JP6176741B2 - 乳腺疾患の検査方法 - Google Patents

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関連出願の相互参照

本出願は、２０１２年７月１２日出願の日本特願２０１２−１５６１６３号の優先権を主張し、その全記載は、ここに開示として援用される。

本発明は、被験体の乳房または乳分房における乳房炎などの乳腺疾患を検査する方法に関する。

ウシの乳房は、厚い中央提靱帯により左右および薄い隔壁により前後に分けられ、独立した分房となっている。ウシの乳房は多数の乳腺胞から成り、乳腺胞の乳腺側には単層の乳腺上皮細胞が配列する。健康な乳牛の乳腺上皮細胞は、タイトジャンクション等の細胞間接着因子で強固に結合している。乳腺上皮細胞は層を形成し、乳腺の内外を隔てる物理的なバリア機能を果たす。乳腺上皮細胞層があるために、血液から乳へ、または乳から血液へといった、物質の乳−血液間の相互流入は妨げられる。

乳腺上皮細胞は、主として、（１）乳汁タンパク質および乳糖を合成し、これらを腺胞腔側から分泌する機能、（２）脂肪滴を腺胞腔側へ移送し、および腺胞腔に突出させることにより、乳脂肪の分泌を誘導する機能、および（３）血清アルブミンや免疫グロブリンを血中から乳へと移送する機能を担う。

一般に、生体内への病原微生物などの異物の侵入を防ぐ防御機構について、皮膚や粘膜上皮細胞が関与している。上皮細胞は病原体の侵入を物理的に防ぐことのみならず、上皮細胞が産生する乳酸、ムチン、リゾチーム、抗菌ペプチドなどにより、化学的に病原微生物の侵入や増殖を阻害する。これらの物理的または化学的バリアに加え、上皮細胞は様々なサイトカインを産生することによって、早期免疫反応の誘導にも関与している。

乳腺上皮細胞や乳汁における白血球の出現の変動は、乾乳期では抗体産生を誘導するＣＤ４^＋Ｔ細胞が体勢を占めるが、泌乳期には細胞障害性のγδ^＋Ｔ細胞およびＣＤ８^＋Ｔ細胞が主となる。それに対して、液性免疫に携わるＢ細胞や抗体産生細胞はほとんど存在しない（下記の非特許文献１〜３を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。感染した上皮細胞を除去する機構には、マクロファージ（Ｍφ）、樹状細胞（ＤＣ）および顆粒球などが関与している。これらの貪食細胞に加えて、γδ^＋Ｔ細胞、ＣＤ８^＋Ｔ細胞が関与した細胞性免疫が、泌乳期に主体的に機能するという報告がある（下記の非特許文献４を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。したがって、Ｂ細胞によるＩｇＡ産生が直ちに行われる腸管などの粘膜免疫とは異なり、乳腺上皮の免疫機構については自然免疫が着目されている（下記の非特許文献５および６を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。

乳房炎は、乳房内に病原体が侵入して起こる炎症性の疾病である。乳頭孔から細菌、カビ、酵母などの微生物が侵入することにより、乳腺内で炎症が生じ乳房炎が発生する。乳房炎を発症した乳分房は、正常乳分房と比較すると、全体的に肥大し組織が破壊されている。乳房炎の症状として、（１）免疫細胞の動員による乳汁中の体細胞数の増加、および（２）間質肥大や乳腺胞の萎縮に伴う乳量および乳質の低下がある。乳房炎に罹患した個体は、これらに加えて、食欲不振や下痢などの全身症状を起こし、死に至ることさえある。

乳房炎は、臨床型乳房炎と、臨床症状を示さずに乳汁中体細胞数などが増加する潜在性乳房炎とに大別される。乳房炎被害額の約８割を潜在性乳房炎が占めるとされている。グラム陰性菌である大腸菌は重篤な炎症を引き起こして臨床型乳房炎を招くが、黄色ブドウ球菌などのグラム陽性細菌はしばしば潜在性乳房炎を引き起こす。潜在性乳房炎は、臨床の発現化の頻度が比較的小さいことから発見・治療が困難であり、気付かないうちに個体群に広がるという問題がある。また症状が進行し、臨床化する場合もある。

乳房炎の主な治療方法は抗生剤の投与である。しかし、黄色ブドウ球菌による乳房炎は、一部の黄色ブドウ球菌は抗生物質に対して耐性があり、乳腺内に微小膿瘍を形成することから、一般的に抗生剤による治癒が困難であるとされている。

抗生剤は、感染を防ぐ上では治療上有効である。しかし、抗生剤の投与は対処療法であることから、乳腺組織の損傷を直接防ぐことはできない。その他の乳房炎の治療法としては、サイトカイン（ＧＭ−ＣＳＦ、ＣＸＣＬ８、ｈＩＦＮ−α）などの生理活性物質や抗菌作用のもつ天然物質（ステビア抽出発酵エキス、ディフェンシン、ビムロン）を使用した治療法が試みられている。

乳房炎の診断方法には、乳汁中の白血球数による凝集および変性によりもたらされるｐＨと粘性の変化を指標としたＰＬテストが採用されている。また、乳腺内に進入した病原菌に対して乳汁中に放出される免疫細胞数を指標とする体細胞数検査法がある。さらに、体細胞数検査法を応用して、体細胞が活動するときに現れる微弱な電位を光として検知して指標にする方法、すなわち化学発光能（Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ：ＣＬ能）測定法が知られている（下記の非特許文献１４を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。ＣＬ能測定法は、好中球の活性酸素放出量を化学発光により測定することを測定原理とする。また、乳房炎では、乳汁中の細菌に反応したリンパ球などの免疫細胞が乳汁中に浸潤することに起因する、乳汁中のリンパ球サブセットの変動の事例がいくつか報告されている（下記の非特許文献８および９を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。

炎症の免疫応答において、白血球遊走や供給は、炎症において宿主の免疫学的監視において重要な役割を担う。白血球遊走とは、炎症時に分泌されるケモカイン、サイトカイン、生理活性脂質などの遊走因子の刺激を受けた白血球が、血管内から組織内に浸潤し、炎症部位へ移動および集積する現象をいう。白血球遊走の制御因子としては種々のものが知られており、主として走行因子サイトカインファミリーであるケモカインが知られている。その他の因子として、走行性因子の一つであるシクロフィリンがある。シクロフィリンは原核生物および真核生物を含むあらゆる生物の全ての細胞内で発現している。シクロフィリンは一般的に細胞内タンパク質であり、タンパク質のフォールディングに関与する因子であるペプチジル−プロリル・シス−トランス・イソメラーゼ活性を有し、ＦＫ−５０６結合型タンパク質として知られている。シクロフィリンは主に２つあり、１８ｋＤａのシクロフィリンＡ（ＣｙＰＡ）および２１ｋＤａのシクロフィリンＢ（ＣｙＰＢ）である。シクロフィリンＡはシグナル配列を持たない細胞質タンパク質であり、シクロフィリンＢはＮ末端シグナル配列で小胞体と繋がっている（下記の非特許文献１０を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。

ＣｙＰＡは最も存在量の多いシクロフィリンで、総細胞内タンパク質の約０．１〜０．４％の量を占めるとされており、免疫抑制剤であるシクロスポリンＡの細胞内結合因子に属するタンパク質群の一員として知られている（下記の非特許文献１１および１２を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。また、炎症発症中では、ＣｙＰＡは死細胞および生細胞から放出および分泌され、細胞外でも機能する（下記の非特許文献１３〜１６を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。特に細胞外に分泌されたＣｙＰＡは、単球、好酸球、好中球およびＴ−リンパ球などの白血球サブセットの遊走を起こす（下記の非特許文献１３、１７および１８を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。敗血症、リウマチ、関節炎、肺炎、動脈瘤などの疾患において、ＣｙＰＡの上昇が報告されている（下記の非特許文献１９および２０を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。リウマチでは、ＣｙＰＡ量と好中球数との間に相関性があるという報告がある（下記の非特許文献２１を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。同様に、肺炎や動脈瘤などにおいては肺上皮細胞や血管内皮細胞においてＣｙＰＡが発現し、分泌されている。細胞外ＣｙＰＡは、ヒトの単球、好中球、好酸球およびＴ細胞に対する強力な走行性因子であるという報告もある（下記の非特許文献２１を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。ＣｙＰＡは、生体内に細菌などが侵入する際、好中球の動員などの急性炎症反応により放出されることから、炎症を誘起する可能性があるという報告がある（下記の非特許文献１１を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。

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家畜の乳房炎、特に乳牛の乳房炎は経済的損失が大きい。乳量の低下や抗生物質などの治療費の増大のみならず、乳房炎の進行に伴う感染牛の廃用や死亡などが要因となる。乳房炎は世界的に共通して家畜の最難治疾病の一つとされており、乳房炎に起因する経済的損失は日本では年間８００億円、アメリカでは年間１８億ドルを超えるとされている。さらに、乳房炎の治療の多くが抗生剤を用いた治療を中心に行われているところ、乳房炎の感染牛の生乳や食肉からメンシチリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）が検出されており、ＭＲＳＡが食肉や牛乳を介してヒトに伝播していく可能性があるという問題がある。

したがって、乳房炎による経済的損失を最小限に抑えるためには、乳房炎の早期発見および早期治療が肝要であると考えられる。このうち、乳房炎の早期治療方法としては、抗生物質に代替してサイトカインや抗菌物質を含む天然物質を投与する方法が試みられている。しかし、これらは未だ研究段階にあり、臨床には活かされていない。さらに、乳房炎の早期治療を成し遂げるためには、乳腺における免疫応答の分子メカニズムの解明が必要である。しかし、その分子メカニズムは、未だ不明な部分が多い。したがって、乳腺における免疫応答の分子メカニズムが明らかにされていないことから、乳房炎の早期治療を成し遂げる障壁は非常に大きい。そこで、乳房炎の早期発見方法が望まれる。

しかし、現在の標準的な乳房炎の検出方法であるＰＬテストは、すでに変性が見られるような乳房炎の中後期の段階にある乳汁を検体として実施するものであることから、乳房炎の早期発見のための感度が欠けている。そこで、乳房炎の早期発見方法としては、ＣＬ能測定法が有望とされている。しかし、ＣＬ能の測定には特殊な装置が必要であることから、ＣＬ能測定法は、経済性および困難性の観点から、各乳業農家が日常的に実施する方法としては適していない。したがって、これまでに各乳業農家が日常的に実施可能である程度の簡便かつ迅速な乳房炎の早期発見法については知られていない。

シクロフィリンＡは総細胞内タンパク質の約０．１〜０．４％の量を占めるとされており、肺炎や動脈瘤などの炎症においては肺上皮細胞や血管内皮細胞における発現が報告されている。しかし、シクロフィリンＡが炎症部位を特定するためのバイオマーカーとして使用されたという報告はない。

そこで、本発明は、従前の方法と比べて、簡便かつ迅速に乳房炎を早期に発見することに資する方法やバイオマーカーを提供することを、発明が解決しようとする課題とした。また、本発明は、該方法を使用するためのキット、該キットの成分および該成分の製造に供し得る物を提供することを、発明が解決しようとする課題とした。

本発明者らは、乳房炎の早期発見や早期治療を目指して、乳腺における免疫応答の分子メカニズムについて鋭意研究を進めた。その際に、種々の細胞および生体物質について着目しては棄却することを繰り返して試行錯誤した。たとえば、いくつかのケモカインやサイトカインに着目したが、乳房炎の早期発見や早期治療に結びつくものではなかった。本発明者らは、やがてシクロフィリンＡ（ＣｙＰＡ）に着目するに至った。

乳房炎を発症した乳腺上皮細胞におけるＣｙＰＡの発現やその可能性について、これまでに知られていなかった。しかし、本発明者らは、生体内の組織によっては、ＣｙＰＡを産生する細胞が炎症発生時に白血球遊走因子としてＣｙＰＡを細胞外へ放出し、炎症部位へ免疫細胞を動員する役割を担い得ることに着目して、乳房炎とＣｙＰＡとの関係を調べれば、乳房炎の早期発見の手がかりになるのではないかと考えた。そこで、本発明者らは、まず免疫組織化学的手法を用いて、乳房炎を発症した乳腺組織においてＣｙＰＡの発現量を調べた。そして、驚くべきことに、乳房炎の発症の程度によって、ＣｙＰＡの発現量が異なるという結果を得ることに成功した。次いで、本発明者らは、ウェスタンブロット法を用いて、乳房炎を発症した乳分房由来の乳汁におけるＣｙＰＡタンパク質の発現量を調べた。さらに驚くべきことに、乳汁中においても、乳房炎の発症の程度によって、ＣｙＰＡの発現量が異なるという結果を得ることに成功した。これらの結果は、乳腺組織内や乳汁中におけるＣｙＰＡを測定すれば、乳房炎を発症している乳分房を特定することができることを示すものである。さらに、従前の乳房炎の乳分房を特定する方法であったＰＬ法やＣＬ能測定法との並行実験を実施することにより、これらの方法では特定し得ない乳房炎の初期段階にある乳分房を、乳房炎を発症した乳分房、または乳房炎を発症する可能性がある乳分房として特定することに成功した。本発明は、これらの知見や成功例に基づき、完成された発明である。

