JP6316822B2 - 膵外分泌細胞の誘導方法 - Google Patents
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Description
[1] PDX1陽性の膵前駆細胞から膵外分泌細胞を製造する方法であって、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤および/またはNotchシグナル受容体のリガンドタンパク質、ならびにプロテインキナーゼC活性化剤を添加した培養液中で、PDX1陽性の膵前駆細胞を培養する工程を含む、前記方法。
[2] ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、(式1)
(式中、lが1〜6であり、mが1または2であり、nが4〜6であり、R1が炭素数1〜6のアルキル基であり、R2が炭素数1〜6のアルキル基であり、Xが次の(式2)〜(式9)から成る群から選択される置換基である)
の構造を有する化合物である、[1]に記載の方法。
[3] ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、以下の(式10)の構造を有する化合物である、[1]または[2]に記載の方法。
[4] Notchシグナル受容体のリガンドタンパク質が、DLL4および/またはJAG1である、[1]〜[3]のいずれかに記載の方法。
[5] 前記プロテインキナーゼC活性化剤が、インドラクタムVである、[1]〜[4]のいずれかに記載の方法。
[6] 前記培養工程を少なくとも2日実施する、[1]〜[5]のいずれかに記載の方法。
[7] 前記PDX1陽性の膵前駆細胞が、次の(i)〜(iv)の工程により多能性幹細胞から誘導されたPDX1陽性の膵前駆細胞である、[1]〜[6]のいずれかに記載の方法;
(i)多能性幹細胞をGSK-3β阻害剤およびアクチビンAを添加した培養液中で培養する工程、
(ii)(i)で得られた細胞をFGF10およびSMO阻害剤を添加した培養液中で培養する工程、
(iii)(ii)で得られた細胞をレチノイン酸、FGF10およびSMO阻害剤を添加した培養液中で培養する工程、ならびに
(iv)(iii)で得られた細胞をプロテインキナーゼC活性化剤およびFGF10を添加した培養液中で培養する工程。
[8] 前記GSK-3β阻害剤がCHIR99021である、[7]に記載の方法。
[9] 前記SMO阻害剤が、KAAD-シクロパミンである、[7]または[8]に記載の方法。
[10] 前記プロテインキナーゼC活性化剤が、インドラクタムVである、[7]〜[9]のいずれかに記載の方法。
[11] 前記工程(i)において、多能性幹細胞を単一細胞へ分散させることを含む、[7]〜[10]のいずれかに記載の方法。
[12] 前記培養工程(i)を少なくとも4日実施する、[7]〜[11]のいずれかに記載の方法。
[13] 前記培養工程(ii)を少なくとも1日実施する、[7]〜[12]のいずれかに記載の方法。
[14] 前記培養工程(iii)を少なくとも2日実施する、[7]〜[13]のいずれかに記載の方法。
[15] 前記培養工程(iv)を少なくとも2日実施する、[7]〜[14]のいずれかに記載の方法。
[16] 前記PDX1陽性の膵前駆細胞が、PDX1陽性のヒト膵前駆細胞である、[1]〜[15]のいずれかに記載の方法。
[17] [1]〜[16]のいずれかに記載の方法で製造された膵前駆細胞。
[18] PDX1陽性の膵前駆細胞から膵外分泌細胞を製造するためのキットであって、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤および/またはNotchシグナル受容体のリガンドタンパク質、ならびにプロテインキナーゼC活性化剤を含む、前記キット。
[19] ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、(式11)
(式中、lが1〜6であり、mが1または2であり、nが4〜6であり、R1が炭素数1〜6のアルキル基であり、R2が炭素数1〜6のアルキル基であり、Xが次の(式12)〜(式19)から成る置換基のいずれか一つである)
の構造を有する化合物である、[18]に記載のキット。
[20] ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、以下の(式20)の構造を有する化合物である、[18]または[19]に記載のキット。
[21] Notchシグナル受容体のリガンドタンパク質が、DLL4および/またはJAG1である、[18]〜[20]のいずれかに記載のキット。
[22] 前記プロテインキナーゼC活性化剤が、インドラクタムVである、[18]〜[21]のいずれかに記載のキット。
[23] 多能性幹細胞から膵外分泌細胞を製造するためのキットであって、[18]〜[22]のいずれかに記載のキットに加え、さらに、GSK-3β阻害剤、アクチビンA 、FGF10、およびSMO阻害剤を含む、前記キット。
[24] 前記GSK-3β阻害剤がCHIR99021である、[23]に記載のキット。
[25] 前記SMO阻害剤が、KAAD-シクロパミンである、[23]または[24]に記載のキット。
本発明において、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤とはヒストン脱アセチル化酵素(HDAC)の活性を阻害する物質として定義され、例えば、ヒドロキサム酸誘導体、環状テトラペプチド、短鎖脂肪酸(SCFA)誘導体、ベンズアミド誘導体、求電子ケトン誘導体およびその他のHDAC阻害剤を含むがこれらに限定されない。
