JP6115979B2 - Smnタンパク質の発現を検出する方法 - Google Patents
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- G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
- G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
- G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
- G01N21/6428—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes"
- G01N2021/6439—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks
-
- G—PHYSICS
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- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
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Description
I型SMAは、SMAの約30%を占めており、6ヶ月以下で発症する。その症状は極めて深刻で、生涯座位保持不可能であり、人工呼吸を使わずに2歳以上生存できることは稀である。II型SMAは、生涯起立及び歩行は不可能であり、III型SMAは、自立歩行を獲得するものの、次第に転びやすい、歩けない又は立てないという症状が現れる。しかしながら、依然としてSMAの根本治療法は確立しておらず、SMAは国が指定する難病のうちの1つである。
また、SMN1遺伝子が存在する5番染色体の同領域には、SMN1遺伝子とコーディング領域の塩基が1つだけ異なるSMN2遺伝子が存在している。小児期発症SMA患者では、SMN1遺伝子が欠失又は変異し、SMN1遺伝子由来のSMNタンパク質が低下している一方で、SMN2遺伝子は正常に機能している。そのため、小児期発症SMA患者においても、SMN2遺伝子由来のSMNタンパク質は発現しており、このSMN2遺伝子由来のSMNタンパク質の発現量に応じて、症状の重症度が異なると考えられている。
しかしながら、SMN1遺伝子の転写産物は全長SMNmRNAであるのに対し、SMN2遺伝子の転写産物は、SMN1遺伝子から転写される全長SMNmRNAの量を100%とすると、全長SMNmRNAがおよそ10%であり、エクソン7の欠失が認められる短縮型SMNmRNAがおよそ90%である。短縮型SMNmRNAは非機能的なタンパク質に翻訳され、全長SMNmRNAのみが正常にSMNタンパク質に翻訳されるため、SMN1遺伝子が欠失又は変異している小児期発症SMA患者においては、SMNタンパク質の発現量が正常者に比べて低く、正常者の10%〜20%ほどしかない。そのため、SMN1遺伝子が欠失又は変異することにより、筋力低下及び筋萎縮が生じることとなる。
以上のように、SMNタンパク質の発現量は、小児期発症SMAと密接に関連しており、SMNタンパク質は、小児期発症SMAの診断のためや、薬剤の効果を的確に判断するための有用なバイオマーカーとなる可能性があると考えられている。しかしながら、小児期発症SMA患者においても、SMNタンパク質の発現自体は認められ、SMNタンパク質を小児期発症SMAの有用なバイオマーカーとして利用するためには、正常者と患者とを比較した場合のSMNタンパク質発現レベルの差異を検出できるほどの鋭敏さが必要となる。
また、小児期発症SMAは常染色体劣性遺伝性疾患であり、1対の常染色体のうちの一方においてのみSMN1遺伝子が欠失又は変異している場合には、何ら筋力低下及び筋萎縮の症状は現れず、保因者ということになる。保因者においては、患者よりもSMNタンパク質の発現量は高いものの、保因者と患者との間では、正常者と患者との間のSMNタンパク質の発現量の差ほど大きな差があるわけではないと考えられる。従って、SMNタンパク質を小児期発症SMAの有用なバイオマーカーとして利用するためには、保因者と患者とを比較した場合のSMNタンパク質発現レベルの差異を検出できるほどの更なる鋭敏さが必要となる。
また、ELISA法によるSMNタンパク質の定量解析においては、末梢血単核球細胞(PBMC)を用いることを必要とし、患者らから得られた血液サンプルを遠心分離するなどの手間がかかる上に、細胞の収率も低下する。そのため、PBMCを用いるELISA法によるSMNタンパク質の定量では、必要とされる採血量も増大する。
また、全血(末梢血)や、全血中の赤血球を溶血させて得たもの等の血液サンプルを用いて、正常者と小児期発症SMA患者を比較した場合のSMNタンパク質発現レベルの差異を検出することができる、信頼性のあるSMNタンパク質の検出方法も、これまで報告されていない。
