JP6040896B2 - Prelabeled amino acid analysis by liquid chromatography - Google Patents
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Description
本発明は、HPLCによる自動プレラベルアミノ酸分析に関する。より具体的には、本発明は、改良された試料注入法を含むプレラベルアミノ酸分析法に関する。 The present invention relates to automated prelabeled amino acid analysis by HPLC. More specifically, the present invention relates to a prelabeled amino acid analysis method including an improved sample injection method.
オルトフタルアルデヒド(OPA)によるアミノ酸プレラベル分析には高い分離能が要求される。このため、分離には高性能のシリカゲルを基材とした充填剤を充填したカラムが用いられることが多い。 High resolution is required for amino acid prelabel analysis with orthophthalaldehyde (OPA). For this reason, a column packed with a packing material based on high-performance silica gel is often used for the separation.
OPAによるアミノ酸のラベル化は、pHの高いアルカリ条件(具体的にはpH10前後)下で効率的に進行する。このためラベル化反応が終わった試料はアルカリ性を呈している。分離に際しては、アルカリ性のまま試料をカラムに注入することがある。あるいは、アルカリ性試料が分析カラムに対して負荷が大きいため、あらかじめ酸性溶液で中性付近までpH調整した後にカラムに注入することもある。 The labeling of amino acids with OPA proceeds efficiently under alkaline conditions with high pH (specifically, around pH 10). For this reason, the sample after the labeling reaction is alkaline. During separation, the sample may be injected into the column while remaining alkaline. Alternatively, since the alkaline sample has a large load on the analytical column, the pH may be adjusted to near neutral with an acidic solution in advance and then injected into the column.
非特許文献1(アジレンド・テクノロジーズ、“improved Amino Acid Methods using Agilent ZORBAX Eclipse Plus C18 Columns for a Variety of Agilent LC Instrumentation and Separation Goals”)に記載のOPAによるアミノ酸プレラベル分析方法は、カラムにリン酸水溶液及びOPAラベル化アミノ酸試料をこの順番で導入するものであり、移動相にはpH8.2のバッファを用いている。 Non-patent document 1 (Agilend Technologies, "improved Amino Acid Methods using Agilent ZORBAX Eclipse Plus C18 Columns for a Variety of Agilent LC Instrumentation and Separation Goals") The OPA-labeled amino acid sample is introduced in this order, and a buffer of pH 8.2 is used as the mobile phase.
アミノ酸プレラベル分析においてアルカリ性の試料溶液をカラムに直接注入した場合、シリカゲルベースのカラムが加水分解を起こすために、カラム寿命が短くなる傾向がある。一方、アルカリ性試料溶液をあらかじめ酸性溶液を混合することにより中性付近まで下げ、その後カラムに注入した場合、ラベル化反応で生成したOPAラベル化アミノ酸が不安定になって分解を起こし、定量分析での十分な信頼性を確保することができない。 When an alkaline sample solution is directly injected into a column in an amino acid prelabel analysis, the silica gel-based column is hydrolyzed, so that the column life tends to be shortened. On the other hand, when the alkaline sample solution is lowered to near neutrality by mixing it with an acidic solution in advance, and then injected into the column, the OPA-labeled amino acid generated by the labeling reaction becomes unstable and decomposes. It is not possible to ensure sufficient reliability.
非特許文献1に記載のアミノ酸プレラベル分析においては、最初に溶出する物質のピークが崩れやすい問題がある。
In the amino acid pre-label analysis described in
そこで本発明の目的は、OPAラベル化アミノ酸試料の分解を抑制しつつ、カラム寿命の短命化を抑制し、且つ良好なピークの検出も可能である、OPAアミノ酸プレラベル分析法を提供することにある。 Accordingly, an object of the present invention is to provide an OPA amino acid prelabel analysis method that suppresses the degradation of OPA-labeled amino acid sample, suppresses shortening of the column life, and can detect a favorable peak. .
