JP6177130B2 - 第ix因子活性を有する融合タンパク質 - Google Patents
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Description
以下、下記の実施例によって本発明をより詳細に説明する。ただし、下記実施例は、本発明を例示するためのものに過ぎず、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
FIX発現ベクターを製造するために、図1aに示すようにFIXタンパク質をコードするポリヌクレオチド断片Eを作製した。上記断片EはFIXの発現効率を高めるために、FIXのエキソンにFIXイントロンの一部を挿入して作製した。つまり、FIXイントロン1の5’末端981bpおよび3’末端443bpの部分をFIXエキソン1の88bpに対応する部分に添加した(JBC、vol.270、p.5276−5281)。具体的な製造過程は、下記の通りである。
pcDNA3.1/Hygro/lacZベクター(Invitrogen)に配列番号1のFIX(kozak+ORF)を挿入し、pcDNA3.1 FIX pDNAを得た。具体的には、コザーク配列(Kozak sequence; gccaccatggag)を含むことができる順方向プライマー(F1、配列番号22)と逆方向プライマー(R1、配列番号23)とを作製し、HepG2においてPCRを行い、FIX(kozak+ORF)を得た。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5 unit/ul#600252)を用いて56℃でアニールして、68℃で3分間延長する過程を30サイクル反応させて行った。上記PCR産物をプロメガ(Promega)社のpGEM T−easyベクター(Madison、Wl、Cat.No.A1360)にクローニングした後、塩基配列を確認した。確認されたベクターを鋳型にして、順方向プライマー(F2、配列番号24)と逆方向プライマー(R2、配列番号25)とを用いてPCRを行い、FIX(kozak+ORF)挿入体を得た。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5 unit/ul#600252)を用いて58℃でアニールし、68℃で3分間延長する過程を1サイクルとして30サイクル反応させ行った。このようにして得た挿入体をBamH1/Spe1で処理した後、BamH1/Xba1酵素で処理したpcDNA3.1/Hygro/lacZに、T4 DNAライゲース(Takara、#2011A)を用いてライゲーションを行い、“pcDNA3.1−hygro−FIX(KOI)”発現ベクターを製造した。
図1bに示す方法に基づいてFIXのイントロン1(“イントロンF1+X+イントロンF2”で構成)から、図1aの断片B(“イントロンF1の一部+イントロンF2”で構成)を製造した。具体的には、HEK293のゲノムDNAを鋳型とし、センスプライマー(F4、配列番号27)およびアンチセンスプライマー(R3、配列番号28)を用いてPCRを行い、イントロンF2 PCR産物を得た。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いて58℃でアニールして、68℃で2分間延長する過程を30サイクル反応させて行った。上記イントロンF2PCR産物に、センスプライマー(F5、配列番号29)とアンチセンスプライマー(R3、配列番号28)およびpfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いてPCRを行い、イントロンF1の一部とイントロンF2とで構成された断片Bを得た。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いて58℃でアニールして、68℃で2分間延長する過程を30サイクル反応させ行った。
実施例<1−1>および<1−2>で製造された断片AおよびBに、センスプライマー(F5、配列番号29)とアンチセンスプライマー(R2、配列番号25)およびpfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いてPCRを行い、イントロンF1の一部とイントロンF2およびエキソンF2から構成された断片Cを得た。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いて58℃でアニールさせ、68℃で3分間延長する過程を30サイクル反応させ行った。
