JP5099534B2 - Use of Kank3 gene for cancer therapy, cancer detection and drug discovery - Google Patents
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Description
本発明は、癌細胞運動（移動）抑制機能を有するKank3遺伝子の疾病治療及び診断並びに創薬への利用を提供する。 The present invention provides use of the Kank3 gene having a cancer cell motility (migration) inhibitory function for disease treatment and diagnosis and drug discovery.
ヒトにおいて、染色体9p24にマップされるアンキリンリピートを含み、癌抑制遺伝子であると推測されるKank遺伝子が報告されている（特許文献１および非特許文献１を参照）。該Kank遺伝子は、特に腎癌組織において転写が減少しており、腎臓癌との関係が推測されている。
In humans, a Kank gene that contains an ankyrin repeat mapped to chromosome 9p24 and is presumed to be a tumor suppressor gene has been reported (see
一方、Kankファミリーの一員であるKank遺伝子のcDNAはcDNAクローニングによりクローン化され、そのほぼ全長のcDNA塩基配列について報告されている（特許文献１および非特許文献２を参照）分子量約140kDaのタンパク質をコードしている遺伝子である。Kank遺伝子は、染色体9p24にマップされるBACクローンRPCI-11-130C19上に位置づけられる。また該cDNA塩基配列は、GenBankに登録番号D79994（登録名：Human mRNA for KIAA0172 gene, partial cds）としてcDNA配列の一部が報告されている。
本発明は、Kankファミリーの一員であるKank3遺伝子の疾病治療及び診断並びに創薬への利用を提供することを目的とする。 An object of the present invention is to provide use of the Kank3 gene, a member of the Kank family, for disease treatment and diagnosis and drug discovery.
本発明者らは、アクチン重合の制御は細胞の運動や移動にとって必須であり、Kank遺伝子を発現していない細胞や発現量の低い細胞についても同様のメカニズムによる制御機構が存在すると考え、Kankタンパク質の機能領域（コイルドコイルモチーフとアンキリンリピート配列）を有する遺伝子（Kankファミリー遺伝子と総称する）の探索を行い、Kankファミリーの新たな一員であるKankファミリーの新たな一員であるKank3遺伝子を見出した。該Kank3遺伝子の発現について検討を行った結果、Kank3遺伝子は、従来知られていたKank遺伝子と発現様式や発現部位が異なり、従来知られていたKank遺伝子とは異なる有用性を有することを見出した。さらに、Kank3遺伝子が細胞増殖（特にアクチンの重合反応）に関係する機能を有することから癌細胞の運動や移動を制御することが可能であることを見出し、本発明を完成させた。 The present inventors believe that the control of actin polymerization is essential for cell movement and migration, and that there is a control mechanism based on the same mechanism for cells not expressing the Kank gene or for cells with low expression levels. The gene having the functional regions (coiled coil motif and ankyrin repeat sequence) (collectively referred to as the Kank family gene) was searched, and the Kank3 gene, a new member of the Kank family, was found. As a result of investigating the expression of the Kank3 gene, it was found that the Kank3 gene has a different expression pattern and expression site from the conventionally known Kank gene and has a different utility from the conventionally known Kank gene. . Furthermore, the Kank3 gene has a function related to cell proliferation (particularly, actin polymerization reaction), and it has been found that it is possible to control the movement and migration of cancer cells, thereby completing the present invention.
すなわち、本発明は以下のとおりである。
（１） 以下の(a)または(b)のタンパク質、
(a) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、かつKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質
（２） 以下の(a)または(b)のタンパク質をコードする遺伝子、
(a) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、かつKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質
（３） 以下の(c)又は(d)のDNAを含む遺伝子、
(c) 配列番号１で表される塩基配列からなるDNA
(d) 上記(c)のDNAと相補的な配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質をコードするDNA
（４） （２）または（３）の遺伝子を含有する組換えベクター、
（５） （４）の組換えベクターを含む形質転換体、
（６） （１）のタンパク質またはその一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質を有効成分とする癌治療薬、
（７） （２）または（３）のDNAもしくはそれに対応するRNAまたはそれらの一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質をコードするDNAまたはRNAを有効成分とする癌治療薬、
（８） （１）のタンパク質またはその一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質を含む癌検出薬、
（９） （２）または（３）のDNAもしくはそれに対応するRNAまたはそれらの一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質をコードするDNAまたはRNAを含む癌検出薬、
（１０） （１）のタンパク質に対する抗体を含む癌検出薬、
（１１） （２）または（３）の遺伝子を含有する癌治療用ベクター、
（１２） （２）または（３）の遺伝子を含有する癌検出用ベクター、
（１３） （１）のタンパク質またはその一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質を被検体と接触させる工程を含む癌検出法、
（１４） （２）または（３）のDNAもしくはそれに対応するRNAまたはそれらの一部断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質をコードするDNAまたはRNAを被検体と接触させる工程を含む癌検出法、
（１５） （１）のタンパク質に対する抗体を被検体と接触させる工程を含む癌検出法、
（１６） Kank3遺伝子が導入された、Kank3遺伝子トランスジェニック動物、および
（１７） Kank3遺伝子が破壊された、Kank3遺伝子ノックアウトマウス。
That is, the present invention is as follows.
(1) The following protein (a) or (b),
(a) a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2
(b) a protein comprising an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 and having a function equivalent to that of the Kank3 protein (2) a gene encoding the protein of (a) or (b),
(a) a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2
(b) a protein comprising an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 and having a function equivalent to that of the Kank3 protein (3) a gene comprising the DNA of (c) or (d),
(c) DNA comprising the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1
(d) DNA that hybridizes with DNA comprising a sequence complementary to the DNA of (c) above under stringent conditions and encodes a protein having a function equivalent to that of the Kank3 protein
(4) a recombinant vector containing the gene of (2) or (3),
(5) A transformant comprising the recombinant vector of (4),
(6) A cancer therapeutic agent comprising, as an active ingredient, a protein of (1) or a partial fragment thereof and having a function equivalent to the function of Kank3 protein,
(7) A cancer comprising as an active ingredient DNA or RNA encoding the protein of (2) or (3) or RNA corresponding thereto or a partial fragment thereof and having a function equivalent to that of the Kank3 protein Therapeutic drugs,
(8) A cancer detection agent comprising a protein of (1) or a partial fragment thereof and a protein having a function equivalent to that of the Kank3 protein,
(9) A cancer detection agent comprising DNA or RNA encoding the DNA of (2) or (3) or RNA corresponding thereto or a partial fragment thereof and having a function equivalent to that of the Kank3 protein,
(10) A cancer detection agent comprising an antibody against the protein of (1),
(11) A cancer therapeutic vector containing the gene of (2) or (3),
(12) A cancer detection vector containing the gene of (2) or (3),
(13) A method for detecting cancer comprising a step of bringing a protein having the same function as the function of Kank3 protein into contact with a subject, which is the protein of (1) or a partial fragment thereof,
(14) DNA or RNA encoding the DNA of (2) or (3) or RNA corresponding thereto or a partial fragment thereof having a function equivalent to the function of Kank3 protein is brought into contact with the subject. Cancer detection method comprising the steps,
(15) A cancer detection method comprising a step of contacting an antibody against the protein of (1) with a subject,
(16) A Kank3 gene transgenic animal into which the Kank3 gene has been introduced, and (17) a Kank3 gene knockout mouse in which the Kank3 gene has been disrupted.
本発明の治療薬により癌の治療が可能になり、また本発明の検出薬により癌を検出することが可能になる。 The therapeutic agent of the present invention makes it possible to treat cancer, and the detection agent of the present invention makes it possible to detect cancer.
以下、本発明を詳細に説明する。
１．Kank3遺伝子の取得
ｃDNAライブラリーの作製、遺伝子のクローニング及びスクリーニング、塩基配列の決定等の技術はJ. Sambrook, E. F. Fritsch & T. Maniatis (1989): Molecular Cloning, a laboratory manual, second edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press及び Ed Harlow and David Lanc (1988): Antibodies, a laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press等の当業者に良く知られた文献に記載された方法に従って行えばよい。
Hereinafter, the present invention will be described in detail.
1. Kank3 gene acquisition J. Sambrook, EF Fritsch & T. Maniatis (1989): Molecular Cloning, a laboratory manual, second edition, Cold Spring. Harbor Laboratory Press and Ed Harlow and David Lanc (1988): Antibodies, a laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, and other methods well-known in the art may be used.
本発明の遺伝子は、mRNAを抽出し、cDNAを合成して単離することができる。mRNAの供給源としては腎臓等のヒト組織を用いることができる。mRNAの調製は、グアニジンチオシアネート／塩化セシウム法などにより全RNAを抽出した後、オリゴdT−セルロースやポリU−セファロース等を用いたアフィニティーカラム法により、あるいはバッチ法によりポリ（A）+RNA（mRNA）を得ることにより行える。このようにして得られたmRNAを鋳型として、オリゴdTプライマー及び逆転写酵素を用いて一本鎖cDNAを合成した後、該一本鎖cDNAから二本鎖cDNAを合成する。 The gene of the present invention can be isolated by extracting mRNA and synthesizing cDNA. Human tissues such as kidney can be used as a source of mRNA. mRNA is prepared by extracting total RNA by the guanidine thiocyanate / cesium chloride method, etc., and then using an affinity column method such as oligo dT-cellulose or poly U-sepharose, or a batch method to obtain poly (A) + RNA (mRNA ). Using the mRNA thus obtained as a template, a single-stranded cDNA is synthesized using an oligo dT primer and reverse transcriptase, and then a double-stranded cDNA is synthesized from the single-stranded cDNA.
合成した二本鎖cDNAを適当なベクターに組み込んで、該ベクターを用いて大腸菌等を形質転換してcDNAライブラリーを作製して本発明の遺伝子の一部を取得することができる。得られたｃDNA断片はPCR法で増幅し、マキサム・ギルバート法（Maxam, A. M. and Gilbert, W., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 74, 560, 1977）又はジデオキシ法（Messing, J. et al., Nucl. Acids Res., 9, 309, 1981）等により塩基配列を決定することができる。 A part of the gene of the present invention can be obtained by incorporating the synthesized double-stranded cDNA into an appropriate vector and transforming E. coli or the like using the vector to prepare a cDNA library. The obtained cDNA fragment was amplified by PCR, and the Maxam Gilbert method (Maxam, AM and Gilbert, W., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 74, 560, 1977) or the dideoxy method (Messing, J et al., Nucl. Acids Res., 9, 309, 1981) and the like.
本願明細書の開示に基づけば、Kank3遺伝子の全長配列を得ることができる。配列番号１に本発明のKank3遺伝子の塩基配列を示す。配列番号２にKank3タンパク質のアミノ酸配列を示す。 Based on the disclosure of the present specification, the full-length sequence of the Kank3 gene can be obtained. SEQ ID NO: 1 shows the base sequence of the Kank3 gene of the present invention. SEQ ID NO: 2 shows the amino acid sequence of the Kank3 protein.
