JP5273510B2 - ホタルルシフェリンを用いないルシフェラーゼの光活性測定方法 - Google Patents
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Description
5, 127-136;非特許文献1)。これによって薬剤や化学物質など外的な因子による細胞
応答が評価可能であり、創薬研究や環境ホルモンの検出等に用いられている(Windal I.;
Denison M.S.; Birnbaum L.S.; Van Wouwe N.; Baeyens W.; Goeyens L. (2005), Environ. Sci. Technol., 39,7357-7364;非特許文献2)本法では、プロモーター活性測定可能なプロモーター領域のDNA配列を甲虫ルシフェラーゼ配列に挿入したプラスミドベクター
等を導入した細胞等に、対象となる物質を加えた後、一定時間経過後、細胞をすり潰し細胞内に含まれるルフェラーゼタンパク質を含む試料にルシフェリン試薬(反応に必要なATPやマグネシウムイオンが含まれている)を加えることによって発光活性を測定している
。一方、時計遺伝子のプロモーター活性の測定を行うために、時計遺伝子遺伝子プロモーター活性を測定可能なプロモーター領域のDNA配列を甲虫ルシフェラーゼ配列に挿入した
プラスミドベクター等を哺乳類細胞内に導入した後、直接培地にルシフェリンを加え生きた細胞のまま、遺伝子発現を評価する例も増えている。(Nakajima Y.; Ikeda M.; Kimura T.; Honma S.; Ohmiya Y.; Honma K. (2004). FEBS Lett., 565, 122-126;非特許文献3)また、発ガンや病態を解析するために作成された発光マウス等の発光甲虫ルシフェラ
ーゼ遺伝子導入のトランスジェニック生物もたくさん作られ、ルシフェリン・ルシフェラーゼ反応の発光を指標に創薬等に利用する例も増えているが、この場合、発光トランスジェニック生物に直接ルシフェリンを注射したり、食餌としてルシフェリンを与えたりするのが一般的である。(Collaco A. M.; Geusz M. E. (2003). BMC Physiology, 3, 8;非
特許文献4)しかしながら、ルシフェリンが高価であるため、生きた発光甲虫ルシフェラ
ーゼ導入細胞・個体の活用が制限されているのが現状である。さらに細胞チップなどを活用するにあたり、発光細胞チップは細胞応答を簡便に測定できるシステムとして活用は期待されているが、ルシフェリンが高価であるという理由から、蛍光測定装置さえあれば細胞応答を計測できる蛍光細胞チップに比べ、普及していないのが現状である。
出発物質とする化合物である(White E. H., McCapra F., Fireld G. and McElroy W. D.
(1961) J. Amer. Chem. Soc., 83, 2402-2403;非特許文献5)
。化学合成の手法は確立されているが、出発物質が天然型に比べて高価なD-システインであるため、安価に供給できないのが現状である。しかしながら、近年、発光基質合成経路の再評価により、発光基質D-ホタルルシフェリンがなくとも、天然型L‐システインを出発物質として発光基質が合成され、その経路に関わる物質群とホタルルシフェラーゼを加えることで発光する、in vitroのL-システインの定量法が報告されている(特開2004-379971;特許文献1)。
哺乳類細胞やトランスジェニック生物が発光することを見出し、本発明の完成に至った。
項1. 下記の式(1):
項2. ルシフェラーゼがホタルルシフェラーゼである項1に記載の方法。
項3. 下記の式(1):
項4. 下記の式(1):
項5. 下記の式(1):
項6. 下記の式(1):
項7. 下記の式(1):
項8. 下記の式(1):
る必要がなく、当該基質を合成する手間も省けるため、より安価に発光活性測定ができる。また、長時間に亘ってより安定な発光を制御することも可能となる。
ンとなり、続いて酸素と反応してオキシルシフェリンとなる時に光を発する。この時、触媒として反応を円滑に進めるのがホタルルシフェラーゼなどの発光甲虫ルシフェラーゼであり、さらにマグネシウムイオンが補因子として必要である。よって、発光反応を生み出す上で、必須な物質群はD-ホタルルシフェリン、ATP、マグネシウムイオンと発光甲虫ル