本発明者らは、OPAラベル化試料の注入に先立って酸性バッファをカラムに注入し、且つ、OPAラベル化試料と酸性バッファとを接触させないことによって、上記本発明の目的が達成されることを見出し、本発明を完成するに至った。 Prior to the injection of the OPA-labeled sample, the present inventors inject the acidic buffer into the column, and the OPA-labeled sample and the acidic buffer are not brought into contact with each other. The headline and the present invention were completed.
本発明は、以下の発明を含む。
(1) シリカゲル充填剤が充填されたカラムに、酸性バッファと、気体又はpH6〜7の液体と、ラベル化アミノ酸を含むpH9以上の試料液とをこの順で導入することを含む、液体クロマトグラフによるプレラベルアミノ酸分析法。
The present invention includes the following inventions.
(1) A liquid chromatograph including introducing an acidic buffer, a gas or a liquid having a pH of 6 to 7, and a sample liquid having a pH of 9 or more containing a labeled amino acid in this order into a column packed with a silica gel packing material. Prelabeled amino acid analysis method.
本発明においては、液体クロマトグラフ装置のカラムへの試料液導入に際して、アルカリ性試料液の導入に先だって酸性バッファを導入し、且つ、アルカリ性試料液と酸性バッファとを接触させないために、両液体の間に気体又は中性の液体を介在させる。 In the present invention, when introducing the sample liquid into the column of the liquid chromatograph apparatus, the acidic buffer is introduced prior to the introduction of the alkaline sample liquid, and the alkaline sample liquid and the acidic buffer are not brought into contact with each other. Gas or neutral liquid is interposed in
(2) 前記酸性バッファの体積(Va)は、前記試料液の体積(Vs)に対する比(Va/Vs)で表して、0.5〜1の範囲である、(1)のプレラベルアミノ酸分析法。 (2) Pre-labeled amino acid analysis according to (1), wherein the volume (Va) of the acidic buffer is in the range of 0.5 to 1 expressed as a ratio (Va / Vs) to the volume (Vs) of the sample solution. Law.
(3) 前記気体の体積(Vg)は、前記酸性バッファの体積(Va)に対する比(Vg/Va)で表して、1〜2の範囲である、(1)又は(2)のプレラベルアミノ酸分析法。 (3) The prelabeled amino acid according to (1) or (2), wherein the volume (Vg) of the gas is represented by a ratio (Vg / Va) to the volume (Va) of the acidic buffer and is in the range of 1-2. Analytical method.
(4) 前記pH6〜7の液体の体積(Vl)は、前記酸性バッファの体積(Va)に対する比(Vl/Va)で表して、0.5〜1の範囲である、(1)又は(2)のプレラベルアミノ酸分析法。 (4) The volume (Vl) of the liquid having a pH of 6 to 7 is expressed as a ratio (Vl / Va) to the volume (Va) of the acidic buffer, and is in the range of 0.5 to 1, (1) or ( 2) Prelabeled amino acid analysis method.
(5) 移動相は、pH6〜7のものである、(1)〜(4)のいずれかのプレラベルアミノ酸分析法。 (5) The prelabeled amino acid analysis method according to any one of (1) to (4), wherein the mobile phase has a pH of 6 to 7.
(6) 前記カラムの内径は、2〜4.6mmである、(1)〜(5)のいずれかのプレラベルアミノ酸分析法。 (6) The prelabeled amino acid analysis method according to any one of (1) to (5), wherein the column has an inner diameter of 2 to 4.6 mm.
(7) 前記ラベル化アミノ酸は、オルトフタルアルデヒド(OPA)によってラベル化されたアミノ酸誘導体である、(1)〜(6)のいずれかのプレラベルアミノ酸分析法。 (7) The prelabeled amino acid analysis method according to any one of (1) to (6), wherein the labeled amino acid is an amino acid derivative labeled with orthophthalaldehyde (OPA).
(8) 前記酸性バッファが、リン酸バッファである、(1)〜(7)のいずれかのプレラベルアミノ酸分析法。 (8) The prelabeled amino acid analysis method according to any one of (1) to (7), wherein the acidic buffer is a phosphate buffer.