２．本発明のKank3遺伝子
本願発明で利用するKank3遺伝子はその全長配列であってもよいし、コードされるタンパク質がKank3遺伝子のコードするタンパク質の有する機能と同等の機能を有するKank3遺伝子の一部配列を有する断片であってもよい。一部配列の例としては、本遺伝子の機能部位と考えられるアンキリン（ankyrin）配列を含む配列が挙げられる。また、配列番号１で表される塩基配列からなるDNAに相補的なDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることができ、かつコードされるタンパク質がKank3遺伝子のコードするタンパク質の有する機能と同等の機能を有する変異体DNAも本発明の遺伝子に含まれる。ストリンジェントな条件とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。例えば、相同性が高いDNA同士、すなわち60％以上、好ましくは80％以上の相同性を有するDNA同士がハイブリダイズし、それより相同性が低い核酸同士がハイブリダイズしない条件が挙げられる。より具体的には、ナトリウム濃度が150〜900mM、好ましくは600〜900mMであり、温度が60〜68℃、好ましくは65℃での条件をいう。
2. The Kank3 gene of the present invention The Kank3 gene used in the present invention may be a full-length sequence, or the encoded protein may be a partial sequence of the Kank3 gene having a function equivalent to the function of the protein encoded by the Kank3 gene. It may be a fragment. Examples of the partial sequence include a sequence containing an ankyrin sequence which is considered to be a functional site of the gene. In addition, it can hybridize under stringent conditions with DNA complementary to the DNA consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1, and the encoded protein has the same function as the protein encoded by the Kank3 gene. Mutant DNAs having the above functions are also included in the gene of the present invention. Stringent conditions refer to conditions under which so-called specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed. For example, DNAs having high homology, that is, DNAs having a homology of 60% or more, preferably 80% or more hybridize, and nucleic acids having lower homology do not hybridize. More specifically, the sodium concentration is 150 to 900 mM, preferably 600 to 900 mM, and the temperature is 60 to 68 ° C, preferably 65 ° C.
さらに、少なくとも配列番号１で表される塩基配列もしくはその塩基配列のうちKank3遺伝子のエキソン１の塩基配列および配列番号１で表される塩基配列のうちKank3遺伝子のエキソン２からエキソン１０の塩基配列を含むDNAの塩基配列またはその一部塩基配列と相同性が70％以上、好ましくは80％以上、さらに好ましくは90％以上、特に好ましくは95％以上の相同性を有し、コードされるタンパク質がKank3遺伝子のコードするタンパク質の有する機能と同等の機能を有する変異体DNAも本発明の遺伝子に含まれる。
Further, at least the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or the base sequence of
さらに、配列番号１で表される塩基配列からなるDNAの塩基配列またはその一部塩基配列の１個または複数の塩基に欠失、置換、付加等の変異が生じた塩基配列を有し、コードされるタンパク質がKank3遺伝子のコードするタンパク質の有する機能と同等の機能を有する変異体DNAも本発明の遺伝子に含まれる。ここで、全長塩基配列の場合、欠失、置換または付加している塩基の数は、１〜1080個、好ましくは１〜720個、さらに好ましくは１〜360個、さらに好ましくは1〜180個、さらに好ましくは1〜90個、さらに好ましくは１〜30個、さらに好ましくは１〜10個、１〜９個もしくは１〜５個である。 Furthermore, it has a base sequence in which a mutation such as deletion, substitution, addition or the like has occurred in one or more bases of a DNA base sequence consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or a partial base sequence thereof, A mutant DNA having a function equivalent to the function of the protein encoded by the Kank3 gene is also included in the gene of the present invention. Here, in the case of the full-length base sequence, the number of bases deleted, substituted or added is 1 to 1080, preferably 1 to 720, more preferably 1 to 360, more preferably 1 to 180. More preferably, it is 1 to 90, more preferably 1 to 30, more preferably 1 to 10, 1 to 9, or 1 to 5.
さらに、配列番号１で表される塩基配列の一部からなるポリヌクレオチドを含む、本発明の遺伝子の検出・診断に用い得るプローブまたはプライマーも本発明に含まれる。ここで、プローブまたはプライマーとして用い得るポリヌクレオチドの塩基の数は、15個以上、例えば、15〜100個、15〜50個、好ましくは50個以上、さらに好ましくは100個以上、特に好ましくは200個以上である。 Furthermore, the present invention also includes a probe or primer that can be used for detection / diagnosis of the gene of the present invention, comprising a polynucleotide comprising a part of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1. Here, the number of bases of the polynucleotide that can be used as a probe or primer is 15 or more, for example, 15 to 100, 15 to 50, preferably 50 or more, more preferably 100 or more, and particularly preferably 200. It is more than one.
ここで、Kank3遺伝子のコードするタンパク質の有する機能とは、14-3-3タンパク質と結合する機能をいう。具体的には、Kank3遺伝子のコードするタンパク質は、14-3-3タンパク質ファミリー中のgamma、epsilon、eta、thetaと結合し、その結合の強さはthetaに対して特に強い。Kankタンパク質と14-3-3タンパク質との結合は、2004年12月の第27回日本分子生物学会年会で報告されている（ポスター番号：1PB-269）。Kankタンパク質は14-3-3タンパク質ファミリーのgamma、epsilon、eta、thetaに結合するが、その中でも、gammaとthetaに強く結合する。Kankタンパク質はアクチンの重合反応を制御することにより細胞の運動や移動を制御している。同様のタンパク質がKank遺伝子を発現していないか発現量が低い細胞でも存在していると考え、異なる細胞/組織においてKankと同じ機能を担っている遺伝子の探索を行ない、Kank3を発見した（図１aにKank遺伝子との関係を示した）。Kank3は、Kankと同様のタンパク質構造（N端にコイルドコイルモチーフを持ち、C端にアンキリンリピート配列を持つ）をもつ遺伝子としてGenBank遺伝子データベースにおいて見いだされた（図１bにKank3タンパク質の構造を示した）。Kank3は、分子量110 kDのタンパク質をコードする遺伝子であり（図２）、このタンパク質が実際に細胞内に存在し機能していることは、RT-PCR実験（図３）と免疫染色（図４）から明らかである。遺伝子は染色体19p13.2に存在しており、したがって、Kank遺伝子（染色体9p24）とは異なる染色体上の位置に存在している。Kank3がKankと異なる点は、組織や細胞における発現様式（図３）と14-3-3ファミリータンパク質のサブタイプに対する結合の特異性（図５）であり、したがって、Kankとは異なるメカニズムでアクチンの制御を行っていると考えられる。また、Kank3と14-3-3タンパク質の結合には、Kank3の31番目のセリンが必要であり、31番目のセリンをアラニンに変えた変異体（Kank3 S31A）では、これらの結合は見られない（図６）。様々なタンパク質に対する14-3-3の結合様式を考えると、このセリンのリン酸化が結合に必要と考えられる。図７に示すように、Kank3を強制発現させることによりアクチン繊維が減少した（図のFLAG-Kank3の結果）ことから、Kank3はアクチンの重合を制御していると考えられる。また、14-3-3タンパク質に対して結合できない変異体を強制発現した場合にはアクチン繊維の消失が見られない（図のFLAG-Kank3S31Aの結果）ことから、Kank3のアクチン重合の制御は14-3-3との結合が必要であることが判る。このように、Kank3タンパク質は、Kankタンパク質、Kank2タンパク質およびKank4タンパク質と異なる。すなわち、14-3-3タンパク質との相互作用の様式が異なり、Kankタンパク質、Kank2タンパク質およびKank4タンパク質とは異なるメカニズムでアクチンタンパク質の重合を制御する。さらに、この機能の延長として、癌細胞に認められる高い細胞運動や移動を抑制する機能も含まれ、例えばHEK293細胞やPC12細胞等の株化細胞にKank3遺伝子を導入して、細胞の時間当たりの細胞移動能の減少及び／または細胞の接着面積の増加や神経細胞における樹状突起の形成能等の細胞の形態変化を観察することにより該機能を有しているかどうかがわかる。HEK293細胞及びPC12細胞は、ATCCから入手可能である。 Here, the function of the protein encoded by the Kank3 gene refers to the function of binding to 14-3-3 protein. Specifically, the protein encoded by the Kank3 gene binds to gamma, epsilon, eta, and theta in the 14-3-3 protein family, and the strength of the binding is particularly strong with respect to theta. The binding between Kank protein and 14-3-3 protein was reported at the 27th Annual Meeting of the Molecular Biology Society of Japan in December 2004 (Poster No. 1PB-269). Kank protein binds to gamma, epsilon, eta, and theta of the 14-3-3 protein family, and among them, it strongly binds to gamma and theta. Kank protein controls cell movement and movement by controlling polymerization reaction of actin. Considering that similar proteins exist in cells that do not express the Kank gene or in low expression levels, we searched for a gene that has the same function as Kank in different cells / tissues and found Kank3 (Fig. 1a shows the relationship with the Kank gene). Kank3 was found in the GenBank gene database as a gene having the same protein structure as Kank (having a coiled-coil motif at the N-terminus and an ankyrin repeat sequence at the C-terminus) (Fig. 1b shows the structure of the Kank3 protein). . Kank3 is a gene that encodes a protein with a molecular weight of 110 kD (FIG. 2). The fact that this protein is actually present and functioning in cells is confirmed by RT-PCR experiments (FIG. 3) and immunostaining (FIG. 4). ) Is clear. The gene is located on chromosome 19p13.2 and is therefore located on a different chromosome than the Kank gene (chromosome 9p24). The difference between Kank3 and Kank is the expression pattern in tissues and cells (Fig. 3) and the specificity of binding to subtypes of 14-3-3 family proteins (Fig. 5). It is thought that control is performed. In addition, binding of Kank3 and 14-3-3 protein requires the 31st serine of Kank3, and this binding is not seen in the mutant (Kank3 S31A) in which the 31st serine is changed to alanine. (FIG. 6). Given the manner of 14-3-3 binding to various proteins, this serine phosphorylation is considered necessary for binding. As shown in FIG. 7, the actin fibers were reduced by forced expression of Kank3 (result of FLAG-Kank3 in the figure), and thus it is considered that Kank3 controls the polymerization of actin. In addition, when a mutant that cannot bind to the 14-3-3 protein is forcibly expressed, the loss of actin fibers is not observed (result of FLAG-Kank3S31A in the figure). It turns out that the coupling with -3-3 is necessary. Thus, Kank3 protein is different from Kank protein, Kank2 protein and Kank4 protein. That is, the mode of interaction with 14-3-3 protein is different, and polymerization of actin protein is controlled by a mechanism different from that of Kank protein, Kank2 protein and Kank4 protein. Furthermore, as an extension of this function, it also includes the function of suppressing high cell movement and migration observed in cancer cells. For example, by introducing the Kank3 gene into cell lines such as HEK293 cells and PC12 cells, By observing changes in cell morphology such as a decrease in cell migration ability and / or an increase in the adhesion area of cells and the ability to form dendrites in neurons, it can be determined whether or not it has this function. HEK293 cells and PC12 cells are available from ATCC.
