JP5534346B2 - セレンテラミド類縁体 - Google Patents
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Description
すなわち、本発明は、以下に示す、セレンテラミド類縁体、及び蛍光蛋白質などを提供する。
で表わされる化合物
(式中、
R1は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキル、脂肪族環式基、又は複素環式基であり、
R2は、水素、又は−(SO2)R4であり、
R3は、水素、水酸基、メトキシ、又はアセトキシであり、
R4は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、又は脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキルであり、
X1は、−C(=S)−、又は−SO2−である。)。
(2)一般式(1)において、
R1は、フェニル、p−メチルフェニル、p−ヒドロキシフェニル、p−メトキシフェニル、p−アセトキシフェニル、p−ニトロフェニル、ベンジル、α−ヒドロキシベンジル、4−メチルベンジル、4−ヒドロキシベンジル、4−メトキシベンジル、4−アセトキシベンジル、4−ニトロベンジル、フェニルエチル、メチル、エチル、プロピル、2−メチルプロピル、2−メチルプロパニル、シクロヘキシルメチル、シクロヘキシルエチル、アダマンチルメチル、シクロペンチルメチル、シクロヘキシル、又はチオフェン−2−イルであること、
を特徴とする、上記(1)に記載の化合物。
(3)一般式(1)において、
R2は、水素、ベンゼンスルホニル、p−トルエンスルホニル、4−ヒドロキシフェニルスルホニル、4−メトキシフェニルスルホニル、4−アセトキシフェニルスルホニル、4−ニトロフェニルスルホニル、ベンジルスルホニル、α−ヒドロキシベンジルスルホニル、4−メチルベンジルスルホニル、4−ヒドロキシベンジルスルホニル、4−メトキシベンジルスルホニル、4−アセトキシベンジルスルホニル、4−ニトロベンジルスルホニル、フェニルエチルスルホニル、メタンスルホニル、エチルスルホニル、プロピルスルホニル、2−メチルプロピルスルホニル、2−メチルプロパニルスルホニル、シクロヘキシルメチルスルホニル、シクロヘキシルエチルスルホニル、アダマンチルメチルスルホニル、又はシクロペンチルメチルスルホニルであること、
を特徴とする、上記(1)又は(2)に記載の化合物。
(4)下記化合物
からなる群から選択される、上記(1)〜(3)のいずれか1項に記載の化合物。
(5)下記化合物
からなる群から選択される、上記(1)〜(3)のいずれか1項に記載の化合物。
(5a)下記化合物
からなる群から選択される、上記(1)〜(3)のいずれか1項に記載の化合物。
(6)上記(1)〜(5a)のいずれか1項に記載の化合物、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質、及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを含む、青色蛍光蛋白質。
(7)カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンの存在下、上記(1)〜(5a)のいずれか1項に記載の化合物と、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質とを反応させることを含む、青色蛍光蛋白質の製造方法。
(8)前記反応を、還元剤の存在下において行う、上記(7)に記載の方法。
(9)上記(1)〜(5a)のいずれか1項に記載の化合物、及びカルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質を含む、緑色蛍光蛋白質。
(10)上記(6)に記載の青色蛍光蛋白質を、カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤で処理することを含む、緑色蛍光蛋白質の製造方法。
(11)上記(9)に記載の緑色蛍光蛋白質に、セレンテラジン又はその類縁体を反応させることを含む、カルシウム結合型発光蛋白質の製造方法。
(12)蛍光蛋白質とセレンテラジン又はその類縁体との反応を、還元剤の存在下において行う、上記(11)に記載の方法。
1.セレンテラミド類縁体
本発明は、下記一般式(1)で表わされる化合物(本発明のセレンテラミド類縁体)を提供する。
(式中、
R1は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキル、脂肪族環式基、又は複素環式基であり、
R2は、水素、又は−(SO2)R4であり、
R3は、水素、水酸基、メトキシ、又はアセトキシであり、
R4は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、又は脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキルであり、