本発明によると、OPAラベル化アミノ酸などのプレラベル化アミノ酸試料液が酸性緩衝液と接触することなくHPLCに注入されるため、OPAラベル化アミノ酸の分解が抑制される。さらに、アルカリ性であるOPAラベル化アミノ酸試料液の通過前に酸性緩衝液をシリカゲル充填剤に接触させることにより、酸性緩衝液が接触した充填剤近傍のpHが低下する。これによって、その後通過する試料液のアルカリ性に対するシリカゲル充填剤の耐久性が向上する。また、酸性緩衝液をシリカゲル充填剤に接触させるタイミングがアルカリ性であるOPAラベル化アミノ酸試料液の通過前であることにより、試料から検出されるピークの崩壊を抑制することもできる。 According to the present invention, a pre-labeled amino acid sample solution such as OPA-labeled amino acid is injected into the HPLC without coming into contact with the acidic buffer solution, so that degradation of OPA-labeled amino acid is suppressed. Furthermore, by bringing the acidic buffer solution into contact with the silica gel filler before passing through the alkaline OPA-labeled amino acid sample solution, the pH in the vicinity of the filler in contact with the acidic buffer solution is lowered. This improves the durability of the silica gel filler against the alkalinity of the sample liquid that passes thereafter. Moreover, collapse of the peak detected from a sample can also be suppressed because the timing which makes an acidic buffer solution contact a silica gel filler is before passage of the OPA labeled amino acid sample solution which is alkaline.
すなわち、本発明により、OPAラベル化アミノ酸などのプレラベル化アミノ酸試料の分解を抑制しつつ、カラム寿命の短命化を抑制し、且つ良好なピークの検出が可能である、プレラベルアミノ酸分析法が提供される。 That is, according to the present invention, there is provided a prelabeled amino acid analysis method capable of suppressing shortening of the column life and detecting a favorable peak while suppressing degradation of a prelabeled amino acid sample such as OPA-labeled amino acid. Is done.
本発明において分析に供される試料液は、ラベル化アミノ酸を含むアルカリ性の液体である。具体的には、試料液の具体的なpHは、ラベル化アミノ酸が安定的に存在することができるpH9.0以上である。ラベル化アミノ酸は、このようなアルカリ性条件下でのみ溶解するアミノ酸誘導体であることが好ましい。例えば、アミノ酸分析用の代表的なプレカラム誘導体化試薬でのラベル化により得られるアミノ酸誘導体でありうる。プレカラム誘導体化試薬は、カラムクロマトグラフィ後における検出手段に応じて、当業者が適宜選択することができる。プレカラム誘導体化試薬の例としては、o−フタルアルデヒド(OPA)、フェニルイソチオシアネート(PITC)、フルオレサミン、ダンシルクロライド、2,4-ジニトロフルオロベンゼン(DNFB)、及びNα(2,4-ジニトロ-5-フルオロフェニル)-L-アラニンアミド(FDAA)等が挙げられる。 The sample solution used for analysis in the present invention is an alkaline liquid containing labeled amino acids. Specifically, the specific pH of the sample solution is pH 9.0 or higher at which the labeled amino acid can stably exist. The labeled amino acid is preferably an amino acid derivative that dissolves only under such alkaline conditions. For example, it may be an amino acid derivative obtained by labeling with a typical precolumn derivatization reagent for amino acid analysis. The pre-column derivatization reagent can be appropriately selected by those skilled in the art depending on the detection means after column chromatography. Examples of pre-column derivatization reagents include o-phthalaldehyde (OPA), phenyl isothiocyanate (PITC), fluoresamine, dansyl chloride, 2,4-dinitrofluorobenzene (DNFB), and Nα (2,4-dinitro-5 -Fluorophenyl) -L-alaninamide (FDAA) and the like.
このように本発明においては、カラムへの導入以前にアミノ酸がラベル化されている。アミノ酸ラベル化では、通常、疎水性の高い官能基が付与される。このため、逆相法による分離を行うことができる。具体的には、カラムとして、シリカゲル充填剤が充填されたものを用いることができる。 Thus, in the present invention, amino acids are labeled before introduction into the column. In amino acid labeling, a functional group having high hydrophobicity is usually added. For this reason, the separation by the reverse phase method can be performed. Specifically, a column filled with a silica gel filler can be used.