遺伝子に変異を導入するには、Kunkel法、Gapped duplex法等の公知の手法又はこれに準ずる方法を採用することができる。例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばMutant-K (TAKARA社製)やMutant-G (TAKARA社製)）などを用いて、あるいは、TAKARA社のLA PCR in vitro Mutagenesis シリーズキットを用いて変異導入が行われる。 In order to introduce a mutation into a gene, a known method such as the Kunkel method or the Gapped duplex method, or a method equivalent thereto can be employed. For example, using a mutagenesis kit using site-directed mutagenesis (for example, Mutant-K (TAKARA) or Mutant-G (TAKARA)), or TAKARA LA PCR in vitro Mutagenesis Mutation is performed using a series kit.
さらに、本発明ではKank3遺伝子配列を含むDNAだけではなく、該遺伝子配列をコードするRNAも含まれ、これらDNAまたはRNAの修飾体も含まれる。ここで修飾体とはKank3遺伝子の機能を妨げない程度に塩基配列中の任意の塩基が修飾されたもの等を含む。 Furthermore, in the present invention, not only DNA containing the Kank3 gene sequence, but also RNA encoding the gene sequence, and modifications of these DNAs or RNAs are also included. Here, the modified form includes those in which any base in the base sequence is modified to such an extent that the function of the Kank3 gene is not hindered.
一旦遺伝子の塩基配列が確定されると、その後は化学合成によって、又はクローニングされたcDNAを鋳型としたPCRによって、あるいは該塩基配列を有するDNA断片をプローブとしてハイブリダイズさせることによって、本発明の遺伝子を得ることができる。 Once the base sequence of the gene is determined, the gene of the present invention is then synthesized by chemical synthesis, by PCR using the cloned cDNA as a template, or by hybridizing with a DNA fragment having the base sequence as a probe. Can be obtained.
３．Kank3タンパク質の取得
得られたKank3遺伝子を入手可能な適当な発現ベクターに組み込んで、さらに適当な宿主細胞に形質転換し、適当な培地中で培養、発現させ、目的タンパク質を回収、精製することができる。この際のベクターとして、プラスミド、ファージ、ウイルス等の宿主細胞において複製可能である限りいかなるベクターも用いることができる。例えば、pBR322、pBR325、pUC118、pUC119、pKC30、pCFM536等の大腸菌プラスミド、pUB110等の枯草菌プラスミド、pG-1、YEp13、YCp50等の酵母プラスミド、λgt110、λZAPII等のファージのDNA等が挙げられ、哺乳類細胞用のベクターとしては、バキュロウイルス、ワクシニアウイルス、アデノウイルス等のウイルスDNA、SV40とその誘導体等が挙げられる。ベクターは、複製開始点、選択マーカー、プロモータを含み、必要に応じてエンハンサー、転写終結配列（ターミネーター）、リボソーム結合部位、ポリアデニル化シグナル等を含んでいてもよい。
3. Acquisition of Kank3 protein The obtained Kank3 gene can be incorporated into an appropriate expression vector, transformed into an appropriate host cell, cultured and expressed in an appropriate medium, and the target protein recovered and purified. it can. As the vector at this time, any vector can be used as long as it can be replicated in a host cell such as a plasmid, a phage, or a virus. Examples include E. coli plasmids such as pBR322, pBR325, pUC118, pUC119, pKC30, and pCFM536, Bacillus subtilis plasmids such as pUB110, yeast plasmids such as pG-1, YEp13, and YCp50, and phage DNA such as λgt110 and λZAPII. Examples of vectors for mammalian cells include viral DNA such as baculovirus, vaccinia virus, adenovirus, SV40 and its derivatives. The vector contains a replication origin, a selection marker, and a promoter, and may contain an enhancer, a transcription termination sequence (terminator), a ribosome binding site, a polyadenylation signal, and the like as necessary.
宿主細胞としては、大腸菌、ストレプトミセス、枯草菌等の細菌細胞、アスペルギルス属菌株等の真菌細胞、パン酵母、メタノール資化性酵母等の酵母細胞、ドロソフィラS2、スポドプテラSf9等の昆虫細胞、CHO、COS、BHK、3T3、C127等の哺乳類細胞等が挙げられる。 As host cells, bacterial cells such as Escherichia coli, Streptomyces, Bacillus subtilis, fungal cells such as Aspergillus strains, yeast cells such as baker's yeast, methanol-utilizing yeast, insect cells such as Drosophila S2, Spodoptera Sf9, CHO, Examples include mammalian cells such as COS, BHK, 3T3, and C127.
形質転換は、塩化カルシウム、リン酸カルシウム、DEAE-デキストラン介在トランスフェクション、エレクトロポレーション等の公知の方法で行うことができる。 Transformation can be performed by a known method such as calcium chloride, calcium phosphate, DEAE-dextran mediated transfection, electroporation and the like.
得られたリコンビナントタンパク質は、各種の分離精製方法により、分離・精製することができる。例えば、硫酸アンモニウム沈殿、ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独でまたは適宜組合せて用いることができる。 The obtained recombinant protein can be separated and purified by various separation and purification methods. For example, ammonium sulfate precipitation, gel filtration, ion exchange chromatography, affinity chromatography and the like can be used alone or in appropriate combination.
配列番号２にKank3遺伝子のコードするタンパク質(Kank3タンパク質)のアミノ酸配列を例示するが、このアミノ酸配列を含むタンパク質がKank3遺伝子のコードするタンパク質の有する活性と同等の機能を有する限り、当該アミノ酸配列において複数個、好ましくは数個のアミノ酸に欠失、置換、付加等の変異が生じてもよい。欠失、置換または付加しているアミノ酸の数は、配列番号２で表されるアミノ酸配列の１〜360個、好ましくは1〜240個、さらに好ましくは１〜120個、さらに好ましくは１〜60個、さらに好ましくは１〜10個、さらに好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１個若しくは２個である。 The amino acid sequence of the protein encoded by the Kank3 gene (Kank3 protein) is exemplified in SEQ ID NO: 2, but as long as the protein containing this amino acid sequence has a function equivalent to the activity of the protein encoded by the Kank3 gene, Mutations such as deletion, substitution, addition and the like may occur in plural, preferably several amino acids. The number of amino acids deleted, substituted or added is 1 to 360, preferably 1 to 240, more preferably 1 to 120, and more preferably 1 to 60 of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2. The number is more preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, and still more preferably 1 or 2.
さらに、配列番号２に示すKank3タンパク質のアミノ酸配列と、相同性が70％以上、好ましくは80％以上、さらに好ましくは90％以上、特に好ましくは95％以上の相同性を有し、Kank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質も本発明のタンパク質に含まれる。 Furthermore, it has a homology of 70% or more, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, particularly preferably 95% or more with the amino acid sequence of the Kank3 protein shown in SEQ ID NO: 2, Proteins having functions equivalent to the functions they have are also included in the protein of the present invention.
本明細書に記載される相同性の数値は、特に明示した場合を除き、BLAST[J. Mol. Biol., 215, 403-410 (1990)]、FASTA[Methods. Enzymol., 183, 63-98 (1990)]等の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であってよい。好ましくはBLASTにおいてデフォルト（初期設定）のパラメータを用いて算出される数値あるいは、FASTAにおいてデフォルト（初期設定）のパラメータを用いて算出される数値である。 Unless otherwise specified, homology values described herein are BLAST [J. Mol. Biol., 215 , 403-410 (1990)], FASTA [Methods. Enzymol., 183 , 63- 98 (1990)] or the like. Preferably, it is a numerical value calculated using default (initial setting) parameters in BLAST or a numerical value calculated using default (initial setting) parameters in FASTA.
本発明のタンパク質には、上述のタンパク質の断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質も含まれる。 The protein of the present invention also includes a protein that is a fragment of the above-described protein and has a function equivalent to that of the Kank3 protein.
本発明のタンパク質は、図１bに示すようにN端側にコイルドコイルモチーフを有しC端側にアンキリンリピート配列を有するという構造的特徴を持っている。すなわち、本発明のタンパク質はN端側にコイルドコイルモチーフを有しC端側にアンキリンリピート配列を有するという構造的特徴を有し、かつ14-3-3タンパク質ファミリー中のgamma、epsilon、eta、thetaと結合し、その結合の強さはthetaに対して特に強いという機能を有するタンパク質である。 The protein of the present invention has a structural feature that it has a coiled coil motif on the N-terminal side and an ankyrin repeat sequence on the C-terminal side as shown in FIG. 1b. That is, the protein of the present invention has a structural feature that it has a coiled coil motif on the N-terminal side and an ankyrin repeat sequence on the C-terminal side, and gamma, epsilon, eta, theta in the 14-3-3 protein family. Is a protein having a function that the strength of the bond is particularly strong against theta.
４．Kank3タンパク質に対する抗体の取得
Kank3遺伝子のコードするタンパク質（ポリペプチド、本明細書においてタンパク質とポリペプチドは区別されない）に対する抗体は、通常の方法で動物をKank3遺伝子発現産物で免疫することにより得られる。抗体は、マウス抗体、ラット抗体、ヒト抗体、キメラ抗体、ヒト型化抗体のいずれも用い得るが、ヒトの治療用に用いる場合は、ヒト抗体、キメラ抗体またはヒト型化抗体が望ましい。抗体はポリクローナル抗体もモノクローナル抗体も含むが、モノクローナル抗体が望ましい。モノクローナル抗体は、ハイブリドーマによって産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものを含む。モノクローナル抗体は、公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインらの方法（Kohler. G. and Milstein, C.、Methods Enzymol.（1981）73, 3-46）等により作製することができる。抗体作製の際、免疫原としてはKank3タンパク質全体を用いてもよいし、Kank3タンパク質の断片を用いてもよい。免疫原として用いるKank3タンパク質またはその断片は、アミノ酸配列情報に基づいて化学合成により作製することもできるし、遺伝子工学的に作製することもできる。in vitroでヒトリンパ球を免疫原に感作し、感作リンパ球をヒトミエローマ細胞と融合させることにより、ヒト抗体を得ることもできる（特公平1-59878号公報参照）。さらに、ヒト抗体遺伝子座を有するトランスジェニック動物に免疫原を投与して抗体産生細胞を取得し、不死化させた細胞からヒト抗体を得ることもできる（国際公開番号WO 94/25585 号公報、WO 93/12227 号公報、WO 92/03918 号公報、WO 94/02602 号公報参照）。さらに、人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト型化（Humanized）抗体も使用することができ、これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。
4). Acquisition of antibodies against Kank3 protein
An antibody against a protein encoded by the Kank3 gene (polypeptide, which is not distinguished from a protein in the present specification) is obtained by immunizing an animal with a Kank3 gene expression product in the usual manner. As the antibody, any of a mouse antibody, a rat antibody, a human antibody, a chimeric antibody, and a humanized antibody can be used, but when used for human therapy, a human antibody, a chimeric antibody, or a humanized antibody is desirable. Antibodies include both polyclonal and monoclonal antibodies, with monoclonal antibodies being preferred. Monoclonal antibodies include those produced by hybridomas and those produced in hosts transformed with expression vectors containing antibody genes by genetic engineering techniques. The monoclonal antibody can be produced by a known method, for example, the method of Kohler and Milstein (Kohler. G. and Milstein, C., Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46). At the time of antibody production, the entire Kank3 protein may be used as the immunogen, or a fragment of the Kank3 protein may be used. The Kank3 protein or fragment thereof used as an immunogen can be prepared by chemical synthesis based on amino acid sequence information, or can be prepared by genetic engineering. Human antibodies can also be obtained by sensitizing human lymphocytes with an immunogen in vitro and fusing the sensitized lymphocytes with human myeloma cells (see Japanese Patent Publication No. 1-59878). Furthermore, an immunogen is administered to a transgenic animal having a human antibody locus to obtain antibody-producing cells, and human antibodies can also be obtained from immortalized cells (International Publication No. WO 94/25585, WO 93/12227, WO 92/03918, WO 94/02602). Furthermore, artificially modified recombinant antibodies such as chimeric antibodies and humanized antibodies can also be used, and these modified antibodies can be produced using known methods.