エキソンF1とイントロンF1とに設定された断片Dを製作するために、HEK 293のゲノムDNAを鋳型とし、センスプライマー(F6、配列番号30)とアンチセンスプライマー(R4、配列番号31)とを用いてPCRを行った。PCRは、pfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いて58℃でアニールして、68℃で2分間延長する過程を30サイクル反応させ行った。
実施例<1−3>および<1−4>で製造された断片CおよびDに、センスプライマー(F6;配列番号30)とアンチセンスプライマー(R2;配列番号25)およびpfu turbo DNAポリメラーゼ(Invitrogen、2.5unit/ul#600252)を用いてPCRを行った。PCRは、58℃でアニールして、68℃で3分間延長する過程を30サイクル反応させ行った。上記PCR産物をプロメガ社のpGEM T−easyベクター(Madison、WI、Cat.No.A1360)にクローニングし、断片Eの配列を確認した。上記断片は、コザック(kozak)配列とORFおよびイントロン1の一部から構成されており、これを“FIX(KOI)”と命名した。
前記実施例<1−5>で得られたFIX(KOI)に、センスプライマー(F2、配列番号24)とアンチセンスプライマー(R5、配列番号32)とを用いてPCRを行った。PCRは、Phusion High−Fidelity DNAポリメラーゼ(Finnzyme、2units/μL、#F−530S)を98℃で30秒間反応させ、98℃で10秒、58℃で45秒、72℃で2分間反応させることを1サイクルとして30サイクル反応させた後、72℃で7分間反応させて終了した。上記PCR産物をBamH1およびXho1で処理して、pcDNA3.1/hygroベクターを同じ酵素で処理した後、T4DNAライゲース(Takara、#2011A)を用いてライゲーション(ligation)を行い“pcDNA3.1−hygro−FIX(KOI)”発現ベクターを製造した。
FIX(KOI)にヒトトランスフェリン(Tf)を連結させた融合タンパク質を発現するベクターを製造した。
FIX(KOI)とTfとをリンカーで連結した融合タンパク質を発現するベクターを製造した。上記リンカーとして、4つのグリシンおよび1つのセリンからなるペプチド(GGGGS)を基本リンカー単位として使用し、これらの単位を繰り返して連結した、より長い長さのリンカーを製造した。上記リンカーを“GS”リンカーと命名し、繰り返し単位が1であるリンカーをGS1(または1GS)にして繰り返し単位の数に応じてGS2(または2GS)、GS3(または3GS)、GS4(または4GS)などで表示した。本実施例では、GS1、GS7およびGS15リンカーを使用した。
FIX(KOI)とTfがGS1リンカーで接続された融合タンパク質を発現するベクターを下記のように製造した。上記の製造過程を図3に示した。
FIX(KOI)およびTfがGS15リンカーで接続された融合タンパク質を発現するベクターを、図4のプロセスに基づいて製造した。
<4−1>FIX(KOI)−GS1−THR−GS1−Tf発現ベクター(pcDNA3.1−hygro−FIX(KOI)−GS1−THR−GS1−Tf)の製造
GS1およびトロンビン切断部位(THR)を持つFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図4のプロセスに従って製造した。
GS7およびGS7リンカーの間にトロンビン切断部位(THR)を持つFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図4のプロセスに従って製造した。
実施例4−1で製造したGS1およびトロンビン切断部位(THR)を持つ発現ベクターから、リンカーとTfとの間を接続するAge1制限酵素配列を除去した。
<5−1>FIX(KOI)−GS1−FXa−Tf発現ベクター(pcDNA3.1−hygro−FIX(KOI)−GS1−FXa−Tf)の製造
GS1リンカーおよびFXa切断部位(FXa)を持つFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図5のプロセスに従って製造した。
二つのGS7リンカーの間にFXa切断部位を有するFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図4のプロセスに従って製造した。