本発明は、小児期発症SMA患者と正常者との間において、及び/又は小児期発症SMA患者と保因者との間において、SMNタンパク質発現レベルの差異を検出することができる、血液細胞サンプルを用いた信頼性のあるSMNタンパク質の発現を検出する方法を提供することを目的とする。
本発明の一態様において、SMNタンパク質の発現を検出する方法であって、
血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識する工程、
前記サンプル中の前記有核細胞の核を標識する工程、
前記有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程、並びに
前記選別した細胞集団について、SMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する工程
を含む、前記検出方法が提供される。
本発明の一態様では、SMNタンパク質発現の検出方法において、血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識する工程が、SMNタンパク質を第1の蛍光色素により標識することを含み、かつ、血液由来の有核細胞を含むサンプル中の有核細胞の核を標識する工程が、核を第2の蛍光色素により標識することを含む。
本発明の一態様では、SMNタンパク質発現の検出方法において、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程が、第1の蛍光色素が発する第1の蛍光強度と、第2の蛍光色素が発する第2の蛍光強度とを同一装置内で測定すること、並びに測定した第1及び第2の蛍光強度を二次元座標上で表すことを含む。
本発明の一態様では、SMNタンパク質発現の検出方法において、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程及びSMNタンパク質の発現を検出する工程が、イメージングフローサイトメトリーにより行われる。
本発明の一態様では、SMNタンパク質発現の検出方法において、血液由来の有核細胞を含むサンプルが、血液中の赤血球を溶血させ、次いで遠心分離により沈殿させた有核細胞を含む。
血液を遠心分離して血液由来の有核細胞を含むサンプルを準備する工程、
前記血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識する工程、
前記サンプル中の前記有核細胞の核を標識する工程、
前記有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程、並びに
前記選別した細胞集団について、SMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する工程
を含む、前記検出方法が提供される。
また、本発明の一態様によれば、血液約500μLでSMNタンパク質の発現の検出が可能であり、SMAの治療薬又は治療候補薬の試験においてSMNタンパク質をバイオマーカーとする際、特に、小児の患者から血液を採取する際に有益な方法を提供することができる。
本発明のSMNタンパク質の発現を検出する方法では、被験者から得た血液に由来するサンプルが用いられる。血液サンプルは、患者への侵襲が少なく、試料として最も適している。被検者は、例えば、小児期発症SMA患者、保因者、又は小児期発症SMA患者でも保因者でもない者(正常者)であり、特に限定されるものではない。小児期発症SMA患者には、I型SMA患者、II型SMA患者及びIII型SMA患者が含まれる。
本発明の方法に用いられる、被験者から得た血液に由来するサンプルは、血液由来の有核細胞を含むものであればよい。本発明の方法に用いられる、被験者から得た血液に由来するサンプルは、血液由来の有核細胞を含むように処理したものである限り、被験者から得た血液をどのように処理したものであってもよい。例えば、本発明の方法に用いられる血液由来の有核細胞を含むサンプルとして、被験者から得た血液を遠心分離し、末梢血単核球細胞(PBMC)として分離したものや、血液中の赤血球を溶血させ、次いで遠心分離により沈殿させて得た有核細胞を含むものを使用することができるが、これらに限定されるものではない。
本発明の方法において、被験者から得た血液を処理して血液由来の有核細胞を含むサンプルを得る方法としては、細胞の収率が良く、できるだけ細胞を傷つけない方法が好ましい。例えば、血液中の赤血球を溶血させ、次いで遠心分離により沈殿させた有核細胞を分離する方法(溶血法)では、被験者からの採血量が少なくてすみ、かつ血液細胞に対して与えるストレスも小さい。そのため、本発明の方法において、溶血法を用いて、被験者から得た血液を処理して血液由来の有核細胞を含むサンプルを得ることが好ましい。特に、SMAの治療薬又は治療候補薬の試験においてSMNタンパク質をバイオマーカーとして利用する際に、溶血法を用いれば、小児の患者等からの採血量が少なくてすむため有利である。