キメラ抗体は、非ヒト動物由来抗体V領域をコードするDNAとヒト抗体C領域をコードするDNAとを連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。ヒト型化抗体は、非ヒト動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（CDR; complementarity determining region）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植することにより得られる（欧州特許出願公開番号EP 125023号公報、国際公開番号WO 96/02576 号公報参照）。抗体は、完全抗体であっても、Fab、Fab’、F(ab’)2、Fv等の抗原結合部位を有する断片であってもよい。 A chimeric antibody can be obtained by ligating a DNA encoding a non-human animal-derived antibody V region and a DNA encoding a human antibody C region, incorporating it into an expression vector, introducing it into a host, and producing it. A humanized antibody can be obtained by transplanting a complementarity determining region (CDR) of a non-human animal such as a mouse antibody into a complementarity determining region of a human antibody (European Patent Application Publication No. EP 125023) , See International Publication No. WO 96/02576). The antibody may be a complete antibody or a fragment having an antigen binding site such as Fab, Fab ′, F (ab ′) 2 , and Fv.
５．癌の治療
本発明のKank3遺伝子配列を含むDNA若しくはRNAまたはその断片であってKank3タンパク質の有する機能と同等の機能を有するタンパク質をコードするDNAまたはRNAを、遺伝子治療の技術を用いて癌の治療に利用することができる。例えば、生体の癌細胞でKank3遺伝子のコードするタンパク質を発現させ、癌細胞の運動や移動を抑制することができる。遺伝子治療における目的の遺伝子の被験体への導入は公知の方法により行うことができる。遺伝子を被験体へ導入する方法として、ウイルスベクターを用いる方法および非ウイルスベクターを用いる方法があり、種々の方法が公知である(別冊実験医学、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、1996；別冊実験医学、遺伝子導入&発現解析実験法、羊土社、1997；日本遺伝子治療学会編、遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス、1999)。
5. Cancer treatment DNA or RNA containing the Kank3 gene sequence of the present invention or a fragment thereof encoding DNA or RNA encoding a protein having a function equivalent to that of the Kank3 protein is used to treat cancer using gene therapy techniques. Can be used. For example, the protein encoded by the Kank3 gene can be expressed in cancer cells in a living body to suppress cancer cell movement and migration. The gene of interest in gene therapy can be introduced into a subject by a known method. As a method for introducing a gene into a subject, there are a method using a viral vector and a method using a non-viral vector, and various methods are known (separate volume experimental medicine, basic technology of gene therapy, Yodosha, 1996; separate volume). Experimental Medicine, Gene Transfer & Expression Analysis Experimental Method, Yodosha, 1997; edited by Japanese Society of Gene Therapy, Gene Therapy Research Handbook, NTS, 1999).
遺伝子導入のためのウイルスベクターとしては、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルス等のウイルスベクターを用いた方法が代表的なものである。無毒化したレトロウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルス、センダイウイルス、SV40、免疫不全症ウイルス(HIV)等のDNAウイルスまたはRNAウイルスに目的とする遺伝子を導入し、細胞に組換えウイルスを感染させることによって、細胞内に遺伝子を導入することが可能である。本発明に係る遺伝子をウイルスを用いた遺伝子治療に使用するとき、アデノウイルスベクターが好ましく用いられる。アデノウイルスベクターの特徴として、（１）多くの種類の細胞に遺伝子導入ができる、（２）増殖停止期の細胞に対しても効率よく遺伝子導入ができる、（３）遠心により濃縮が可能であり、高タイター（10〜11PFU/ml以上）のウイルスが得られる、（４）in vivoの組織細胞への直接の遺伝子導入に適している、といった点が挙げられる。遺伝子治療用のアデノウイルスとしては、E1/E3領域を欠失させた第１世代のアデノウイルスベクター(Miyake,S.,et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA.,93,1320,1996)から、E1/E3領域に加え、E2もしくはE4領域を欠失させた第２世代のアデノウイルスベクター(Lieber,A.,et al.,J.Virol.,70,8944,1996;Mizuguchi,H.&Kay,M.A.,Hum.Gene Ther.,10,2013,1999)、アデノウイルスゲノムをほぼ完全に欠失させた(GUTLESS)第３世代のアデノウイルスベクター(Steinwaerder,D.S.,et al.,J.Virol.,73,9303,1999)が開発されているが、本発明に係る遺伝子を導入するには特に限定されず、いずれのアデノウイルスベクターでも使用可能である。さらに、AAVの染色体に組み込み能を付与したアデノ-AAVハイブリッドベクター(Recchia,A.,et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA.,96,2615,1999)や、トランスポゾンの遺伝子を用いることにより染色体に組み込む能力を有したアデノウイルスベクターなどを利用すれば、長期的な遺伝子発現にも応用が可能である。また、アデノウイルスファイバーのH1ループに組織特異的な移行性を示すペプチド配列を挿入することにより、アデノウイルスベクターに組織特異性を付与することも可能である(Mizuguchi,H.&Hayakawa,T.,Nippon Rinsho,7,1544,2000)。 Representative examples of viral vectors for gene transfer include methods using viral vectors such as adenoviruses, adeno-associated viruses, and retroviruses. Introduce the target gene into DNA virus or RNA virus such as detoxified retrovirus, herpes virus, vaccinia virus, pox virus, poliovirus, shinbis virus, sendai virus, SV40, immunodeficiency virus (HIV), It is possible to introduce a gene into a cell by infecting the cell with a recombinant virus. When the gene according to the present invention is used for gene therapy using a virus, an adenovirus vector is preferably used. The characteristics of adenovirus vectors are (1) gene transfer into many types of cells, (2) gene transfer into cells in growth arrested phase efficiently, and (3) concentration by centrifugation. High titer (10 to 11 PFU / ml or more) virus can be obtained, and (4) it is suitable for direct gene transfer into tissue cells in vivo. Adenoviruses for gene therapy include first generation adenovirus vectors lacking the E1 / E3 region (Miyake, S., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 93, 1320, 1996) from the second generation adenovirus vector in which E2 or E4 region is deleted in addition to E1 / E3 region (Lieber, A., et al., J. Virol., 70,8944, 1996; Mizuguchi, H. & Kay, MA, Hum. Gene Ther., 10, 2013, 1999), a third generation adenoviral vector (Steinwaerder, DS, et al., J) with almost complete deletion of the adenoviral genome (GUTLESS). Virol., 73, 9303, 1999) has been developed. However, the introduction of the gene according to the present invention is not particularly limited, and any adenoviral vector can be used. In addition, an adeno-AAV hybrid vector (Recchia, A., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 96, 2615, 1999) or a transposon gene that has been incorporated into the AAV chromosome is used. Therefore, if an adenovirus vector having the ability to be incorporated into a chromosome is used, it can be applied to long-term gene expression. It is also possible to confer tissue specificity to an adenovirus vector by inserting a peptide sequence showing tissue-specific migration into the H1 loop of adenovirus fiber (Mizuguchi, H. & Hayakawa, T., Nippon Rinsho, 7, 1544, 2000).
また、上記ウイルスを用いることなく、プラスミドベクター等の遺伝子発現ベクターが組み込まれた組換え発現ベクターを用いて、目的遺伝子を細胞や組織に導入することができる。例えば、リポフェクション法、リン酸-カルシウム共沈法、DEAE-デキストラン法、微小ガラス管を用いたDNAの直接注入法などにより細胞内へ遺伝子を導入することができる。また、内包型リポソーム(internal liposome)による遺伝子導入法、静電気型リポソーム(electorostatic type liposome)による遺伝子導入法、HVJ-リポソーム法、改良型HVJ-リポソーム法(HVJ-AVEリポソーム法)、HVJ-E(エンベロープ)ベクターを用いた方法、レセプター介在性遺伝子導入法、パーティクル銃で担体(金属粒子)とともにDNA分子を細胞に移入する方法、naked-DNAの直接導入法、種々のポリマーによる導入法等によっても、組換え発現ベクターを細胞内に取り込ませることが可能である。この場合に用いる発現ベクターとしては、生体内で目的遺伝子を発現させることのできるベクターであれば如何なる発現ベクターも用いることができるが、例えばpCAGGS（Gene 108, 193-200(1991)）や、pBK-CMV、pcDNA3、1、pZeoSV(インビトロゲン社、ストラタジーン社)、pVAX1などの発現ベクターが挙げられる。 Moreover, a target gene can be introduced into cells or tissues using a recombinant expression vector in which a gene expression vector such as a plasmid vector is incorporated without using the above virus. For example, the gene can be introduced into cells by lipofection method, phosphate-calcium coprecipitation method, DEAE-dextran method, direct DNA injection method using a micro glass tube. In addition, gene transfer method using internal liposome, gene transfer method using electrostatic type liposome, HVJ-liposome method, improved HVJ-liposome method (HVJ-AVE liposome method), HVJ-E ( Envelope) vector method, receptor-mediated gene introduction method, method of transferring DNA molecule together with carrier (metal particle) with particle gun, naked-DNA direct introduction method, introduction method with various polymers, etc. It is possible to incorporate a recombinant expression vector into a cell. As the expression vector used in this case, any expression vector can be used as long as it can express the target gene in vivo. For example, pCAGGS (Gene 108, 193-200 (1991)), pBK -Expression vectors such as CMV, pcDNA3, 1, pZeoSV (Invitrogen, Stratagene), and pVAX1.