X1は、−C(=S)−、又は−SO2−である。)。
(式中、R1、R2、及びR3は、前記の通りである。)
(式中、R1、R2、及びR3は、前記の通りである。)
2.1.スルホンアミド系セレンテラミド類縁体の製造方法
本発明のセレンテラミド類縁体のうち、下記一般式(2)で表わされるスルホンアミド系セレンテラミドの製造方法について説明する。
(式中、R1、R2、及びR3は、前記の通りである。)
一般式(4)
で表わされる化合物(式中、R3は、前記の通りである。)と、
一般式(5)
で表わされる化合物(式中、R1は、前記の通りである。)を反応させることにより、製造することができる。
本発明のセレンテラミド類縁体のうち、下記一般式(3)で表わされるスルホンアミド系セレンテラミドの製造方法について説明する。
(式中、R1、R2、及びR3は、前記の通りである。)
一般式(6)
で表わされる化合物(式中、R1、R2、及びR3は、前記の通りである。)に、ローソン試薬、又は五硫化二リン(十硫化四リン)を反応させることにより、製造することができる。
(式中、R1は前記の通りであり、Xはハロゲン(例えば、フッ素、塩素、臭素、又はヨウ素)、又はR1C(=O)−である。)
図1に示すように、青色蛍光蛋白質(BFP)は、セレンテラミド又はその類縁体に、アポイクオリン等のアポ蛋白質を反応させることにより製造することができる。一方、緑色蛍光蛋白質(gFP)は、BFPを、EDTA等のカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤で処理することにより製造することができる。
3.1.1.青色蛍光蛋白質(BFP)の製造方法
本発明の青色蛍光蛋白質(BFP)は、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質に、本発明のセレンテラミド類縁体が配位した複合体である。すなわち、本発明のBFPは、本発明のセレンテラミド類縁体、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質、及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを含む。BFPは、光の励起を受けて蛍光を発生することができるとともに、BFPとセレンテラジン又はその類縁体と接触させることで、発光を生じさせることもできる。
(a)天然型アポ蛋白質のアミノ酸配列において1〜複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入及び/又は付加したアミノ酸配列からなり、かつ、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質活性若しくは機能を有する蛋白質、
(b)天然型アポ蛋白質のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質活性若しくは機能を有する蛋白質、及び
(c)天然型アポ蛋白質の塩基配列に相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされるアミノ酸配列からなり、かつ、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質活性若しくは機能を有する蛋白質。
ハイブリダイゼーションは、Sambrook J. et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001)、Ausbel F. M. et al., Current Protocols in Molecular Biology, Supplement 1〜38, John Wiley and Sons (1987−1997)、又はGlover D. M. and Hames B. D., DNA Cloning 1: Core Techniques, A practical Approach, Second Edition, Oxford University Press (1995)等の実験書に記載されている方法に準じて行うことができる。
(1)発光触媒としての利用
本発明のBFPは、発光基質に作用しそれを発光させるので、発光触媒として利用できる。そこで、本発明は、本発明のBFPに、セレンテラジン又はその類縁体を接触させることを含む、発光方法を提供する。ここで、「接触」とは、BFPとセレンテラジン又はその類縁体とを同一の反応系に存在させることを意味し、例えば、セレンテラジン又はその類縁体を収容した容器にBFPを添加すること、BFPを収容した容器にセレンテラジン又はその類縁体を添加すること、又はBFPとセレンテラジン又はその類縁体とを混合すること、などが含まれる。