また、本発明の方法において、血液由来の有核細胞を含むサンプルとして、上記の通り従来知られている技術により血液由来の有核細胞を分離した後、細胞をリンパ芽球化したものを含むサンプルを使用してもよい。リンパ芽球化の処理についても、本発明の技術分野において従来知られている技術を用いることができる。
血液を遠心分離して血液由来の有核細胞を含むサンプルを準備する工程が、溶血法による有核細胞の分離を含む場合、溶血剤による溶血後の遠心分離は約1400〜約2300rpmで、約5〜約8分間行うことが好ましい。
血液を遠心分離して血液由来の有核細胞を含むサンプルを準備する工程が、PBMCの分離を含む場合、ヘパリン管に採血してフィコール液と重層した後、若しくは血液をBDバキュテイナ(登録商標)CPTTM単核球分離用採血管に入れた後、遠心分離は約2000〜約3200rpmで、約15〜約20分間行うことが好ましい。
血液を遠心分離して血液由来の有核細胞を含むサンプルを準備する工程は、本発明の技術分野において従来知られている技術を用いて行うことができる。
本発明の方法において用いられる、被験者由来の血液の量は、SMNタンパク質の発現が可能な量であればよく、特に限定されないが、例えば、約0.5mL以上、好ましくは約1mL以上であり、約3mL以下、好ましくは約2mL以下である。なお、従来の、末梢血単核球細胞(PBMC)を用いた、ELISA法によるSMNタンパク質の定量解析では、少なくとも4mLの血液量が必要とされる。従って、本発明の一実施態様では、必要とされる血液量が少ない点で有利である。
SMNタンパク質は、SMAの原因遺伝子であるSMN遺伝子により発現されるタンパク質であり、運動ニューロンの形成等に関与していると考えられている。SMN遺伝子には、SMN1遺伝子とSMN2遺伝子が存在する。両者ともに5番染色体長腕5q13に存在しており、SMN2遺伝子は、SMN1遺伝子とコーディング領域の塩基が1つだけ異なっている。しかしながら、正常なSMNタンパク質に翻訳される、SMN1遺伝子から転写される全長SMNmRNAの量を100%とすると、SMN2遺伝子の転写産物は、全長SMNmRNAがおよそ10%であり、エクソン7の欠失が認められる短縮型SMNmRNAがおよそ90%である。短縮型SMNmRNAからは非機能的なタンパク質が生成され、運動ニューロンの形成には役立たない。
本発明の方法において、血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識するために、本発明の技術分野において従来知られている技術を用いることができる。ここで、SMNタンパク質の標識は、全長SMNmRNAから翻訳される正常なSMNタンパク質を標識できるものであればよいが、短縮型SMNmRNAから翻訳される非機能的なタンパク質をも標識するものであっても構わない。
本発明の方法において用いられる、標識試薬と結合した抗SMN抗体または一次抗体として用いる抗SMN抗体は、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体であってもよく、市販品を利用することができる。例えば、抗SMN抗体の市販品としては、Millipore社のMilli-MarkTMや、BD社、Abcam社、Sigma-Aldrich社から提供される抗体等が挙げられる。
本発明の方法において、血液由来の有核細胞を含むサンプル中の有核細胞の核を標識するために蛍光色素を用いる場合、例えば、試薬として、Hoechst 33342、Hoechst 33258、4, 6-diamino-2-phenylindole(DAPI)、Propidium iodide(PI)、蛍光標識抗ヒストン抗体、蛍光標識抗ラミン抗体等が挙げられる。
本発明の方法の一実施態様では、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団は、インタクトな細胞(生細胞)を100%、95%以上、90%以上、85%以上、80%以上、75%以上、70%以上、65%以上、60%以上、55%以上又は50%以上含む集団である。
本発明の方法の一実施態様では、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団は、本明細書の下記実施例1に記載の通り核及びSMNタンパク質を蛍光色素により標識し、その蛍光強度を下記実施例1に記載の通り検出した場合、核の蛍光強度が約1×105以上であり、かつSMNタンパク質の蛍光強度が約1×103以上である細胞を含む集団である。このような細胞は、インタクトな細胞であると認められる。
また、顕微鏡観察にて細胞の形態を保っており、かつアスペクト比(縦横比)と表面積を保っている細胞は、インタクトな細胞であると認められる。
インタクトな細胞の判別又はインタクトな細胞を含む細胞集団の判別は、有核細胞中の核及びSMNタンパク質の標識方法によってその基準が異なるが、使用される標識試薬に基づく有核細胞中の核及びSMNタンパク質の検出結果に基づき適宜行うことができる。