カラムのサイズは、内径が2.0〜4.6mmであることが好ましく、3.0mmであることがさらに好ましい。このような範囲の内径を有するカラムであれば、良好な分離能が得られる。カラムの長さは特に限定されるものではないが、例えば50〜150mmである。 The column has an inner diameter of preferably 2.0 to 4.6 mm, and more preferably 3.0 mm. If the column has an inner diameter in such a range, good resolution can be obtained. Although the length of a column is not specifically limited, For example, it is 50-150 mm.
本発明においては、試料液をカラムに導入する前に酸性バッファを導入する。酸性バッファのpHは、例えば2〜4、好ましくは2.1〜2.5である。この範囲のpHであれば、酸性緩衝液が接触したカラム充填剤近傍のpHを十分に低下させ、アルカリ性試料液に対するカラム充填剤の劣化を効果的に防ぐことができる。酸性バッファの例としては、リン酸バッファが挙げられる。 In the present invention, the acidic buffer is introduced before the sample solution is introduced into the column. The pH of the acidic buffer is, for example, 2 to 4, preferably 2.1 to 2.5. If the pH is within this range, the pH in the vicinity of the column filler in contact with the acidic buffer solution can be sufficiently lowered, and deterioration of the column filler relative to the alkaline sample liquid can be effectively prevented. An example of the acidic buffer is a phosphate buffer.
さらに、試料液と酸性バッファとを互いに接触させないために、酸性バッファの導入と試料液の導入との間に、気体又は中性液体を導入して両液体間にスペーサ的に介在させる。すなわち、カラムへは、酸性バッファ、気体又は中性液体、及び試料液をこの順で導入する。 Further, in order not to bring the sample solution and the acidic buffer into contact with each other, a gas or neutral liquid is introduced between the introduction of the acidic buffer and the introduction of the sample solution, and a spacer is interposed between the two liquids. That is, an acidic buffer, a gas or neutral liquid, and a sample liquid are introduced into the column in this order.
気体は、不活性ガス、その他の分析系へ化学的な影響を及ぼさない純粋な気体であってもよいが、通常、空気で足りる。中性液体は、pHが例えば6〜7のものである。中性液体は、バッファであることが好ましい。具体的には、本発明の分析系で移動相に用いられる液体を用いることができる。 The gas may be an inert gas or other pure gas that does not have a chemical effect on the analytical system, but air is usually sufficient. The neutral liquid has a pH of 6 to 7, for example. The neutral liquid is preferably a buffer. Specifically, the liquid used for the mobile phase in the analysis system of the present invention can be used.
本発明の移動相に用いられる液体は、pH6以上、好ましくは6〜7の中性バッファであることが好ましい。中性バッファの例としては、リン酸バッファが挙げられる。 The liquid used in the mobile phase of the present invention is preferably a neutral buffer having a pH of 6 or more, preferably 6-7. An example of a neutral buffer is a phosphate buffer.
試料液の導入量は、分離能の観点から例えば1〜5μL、好ましくは1〜2μLである。試料液の導入量は、カラムの内径によって当業者が適宜選択することができる。より具体的には、内径が2〜3mmのカラムを用いる場合の試料液の導入量は、1〜2μLでありうる。内径が上記範囲を超えるカラムを用いる場合の試料液の導入量は、例えば5μLとしてもよい。 The amount of the sample solution introduced is, for example, 1 to 5 μL, preferably 1 to 2 μL from the viewpoint of resolution. The amount of sample solution introduced can be appropriately selected by those skilled in the art depending on the inner diameter of the column. More specifically, the amount of sample solution introduced when using a column having an inner diameter of 2 to 3 mm can be 1 to 2 μL. The amount of sample solution introduced when using a column having an inner diameter exceeding the above range may be, for example, 5 μL.
