide chain. It can be cleaved quantitatively from the resin at various locations. In one example, as shown below, a partially protected 1-10 fragment prepared on 2-chlorotrityl resin is converted to a partially protected 11-37 fragment amide in a stepwise (step Successfully condensed in a (by-step) manner.
プラムリンチド(Pramlintide):
テトラコサクチド(Tetracosactide)(ACTH 1-24):
他の例において、下に示すように、ACTH 1-24が、樹脂に結合したFmoc-Tyr-Pro-OtBuから出発して段階的(ステップ−バイ−ステップ)方法により、或いは部分的に保護された1−10フラグメントを溶液中で11−24フラグメントと、又は樹脂の結合した11−24フラグメントと縮合させることにより効果的に調製された。
Tetracosactide (ACTH 1-24) :
In other examples, as shown below, ACTH 1-24 is protected by a stepwise (step-by-step) method or partially starting from resin-bound Fmoc-Tyr-Pro-OtBu. 1-10 fragments were effectively prepared by condensing in solution with 11-24 fragments or resin-bound 11-24 fragments.
ビバリルジン(Bivalirudin):
他の例において、下に示すように、ビバリルジンが、樹脂に結合したFmoc-Tyr-Leu-OtBuから出発して、Fmoc-アミノ酸により段階的(ステップ−バイ−ステップ)態様でペプチド鎖を延長し、最後に脱保護し、そしてペプチドを樹脂から開裂させることにより、高収量で且つ高純度で製造された。
Bivalirudin :
In other examples, as shown below, bivalirudin extends the peptide chain in a step-by-step manner with Fmoc-amino acids starting from resin-bound Fmoc-Tyr-Leu-OtBu. Finally, it was produced in high yield and purity by deprotecting and cleaving the peptide from the resin.
或いは、ビバリルジンは、保護されたフラグメントを樹脂上で縮合させることにより、或いは4〜15アミノ酸残基を含む部分的に保護されたペプチドを樹脂から開裂させ、そしてそれを5〜16アミノ酸を含むビバリルジンフラグメントと溶液中で縮合させることにより得られた。部分的に保護された1−10ビバリルジンフラグメントと、樹脂に結合した部分的に保護された11−20ビバリルジンフラグメントとの、樹脂上でのフラグメント縮合によるビバリルジンの合成を下に記載する。 Alternatively, bivalirudin can be obtained by condensing a protected fragment on the resin, or by cleaving a partially protected peptide containing 4-15 amino acid residues from the resin and making it contain 5-16 amino acids. It was obtained by condensing with rubine fragments in solution. Synthesis of bivalirudin by fragment condensation on a resin between a partially protected 1-10 bivalirudin fragment and a partially protected 11-20 bivalirudin fragment attached to the resin is described below. .
実施例1.Example 1.
Fmoc-Thr(4-メトキシベンズヒドリルポリスチリル)-OtBuの調製Preparation of Fmoc-Thr (4-methoxybenzhydrylpolystyryl) -OtBu
H-Thr-OtBuとFmoc-OSuとの常法に従う反応により調製した30 mmolのFmoc-Thr-OtBuを、20 g(30 mmol)の4−メトキシベンズヒドリルポリスチレン樹脂(CBL-Patrasの製品)及び60 mmolのDIPEAと、250 mlのTHF中で10時間、室温にて反応させた。次に、この混合物に60 mmolのメタノールを添加し、そしてこの混合物を更に4時間振盪した。樹脂を濾過し、そしてTHF/MeOH/DIPEA (85:10:5)により3回、DMFにより6回、IPAにより4回、DEEにより3回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.95 mmol/g 樹脂の負荷をもって、29 gの樹脂結合Fmoc-Thr-OtBuを得た。 30 mmol of Fmoc-Thr-OtBu prepared by a conventional reaction between H-Thr-OtBu and Fmoc-OSu, and 20 g (30 mmol) of 4-methoxybenzhydrylpolystyrene resin (CBL-Patras product) And 60 mmol of DIPEA in 250 ml of THF for 10 hours at room temperature. Next, 60 mmol of methanol was added to the mixture and the mixture was shaken for an additional 4 hours. The resin was filtered and washed 3 times with THF / MeOH / DIPEA (85: 10: 5), 6 times with DMF, 4 times with IPA, 3 times with DEE and vacuum dried to constant weight. 29 g of resin-bound Fmoc-Thr-OtBu was obtained with a loading of 0.95 mmol / g resin.
実施例2.Example 2.
