JP5613568B2 - リポポリサッカリド除染 - Google Patents

Description

この出願は、２００８年１月７日に出願された英国特許出願第０８００２２８．９号（この全ての内容は、参考として本明細書に援用される）からの優先権を主張する。

（技術分野）
本発明は、リポポリサッカリド除染の分野にある。

（背景）
リポポリサッカリドは、グラム陰性細菌（例えば、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉおよびＳａｌｍｏｎｅｌｌａ ｅｎｔｅｒｉｃａ）が増殖するか、もしくはこれらが溶解される場合に、放出される。上記リポポリサッカリドは、強力な細菌毒素（エンドトキシンとして公知）として機能し、グラム陰性細菌の感染と関連する多くの毒性かつ免疫原性効果の原因である。エンドトキシンは、細菌から調製されるプラスミドＤＮＡ中の頻繁な汚染物質であり、従って、いかなる望ましくない炎症応答をも予防するために、任意のインビボでの増殖の前に除去されなければならない。同様に、グラム陰性細菌から調製される他の生体分子（例えば、グラム陰性細菌の莢膜ポリサッカリドもしくはＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ由来組換えタンパク質）、および同様に、製薬用の水（ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ ｗａｔｅｒ）を、残留性のエンドトキシンから精製することは、望ましい。

従って、リポポリサッカリド、もしくはエンドトキシンを、目的の生物薬剤（ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ）の分子を精製する間に選択的に除去する能力は、望ましい。

（発明の開示）
本発明は、目的の生物薬剤の分子を精製する間に、リポポリサッカリドを選択的に除去するための物質および方法を提供する。

よって、本発明は、リポポリサッカリドの吸着のための膜を提供し、上記膜は、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材（ｐｏｌｙｍｅｒｉｃ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ）を含む。好ましくは、上記ポリマー状基材は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸（２−ｋｅｔｏ−３−ｄｅｏｘｙｏｃｔｏｎｉｃ ａｃｉｄ）のうちの少なくとも一方に対して選択的である。

本発明はまた、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するためのプロセスを提供し、上記プロセスは、
ｉ．均一なポリマー溶液およびテンプレート溶液を接触させる工程；
ｉｉ．上記得られた溶液の転相を行う工程；ならびに
ｉｉｉ．上記テンプレートを除去する工程
を包含する。

本発明は、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するための別のプロセスをさらに提供し、上記プロセスは、
ｉ．モノマー溶液およびテンプレート溶液を接触させる工程；
ｉｉ．上記モノマーの架橋基を反応させて、ポリマーを形成する工程；ならびに
ｉｉｉ．上記テンプレートを除去する工程、
を包含する。