<6−1>FIX(KOI)−GS1−FXIa−Tf発現ベクター(pcDNA3.1−hygro−FIX(KOI)−GS1−FXIa−Tf)の製造
GS1リンカーおよびFXIa切断部位(FXIa)を持つFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図5のプロセスに従って製造した。
GS7およびGS7リンカーとの間にFXIa切断部位を持つFIX(KOI)−Tf発現ベクターを、図4のプロセスに従って製造した。
米国特許20090042787 A1号に開示されたFIX(KOI)−G6V−アルブミン融合タンパク質を、図6のプロセスに従って製造した。まず、ヒト肝臓mRNA(Clontech)を鋳型にして遺伝子特異プライマーF20およびR15(配列番号60および61)を用いてRT−PCRによりヒトアルブミンcDNAを得た。上記のRT−PCRは、10μL逆転写反応液(1μL10X逆転写酵素緩衝液、0.6μL オリゴ−dTプライマー、1μL dNTP、0.4μL 水、および5μL ヒト肝臓mRNA(10ng/μL))を65℃で5分、室温で5分間反応させた後、100mM DTT 1μLおよび逆転写酵素緩衝液1μLを入れ、42℃で1時間反応させた。合成されたcDNAを鋳型としてプライマーF20およびR15を使用して、ヒトアルブミン配列を確保した。PCRは、50μL反応液(1μLcDNA、10μL5x Phusion HF Buffer、プライマーF20とR15を各1μL、1μLの10mM dNTP、0.5μLPhusion DNA polymerase(FINNZYMES、#F−530S 2units/μL)、35.5μLの水)を98℃で1分間反応させ、98℃で10秒、62℃で30秒、72℃で60秒反応させることを1サイクルとして30サイクル反応させた後、72℃で7分反応させることにより終了させた。一方、米国特許20090042787 A1号に開示のGSリンカーG6V(GGGGGGV)を示すアミノ酸配列を作るためにF21(配列番号62)およびアルブミンの配列全体をPCRできるプライマーR16(配列番号63)を用いて、上記で得られたアルブミンを鋳型にしてPCRを行った。PCRは、Phusion High−Fidelity DNAポリメラーゼ(Finnzyme、2units/μL、#F−530S)を用いて58℃でアニールして、68℃で2分間延長する過程を30サイクル反応させて行った。PCR生成物をAge1とXho1とで処理して、挿入体を準備し、実施例2のFIX(KOI)−Age1−TFをAge1とXho1との制限酵素で処理してベクターとして用意し、上記挿入体とベクターをT4 DNAライゲス(Takara、#2011A)を用いてライゲーションした。
<1−1>融合タンパク質の形質感染
実施例2〜実施例6のFIX(KOI)−Tf発現ベクターおよび比較例1のFIX(KOI)−G6V−Albumin発現ベクターをVKORC1(ビタミンKエポキシド還元複合体サブユニット1)を安定的に発現するCHO細胞株であるCHO−DG44(VK2)細胞に形質感染させ、FIX(KOI)融合タンパク質を発現させた。CHO−DG44(VK2)は、インビトロゲン社のCHO−DG44cellにVKORC1発現ベクターを挿入して、独自に製作した。
ブラッドフォード分析を介して前記実験例<1−1>で製造した試料のタンパク質を定量した後、4x LDS試料緩衝液(Invitrogen#NP0008)と7xプロテアーゼ阻害剤カクテル(Roche、Complete Mini、EDTAfree、#1 836 170)とを使用して、総タンパク質の濃度が1μg/μLになるように調整した。上記の試料10μLを4%〜12%のゲル(Invitrogen、NuPAGE Novex 4%〜12%Bis−Tris Gel)にロードし、電気泳動した。電気泳動が終わったゲルをニトロセルロース膜(Whatman、PROTRAN#BA83)に移転させた後、上記移転された幕をオムニトレイ(omnitray)に移し、ブロッキング溶液(3%BSA in TBS with 0.1%Tween 20)を添加して、ロッカー(rocker)で1時間ブロッキングした。その後、一次抗体(Cedarlane#CL20040AP)を4℃で12時間反応させてタンパク質に結合させ、二次抗体(anti goat、Santacruz#SC−2350)を室温で1時間反応させ結合させた後、アマシャム(Amersham)のECL溶液ミックス(GE Healthcare、#RPN1232)を利用して、フィルムに現像した。