酸性バッファの導入量(Va)は、前記試料液の体積(Vs)に対する比(Va/Vs)で表して、例えばVa/Vs=0.5〜1の範囲、好ましくはVa/Vs=1である。この範囲の酸性バッファの導入量によって、酸性バッファが接触した充填剤近傍のpHが低下させ、その後通過する試料液のアルカリ性に対するシリカゲル充填剤の耐久性が向上する。 The introduction amount (Va) of the acidic buffer is expressed by a ratio (Va / Vs) to the volume (Vs) of the sample solution, for example, Va / Vs = 0.5 to 1, preferably Va / Vs = 1. is there. By introducing the acidic buffer within this range, the pH in the vicinity of the filler in contact with the acidic buffer is lowered, and the durability of the silica gel filler with respect to the alkalinity of the sample liquid passing thereafter is improved.
気体又はpH6〜7の中性液体は、試料液と酸性バッファとの接触を防ぐ目的で両液体間にスペーサ的に介在するものであるため、最低限の量があれば足りる。中性液体の導入量(Vl)は、前記酸性バッファの体積(Va)に対する比(Vl/Va)で表して、例えばVl/Va-=0.5〜1の範囲、好ましくはVl/Va=1とすることができる。気体の導入量(Vg)は、加圧条件下で流路内を輸送されることを考慮すると中性液体を用いる場合よりも多いことが好ましく、例えば前記酸性バッファの体積(Va)に対する比(Vg/Va)で表して、常圧時において、例えばVg/Va=1〜2の範囲、好ましくはVg/Va=2とすることができる。
Since the gas or the neutral liquid of
本発明を実施することができる液体クロマトグラフの分析流路においては、酸性バッファと、気体又は中性液体と、試料液とは、オートサンプラによって自動的にカラムに導入されることができる。オートサンプラは、試料液を収容する容器、中性液体を収容する容器、及び酸性バッファを収容する容器内に順番にニードルを挿入し、計量ポンプによって所定量の試料液、中性液体(又は気体)及び酸性バッファ液体をこの順番で吸入し、吸入したそれら液体(又は液体及び気体)を液体クロマトグラフのカラムに注入することで導入するように構成される。 In the analysis flow path of the liquid chromatograph capable of implementing the present invention, the acidic buffer, the gas or neutral liquid, and the sample liquid can be automatically introduced into the column by the autosampler. The autosampler inserts needles in order into a container containing a sample liquid, a container containing a neutral liquid, and a container containing an acidic buffer, and a predetermined amount of the sample liquid and neutral liquid (or gas) are measured by a metering pump. ) And acidic buffer liquids are inhaled in this order and are introduced by injecting the inhaled liquids (or liquids and gases) into the column of the liquid chromatograph.
図1にオートサンプラの一例を液体クロマトグラフとともに示す。
このオートサンプラは、低圧バルブ11及び高圧バルブ12の切替えと、計量ポンプ16の駆動と連動したニードル13の駆動とによって、試料液等(すなわち、試料液15a、気体又は中性液体15b、及び酸性バッファ15c)吸入工程、分析カラム26への試料液等導入工程、ニードル13の洗浄工程、洗浄ポート14からの洗浄液排出及び洗浄液補充工程を実行するための流路が構成される。
FIG. 1 shows an example of an autosampler together with a liquid chromatograph.