本発明のBFPは、レポーター蛋白質としてプロモーターなどの転写活性の測定に利用することもできる。アポ蛋白質をコードするポリヌクレオチドを、目的のプロモーター又は他の発現制御配列(例えば、エンハンサーなど)に融合したベクターを構築する。前記ベクターを宿主細胞に導入し、さらに、これに、本発明のセレンテラミド類縁体及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを接触させ、本発明の蛍光蛋白質に由来する蛍光を検出することにより、目的のプロモーター又は他の発現制御配列の活性を測定することができる。ここで、「接触」とは、宿主細胞とセレンテラミド類縁体とカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンとを同一の培養系・反応系に存在させることを意味し、例えば、宿主細胞の培養容器にセレンテラミド類縁体及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを添加すること、宿主細胞とセレンテラミド類縁体とカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンとを混合すること、宿主細胞をセレンテラミド類縁体及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンの存在下で培養することなどが含まれる。
本発明のBFPは、蛍光による検出マーカとして利用することができる。本発明の検出マーカは、例えば、イムノアッセイ又はハイブリダイゼーションアッセイなどにおける目的物質の検出に利用することができる。本発明のBFPを化学修飾法など通常用いられる方法により目的物質(蛋白質或いは核酸など)と結合させて使用することができる。このような検出マーカを用いた検出方法は、通常の方法によって行うことができる。
本発明のBFPは、光の励起をうけて蛍光を生じる。よって、本発明のBFPは、アミューズメント用品の材料の蛍光基材として好適に使用することができる。アミューズメント用品としては、たとえば、蛍光シャボン玉、蛍光アイス、蛍光飴、蛍光絵の具等があげられる。本発明のアミューズメント用品は、通常の方法によって製造することができる。
3.2.1.緑色蛍光蛋白質(gFP)の製造
本発明の緑色蛍光蛋白質(gFP)は、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質に、本発明のセレンテラミド類縁体が配位した複合体である。すなわち、本発明のgFPは、本発明のセレンテラミド類縁体、及びカルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質を含む。gFPは、光の励起を受けて蛍光を発生することができる。
(1)レポーター蛋白質としての利用
本発明のgFPは、レポーター蛋白質としてプロモーターなどの転写活性の測定に利用することもできる。アポ蛋白質をコードするポリヌクレオチドを、目的のプロモーター又は他の発現制御配列(例えば、エンハンサーなど)に融合したベクターを構築する。前記ベクターを宿主細胞に導入し、さらに、これに、本発明のセレンテラミド類縁体を接触させてBFPを生成させた後、カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤を接触させることでgFPを生成させ、本発明のgFPに由来する蛍光を検出することにより、目的のプロモーター又は他の発現制御配列の活性を測定することができる。
本発明のgFPは、蛍光による検出マーカとして利用することができる。本発明の検出マーカは、例えば、イムノアッセイ又はハイブリダイゼーションアッセイなどにおける目的物質の検出に利用することができる。本発明のgFPを化学修飾法など通常用いられる方法により目的物質(蛋白質或いは核酸など)と結合させて使用することができる。このような検出マーカを用いた検出方法は、通常の方法によって行うことができる。また、本発明の検出マーカは、例えば、アポ蛋白質と目的物質との融合蛋白質として発現させ、マイクロインジェクション法などの手法により細胞内に導入し、さらに、これに、本発明のセレンテラミド類縁体を接触させてBFPを生成させた後、カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤を接触させることでgFPを生成させること等によって、前記目的物質の分布を測定するために利用することもできる。このような目的物質などの分布の測定は、蛍光イメージング等の検出法などを利用して行うこともできる。なお、アポ蛋白質は、マイクロインジェクション法などの手法により細胞内に導入する以外に、細胞内で発現させて用いることもできる。
本発明のgFPは、アミューズメント用品の材料の蛍光材として好適に使用することができる。アミューズメント用品としては、たとえば、蛍光シャボン玉、蛍光アイス、蛍光飴、蛍光絵の具等があげられる。本発明のアミューズメント用品は、通常の方法によって製造することができる。
図1に示すように、イクオリン等のカルシウム結合型発光蛋白質は、EDTA等のカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤の存在下、gFPに、セレンテラジン又はその類縁体を反応させることで、製造することが出来る。