Fmoc-Thr(4-メトキシベンズヒドリルポリスチリル)-O-CltFmoc-Thr (4-Methoxybenzhydrylpolystyryl) -O-Clt
H-Thr-OMeとTrt-Cl/Me3SiCl及びDIPEAとの常法に従う反応により調製した30 mmolのTrt-Thr-OMeを、20 g(30 mmol)の4−メトキシ4’ポリスチリルベンズヒドリルブロミド樹脂(CBL-Patrasの製品)及び60 mmolのDIPEAと、250 mlのTHF中で10時間、室温にて反応させた。次に、この混合物に60 mmolのメタノールを添加し、そしてこの混合物を更に4時間振盪した。樹脂を濾過し、そしてTHF/MeOH/DIPEA (85:10:5)により3回、DCMにより3回、DCM中1% TFAにより3回、THFにより4回、THF/水/メタノール(70:15:15)中1N-LiOHにより3回、THF/水(75:25)により3回、DMFにより4回洗浄し、そして次に室温にて2時間、60 mmolのFmoc-OSu及び30 mmolのDIPEAと反応させ、DMFにより3回、DCMにより3回洗浄し、そして次に、室温にて3時間50 mmolのTrt-Cl及び50 mmolのDIPEAと反応させ、DMFにより4回、DEEにより6回洗浄し、そして一定重量に真空乾燥した。0.78 mmol/g樹脂の負荷をもって、32.3 gの樹脂結合Fmoc-Thr-OtBuを得た。 30 mmol of Trt-Thr-OMe prepared by a conventional reaction of H-Thr-OMe with Trt-Cl / Me 3 SiCl and DIPEA was converted into 20 g (30 mmol) of 4-methoxy 4 ′ polystyrylbenzhi The reaction was performed with drill bromide resin (CBL-Patras product) and 60 mmol DIPEA in 250 ml THF for 10 hours at room temperature. Next, 60 mmol of methanol was added to the mixture and the mixture was shaken for an additional 4 hours. The resin was filtered and three times with THF / MeOH / DIPEA (85: 10: 5), three times with DCM, three times with 1% TFA in DCM, four times with THF, THF / water / methanol (70:15 : 15) 3 times with 1N-LiOH, 3 times with THF / water (75:25), 4 times with DMF and then 2 hours at room temperature for 2 hours, 60 mmol Fmoc-OSu and 30 mmol DIPEA And then washed 3 times with DMF, 3 times with DCM, and then reacted with 50 mmol Trt-Cl and 50 mmol DIPEA for 3 hours at room temperature, washed 4 times with DMF and 6 times with DEE. And vacuum dried to constant weight. With a load of 0.78 mmol / g resin, 32.3 g of resin bound Fmoc-Thr-OtBu was obtained.
実施例3. Fmoc-Throl(4-メトキシベンズヒドリルポリスチリル)-O-Clt
A)Fmoc-スレオニノールから出発
A) Depart from Fmoc-threoninol
350 mlのDCM中50 mmolの市販のFmoc-スレオニノール(CBL-Patras)を、55 mmolのモノマーClt-Cl及び55 mmolのDIPEAと、室温にて4時間反応させた。得られた混合物を通常通り水で抽出し、そしてDCM相を無水硫酸ナトリウム上で乾燥しそして濾過した。生じた溶液に、30 gの4−メトキシ,4−ポリスチリルベンズヒドリルブロミド(CBL-Patras)及び50 mmolのDIPEAを添加し、そして生ずる混合物を室温にて4時間撹拌した。樹脂を濾過し、そしてDMFにより6回、IPAにより4回及びDEEにより4回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.82 mmol/gの負荷をもって、38.4 gの樹脂結合Fmoc-スレオニノールを得た。 50 mmol of commercial Fmoc-threoninol (CBL-Patras) in 350 ml DCM was reacted with 55 mmol monomer Clt-Cl and 55 mmol DIPEA at room temperature for 4 hours. The resulting mixture was extracted with water as usual and the DCM phase was dried over anhydrous sodium sulfate and filtered. To the resulting solution was added 30 g 4-methoxy, 4-polystyryl benzhydryl bromide (CBL-Patras) and 50 mmol DIPEA and the resulting mixture was stirred at room temperature for 4 hours. The resin was filtered and washed 6 times with DMF, 4 times with IPA and 4 times with DEE, and vacuum dried to constant weight. With a load of 0.82 mmol / g, 38.4 g of resin-bound Fmoc-threoninol was obtained.
B)Trt-Thr(Resin)-OMeから出発
常法に従ってH-Thr-OMeとTrt-Cl/Me3SiCl及びDIPEAとの反応により調製された30 mmolのTrt-Thr-OMeを、20 g (30 mmolの4−メトキシ4’−ポリスチリルベンズヒドリルブロミド樹脂(CBL-Patrasの製品)及び60 mmolのDIPEAと、250 mlのTHF中で、室温にて10時間反応させた。次に、この混合物に60 mmolのメタノールを添加し、そして混合物を更に4時間撹拌した。樹脂を濾過し、そしてTHF/MeOH/DIPEA (85:10:5)により3回、THFにより5回洗浄し、そしてTHF中30 mmolのLiBH4と反応させた。 30 mmol of Trt-Thr-OMe prepared by the reaction of H-Thr-OMe with Trt-Cl / Me 3 SiCl and DIPEA according to a conventional method was added to 20 g (30 mmol of 4-methoxy4′-polystyrylbenz Reaction with hydryl bromide resin (CBL-Patras product) and 60 mmol DIPEA in 250 ml THF for 10 hours at room temperature, then 60 mmol methanol was added to the mixture and the mixture The resin was filtered and washed 3 times with THF / MeOH / DIPEA (85: 10: 5), 5 times with THF and reacted with 30 mmol LiBH 4 in THF.