This autosampler is configured by switching the low-
計量ポンプ16は低圧バルブ11に流路により接続されている。低圧バルブ11は、計量ポンプ16の吸入口16aと流路により接続された中央の共通ポートGのほか、高圧バルブ12のポートbと流路により接続されたポートA、計量ポンプ16の吐出口16bと流路により接続されたポートB、洗浄液を収容した容器18a、18b及び18cに脱気ユニット27を介してそれぞれ流路により繋がるポートC、D及びE、及び洗浄ポート14に流路により繋がるポートFを備えている。低圧バルブ11は、共通ポートGをA〜Fのポートのうちいずれか1つのポートに接続することができ、またそれとは異なるタイミングで、A〜Fのポートのうち任意のポート間を接続することができる。
The
計量ポンプ16の吸入口16aは、マニュアルプライム用バルブ19を介して低圧バルブ11の共通ポートGに流路により接続されている。計量ポンプ16の吐出口16bは、低圧バルブ11のポートBに流路により接続されている。
The
高圧バルブ12は、ニードル13に流路により繋がるポートa、低圧バルブ11のポートAと流路により接続されたポートb、ドレイン流路20が接続されたポートc、注入ポート21に流路により繋がるポートd、液体クロマトグラフの分析流路を構成する流路が接続されたポートe及びfを備えている。高圧バルブ12は隣接するポート間の接続を切り替えるものである。具体的には、ポートa−b間、c−d間,e−f間を接続した状態と、ポートb−c間、d−e間、f−a間を接続した状態との間で切り替えるものである。図1ではポートb−c間及びd−e間を接続した状態となっている。なお、図1では、高圧移動相の各流路CHPを太線で強調表示している。
The
ニードル13は、試料液を収容した容器15aの位置、中性液体を収容した容器15bの位置、酸性バッファを収容した容器15cの位置、洗浄ポート14の位置及び注入ポート21の位置の間で移動することができる。高圧バルブ12のポートaとニードル13とを繋ぐ流路上に、ニードル13の先端から吸入した液を滞留させるサンプルループ17が設けられている。
The
ドレイン流路20はこのオートサンプラの流路内の液を外部へ排出するための流路であり、ドレインバルブ22により開閉される。
The
例えば試料液の吸入時は、ニードル13が試料液を収容した容器15a内に挿入された状態で、低圧バルブ11が、計量ポンプ16の吸入口16aが接続されている共通ポートGとポートAとの間を接続した状態にされ、さらに高圧バルブ12がポートa−b間を接続した状態にされる。この状態で計量ポンプ16を吸引駆動することにより、ニードル13の先端から試料液が吸引され、高圧バルブ12のポートaとニードル13とを接続する流路上に設けられたサンプルループ17内に試料液が滞留する。
For example, when the sample liquid is inhaled, the
また、洗浄ポート14への洗浄液の補充時は、計量ポンプ16の吸入口16aが接続されている共通ポートGと洗浄液収容容器18a、18b及び18cにそれぞれ繋がる各ポートC、D及びEのいずれかとを接続した状態として、計量ポンプ16の吐出口16bが接続されたポートBとポートFとを接続した状態として、計量ポンプ16を駆動することにより、洗浄ポート14に洗浄液が吐出される。
When replenishing the cleaning liquid to the cleaning
高圧バルブ12のポートfには、移動相A及び移動相Bがそれぞれ収容された容器23a及び23bから、脱気ユニット28を介して脱気された移動相を、それぞれ送液ユニット24a及び24bによって汲み上げ、ミキサ25で混合して送液するための流路が接続されている。高圧バルブ12のポートeには、分析カラム26を備えた流路が接続されている。
The port f of the high-
上記の図は一例であり、種々の変更が可能である。 The above figure is an example, and various modifications are possible.
以下に実施例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の実施例に制限されるものではない。 EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be specifically described with reference to examples. However, the present invention is not limited to the following examples.
[OPAラベル化アミノ酸試料液の調製]
グリシン、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、リジン、アルギニン、プロリンなどを含むアミノ酸混合標準液を、常法により、塩基性、2−メルカプトエタノール存在下において、o−フタルアルデヒド(OPA)と反応させ、OPAラベル化アミノ酸試料液を得た。このOPAラベル化アミノ酸試料液を、以下の実施例及び比較例で用いた。
[Preparation of OPA-labeled amino acid sample solution]
An amino acid mixed standard solution containing glycine, aspartic acid, glutamic acid, serine, lysine, arginine, proline and the like is reacted with o-phthalaldehyde (OPA) in the presence of basic, 2-mercaptoethanol by a conventional method, and OPA A labeled amino acid sample solution was obtained. This OPA-labeled amino acid sample solution was used in the following Examples and Comparative Examples.
[比較例1]
本比較例では、カラムへの注入前にOPAラベル化アミノ酸試料液に対してリン酸水溶液添加を行った場合の試料劣化の経過観察を行った。
[Comparative Example 1]
In this comparative example, the progress of sample deterioration was observed when an aqueous phosphoric acid solution was added to the OPA-labeled amino acid sample solution before injection into the column.