好ましくは、各プロセスは、膜を作製する工程をさらに包含する。

さらに、本発明は、懸濁物からリポポリサッカリドを除去するための方法を提供し、上記方法は、
ｉ．リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を提供する工程；および
ｉｉ．上記懸濁物と、上記ポリマー状基材とを接触させる工程、
を包含する。
本発明の好ましい実施形態では、例えば以下が提供される：
（項目１）
リポポリサッカリドを吸着するための膜であって、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を含む、膜。
（項目２）
前記ポリマー状基材は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方に対して選択的である、項目１に記載の膜。
（項目３）
前記リポポリサッカリドは、グラム陰性細菌に由来する、項目１および２のいずれか１に記載の膜。
（項目４）
前記グラム陰性細菌は、プロテオバクテリア、シアノバクテリア、スピロヘータ、緑色硫黄細菌、緑色非イオウ細菌、クレンアーキオータ（ｃｒｅｎａｒｃｈａｅｏｔａ）、球菌、桿菌もしくは院内細菌（ｎｏｓｏｃｏｍｉａｌ ｂａｃｔｅｒｉａ）である、項目３に記載の膜。
（項目５）
リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するためのプロセスであって、該プロセスは、
ｉ．均一なポリマー溶液およびテンプレート溶液を接触させる工程；
ｉｉ．得られた溶液の転相を行う工程；ならびに
ｉｉｉ．該テンプレートを除去する工程
を包含する、プロセス。
（項目６）
リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するためのプロセスであって、該プロセスは、
ｉ．モノマー溶液およびテンプレート溶液を接触させる工程；
ｉｉ．該モノマーの架橋基を反応させて、ポリマーを形成する工程；ならびに
ｉｉｉ．該テンプレートを除去する工程、
を包含する、プロセス。
（項目７）
膜を作製する工程をさらに包含する、項目５および６のいずれかに記載のプロセス。
（項目８）
前記テンプレート溶液は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方を含む、項目５〜７のいずれか１項に記載のプロセス。
（項目９）
懸濁物からリポポリサッカリドを除去するための方法であって、該方法は、
ｉ．リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を提供する工程；および
ｉｉ．該懸濁物と該ポリマー状基材とを接触させる工程、
を包含する、方法。
（項目１０）
前記ポリマー状基材は、膜の形態で存在する、項目９に記載の方法。
（項目１１）
前記ポリマー状基材は、別個の粒子の形態で存在する、項目９に記載の方法。
（項目１２）
前記ポリマー状基材は、固体状態の支持体に結合されている、項目９に記載の方法。
（項目１３）
前記ポリマー状基材は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方に対して選択的である、項目９〜１２のいずれか１項に記載の方法。
（項目１４）
前記リポポリサッカリドは、グラム陰性細菌に由来する、項目９〜１３のいずれか１項に記載の方法。
（項目１５）
前記グラム陰性細菌は、プロテオバクテリア、シアノバクテリア、スピロヘータ、緑色硫黄細菌、緑色非イオウ細菌、クレンアーキオータ、もしくは院内細菌である、項目１４に記載の方法。
（項目１６）
前記懸濁物は、水を含む、項目９〜１５のいずれか１項に記載の方法。
（項目１７）
前記懸濁物は、薬学的成分を含む、項目９〜１６のいずれか１項に記載の方法。
（項目１８）
前記薬学的成分は、細菌ワクチンである、項目１７に記載の方法。
（項目１９）
前記ポリマー状基材は、１つ以上の極性基を含む、上記項目のいずれか１項に記載の膜、プロセスもしくは方法。
（項目２０）
前記ポリマー状基材は、１つ以上のヒドロキシル基を含む、項目１９に記載の膜、プロセスもしくは方法。
（項目２１）
前記ポリマー状基材は、ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）を含む、上記項目のいずれか１項に記載の膜、プロセスもしくは方法。
（項目２２）
前記ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）中のエチレン：ｃｏ−ビニルアルコールの比は、３０〜６０：７０〜４０である、項目２１に記載の膜、プロセスもしくは方法。
（項目２３）
項目５〜７のいずれか１項に記載のプロセスによって生成される、ポリマー状基材。

図１は、Ｋｄｏインプリント（ｉｍｐｒｉｎｔｅｄ）膜および非インプリント膜での濾過後の、エンドトキシンの％回収を示す。四角形は、ＭＩＭであり；三角形は、ＮＭＩＭである。Ｘ軸は、濾液体積（ｍｌ）である。 図２は、再使用のＫｄｏインプリント膜および非インプリント膜での濾過後のエンドトキシンの％回収を示す。黒塗りのバーは、ＭＩＭであり、白塗りのバーは、ＮＭＩＭである。Ｘ軸は、濾液体積（ｍｌ）である。

（発明の詳細な説明）
（グラム陰性細菌）
本発明は、グラム陰性細菌に由来するリポポリサッカリドに関する。これら細菌の多くの種は病原性であり、この特徴は、上記細菌細胞のリポポリサッカリド層と特に関連する。グラム陰性細菌としては、プロテオバクテリア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ、および他のＥｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ、Ｍｏｒａｘｅｌｌａ、Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ、Ｓｔｅｎｏｔｒｏｐｈｏｍｏｎａｓ、Ｂｄｅｌｌｏｖｉｂｒｉｏ、Ｙｅｒｓｉｎｉａ、酢酸菌およびＬｅｇｉｏｎｅｌｌａが挙げられる）；シアノバクテリア；スピロヘータ；緑色硫黄細菌；および緑色非硫黄細菌が挙げられるが、これらに限定されない。グラム陰性球菌としては、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓおよびＭｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓが挙げられる。グラム陰性桿菌としては、Ｈｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ、Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｐｈｉｌａ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ、Ｐｒｏｔｅｕｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ、Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｃｌｏａｃａｅ、Ｓｅｒｒａｔｉａ ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ、Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｅｎｔｅｒｉｔｉｄｉｓ、およびＳａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉが挙げられる。院内グラム陰性細菌としては、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｂａｕｍａｎｉｉが挙げられる。