次に、樹脂を濾過し、そしてTHFにより6回、DCMにより4回、DCM中1%TFAにより6回、DMF/DIPEA(97:3)により3回洗浄し、そして次に室温にて2時間、60 mmolのFmoc-OSu及び30 mmolのDIPEAと反応させ、DMFにより3回、DCMにより3回洗浄し、そして次に室温にて3時間、50 mmolのClt-Cl及び50 mmol DIPEAと反応させ、DMFにより4回、IPAにより6回及びDEEにより6回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.74 mmol/g樹脂の負荷をもって、34.7 gの樹脂結合Fmoc-Throl-O-Cltを得た。 The resin is then filtered and washed 6 times with THF, 4 times with DCM, 6 times with 1% TFA in DCM, 3 times with DMF / DIPEA (97: 3) and then 2 hours at room temperature. , Reacted with 60 mmol Fmoc-OSu and 30 mmol DIPEA, washed 3 times with DMF, 3 times with DCM and then reacted with 50 mmol Clt-Cl and 50 mmol DIPEA for 3 hours at room temperature. Washed 4 times with DMF, 6 times with IPA and 6 times with DEE and vacuum dried to constant weight. With a loading of 0.74 mmol / g resin, 34.7 g of resin-bound Fmoc-Throl-O-Clt was obtained.
実施例4. Fmoc-Ser(トリチル樹脂)-NH 2
当業界において知られている標準的手順により調製された50 mmolのFmoc-Ser-NH2を、0.5リットルのDCMに溶解した。この懸濁液に、30 gのトリチルクロリド樹脂(36 mmol)及び65 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を室温にて6時間撹拌した。次々と25 mlのメタノール及び30 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を、更に室温にて2時間撹拌した。次に、樹脂を濾過し、そしてDCM/MeOH/DIPEA(90:5:5)により3回、DMFにより5回、IPAにより4回、DEEにより4回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.71 mmol/gの負荷をもって、41.1 gのFmoc-Ser-NH2-含有樹脂を得た。
Example 4. Fmoc-Ser (trityl resin) -NH 2
50 mmol Fmoc-Ser-NH 2 prepared by standard procedures known in the art was dissolved in 0.5 liter DCM. To this suspension, 30 g of trityl chloride resin (36 mmol) and 65 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred at room temperature for 6 hours. In succession 25 ml of methanol and 30 mmol of DIPEA were added and the mixture was further stirred at room temperature for 2 hours. The resin was then filtered and washed 3 times with DCM / MeOH / DIPEA (90: 5: 5), 5 times with DMF, 4 times with IPA, 4 times with DEE and vacuum dried to constant weight. 41.1 g Fmoc-Ser-NH 2 -containing resin was obtained with a load of 0.71 mmol / g.
実施例5. Fmoc-Tyr(2-クロロトリチル樹脂)-NH 2
上記の手順に従って、50 mmolのFmoc-Tyr-NH2及び30 gの2-CTCクロリド樹脂から、0.81 g Tyr/g樹脂の負荷をもって、43.7 gの樹脂を得た。
Example 5. Fmoc-Tyr (2-chlorotrityl resin) -NH 2
According to the above procedure, 43.7 g of resin was obtained from 50 mmol Fmoc-Tyr-NH 2 and 30 g 2-CTC chloride resin with a loading of 0.81 g Tyr / g resin.
実施例6. Fmoc-Hyp(4-メチルベンズヒドリル樹脂)-NH 2
上記の手順に従って、50 mmolのFmoc-Hyp-NH2及び30 gの4−メチルベンズヒドリルブロミド樹脂から、0.49 g Hyp/g樹脂の負荷をもって、39.8 gの樹脂を得た。
Example 6. Fmoc-Hyp (4-methylbenzhydryl resin) -NH 2
Following the above procedure, 39.8 g of resin was obtained from 50 mmol Fmoc-Hyp-NH 2 and 30 g 4-methylbenzhydryl bromide resin with a loading of 0.49 g Hyp / g resin.
実施例7. Fmoc-Thr(4-メトキシベンズヒドリル樹脂)-Pro-NH 2
当業界において知られている標準的手順に従ってFmoc-Thr(tBu)-OHとH-Pro-NH2とのカップリングにより調製された50 mmolのFmoc-Thr-Pro-NH2を、0.5リットルDMEに溶解した。得られた溶液に、30 gの4−メトキシベンズヒドリルブロミド樹脂(45 mmol)及び65 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を室温にて6時間撹拌した。次に、25 mlのメタノール及び50 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を室温にて2時間撹拌した。次に樹脂を濾過し、そしてDME/MeOH/DIPEA(90:5:5)により3回、DMFにより5回、IPAにより4回、DEEにより4回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.77 mmol/gの負荷をもって、44.5 gのFmoc-Thr-Pro-NH2含有樹脂を得た。
Example 7. Fmoc-Thr (4-methoxybenzhydryl resin) -Pro-NH 2
50 mmol Fmoc-Thr-Pro-NH 2 prepared by coupling Fmoc-Thr (tBu) -OH and H-Pro-NH 2 according to standard procedures known in the art, 0.5 liter DME Dissolved in. To the resulting solution, 30 g of 4-methoxybenzhydryl bromide resin (45 mmol) and 65 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred at room temperature for 6 hours. Then 25 ml methanol and 50 mmol DIPEA were added and the mixture was stirred at room temperature for 2 hours. The resin was then filtered and washed 3 times with DME / MeOH / DIPEA (90: 5: 5), 5 times with DMF, 4 times with IPA, 4 times with DEE and vacuum dried to constant weight. With a load of 0.77 mmol / g, 44.5 g of Fmoc-Thr-Pro-NH 2 containing resin was obtained.