本発明で使用可能な多能性幹細胞は、生体に存在する全ての細胞に分化可能である多能性を有し、かつ、増殖能をも併せもつ幹細胞であり、それには、例えば胚性幹(ES)細胞、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹(ntES)細胞、精子幹(GS)細胞、胚性生殖(EG)細胞、人工多能性幹(iPS)細胞、培養線維芽細胞や骨髄幹細胞由来の多能性細胞(Muse細胞)などが含まれる。本発明では、胚の破壊を行わずに得られるという意味では、iPS細胞またはMuse細胞を用いることが好ましい。
ES細胞は、ヒトやマウスなどの哺乳動物の初期胚(例えば胚盤胞)の内部細胞塊から樹立された、多能性と自己複製による増殖能を有する幹細胞である。
精子幹細胞は、精巣由来の多能性幹細胞であり、精子形成のための起源となる細胞である。この細胞は、ES細胞と同様に、種々の系列の細胞に分化誘導可能であり、例えばマウス胚盤胞に移植するとキメラマウスを作出できるなどの性質をもつ(M. Kanatsu-Shinohara et al. (2003) Biol. Reprod., 69:612-616; K. Shinohara et al. (2004), Cell, 119:1001-1012)。神経膠細胞系由来神経栄養因子(glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF))を含む培養液で自己複製可能であるし、またES細胞と同様の培養条件下で継代を繰り返すことによって、精子幹細胞を得ることができる(竹林正則ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊),41〜46頁,羊土社(東京、日本))。
胚性生殖細胞は、胎生期の始原生殖細胞から樹立される、ES細胞と同様な多能性をもつ細胞であり、LIF、bFGF、幹細胞因子(stem cell factor)などの物質の存在下で始原生殖細胞を培養することによって樹立しうる(Y. Matsui et al. (1992), Cell, 70:841-847; J.L. Resnick et al. (1992), Nature, 359:550-551)。
人工多能性幹(iPS)細胞は、特定の初期化因子を、DNAまたはタンパク質の形態で体細胞に導入することによって作製することができる、ES細胞とほぼ同等の特性、例えば分化多能性と自己複製による増殖能、を有する体細胞由来の人工の幹細胞である(K. Takahashi and S. Yamanaka (2006) Cell, 126:663-676; K. Takahashi et al. (2007), Cell, 131:861-872; J. Yu et al. (2007), Science, 318:1917-1920; Nakagawa, M.ら,Nat. Biotechnol. 26:101-106 (2008);WO 2007/069666)。初期化因子は、ES細胞に特異的に発現している遺伝子、その遺伝子産物もしくはnon-cording RNAまたはES細胞の未分化維持に重要な役割を果たす遺伝子、その遺伝子産物もしくはnon-coding RNA、あるいは低分子化合物によって構成されてもよい。初期化因子に含まれる遺伝子として、例えば、Oct3/4、Sox2、Sox1、Sox3、Sox15、Sox17、Klf4、Klf2、c-Myc、N-Myc、L-Myc、Nanog、Lin28、Fbx15、ERas、ECAT15-2、Tcl1、beta-catenin、Lin28b、Sall1、Sall4、Esrrb、Nr5a2、Tbx3またはGlis1等が例示され、これらの初期化因子は、単独で用いても良く、組み合わせて用いても良い。初期化因子の組み合わせとしては、WO2007/069666、WO2008/118820、WO2009/007852、WO2009/032194、WO2009/058413、WO2009/057831、WO2009/075119、WO2009/079007、WO2009/091659、WO2009/101084、WO2009/101407、WO2009/102983、WO2009/114949、WO2009/117439、WO2009/126250、WO2009/126251、WO2009/126655、WO2009/157593、WO2010/009015、WO2010/033906、WO2010/033920、WO2010/042800、WO2010/050626、WO2010/056831、WO2010/068955、WO2010/098419、WO2010/102267、WO2010/111409、WO2010/111422、WO2010/115050、WO2010/124290、WO2010/147395、WO2010/147612、Huangfu D, et al. (2008), Nat. Biotechnol., 26: 795-797、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 2: 525-528、Eminli S, et al. (2008), Stem Cells. 26:2467-2474、Huangfu D, et al. (2008), Nat Biotechnol. 