本発明のカルシウム結合型発光蛋白質は、本発明のgFPから製造することができる。すなわち、本発明のカルシウム結合型発光蛋白質は、gFPに、発光基質であるセレンテラジン又はその類縁体を反応させることによって、得ることができる。
蛍光蛋白質とセレンテラジン又はその類縁体との反応を、カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤の存在下において行うのが好ましい。本発明においてgFPを製造するのに用いるキレート剤は、前記と同様である。
(1)カルシウムイオンの検出又は定量
本発明のカルシウム結合型発光蛋白質は、カルシウムイオンの作用によって発光する発光蛋白質(ホロ蛋白質)である。よって、本発明の発光蛋白質は、カルシウムイオンの検出又は定量に使用することができる。
本発明のカルシウム結合型発光蛋白質は、生物発光共鳴エネルギー移動(BRET)法による分子間相互作用の原理を利用した生理機能の解析や酵素活性の測定等の分析方法に利用することができる。
CTMDの基本骨格をベースとして、h−セレンテラチオアミドとh−セレンテラスルホンアミドを、下記合成スキームにより合成した。また、比較として、h−セレンテラミドも合成した。
[材料及び方法]
(1)化学薬品
全ての化学薬品は特に記さない限り、市販のものをそのまま使用した。
反応、抽出、及びクロマトグラフィー用の溶媒には、酢酸エチル、n−ヘキサン、ジクロロメタン、脱水ジクロロメタン、クロロホルム、メタノール、エタノール、ジエチルエーテル、アセトン、トルエン、及び1,2−ジメトキシエタンの市販品(Wako)をそのまま用いた。
反応試薬は以下に挙げるものを使用した。
フェニルアセチルクロリド (Wako)、4−(ジメチルアミノ)ピリジン (Wako)、1.0 M 三臭化ホウ素/ジクロロメタン溶液 (Aldrich)、ローソン試薬 (Aldrich)、ベンジルスホニルクロリド (Wako)、無水酢酸 (Wako)、トリエチルアミン (Wako)、水酸化ナトリウム (Wako)、脱水ピリジン (Wako)、アセチルクロリド (Wako)、メタンスルホニルクロリド (Wako)、p−トルエンスルホニルクロリド (Kanto)、p−ニトロベンゼンスルホニルクロリド (Aldrich)、フェニルボロン酸 (Acros organics)、炭酸ナトリウム (Wako)、及びジクロロビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II) (Aldrich)。
分析用薄層クロマトグラフィー(TLC)には、MERCK社製、Silicagel 60 F254(Cat. No. 1.05715.)を用いた。スポットの検出は、紫外線ランプ(254 nm又は365 nm)による方法、ヨウ素吸着、及びリンモリブデン酸の酸性水溶液に浸した後にホットプレートで焼くことで行った。分取用フラッシュカラムクロマトグラフィーには、順相シリカゲルとして関東化学社製、Silicagel 60N Cat. No. 37563−85、メッシュ40−50 μm、又は関東化学社製、Silicagel 60N Cat. No. 37565−84、メッシュ63−200 μmを使用した。なお、本実施例においてクロマトグラフィー用の混合溶媒の比率は、特に説明が無い限りv/v である。
融点(Mp.)は、YANACO社製、微量融点測定装置MP−J3を用いて測定した。
紫外吸収スペクトル(UV)及びOD値(330 nm)の測定には、日本分光社製、V−560を用いて25 ℃で測定した。各サンプルの30 μMメタノール溶液及びpH.7.4リン酸緩衝水溶液(PB)を調製し、石英セル(光路長10 mm)中で測定した。難溶性の化合物は、はじめに少量のDMSOに溶解し、それを各溶媒で希釈することでサンプル調製を行った。DMSOを用いた場合には、その含有割合を記載した。全ての測定は、バンド幅0.5 nm、レスポンスMedium、スキャン速度200 nm/minの条件で測定した。
1H(400 MHz)核磁気共鳴スペクトル(NMRスペクトル)は、Varian社製、Unity Plus 400を用いてDMSO−d6中で測定した。1H NMRの化学シフトの基準には、測定溶媒であるDMSO−d6中の残存非重水素化ジメチルスルホキシドのピークをδ2.49とした。
13C(75.5 MHz)核磁気共鳴スペクトル(NMRスペクトル)は、Varian社製、MERCURY 300を用いてDMSO−d6中で測定した。13C NMRの化学シフトの基準には、測定溶媒であるDMSO−d6のピークをδ 39.5とし、ピークが重複した化合物についてはピークを分離するために重メタノールを加え、その旨を記載した。
赤外分光計スペクトル(IR)は、DRS−8000を装着したSHIMADZU社製、IRPrestige−21 spectrophotometerを用いて、拡散反射法により測定した。