本発明の方法において、検出の対象となる有核細胞は、リンパ球、単球、顆粒球、造血系幹細胞及び血管内皮前駆細胞を含むことが好ましい。
本発明の方法の一実施態様では、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程は、第1の蛍光色素が発する第1の蛍光強度と、第2の蛍光色素が発する第2の蛍光強度とを同一装置内で測定することを含む。また、本発明の方法の一実施態様では、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程は、第1の蛍光色素が発する第1の蛍光強度と、第2の蛍光色素が発する第2の蛍光強度とを同一装置内で測定すること、並びに測定した第1及び第2の蛍光強度を二次元座標上で表すことを含む。この場合、二次元座標上で細胞集団を選別すれば十分であり、物理的に細胞集団を選別することは必ずしも必要ではない。第1の蛍光色素が発する第1の蛍光強度と、第2の蛍光色素が発する第2の蛍光強度とを同一装置内で逐次的に測定することで、操作の迅速性を担保することができる。また、二次元座標上で細胞集団を選別することでも、操作の迅速性を担保することができる。
そこで、本発明の方法においては、1以上の表面抗原マーカーを用いて、血液中の有核細胞を複数のクラスターに分類し、クラスターごとにSMNタンパク質発現量を測定することもできる。このように、本発明の方法は、1以上の表面抗原マーカーを用いて血液中の有核細胞を複数のクラスター、例えば2〜4つのクラスター、に分類し、当該クラスターから所定の細胞集団を選別する工程を含んでもよい。これにより、血液細胞分画の揺らぎによる血中SMNタンパク質発現量への影響を低減することができるため有利である。
なお、本発明の方法は、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程を含むものであるが、この選別工程の前、間又は後に、クラスターから所定の細胞集団を選別する工程を含み得る。例えば、本発明の方法は、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程であって、前記細胞集団は、1以上の表面抗原マーカーを用いて当該有核細胞から分類された複数のクラスター、例えば2〜4つのクラスター、から選別される、前記工程を含み得る。
また、本発明の方法において、側方散乱(SSC)に基づき、血液中の有核細胞を複数のクラスター、例えば2〜4つのクラスター、に分類してもよい。本発明の方法の一実施態様では、1以上の表面抗原マーカーを用い、かつ側方散乱(SSC)に基づき、血液中の有核細胞を複数のクラスター、例えば2〜4つのクラスター、に分類することができる。例えば、本発明の方法は、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程であって、前記細胞集団は、1以上の表面抗原マーカーを用い、かつ側方散乱(SSC)に基づき当該有核細胞から分類された複数のクラスター、例えば2〜4つのクラスター、から選別される、前記工程を含み得る。
本発明の方法の一実施態様では、顆粒球の細胞集団又は顆粒球を含む細胞集団を選別することを含み得る。本発明の方法の一実施態様では、単球の細胞集団又は単球を含む細胞集団を選別することを含み得る。本発明の方法の一実施態様では、B細胞の細胞集団又はB細胞を含む細胞集団を選別することを含み得る。本発明の方法の一実施態様では、T細胞の細胞集団又はT細胞を含む細胞集団を選別することを含み得る。
本発明の方法においては、上記のように特定の細胞集団を選別して、その細胞集団においてSMNタンパク質の発現を検出することで、SMNタンパク質発現レベルの検出感度を高めることを可能にする。また、本発明の方法において、特定の細胞集団を選別する際に参照するSMNタンパク質に対する標識に基づく検出データを、当該選別した細胞集団についてSMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する際に使用することができる。
本発明の方法の一実施態様では、有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程と、当該選別した細胞集団について、SMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する工程は、イメージングフローサイトメトリーにより行われる。イメージンングフローサイトメトリーは、細胞写真を同時に撮影するために、蛍光取得スピードが一般的なフローサイトメトリーよりも遅く設定される。そのために、より詳細な解析が可能となる。
なお、フローサイトメトリー及びイメージンングフローサイトメトリーは、市販の装置を使用して、メーカーの取扱説明書に従って行えばよい。
また、本発明のSMNタンパク質の発現を検出する方法は、小児期発症SMAを治療するための薬剤をスクリーニングする方法において用いることもできる。