上記OPAラベル化アミノ酸試料液に、100mmol/Lのリン酸水溶液20μLを添加し、全量が105.5μLの試料混合液を調製した。この試料混合液においては、著しいアミノ酸の劣化を確認した。 To the OPA-labeled amino acid sample solution, 20 μL of a 100 mmol / L phosphoric acid aqueous solution was added to prepare a sample mixture solution with a total amount of 105.5 μL. In this sample mixture, significant amino acid degradation was confirmed.
別途、上記OPAラベル化アミノ酸試料液に、100mmol/Lのリン酸水溶液10μLを添加し、全量が90μLの試料混合液を調製した。この試料混合液を、HPLC(島津製作所製、超高速液体クロマトグラフNexera)に連続して6回注入した。1分析当たりの時間は、8.5分であった。図2に、注入回数と、グリシンピークの面積値の変化との関係を示すグラフを示す。図2に示すように、1回の分析ごとにグリシンピーク面積値は3〜4%減少した。 Separately, 10 μL of a 100 mmol / L phosphoric acid aqueous solution was added to the OPA-labeled amino acid sample solution to prepare a sample mixture solution having a total amount of 90 μL. This sample mixed solution was continuously injected 6 times into HPLC (manufactured by Shimadzu Corporation, ultra-high performance liquid chromatograph Nexera). The time per analysis was 8.5 minutes. FIG. 2 is a graph showing the relationship between the number of injections and the change in the area value of the glycine peak. As shown in FIG. 2, the glycine peak area value decreased by 3 to 4% for each analysis.
[実施例1]
図1のオートサンプラ及び液体クロマトグラフ(島津製作所製、超高速液体クロマトグラフNexera)を用いた。ニードル13で、まず上記OPAラベル化アミノ酸試料液1.0μLを吸引し、次に移動相液[20mmol/L リン酸バッファ(pH6.5)]を0.5μL吸引し、最後に酸性リン酸緩衝液(pH2.1)を1.0μL吸引した。その後、分析カラムにそれらの液を、酸性リン酸緩衝液(pH2.1)、リン酸バッファ(pH6.5)、OPAラベル化アミノ酸試料液の順で注入することにより導入した。OPAラベル化アミノ酸試料液と、酸性リン酸緩衝液とは混合されない。
[Example 1]
The autosampler and liquid chromatograph of FIG. 1 (manufactured by Shimadzu Corporation, ultra high performance liquid chromatograph Nexera) were used. First, 1.0 μL of the OPA-labeled amino acid sample solution is aspirated with the
上記試験を連続して行うことによって得られたクロマトグラムを図3に示す。横軸:保持時間(min)、縦軸:蛍光強度(μV)。また、注入回数とヒスチジン理論段数との関係を表1に示す。 A chromatogram obtained by continuously performing the above test is shown in FIG. Horizontal axis: retention time (min), vertical axis: fluorescence intensity (μV). Table 1 shows the relationship between the number of injections and the number of theoretical histidine plates.
図3及び表1に示すように、注入500回目であってもカラムの劣化が抑えられ、各アミノ酸に対応する良好なピークが得られた。 As shown in FIG. 3 and Table 1, column deterioration was suppressed even at the 500th injection, and good peaks corresponding to each amino acid were obtained.
[比較例2]
酸性リン酸緩衝液の吸引及び分析カラムへの注入を行わなかったことを除いて、実施例1と同様の操作を行った。連続試験によって得られたクロマトグラムを図4に示す。また、注入回数とヒスチジン理論段数との関係を表2に示す。
[Comparative Example 2]
The same operation as in Example 1 was performed except that the acidic phosphate buffer solution was not aspirated and injected into the analytical column. The chromatogram obtained by the continuous test is shown in FIG. Table 2 shows the relationship between the number of injections and the number of theoretical histidine plates.
図4及び表2に示すように、注入40回を超えるとカラムの劣化が激しくなり、各アミノ酸に対応する良好なピークが得られなくなった。 As shown in FIG. 4 and Table 2, when the number of injections exceeded 40, the deterioration of the column became severe and a good peak corresponding to each amino acid could not be obtained.
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