したがって、本発明によれば、乳腺または乳汁におけるシクロフィリンＡ量を指標とした、乳腺疾患の検査方法が提供される。

本発明の別の側面によれば、下記（１）および（２）の工程を含む、乳腺疾患の検査方法が提供される。
（１）被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳汁中のシクロフィリンＡ量を得る工程
（２）前記乳汁中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する工程

好ましくは、本発明の方法において、前記工程（２）は、前記乳汁中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する工程である。

好ましくは、本発明の方法において、前記工程（２）が、前記乳汁中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量の２倍以上である場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する工程である。

本発明の別の側面によれば、下記（１’）および（２’）の工程を含む、乳腺疾患の検査方法が提供される。
（１’）被験体の乳房または乳分房から採取された乳腺におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳腺中のシクロフィリンＡ量を得る工程
（２’）前記乳腺中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する工程

好ましくは、本発明の方法において、前記工程（２’）は、前記乳腺中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳腺組織中のシクロフィリンＡ量よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する工程である。

好ましくは、本発明の方法において、前記乳腺疾患が、感染性の乳腺疾患である。

好ましくは、本発明の方法において、前記乳腺疾患が、乳房炎である。

好ましくは、本発明の方法において、前記被験体が、ヒトまたは非ヒト動物である。

好ましくは、本発明の方法において、前記非ヒト動物が、ウシ、ヤギ、スイギュウ、ヤク、ヒツジ、ウマおよびラクダからなる群から選ばれる。

好ましくは、本発明の方法において、前記シクロフィリンＡの検出が、ウェスタンブロット法、酵素結合免疫吸着測定法、酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ法）、放射免疫測定法（ＲＩＡ法）、蛍光偏光免疫測定法、化学発光免疫測定法、化学発光酵素免疫測定法、電気化学発光免疫測定法、ＥＬＩＳＰＯＴ法、免疫沈降アッセイ、沈降反応、ゲル拡散沈降反応、凝集イムノアッセイ、ラテックス凝集法およびクロマトグ
ラフィー法からなる群から選択される手法により実施される。

本発明の別の側面によれば、抗シクロフィリンＡ抗体からなる、乳腺疾患検査用試薬が提供される。

好ましくは、本発明の試薬において、前記抗シクロフィリンＡ抗体が、不溶性担体に固相化されている抗シクロフィリンＡ抗体である。

好ましくは、本発明の試薬において、前記不溶性担体が、ビーズ、プレートまたは薄膜である。

好ましくは、本発明の試薬において、前記乳腺疾患が、感染性の乳腺疾患である。

好ましくは、本発明の試薬において、前記乳腺疾患が、乳房炎である。

本発明の別の側面によれば、本発明の試薬を含む、乳腺疾患検査用キットが提供される。

本発明の別の側面によれば、抗シクロフィリンＡ抗体を産生する能力を有するハイブリドーマが提供される。

本発明の別の側面によれば、本発明のハイブリドーマによって生産される抗シクロフィリンＡ抗体が提供される。

本発明の別の側面によれば、シクロフィリンＡからなる、乳腺疾患検出用マーカーが提供される。

好ましくは、本発明のマーカーにおいて、前記乳腺疾患が、感染性の乳腺疾患である。

好ましくは、本発明のマーカーにおいて、前記乳腺疾患が、乳房炎である。

本発明の方法によれば、乳汁または乳腺組織中のシクロフィリンＡの発現量を指標とすることにより、従前の方法と比べて簡便かつ迅速に被験体における乳腺疾患の罹患部位を特定することができる。本発明の方法は、特に乳房炎の発症初期段階にある乳房または乳分房の特定に有用である。また本発明の方法は、非浸襲的方法であることから、乳房炎の予防にも応用できる可能性がある。

本発明の方法は、簡便かつ迅速に実施できる方法であることから、酪農場での実地測定が可能である。乳房炎は、早い時期に罹患判定ができれば、早期の搾乳停止、少量の抗生剤による治療開始、罹患期間の短縮、早期の搾乳再開などが可能となり、治療経費の抑制、搾乳量低下による収入の減少などの酪農家における経済的損失を最小限に抑えることができる。

乳牛は出産後１カ月時点が最も乳房炎に罹患し易く、その罹患率は約１０％といわれている。乳牛における乳房炎の発症またはその可能性を早期に検出できれば、早期治療を開始できるばかりではなく、より迅速な廃用を検討でき、いずれにしても経済的損失を最小限に抑えることができる。よって、本発明の方法は、酪農産業全体の経済的損失を減少させることに資する方法である。

本発明のキットは本発明の方法を実施するためのキットであることから、本発明のキットを用いれば、被験体から採取した乳汁を遠心分離して得た乳清中のシクロフィリンＡの存在量を抗原抗体反応により簡便かつ迅速に測定することができる。本発明のハイブリドーマおよび本発明の抗体は、本発明の方法や本発明のキットにおいて供される抗シクロフィリンＡ抗体を作製するためのもの、またはそれ自体のものである。したがって、本発明のハイブリドーマおよび本発明の抗体は、本発明の方法や本発明のキットを通じて、乳房炎の簡便かつ迅速な早期発見に資することができる。本発明のマーカーは、乳房炎の早期予測に優れたバイオマーカーである。

ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて、免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、ウシ正常乳腺組織では、乳腺胞が大きく間質は少ないことを示す。バーは、５００μｍである。 ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて、免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞は広く、乳腺上皮細胞は扁平であり、全てＣｙＰＡの発現が認められることを示す。バーは、１００μｍである。 ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて、免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺上皮細胞から乳汁を合成している細胞で、ＣｙＰＡ発現が弱く認められることを示す。バーは、１００μｍである。 ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、炎症が起きると、間質が肥大し免疫細胞の浸潤が多くなることを示す。バーは、５００μｍである。 ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞の萎縮に伴い異形の乳腺上皮細胞となり、ＣｙＰＡ発現が高いことを示す。バーは、１００μｍである。 ＳＥＣ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、強い免疫細胞浸潤部位でＣｙＰＡ発現がさらに高まること、および乳腺胞内乳汁中にＣｙＰＡが大量に分泌されていることを示す。バーは、１００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、支持組織の肥大はあるが、免疫細胞浸潤部位が無いことを示す。バーは、５００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞は広く，乳腺上皮細胞は扁平であることを示す。バーは、５００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺上皮細胞の大部分がＣｙＰＡを発現し、分泌される乳汁でわずかにＣｙＰＡ発現があることを示す。バーは、１００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、炎症乳腺では支持組織の肥大および一部乳腺胞の萎縮があることを示す。バーは、５００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、ＣｙＰＡ発現が確認される部位およびＣｙＰＡ発現が少ない部位があることを示す。バーは、５００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、ＣｙＰＡが確認される部位では、乳腺上皮細胞、乳汁および免疫細胞浸潤部位でＣｙＰＡが発現していることを示す。バーは、１００μｍである。 Ｓ．Ａ投与実験的乳房炎区の乳房炎が認められるウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、ＣｙＰＡ発現が少ない部位では、間質が肥大し乳腺胞の萎縮が確認されたこと、および乳腺上皮でわずかにＣｙＰＡが発現があることを示す。バーは、１００μｍである。 Ｌｆ投与による潜在性乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、間質が少なく乳腺胞は広いが、免疫細胞浸潤部位があることを示す。バーは、５００μｍである。 Ｌｆ投与による潜在性乳房炎区の正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、扁平な乳腺上皮細胞ではＣｙＰＡ発現が少なく、免疫細胞浸潤部位および浸潤細胞が見られる腺胞の乳腺上皮細胞でＣｙＰＡ発現が高いことを示す。バーは、１００μｍである。 乳酸菌産生ペプチド投与した正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞で萎縮している部位および萎縮していない部位があることを示す。バーは、５００μｍである。 乳酸菌産生ペプチド投与した正常なウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞が広く間質が少ない部位ではＣｙＰＡが発現していることを示す。バーは、１００μｍである。 乳酸菌産生ペプチド投与したウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、乳腺胞が萎縮し間質が肥大している部位ではＣｙＰＡ発現は少ないこと、およびＣｙＰＡが間質にいる免疫細胞にて強く発現していることを示す。バーは、１００μｍである。 潜在性乳房炎にＬｆを投与したウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、間質が少なく乳腺胞は広いが免疫細胞浸潤部位が多く見られることを示す。バーは、５００μｍである。 潜在性乳房炎にＬｆを投与したウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、間質肥大があり、免疫細胞浸潤部位および浸潤していない部位でＣｙＰＡ発現に違いがあることを示す。バーは、１００μｍである。 潜在性乳房炎にＬｆを投与したウシ乳腺について、乳腺実質部の乳腺組織の切片を作製し、抗ＣｙＰＡ（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて免疫染色を行うことによりＣｙＰＡ発現の局在を示した図である。図は、免疫細胞の浸潤部位がある乳腺上皮細胞や異形上皮細胞（←）でＣｙＰＡ発現が強いことを示す。バーは、１００μｍである。 還元処理の有無による表１における牛体番号８１の乳清中タンパク質のＣＢＢ染色結果を示した図である。左部は、非還元処理による乳汁中タンパク質の解析結果を示し、右部は還元処理した乳汁中タンパク質の解析結果を示す。６０ｋＤａ付近の矢印（→）は、炎症分房乳である解析番号９において、１６０ｋＤａのＥｇＧが還元処理により還元された様相を示す。５０ｋＤａ付近の矢印（→）は、タンパク質を還元処理してもバンドの発現があることを示す。 表１における牛体番号８１の試料を用いて、還元処理の有無による乳清中ＣｙＰＡタンパク質についてウェスタンブロット法を用いて解析した結果を示した図である。図は、抗ＣｙＰＡ抗体を用いないときに還元処理に関係なく、２次抗体による非特異な反応が無いことを示す。 表１における牛体番号８１の試料を用いて、還元処理の有無による乳清中ＣｙＰＡタンパク質についてウェスタンブロット法を用いて解析した結果を示した図である。図は、非還元処理において炎症分房乳である解析番号９のみにＣｙＰＡを検出することができ、還元処理において大部分の乳汁中にＣｙＰＡを検出するが炎症分房乳である解析番号９はＣｙＰＡ含量が非常に高いことを示す。 解析番号１〜４８（盲乳検体１９を含む）の乳汁を還元処理した後に、ウェスタンブロット法を用いて乳汁中ＣｙＰＡのタンパク質解析を行った結果を示した図である。図は、健常牛分房乳（解析番号３３〜４８）においてＣｙＰＡの発現が確認できたことを示す。 解析番号１〜４８（盲乳検体１９を含む）の乳汁を還元処理した後に、ウェスタンブロット法を用いて乳汁中ＣｙＰＡのタンパク質解析を行った結果を示した図である。図は、図１０Ａの健常牛分房乳（解析番号３３〜４８）におけるＣｙＰＡの発現量と比べて、乳房炎発症分房乳におけるＣｙＰＡ発現量が大きいことを示す。 解析番号１〜４８（盲乳検体１９を含む）の乳汁を還元処理した後に、ウェスタンブロット法を用いて乳汁中ＣｙＰＡのタンパク質解析を行った結果を示した図である。図は、図１０Ａの健常牛分房乳（解析番号３３〜４８）におけるＣｙＰＡの発現量と比べて、乳房炎発症分房乳におけるＣｙＰＡ発現量が大きいことを示す。 乳汁における化学発光能とＣｙＰＡ発現量との相関関係を示した図である。具体的には、図１０Ａ〜Ｃの解析結果を用いて、解析番号４２の発現量を基準として求めた乳汁中のＣｙＰＡの発現強度とＣＬ能とを対比させた図である。図は、乳汁におけるＣＬ能とＣｙＰＡ発現量との間において相関関係があることを示す（ｐ＜０．０００１）。図中の記号について、数値は解析番号、○はＰＬが陰性であり、かつ、ＣＬ＜１×１０^６ｃｐｍ／ｍｌであったサンプル、●はＰＬが陽性であり、かつ、ＣＬ≦５０×１０^６ｃｐｍ／ｍｌであったサンプル、□はＰＬが陰性であり、かつ、１×１０^６ｃｐｍ／ｍｌ≦ＣＬ＜５０×１０^６ｃｐｍ／ｍｌであったサンプルをそれぞれ示す。