26:1269-1275、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3, 568-574、Zhao Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3:475-479、Marson A, (2008), Cell Stem Cell, 3, 132-135、Feng B, et al. (2009), Nat Cell Biol. 11:197-203、R.L. Judson et al., (2009), Nat. Biotechnol., 27:459-461、Lyssiotis CA, et al. (2009), Proc Natl Acad Sci U S A. 106:8912-8917、Kim JB, et al. (2009), Nature. 461:649-643、Ichida JK, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:491-503、Heng JC, et al. (2010), Cell Stem Cell. 6:167-74、Han J, et al. (2010), Nature. 463:1096-100、Mali P, et al. (2010), Stem Cells. 28:713-720、Maekawa M, et al. (2011), Nature. 474:225-9.に記載の組み合わせが例示される。
nt ES細胞は、核移植技術によって作製されたクローン胚由来のES細胞であり、受精卵由来のES細胞とほぼ同じ特性を有している (T. Wakayama et al. (2001), Science, 292:740-743; S. Wakayama et al. (2005), Biol. Reprod., 72:932-936; J. Byrne et al. (2007), Nature, 450:497-502)。すなわち、未受精卵の核を体細胞の核と置換することによって得られたクローン胚由来の胚盤胞の内部細胞塊から樹立されたES細胞がnt ES(nuclear transfer ES)細胞である。nt ES細胞の作製のためには、核移植技術(J.B. Cibelli et al. (1998), Nature Biotechnol., 16:642-646)とES細胞作製技術(上記)との組み合わせが利用される(若山清香ら(2008),実験医学,26巻,5号(増刊), 47〜52頁)。核移植においては、哺乳動物の除核した未受精卵に、体細胞の核を注入し、数時間培養することで初期化することができる。
Muse細胞は、WO2011/007900に記載された方法にて製造された多能性幹細胞であり、詳細には、線維芽細胞または骨髄間質細胞を長時間トリプシン処理、好ましくは8時間または16時間トリプシン処理した後、浮遊培養することで得られる多能性を有した細胞であり、SSEA-3およびCD105が陽性である。
本発明において、多能性幹細胞から膵前駆細胞への分化誘導は、当業者に周知の方法を用いてもよく、特に限定されないが、例えば、アクチビンAを用いる方法(特願2008-40781)、微弱パルス電流および熱を印加する方法(特願2010-153907)、M15細胞と共培養する方法(WO2006/126574)、アクチビンAおよびWnt3aを含有する培地で培養後、FGF10およびKAAD-シクロパミンを含有する培地で培養し、さらにFGF10、KAAD-シクロパミンおよびレチノイン酸を含む培地で培養する多段階誘導法(Chen S, et al., Nat Chem Biol. 2009, 5, 258-265)、アクチビンAを含む培地で培養後、レチノイン酸を含有する培地で培養する誘導法(Jiang W, et al., Cell Res. 2007, 17, 333-344.)などが挙げられる。好ましくは、本発明では、多能性幹細胞から膵前駆細胞への分化誘導に際して、以下の4つの工程を含む方法を用いることができる:
(i)ヒト人工多能性幹細胞等の多能性幹細胞を、アクチビンAとGSK-3β(Glycogen Synthase Kinase 3β)阻害剤とを含む培地で培養する工程(第1工程)、
(ii)工程(i)で得られた細胞をFGF10およびSmoothened(SMO)阻害剤を添加した培養液中で培養する工程(第2工程)、
(iii)工程(ii)で得られた細胞をレチノイン酸、FGF10およびSMO阻害剤を添加した培養液中で培養する工程(第3工程)、ならびに
(iv)工程(iii)で得られた細胞をプロテインキナーゼC活性化剤およびFGF10を添加した培養液中で培養する工程(第4工程)。
本工程では、ヒト多能性幹細胞を、任意の方法で分離し、浮遊培養により培養してもよく、あるいはコーティング処理された培養皿を用いて接着培養してもよい。本発明における培養方法として、好ましくは接着培養が採用される。ここで、ヒト多能性幹細胞の分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(例えば、Accutase(TM)およびAccumax(TM)など)またはコラゲナーゼ活性のみを有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられる。好ましくは、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(特に好ましくは、Accutase(TM))を用いてヒト多能性幹細胞を解離し、力学的に細かく単一細胞へ分散する方法が用いられる。ここで、使用されるヒト多能性幹細胞は、使用したディッシュに対して80%コンフルエントになるまで培養されたコロニーであることが好ましい。