高分解能質量分析スペクトル(HRMS)は、JEOL社製JMS−700を用いて、電子衝撃イオン化(EI)法、又は高速原子衝突(FAB+)法、又はBrucker社製MicrOTOFを用いてエレクトロスプレーイオン化法(ESI+)により測定した。
元素分析は、YANACO社製CHN CORDER MT-5を用いて行った。
3−ベンジル−5−(4−メトキシフェニル)−2−(フェニルアセチルアミノ)ピラジン(c−16)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)−2−(フェニルアセチルアミノ)ピラジン(h−セレンテラミド) (c−13)
3−ベンジル−5−(4−メトキシフェニル) −2−(フェニルチオアセチルアミノ)ピラジン(c−17)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)−2−(フェニルチオアセチルアミノ)ピラジン(h−セレンテラチオアミド) (c−14)
3−ベンジル−2−ベンジルスルホニルアミノ−5−(4−メトキシフェニル)ピラジン (c−18)
5−(4−アセトキシフェニル)−2−アミノ−3−ベンジルピラジン (c−19)
アルゴン雰囲気下、2−アミノ−3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)ピラジン (セレンテラミン) (c−5) (Adamczyk, M. et al., Org. Prep. Proced. Int., 33, 477−485 (2001)に記載の方法によって製造) (303 mg, 1.09 mmol)をピリジン (2 mL)に溶解し、0 ℃に冷却した。これに、無水酢酸 (133 μL, 1.40 mmol)を加え、室温に昇温後1時間撹拌した。これに、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と酢酸エチルを加え反応を停止し、水層と有機層を分離した後、酢酸エチルで3回抽出した。有機層を水で3回、飽和食塩水で1回洗浄した後、無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥した。無水硫酸ナトリウムをろ過により除去した後、ろ液をロータリーエバポレーターで減圧濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー (50 g, n−ヘキサン/酢酸エチル = 1/1)で精製し、5−(4−アセトキシフェニル)−2−アミノ−3−ベンジルピラジン(c−19)を淡黄色固体として得た (337 mg, 96.7%)。Rf = 0.31 (n−ヘキサン/酢酸エチル = 3/2)。Mp. 183.5−185.5 ℃。1H NMR (400 MHz, DMSO−d6) δ2.27 (s, 3H), 4.07 (s, 2H), 6.42 (s, 2H), 7.12−7.17 (AA’BB’, 2H), 7.19 (d, J = 7.2 Hz, 1H), 7.27 (t, J = 7.5 Hz, 2H), 7.33 (d, J = 7.0 Hz, 2H), 7.90−7.95 (AA’BB’, 2H), 8.41 (s, 1H)。IR (KBr, cm−1) 513, 596, 640, 654, 710, 746, 851, 910, 1016, 1136, 1167, 1198, 1217, 1373, 1423, 1452, 1466, 1493, 1508, 1535, 1630, 1746, 3148, 3289。
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−ビス(ベンジルスルホニル)アミノピラジン (c−20)
3−ベンジル−2−ベンジルスルホニルアミノ−5−(4−ヒドロキシフェニル)ピラジン (h−セレンテラスルホンアミド) (c−15)
3−ベンジル−2−ビス(ベンジルスルホニル)アミノ−5−(4−メトキシフェニル)ピラジン (c−21)
5−(4−アセトキシフェニル)−2−(4−アセトキシフェニル)アセチルアミノ−3−ベンジルピラジン (c−29)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−(フェニルアセチルアミノ)ピラジン (c−30)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−(フェニルチオアセチルアミノ)ピラジン (c−31)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−(ベンジルスルホニルアミノ)ピラジン (c−32)
5−(4−アセトキシフェニル)−2−アセチルアミノ−3−ベンジルピラジン (c−33)
2−アセチルアミノ−3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)ピラジン(セレンテラアセトアミド) (c−25)