以下、本発明の詳細について説明する。
１．乳腺疾患の検査方法
本発明の方法は、乳腺または乳汁におけるシクロフィリンＡ量を指標とした、乳腺疾患の検査方法である。

本発明の方法における検査対象は乳腺疾患である。乳腺疾患は、乳房や乳分房内にある乳腺に異常を来す病態の総称である。乳腺疾患としては、たとえば、細菌などの外来異物に起因する感染性の乳腺疾患や、乳癌や線維腺腫などの腫瘍性の乳腺疾患などが挙げられる。本発明の方法における乳腺疾患は特に限定されないが、乳房炎を発症した乳腺組織および乳汁においてシクロフィリンＡ量の増大が認められたことから、感染性の乳腺疾患であることが好ましく、乳房炎であることがより好ましい。

乳房炎は乳房内に病原体が侵入して起こる炎症性の疾病である。乳房炎は、（１）乳頭孔から黄色ブドウ球菌（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）や大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）などの細菌、カビ、酵母などの微生物が侵入することにより乳腺内で炎症が生じること、および／または（２）上記微生物などが産生するＬＰＳやＳＥｓなどの細菌毒素、コアグラーゼおよびその他のタンパク質が乳腺上皮細胞に定着することにより炎症反応が生じることにより発症すると推測されている。

乳房炎は臨床型乳房炎と潜在性乳房炎とに大別される。臨床型乳房炎は、乳房において腫れや熱などの症状が見られる、または乳汁においてブツや粘性などの変性が見られることにより、乳房や乳汁を肉眼で観察することにより判定し得るものである。潜在性乳房炎は、上記のような異常が見られないものであり、乳汁検査をすることによって判定できるものである。乳汁検査としては、従前では、乳汁における病原菌を検出する検査法、乳汁中の体細胞数（Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔ：ＳＣＣ）の増加や乳汁のｐＨの変化に基づくＰＬテスト（ＣＭＴ変法）、乳汁中の化学発光能（Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ：ＣＬ能）を測定するＣＬ能測定法により実施されてきた。本発明の方法は、乳汁検査の際に実施されてきた従前の方法に代替して、またはこれらと並行して実施される方法であることが想定されることから、本発明の方法における乳腺疾患として、さらに好ましいのは潜在性乳房炎である。

本発明の方法は、乳房炎を含む乳腺疾患の発症の判定に加えて、乳腺疾患の発症リスク予測や早期予測を含む、乳腺疾患の発症可能性の判定に利用することできる。

本発明の方法において、検体試料である乳腺は、当業者が通常使用する意味のものであれば特に限定はなく、通常は乳房の内部にある乳汁を分泌する機能を有する分泌腺をいう。乳腺において、単層の乳腺上皮細胞が乳腺胞の腔側に配列し、内外を隔てるバリア機能を有する。乳腺上皮細胞はサイトカインや抗菌ペプチドを産生することが知られている。また、乳腺には、乳腺上皮細胞間リンパ球（ｍａｍｍａｒｉａｌ Ｉｎｔｒａｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ：ｍＩＥＬ）が存在している。検体試料である乳腺は、乳腺組織そのものに加えて、乳腺上皮細胞などの乳腺組織を構成する部位であってもよい。本発明の方法における乳汁は、当業者が通常使用する意味のものであれば特に限定されず、通常は乳腺から分泌される液性物質をいう。

シクロフィリンＡ（ＣｙＰＡ）は、タンパク質のフォールディングに関与する因子であるペプチジル−プロリル・シス−トランス・イソメラーゼ（ｐｅｐｔｉｄｙｌ−ｐｒｏｌｙｌ ｃｉｓ−ｔｒａｎｓ ｉｓｏｍｅｒａｓｅ）活性を有するタンパク質である。ＣｙＰＡの分子量は約１８ｋＤａである。ＣｙＰＡのアミノ酸配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）の公共のデータベースであるＧｅｎＢａｎｋに登録されているものによれば、ウシ由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＤＡＡ３０４６８であり、ヒツジ由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＡＡＰ０３０８３であり、マウス由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＡＡＤ５０９６６であり、アカゲザル由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＮＰ＿００１０２７９８１であり、チンパンジー由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＡＢＢ７７８７６であり、ラット由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＮＰ＿０５８７９７であり、オランウータン由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＮＰ＿００１１２６０６０であり、およびヒト由来のものはＡＣＣＥＳＳＩＯＮ：ＮＰ＿０６６９５３ ＮＰ＿００１００８７４１であり、これらはそれぞれ配列表の配列番号１〜８として示される。また、ヤギとウマに関する遺伝子情報は現在までに登録されていない。本発明の方法では、これらのシクロフィリンＡのうち、検査対象となる被験体に由来するシクロフィリンＡを検出することが好ましい。

本発明の方法におけるシクロフィリンＡ量（ＣｙＰＡ）とは、ＣｙＰＡの存在量であれば特に限定されない。ＣｙＰＡ量は、絶対値および／または相対値で表してもよく、物理学的、化学的および／または生物学的に決定してもよい。したがって、本発明の方法は、特定の工程に制限されることなく、乳腺または乳汁におけるＣｙＰＡ量を指標とすることにより実施される。ただし、本発明の方法では、生体中に存在するＣｙＰＡ量を指標とするのではなく、生体から採取した乳腺または乳汁中のＣｙＰＡ量を指標とする。したがって、後述する本発明のマーカーは、生体から採取した乳腺または乳汁から分離されたＣｙＰＡを乳房炎検出用マーカーとしたものである。

本発明の方法の一態様は、下記（１）および（２）の工程を含む、乳腺疾患の検査方法である。
（１）被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳汁中のシクロフィリンＡ量を得る工程
（２）前記乳汁中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する工程

本発明の方法における被験体は特に限定されず、ヒトであっても非ヒト動物であってもよいが、潜在性乳房炎の発症可能性の判定が困難である非ヒト動物であることが好ましく、日常的に搾乳されている家畜動物であるウシ、ヤギ、スイギュウ、ヤク、ヒツジ、ウマおよびラクダなどがより好ましく、ウシがさらに好ましい。

乳房は乳腺の塊である乳腺葉を内包し、乳腺葉にある乳腺胞で生産された乳汁は乳管を経由して乳頭から体外へ分泌される。乳房は、上記構造を基本としつつも、動物種により異なった構造を採る。たとえば、ヒトは左右１対の独立した乳房を有するが、ウシは厚い中央提靱帯により左右に別けられ、さらに薄い隔壁により前後に分けられた、４つの独立した乳分房を有する。本発明の方法において、乳房および乳分房は当業者により通常知られる意味のものをそれぞれ指すが、具体例として、ヒトの乳房はヒトが有する左右１対のいずれかの乳房をいい、ウシの乳分房はウシが有する４つの独立したもののうちのいずれかの乳分房をいう。

被験体の乳房または乳分房から乳汁を採取する方法は特に限定されず、室温で乳房を圧搾することなどの当業者が通常使用する手段を採用することができる。採取する乳汁の量はＣｙＰＡを検出し得る程度の量であれば特に限定されず、ＣｙＰＡを検出する手段によって適宜変更できる。

乳汁は採取する時期（タイミング）は特に限定されないが、乳房炎を発症した乳分房から得られた乳汁において高感度でＣｙＰＡ量が上昇したという事実や乳房炎の疑いのある乳分房から得られた乳汁においてＣｙＰＡ量の上昇が認められたという事実を鑑みれば、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症可能性を判定する場合は、現に搾乳している、または搾乳する可能性のある乳房または乳分房から継続的または定期的に乳汁を採取することが好ましい。搾乳開始前または搾乳開始から早い段階で採取した乳汁を用いることにより、乳腺疾患の発症を早期に予測できる。また、乳腺疾患の早期予測の観点からいえば、いずれかの乳房または乳分房において乳房炎を発症している被験体に加えて、いずれの乳房または乳分房においても乳房炎の発症が認められていない被験体を対象にすることが好ましい。

ＣｙＰＡを検出する手法は特に限定されず、当業者により知られている特定のタンパク質もしくはポリペプチドまたはｍＲＮＡを検出する手法を応用して実施できる。本明細書において「シクロフィリンＡを検出する」とは、ＣｙＰＡ量を測定することと同義である。ＣｙＰＡの検出は、ＣｙＰＡ量を厳密に定量することが好ましいが、ＣｙＰＡ量を半定量的に測定してもよい。すなわち、比較すべき基準量と比較できる程度の量について、ＣｙＰＡ量を検出できればよい。ＣｙＰＡを検出する手法は、たとえば、ＣｙＰＡを分離する段階と分離したＣｙＰＡ量を得る段階とを別けて実施する手法でもよく、これらを一段階で実施する手法でもよい。

ＣｙＰＡの検出に際して、ＣｙＰＡを含む検体試料を還元処理することが好ましい。ＣｙＰＡを含む検体試料を還元処理する方法は特に限定されず、当業者により知られている還元処理手法を用いることができるが、たとえば、アスコルビン酸、β−メルカプトエタノール、ジチオスレイトールなどの還元性物質を用いた還元処理を挙げることができ、このうちβ−メルカプトエタノールを用いた還元処理が好ましい。

本発明の方法において、ＣｙＰＡの検出は、たとえば、ウェスタンブロット法、サンドイッチ法や競合法などの免疫学的手法に加えて、ＣｙＰＡのプロファイルを事前に取得することにより高速液体クロマトグラフィー法やゲル濾過クロマトグラフィー法などのクロマトグラフィーを原理とする分析化学的手法により実施できる。ＣｙＰＡの検出に採用できる手法は、たとえば、ウェスタンブロット法、酵素結合免疫吸着測定法、酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ法）、放射免疫測定法（ＲＩＡ法）、蛍光偏光免疫測定法、化学発光免疫測定法、化学発光酵素免疫測定法、電気化学発光免疫測定法、ＥＬＩＳＰＯＴ法、免疫沈降アッセイ、沈降反応、ゲル拡散沈降反応、凝集イムノアッセイ、ラテックス凝集法およびクロマトグラフィー法などが挙げられる。

ＣｙＰＡを検出する手段として、好ましくは免疫学的手法を利用する。免疫学的手法の中には迅速、簡便および高感度にＣｙＰＡ量を測定できる手法がある。免疫学的手法によるＣｙＰＡ量の検出には、抗ＣｙＰＡ抗体などのＣｙＰＡに特異的親和性を有する物質が使用される。ただし、抗ＣｙＰＡ抗体に限らず、ＣｙＰＡに特異的親和性を有し、かつ、ＣｙＰＡへの結合量を測定可能な物質であれば種々のものを用いることができる。ＣｙＰＡの検出には、検体中のＣｙＰＡを標識化抗体で直接検出する手法に加えて、抗原の補足と検出といった各種段階を設けた手法を採用してもよい。

ＣｙＰＡを検出する手法の一例として、ウェスタンブロット法がある。ウェスタンブロット法は、目的タンパク質の分離と定量とを別けて実施する手法の一つである。ＣｙＰＡを検出するためのウェスタンブロット法は特に限定されないが、その一例として、たとえば、次の方法が採用できる。まず、乳汁を遠心分離して得た乳清サンプルについて、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法によってＣｙＰＡとその他のタンパク質とを分離する。次いで、ゲル上のバンド（タンパク質）をメンブランへ転写する。次いで、メンブランに抗ＣｙＰＡ抗体を供する。次いで、メンブランに標識化した抗ＣｙＰＡ抗体に対する抗体を供する。次いで、メンブラン上のＣｙＰＡに相当するバンドの標識物質の量や活性を測定する。

ＣｙＰＡを検出するためのウェスタンブロット法は上記した方法に制限されることはなく、たとえば、標識化した抗ＣｙＰＡ抗体に対する抗体としては、酵素標識したものでもよく、蛍光標識したものでもよい。各種手順や条件は、当業者に知られる方法により適宜改変できる。

迅速、簡便および高感度にＣｙＰＡ量を測定できる免疫学的手法としては、ＦＩＡ法およびＥＩＡ法を挙げることができる。ＦＩＡ法では蛍光標識した抗体を用い、蛍光をシグナル（標識）として抗原−抗体複合体（免疫複合体）を検出する。ＥＩＡ法では酵素標識した抗体を用い、酵素反応に基づく発色ないし発光をシグナルとして免疫複合体を検出する。