本工程では、前述の第1工程が接着培養であった場合、得られた細胞を、培地の交換により継続して培養してもよい。あるいは、前述の第1工程が浮遊培養であった場合、得られた細胞集団をそのままコーティング処理された培養皿にて、任意の培地中で培養してもよい。コーティング剤としては、例えば、マトリゲル(BD)、コラーゲン、ゼラチン、ラミニン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、またはエンタクチン、およびこれらの組み合わせが挙げられる。好ましくは、マトリゲルである。
本工程では、前述の第2工程で得られた細胞を、培地の交換により継続して培養してもよいし、分離して再度接着培養してもよい。分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(例えば、Accutase(TM)およびAccumax(TM)など)またはコラゲナーゼ活性のみを有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられる。
本工程では、前述の第3工程で得られた細胞を、培地の交換により継続して培養してもよし、分離して再度接着培養してもよい。分離方法としては、例えば、力学的に分離する方法、プロテアーゼ活性とコラゲナーゼ活性を有する分離溶液(例えば、Accutase(TM)およびAccumax(TM)など)またはコラゲナーゼ活性のみを有する分離溶液を用いた分離方法が挙げられる。
本発明は、上述した分化誘導法によって作製された膵外分泌細胞を指標に用いて純化してもよい。膵外分泌細胞は、例えば、AMY2A、AMY2Bまたは他の膵外分泌細胞の任意のマーカーによって染色することで同定し、当業者に周知の方法で純化され得る。
本発明は、膵前駆細胞から膵外分泌細胞を分化誘導するためのキットを提供する。本キットには、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤および/またはNotchシグナルのリガンドタンパク質、ならびにプロテインキナーゼC活性化剤が含まれる。本キットには、さらに上述した分化誘導に用いる増殖因子、化合物、培養液、解離溶液および培養皿のコーティング剤を含んでもよい。本キットには、さらに分化誘導の手順を記載した書面や説明書を含んでもよい。
本発明は、多能性幹細胞から膵外分泌細胞を分化誘導するためのキットを提供する。本キットには、上述した膵前駆細胞からの膵外分泌細胞の分化誘導用キットに加えて、多能性幹細胞から膵前駆細胞への分化誘導に用いる増殖因子、化合物、培養液、解離溶液(ヒト多能性幹細胞を単一分散させる試薬を含む)、および培養皿のコーティング剤を含んでもよい。好ましくは、さらにGSK-3β阻害剤、アクチビンA、FGF10、およびSMO阻害剤を含む。本キットには、さらに分化誘導の手順を記載した書面や説明書を含んでもよい。
ヒトES細胞(KhES3)は、京都大学より受領し、従来の方法で培養した(Mori H, et al., Biochem Biophys Res Commun. 2006, 345, 926-932)。6cmディッシュ上で80-90%コンフルエントになるまで培養し、1mL のAccutase(TM)を加えてES細胞を単一細胞へ分散させた。
(Stage 1)2% B27およびPenicillin/Streptomycinを含有するRPMI1640培地にES細胞を懸濁し、マトリゲルでコートした24 ウェルプレートに250,000/ウェルとなるように播種した。100ng/mL アクチビンAおよび1μM CHIR99021を加えて、培地量が0.5mL/ウェルとなるように調整し、6日間培養した。
(Stage 2-1)培地を50ng/ml FGF10、0.25μM KAAD(3-Keto-N-(aminoethyl-aminocaproyl- dihydro-cinnamoyl))-シクロパミン、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、1日間培養した。
(Stage 2-2)培地を2μM レチノイン酸、50ng/ml FGF10、0.25μM KAAD-シクロパミン、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、2日間培養した。
(Stage 2-3)培地を50ng/ml FGF10、300nM (-)-indolactam V (ILV)、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、4日間培養した。
(Stage 3)培地を1μM CHAP108(式10)、300nM ILV、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、4日間または8日間培養した。
単一細胞へ分散させたES細胞(KhES3)を、図1に示したプロトコールの改変法に従って膵外分泌細胞へと分化誘導した。詳細には以下の5つの工程を実施した。
(Stage 1) 2% B27 およびPenicillin/Streptomycinを含有するRPMI1640培地にES細胞を懸濁し、マトリゲルでコートした24 ウェルプレートに250,000/ウェルとなるように播種した。100ng/mL アクチビンAおよび1μM CHIR99021を加えて、培地量が0.5mL/ウェルとなるように調整し、4日間培養した。