2−アセチルアミノ−3−ベンジル−5−(4−メトキシフェニル)ピラジン (c−24)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−ビス(メタンスルホニル)アミノピラジン (c−39)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)2−(メタンスルホニルアミノ)ピラジン(セレンテラメシルアミド) (c−34)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)−2−[(4−メチルフェニル)スルホニルアミノ]ピラジン(セレンテラ−p−トシルアミド) (c−35)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−ビス(4−ニトロフェニルスルホニル)アミノピラジン(c−40)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)−2−[(4−ニトロフェニル)スルホニルアミノ]ピラジン(セレンテラ−p−ノシルアミド) (c−36)
2−アミノ−3−ベンジル−5−フェニルピラジン (c−41)
アルゴン雰囲気下、2−アミノ−3−ベンジル−5−ブロモピラジン (c−10) (1.66 g, 6.27 mmol)を1,2−ジメトキシエタン(17 mL)、エタノール (13 mL)に溶解し、これに室温で撹拌しながら2 M 炭酸ナトリウム水溶液 (31.4 mL, 62.8 mmol)、ジクロロビス(トリフェニルホスフィン)パラジウム(II) (221 mg, 315 μmol)、フェニルボロン酸 (996 mg, 8.16 mmol)を順次加え、90 ℃で2.5時間撹拌した。室温まで放冷後、飽和食塩水と酢酸エチルを加え反応を停止し、有機層を飽和食塩水で洗浄した後、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。無水硫酸ナトリウムをろ過することで除去し、ろ液をロータリーエバポレーターで減圧濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー (50 g, n−ヘキサン/酢酸エチル = 3/2 → 1/1)で精製した後、得られた固体を酢酸エチルを用いて2回再結晶し、2−アミノ−3−ベンジル−5−フェニルピラジン (c−41)を黄色固体として得た(982 mg, 59.9%)。Rf = 0.30 (n−ヘキサン/酢酸エチル = 3/2)。1H NMR (400 MHz, DMSO−d6) δ 4.07 (s, 2H), 6.41 (s, 2H), 7.18 (t, J = 7.5 Hz, 1H), 7.24−7.31 (m, 3H), 7.34 (d, J = 7.3 Hz, 2H), 7.40 (t, J = 7.5 Hz, 2H), 7.90 (d, J = 7.8 Hz, 2H), 8.41 (s, 1H)。IR (KBr, cm−1) 596, 664, 694, 716, 733, 754, 773, 908, 937, 1070, 1152, 1217, 1233, 1396, 1427, 1450, 1462, 1493, 1543, 1636, 3024, 3125, 3291, 3487。HRMS (EI+) m/z 261.1269 (M, C17H15N3requires 261.1266)。
3−ベンジル−2−ビス(ベンジルスルホニル)アミノ−5−フェニルピラジン (c−42)
3−ベンジル−2−ベンジルスルホニルアミノ−5−フェニルピラジン(ジデオキシセレンテラスルホンアミド) (c−37)
3−ベンジル−5−(4−メトキシフェニル)−2−[(4−メトキシフェニル)チオアセチルアミノ]ピラジン (c−44)
3−ベンジル−5−(4−ヒドロキシフェニル)−2−[(4−ヒドロキシフェニル)チオアセチルアミノ]ピラジン(セレンテラチオアミド) (c−45)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−ビス(4−ヨードベンジルスルホニル)アミノピラジン (c−46)
5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−[(4−ヒドロキシベンジル)スルホニルアミノ]ピラジン (c−48)