ＥＩＡ法の一つとして、ＥＬＩＳＡ法がある。ＥＬＩＳＡ法は、検出感度が高いこと、特異性が高いこと、定量性に優れること、操作が簡便であること、多検体の同時処理に適することなど、多くの利点を有する。ＥＬＩＳＡ法には競合法、サンドイッチ法、直接吸着法などがある。

競合法は、検体とともに抗原を添加して、免疫複合体の形成を競合させることを原理とする手法である。サンドイッチ法では、通常、エピトープの異なる２種類の抗体（捕捉用抗体である１次抗体および検出用抗体である２次抗体）を用いる。これらについて以下に手順の概要を説明するが、これらの手法は以下の手順に限定されるものではない

競合法では、乳清サンプル中のＣｙＰＡタンパク質と標識化ＣｙＰＡタンパク質とを抗ＣｙＰＡ抗体に対して競合的に反応させ、次いで未反応の標識化ＣｙＰＡ（Ｆ）と、抗体と結合した標識化ＣｙＰＡ（Ｂ）とを分離し（Ｂ／Ｆ分離）、次いでＢ、Ｆいずれかの標識量を測定することにより、乳清サンプル中のＣｙＰＡタンパク質を定量する。競合法には、抗体として可溶性抗体を用いて、ポリエチレングリコールや抗ＣｙＰＡ抗体（１次抗体）に対する２次抗体などを用いてＢ／Ｆ分離を行う液相法、１次抗体として固相化抗体を用いる直接固相化法、１次抗体は可溶性のものを用い、２次抗体として固相化抗体を用いる間接固相化法などが用いられるが、格別な制限はない。

サンドイッチ法では、担体に固定化した第１の抗ＣｙＰＡ抗体に乳清サンプルを反応させ（１次反応）、次いで第１の抗ＣｙＰＡ抗体とは異なるエピトープを認識し、かつ、標識化されている第２の抗ＣｙＰＡ抗体を反応させ（２次反応）、次いで担体上の標識剤の量もしくは活性を測定する。サンドイッチ法について、たとえば、１次反応および２次反応は逆の順序で行ってもよく、さらに同時に行ってもよいし、時間をずらして行ってもよい。また、標識剤は当業者により適宜選択できるし、担体に固定化した抗体または標識化抗体については、測定感度を向上させるなどの目的で２種類以上の抗体の混合物を用いてもよい。

ＥＬＩＳＡ法を利用する場合の具体的な操作法の一例を次のとおりである。まず、抗ＣｙＰＡ抗体を不溶性担体に固定化する。具体的には例えばマイクロプレートの表面を抗ＣｙＰＡ抗体（１次抗体）で感作する（コートする）。このように固相化した抗体に対して乳汁や乳腺上皮細胞破砕物を遠心分離して得た検体試料を接触させる。この操作の結果、固相化した抗ＣｙＰＡ抗体に対する抗原（ＣｙＰＡ）が検体試料中に存在していれば免疫複合体が形成される。洗浄操作によって非特異的結合成分を除去した後、酵素を結合させた抗体（２次抗体）を添加することで免疫複合体を標識し、次いで酵素の基質を反応させて発色させる。そして、発色量を指標として免疫複合体を検出する。ＥＬＩＳＡ法の詳細については数多くの成書や論文に記載されており、各方法の実験手順や実験条件を設定する際にはそれらを参考にできる。

上記のＣｙＰＡを検出する手法を本発明の方法に適用するにあたって、現在の技術水準を上回るような特定の条件、操作などの設定事項は特に必要とされない。各手法における通常の条件、操作に、当業者が有する通常の技術的配慮を加えることによって、ＣｙＰＡタンパク質の測定系を構築すればよい。これらの一般的な技術手段の詳細については、総説、成書などを参照することができる。

たとえば、石川栄治ら編「酵素免疫測定法」（医学書院、昭和５３年発行）、石川栄治ら編「酵素免疫測定法」（第２版）（医学書院、昭和５７年発行）、石川栄治ら編「酵素免疫測定法」（第３版）（医学書院、昭和６２年発行）、入江 寛編「ラジオイムノアッセイ」（講談社、昭和４９年発行）、入江 寛編「統ラジオイムノアッセイ」（講談社、昭和５４年発行）、「Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ ＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹ」Ｖｏｌ．７０（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ａ））、同書Ｖｏｌ．７３（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ｂ））、同書Ｖｏｌ．７４（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ｃ））、同書Ｖｏｌ．８４（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ｄ：Ｓｅｌｅｃｔｅｄ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙｓ））、同書Ｖｏｌ．９２（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ｅ：Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ Ｍｅｔｈｏｄｓ））、同書Ｖｏｌ．１２１（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（Ｐａｒｔ Ｉ：Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ））（以上、アカデミックプレス社発行）などを参照することができる（該文献の記載はここに開示として援用される）。

本発明の方法では、工程（２）として、乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより得た乳汁中のシクロフィリンＡ量（測定ＣｙＰＡ量）に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する。乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性の判定は定性的、定量的のいずれであってもよい。定性的判定と定量的判定の例を以下に示す。ただし、以下に示す判定は、その判定基準から明らかな通り、当業者の判断によらずとも、プログラム的、自動的または機械的に行うことができる。

定性的判定の一例としては、測定ＣｙＰＡ量が基準値よりもが大きい場合に「乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患の発症可能性が高い」と判定し、測定ＣｙＰＡ量が基準値よりも小さい場合に「乳腺疾患は発症していない、または乳腺疾患の発症可能性が低い」と判定する。定性的判定の別の一例としては、測定ＣｙＰＡ量の増加が認められる「陽性」である場合に「乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患の発症可能性が高い」と判定し、測定ＣｙＰＡ量の増加が認められない「陰性」である場合に「乳腺疾患が発症していない、または乳腺疾患の発症可能性が低い」と判定する。

定量的判定の一例としては、以下に示すように測定ＣｙＰＡ量の範囲毎に乳腺疾患の発症可能性（％）を予め設定しておき、測定ＣｙＰＡ量から乳腺疾患の発症可能性（％）を判定する：測定ＣｙＰＡ量がａ〜ｂである場合、乳腺疾患の発症可能性は１０％以下である；測定ＣｙＰＡ量がｂ〜ｃである場合、乳腺疾患の発症可能性は１０％〜３０％である；測定ＣｙＰＡ量がｃ〜ｄである場合、乳腺疾患の発症可能性は３０％〜５０％である；測定ＣｙＰＡ量がｄ〜ｅである場合、乳腺疾患の発症可能性は５０％〜７０％である；測定ＣｙＰＡ量がｅ〜ｆである場合、乳腺疾患の発症可能性は７０％〜９０％である；測定ＣｙＰＡ量がｆより大きい場合、乳腺疾患を発症している。

乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性の判定に際して、ＣｙＰＡに加えて、他の乳腺疾患を判定する指標（ＰＬテストやＣＬ能など）を利用することができる。たとえば、ＣｙＰＡ量とＣＬ能とによって乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する場合、まず測定ＣｙＰＡ量に基づいて乳腺疾患の発症またはその発症可能性を判定し、乳腺疾患の発症可能性が高いとの判定結果が出たときに、ＣＬ能の検出を追加的に実施し、測定ＣｙＰＡ量とＣＬ能の検出結果とを総合的に判断することにより、乳腺疾患の発症可能性について最終的に判定する。すなわち、測定ＣｙＰＡ量を一次的な判定に利用し、ＣＬ能の検出結果を二次的な判定または最終的な判定に利用する。これとは逆に、ＣＬ能などの他の乳腺疾患を判定する指標の検出結果を一次的な判定に利用してもよい。

本発明の方法における工程（２）の好ましい一態様は、測定ＣｙＰＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量（基準ＣｙＰＡ量）よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する工程である。

本発明の方法において、健常な乳房または乳分房とは、現在乳腺疾患を発症していない、または乳腺疾患の発症可能性がない乳房もしくは乳分房であれば特に限定されないが、誤判定を導かないためにも、従前に乳腺疾患を発症していない、または従前に乳腺疾患の発症可能性が認めらていない乳房もしくは乳分房が好ましい。過去に乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性が認められた乳房もしくは乳分房については、その後の適切な処置により現在乳腺疾患を発症していない、または乳腺疾患の発症可能性がない乳房もしくは乳分房と認められれば、健常な乳房または乳分房として使用できるが、その見極めは慎重に期することが望ましい。

健常な乳房または乳分房からの乳汁の採取について、その方法や実施時期などは特に限定されず、たとえば、被験体の乳房または乳分房からの乳汁を採取する方法と同一の方法により、同時または異時に実施することができる。また、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量の検出について、その方法や実施時期などは特に限定されず、たとえば、被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出する方法と同一の方法により、同時または異時に実施することができる。

後述する実施例において、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁としては、解析番号４２の乳汁を用いている。また、本発明の方法において、解析番号４２の乳汁と同じように、被験体の同一個体の各分房から採取された乳汁（分房乳）が、それぞれ（１）ＰＬテストが陰性であること、（２）ＣＬ能が１×１０^６ｃｐｍ／ｍＬ未満であること、および（３）乳質の異常（ブツ、粘性）がないことといった要件を満たしている場合の各分房乳を「健常な乳房または乳分房から採取した乳汁」としてもよい。すなわち、後述する実施例において、解析番号４２の乳汁を含めて、解析番号４１〜４４の各乳汁を「健常な乳房または乳分房から採取した乳汁」として採用できる。

図１１は、ＰＬテストが陽性であった乳汁（解析番号２、７、８、９、１３，１５、２３，２７、２８、３２）の測定ＣｙＰＡ量は、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁（解析番号４１〜４４）の基準ＣｙＰＡ量よりも大きかったという事実が示されている。この事実に鑑みて、本発明の方法における工程（２）の好ましい一態様では、測定ＣｙＰＡ量が、基準ＣｙＰＡ量よりも大きいか否かを判定基準とする。すなわち、測定ＣｙＰＡ量が基準ＣｙＰＡ量よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する。

また、図１１におけるＰＬテストが陽性であった乳汁の測定ＣｙＰＡ量の最小値（４．０４３；解析番号８）は、基準ＣｙＰＡ値の最大値（１．４１９；解析番号４４）の２．８倍であり、基準ＣｙＰＡ値の平均値（１．０６５）の３．８倍であった。したがって、これらの結果に基づけば、本発明の方法における工程（２）の好ましい一態様において、より好ましくは測定ＣｙＰＡ量が基準ＣｙＰＡ量の２倍以上である場合に、さらに好ましくは測定ＣｙＰＡ量が基準ＣｙＰＡ量の２．８倍以上である場合に、なおさらに好ましくは測定ＣｙＰＡ量が基準ＣｙＰＡ量の３．３倍以上である場合に、特に好ましくは測定ＣｙＰＡ量が基準ＣｙＰＡ量の３．８倍以上である場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する。

本発明の方法の別の一態様は、下記（１’）および（２’）の工程を含む、乳腺疾患の検査方法である。
（１’）被験体の乳房または乳分房から採取された乳腺におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳腺中のシクロフィリンＡ量を得る工程
（２’）前記乳腺中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定する工程

本発明の方法における工程（１’）は、本発明の方法における工程（１）を応用して実施できる。被験体の乳房または乳分房から乳腺を採取する方法は特に限定されず、たとえば、乳房に注射針を刺して、乳腺上皮細胞を吸引することにより乳腺の一部を採取する穿刺吸引法や乳腺組織の一部を切除して採取する方法などの当業者が通常使用する手段を採用することができる。乳腺におけるＣｙＰＡを検出する手法は特に限定されず、細胞や組織などから特定のタンパク質、ポリペプチドまたはｍＲＮＡを検出する手段であればよい。

本発明の方法における工程（１’）の一例としては、次の手順が挙げられる。すなわち、被験体の乳分房に注射針を刺して、乳腺上皮細胞を吸引する。次いで、吸引して得た乳腺上皮細胞に標識化抗ＣｙＰＡ抗体を供する。次いで、標識化ＣｙＰＡ抗体の標識化物質を指標として、蛍光顕微鏡観察法あるいはフローサイトメトリー法などによりＣｙＰＡ量の絶対量または細胞あたりのＣｙＰＡ量を検出する。

本発明の方法における工程（１’）の別の例としては、採取した乳腺組織について免疫組織化学的手法によってＣｙＰＡ量を検出してもよく、採取した乳腺上皮細胞などの破砕物から乳汁中のＣｙＰＡ量の検出と同様の手法によりＣｙＰＡ量を検出してもよい。乳腺の採取やＣｙＰＡ量の検出は、検出されるべきＣｙＰＡ量が対比すべき基準量と比較できる程度の量であれば特に限定されない。