（リポポリサッカリド）
グラム陰性細菌の膜の最外層は、主にリポポリサッカリドからなり、これらの全ては、これらが由来する細菌に拘わらず、脂質成分（リピドＡといわれる）および親水性ヘテロポリサッカリドからなる、共通の基本的構造を有する。リピドＡは、上記膜内の分子を固定するアンカーを提供する一方で、上記ポリサッカリド成分は、表面から突出し、外部環境と相互作用する。

リポポリサッカリドのヘテロポリサッカリドユニットは、２つの部分を含む：コアオリゴサッカリドおよびオリゴサッカリドの複雑なポリマーを含む外側のＯ特異的ポリサッカリド側鎖（この側鎖は、上記リポポリサッカリドの抗原特異性を決定し、しばしばＯ抗原といわれる）。この成分は、これを合成した特定の細菌に特有である；異なる細菌は、上記Ｏ特異的ポリサッカリド側鎖の長さおよび微細構造において異なるリポポリサッカリド分子を合成する。上記コアの内部部分は、特徴的かつ普通でない成分である、ヘプトース（Ｌ−グリセロ−Ｄ−マンノ配置において）および２−ケト−３−デオキシオクトン（もしくは３−デオキシ−Ｄ−マンノ−オクト−２−ウロソン）酸（Ｋｄｏ）を含む。

本明細書で使用される場合、用語「ヘプトース」とは、「Ｌ−グリセロ−Ｄ−マンノ−ヘプトース」をいうことが理解され、用語「２−ケト−３−デオキシオクトン酸」とは、「３−デオキシ−Ｄ−マンノ−オクト−２−ウロソン酸」をいうことが理解される。

好ましくは、本発明の膜を形成する上記ポリマー状基材は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方に対して選択的である。上記で議論されるように、これら普通でない糖は、リポポリサッカリドに特徴的である。上記部分を認識しかつ選択的に結合することができるポリマー状基材は、リポポリサッカリドを、懸濁物から除去し得る。

（リポポリサッカリドの吸着）
本発明は、リポポリサッカリドを吸着するための膜を提供し、上記膜は、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を含む。本発明の状況において、「膜」は、溶液もしくは懸濁物中の特定の物質に対して透過性の物質の薄いシートである。本発明の膜は、ポリマー状基材もしくはマトリクスから形成される連続性の媒体であり、平らな、凹状のもしくは凸状のシートとして形成され得るか、または任意の他の適切な形状をとり得る。上記膜を横切ることを妨げられる分子は、これらの物理的もしくは化学的特性によって識別される。本発明の方法は、リポポリサッカリドの懸濁物からの除去のために、上記ポリマー状基材の異なる配置（例えば、懸濁物中の別個の粒子もしくはマイクロスフェア）を使用し得る。あるいは、上記ポリマー状基材は、固体状態の支持体（例えば、ビーズ、プレート、カラム、フィルタもしくは多孔性の固体）に結合させられ得る。

吸着は、物理吸着および化学吸着のうちのいずれかもしくは両方によって、起こり得る。上記ポリマー状基材上に吸着される分子は、処理されている懸濁物から除去される。上記懸濁物の処理後に、上記ポリマー状基材上に吸着される分子は、上記ポリマー状基材が再使用されるように、当該分野で公知の方法によって除去され得る。

上記ポリマー状基材は、当該分野で公知である、任意の適切なモノマー、ポリマー、およびコポリマーの組み合わせから形成され得る。好ましくは、上記ポリマー状基材は、分子インプリンティング技術によって形成される。この技術は、分子認識が可能であるポリマー状基材を生成する。上記ポリマーマトリクスは、化学種の間を区別しかつ特定の官能基を示す化学種を結合し得るので、高レベルの選択性を与える。

本発明の別の局面は、テンプレートの存在下で、機能性モノマーのセットを重合することによって、上記分子的にインプリントされたポリマー状基材の形成のためのプロセスを提供する。上記機能的モノマーは、機能的ヘッド基（これは、上記テンプレートと結合相互作用が可能である）、および架橋基（これは、他のモノマーに共有結合し得る）を含み得る。上記重合工程は、連鎖重合（ｃｈａｉｎ−ｇｒｏｗｔｈ ｐｏｌｙｍｅｒｉｓａｔｉｏｎ）もしくは逐次重合（ｓｔｅｐ−ｇｒｏｗｔｈ ｐｏｌｙｍｅｒｉｓａｔｉｏｎ）を包含し得、当該分野で公知の任意の手段によって開始され得る。本発明のさらなる局面は、テンプレートを含む均一なポリマー溶液の転相によって、上記分子的にインプリントされたポリマー状基材の形成のためのプロセスを提供する。