本発明の遺伝子を含むベクターは、適宜遺伝子を転写するためのプロモーターやエンハンサー、ポリAシグナル、遺伝子が導入された細胞の標識および／または選別のためのマーカー遺伝子等を含んでいてもよい。この際のプロモーターとしては、公知のプロモーターを用いることができる。本発明の遺伝子を含む医薬組成物を被験体へ導入するには、遺伝子治療剤を直接体内に導入するin vivo法、及び、ヒトからある種の細胞を取り出して体外で遺伝子治療剤を該細胞に導入し、その細胞を体内に戻すex vivo法等を用いればよい(日経サイエンス、1994年4月号、20-45頁;月刊薬事、36(1), 23-48 (1994); 実験医学増刊、12(15)、(1994); 日本遺伝子治療学会編、遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス、1999)。 The vector containing the gene of the present invention may contain a promoter or enhancer for appropriately transcribing the gene, a poly A signal, a marker gene for labeling and / or selecting a cell into which the gene has been introduced, and the like. As the promoter in this case, a known promoter can be used. In order to introduce a pharmaceutical composition containing the gene of the present invention into a subject, an in vivo method in which a gene therapeutic agent is directly introduced into the body, and a certain type of cell is removed from a human body and the gene therapeutic agent is introduced outside the body. Ex vivo method to introduce the cells back into the body, etc. (Nikkei Science, April 1994, 20-45; Monthly Pharmaceutical Affairs, 36 (1), 23-48 (1994); Experimental Medicine Special Issue, 12 (15), (1994); edited by Japanese Society of Gene Therapy, Gene Therapy Development Research Handbook, NTS, 1999).
本発明は、癌治療に用い得る上記の治療用ベクターも包含する。
また、本発明のKank3タンパク質に対する抗体も、免疫化学的な治療に使用することが可能である。
The present invention also includes the above therapeutic vectors that can be used for cancer treatment.
The antibody against the Kank3 protein of the present invention can also be used for immunochemical treatment.
Kank3遺伝子のアンチセンスDNA、アンチセンスRNAも癌治療に利用し得る。
さらに、本発明の遺伝子に基づいてRNAi（RNA干渉）により癌治療を行うこともできる。RNAiは、二本鎖RNA(dsRNA)を細胞内に導入した際に、そのRNA配列に対応する細胞内のmRNAが特異的に分解され、タンパク質として発現されなくなる現象をいう。RNAiの場合、通常、二本鎖RNAが用いられるが、特に限定されず、例えば、自己相補的な一本鎖RNA中で形成される二本鎖を用いることも可能である。二本鎖を形成する領域は、全ての領域において二本鎖を形成していてもよいし、一部の領域（例えば両末端又は片方の末端など）が一本鎖等になっていてもよい。RNAiに用いられるオリゴRNAは、その長さは限定されない。本発明のオリゴRNAの長さとしては、例えば、5〜1000塩基（二本鎖の場合には、5〜1000bp）であり、好ましくは10〜100塩基（二本鎖の場合には、10〜100bp）であり、さらに好ましくは15〜25塩基（二本鎖の場合には、15〜25bp）であり、特に好ましくは19〜23塩基（二本鎖の場合には、19〜23bp）である。
Antisense DNA and antisense RNA of Kank3 gene can also be used for cancer treatment.
Furthermore, cancer treatment can also be performed by RNAi (RNA interference) based on the gene of the present invention. RNAi refers to a phenomenon in which when a double-stranded RNA (dsRNA) is introduced into a cell, the mRNA in the cell corresponding to the RNA sequence is specifically degraded and is not expressed as a protein. In the case of RNAi, double-stranded RNA is usually used, but is not particularly limited. For example, double-stranded RNA formed in self-complementary single-stranded RNA can also be used. The region that forms a double strand may form a double strand in all regions, or a part of the region (for example, both ends or one end) may be a single strand or the like. . The length of the oligo RNA used for RNAi is not limited. The length of the oligo RNA of the present invention is, for example, 5 to 1000 bases (5 to 1000 bp in the case of a double strand), preferably 10 to 100 bases (10 to 10 in the case of a double strand). 100 bp), more preferably 15 to 25 bases (in the case of double strands, 15 to 25 bp), particularly preferably 19 to 23 bases (in the case of double strands, 19 to 23 bp) .
Kank3遺伝子のコードするタンパク質またはその一部を癌患者に投与して、癌細胞の増殖を抑えることにより癌を治療することもできる。さらに、Kank3タンパク質に対する抗体を癌治療に利用することもできる。 Cancer can also be treated by administering a protein encoded by the Kank3 gene or a part thereof to a cancer patient to suppress the growth of cancer cells. Furthermore, antibodies against the Kank3 protein can also be used for cancer treatment.
Kank3遺伝子配列を含むDNA若しくはRNAまたはKank3遺伝子のコードするタンパク質を含む治療用製剤は、医薬上許容できる担体を含んでいてもよい。担体としては、懸濁剤及びシロップ剤のような経口液体調製物は、水、シュクロース、ソルビトール、フラクトース等の糖類、ポリエチレングリコール、プロピレングリコール等のグリコール類、ごま油、オリーブ油、大豆油等の油類、p-ヒドロキシ安息香酸エステル類等の防腐剤等を使用できる。粉剤、丸剤、カプセル剤及び錠剤は、ラクトース、グルコース、シュクロース、マンニトール等の賦形剤、デンプン、アルギン酸ソーダ等の崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、タルク等の滑沢剤、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチン等の結合剤、脂肪酸エステル等の表面活性剤、グリセリン等の可塑剤等を用いることができる。また、注射剤の溶液は、蒸留水、塩溶液、グルコース溶液等からなる担体を用いて調製することができる。この際、定法に従い適当な溶解補助剤および懸濁剤を用いて、溶液、懸濁液または分散剤として調製できる。 The therapeutic preparation containing DNA or RNA containing Kank3 gene sequence or protein encoded by Kank3 gene may contain a pharmaceutically acceptable carrier. As carriers, oral liquid preparations such as suspensions and syrups include sugars such as water, sucrose, sorbitol and fructose, glycols such as polyethylene glycol and propylene glycol, oils such as sesame oil, olive oil and soybean oil. And preservatives such as p-hydroxybenzoates can be used. Powders, pills, capsules and tablets are excipients such as lactose, glucose, sucrose, mannitol, disintegrants such as starch and sodium alginate, lubricants such as magnesium stearate and talc, polyvinyl alcohol, hydroxypropyl Binders such as cellulose and gelatin, surface active agents such as fatty acid esters, and plasticizers such as glycerin can be used. An injection solution can be prepared using a carrier comprising distilled water, a salt solution, a glucose solution, or the like. In this case, it can be prepared as a solution, suspension or dispersion using a suitable solubilizing agent and suspending agent according to a conventional method.
これらの治療薬を被検体に投与することを含む、癌治療法も本発明に包含される。また、本発明のDNA、RNAもしくはその修飾物、本発明のタンパク質または本発明の抗体の癌治療薬の製造への使用も本発明に包含される。 Cancer therapies comprising administering these therapeutic agents to a subject are also encompassed by the present invention. Further, the use of the DNA of the present invention, RNA or a modified product thereof, the protein of the present invention or the antibody of the present invention for the production of a cancer therapeutic agent is also encompassed by the present invention.
Kank3遺伝子およびタンパク質は、腎臓などKank3遺伝子が発現している組織由来の癌の治療に用いることができる。 The Kank3 gene and protein can be used for the treatment of cancer derived from tissues in which the Kank3 gene is expressed, such as the kidney.
６．癌の検出
さらに、Kank3遺伝子配列を含むDNA、RNAヌクレオチドを利用したノーザンハイブリダイゼーション法、PCR法、定量的PCR法、RT-PCR法、in situ ハイブリダイゼーション法等により、Kank3遺伝子の各組織における存在、発現、変異を定性的にまたは定量的に検出することにより癌を検出することができる。この場合、Kank3遺伝子配列の一部をPCRのプライマーとして用いることもできるし、検出用プローブとして用いることもできる。これらの遺伝子配列はニックトランスレーション等により適宜標識して用いる。例えば、RT-PCR法によりKank3遺伝子の発現を調べ、癌の検出または癌の進行度を検出することができ、Kank3遺伝子DNAの存在をPCRや定量的PCRにより調べることができる。また、Kank3遺伝子配列の一部または総てを含むDNAまたはRNAプローブを用いたin situ ハイブリダイゼーション法により組織切片、細胞、染色体等を用いてKank3遺伝子配列を含むDNAまたはRNAを検出し、癌を検出することができる。Kank3遺伝子を含むベクターを癌の検出に用いることもできる。本発明は、癌検出に用い得る癌検出用ベクターも包含する。
6). Cancer detection In addition, the presence of the Kank3 gene in each tissue by Northern hybridization, PCR, quantitative PCR, RT-PCR, in situ hybridization using DNA and RNA nucleotides containing the Kank3 gene sequence Cancer can be detected by detecting expression or mutation qualitatively or quantitatively. In this case, a part of the Kank3 gene sequence can be used as a primer for PCR or a probe for detection. These gene sequences are appropriately labeled and used by nick translation or the like. For example, the expression of the Kank3 gene can be examined by RT-PCR to detect cancer or the degree of cancer progression, and the presence of Kank3 gene DNA can be examined by PCR or quantitative PCR. In addition, DNA or RNA containing the Kank3 gene sequence is detected using tissue sections, cells, chromosomes, etc. by in situ hybridization using DNA or RNA probes containing part or all of the Kank3 gene sequence, and cancer is detected. Can be detected. A vector containing the Kank3 gene can also be used for detection of cancer. The present invention also includes a cancer detection vector that can be used for cancer detection.
Kank3遺伝子のコードするポリペプチドを認識する抗体を癌の検出に利用することもできる。例えば、Kank3遺伝子のコードするタンパク質を認識する抗体を用いてKank3遺伝子の発現産物をEIA、RIA等のイムノアッセイ技術により測定し癌を検出することができる。この際、該変異遺伝子によりコードされるアミノ酸配列が変化したタンパク質を認識するが、アミノ酸配列の変化していないタンパク質を認識しない抗体を用いて変異遺伝子の産生するタンパク質を測定して癌の検出を行うこともできる。 An antibody that recognizes a polypeptide encoded by the Kank3 gene can also be used to detect cancer. For example, using an antibody that recognizes a protein encoded by the Kank3 gene, the expression product of the Kank3 gene can be measured by an immunoassay technique such as EIA or RIA to detect cancer. At this time, a protein with a changed amino acid sequence encoded by the mutated gene is recognized, but the protein produced by the mutated gene is measured using an antibody that does not recognize the protein with the unchanged amino acid sequence to detect cancer. It can also be done.
これらの検出はKank3遺伝子のコードするタンパク質、Kank3遺伝子を含むDNA等を癌か否かを診断しようとする対象から採取した体液、組織片、細胞、染色体等の試料と接触することにより行うことができる。また、対象中にこれらのDNA、タンパク質等を投与して検出することも可能である。 These detections can be carried out by contacting the protein encoded by the Kank3 gene, DNA containing the Kank3 gene, etc. with a sample of body fluid, tissue fragment, cell, chromosome, etc. collected from the subject to be diagnosed as cancer. it can. It is also possible to detect these DNAs, proteins, etc. administered to the subject.
Kank3遺伝子配列またはその一部断片を含むヌクレオチド、Kank3タンパク質またはその断片、Kank3遺伝子によりコードされるタンパク質に対する抗体等を含むキットを作製することもできる。この際、定量標準物質をキット内に含むことが望ましい。 A kit containing a nucleotide containing a Kank3 gene sequence or a partial fragment thereof, a Kank3 protein or a fragment thereof, an antibody against a protein encoded by the Kank3 gene, and the like can also be prepared. At this time, it is desirable to include a quantitative standard substance in the kit.