本発明の方法における工程（２’）は、本発明の方法における工程（２）を応用して実施できる。本発明の方法における工程（２’）の好ましい一態様は、乳腺中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳腺組織中のシクロフィリンＡ量よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳腺疾患が発症している、または乳腺疾患が発症する可能性があると判定する工程である。

本発明の方法において、最終的に被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の発症または乳腺疾患の発症可能性を判定することができれば、上記した工程以外の工程を採用することができる。すなわち、上記工程（１）と（２）との間、または工程（１’）と（２’）との間に別の工程を設けてもよい。本発明の方法は、当業者が技術水準から想到し得る程度において種々の改変が可能である。

本発明の方法は種々の目的のために利用可能であり、たとえば、乳腺疾患の予後を確認する方法、乳腺疾患の治療の経過を確認する方法、乳腺疾患の治療の適格性を確認する方法、乳腺疾患の治療効果の確認方法、乳腺疾患の治療剤をスクリーニングする方法などとしても利用可能である。

具体例として、乳腺疾患治療剤が投与された被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量を得る工程と、乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量、たとえば、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量や経時、経日、経週、経月または経年的に観察した乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳腺疾患の治療の経過、適格性もしくは効果を確認または判定する工程とを含む方法が挙げられる。また、化合物、タンパク質、抗体などの被験物質が投与された被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量を得る工程と、乳汁中または乳腺中のシクロフィリンＡ量に基づいて、乳腺疾患の治療および／または予防の効果を評価する工程と、治療効果・予防が高いと評価される被験物質を乳腺疾患治療剤として判定する工程とを含む方法が挙げられる。

２．乳腺疾患検査用試薬
本発明の乳腺疾患検査用試薬は、抗シクロフィリンＡ抗体（抗ＣｙＰＡ抗体）からなる。抗ＣｙＰＡ抗体は、ＣｙＰＡに対する特異的親和性を有する限り、その種類や由来などは特に限定されない。また、抗ＣｙＰＡ抗体は、モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体のいずれであってもよい。ポリクローナル抗体としては、免疫動物から採取した抗血清由来のＩｇＧ画分のほか、抗血清からＣｙＰＡを抗原とするアフィニティー精製して得た抗体を使用できる。また、市販されている抗体、たとえば、ａｂｃａｍ（登録商標） ｒａｂｂｉｔ−ａｎｔｉ ｈｕｍａｎ ＣｙＰＡ（ポリクローナル抗体）を使用できる。なお、上記市販抗体は、ヒトＣｙＰＡ抗体を認識する抗体ではあるが、ウシの乳汁中のＣｙＰＡに特異的に結合することができる。このように、抗ＣｙＰＡ抗体としては、抗原認識部位が異種のものであっても、被験体におけるＣｙＰＡに特異的に結合することができれば、使用することができる。

抗ＣｙＰＡ抗体は、ＣｙＰＡに対して特異的親和性を有する限り、その構造は特に限定されない。抗ＣｙＰＡ抗体のグロブリンタイプは特に限定されず、たとえば、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＤなどであり得る。また、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ抗体などの断片化抗体であってもよい。

抗ＣｙＰＡ抗体は、免疫学的手法、ファージディスプレイ法、リボソームディスプレイ法などを利用して調製することができる。免疫学的手法によるモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体は、以下の記載を参照して作製することができるが、これらに限定されるものではない。

モノクローナル抗体の作製として、まず、ＣｙＰＡまたはその部分ペプチドの抗原を、哺乳動物の抗体産生が可能な部位に、それ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与する。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。

抗原を入手する方法は特に限定されないが、乳腺上皮細胞などの生体試料から分離精製することや配列表の配列番号１に記載のアミノ酸配列の情報などに基づいて遺伝子工学的に作製した組換え体として入手することができる。組換え体は、たとえば、抗原をコードする遺伝子またはその一部を適当なベクターに導入し、次いで組換えベクターを適当な宿主に導入し、得られた形質転換体においてＣｙＰＡまたはその一部を発現させることにより作製することができる。

抗原の哺乳動物への投与は通常２〜６週毎に１回ずつ、計２〜１０回程度行われる。用いられる哺乳動物としては、たとえば、サル、ウサギ、イヌ、モルモット、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギなどが挙げられるが、マウスおよびラットが好ましく用いられる。

次いで抗原で免疫された哺乳動物から抗体価の認められた個体を選択する。次いで最終免疫の２〜５日後に脾臓またはリンパ節を採取して、抗体産生細胞を得る。抗体産生細胞として好ましいのは脾臓細胞である。得られた抗体産生細胞を、たとえば、同種または異種動物の骨髄腫細胞などと融合させることにより、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを作製することができる。融合操作は、既知の方法、例えば、ケーラーとミルスタインの方法（ネイチャー（Ｎａｔｕｒｅ）、２５６、４９５（１９７５））に従い実施することができる。融合促進剤は特に限定されないが、たとえば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）やセンダイウィルスなどを挙げることができ、好ましくはＰＥＧが用いられる。

骨髄腫細胞は特に限定されないが、たとえば、ＮＳ−１、Ｐ３Ｕ１、ＳＰ２／０、ＡＰ−１などの哺乳動物の骨髄腫細胞を挙げることができ、ＳＰ２／０が好ましく用いられる。抗体産生細胞（好ましくは脾臓細胞）数と骨髄腫細胞数との好ましい比率は、１：１〜２０：１程度であり、ＰＥＧ（好ましくはＰＥＧ１０００〜ＰＥＧ６０００、より好ましくはＰＥＧ４０００）が１０〜８０％程度の濃度で添加され、２０〜４０℃、好ましくは３０〜３７℃で２分間インキュベートすることにより効率よく細胞融合を実施できる。

ハイブリドーマの培養は、ＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン）を添加した動物細胞用培地を用いて実施することができる。たとえば、１〜２０％、好ましくは１０〜２０％のウシ胎仔血清を含むＲＰＭＩ−１６４０培地、１〜１０％のウシ胎仔血清を含むＧＩＴ培地（和光純薬工業（株））、ハイブリドーマ培養用無血清培地（ＳＦＭ−１０１、日水製薬（株））などを用いることができる。培養温度は、通常２０〜４０℃、好ましくは約３７℃である。培養時間は、通常４日〜２週間、好ましくは１週間程度である。培養は、通常５％炭酸ガスの存在下で行うことができる。

ハイブリドーマはモノクローナル化した後、ＣｙＰＡに対して高い特異性を有する抗ＣｙＰＡ抗体を産生するクローンを選択する。選択されたクローンの培養液を精製することによって目的のモノクローナル抗ＣｙＰＡ抗体が得られる。また、ハイブリドーマを所定数以上に増殖させた後、これを哺乳動物（マウスなど）の腹腔内に移植し、腹水内で増殖させて腹水を精製することにより目的のモノクローナル抗ＣｙＰＡ抗体を取得することもできる。

培養液の精製または腹水の精製には、モノクローナルＩｇＭ精製用のアフィニティークロマトカラムやプロテインＧ、プロテインＡなどを用いたアフィニティクロマトグラフィーなどが用いられる。また、抗原であるＣｙＰＡを固相化したアフィニティクロマトグラフィーを用いることもできる。さらには、モノクローナル抗体は、自体公知の方法、たとえば、当業者により免疫グロブリンの分離精製法として知られている、塩析法、硫安分画、アルコール沈殿法、等電点沈殿法、電気泳動法、ＤＥＡＥなどのイオン交換体による吸脱着法、超遠心法、ゲルろ過法、抗原結合固相またはプロテインＡもしくはプロテインＧなどの活性吸着剤により抗体のみを採取し、結合を解離させて抗体を得る特異的精製法などを採用して分離精製することができる。これらの方法は単独または任意に組み合わされて用いられる。

ＣｙＰＡまたはその部分ペプチドの抗原に対するポリクローナル抗体は、自体公知の方法に従って製造することができる。たとえば、免疫する抗原自体または抗原とキャリアータンパク質との複合体を作製し、次いで上記のモノクローナル抗体の作製法と同様に哺乳動物に免疫を行い、次いで適度に抗体価が上昇した時点で、得られた免疫動物から抗ＣｙＰＡ抗体含有物を採取し、次いで抗体の分離精製を行うことによりＣｙＰＡに対するポリクローナル抗体を得ることができる。

抗原は、免疫抗原とキャリアータンパク質との複合体を用いてもよい。キャリアータンパク質としては、ＫＬＨ（Ｋｅｙｈｏｌｅ Ｌｉｍｐｅｔ Ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）、ＢＳＡ（Ｂｏｖｉｎｅ Ｓｅｒｕｍ Ａｌｂｕｍｉｎ）、ＯＶＡ（Ｏｖａｌｂｕｍｉｎ）などが使用できる。キャリアータンパク質の結合にはカルボジイミド法、グルタルアルデヒド法、ジアゾ縮合法、マレイミドベンゾイルオキシコハク酸イミド法などを使用できる。さらに、ヒスチジン（Ｈｉｓ）タグなどとの融合タンパク質のように、構造が一部改変された抗原を用いることもできる。融合タンパク質などの改変抗原は、当業者により知られる汎用的な方法により作製および精製することができる。

キャリアータンパク質の種類およびキャリアーとハプテンとの混合比は、キャリアーに架橋させて免疫したハプテンに対して抗体が効率良くできれば特に限定されないが、たとえば、ウシ血清アルブミンやウシサイログロブリン、ヘモシアニンなどを重量比でハプテン１に対し、約０．１〜２０、好ましくは約１〜５の割合でカプリングさせる方法が用いられる。

ハプテンとキャリアーのカプリングには、種々の縮合剤、たとえば、グルタルアルデヒドやカルボジイミド、マレイミド活性エステル、チオール基、ジチオビリジル基を含有する活性エステル試薬などが用いられる。

ポリクローナル抗体は、上記の方法で免疫された哺乳動物の血液、腹水など、好ましくは血液から採取することができる。免疫動物から得た血液を遠心分離することなどによって得た抗血清中のポリクローナル抗体価の測定は、たとえば、酵素や蛍光などの標識剤で標識化した標識化ＣｙＰＡと抗血清とを反応させた後、抗体に結合した標識剤の量や活性を測定することにより行うことができる。ポリクローナル抗体の分離精製は、上記のモノクローナル抗体の分離精製と同様の免疫グロブリンの分離精製法に従って行うことができる。たとえば、抗血清をアフィニティー精製して、ポリクローナル抗体とすることができる。

さらに、抗ＣｙＰＡ抗体は、遺伝子工学的手法や分子生物学的手法によって作製することができる。たとえば、ウシなどの被験体に由来するＣｙＰＡを認識する抗体における抗原認識部位を解析し、該抗原認識部位を有し、かつ、それ以外の部分が被験体由来である組換え抗体をコードする核酸を得ることによって作製することができる。また、ウシなどの被験体の抗体産生に関わる遺伝子を他の動物種、たとえば、マウスの胚やマウス由来の抗体産生細胞に移入し、このようにして得られるマウスやマウス抗体産生細胞と、抗原としてウシ由来のＣｙＰＡとを用いることにより、完全ウシ化抗体を得ることができる。これらの方法に用いられる遺伝子工学的手法や分子生物学的手法は、これらまでに知られている方法を制限なく用いることができ、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ Ｅｄ．， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ．，１９８９やＣｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ １〜３８，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ（１９８７−１９９７）などに記載されている方法を参照することができる（該文献の記載はここに開示として援用される）。

抗ＣｙＰＡ抗体は、ＣｙＰＡへの特異的親和性を保持することを条件として、種々の改変が施されたものであってもよい。このような改変抗体もまた、本発明の試薬として用いることができる。

抗ＣｙＰＡ抗体として標識化抗体を使用すれば、標識剤を指標に結合抗体量を直接的に検出することが可能である。したがって、抗ＣｙＰＡ抗体の一態様は、標識化抗ＣｙＰＡ抗体である。

標識剤は特に限定されないが、ペルオキシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、アルカリンホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼおよびグルコース−６−リン酸脱水素酵素などの酵素；フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）、ユーロピウム、フィコエリトリン（ＰＥ）、Ｃｙ２、Ｃｙ３およびＣｙ５などの蛍光物質；ルミノール、イソルミノールおよびアクリジニウム誘導体などの化学発光物質；ＮＡＤなどの補酵素；ビオチンなどの特定のタンパク質；１３１Ｉおよび１２５Ｉなどの放射性物質などが挙げられる。