上記テンプレートをその後に抽出すると、上記テンプレートにサイズ、形状および官能基が補完的である、上記ポリマー状基材中の孔が、後に残る。この孔は、単離中の上記テンプレート、もしくはこれらの構造内に上記テンプレートの官能基を組み込む（すなわち、官能基の同じ特定の配置を含む）分子のいずれかを結合し得る。従って、本発明において、ヘプトースおよび／もしくは２−ケト−３−デオキシオクトン酸、またはこれらの化学構造を含む小さなオリゴサッカリドは、リポポリサッカリドを選択的に結合するポリマー状基材の製造のためのテンプレートとして使用され得る。ポリマー状基材を形成するためのプロセスは、必要とされる選択性を上記ポリマー状基材に与えるために、好ましくは、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方を含むテンプレート溶液の使用を包含する。これら分子的にインプリントされたポリマー状基材は、本発明の生物分離（ｂｉｏ−ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ）のために、上記多孔性膜へと作製され得る。

好ましい実施形態において、上記ポリマー状基材は、転相によって得られる。

上記ポリマー状基材は、１個以上の極性基を含み得る。例えば、上記ポリマー状基材は、１種以上のアミン、ヒドロキシルもしくはスルフヒドリル基、特に、ヒドロキシル基を含み得る。本発明者らは、ヒドロキシル基を含むポリマー状基材がリポポリサッカリドを結合し得ることを見いだした。例えば、上記ポリマー状基材は、ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）、すなわち、転相によって分子的にインプリントされたポリマー状基材を形成するための方法において使用され得るコポリマーを含み得る。名称ＥＶＡＬ^ＴＭの下で販売されているこのコポリマーの特性は、その構成モノマー（エチレンおよびビニルアルコール）の重合比、および上記重合反応の間に達成される重合の程度の制御によって、決定される。得られたランダムの結晶性ポリマーは、以下の分子式によって表される：
−（ＣＨ_２−ＣＨ_２）_ｍ−（ＣＨ_２−ＣＨＯＨ）_ｎ−
ここでｍおよびｎは整数である。エチレン：ｃｏ−ビニルアルコールの任意の適切な比が、使用され得る。特に、３０〜６０：７０〜４０の比が、使用され得、特に、４０〜５０：６０〜５０の比が使用され得る。例えば、３０：７０、３１：６９、３２：６８、３３：６７、３４：６６、３５：６５、３６：６４、３７：６３、３８：６２、３９：６１、４０：６０、４１：５９、４２：５８、４３：５７、４４：５６、４５：５５、４６：５４、４７：５３、４８：５２、４９：５１、５０：５０、５１：４９、５２：４８、５３：４７、５４：４６、５５：４５、５６：４４、５７：４３、５８：４２、５９：４１もしくは６０：４０の比が、使用され得、特に、４０：６０、４１：５９、４２：５８、４３：５７、４４：５６、４５：５５、４６：５４、４７：５３、４８：５２、４９：５１もしくは５０：５０の比が、使用され得る。本発明者らは、４４：５６の比が、リポポリサッカリドを結合するために適していることを見いだした。

本発明の別の局面は、懸濁物からリポポリサッカリドを除去するための方法を提供し、上記方法は、上記のように、上記懸濁物と、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材とを接触させる工程を包含する。上記ポリマー状基材は、膜もしくは別個の粒子の形態で存在していてもよいし、固体状態の支持体に結合されていてもよい。好ましくは、上記懸濁物は、例えば、生物学的流体の形態で、水を含む。より好ましくは、上記懸濁物は、薬学的成分を含む。さらにより好ましくは、上記薬学的成分は、細菌ワクチンである。ＬＰＳが除去され得る他の物質は、上記薬学的成分を含む最終投与形態の調製物および／もしくは処方物において使用される物質である。

（一般）
用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」とは、「含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」および「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ）」を包含し、例えば、Ｘを「含む」組成物は、もっぱらＸからなっていてもよいし、さらなる何かを含んでいてもよい（例えば、Ｘ＋Ｙ）。