<2−1>FIX(KOI)融合タンパク質誘導体群(FIX(KOI)−Tf、FIX(KOI)−GS1−Tf、FIX(KOI)−GS1−THR−GS1−Tf、FIX(KOI)−GS15−Tf、FIX(KOI)−GS7−THR−GS7−Tf、FIX(KOI)−GS7−FXa−GS7−Tf、FIX(KOI)−GS7−FXIa−GS7−Tf、FIX(KOI)−GS1−FXa−Tf、FIX(KOI)−GS1−FXIa−Tf、FIX(KOI)−G6V−Alb)と天然型FIX(KOI)の比活性の測定
実験例1のFIX(KOI)融合タンパク質試料および円FIX(KOI)を対象に、比活性を測定した。具体的には、試料をFIX ELISAキット(Cedarlane、Paired Antibodies for Elisa−Factor IX、CL20041K、Lot EIA9−0025R1)を利用して、FIXタンパク質(抗原)の量を測定し、BIOPHEN Factor IX分析キット(HYPEN BioMed、Ref .221802)を利用して、FIXの色素形成能(chromogenic activity)の分析を行い、凝固活性(clotting activity)を測定した。標準ヒト血漿(Dade Behring、REF ORKL13、Lot 503214E)の量の分析において対照群として使用し、これを1/100(100%)から1/3200(3.13%)まで1/2ずつ連続希釈して、上記標準のOD値を基準に試料の抗原値を計算した。FIX(KOI)融合タンパク質の培地試料は、1/4に希釈して使用した。
実験例1のFIX(KOI)−GS1−THR−GS1−Tf、FIX(KOI)−GS1−THR−GS1−del−Tfおよび天然型FIX(KOI)のFIX(KOI)融合タンパク質試料を対象に、比活性を測定した。実施例4−1とほぼ同様のリンカー配列を含む、実施例4−3によって得られた試料をFIX ELISAキット(Cedarlane、Paired Antibodies for Elisa−Factor IX、CL20041K、Lot EIA9−0028R1)を用いて、FIXタンパク質(抗原)の量を測定し、BIOPHEN Factor IX分析キット(HYPEN BioMed、Ref.221802、Lot01602)を用いて、FIXの色素形成能(chromogenic activity)の分析を行い、凝固活性(clotting activity)を測定した。標準ヒト血漿(Dade Behring、REF ORKL13、Lot 503216F)を量分析において対照群として用いて、<2−1>と同じ方法で希釈し使用した。
Claims (10)
- ヒト由来の第IX因子(FIX)およびヒト由来のトランスフェリンを含む融合タンパク質であって、
前記融合タンパク質は、FIXとトランスフェリンとの間にリンカーを含み、
前記リンカーは、配列番号9及び11のいずれか一つのアミノ酸配列で表示されるペプチドであることを特徴とする融合タンパク質。 - 前記FIXは、配列番号1のアミノ酸配列で表示されるポリペプチドまたはその機能的同等物であることを特徴とする、請求項1に記載の融合タンパク質。
- 前記機能的同等物は、FIXと実質的に同等の機能活性を有し、配列番号1で表示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基が欠失、挿入または置換されたことを特徴とする、請求項2に記載の融合タンパク質。
- 前記トランスフェリンが配列番号2のアミノ酸配列で表示されるポリペプチドまたはその機能的同等物であることを特徴とする、請求項1に記載の融合タンパク質。
- 前記機能的同等物は、トランスフェリンと実質的に同等の機能活性を有し、配列番号2で表示されるアミノ酸配列においてアミノ酸残基が欠失、挿入または置換されたことを特徴とする、請求項4に記載の融合タンパク質。
- 請求項1乃至請求項5のいずれか一項による融合タンパク質配列をコードする遺伝子。
- 前記遺伝子は、配列番号20又は21の塩基配列で表示される遺伝子であることを特徴とする、請求項6に記載の遺伝子。
- 請求項7による遺伝子を含む組み換えベクター。
- 請求項8の組み換えベクターを含む宿主細胞。
- 前記宿主細胞は、CHO細胞、BHK21細胞、HEK293細胞およびHep G2
細胞からなる群より選ばれることを特徴とする、請求項9に記載の宿主細胞。
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