本発明の方法において、リン酸緩衝液等の試薬で細胞を洗浄する工程等、通常、細胞におけるタンパク質発現を検出する際に行われる操作を適宜行うことができる。
(a) 前記被験者が小児期発症SMA患者である場合には、前記コントロールは、正常者又は保因者から得られる血液を用いること以外は、前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量であり、
(b) 前記被験者が正常者又は保因者である場合には、前記コントロールは、小児期発症SMA患者から得られる血液を用いること以外は、前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量であり、又は
(c) 前記被験者がSMAの治療薬又は治療候補薬を投与された者である場合には、前記コントロールは、前記SMAの治療薬又は治療候補薬の投与前の前記被験者から得られた血液を用いること以外は、前記投与後の前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量である。
SMNタンパク質発現量を測定することは、検量線法など、本発明の技術分野において従来知られている技術を用いて適宜行うことができる。
なお、本発明の一実施態様は、上記のような比較の工程を含み、かつ比較の結果に基づいて被験者を診断する工程を含むことで、小児期発症SMAを診断する方法に関すると言うこともできる。また、本発明の一実施態様は、上記のような比較の工程を含み、かつ比較の結果に基づいて小児期発症SMAの治療薬又は治療候補薬を選択する工程を含むことで、小児期発症SMAの治療薬又は治療候補薬のスクリーニング方法に関すると言うこともできる。
これに対して、本発明のSMNタンパク質の発現を検出する方法によれば、細胞の形状を保ったまま解析が可能であり、即日、検体処理が可能であり(即ち、凍結又は融解処理が不要であり)、また、生きた細胞内のSMNタンパク質のみを検出することが可能である。また、本発明のSMNタンパク質の発現を検出する方法において、全血細胞を対象として、表面抗原マーカーを用いてクラスターに分類した上でSMNタンパク質の解析を行えば、所望の細胞集団(血液細胞分画)についてSMNタンパク質の解析を行うことができ、血液細胞分画の揺らぎによるSMNタンパク質発現量への影響を抑えることができる。
(1)リンパ芽球化処理
正常者から得た血液サンプルを、ヘパリン管に採取後、フィコール液と重層し、2000rpmで、15分間遠心分離して、末梢血単核球細胞を分離し、採取した。次いで、EBウイルスを用いたトランスフォーム法により、リンパ芽球化処理を行った。
I型SMA患者から得た血液サンプルについても、正常者から得た血液サンプルと同様の処理を行った。
上記(1)より得られた、正常者の末梢血単核球細胞由来リンパ芽球を遠沈管内に採取し、4%パラホルムアルデヒド-リン酸緩衝液で細胞を固定した。次いでリン酸緩衝液で細胞を洗浄後、500 x gで5分間遠心分離を行い、上清を除去した。細胞膜透過試薬として、BD PhosflowTM Perm Buffer II(BD Biosciences) を加え、30分間氷上に静置した。次いで、BD pharmingen Stain Buffer (BD Biosciences) で細胞を洗浄した後、1次抗体:Purified Mouse Anti-SMN (Mouse monoclonal antibody, clone8/SMN, BD Biosciences) を添加して室温で60分間反応を行った。
その後、リン酸緩衝液で細胞を洗浄し、2次抗体(AlexaFluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L), highly cross-absorbed, Life Technology)を添加し、遮光後室温で60分間反応を行った。リン酸緩衝液で洗浄後、Hoechst 33342(Molecular Probes)を添加し、細胞内の核を染色した。更に、リン酸緩衝液で細胞を洗浄した後、イメージングフローサイトメトリー(FlowSight(登録商標)、Amnis)にてSMNタンパク質発現を測定した。
上記(1)より得られた、I型SMA患者の末梢血単核球細胞由来リンパ芽球についても、正常者の場合と同様にSMNタンパク質の発現を測定した。
I型SMA患者についても、1万個の細胞をイメージングフローサイトメトリーに用いたが、細胞の形態を保っているものに焦点を絞り、8549個の細胞を抽出し、更にその中から、アスペクト比(縦横比)と表面積を保っている4569個の細胞について、図2で示される解析を行った。また、同様の操作を再度行い、合計2万個の細胞をイメージングフローサイトメトリーに用いた。