用語「懸濁物」とは、溶液および任意のコロイド性の分散物を含み、ここである種は、溶媒中に懸濁されたままであってもよいし、均一な混合物を形成するように溶媒和化されてもよい。

用語「薬学的成分」とは、ヒトもしくは獣医的用途が意図された薬物をいう。

本発明の方法は、調製目的および／もしくは分析目的のために使用され得る。「調製」などへの言及は、分析法を排除すると解釈されるべきではない。

用語「細菌ワクチン」とは、細菌、減弱細菌もしくは死滅細菌、またはそれらの抗原性誘導体の懸濁物であって、細菌性疾患の予防もしくは処置のための免疫応答を誘導するために投与され得るものをいう。

用語「オリゴサッカリド」とは、少数（代表的には、３〜２０個）の成分となる糖を含むサッカリドポリマーをいう。

「固体状態の支持体」とは、特定の溶媒系（例えば、水もしくは有機溶媒）において不溶性であるものをいう。これは、ガラス、セラミック、金属、プラスチック、木材、もしくはポリマー状基材が結合させられ得る任意の他の物質から構成され得る。

本明細書で記載される化合物のイオン化可能な基が、例えば、ｐＨに依存して、中性の形態において、または荷電した形態において存在し得ることは、認識される。例えば、カルボキシル−ＣＯＯＨは、アニオン性の−ＣＯＯ⁻基を与えるために脱プロトン化され得る。任意の荷電した分子の塩はまた、本発明において使用され得る。

（発明を実施するための形態）
（ＬＰＳ捕捉のための分子がインプリントされた膜の調製、特徴付けおよび試験）
（緒言）
Ｋｄｏの特異的認識のための膜を、分子インプリント技術を使用して調製した。上記膜を、転相手順を使用して形成した。上記膜の製造において使用されるポリマー溶液は、ＥＶＡＬ^ＴＭ（ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール））であり、エチレン：ｃｏ−ビニルアルコール比は４４：５６であった。上記テンプレート溶液は、Ｋｄｏを含んでいた。

（膜調製）
ＮＭＩＭ−非インプリント（コントロール）膜（テンプレートなしで調製）。ＤＭＳＯ中のＥＶＡＬ^ＴＭの１５％ 懸濁物を、均一な溶液が得られるまで、１００℃において撹拌しながら加熱した。次いで、この溶液の２〜３．５ｍｌを、８．５×１４ｃｍ^２ガラス支持体上に注ぎ、４００μｍ厚の均一な層を、ナイフで切ることによって得た。上記層を、Ｈ_２Ｏ／ＤＭＳＯ（５０／５０ ｖ／ｖ）から構成される４００ｍｌの第１の凝固（転移（ｉｎｖｅｒｓｉｏｎ））バスで１時間にわたって凝固させた。次いで、上記膜を、４００ｍｌのＨ_２Ｏ中に６時間にわたっておいた。この転移手順の最後に、上記膜を、凍結乾燥によって乾燥させた。得られた膜は、２００μｍの厚みを有した。

ＭＩＭインプリントされた（試験）膜（テンプレートで調製）。この膜を、出発懸濁物が、５０ｍｇのＫｄｏを含むＤＭＳＯ中、ＥＶＡＬ^ＴＭの１５％ 懸濁物３ｍｌであったことを除いて、上記と同じ手順を使用して調製した。膜調製の後に、残りのテンプレートを、０．２バールの圧力で作動する再循環システムを使用して、水で上記膜を完全に洗い流すことによって、除去した。

（Ｋｄｏについての試験膜能力）
上記ＭＩＭのＫｄｏに対する結合能を決定するために、１００ｍｌの、１０μｇ／ｍｌ Ｋｄｏ水溶液を、濾過デバイス上に組み立てられたＭＩＭを通して一晩再循環させた。０時間と、再循環の最後との間の再循環溶液中の上記Ｋｄｏ濃度の差異を、上記再循環の間に使用される溶液の総体積および膜の重量に基づいて、Ｋｄｏに対する結合能を計算するために使用した。約８μｇ／ｍｇ 膜という値が、認められた。類似の実験において、ＮＭＩＭは、Ｋｄｏに対して顕著な結合能を有さなかった。Ｋｄｏに対する上記ＭＩＭ膜の選択性を試験するために、類似の実験を行った。ここで上記Ｋｄｏを、シアル酸で置換した。シアル酸に対する顕著な結合能は認められなかった（１μｇ／ｍｇ 膜）。シアル酸濃度およびＫｄｏ濃度を、Ｏｓｂｏｒｎ（１９６３） ＰＮＡＳ，５０：４９９−５０６の手順を使用して決定した。