シフェラーゼ(特にホタルルシフェラーゼ)である。
イソバレリルオキシ、ピバロイルオキシ、グリコリルオキシ、ラクトイルオキシ、フェニルアセチルオキシ、ベンゾイルオキシなどが挙げられる。
ルアミノ、ペンチルアミノ、ヘキシルアミノなどのC1〜C6,好ましくはC1〜C4の直鎖または分枝を有するアルキルアミノ基が挙げられる。
しくはC1〜C4の直鎖または分枝を有するアルキルでジ置換されたアミノ基が挙げられる。
1〜C4の直鎖または分枝を有するアルキル基が挙げられる。
ゼ遺伝子が導入された細胞又は組織を培養するための培地としては、通常細胞ないし組織培養に使用される培地を特に制限なく使用することができる。好ましくは液体培地であり、培養液には、ルシフェリンの細胞内への取り込みを促進する目的等でDMSO, Tweenをさ
らに添加することもできる。培地には、本発明のルシフェリン前駆体の他に、ATP、補酵素A、マグネシウムイオン、L−システインなどを添加することもできる。
与えられる餌であれば特に限定されず、標準食に本発明のルシフェリン前駆体を混合したものが挙げられる。餌におけるルシフェリン前駆体の含有量は特に限定されないが、通常0.01〜2wt%であり、好ましくは0.1wt%である。本発明のルシフェリン前駆体を含有する餌には、さらにATP、補酵素A、マグネシウムイオン、L−システインなどを添加することもできる。
時計遺伝子マウスPer2プロモーター下流に挿入したヒカリコメツキルシフェラーゼcDNAベクター1μgを、35mm培養ディッシュに播種した培養繊維芽細胞NIH3T3にリポフェクシ
ョン法(リポフェクトアミン)により導入し、24時間37℃で培養後、100 nMのデキサメタゾンを含むDMEM培地で2時間処理した。更に200μMのD-ルシフェリンと10%(w/v)の
牛血清を含むDMEM培地に交換後、遺伝子発現連続測定装置(アトー(株)社AB2500)にて、1分間の発光を19分間隔で5日間に発光量をリアルタイムに測定した(図1(a))。併せて200μMのL-ルシフェリンと10%(w/v)の牛血清を含むDMEM培地に(図1(b))及び200
μMの本発明のルシフェリン前駆体である2−シアノ−6−ヒドロキシベンゾチアゾール
(CHBT)と10%(w/v)の牛血清を含むDMEM培地に(図1(c))交換後、遺伝子発現連
続測定装置(アトー(株)社AB2500)にて、1分間の発光を19分間隔で5日間に発光量をリアルタイムに測定した。結果は、図1に示す通りである。Per2プロモーターに依存した約24時間周期の変動をモニター可能である。発光量はCHBT とL-ルシフェリンでは同程度、D-ルシフェリンでは20%程度であったが、いずれも同様な結果を示し、CHBTを培地に加え
ることでD-ルシフェリンと同様に細胞内で発現したルシフェラーゼ活性を測定できることが明らかとなった。
時計遺伝子マウスBmal1プロモーター下流でヒカリコメツキルシフェラーゼを発現する
よう遺伝子改変されたトランスジェニックマウスに、20 mM CHBT/1 mMシステイン溶液100
μlを、経口ゾンデを用いた強制経口投与および腹腔内投与を行った。また同様に、10 mM D-ルシフェリン溶液 100μlの強制経口投与および腹腔内投与を行った。薬剤投与の2時間後トランスジェニックマウスを解剖し、血液、脳、肺、心臓、肝臓、腎臓、膀胱、大腿筋、胃を摘出した。摘出した組織を非破壊の状態で発光測定用チューブに入れ、ルミノメータ(発光測定装置)(アトー(株)社AB-2500)にて、20秒間発光を測定した(図2(a)
)。CHBT/システイン溶液の投与では、特に筋肉において高い発光活性が見られた。その
他の脳、肝臓、腎臓、膀胱、胃などでも発光活性があった。この傾向はD-ルシフェリン溶液の投与でも同様であった。各臓器の重量あたりの発光値を図2(b)に示す。D-ルシフェリン溶液及びCHBT溶液共に、併せて強制経口投与した場合及び、腹腔内投与した場合共に、各種臓器において同レベルの発光量を確認でき、CHBT溶液を生体に与えることで、D-ルシフェリン溶液と同様に各所臓器内に発現したルシフェラーゼの活性を測定し、発光をイメージングできることが明らかとなった。
Claims (7)
- ルシフェラーゼがホタルルシフェラーゼである請求項1に記載の方法。
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