実施例8. Fmoc-Tyr(2-クロロトリチル樹脂)-Pro-OtBu
当業界において知られている標準的手順に従って、50 mmolのFmoc-Tyr-Pro-OtBuを調製し、0.5リットルのDCMに溶解した。得られた溶液に、30 gの2−クロロトリチルクロリド樹脂(48 mmol)及び65 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を室温にて12時間撹拌した。次に、25 mlのメタノール及び50 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を更に2時間室温にて撹拌した。次に樹脂を濾過し、そしてDCM/MeOH/DIPEA(90:5:5)により3回、DMFにより5回、IPAにより4回、DEEにより4回洗浄し、そして一定重量まで真空乾燥した。0.64 mmol/gの負荷をもって、44.5 gのFmoc-Tyr-Pro-OtBu含有樹脂を得た。
Example 8. Fmoc-Tyr (2-chlorotrityl resin) -Pro-OtBu
50 mmol Fmoc-Tyr-Pro-OtBu was prepared and dissolved in 0.5 liter DCM according to standard procedures known in the art. To the resulting solution, 30 g of 2-chlorotrityl chloride resin (48 mmol) and 65 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred at room temperature for 12 hours. Then 25 ml of methanol and 50 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred for another 2 hours at room temperature. The resin was then filtered and washed 3 times with DCM / MeOH / DIPEA (90: 5: 5), 5 times with DMF, 4 times with IPA, 4 times with DEE and vacuum dried to constant weight. 44.5 g of Fmoc-Tyr-Pro-OtBu-containing resin was obtained with a load of 0.64 mmol / g.
実施例9. Fmoc-Tyr(2-クロロトリチル樹脂)-Leu-OtBu
当業界において知られている標準的手順に従って調製した50 mmolのFmoc-Tyr-Leu-OtBuを、0.5リットルのTHFに溶解した。得られた溶液に、30 gの2-CTCクロリド樹脂(48 mmol)及び65 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を60℃にて12時間撹拌した。次に、25 mlのメタノール及び50 mmolのDIPEAを添加し、そしてこの混合物を室温にて更に2時間撹拌した。次に樹脂を濾過し、そしてDCM/MeOH/DIPEA(90:5:5)により3回、DMFにより5回、IPAにより4回、DEEにより4回洗浄し、そして一定重量に真空乾燥した。0.64 mmol/gの負荷をもって、44.5 gのFmoc-Tyr-Leu-OtBu含有樹脂を得た。
Example 9. Fmoc-Tyr (2-chlorotrityl resin) -Leu-OtBu
50 mmol Fmoc-Tyr-Leu-OtBu prepared according to standard procedures known in the art was dissolved in 0.5 liter THF. To the resulting solution, 30 g of 2-CTC chloride resin (48 mmol) and 65 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred at 60 ° C. for 12 hours. Then 25 ml of methanol and 50 mmol of DIPEA were added and the mixture was stirred at room temperature for a further 2 hours. The resin was then filtered and washed 3 times with DCM / MeOH / DIPEA (90: 5: 5), 5 times with DMF, 4 times with IPA, 4 times with DEE and vacuum dried to constant weight. With a load of 0.64 mmol / g, 44.5 g of Fmoc-Tyr-Leu-OtBu-containing resin was obtained.
実施例10. ペプチド及び保護されたペプチドセグメントの固相合成
一般的手順
A1. 負荷された2−クロロトリチル樹脂の調製 一般的手順
2−クロロトリチルクロリド樹脂(CTC-Cl)(100 g;負荷1.6 mmol/g)(CBL-Patras)を、2Lのペプチド合成反応器に入れ、そして700 mLのジクロロメタン(DCM):ジメチルホルムアミド(DMF)1:1により25℃にて30分間膨潤させる。樹脂を濾過し、そして500 mLのDCM中100 mmolのFmoc-アミノ酸及び300 mmolのジイソプロピルエチルアミン(DIEA)の溶液を添加する。この混合物を25℃にて2時間窒素の下で撹拌する。
Example 10 Solid Phase Synthesis of Peptides and Protected Peptide Segments
General procedure
A1. Preparation of Loaded 2-Chlorotrityl Resin General Procedure 2-Chlorotrityl chloride resin (CTC-Cl) (100 g; load 1.6 mmol / g) (CBL-Patras) into a 2 L peptide synthesis reactor And swell with 700 mL of dichloromethane (DCM): dimethylformamide (DMF) 1: 1 at 25 ° C. for 30 minutes. The resin is filtered and a solution of 100 mmol Fmoc-amino acid and 300 mmol diisopropylethylamine (DIEA) in 500 mL DCM is added. The mixture is stirred at 25 ° C. for 2 hours under nitrogen.
次に、2-CTC樹脂の残っている活性部位を、10 mLのメタノール(MeOH)の添加及び1時間の反応により中和する。樹脂を濾過し、そして400 mLのDMFにより2回洗浄する。樹脂を濾過し、そしてDMF中25体積%のピペリジン500 mLにより30分間で2回洗浄する。次に樹脂を、500 mLのDMFにより4回処理する。樹脂を、500 mLのイソプロパノール(IPA)による3回の洗浄によって解膨潤する。樹脂を一定重量に乾燥する。この樹脂に、使用したアミノ酸のmmolの70〜95%が結合した。 The remaining active sites of the 2-CTC resin are then neutralized by addition of 10 mL of methanol (MeOH) and reaction for 1 hour. The resin is filtered and washed twice with 400 mL DMF. The resin is filtered and washed twice with 500 mL of 25% by volume piperidine in DMF for 30 minutes. The resin is then treated 4 times with 500 mL DMF. The resin is de-swelled by three washes with 500 mL isopropanol (IPA). Dry the resin to constant weight. To this resin, 70-95% of the mmol of amino acid used was bound.