SMNタンパク質の発現強度の解析は、それぞれ図1及び図2で示される細胞集団1(population 1)を選別して行った。図1及び図2で示される細胞集団は、正常者、I型SMA患者ともに、1万個の細胞を用いて得られたものである。一方、図3のグラフは、正常者、I型SMA患者ともに、それぞれ2万個の細胞から選別した細胞集団について蛍光強度の分布を示したものである。
なお、細胞集団1では、核及びSMNタンパク質が十分に蛍光標識されていることから、細胞集団1はインタクトな細胞群であると考えられる。一方、細胞集団2(population 2)では、核が十分に蛍光標識されているとは言えず、細胞集団2はインタクトな細胞群とは判断できず、傷ついた細胞又は死細胞群であると考えられる。図1及び図2中の、各細胞集団1及び2の細胞数は下記表1及び表2に記載の通りである。
なお、図3におけるR2及びR3は、正常コントロールとI型SMA患者で発現量が重なっている領域を外してゲートをかけて、蛍光強度を比較したものであり、2群間の差を示すためのものである。
また、縦軸の頻度の値については、相対頻度であり、全細胞集団のうちの蛍光強度を有する細胞集団の比率により相対化したものを用いた。
(1)溶血処理
正常者から採血を行い、血液2mLをヘパリン管に採取し、転倒混和させた。次いで、血液0.5mLを遠沈管に取り、溶血・固定液として、BD PhosflowTM Lyse/Fix Buffer (BD Biosciences) を加え、37℃で10分間静置後、2300rpmで8分間遠心分離し、上清を除去後、リン酸緩衝液で細胞を洗浄し、血液由来の有核細胞を含むサンプルを得た。
保因者及びI型SMA患者についても、正常者の場合と同様に溶血法により血液由来の有核細胞を含むサンプルを調製した。
上記(1)より得られた、正常者の有核細胞に、細胞膜透過試薬として、BD PhosflowTM Perm Buffer II(BD Biosciences) を加え、30分間氷上に静置した。次いで、BD pharmingen Stain Buffer (BD Biosciences) で細胞を洗浄した後、Milli-MarkTM(抗SMN抗体:Anti-SMN-FITC clone 2B1、Millipore)を添加して室温で60分間反応を行った。
その後、リン酸緩衝液で細胞を洗浄し、Hoechst 33342(Molecular Probes)を添加し、細胞内の核を染色した。更に、リン酸緩衝液で細胞を洗浄した後、イメージングフローサイトメトリー(FlowSight(登録商標)、Amnis)にてSMNタンパク質発現を測定した。
上記(1)より得られた、保因者及びI型SMA患者のサンプルについても、正常者の場合と同様にSMNタンパク質の発現を測定した。
また、SMNタンパク質の発現強度の解析は、正常者、保因者及びI型SMA患者につき、それぞれ1万個の細胞を用いた以外は、上記実施例1と同様に、核及びSMNタンパク質が十分に蛍光標識されているインタクトな細胞群について行った。その結果を図4に示す。
また、図4で示される蛍光強度について、解析した細胞数及び蛍光強度のメジアンを下記表4に示す。
以下の染色プロトコールに従って、サンプルを調製した。
1.正常者から得た末梢血2mLをチューブに取り、末梢血2mL中に、PBSで5μg/mLに希釈したHoechst 33342(Molecular Probes)100μL及びFc受容体ブロッキング試薬(Clear Back, MTG-001, MBL)80μLとなるように試薬を添加した。
2.チューブに栓をし、暗所にて室温で15分間ゆっくりと回転させた。
3.このように処理した末梢血を、4つの15mLコニカルチューブに500μLずつ入れた。
4.各チューブに、以下の表5に従って5μLの蛍光色素標識抗体(BioLegend社、BD Biosciences社、MERCK社より購入)を加えた。
CD66a/c/e(ASL-32), CD66b(G10F5), CD34(581), CD25(M-A251), CD33(WM53),
CD123(6H6), CD3(UCHT1), CD45(HI30), CD11c(3.9), CD19(SJ25C1), CD14(M5E2)
(CD123, CD34, CD11c, CD25, HLA-DRについては本願においてデータは示されていない。)
PE:フィコエリスリン
PE-Cy5:フィコエリスリン−シアニン5
BV:ブリリアントバイオレット
6.37℃の水浴で温めた溶血・固定液(BD PhosflowTM Lyse/Fix Buffer)10mLを各チューブに加えた(8〜10回逆さにしてよく混合した)。
7.37℃の水浴で10分間インキュベートした。
8.500 x g、室温で5分間、遠心分離した。
9.ディスポーザブルピペットを用いて上清を除去した。
10.10mLPBS(-)で細胞を再懸濁し、上記8と同様に遠心分離し、上清を除去した。
11.細胞膜透過試薬(BD PhosflowTM Perm/Wash Buffer I)1mLで細胞を再懸濁し、室温で20分間インキュベートした。
12.上記8と同様に遠心分離し、2mLのFBS/NaN3含有PBS(BD stain buffer 554656)で細胞を2回洗浄した。