（ＬＰＳ結合実験）
ＭＩＭ膜の一部分を切断し、濾過ホルダーにフィットさせて、濾過表面積４．９ｃｍ^２を提供した。次いで、シリンジを、発熱物質を含まない蒸留水、続いて、０．１Ｍ ＮａＯＨで洗い流し、浸透物が中性ｐＨになるまで、蒸留水で再び上記システムを洗い流すために使用した。

５０ＵＩ／ｍｌの濃度の、標準的なＥ．ｃｏｌｉリポポリサッカリド（ＬＰＳ）溶液１０ｍｌ（合計５００ＵＩ）を、上記シリンジを使用して、上記膜を通過させた。２．５ｍｌの４つの画分を集め、エンドトキシン濃度のＬｉｍｕｌｕｓ Ａｍｏｅｂｏｃｙｔｅ溶解物（ＬＡＬ）分析のために、０．７ｍｌのサンプルを各画分から採取した。次いで、上記画分を、一緒にプールし（プール１）、上記プールした総浸透物の０．７ｍｌサンプルを、分析のために取り出した。

上記浸透物の６ｍｌを、上記膜にもう一度通した。このとき、１．５ｍｌの４つの画分を集め、０．７ｍｌサンプルを、分析のために各画分から取り出した。次いで、これら画分を、一緒にプールし（プール２）、分析のためにさらに０．７ｍｌサンプルを取り出した。

使用後に、上記膜を、浸透物が中性ｐＨになるまで、蒸留水、０．１Ｍ ＮａＯＨおよび蒸留水で再び洗い流した。

上記フィルタ（ＳＭ）上に載せた出発物質および他のサンプルのエンドトキシン濃度を、分析した（表１）。

同じ条件を使用する実験を、上記ＮＭＩＭ膜で行った（表２）。

これら２つの実験の結果を、図１にまとめる。上記２つの実験を、同じ（すなわち、使用した）ＭＩＭ膜およびＮＭＩＭ膜を使用して行った（表３、図２）。

（考察）
Ｋｄｏ（ＬＰＳの保存された成分）を選択的に結合し得る膜を調製した。

新たにインプリントした膜（ＭＩＭ）は、最初に載せたもののうちの約８０％のＬＰＳを結合する潜在能力を示した。コントロール膜（ＮＭＩＭ）は、ＬＰＳの何ら顕著な結合を示さなかった（表１および表２、図１を比較のこと）。上記ＭＩＭ濾液は、最初のＬＰＳ負荷のうちの約１２％を含んでいた（表１、プール１）。しかし、上記膜を蒸留水で洗い流し、そしてＬＰＳを再度載せた後、さらなるＬＰＳ結合は認められなかった（表１、プール２）。このことは、上記膜がＬＰＳで飽和した可能性があることを示唆する。

上記膜を再使用した場合、異なる挙動が認められた（表３）。両方の膜は、最初のＬＰＳ負荷のうちの約５０〜６０％を保持するようであった。しかし、ＬＰＳの累積回収の分析は、上記インプリントした膜が、上記濾過プロセスの少なくとも最初において、ＬＰＳのより優れた結合をなお実証したことを示唆する（図２）。再使用膜で認められた結果は、上記膜の再利用が好ましくないことを示唆する。理論に拘束されることを望まないが、構造的改変が、上記膜の最初の使用後に起こり、これが、異なる特性およびおそらく非特異的結合（ａｓｐｅｃｉｆｉｃ ｂｉｎｄｉｎｇ）を付与することが考えられる。代わりに／さらに、再使用前に上記ＭＩＭ膜で行われる洗浄手順が、結合したＬＰＳの全てを除去するに十分ではないことが考えられ、このことは、最初のＫｄｏ結合部位の全てが利用可能なわけではないことを意味する。