B. 固相合成 一般的プロトコール
パートA又は実施例1に記載したように、トリチル若しくはベンズヒドリル型の樹脂にエステル化された又は側鎖を介して取付けられた1.0gのアミノ酸又はペプチドを用いて、24℃にて固相合成を実施した。合成においては下記のプロトコールを使用した。
B. Solid Phase Synthesis As described in General Protocol Part A or Example 1, using 1.0 g amino acid or peptide esterified or attached via a side chain to a trityl or benzhydryl type resin Solid phase synthesis was performed at The following protocol was used in the synthesis.
B1. 樹脂の膨潤
樹脂を15 mlの反応器に入れ、そして7 mLのNMPにより2回処理し、次に濾過した。
B2. アミノ酸の活性化
アミノ酸(3.0当量)及び1−ヒドロキシベンゾトリアゾール(4.0当量)を秤り取り、そしてそれらの2.5体積を有するNMPに反応器中で溶解し、そして0℃に冷却した。次に、DICを添加し(3.0当量)、そしてこの混合物を15分間撹拌した。
B1. Resin swelling The resin was placed in a 15 ml reactor and treated twice with 7 mL NMP and then filtered.
B2. Activated Amino Acids (3.0 eq) and 1-hydroxybenzotriazole (4.0 eq) were weighed and dissolved in NMP having 2.5 volumes thereof in a reactor and cooled to 0 ° C. DIC was then added (3.0 eq) and the mixture was stirred for 15 minutes.
B3. カップリング
次に、B2で調製された溶液をB1の反応器に添加した。反応器を1体積のDCMにより1回洗浄し、そしてこの反応器に加え、これを25℃〜30℃において1〜3時間撹拌した。サンプルにおいてカイゼルテスト(Kaiser Test)を行うことにより、反応の完結を決定した。3時間後にカップリング反応が完結していない場合(カイゼルテスト陽性)、反応混合物を濾過し、そして活性化されたアミノ酸の新たな溶液を用いて再カップリングを行った。カップリングの完結の後、反応混合物を濾過し、そしてNMP(洗浄当たり5体積)により4回洗浄した。
B3. Coupling Next, the solution prepared in B2 was added to the reactor of B1. The reactor was washed once with 1 volume of DCM and added to the reactor, which was stirred at 25-30 ° C. for 1-3 hours. The completion of the reaction was determined by performing a Kaiser test on the samples. If the coupling reaction was not complete after 3 hours (Kaiser test positive), the reaction mixture was filtered and recoupled with a fresh solution of the activated amino acid. After completion of coupling, the reaction mixture was filtered and washed 4 times with NMP (5 volumes per wash).
B4. Fmoc-基の除去
B3において得られた樹脂を濾過し、そして次に、25体積%のピペリジンを含む5 mLの溶液により30分間処理した。次にこの樹脂を5mLのNMPにより3回洗浄した。
B4. Removal of Fmoc-group
The resulting resin in B3 was filtered and then treated with 5 mL of a solution containing 25% by volume piperidine for 30 minutes. The resin was then washed 3 times with 5 mL NMP.
B5. ペプチド鎖の延長
各アミノ酸の導入の後、工程B1〜B5を、ペプチド鎖の完成まで反復した。
各個々のアミノ酸の導入のため次のFmoc-アミノ酸を使用した:Fmoc-Ala-OH、Fmoc-Arg(Pbf)-OH、Fmoc-Asn-OH、Fmoc-Asn(Trt)-OH、Fmoc-D-Cys(Trt)-OH、Fmoc-Cys(Trt)-OH、Fmoc-Gln-OH、Fmoc-Gln(Trt)-OH、Fmoc-Glu(tBu)-OH、Fmoc-Gly-OH、Fmoc-His(Trt)-OH、Fmoc-Hyp(tBu)-OH、Fmoc-Ile-OH、Fmoc-Leu-OH、Fmoc-Met-OH、Fmoc-D-Phe-OH、Fmoc-Phe-OH、Fmoc-Pro-OH、Fmoc-Ser(tBu)-OH、Fmoc-Ser(Trt)-OH、Fmoc-Thr(tBu)-OH、Fmoc-Ser(Trt)-OH、Fmoc-D-Trp-OH、Fmoc-Trp-OH、Fmoc-D-Trp(Boc)-OH、Fmoc-Trp(Boc)-OH、Fmoc-Tyr(tBu)-OH、Fmoc-Tyr(Clt)-OH、Fmoc-Val-OH、Boc-D-Cys(Trt)-OH、Boc-His(Trt)-OH、Boc-Lys(Boc)-OH、Boc-D-2-Nal-OH、Boc-D-Phe-OH、Boc-Ser(tBu)-OH。
B5. Extension of the peptide chain After the introduction of each amino acid, steps B1 to B5 were repeated until the completion of the peptide chain.