上記で得られた混合物をアセトン(10 mL)に溶解し、これに室温にてoxone (247 mg, 401 μmol)を水(3 mL)に溶解したものを加え、そのまま室温で15分間攪拌した。これに飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え反応を停止し、ジクロロメタンで3回抽出した。有機層を水で1回、飽和食塩水で1回洗浄した後、無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥した。無水硫酸ナトリウムをろ過することで除去し、ろ液をロータリーエバポレーターで減圧濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(50 g, n−ヘキサン/酢酸エチル = 2/1、および50 g, n−ヘキサン/酢酸エチル = 3/2)にて精製し、得られたを無色固体を(68.5 mg)を酢酸エチルに溶解し、n−ヘキサンを加え化合物を析出させた。ろ過により析出した固体を回収し、減圧下で乾燥することにより、5−(4−アセトキシフェニル)−3−ベンジル−2−[(4−ヒドロキシベンジル)スルホニルアミノ]ピラジン (c−48) を無色固体として得た (44.8 mg, 20.0%, 2 steps)。Rf = 0.45 (n−ヘキサン/酢酸エチル = 1/1)。1H NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ2.30 (s, 3H), 4.26 (s, 2H), 4.81 (s, 2H), 6.68−6.79 (AA’BB’, 2H), 7.08−7.32 (m, 9H), 8.02−8.14 (AA’BB’, 2H), 8.94 (s, 1H), 9.55 (s, 1H), 10.45 (s, 1H)。13C NMR (67.8 MHz, DMSO-d6) δ20.9, 37.9, 59.1, 115.3 (2C), 119.8, 122.4 (2C), 126.3, 127.2 (2C), 128.3 (2C), 128.9 (2C), 132.0 (2C), 133.3, 136.8, 137.9, 145.0, 145.4, 145.5, 151.3, 157.7, 169.1。IR (KBr, cm−1) 536, 598, 702, 841, 891, 920, 1015, 1153, 1204, 1233, 1327, 1373, 1422, 1454, 1514, 1599, 1746, 3269。
3−ベンジル−2−(4−ヒドロキシベンジル)スルホニルアミノ−5−(4−ヒドロキシフェニル)ピラジン (セレンテラスルホンアミド) (c−38)
[実施例1]
合成した各CTMD類縁体の蛍光量子収率決定を以下の手順で行った。蛍光スペクトルは、Jasco(日本分光株式会社、東京)のFP−6500蛍光分光光度計を用いて25℃で測定した。具体的には、石英セル(光路長10mm)を用い、最終濃度が750 nMになるようにCTMD類縁体をメタノール (MeOH)又は67mMリン酸緩衝液(PB)(pH 7.4)に溶解し、励起波長:330 nm、 発光/励起帯域幅: 3 nm、レスポンス:0.5 秒、スキャン速度:100 nm/分で3回測定を行い、その平均スペクトルを、化合物蛍光スペクトルとした。蛍光量子収率決定には、スペクトル補正を行った後に使用した。
実施例1で求めた蛍光量子収率は、セレンテラミド類縁体の最終濃度を750 nMとして、蛍光スペクトルを測定し算出した数値であるが、実施例1のように最終濃度を750 nMとした場合、本発明のセレンテラミド類縁体のうち、c−14、c−31、及びc−36については、メタノール中およびリン酸緩衝液中とも蛍光スペクトルを検出できず、c−25は、リン酸緩衝液中で蛍光スペクトルを検出できなかった(n.d.:検出不可)。そこで、蛍光スペクトルを検出できなかったc−14、c−31、c−25 及びc−36について、これらのセレンテラミド類縁体の最終濃度を30 μMとしたことを除いて実施例1と同じ条件で蛍光スペクトルを測定した。また、同様に、c−4についても、最終濃度を30 μMとして蛍光スペクトルを測定した。さらに、c−45についても、最終濃度を 18μMとしたことを除いて実施例1と同じ条件で10 mM CaCl2を含む50 mM Tris−HCl (pH 7.6)中で蛍光スペクトルを測定した。
c−14 (hCTTD)、c−31 (O−Ac−h−CTTD) 及び c−36 (CT−p−NsD) のメタノール中での蛍光スペクトルを図2示し、また、リン酸緩衝液中での、c−14 (hCTTD)、c−31 (O−Ac−h−CTTD)、 C−25 (CTAD) 及び c−36 (CT−p−NsD)の蛍光スペクトルを図3に示す。また、10 mM CaCl2を含む50 mM Tris−HCl (pH 7.6)中での、c−45 (CTTD)の蛍光スペクトも図3に示す。
また、c−4、c−14、c−31、c−25 及び c−36の蛍光スペクトルデータを表2にまとめた。
尚、c−44(CTTD)については、c−17(hCTTD)に蛍光能があることから、c−17と同様、蛍光能を有すると考えられる。
c−38について、蛍光スペクトルを、Jasco(日本分光株式会社、東京)のFP−6500蛍光分光光度計を用いて25℃で測定した。具体的には、石英セル(光路長10mm)を用い、最終濃度が18μMになるようにc−38を10 mM CaCl2を含む50 mM Tris−HCl (pH 7.6)に溶解し、励起波長:330 nm、 発光/励起帯域幅: 3 nm、レスポンス:0.5 秒、スキャン速度:100 nm/分で3回測定を行い、その平均スペクトルを、蛍光スペクトルとした。