たとえば、標識剤としてペルオキシダーゼを用いる場合、発色基質としては、ＤＡＢ（３，３’−Ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅｔｅｔｒａ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）やＯＰＤ（ｏ−Ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）などが利用可能である。その他の例としては、標識剤としてアルカリンホスファターゼを用いる場合、発色基質としては、Ｂｒｏｍｏｃｈｏｒｏ ｉｎｄｏｌｅ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ／ｎｉｔｒｏ ｂｌｕｅ ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍやＮＰＰ（ｐ−Ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｄｉｓｏｄｉｕｍｓａｌｔ ｈｅｘａｈｙｄｒａｔｅ）などが使用可能である。

本発明の試薬は、その用途に合わせて不溶性担体に固相化されていてもよい。固相化に用いる不溶性担体は特に限定されないが、たとえば、ポリスチレン樹脂、ポリカーボネート樹脂、シリコン樹脂、ナイロン樹脂、フッ素樹脂などの樹脂；ビーズ、プレート、薄膜などのガラス系材料；不織布、濾紙などの多孔性材料などの水に不溶性の不溶性担体を用いることができる。不溶性担体へ抗体を担持する方法は特に限定されず、当業者において通常知られている物理吸着または化学吸着に基づく手法によって実施することができる。

３．乳腺疾患検査用キット
本発明のキットは、主要構成要素として本発明の試薬を含む。乳腺疾患の検査法を実施する際に使用するその他の試薬（緩衝液、ブロッキング用試薬、酵素の基質、発色試薬など）に加えて、器具や装置（容器、反応装置、蛍光リーダーなど）などをキットに含めてもよい。また、標準試料としてＣｙＰＡをキットに含めることが好ましい。さらには、ＣｙＰＡの検出以外の乳腺疾患の検査法に用いるための試薬、器具、装置などをキットに含めることも可能である。たとえば、乳腺疾患の判定精度を高めるために、ＰＬテスト用の試薬、器具および／または装置をキットに含めることができる。本発明のキットには、通常の市販されているキットと同様に、取り扱い説明書が添付されることが好ましい。

本発明のキットにおいて、抗ＣｙＰＡ抗体は標識化されていてもよい。ただし、抗原と結合する１次抗体である抗ＣｙＰＡ抗体を標識化する場合、抗原の検出感度が低くなるという問題が生じ得る。そこで、標識剤を結合させた２次抗体を利用する方法、２次抗体と標識剤とを結合させた担体を利用する方法などといった、間接的検出方法を利用することが好ましい。２次抗体は、抗ＣｙＰＡ抗体に対して特異的親和性を有する抗体であれば特に限定されないが、たとえば、ウサギ抗体として抗ＣｙＰＡ抗体を調製した場合には、抗ウサギＩｇＧ抗体を使用できる。ウサギ、ヤギ、マウスなどの様々な種の抗体に対して使用可能な標識化２次抗体が、たとえば、タカラバイオ株式会社やコスモ・バイオ株式会社などにおいて市販されているので、本発明の試薬に応じて適切なものを適宜選択して、本発明のキットに含めることができる。

本発明のキットの好ましい一態様は、本発明の試薬である抗ＣｙＰＡ抗体（１次抗体）と抗ＣｙＰＡ抗体に対する標識化抗体（２次抗体）とを含むキットである。本発明の試薬である抗ＣｙＰＡ抗体が固相化されている場合は、２次抗体は１次抗体とは異なるエピトープを認識する抗原認識部位を有するものであることが好ましい。本発明の好ましい一態様では、標識剤の種類に応じて、発色基質や発色試薬などの免疫複合体を検出する試薬が含まれていることがなお好ましい。本発明のキットの別の好ましい一態様は、検体を適用する部位Ａ、標識化抗体を含有した部位Ｂおよび抗原検出部位Ｃを含む多孔性担体からなるキットである。標識化抗体を含有した部位Ｂには、湿潤状態において移動可能なＣｙＰＡに対する標識化抗体を含有せしめている。抗原検出部位Ｃには、標識化抗体とは別の部位を認識するＣｙＰＡに対する抗ＣｙＰＡ抗体を固相化せしめている。抗ＣｙＰＡ抗体は、ＣｙＰＡを結合した標識化抗体とＣｙＰＡを介してサンドイッチ状で複合体（標識化抗体−ＣｙＰＡ−抗ＣｙＰＡ抗体）を形成する。検体適用部位Ａと標識化抗体部位Ｂとを同一部位に位置させてもよい。本態様では、液性検体内にＣｙＰＡが存在する場合、液性検体を検体適用部位Ａに適用すると、標識化抗体含有部位ＢにおいてＣｙＰＡと標識化抗体が結合し、次いでこの結合物が抗原検出部位Ｃに移動すると、固相化された抗ＣｙＰＡ抗体と複合体を形成することにより捕集される。そこで、着色ラテックス、染料ゾル、金コロイドなどの肉眼により可視化できる標識物質が使用される場合、抗原検出部位Ｃにおける標識の有無により、検体中のＣｙＰＡの存在および／または量が確認できる。

４．抗ＣｙＰＡ抗体産生ハイブリドーマおよび抗ＣｙＰＡ抗体
本発明のハイブリドーマは、抗シクロフィリンＡ抗体を産生する能力を有する。本発明の抗体は、本発明のハイブリドーマによって生産される抗シクロフィリンＡ抗体である。本発明のハイブリドーマは抗ＣｙＰＡ抗体を産生する能力を有する抗体産生細胞と骨髄腫細胞などの腫瘍細胞または不死化細胞とを融合させて得られる融合細胞であれば特に限定されない。本発明の抗体は、ＣｙＰＡに対して特異的親和性を有する抗体であれば特に限定されない。本発明のハイブリドーマや抗体の構造および機能、確認方法、製造方法ならびに使用方法については、上記した抗ＣｙＰＡ抗体や抗ＣｙＰＡ抗体を産生するハイブリドーマに関する記載を参照できる。

本発明のハイブリドーマおよび抗体を得る方法としては、上記した方法以外にも、後述する実施例に記載があるような、ウシ腸管上皮細胞株（ＢＩＥ細胞）に由来するＭ−ＢＩＥ細胞に特異的なモノクローナル抗体をスクリーニングすることにより得ることができる。すなわち、Ｍ−ＢＩＥ細胞を哺乳動物（たとえば、マウス）に免疫し、次いで免疫動物から抗体産生細胞を摘出する。次いで抗体産生細胞と免疫動物と同種の動物（マウス）のミエローマ細胞とを細胞融合させて、ＨＡＴ培地を用いた培養によりハイブリドーマを得る。次いで、免疫組織化学染色法を用いることによって、ウシ腸管上皮においてＦＡＥを特異的に認識する抗体を産生するハイブリドーマを選抜し、クローニングする。次いでクローン化細胞をマウスの腹腔に投与し、免疫マウスの腹水由来のモノクローナル抗体（２Ｈ５−Ｆ３）を精製分離する。次いで、２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体とＭ−ＢＩＥ細胞の細胞質画分および細胞膜画分から回収したタンパク質とを混合し、免疫沈降に供する。次いで、免疫沈降により得られたタンパク質溶解液をＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離し、バンドを染色する。次いで、２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体に特異的なバントについて解析すると、２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体が特異的に認識する抗原はＣｙＰＡであることが判明し、もって２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体が抗ＣｙＰＡ抗体であると同定される。

５．乳腺疾患検出用マーカー
本発明のマーカーは、シクロフィリンＡからなる、乳腺疾患検出用マーカーである。本発明のマーカーは、乳腺疾患、特に感染性の乳腺疾患である乳房炎の発症またはその発症可能性の指標となる生体分子のことをいう。本発明のマーカーは、生体中に存在するシクロフィリンＡそのものではなく、生体から採取された乳腺や乳汁から分離されたシクロフィリンＡが本発明のマーカーとして利用される。本発明のマーカーは、乳房炎の早期検出に特に有用である。

本発明のマーカーが乳房炎の早期検出に有用であることは、乳房炎の発症およびその現象を注意深く観察することによって、正常乳腺組織と比べると、乳房炎を発症した乳腺組織におけるウシ乳腺上皮細胞や免疫細胞浸潤部位、さらには乳汁においてＣｙＰＡ発現量の増大が認められという本発明者らによって初めて見出された事実から類推することができる。特に、本発明者らは、従前からの乳房炎の検査法であるＰＬテストおよびＣＬ能を用いて、乳房炎を発症していると判定された分房乳において、ＣｙＰＡが比較的高濃度であったという事象を確認した。この事象を鑑みれば、本発明のマーカーは、臨床型乳房炎に加えて、潜在性乳房炎の発症の判定に用いられるマーカーである。

さらに、本発明者らは、ＰＬテストが陰性であり、かつ、ＣＬ能が低い乳汁において、乳タンパク質の構成変化は認められないが、ＣｙＰＡ量の増大が確認されたものを見出した。さらに本発明者らは、これらの乳汁を採取した乳分房のうちいくつかは乳房炎の発症を認めたという事実を得た。この事実に従えば、本発明のマーカーは、ＣｙＰＡを指標にすれば、乳房炎の早期検出に加えて、ＰＬテストやＣＬ能によっては判断することが難しい、乳房炎の発症可能性を高感度に検出できるマーカーである。すなわち、本発明のマーカーを用いれば、乳房炎の初期段階にある部位を特定することが可能である。

以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明は実施例に制限されるものではない。

第１ 乳腺組織におけるシクロフィリンＡの局在
１．材料および方法
（１）試料
乳房炎発症乳腺組織として、下記Ａ〜Ｃに示す三種の実験区のホルスタイン泌乳牛のうち、実験的乳房炎または潜在性乳房炎の発症が認められた乳房から採取した乳腺組織を用いた。乳腺組織は、ウシを屠殺した後直ちに採取し、すみやかにＰＬＰ固定液またはリン酸緩衝ホルマリン固定液を用いて、４℃で一晩固定した。固定後７０％エタノール、８０％エタノール、９０％エタノール、９５％エタノールにそれぞれ１２時間浸し、さらに１００％エタノールに２４時間組織を浸し、段階的に脱水を行った。脱水後、トルエン、パラフィンにそれぞれ６時間浸した後、パラフィンに包埋した。また、各実験区のホルスタイン泌乳牛のうち、ＰＢＳを投与して処理した乳房から採取した乳腺組織を対照正常乳腺組織として用いた（Ｔｏｓｈｉｎｏｂｕ Ｋｕｒｏｉｓｈｉら、Ｃｌｉｎ Ｄｉａｇｎ Ｌａｂ Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００３；１０：１０１１−１０１８；Ｋａｉ Ｋら、Ｊ Ｖｅｔ Ｍｅｄ Ｓｃｉ．２００２；６４：８７３−８を参照、該文献の記載はここに開示として援用される）。乳酸菌産生ペプチドは、カワイらの文献（Ｋａｗａｉ Ｙら，Ｂｉｏｓｃｉ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９９７；６１：１７９−８２、該文献の記載はここに開示として援用される）に記載の方法にしたがって精製した。

Ａ．ＳＥＣ投与実験区
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃａｌ Ｅｎｄｏｔｏｘｉｎｓ Ｃ（ＳＥＣ）をＰＢＳ １０ｍＬに溶かした０．１μｇ／μｌ ＳＥＣ溶液を乳頭よりホルスタイン泌乳牛の乳分房へ投与して乳房炎を発症させた実験的乳房炎（ＰＬＰ固定パラフィン包埋乳腺組織；ホルスタイン泌乳牛；分娩後日数 約３００日）をＳＥＣ投与実験区とした。

Ｂ．Ｓ．Ａ投与実験区
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃａｓ ａｕｒｅｕｓ（Ｓ．Ａ）をＰＢＳ １０ｍＬに溶かした１５４ｃｆｕ／ｍｌ Ｓ．Ａ溶液を乳頭よりホルスタイン泌乳牛の乳分房へ投与して乳房炎を発症させた実験的乳房炎（リン酸緩衝ホルマリン固定パラフィン包埋乳腺組織およびバイオプシーより得た乳腺組織；ホルスタイン泌乳牛；分娩後日数 約６０日）をＳ．Ａ投与実験区とした。

Ｃ．Ｌｆ投与実験区
ラクトフェリン（Ｌｆ）または乳酸菌産生ペプチドをＰＢＳ １０ｍＬに溶かした１０ｍｇ／ｍＬまたは２０ｍｇ／ｍＬ Ｌｆ溶液を乳頭よりホルスタイン泌乳牛の乳分房へ投与した潜在性乳房炎（ＰＬＰ固定パラフィン包埋乳腺組織；ホルスタイン泌乳牛；分娩後日数 約３０５日：乾乳導入５日）をＬｆ投与実験区とした。