(Stage 2-1) 培地を50ng/ml FGF10、0.25μM KAAD(3-Keto-N-(aminoethyl-aminocaproyl- dihydro-cinnamoyl))-シクロパミン、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、1日間培養した。
(Stage 2-2) 培地を2μM レチノイン酸、50ng/ml FGF10、0.25μM KAAD-シクロパミン、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、2日間培養した。
(Stage 2-3)培地を50ng/ml FGF10、300nM (-)-indolactam V (ILV)、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、2日間培養した。
(Stage 3)培地を1μM CHAP108(式10)、300nM ILV、1% L-Glutamin、2% B27、50m U/L Penicillinおよび50μg/L Streptomycinを含有するDMEMに置換し、2日間培養した。
Claims (18)
- PDX1陽性の膵前駆細胞から膵外分泌細胞を製造する方法であって、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤及び/又はNotchシグナル受容体のリガンドタンパク質、並びにプロテインキナーゼC活性化剤を添加した培養液中で、PDX1陽性の膵前駆細胞を培養する工程を含み、
前記ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、以下の(式10):
の構造を有する化合物であり、
前記Notchシグナル受容体のリガンドタンパク質がDLL4及び/又はJAG1であり、
前記プロテインキナーゼC活性化剤がインドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤である、
前記方法。 - 前記インドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤がインドラクタムVである、請求項1記載の方法。
- 前記培養工程を少なくとも2日実施する、請求項1又は2記載の方法。
- 前記PDX1陽性の膵前駆細胞が、次の(i)〜(iv)の工程により多能性幹細胞から誘導されたPDX1陽性の膵前駆細胞である、請求項1〜3のいずれか1項記載の方法;
(i)多能性幹細胞をGSK-3β阻害剤及びアクチビンAを添加した培養液中で培養する工程、
(ii)(i)で得られた細胞をFGF10及びSMO阻害剤を添加した培養液中で培養する工程、
(iii)(ii)で得られた細胞をレチノイン酸、FGF10及びSMO阻害剤を添加した培養液中で培養する工程、並びに
(iv)(iii)で得られた細胞をプロテインキナーゼC活性化剤及びFGF10を添加した培養液中で培養する工程であって、前記プロテインキナーゼC活性化剤がインドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤である、前記工程。 - 前記GSK-3β阻害剤がCHIR99021である、請求項4記載の方法。
- 前記SMO阻害剤がKAAD-シクロパミンである、請求項4又は5記載の方法。
- 前記インドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤がインドラクタムVである、請求項4〜6のいずれか1項記載の方法。
- 前記工程(i)において、多能性幹細胞を単一細胞へ分散させることを含む、請求項4〜7のいずれか1項記載の方法。
- 前記培養工程(i)を少なくとも4日実施する、請求項4〜8のいずれか1項記載の方法。
- 前記培養工程(ii)を少なくとも1日実施する、請求項4〜9のいずれか1項記載の方法。
- 前記培養工程(iii)を少なくとも2日実施する、請求項4〜10のいずれか1項記載の方法。
- 前記培養工程(iv)を少なくとも2日実施する、請求項4〜11のいずれか1項記載の方法。
- 前記PDX1陽性の膵前駆細胞が、PDX1陽性のヒト膵前駆細胞である、請求項1〜12のいずれか1項記載の方法。
- PDX1陽性の膵前駆細胞から膵外分泌細胞を製造するためのキットであって、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤及び/又はNotchシグナル受容体のリガンドタンパク質、並びにプロテインキナーゼC活性化剤を含み、
前記ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が、以下の(式20):
の構造を有する化合物であり、
前記Notchシグナル受容体のリガンドタンパク質がDLL4及び/又はJAG1であり、
前記プロテインキナーゼC活性化剤がインドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤である、
前記キット。 - 前記インドールアルカロイド系のプロテインキナーゼC活性化剤がインドラクタムVである、請求項14記載のキット。
- 多能性幹細胞から膵外分泌細胞を製造するためのキットであって、請求項14又は15記載のキットに加え、さらに、GSK-3β阻害剤、アクチビンA、FGF10及びSMO阻害剤を含む、前記キット。
- 前記GSK-3β阻害剤がCHIR99021である、請求項16記載のキット。
- 前記SMO阻害剤がKAAD-シクロパミンである、請求項16又は17記載のキット。
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