７．Kank3遺伝子トランスジェニック動物およびKank3遺伝子ノックアウトマウスの作成
本発明のKank3遺伝子を動物に組込むことにより、Kank3遺伝子発現モデル動物として利用できるトランスジェニック動物を作成することができる。導入する遺伝子は、野生型Kank3遺伝子でもよいし、変異Kank3遺伝子でもよい。正常遺伝子を導入することにより、Kank3タンパク質の発現量をコントロールすることができる。また、Cre-loxシステムを用いて組織特異的な遺伝子発現をさせることも可能である。変異遺伝子はドミナントネガティブの形で導入することにより、Kank3遺伝子の機能を阻害することができる。この際、Kunkel法、Gapped duplex法等の公知の手法又はこれに準ずる方法により、Kank3タンパク質の機能を阻害するような変異を導入すればよい。具体的には、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばMutant-K (TAKARA社製)やMutant-G (TAKARA社製)）などを用いて、あるいは、TAKARA社のLA PCR in vitro Mutagenesis シリーズキットを用いて変異導入が行われる。
7). Production of Kank3 gene transgenic animal and Kank3 gene knockout mouse By incorporating the Kank3 gene of the present invention into an animal, a transgenic animal that can be used as a Kank3 gene expression model animal can be produced. The gene to be introduced may be a wild-type Kank3 gene or a mutant Kank3 gene. By introducing a normal gene, the expression level of Kank3 protein can be controlled. It is also possible to cause tissue-specific gene expression using the Cre-lox system. By introducing the mutant gene in the form of a dominant negative, the function of the Kank3 gene can be inhibited. At this time, a mutation that inhibits the function of the Kank3 protein may be introduced by a known method such as the Kunkel method, the Gapped duplex method, or a similar method. Specifically, for example, using a mutagenesis kit (for example, Mutant-K (manufactured by TAKARA) or Mutant-G (manufactured by TAKARA)) using a site-directed mutagenesis method, or by TAKARA Mutations are introduced using the LA PCR in vitro Mutagenesis series kit.
トランスジェニック動物は、Kank3遺伝子を動物の全能性細胞にマイクロインジェクション法もしくはレトロウイルスベクターを用いて導入し、この細胞を個体へと発生させ、体細胞および生殖細胞染色体中に導入遺伝子が組み込まれた個体を選別することによって作成することができ、例えば、Pro.Natl.Acad.Sci.USA 77:7380-7384, 1980の方法等に従って作成可能である。トランスジェニック動物作成に用いられる動物種は限られないが、マウス、ラット、ハムスターなどのげっ歯類が好ましく、特に近交系が多数作出されており、しかも受精卵の培養、体外受精等の技術が確立しているマウスが好ましい。Kank3遺伝子を導入する全能性細胞として、受精卵、初期胚、多分化能を有するES細胞のような培養細胞を用いることが可能であるが、ES細胞が好ましい。培養細胞への遺伝子導入法としては、公知の静電パルス法、リポソーム法、リン酸カルシウム法、レトロウイルスベクターを用いた方法等が挙げられる。ES細胞を胚盤胞の中に注入すると、宿主胚の内部細胞塊と混ざりあってマウス胚と胎仔の形成に寄与してキメラマウスができる。また、胎仔本体がES細胞だけからなるマウスができることもある。キメラマウスの中でES細胞が将来卵や精子を形成する始原生殖細胞の形成に寄与した場合、生殖系列キメラができ、このキメラマウスを交配することにより、ES細胞由来のマウス個体を得ることができる。 Transgenic animals introduce the Kank3 gene into the totipotent cells of the animal using the microinjection method or a retroviral vector, and the cells are developed into individuals, and the transgene is integrated into the somatic and germ cell chromosomes. For example, it can be prepared according to the method of Pro.Natl.Acad.Sci.USA 77: 7380-7384, 1980. The species of animals used for the production of transgenic animals is not limited, but rodents such as mice, rats and hamsters are preferred, and many inbred strains have been created, and techniques such as culturing fertilized eggs and in vitro fertilization Mice with established are preferred. As totipotent cells into which the Kank3 gene is introduced, cultured cells such as fertilized eggs, early embryos, and pluripotent ES cells can be used, but ES cells are preferred. Examples of gene introduction methods into cultured cells include known electrostatic pulse methods, liposome methods, calcium phosphate methods, and methods using retroviral vectors. When ES cells are injected into blastocysts, they mix with the inner cell mass of the host embryo and contribute to the formation of mouse embryos and fetuses, creating chimeric mice. In some cases, the fetus itself has only ES cells. If ES cells contributed to the formation of primordial germ cells that will form eggs and sperm in the future in a chimeric mouse, germline chimeras can be created, and by mating this chimeric mouse, an ES cell-derived mouse individual can be obtained. it can.
トランスジェニック動物は、遺伝子を導入した細胞を初期胚と集合、あるいは胚盤胞腔に注入してキメラ胚を得、得られたキメラ胚を偽妊娠させた雌の子宮に移植し、個体まで発生させることによって作成することが可能である。得られた動物の中からKank3遺伝子を有しているものを選択することにより、本発明のKank3遺伝子導入トランスジェニック動物を得ることができる。トランスジェニック動物を癌化のメカニズム等の研究に用いることができる。また、モデル動物として癌治療薬、癌治療法、癌診断薬、癌診断法のスクリーニングに用いることもできる。 Transgenic animals can be obtained by injecting the gene-introduced cells into the early embryo or injecting into the blastocyst space to obtain a chimeric embryo, and then transplanting the resulting chimeric embryo into a pseudo-pregnant female uterus. It is possible to make it. By selecting an animal having the Kank3 gene from the obtained animals, the Kank3 gene-introduced transgenic animal of the present invention can be obtained. Transgenic animals can be used for studies such as canceration mechanisms. It can also be used as a model animal for screening for cancer therapeutics, cancer therapeutics, cancer diagnostics, and cancer diagnostics.
さらに、Kank3遺伝子を破壊したノックアウトマウスを作成することができる。ノックアウトマウスは、例えば村松正實・山元雅編、実験医学別冊 新遺伝子工学ハンドブック 改定第３版、羊土社、1999年9月10日発行、p.239-245に従って作成することができる。例えば、以下の方法でKank3遺伝子ノックアウトマウスを作成することができる。Kank3遺伝子の一部又は全部を、組換えDNA技術により、例えばネオマイシン耐性遺伝子等マーカー遺伝子で置換し、３′末端側にジフテリアトキシンＡフラグメント（DT-A）遺伝子等を導入してターゲティングベクターを作製し、この作製されたターゲティングベクターを線状化し、エレクトロポレーション法によって受精卵やES細胞に導入し、培養する。培養後、G418等の抗生物質を用いて相同的組換えを起こした細胞を選択する。選択された、組換えES細胞をマイクロインジェクション法等によりマウスの胚盤胞内に導入し、仮親の子宮に戻すことによってキメラマウスを得ることができる。このキメラマウスを交配することにより、Kank3遺伝子ノックアウトマウスを得ることができる。得られたマウスにおいてKank3遺伝子がノックアウトされているかどうかは、例えば、得られたマウスの血清細胞からRNAを単離してノーザンブロット法等により調べるか、またはマウスのKank3遺伝子の発現をウエスタンブロット法等により調べることにより決定できる。 Furthermore, a knockout mouse in which the Kank3 gene is disrupted can be created. The knockout mouse can be prepared, for example, according to Masaaki Muramatsu and Masaru Yamamoto, edited by Experimental Medicine, New Genetic Engineering Handbook Revised 3rd Edition, Yodosha, published on September 10, 1999, p.239-245. For example, a Kank3 gene knockout mouse can be prepared by the following method. Replacing part or all of the Kank3 gene with a marker gene such as a neomycin resistance gene using recombinant DNA technology, and introducing a diphtheria toxin A fragment (DT-A) gene etc. on the 3 'end side to produce a targeting vector Then, the prepared targeting vector is linearized, introduced into fertilized eggs or ES cells by electroporation, and cultured. After culture, cells that have undergone homologous recombination using an antibiotic such as G418 are selected. A chimeric mouse can be obtained by introducing the selected recombinant ES cell into a blastocyst of a mouse by a microinjection method or the like and returning it to the uterus of a foster parent. By mating this chimeric mouse, a Kank3 gene knockout mouse can be obtained. Whether or not the Kank3 gene is knocked out in the obtained mouse can be determined by, for example, isolating RNA from the obtained mouse serum cells and examining it by Northern blotting, etc. Can be determined by examining.
Kank3遺伝子をノックアウトすることにより癌が高頻度に発生するマウスが得られ、癌化のメカニズムの研究、癌治療薬、癌治療法、癌診断薬、癌診断法のスクリーニングに用いることもできる。Kank3遺伝子ノックアウトマウスに候補癌治療薬を投与し、既に発症している癌が退行するか否か、あるいは癌の発症が抑えられるか否かを調べることにより、抗癌剤のスクリーニングを行うことができる。 By knocking out the Kank3 gene, a mouse in which cancer occurs frequently can be obtained, and it can be used for research of canceration mechanism, cancer therapeutic agent, cancer therapeutic method, cancer diagnostic agent, and cancer diagnostic method screening. A candidate cancer therapeutic agent is administered to a Kank3 gene knockout mouse, and an anticancer drug can be screened by examining whether the cancer that has already developed regresses or whether the onset of cancer can be suppressed.
以下、実施例により、本発明を具体的に説明する。但し、本発明の技術的範囲がこれらの実施例により限定されるものではない。
本実施例において、Kank3のcDNAは本発明者の研究室でヒトの脳のmRNAからRT-PCR法により取得した。
Hereinafter, the present invention will be described specifically by way of examples. However, the technical scope of the present invention is not limited by these examples.
In this example, Kank3 cDNA was obtained by RT-PCR from human brain mRNA in the inventor's laboratory.
実験方法
遺伝子配列検索、ドメイン分析および系統樹分析
ゲノムプロジェクトが既に完成しているヒト、マウス、ラット、ショウジョウバエおよび線虫のデータベースを用い、ヒトKankタンパク質の配列を鋳型としてBLASTP検索(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)を行った。検索で得られた配列をMEGA2ソフトウェア(Kumar et al. 2001, Bioinformatics, 17, 1244-1245)に適用し、系統樹分析を行った。さらにこれらの配列を用いて、SMART（http://smart.embl-heidelberg.de/) (Letunic et al., 2004, Nucleic Acids Res., 32 (Database issue), D142-144)およびCOILS (http://www.ch.embnet.org/software/COILS form.html)を用いてアンキリン様繰り返し配列(ankyrin-repeat)およびcoiled-coilモチーフの検定を行った。
Experimental methods Gene sequence search, domain analysis, and phylogenetic tree analysis BLASTP search using human Kank protein sequences as templates using human, mouse, rat, Drosophila, and nematode databases for which genome projects have already been completed (http: // www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/). The sequence obtained by the search was applied to MEGA2 software (Kumar et al. 2001, Bioinformatics, 17, 1244-1245), and phylogenetic tree analysis was performed. Furthermore, using these sequences, SMART (http://smart.embl-heidelberg.de/) (Letunic et al., 2004, Nucleic Acids Res., 32 (Database issue), D142-144) and COILS (http : //www.ch.embnet.org/software/COILS form.html) was used to test for ankyrin-repeat and coiled-coil motifs.