これら結果は、分子インプリント技術の原理を利用して、水溶液からＬＰＳを認識しかつ結合する濾過膜を製造することが可能であることを確認する。

本発明は、例示によって記載されてきたに過ぎず、改変が、本発明の範囲および趣旨内にとどまりつつなされ得ることが理解される。

Claims (25)

1. リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するためのプロセスであって、該プロセスは、
   ｉ．均一なポリマー溶液とテンプレート溶液とを接触させる工程；
   ｉｉ．得られた溶液の転相を行う工程；ならびに
   ｉｉｉ．該テンプレートを除去する工程
   を包含し、該テンプレート溶液は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方を含む、プロセス。
2. リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を形成するためのプロセスであって、該プロセスは、
   ｉ．モノマー溶液とテンプレート溶液とを接触させる工程；
   ｉｉ．該モノマーの架橋基を反応させて、ポリマーを形成する工程；ならびに
   ｉｉｉ．該テンプレートを除去する工程、
   を包含し、該テンプレート溶液は、ヘプトースおよび２−ケト−３−デオキシオクトン酸のうちの少なくとも一方を含む、プロセス。
3. 膜を作製する工程をさらに包含する、請求項１または請求項２に記載のプロセス。
4. 前記テンプレート溶液は、ヘプトースおよび／または２−ケト−３−デオキシオクトン酸、あるいはそれらの化学構造を含むオリゴサッカリドを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載のプロセス。
5. リポポリサッカリドを吸着するための膜であって、請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセスによって得られ得る、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を含む、膜。
6. 前記リポポリサッカリドは、グラム陰性細菌に由来する、請求項５に記載の膜。
7. 前記グラム陰性細菌は、プロテオバクテリア、シアノバクテリア、スピロヘータ、緑色硫黄細菌、緑色非イオウ細菌、クレンアーキオータ（ｃｒｅｎａｒｃｈａｅｏｔａ）、球菌、桿菌および院内細菌（ｎｏｓｏｃｏｍｉａｌ ｂａｃｔｅｒｉａ）からなる群より選択される、請求項６に記載の膜。
8. 懸濁物からリポポリサッカリドを除去するための方法であって、該方法は、
   ｉ．請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセスによって得られ得る、リポポリサッカリドに結合するポリマー状基材を提供する工程；および
   ｉｉ．該懸濁物と該ポリマー状基材とを接触させる工程、
   を包含する、方法。
9. 前記ポリマー状基材は、膜の形態で存在する、請求項８に記載の方法。
10. 前記ポリマー状基材は、別個の粒子の形態で存在する、請求項８に記載の方法。
11. 前記ポリマー状基材は、固体状態の支持体に結合されている、請求項８に記載の方法。
12. 前記リポポリサッカリドは、グラム陰性細菌に由来する、請求項８〜１１のいずれか１項に記載の方法。
13. 前記グラム陰性細菌は、プロテオバクテリア、シアノバクテリア、スピロヘータ、緑色硫黄細菌、緑色非イオウ細菌、クレンアーキオータ、もしくは院内細菌である、請求項１２に記載の方法。
14. 前記懸濁物は、水を含む、請求項８〜１３のいずれか１項に記載の方法。
15. 前記懸濁物は、薬学的成分を含む、請求項８〜１４のいずれか１項に記載の方法。
16. 前記薬学的成分は、細菌ワクチンである、請求項１５に記載の方法。
17. 前記ポリマー状基材は、１つ以上の極性基を含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセス。
18. 前記ポリマー状基材は、１つ以上の極性基を含む、請求項８〜１５のいずれか１項に記載の方法。
19. 前記ポリマー状基材は、１つ以上のヒドロキシル基を含む、請求項１７に記載のプロセス。
20. 前記ポリマー状基材は、１つ以上のヒドロキシル基を含む、請求項１８に記載の方法。
21. 前記ポリマー状基材は、ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）を含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセス。
22. 前記ポリマー状基材は、ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）を含む、請求項８〜１５のいずれか１項に記載の方法。
23. 前記ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）中のエチレン：ｃｏ−ビニルアルコール
    の比は、３０〜６０：７０〜４０である、請求項２１に記載のプロセス。
24. 前記ポリ（エチレン−ｃｏ−ビニルアルコール）中のエチレン：ｃｏ−ビニルアルコールの比は、３０〜６０：７０〜４０である、請求項２２に記載の方法。
25. 請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセスによって生成される、ポリマー状基材。