The following Fmoc-amino acids were used for introduction of each individual amino acid: Fmoc-Ala-OH, Fmoc-Arg (Pbf) -OH, Fmoc-Asn-OH, Fmoc-Asn (Trt) -OH, Fmoc-D -Cys (Trt) -OH, Fmoc-Cys (Trt) -OH, Fmoc-Gln-OH, Fmoc-Gln (Trt) -OH, Fmoc-Glu (tBu) -OH, Fmoc-Gly-OH, Fmoc-His (Trt) -OH, Fmoc-Hyp (tBu) -OH, Fmoc-Ile-OH, Fmoc-Leu-OH, Fmoc-Met-OH, Fmoc-D-Phe-OH, Fmoc-Phe-OH, Fmoc-Pro -OH, Fmoc-Ser (tBu) -OH, Fmoc-Ser (Trt) -OH, Fmoc-Thr (tBu) -OH, Fmoc-Ser (Trt) -OH, Fmoc-D-Trp-OH, Fmoc-Trp -OH, Fmoc-D-Trp (Boc) -OH, Fmoc-Trp (Boc) -OH, Fmoc-Tyr (tBu) -OH, Fmoc-Tyr (Clt) -OH, Fmoc-Val-OH, Boc-D -Cys (Trt) -OH, Boc-His (Trt) -OH, Boc-Lys (Boc) -OH, Boc-D-2-Nal-OH, Boc-D-Phe-OH, Boc-Ser (tBu) -OH.
C. N−末端にFmoc-又はBoc-基を含むペプチド又は保護されたペプチドセグメントのCTC−樹脂からの酸性開裂のための一般的方法
上記B1〜B5において記載されたようにして製造された、樹脂の結合したぺプチド又はペプチドセグメントを、5 mLのNMPにより4回、5mlのIPAにより3回そして最後に7mlのDCMにより5回洗浄することにより、すべての残留NMP又は他の塩基性成分を完全に除去した。次に、樹脂を0℃に冷却し、DCMから濾過し、そして10 mLの1〜2%TFA/DCM溶液により2回、5℃にて処理した。次にこの混合物を0℃にて20分間撹拌し、そして濾過した。次に樹脂を10 mLのDCMにより3回洗浄した。
C. General method for the acidic cleavage of peptides or protected peptide segments containing Fmoc- or Boc-groups at the N-terminus from CTC-resins , prepared as described above in B1-B5. The resin-bound peptide or peptide segment is washed 4 times with 5 mL NMP, 3 times with 5 ml IPA and finally 5 times with 7 ml DCM to remove any residual NMP or other basic components. Completely removed. The resin was then cooled to 0 ° C., filtered from DCM, and treated twice at 5 ° C. with 10 mL of 1-2% TFA / DCM solution. The mixture was then stirred at 0 ° C. for 20 minutes and filtered. The resin was then washed 3 times with 10 mL DCM.
次に、ロ液にピリジンを添加(TFAに対して1.3当量)してTFAを中和した。次に、DCM中の開裂溶液を同体積の水と混合する。生ずる混合物を減圧下で蒸留してDCMを除去する(28℃にて350 torr)。DCMの除去後にペプチド又はペプチドセグメントが沈殿する。次に、生ずるペプチドを水で洗浄し、そして15 Torrの真空の下で30〜35℃にて乾燥する。 Next, pyridine was added to the filtrate (1.3 equivalents relative to TFA) to neutralize TFA. The cleavage solution in DCM is then mixed with the same volume of water. The resulting mixture is distilled under reduced pressure to remove DCM (350 torr at 28 ° C.). Peptides or peptide segments precipitate after removal of DCM. The resulting peptide is then washed with water and dried at 30-35 ° C. under a vacuum of 15 Torr.
実施例11. N−末端が保護されたフラグメントと樹脂に結合したC−末端が保護されたフラグメントとの縮合による樹脂に結合した保護されたペプチドの合成
一般的手順
DMSO/DCM(95:5)中0.15 mmol/mlのN−末端が保護されたペプチドフラグメントの溶液に、0.2 mmolのHOBtを添加し、そして生ずる溶液を5℃に冷却する。次に、0.14 mmolのDICを添加し、そして混合物を15℃にて20分間撹拌し、そして次に0.1 mmolの樹脂結合C−末端フラグメントに加え、そして室温にて更に6時間撹拌する。縮合反応の完結をカイゼルテストによりチェックする。カイゼルテストが青色のままである場合、縮合を完結させるため第2の縮合を行った。
Example 11. Synthesis of protected peptide bound to resin by condensation of N-terminal protected fragment with resin-bound C-terminal protected fragment
General procedure
To a solution of 0.15 mmol / ml N-terminal protected peptide fragment in DMSO / DCM (95: 5) is added 0.2 mmol HOBt and the resulting solution is cooled to 5 ° C. Next, 0.14 mmol of DIC is added and the mixture is stirred for 20 minutes at 15 ° C. and then added to 0.1 mmol of the resin-bound C-terminal fragment and stirred for an additional 6 hours at room temperature. The completion of the condensation reaction is checked by the Kaiser test. If the Kaiser test remained blue, a second condensation was performed to complete the condensation.