細胞培養
HEK293T、VMRC-RCW、RRC10RGB、TUHR4TKB、TUHR10TKBおよびマウスNIH3T3細胞はダルベッコ改変イーグル培地(DMEM) (Gibco社)で培養した。OS-RC-2、TUHR14TKBおよびMCF-7細胞はRPMI-1640培地(Gibco社)で培養した。FU-RPNT-1および FU-RPNT-2細胞はDMEM/F-12 (1:1)培地で培養した。全ての培地には10%のウシ胎仔血清を添加して用い、37℃で湿度平衡した5%CO2含有インキュベーター内で培養を行った。
Cell culture
HEK293T, VMRC-RCW, RRC10RGB, TUHR4TKB, TUHR10TKB and mouse NIH3T3 cells were cultured in Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) (Gibco). OS-RC-2, TUHR14TKB and MCF-7 cells were cultured in RPMI-1640 medium (Gibco). FU-RPNT-1 and FU-RPNT-2 cells were cultured in DMEM / F-12 (1: 1) medium. All media were added with 10% fetal calf serum and cultured in an incubator containing 5% CO 2 equilibrated with humidity at 37 ° C.
RT-PCR
ヒト正常組織由来全RNAはInvitrogen社より購入した。ヒト正常腎臓由来全RNA、ヒト胎児腎臓由来全RNAおよびヒト腎癌由来全RNAは和光純薬工業株式会社より購入した。各細胞系の全RNAはISOGEN（和光純薬工業株式会社）を用いて精製した。cDNAは６量体ランダムプライマーおよびSuperScript II RNase H- Reverse Transcriptase kit (Invitrogen社)を用いて合成した。PCR増幅は図２aに示したプライマーの組み合わせにより、Ex Taq DNAポリメラーゼを用いて行った。PCRは96℃5分間の変性後、96℃30秒間、60℃30秒間、72℃40秒間を35サイクルで行った。コントロールとしてハウスキーピング遺伝子であるHPRTを用い、PCRは96℃5分間の変性後、96℃30秒間、60℃30秒間、72℃30秒間を30サイクルで行った。PCR産物は臭化エチジウムを含んだ2%アガロースゲル電気泳動によって分離した。
RT-PCR
Total RNA derived from normal human tissue was purchased from Invitrogen. Human normal kidney-derived total RNA, human fetal kidney-derived total RNA and human kidney cancer-derived total RNA were purchased from Wako Pure Chemical Industries, Ltd. Total RNA of each cell line was purified using ISOGEN (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). cDNA was synthesized using a hexamer random primer and SuperScript II RNase H - Reverse Transcriptase kit (Invitrogen). PCR amplification was performed using Ex Taq DNA polymerase with the primer combinations shown in FIG. 2a. PCR was performed at 96 ° C. for 5 minutes, followed by 35 cycles of 96 ° C. for 30 seconds, 60 ° C. for 30 seconds, and 72 ° C. for 40 seconds. As a control, HPRT, which is a housekeeping gene, was used. PCR was performed at 96 ° C. for 5 minutes, followed by 30 cycles of 96 ° C. for 30 seconds, 60 ° C. for 30 seconds, and 72 ° C. for 30 seconds. PCR products were separated by 2% agarose gel electrophoresis containing ethidium bromide.
ポリクローナル抗体
抗Kank3抗体の抗原を作成するために、Kank3の275から376番目のアミノ酸に相当するcDNA部位をPCRによって増幅し、pGEXベクター（Amersham Bioscience社）に挿入することでグルタチオンSトランスフェラーゼ（GST）融合タンパク質発現プラスミドを構築した。この発現プラスミドを大腸菌に導入し、イソプロピルD-チオガラクトピラノシドによってGST融合抗原タンパク質の発現を誘導した。このGST融合抗原タンパク質をグルタチオンセファロース４B（Amersham Bioscience社）で精製し、ウサギを免疫した。免疫したウサギより抗Kank3抗体を含んだ血清を回収し、硫酸アンモニウムによって塩析した。沈殿をPBSに溶かし、GSTタンパク質をActivated CHセファロース4BにカップリングさせたカラムによってGSTに対する抗体を除去した後、GST融合Kank3抗原をカップリングさせたカラムで抗Kank3抗体を精製した。Activated CHセファロース4BはAmersham Bioscience社より購入し、GSTおよびGST融合Kank3抗原のカップリングは取扱説明書に従って作製した。
Polyclonal antibody To create the antigen of anti-Kank3 antibody, a cDNA site corresponding to amino acids 275 to 376 of Kank3 is amplified by PCR and inserted into a pGEX vector (Amersham Bioscience). Glutathione S transferase (GST) A fusion protein expression plasmid was constructed. This expression plasmid was introduced into Escherichia coli, and expression of GST fusion antigen protein was induced by isopropyl D-thiogalactopyranoside. This GST fusion antigen protein was purified with glutathione Sepharose 4B (Amersham Bioscience), and rabbits were immunized. Serum containing anti-Kank3 antibody was collected from the immunized rabbit and salted out with ammonium sulfate. The precipitate was dissolved in PBS, the antibody against GST was removed by a column in which GST protein was coupled to Activated CH Sepharose 4B, and then anti-Kank3 antibody was purified on a column to which GST-fused Kank3 antigen was coupled. Activated CH Sepharose 4B was purchased from Amersham Bioscience, and coupling of GST and GST-fused Kank3 antigen was made according to the instruction manual.
哺乳動物細胞発現プラスミドの構築
pCMV-Tag 2B/Kank3プラスミドは、正常ヒト腎臓組織の全RNA(Invitrogen社)から逆転写反応で得られたcDNA を鋳型として、5’末端に制限酵素EcoRI-NotIあるいはNotI-SalIの認識配列を含むアダプター配列を付加した形のプライマーセットを用いて、それぞれPCR 反応で増幅した２つの断片をpCMV-Tag 2B (Stratagene社)ベクターのEcoRI/SalI部位へ挿入した。プライマーセットはEcoRI-NotI断片5’-ATGGCCAAGTTTGCCCTGAATCAGAACCTG-3’ (forward)（配列番号３）および5’-CAACCGGCCCCGCAGAAGCTC-3’ (reverse)（配列番号４）、NotI-SalI断片5’-CCTGCGGCCGCCGAGCGCGAGC-3’ (forward)（配列番号５）および5’-CTGAACCTGGGGGTTCTCTCC-3’ (reverse)（配列番号６）を用いた。また、Kank3点突然変異体発現プラスミドはpCMV-Tag 2B/Kank3を鋳型としてセリンをアラニンに置換したプライマーセットを用いて、PCRで増幅することにより作製した。
Construction of mammalian cell expression plasmid
The pCMV-Tag 2B / Kank3 plasmid contains a recognition sequence for restriction enzymes EcoRI-NotI or NotI-SalI at the 5 'end using cDNA obtained by reverse transcription from normal human kidney tissue total RNA (Invitrogen) as a template. Using the primer set to which the adapter sequence was added, two fragments each amplified by PCR reaction were inserted into the EcoRI / SalI site of the pCMV-Tag 2B (Stratagene) vector. Primer sets are EcoRI-NotI fragment 5'-ATGGCCAAGTTTGCCCTGAATCAGAACCTG-3 '(forward) (SEQ ID NO: 3) and 5'-CAACCGGCCCCGCAGAAGCTC-3' (reverse) (SEQ ID NO: 4), NotI-SalI fragment 5'-CCTGCGGCCGCCGAGCGCGAGC-3 ' (forward) (SEQ ID NO: 5) and 5′-CTGAACCTGGGGGTTCTCTCC-3 ′ (reverse) (SEQ ID NO: 6) were used. The Kank3 point mutant expression plasmid was prepared by PCR amplification using a primer set in which serine was substituted with alanine using pCMV-Tag 2B / Kank3 as a template.
pcDNA3.1ベクター（Invitrogen社）のNheI/EcoRI部位にHA タグの配列を挿入することにより、HAタグpcDNA3.1ベクターを構築した。正常ヒト腎臓組織のtotal RNA(Invitrogen社)から逆転写酵素反応で得られた cDNA を鋳型として、14-3-3 ファミリー遺伝子をPCR反応でそれぞれ増幅した。増幅した遺伝子断片をHAタグpcDNA3.1ベクターに挿入した。PCR反応で増幅したGST遺伝子をpCMV-Tag 2BベクターのEcoRI-XhoI部位に挿入して、FLAG-GST発現ベクターを構築した。 The HA tag pcDNA3.1 vector was constructed by inserting the HA tag sequence into the NheI / EcoRI site of the pcDNA3.1 vector (Invitrogen). Using the cDNA obtained by reverse transcriptase reaction from total RNA of normal human kidney tissue (Invitrogen) as a template, 14-3-3 family genes were amplified by PCR reaction. The amplified gene fragment was inserted into the HA tag pcDNA3.1 vector. The GST gene amplified by the PCR reaction was inserted into the EcoRI-XhoI site of the pCMV-Tag 2B vector to construct a FLAG-GST expression vector.
トランスフェクション、免疫沈降およびウエスタンブロッテイング
293T細胞への哺乳動物細胞発現プラスミドの導入はTransfectin Lipid Reagent (Bio-Rad社)を用いて取扱説明書に従って行った。マウスNIH3T3細胞への哺乳動物細胞発現プラスミドの導入はPolyfect Reagent (QIAGEN社)を用いて取扱説明書に従って行った。pCMV-Tag 2B/Kank3発現プラスミドのMCF7細胞への導入はGENE PULSER II (Bio-Rad社)を用いた電気穿孔法によって行った。
Transfection, immunoprecipitation and Western blotting
The mammalian cell expression plasmid was introduced into 293T cells using Transfectin Lipid Reagent (Bio-Rad) according to the instruction manual. Introduction of mammalian cell expression plasmids into mouse NIH3T3 cells was performed using Polyfect Reagent (QIAGEN) according to the instruction manual. The pCMV-Tag 2B / Kank3 expression plasmid was introduced into MCF7 cells by electroporation using GENE PULSER II (Bio-Rad).
細胞抽出液は以下のように行った。細胞を回収しリン酸緩衝塩 (PBS)で1回洗浄後、溶解緩衝液（50mM トリス塩酸(pH8.0)、140mM塩化ナトリウム、1% Triton X-100、10%グルセロール、1mMEGTA、1.5mM塩化マグネシウム、1mMバナジウム酸ナトリウム、50mMフッ化ナトリウム、Protease Inhibitor cocktail (Sigma社)）を用いて4℃1時間、回転させながら溶解した。更にその溶解液を4℃で15分間遠心分離し、上清を細胞抽出液とした。この細胞抽出液を次の実験に用いた。 The cell extract was performed as follows. Cells are collected and washed once with phosphate buffered saline (PBS), then lysis buffer (50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 140 mM sodium chloride, 1% Triton X-100, 10% glycerol, 1 mMEGTA, 1.5 mM chloride) Magnesium, 1 mM sodium vanadate, 50 mM sodium fluoride, Protease Inhibitor cocktail (Sigma)) were dissolved while rotating at 4 ° C. for 1 hour. Further, the lysate was centrifuged at 4 ° C. for 15 minutes, and the supernatant was used as a cell extract. This cell extract was used in the next experiment.