（２）試薬
本発明者らが作製した抗ＣｙＰＡ抗体（２Ｈ５−Ｆ３抗体）を用いて、免疫組織化学染色により、乳腺組織におけるＣｙＰＡの局在を確認した。２Ｈ５−Ｆ３抗体は以下［ｉ］および［ｉｉ］の手順により作製した。

［ｉ］ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ｍ細胞特異的なモノクローナル抗体の作製
本発明者らは、ウシ腸管上皮細胞株（ＢＩＥ細胞）の樹立とそのｉｎ ｖｉｔｒｏ Ｍ細胞（Ｍ−ＢＩＥ細胞）への分化誘導法を確立している。（Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｎｅｗｌｙ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｂｏｖｉｎｅ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ，Ｋ．Ｍｉｙａｚａｗａ，Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ （２０１０）ｖｏｌ．１３３，ｐ１２５−１３４、該文献の記載はここに開示として援用される）。Ｍ−ＢＩＥ細胞を２．７×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ−ＰＢＳの濃度に調整し、ＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内に０．５ｍｌを免疫した。１４日後、４．０×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ−ＰＢＳに調整したＭ−ＢＩＥ細胞の０．３ｍｌを同一マウスの尾静脈から投与し、追加免疫した。その５日後に、免疫したマウスより脾細胞を採取し、５０％（ｗ／ｖ） ポリエチレングリコール（ＰＥＧ４０００）を用いて、ＳＰ２／０−ａｇ１４−Ｋ１３マウスミエローマ細胞と融合した。融合したハイブリドーマは、ＨＡＴ培地 （２ｍＭ ｇｌｕｔａｍａｔｅ，０．２％ ｇｌｕｃｏｓｅ，１０％ ＦＢＳ，１００μＭ ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ，０．４μＭ ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎｅ，１６μＭ ｔｈｙｍｉｄｉｎｅを含むＲＰＭＩ−１６４０）を用いて選抜した。選抜したハイブリドーマから、下記の免疫組織化学染色によってウシ腸管上皮においてＦＡＥを特異的に認識する抗体を産生するウェルを選抜し、限界希釈法によって更なるクローニングを行った。クローニングにより最終的に得られたクローン化細胞をＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔に投与した。ＢＡＬＢ／ｃマウスの腹水由来のモノクローナル抗体は、ＨｉＴｒａｐ ＩｇＭ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ＨＰ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅ ＡＢ，Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）を用いて精製した。抗体のサブクラスはｍｏｕｓｅ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ ｋｉｔ（Ｄａｉｎｉｐｐｏｎ Ｓｕｍｉｔｏｍｏ Ｐｈａｒｍａ）で決定し、２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体とした。

［ｉｉ］作製した抗体が認識する抗原の同定
Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｎｏｖａｇｅｎ）を用いてＭ−ＢＩＥ細胞の細胞質画分および細胞膜画分、それぞれのタンパク質を回収した。抽出した細胞膜画分のタンパク質を６０μｌ（２．０μｇ／μｌ）と２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体１．０μｌ（２．４５μｇ／μｌ）を混合し、４℃で一晩静置した。次にμＭＡＣＳ ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ（Ｍｉｌｔｅｎｙ Ｂｉｏｔｅｃｈ）５０μｌと混合し、４℃で１時間静置した後、免疫沈降を行った。免疫沈降で得られたタンパク質溶解液をＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離し、Ｓｉｌｖｅｒ Ｓｔａｉｎ ＭＳ Ｋｉｔ（Ｗａｋｏ）で染色した。２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体特異的なバントを抽出し、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ解析を行った。また、免疫沈降で得られたタンパク質をウェスタンブロッティングして、２Ｈ５−Ｆ３モノクローナル抗体との反応性を解析した。その結果、２Ｈ５−Ｆ３抗体の認識する抗原はシクロフィリンＡであることを同定した。

（３）免疫組織化学染色およびＣｙＰＡの局在の確認方法
各実験区のパラフィン包埋乳腺組織から厚さ４μｍの切片を作製し、以下の手順でＣｙＰＡについて免疫組織化学染色を行った。

Ａ．１日目
切片を脱パラフィン化して得た乳腺組織を５分間水洗し、次いでＴａｒｇｅｔ Ｒｅｔｒｉｅｖａｌ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ Ｌｏｗ ｐＨ（Ｄａｋｏ）を用いて１２１℃で５分間の抗原賦活化処理に供した。処理後の乳腺組織を、ＰＢＳで３分間洗浄し、これを３回繰り返した。洗浄後の乳腺組織を、３％ 正常ヤギ血清／ＰＢＳを用いて２０分間のブロッキング処理に供した。処理後の乳腺組織を、抗ＣｙＰＡ抗体２，０００倍希釈／ＰＢＳを用いて、４℃で１４時間の一次抗体反応に供した。

Ｂ．２日目
反応後の乳腺組織を、ＰＢＳで３分間洗浄し、これを３回繰り返した。洗浄後の乳腺組織を、Ｈｉｓｔｏｆｉｎｅ Ｓｉｍｐｌｅｓｔａｉｎ ＭＡＸ−ＰＯ（Ｍ）（Ｎｉｃｈｉｒｅｉ）を用いて室温で２０分間の二次抗体反応に供した。反応後の乳腺組織を、ＰＢＳで３分間洗浄し、これを３回繰り返した。洗浄後の乳腺組織を、０．００２５％ ３．３’−ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ（同仁、熊本、日本）＋０．００６％ Ｈ_２Ｏ_２／０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）を用いて、室温で１分間のＤＡＢ発色反応に供した。反応後の乳腺組織を蒸留水（ＤＷ）で数秒間洗浄した。洗浄後の乳腺組織を、室温にて２０秒間のヘマトキシリン対比染色に供した。染色後の乳腺組織を、６０分間、流水により洗浄した。洗浄後の乳腺組織を、脱水および透徹し、マリノール（武藤化学）を用いて封入した。

上記の免疫組織化学染色を終えた乳腺組織の標本について、光学顕微鏡（Ａｘ７０，オリンパス）を用いて観察した。

２．結果
（１）ＳＥＣ投与実験区の乳腺組織の観察
ウシ乳腺におけるＣｙＰＡの発現を免疫組織化学染色により観察した。ＳＥＣ投与実験区の対照正常乳腺組織において、ＣｙＰＡは乳腺胞に局在していた（図１Ａ）。乳腺胞の乳腺上皮細胞で均一にＣｙＰＡが発現していた（図１Ｂ）。微量であるが乳腺胞内にある乳汁でＣｙＰＡが弱く発現していた（図１Ｃ）。

ＳＥＣ投与実験区の乳房炎発症乳腺組織におけるＣｙＰＡの発現は、対照正常乳腺組織と同様に、乳腺上皮細胞で認められた（図２Ａ）。しかし、対照正常乳腺組織と比較すると、乳房炎発症乳腺組織における乳腺上皮細胞、乳汁および細胞浸潤部位では、より強くＣｙＰＡが発現していた（図２Ｂ、２Ｃ）。

（２）Ｓ．Ａ投与実験区の乳腺組織の観察
ウシ乳腺におけるＣｙＰＡの発現を免疫組織化学染色により観察した。Ｓ．Ａ投与実験区の対照正常乳腺組織において、ＳＥＣ投与実験区の対照正常乳腺組織と同様に、乳腺胞の乳腺上皮細胞でＣｙＰＡが均一に発現していたこと、および乳汁で微量にＣｙＰＡが発現していたことが確認された（図３Ａ〜３Ｃ）。

乳房炎発症乳腺組織では、ＳＥＣ投与実験区の乳房炎発症乳腺組織と同様に、乳腺上皮細胞、乳汁および免疫細胞浸潤部位にて対照正常乳腺組織より強度のＣｙＰＡ発現が確認された（図４Ａ〜Ｃ）。また、Ｓ．Ａ投与実験区における乳房炎発症乳腺組織の中では、間質が肥大かつ萎縮した乳腺胞および乳腺上皮細胞が認められた（図４Ａ）。これはＳ．Ａ投与実験区のウシが搾乳最後期であったことに起因すると推測される。Ｓ．Ａ投与実験区における乳房炎発症乳腺組織のうち、間質が肥大することにより萎縮した乳腺胞および乳腺上皮細胞におけるＣｙＰＡの発現量は、萎縮していない乳腺胞および乳腺上皮細胞と比べて、それぞれ減少していた（図４Ｄ）。

（３）Ｌｆ投与実験区の乳腺組織の観察
ウシ乳腺におけるＣｙＰＡの発現を免疫組織化学染色により観察した。治療のためにラクトフェリンを投与したＬｆ投与実験区の対照正常乳腺組織において、ＳＥＣおよびＳ．Ａ投与実験区のＰＢＳ投与乳腺組織（対照正常乳腺組織）と同様に、乳腺上皮細胞および乳汁でＣｙＰＡの発現が確認された（図５Ａ〜Ｂ、図６Ａ〜Ｃ）。間質が肥大し萎縮した乳腺胞および乳腺上皮細胞のＣｙＰＡ発現は、ＳＡ投与実験区の乳房炎発症乳腺と同様に、萎縮していない乳腺胞および乳腺上皮細胞と比べて減少していた（図６Ｃ）。また潜在性乳房炎発症した乳腺組織では、上記の実験的乳房炎組織と同様に、正常乳腺組織と比較すると、乳腺上皮細胞、乳汁および免疫細胞浸潤部位でＣｙＰＡが高発現していた。（図７Ａ〜Ｃ）。

３．小括
上記の結果から、正常な乳房から採取した乳腺組織において、ＣｙＰＡが細胞内タンパク質として乳腺上皮細胞および乳汁に存在することが確認された。また、細菌毒素であるＳＥＣおよび細菌であるＳ．Ａを投与して乳房炎を発症させた乳房から採取した乳腺組織においても、同様にＣｙＰＡが発現した。特に、正常乳腺組織と比べて、乳房炎発症乳腺組織における乳腺上皮細胞、乳汁および免疫細胞浸潤部位のＣｙＰＡ発現は強かった。搾乳最後期などに見られる間質が肥大化することにより萎縮した乳腺胞および乳腺上皮細胞では、萎縮していない乳腺胞や乳腺上皮細胞と比較すると、それぞれＣｙＰＡの発現量が低下した。

第２ 乳房炎発症乳分房由来の乳汁中におけるシクロフィリンＡの発現解析
１．材料および方法
（１）試料
供試牛として宮城県畜産試験場で飼育されたホルスタイン泌乳牛を用いた。ＰＬテスターおよびＣＬ能の結果より乳房炎を発症していると診断されたホルスタイン泌乳牛８頭および罹患歴がない健常ホルスタイン泌乳牛４頭の合計１２頭の供試牛を用いた。乳汁サンプルとして全分房乳、計４８サンプル（内１分房は盲乳処置中）を使用した。表１に、試験で使用した乳汁サンプルのデータを示した。

（２）試薬
ウェスタンブロット法でのＣｙＰＡの解析には、市販のポリクローナル抗体である抗ＣｙＰＡ抗体（ｒａｂｂｉｔ−ａｎｔｉ ｈｕｍａｎ ＣｙＰＡ；Ａｂｃａｍ（登録商標））を用いた。

（３）ウェスタンブロット法による乳清中ＣｙＰＡタンパク質の検出法
Ａ．乳汁サンプル中の乳清タンパク質の抽出およびタンパク定量
次の手順で乳汁サンプル中の乳清タンパク質を抽出および定量した。乳汁サンプルを１，１００Ｇ、４℃、２０分間の遠心処理に供した。処理後の乳汁サンプルから乳脂肪および沈殿物を除去し、乳清を採取した。採取した乳清をＰｉｅｒｃｅ（登録商標）ＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて、３７℃で３０分間インキュベートした。インキュベート後の乳清について、ＤＳ ＰＨＡＲＭＡ ＢＩＯＭＥＤＩＣＡＬを用いてタンパク濃度を測定したところ、１４μｇ／μｌとの定量結果を得た。

Ｂ．ウェスタンブロット法
タンパク定量した後の乳清サンプルを用いて、以下の手順でＣｙＰＡタンパク質の解析を行った。

（Ａ）メルカプトエタノール（２ＭＥ）を添加しない方法；非還元処理
１日目として、タンパク定量した後の乳清サンプル中のタンパク質を、ＰＡＧＥＬ（ＡＴＴＯ；Ｅ−Ｔ５２０Ｌ）を用いて、タンパク質濃度が２１μｇ／ｌａｎｅになるようにＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離した。分離したタンパク質をＩｍｍｏｂｉｏｎ−Ｐ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ｍｅｍｂｒａｍｅｓ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）のメンブランとセラミドライシステム（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）を用いて、６０分間、１．２ｍＡ／ｃｍ^２で該メンブランへ転写した。転写後のメンブランをＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎで、１０分間を３回繰り返すことにより洗浄（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０／ＴＢＳ；ＴＢＳ−Ｔ）した。洗浄後のメンブランを、６０分間のブロッキング処理（３％ ｎｏｒｍａｌ ｇｏａｔ ｓｅｒｕｍ／ＴＢＳ−Ｔ）に供した。処理後のメンブランを、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎにて、１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランを、４℃で１４時間の一次抗体反応（抗ＣｙＰＡ抗体１，０００倍希釈／ＴＢＳ−Ｔ）に供した。