13.細胞懸濁液を2つの1.5mLマイクロチューブに等容量で入れた。このとき、1つのチューブにおいて、およそ5 x 105 cells/45μLであった。
14.5μLのFITC結合抗ヒトSMNモノクローナル抗体(2B1)又はFITC結合抗マウスIgG1抗体(MOPC21;アイソタイプコントロール)で染色し、暗所にて氷上で45分間インキュベートした。
15.上記8と同様に遠心分離し、200μLのFBS/NaN3含有PBSで2回洗浄した。
16.50μLのFBS/NaN3含有PBSで再懸濁した。
図5で示されるのと同様に、核が染色され、かつ表面積を保っている細胞をまず抽出した。このように抽出した73601個の細胞について、側方散乱(SSC)とCD45を用いて4つのクラスターに分類した(図6;R1〜R4)。各クラスターの細胞数は下記表6に記載のとおりである。
従って、本発明により、難病のうちの1つであるSMAの診断技術及び治療技術の格段の進展が見込まれる。
Claims (8)
- SMNタンパク質の発現を検出する方法であって、
血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識する工程、
前記サンプル中の前記有核細胞の核を標識する工程、
前記有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程、並びに
前記選別した細胞集団について、SMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する工程
を含む、前記検出方法。 - 前記SMNタンパク質を標識する工程が、SMNタンパク質を第1の蛍光色素により標識することを含み、かつ、前記SMNタンパク質の発現を検出する工程が、前記第1の蛍光色素が発する蛍光強度を測定することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記SMNタンパク質を標識する工程が、SMNタンパク質を第1の蛍光色素により標識することを含み、かつ、前記核を標識する工程が、核を第2の蛍光色素により標識することを含む、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記細胞集団を選別する工程が、前記第1の蛍光色素が発する第1の蛍光強度と、前記第2の蛍光色素が発する第2の蛍光強度とを同一装置内で測定すること、並びに測定した第1及び第2の蛍光強度を二次元座標上で表すことを含む、請求項3に記載の方法。
- 前記細胞集団を選別する工程及び前記SMNタンパク質の発現を検出する工程が、イメージングフローサイトメトリーにより行われる、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記血液由来の有核細胞を含むサンプルが、血液中の赤血球を溶血させ、次いで遠心分離により沈殿させた有核細胞を含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- SMNタンパク質を検出する方法であって、
血液を遠心分離して血液由来の有核細胞を含むサンプルを準備する工程、
前記血液由来の有核細胞を含むサンプル中のSMNタンパク質を標識する工程、
前記サンプル中の前記有核細胞の核を標識する工程、
前記有核細胞中の核及びSMNタンパク質が標識されている細胞集団を選別する工程、並びに
前記選別した細胞集団について、SMNタンパク質に対する標識に基づいてSMNタンパク質の発現を検出する工程
を含む、前記検出方法。 - 前記血液が被験者から得られたものであり、
前記SMNタンパク質の発現を検出する工程が、SMNタンパク質発現量を測定することを含み、
前記SMNタンパク質発現量を、以下の(a)〜(c)より選択されるコントロールと比較する工程を含む、請求項1〜7のいずれか1項に記載の検出方法:
(a) 前記被験者が小児期発症SMA患者である場合には、前記コントロールは、正常者又は保因者から得られる血液を用いること以外は、前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量であり、
(b) 前記被験者が正常者又は保因者である場合には、前記コントロールは、小児期発症SMA患者から得られる血液を用いること以外は、前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量であり、又は
(c) 前記被験者がSMAの治療薬又は治療候補薬を投与された者である場合には、前記コントロールは、前記SMAの治療薬又は治療候補薬の投与前の前記被験者から得られた血液を用いること以外は、前記投与後の前記被験者から得られた血液を用いてSMNタンパク質発現量を測定した方法と同様にして測定したSMNタンパク質発現量である。
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