実施例12. N−末端が保護されたフラグメントとC−末端が保護されたフラグメントとの溶液中での縮合による部分的に保護されたペプチドの合成
一般的手順
DCM中0.15 mmol/mlのN−末端が保護されたフラグメントの溶液に、0.2 mmolのHOBtを添加し、そして生ずる溶液を5℃に冷却する。次に、0.15 mmolのEDACを添加し、そしてこの混合物を15℃にて20分間撹拌し、そして次に0.15 mmolのC−末端が保護されたフラグメントに添加し、そして室温にて更に2〜5時間撹拌する。縮合反応の完結をHPLCによりチェックする。不完全な縮合が観察された場合には、追加分の0.015 mmolのEDACを添加し、そして室温にて更なる時間にわたって反応を続ける。
Example 12. Synthesis of a partially protected peptide by condensation in solution between a N-terminal protected fragment and a C-terminal protected fragment
General procedure
To a solution of 0.15 mmol / ml N-terminal protected fragment in DCM is added 0.2 mmol HOBt and the resulting solution is cooled to 5 ° C. Next, 0.15 mmol EDAC is added and the mixture is stirred at 15 ° C. for 20 minutes and then 0.15 mmol C-terminal protected fragment is added and an additional 2-5 at room temperature. Stir for hours. The completion of the condensation reaction is checked by HPLC. If incomplete condensation is observed, an additional 0.015 mmol of EDAC is added and the reaction is continued at room temperature for additional time.
実施例13. 樹脂からのペプチドの同時的開裂及び脱保護
一般的方法
上記のようにして製造された1.00 gの保護された樹脂結合ペプチドを、20 mLのTFA/DTT/水(90:5:5)により5℃にて3時間及び15℃にて1時間処理する。次に、樹脂を開裂溶液により3回洗浄し、そして次に、一緒にしたロ液を真空濃縮し、そして粗ペプチドをエーテルの添加により沈澱させ、エーテルにより数回洗浄し、そしてKOH上で一定重量まで真空乾燥する。
Example 13 Simultaneous cleavage and deprotection of peptides from resin
General Method 1.00 g of protected resin-bound peptide prepared as described above was added with 20 mL of TFA / DTT / water (90: 5: 5) for 3 hours at 5 ° C and 1 at 15 ° C. Processing time. The resin is then washed 3 times with the cleavage solution and the combined filtrates are then concentrated in vacuo and the crude peptide is precipitated by addition of ether, washed several times with ether and constant over KOH. Vacuum dry to weight.
実施例14. ペプチドの脱保護
一般的方法
上記のようにして製造された1.00 gの保護されたペプチドを、20 mLのTFA/DTT/水(90:5:5)により、5℃にて3時間及び15℃にて1時間処理した。生ずる溶液を真空濃縮し、そして次に、脱保護されたペプチドをジイソプロピルエーテルの添加により沈澱させ、そして10 mLのジイソプロピルエーテルにより3回洗浄した。生ずる固体を、KOHの下で一定重量まで真空乾燥(25℃、15 Torr)した。
Example 14. Deprotection of peptides
General Method 1.00 g of the protected peptide prepared as described above was treated with 20 mL of TFA / DTT / water (90: 5: 5) for 3 hours at 5 ° C and 1 hour at 15 ° C. Processed. The resulting solution was concentrated in vacuo and then the deprotected peptide was precipitated by the addition of diisopropyl ether and washed three times with 10 mL diisopropyl ether. The resulting solid was vacuum dried (25 ° C., 15 Torr) to constant weight under KOH.
実施例15. 粗ペプチドの精製 ペプチドの単離
一般的手順
上記のようにして得られたペプチドの溶液を真空濃縮し、そして氷水及びエーテルを添加した。有機相を分離した後、ペプチドの残った水溶液をエーテルにより更に2回抽出し、そして生ずる溶液に窒素又はヘリウムを吹き込み、濾過しそして半調製用カラム10x25 cm, Lichrospher 100, RP-18, 12ミクロン(Merck)に直接付加した;A相=アセトニトリル中1%-TFA、B相=水中1%-TFA;又はクロマシル(Kromasil)。精製されたペプチドを含むHPLC画分を真空濃縮してできるだけ多くの汚染アセトニトリルを除去し、そして標準的凍結乾燥プログラムを用いて凍結乾燥した。
Example 15 Purification of Crude Peptide Isolation of Peptide
General Procedure The peptide solution obtained as above was concentrated in vacuo and ice water and ether were added. After separation of the organic phase, the remaining aqueous solution of the peptide is extracted twice more with ether and the resulting solution is blown with nitrogen or helium, filtered and semi-preparative column 10x25 cm, Lichrospher 100, RP-18, 12 microns. Added directly to (Merck); Phase A = 1% -TFA in acetonitrile, Phase B = 1% -TFA in water; or Kromasil. The HPLC fraction containing the purified peptide was concentrated in vacuo to remove as much contaminating acetonitrile as possible and lyophilized using a standard lyophilization program.
下に記載する実施例16〜23を、上記の手順を用いて実施して、下記にリストされた化合物を調製した。
実施例16. ランレオチド(Lanreotide)
実施例17. インスリンB−鎖
実施例18. サケカルシトニン
実施例19. オクトレオチド(Octreotide)
実施例20. エキセナチド(Exenatide)
実施例21. プラムリンチド(Pramlintide)
実施例22. テトラコサクチド(Tetracosactide)(ACTH 1-24)
実施例23. ビバリルジン(Bivalirudin)
Examples 16-23 described below were performed using the procedure described above to prepare the compounds listed below.