２日目として、反応後のメンブランを、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎを用いて１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランを、アルカリリン酸化酵素結合ｇｏａｔ−ａｎｔｉ ｒａｂｂｉｔ ＩｇＧ（ＺＹＭＥＤ）を用いて、室温で６０分間の二次抗体反応に供した。反応後のメンブランをＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎを用いて１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランをさらにＴＢＳを用いて５分間洗浄した。洗浄後のメンブランを、ＥＣＦ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて、室温で５分間発色させた。発色後のメンブランから、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍａｇｅｒ ＦＸ（ＢｉｏＲａｄ）を用いることによって、バンドを検出した。

（Ｂ）２ＭＥを添加した方法；還元処理
１日目として、５％ ２ＭＥを加えたタンパク定量後の乳清サンプル中のタンパク質を、ＰＡＧＥＬ（ＡＴＴＯ；Ｅ−Ｔ５２０Ｌ）を用いて、タンパク質濃度が２１μｇ／ｌａｎｅになるように、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離した。分離したタンパク質をＩｍｍｏｂｉｏｎ−Ｐ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ｍｅｍｂｒａｍｅｓ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）のメンブランとセラミドライシステム（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）を用いて、６０分間、１．２ｍＡ／ｃｍ^２でメンブランへ転写した。転写後のメンブランをＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎ（０．１％Ｔｗｅｅｎ２０／ＴＢＳ；ＴＢＳ−Ｔ）で１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランを、６０分間のブロッキング処理（３％ ｎｏｒｍａｌ ｇｏａｔ ｓｅｒｕｍ／ＴＢＳ−Ｔ）に供した。ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎを用いて１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランを４℃で１４時間の一次抗体反応（抗ＣｙＰＡ抗体１，０００倍希釈／ＴＢＳ−Ｔ）に供した。

２日目として、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎを用いて１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄後のメンブランをアルカリリン酸化酵素結合ｇｏａｔ−ａｎｔｉ ｒａｂｂｉｔ ＩｇＧ（ＺＹＭＥＤ）を用いて、室温で６０分間の二次抗体反応に供した。反応後のメンブランをＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎを用いて１０分間を３回繰り返すことにより洗浄した。洗浄したメンブランを、ＴＢＳを用いて５分間洗浄した。洗浄後のメンブランを、ＥＣＦ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（ＢＤ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて室温で５分間発色させた。発色後のメンブランから、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍａｇｅｒ ＦＸ（ＢｉｏＲａｄ）を用いることによって、バンドを検出した。

Ｃ．Ｃｏｍｍａｓｓｉｅ Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ（ＣＢＢ）染色
タンパク定量した乳清サンプルを用いて、次の手順で乳清中のタンパク質の解析を行った。乳清サンプル中のタンパク質を、ＰＡＧＥＬ（ＡＴＴＯ；Ｅ−Ｔ５２０Ｌ）を用いてタンパク質濃度が２１μｇ／ｌａｎｅになるようにＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離した。分離後のゲルを、５分間のＭＱ洗浄を３回繰り返した。洗浄後のゲルを、ＵＬＴＲＡ−ＦＡＳＴ Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｓｔａｉｎ（ＮＲＶ，ＵＳＡ）を用いて、室温で２０分間の発色処理に供した。処理後のゲルにおけるバンドを確認した。

（４）ＣｙＰＡ発現強度測定
上記（３）Ｂ（Ｂ）の手順で、乳清サンプル中のタンパク質を分離した。分離後のゲルから、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍａｇｅｒ ＦＸを用いてバンドを検出および撮影した。撮影して得たイメージファイルを、Ｐｈｏｔｓｈｏｐ ５．０ ＬＥ．を用いてグレースケールにより白黒反転させた。白黒反転させて得たイメージファイルを、ＮＩＨイメージ（ＮＩＨ ｉｍａｇｅｒ Ｖｅｒ．１．６２，ＵＳＡ）のｇｅｌ ｐｌｏｔｔｉｎｇ Ｍａｃｒｏｓを用いて解析し、バンド強度を測定した。バンド強度を測定して得たＣｙＰＡの濃度は、表１の牛体番号１０８の右後分房の乳汁サンプル（解析番号４２）を基準として数値化した。また、得られたＣｙＰＡ濃度とＣＬ値との相関関係を解析した。

２．結果
（１）乳汁中ＣｙＰＡの検出方法の確立
牛体番号８１の分房別乳汁サンプル（解析番号９−１２）を用いて、タンパク質解析を行った。Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｂｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ（ＣＢＢ）染色を行った結果、還元処理した非感染分房乳汁サンプル（解析番号１０−１２）および乳房炎発症分房乳汁サンプル（解析番号９）の解析結果として、６５ｋＤａ付近にてバンドが検出された（図８）。これは本来１６０ｋＤａ程度のＩｇＧが還元されて得たものと推測される。また、非還元処理で見られた５０ｋＤａ付近のタンパク質は、還元処理後には検出されなかった。

ウェスタンブロット法を用いてタンパク解析を行った。非還元処理および還元処理に関係なく、二次抗体による乳汁サンプル中のＣｙＰＡへの非特異的な反応は見られなかった。非還元処理において、乳房炎発症分房乳汁サンプル（解析番号９）においてＣｙＰＡが検出された（図９Ａ〜Ｂ）。しかし、他の非感染分房乳汁サンプル（解析番号１０−１２）においてＣｙＰＡは検出されなかった。一方、還元処理した非感染分房乳汁サンプルおよび乳房炎発症分房乳汁サンプルにおいてＣｙＰＡが検出され、乳房炎発症分房乳汁サンプル（解析番号９）のバンド強度は相対的に非常に高かった。したがって、還元処理を行うことで、乳汁サンプル中のＣｙＰＡを検出することが可能であることが判明した。

（２）乳汁サンプル中のＣｙＰＡ発現解析
上記（１）から、乳房炎に罹患している泌乳牛に由来する乳汁サンプル中にＣｙＰＡタンパク質が検出されたことから、全乳汁サンプル（解析番号１−４８、ただし解析番号１９は盲乳処置中）について還元処理を行い、得られた乳清サンプル中のＣｙＰＡタンパク質を解析した。健常牛分房乳汁サンプル（解析番号３３−４８）および乳房炎発症乳汁サンプル（解析番号１−３２）を用いた解析では、ＣｙＰＡタンパク質が検出された（図１０Ａ〜Ｃ）。健常牛分房乳は乳房炎発症分房乳と比べ、ＣｙＰＡタンパク質が少なかった。一方、乳房炎発症乳の非感染分房乳（解析番号１，３−６，１０−１２，１４，１６，１８−２２，２４−２６，２９）は、乳房炎発症分房乳（解析番号２，７−９，１３，１５，１７，２３，２７，２８，３０−３２）より、ＣｙＰＡタンパク質が少なかった。

（３）乳汁サンプル中のＣｙＰＡとＣＬ能との相関関係
健常牛の分房乳汁サンプルで乳性状、ＰＬテストおよびＣＬ能が低かった牛体番号１０８の解析番号４２の乳汁サンプルを標準として、全乳汁サンプルのＣｙＰＡ発現強度を測定した。解析番号１−４８（ただし解析番号１９は盲乳処置中）のＣｙＰＡ発現の相対値を算出した（表２）。ＣＬ能とＣｙＰＡ発現強度には相関関係が見られた（ｐ＜０．０００１）（図１１）。ＣＬ能の上昇に伴い、ＣｙＰＡ発現強度も増加することが明らかになった。

３．小括
非還元処理した乳清サンプルのウェスタンブロットでは、非感染分房乳汁サンプルにおいてＣｙＰＡは検出されなかった。しかし、高いＣＬ能を示す乳房炎発症分房乳汁サンプルからは、ＣｙＰＡを大量に検出した。一方、乳清タンパク質の還元処理を行ったところ、健常牛由来乳汁サンプルおよび乳房炎発症牛由来乳汁サンプルの乳清中にＣｙＰＡが検出された。

還元処理をした全乳汁サンプルからウェスタンブロット法によりＣｙＰＡの発現解析を行った結果、乳房炎の罹患歴の無い健常牛分房乳汁サンプル（解析番号３３−４８）、乳房炎を発症した牛の非感染分房乳汁サンプル（解析番号１，３−６，１０−１２，１４，１６，１８−２２，２４−２６，２９）および乳房炎発症分房乳汁サンプル（解析番号２，８，９，１３，１５，１８，２７，２８，３２）において、ＣｙＰＡタンパク質が検出された。健常牛分房乳汁サンプルは、乳房炎発症牛の非感染分房乳汁サンプルおよび乳房炎発症分房乳汁サンプルに比べて、ＣｙＰＡタンパク質の量が少なかった。乳房炎発症牛の非感染分房乳汁サンプルは、乳房炎発症分房乳汁サンプルと比べて、ＣｙＰＡタンパク質の量が少なかった。またＰＬテスト陽性およびＣＬ能が高い分房乳汁サンプル（解析番号２，８，９，１３，１５，１８，２７，２８，３２）のＣｙＰＡタンパク質の量は非常に多かった。このことは、正常乳腺組織および乳房炎発症乳腺組織における乳腺上皮細胞および乳腺胞内のＣｙＰＡ発現強度の傾向と一致している。

ＣＬ能の上昇に伴い、乳汁サンプル中のＣｙＰＡタンパク質の量が増すことが示された。乳房炎とＣｙＰＡ発現増加に相関関係があるという結果が得られた。回帰直線からＣＬ値が１×１０^４ｃｐｍ／ｍｌ時のＣｙＰＡ発現強度は、５．５であった（図１１）。ＣＬ能は１×１０^６ｃｐｍ／ｍｌ以上が乳房炎と規定されている。ＣＬ能が１×１０^６ｃｐｍ／ｍｌ未満であり、かつ、ＣｙＰＡ発現強度が５．５以上にある分房乳汁サンプル（解析番号１，３，１２，１６，１８，２０−２２，２６）が存在した。これらの分房乳のＣｙＰＡ発現強度は健常牛より高かった。さらに乳汁サンプル（解析番号１，３，１２，１６，１８，２０−２２，２６）のＣＬ値は、ＰＬテスト結果により乳房炎発症と診断された分房乳汁サンプル（解析番号８，２７）より高かったことから、これらの分房乳汁サンプルは乳房炎の初期症状にある蓋然性がある。実際に、解析番号２６の乳汁サンプルを採取した乳分房では、その後乳房炎の発症が確認された。

Claims (8)

1. 乳腺または乳汁におけるシクロフィリンＡ量を指標とした、乳房炎の検査方法。
2. 下記（１）および（２）の工程を含む、乳房炎の検査方法。
   （１）被験体の乳房または乳分房から採取された乳汁におけるシクロフィリンＡを検出することにより乳汁中のシクロフィリンＡ量を得る工程
   （２）前記乳汁中のシクロフィリンＡ量に基づいて、被験体の乳房または乳分房における乳房炎の発症または乳房炎の発症可能性を判定するためのデータを提供する工程
3. 前記工程（２）は、前記乳汁中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量よりも大きい場合に、被験体の乳房または乳分房において乳房炎が発症している、または乳房炎が発症する可能性があると判定するためのデータを提供する工程である、請求項２に記載の方法。
4. 前記工程（２）は、前記乳汁中のシクロフィリンＡ量が、健常な乳房または乳分房から採取した乳汁中のシクロフィリンＡ量の２倍以上である場合に、被験体の乳房または乳分房において乳房炎が発症している、または乳房炎が発症する可能性があると判定するためのデータを提供する工程である、請求項２に記載の方法。
5. 抗シクロフィリンＡ抗体からなる、乳房炎検査用試薬。
6. 前記抗シクロフィリンＡ抗体が、不溶性担体に固相化されている抗シクロフィリンＡ抗体である、請求項５に記載の試薬。
7. 請求項５〜６のいずれか１項に記載の試薬を含む、乳房炎検査用キット。
8. シクロフィリンＡからなる、乳房炎検出用マーカー。