c−38(CTSD)の10 mM CaCl2を含む50 mM Tris−HCl (pH 7.6)での蛍光スペクトルを図4に示す。
図4から、c−38は蛍光能を有することが分かった。
〔配列番号:1〕天然型アポイクオリンの塩基配列である。
〔配列番号:2〕天然型アポイクオリンのアミノ酸配列である。
〔配列番号:3〕天然型アポクライティン−Iの塩基配列である。
〔配列番号:4〕天然型アポクライティン−Iのアミノ酸配列である。
〔配列番号:5〕天然型アポクライティン−IIの塩基配列である。
〔配列番号:6〕天然型アポクライティン−IIのアミノ酸配列である。
〔配列番号:7〕天然型アポマイトロコミンの塩基配列である。
〔配列番号:8〕天然型アポマイトロコミンのアミノ酸配列である。
〔配列番号:9〕天然型アポオベリンの塩基配列である。
〔配列番号:10〕天然型アポオベリンのアミノ酸配列である。
〔配列番号:11〕天然型アポベルボインの塩基配列である。
〔配列番号:12〕天然型アポベルボインのアミノ酸配列である。
Claims (12)
- 下記一般式(1)
で表わされる化合物
(式中、
R1は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキル、脂肪族環式基、又は複素環式基であり、
R2は、水素、又は−(SO2)R4であり、
R3は、水素、水酸基、メトキシ、又はアセトキシであり、
R4は、置換若しくは非置換のアリール、置換若しくは非置換のアリールアルキル、又は脂肪族環式基によって置換されていてもよい直鎖若しくは分枝鎖のアルキルであり、
X1は、−C(=S)−、又は−SO2−である。)。 - 一般式(1)において、
R1は、フェニル、p−メチルフェニル、p−ヒドロキシフェニル、p−メトキシフェニル、p−アセトキシフェニル、p−ニトロフェニル、ベンジル、α−ヒドロキシベンジル、4−メチルベンジル、4−ヒドロキシベンジル、4−メトキシベンジル、4−アセトキシベンジル、4−ニトロベンジル、フェニルエチル、メチル、エチル、プロピル、2−メチルプロピル、2−メチルプロパニル、シクロヘキシルメチル、シクロヘキシルエチル、アダマンチルメチル、シクロペンチルメチル、シクロヘキシル、又はチオフェン−2−イルであること、
を特徴とする、請求項1に記載の化合物。 - 一般式(1)において、
R2は、水素、ベンゼンスルホニル、p−トルエンスルホニル、4−ヒドロキシフェニルスルホニル、4−メトキシフェニルスルホニル、4−アセトキシフェニルスルホニル、4−ニトロフェニルスルホニル、ベンジルスルホニル、α−ヒドロキシベンジルスルホニル、4−メチルベンジルスルホニル、4−ヒドロキシベンジルスルホニル、4−メトキシベンジルスルホニル、4−アセトキシベンジルスルホニル、4−ニトロベンジルスルホニル、フェニルエチルスルホニル、メタンスルホニル、エチルスルホニル、プロピルスルホニル、2−メチルプロピルスルホニル、2−メチルプロパニルスルホニル、シクロヘキシルメチルスルホニル、シクロヘキシルエチルスルホニル、アダマンチルメチルスルホニル、又はシクロペンチルメチルスルホニルであること、
を特徴とする、請求項1又は2に記載の化合物。 - 下記化合物
からなる群から選択される、請求項1〜3のいずれか1項に記載の化合物。 - 下記化合物
からなる群から選択される、請求項1〜3のいずれか1項に記載の化合物。 - 請求項1〜5のいずれか1項に記載の化合物、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質、及びカルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを含む、青色蛍光蛋白質。
- カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンの存在下、請求項1〜5のいずれか1項に記載の化合物と、カルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質とを反応させることを含む、青色蛍光蛋白質の製造方法。
- 前記反応を、還元剤の存在下において行う、請求項7に記載の方法。
- 請求項1〜5のいずれか1項に記載の化合物、及びカルシウム結合型発光蛋白質のアポ蛋白質を含む、緑色蛍光蛋白質。
- 請求項6に記載の青色蛍光蛋白質を、カルシウムイオン又はカルシウムイオンと置換可能な2価若しくは3価のイオンを除去するためのキレート剤で処理することを含む、緑色蛍光蛋白質の製造方法。
- 請求項9に記載の緑色蛍光蛋白質に、セレンテラジン又はその類縁体を反応させることを含む、カルシウム結合型発光蛋白質の製造方法。
- 蛍光蛋白質とセレンテラジン又はその類縁体との反応を、還元剤の存在下において行う、請求項11に記載の方法。
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