Example 16. Lanreotide
Example 17 Insulin B-Chain
Example 18 Salmon calcitonin
Example 19. Octreotide
Example 20 Exenatide
Example 21. Pramlintide
Example 22. Tetracosactide (ACTH 1-24)
Example 23. Bivalirudin
Claims (10)
Pr2は、H、又は樹脂に対してオルソゴナル(orthogonal)ヒドロキシル保護基であり;
R3及びR4は、それぞれ独立に、H又はC1-10アルキルであり;
X、Y、Z及びVは、それぞれ独立の、オルト、メタ又はパラ位の置換基であり、そしてH、Cl、F、C1-10アルキル及びC1-10アルコキシから選択され;そして
Pは、ペプチドの固相合成のために適当な不溶性支持体又は不溶性リンカー−樹脂結合体である)
から選択される樹脂接合体。 Formulas III-VI below:
Pr 2 is H or an orthogonal hydroxyl protecting group for the resin;
R 3 and R 4 are each independently H or C 1-10 alkyl;
X, Y, Z and V are each independently an ortho, meta or para substituent and are selected from H, Cl, F, C 1-10 alkyl and C 1-10 alkoxy; and P is An insoluble support or insoluble linker-resin conjugate suitable for solid phase synthesis of peptides)
A resin joined body selected from:
ヒドロキシル含有アミノアルコールであって、当該アミノアルコールの側鎖の少なくとも1つにおいて保護されていないものを調製し、或いはヒドロキシルアミノアルコールの保護基を当該ヒドロキシルアミノアルコールの側鎖において選択的に脱保護し、そして次に、それを樹脂ハライドとの反応により適当な樹脂に取付け、ここで当該樹脂はトリチル型樹脂及びリンカー及びベンズヒドリル型樹脂から選択され;そして
未反応の樹脂ハライドをマスクするためにアルコール又はチオアルコールを添加する;
工程を含む方法。 In the manufacturing method of the resin conjugate | zygote in any one of the formulas III-VI of Claim 1,
Preparing a hydroxyl-containing aminoalcohol that is not protected on at least one side chain of the aminoalcohol, or selectively deprotecting the protecting group of the hydroxylaminoalcohol on the side chain of the hydroxylaminoalcohol. And then attaching it to a suitable resin by reaction with a resin halide, where the resin is selected from trityl type resins and linkers and benzhydryl type resins; and alcohol or mask to mask unreacted resin halides Add thioalcohol;
A method comprising the steps.
Aは、H、或いはFmoc、Boc、Trt、Nps、Mtt及びMmtから選択されるアミノ保護基であり;
D-は、D−アミノ酸に従うアミノ酸のキラリティーを示し;
Bは、Trt、Mmt、Acm及びStBuから選択されるチオール保護基であり;
Cは、H又はBocであり;
Eは、Clt、Trt及びtBuから選択されるヒドロキシ保護基であり;そして
樹脂は、下記の式:
Pは、ペプチドの固相合成のために適当な不溶性支持体又は不溶性リンカー−樹脂接合体である)
で示される酸感受性樹脂である)
により表される部分的に保護されたペプチド。 Following formula:
A is H or an amino protecting group selected from Fmoc, Boc, Trt, Nps, Mtt and Mmt;
D- indicates the chirality of the amino acid according to the D-amino acid;
B is a thiol protecting group selected from Trt, Mmt, Acm and StBu;
C is H or Boc;
E is a hydroxy protecting group selected from Clt, Trt and tBu; and the resin has the following formula:
It is an acid-sensitive resin indicated by
A partially protected peptide represented by:
Aは、H、或いはFmoc、Boc、Trt、Nps、Mtt及びMmtから選択されるアミノ保護基であり;A is H or an amino protecting group selected from Fmoc, Boc, Trt, Nps, Mtt and Mmt;
D-は、D−アミノ酸に従うアミノ酸のキラリティーを示し;D- indicates the chirality of the amino acid according to the D-amino acid;
Bは、Trt、Mmt、Acm及びStBuから選択されるチオール保護基であり;B is a thiol protecting group selected from Trt, Mmt, Acm and StBu;
Cは、H又はBocであり;C is H or Boc;
Eは、Clt、Trt及びtBuから選択されるヒドロキシ保護基であり;そしてE is a hydroxy protecting group selected from Clt, Trt and tBu; and
樹脂は、下記の式:The resin has the following formula:
Pは、ペプチドの固相合成のために適当な不溶性支持体又は不溶性リンカー−樹脂接合体である)P is an insoluble support or insoluble linker-resin conjugate suitable for solid phase synthesis of peptides)
で示される酸感受性樹脂である)It is an acid-sensitive resin indicated by
により表される部分的に保護されたペプチド。A partially protected peptide represented by:
請求項6に記載のペプチド樹脂接合体を、穏和な酸により処理し;そして
得られたペプチド溶液を、空気、過酸化水素、DMSO又はヨウ素から選択される適当な酸化剤を用いて酸化する;
ことを含んでなる方法。 In the manufacturing method of octreotide,
Treating the peptide resin conjugate of claim 6 with a mild acid; and oxidizing the resulting peptide solution with a suitable oxidizing agent selected from air, hydrogen peroxide, DMSO or iodine;
A method comprising that.
請求項6に記載のペプチド樹脂接合体を、穏和な酸により処理し;そして
脱保護し、精製し、凍結乾燥し、そして99%より高い純度のオクトレオチドを得る、
ことを含んでなる方法。 In the manufacturing method of octreotide,
Treating the peptide resin conjugate of claim 6 with a mild acid; and deprotecting, purifying, lyophilizing and obtaining octreotide with a purity greater than 99%;
A method comprising that.
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