免疫沈降法は以下のように行った。細胞抽出液と抗FLAG M2アガロースアフィニティーゲル（Sigma社）を混合し、4℃で1時間、回転させながら反応させた。ゲルを遠心分離で回収し、洗浄緩衝液（50mMトリス塩酸（pH8.0）、140mM塩化ナトリウム、1% Triton X-100、10%グリセロール）で洗浄した。目的のタンパク質は25μgのFLAGペプチド（Sigma社）で溶出し、これを免疫沈降物とした。 The immunoprecipitation method was performed as follows. The cell extract and anti-FLAG M2 agarose affinity gel (Sigma) were mixed and reacted at 4 ° C. for 1 hour while rotating. The gel was collected by centrifugation and washed with wash buffer (50 mM Tris-HCl (pH 8.0), 140 mM sodium chloride, 1% Triton X-100, 10% glycerol). The protein of interest was eluted with 25 μg of FLAG peptide (Sigma) and used as an immunoprecipitate.
ウエスタンブロッティングは以下のように行った。細胞抽出液および免疫沈降物はSDSポリアクリルアミド電気泳動法で分離し、イモビロン-P（Millipore社）に転写した。転写したフィルターは5%スキムミルク（和光純薬工業株式会社）でブロッキングし、図に示した抗体で一晩処理後、1%Tween20/PBSで3回洗浄し、HRP結合抗マウス抗体またはHRP結合抗ウサギ抗体（Cell Signaling社）で処理した。タンパク質の検出にはECL試薬（Amersham Bioscience社）を用いた。抗HAモノクローナル抗体はロシュダイアグノスティックス社より購入した。抗FLAG M2モノクローナル抗体はSigma社より購入した。 Western blotting was performed as follows. Cell extracts and immunoprecipitates were separated by SDS polyacrylamide electrophoresis and transferred to Immobilon-P (Millipore). The transferred filter was blocked with 5% skim milk (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.), treated with the antibody shown in the figure overnight, washed 3 times with 1% Tween20 / PBS, and then HRP-conjugated anti-mouse antibody or HRP-conjugated anti-antibody. Treated with rabbit antibody (Cell Signaling). ECL reagent (Amersham Bioscience) was used for protein detection. Anti-HA monoclonal antibody was purchased from Roche Diagnostics. Anti-FLAG M2 monoclonal antibody was purchased from Sigma.
免疫蛍光染色
カバーガラス上で培養したNIH3T3細胞に哺乳動物発現プラスミドを一過性に発現させた。プラスミド導入24時間後、細胞を3.7%ホルマリン/PBS を用いて4℃で1時間固定し、0.2% Triton X-100/PBSで10分処理した。細胞を5%ヤギ血清でブロッキング後、抗FLAG M2抗体（Sigma社）で1時間処理した。PBSで洗浄後、FLAG融合タンパク質の検出用にFITCラベルしたヤギ抗マウスIgG抗体（Molecular Probes社）およびアクチン繊維の検出用にRhodamineラベルしたファロイジン(Sigma社)で共染色した。PBSで洗浄後、90%グリセロールで封入し、蛍光顕微鏡（Axioskop、Zeiss社）で観察した。
Immunofluorescence staining A mammalian expression plasmid was transiently expressed in NIH3T3 cells cultured on cover glass. 24 hours after plasmid introduction, the cells were fixed with 3.7% formalin / PBS at 4 ° C. for 1 hour and treated with 0.2% Triton X-100 / PBS for 10 minutes. The cells were blocked with 5% goat serum and then treated with anti-FLAG M2 antibody (Sigma) for 1 hour. After washing with PBS, the cells were co-stained with FITC-labeled goat anti-mouse IgG antibody (Molecular Probes) for detection of FLAG fusion protein and Rhodamine-labeled phalloidin (Sigma) for detection of actin fibers. After washing with PBS, the cells were sealed with 90% glycerol and observed with a fluorescence microscope (Axioskop, Zeiss).
Kank3遺伝子を導入されたMCF-7細胞はPoly-L-Lysine (Sigma社)でコーティングされたカバーガラスの上で培養した後、3.7%ホルマリン/PBS を用いて4℃で1時間固定し、0.2% Triton X-100/PBSで10分間処理した。細胞を5%ヤギ血清でブロッキング後、抗Kank3抗体で1時間処理した。PBSで洗浄後、FITCラベルしたヤギ抗ウサギIgG抗体（Molecular Probes社）で染色した。PBSで洗浄後、90%グリセロールで封入し、蛍光顕微鏡（Axioskop、Zeiss）で観察した。 MCF-7 cells introduced with Kank3 gene were cultured on a cover glass coated with Poly-L-Lysine (Sigma), then fixed with 3.7% formalin / PBS at 4 ° C for 1 hour, 0.2 Treated with% Triton X-100 / PBS for 10 minutes. The cells were blocked with 5% goat serum and then treated with anti-Kank3 antibody for 1 hour. After washing with PBS, it was stained with a FITC-labeled goat anti-rabbit IgG antibody (Molecular Probes). After washing with PBS, it was encapsulated with 90% glycerol and observed with a fluorescence microscope (Axioskop, Zeiss).
結果
Kank3遺伝子およびタンパク質の系統、構造および配列
図１aにヒト、ラット、マウスのKank3遺伝子(それぞれ、Hs Kank3、Rn Kank3、及び、Mm Kank3) とKank遺伝子（それぞれ、Hs Kank、Rn Kank、及び、Mm Kank）、及び、ショウジョウバエ(Drosophila melanogaster)と線虫(Caenorhabditis elegans) のKank相同遺伝子の関係を示す系統樹を示す。GenBankデータベースにおけるKank３遺伝子のAccession No.は、それぞれ、ヒト(Hs Kank3:NM 198471)、ラット(Rn Kank3：RGD1308853)、マウス (Mm Kank3：NM 030697)である。数字は遺伝子間の相同性の確率を示す。
result
Kank3 gene and protein strain, structure and sequence Figure 1a shows human, rat and mouse Kank3 genes (Hs, respectively) Kank3, Rn Kank3 and Mm Kank3) and Kank genes (Hs, respectively) Kank, Rn Kank and Mm Kank) and phylogenetic trees showing the relationship between Kank homologous genes of Drosophila melanogaster and Caenorhabditis elegans. The Accession No. of the Kank3 gene in the GenBank database is human (Hs Kank3: NM 198471), rat (Rn Kank3: RGD1308853), mouse (Mm Kank3: NM 030697). Numbers indicate the probability of homology between genes.
図１bにKank3 タンパク質（８２１アミノ酸残基）の構造を示す。図中Coiled-coilドメインとアンキリン様繰り返し配列(Ankyrin-repeat)を示した。 FIG. 1b shows the structure of the Kank3 protein (821 amino acid residues). In the figure, the Coiled-coil domain and an ankyrin-like repeat sequence (Ankyrin-repeat) are shown.
図２aおよび図２bにKank3遺伝子cDNAの塩基配列およびアミノ酸配列を示す。Genbankデータベースにおける、ヒトのKank3遺伝子のUniGene 名はHomo sapiens ankyrin repeat domain 47 (ANKRD47)である。１９番染色体(19p13.2)に位置する。翻訳開始コドンと翻訳停止コドンを下線で示した。枠線はRT-PCR (Reverse transcription-polymerase chain reaction)を行うときに用いたプライマー配列を示した。 2a and 2b show the nucleotide sequence and amino acid sequence of the Kank3 gene cDNA. The UniGene name of the human Kank3 gene in the Genbank database is Homo sapiens ankyrin repeat domain 47 (ANKRD47). It is located on chromosome 19 (19p13.2). The translation start codon and translation stop codon are underlined. The frame line indicates the primer sequence used for RT-PCR (Reverse transcription-polymerase chain reaction).
RT-PCR法によるヒト組織および癌細胞におけるKank3遺伝子の発現の解析
図３aにヒトの脳(brain)、乳腺(breast)、子宮頚部(cervix)、結腸(colon)、心臓(heart)、腎臓(kidney)、肝臓(liver)、肺(lung)、骨格筋(skeletal muscle)、胃(stomach) における発現をRT-PCRにより解析した結果を示す。HPRTは、ヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ(hypoxanthine phosphoribosyltransferase)を示す。
Analysis of Kank3 gene expression in human tissues and cancer cells by RT-PCR Figure 3a shows human brain, breast, cervix, colon, heart, kidney ( The results of RT-PCR analysis of expression in kidney, liver, lung, skeletal muscle, and stomach are shown. HPRT stands for hypoxanthine phosphoribosyltransferase.
図３bに正常ヒト腎臓（normal kidney及びfetal kidney）、ヒト腎癌組織（tumor kidney）、ヒト胎性腎組織由来細胞（HEK293T）及びヒト腎癌細胞における発現をRT-PCRにより解析した結果を示す。図３aに示すように、心臓、腎臓、肺および骨格筋に比較的高い発現が観察された。正常腎臓組織(normal kidney及びfetal kidney)および腎癌細胞系(TUHR14TKB)において、比較的に高い発現が観察された。 Fig. 3b shows the results of RT-PCR analysis of expression in normal human kidney (normal kidney and fetal kidney), human kidney cancer tissue (tumor kidney), human embryonic kidney tissue-derived cells (HEK293T) and human kidney cancer cells. . As shown in FIG. 3a, relatively high expression was observed in heart, kidney, lung and skeletal muscle. Relatively high expression was observed in normal kidney tissue (normal kidney and fetal kidney) and renal cancer cell line (TUHR14TKB).
ヒト乳癌由来細胞系MCF-7にKank3遺伝子を強制発現によるKank3タンパク質の発現の解析
MCF-7 細胞に強制発現させたKank3タンパク質を、抗Kank3抗体を用いた免疫染色法により発現を解析した。図４に示すように、Kank3抗体を用いて強制発現させたKank3タンパク質の存在を確認できた。
Analysis of Kank3 protein expression by forced expression of Kank3 gene in human breast cancer cell line MCF-7
Expression of Kank3 protein forcedly expressed in MCF-7 cells was analyzed by immunostaining using an anti-Kank3 antibody. As shown in FIG. 4, the presence of the Kank3 protein forcedly expressed using the Kank3 antibody was confirmed.
Kank3タンパク質と14-3-3タンパク質ファミリーとの結合
FLAG-Kank3遺伝子とHA-14-3-3beta、gamma、epsilon、zeta、eta、theta、sigma遺伝子それぞれ共発現させた293T細胞の細胞溶出液を用いて、FLAG agarose resinで免疫沈降し、その産物を抗FLAG抗体あるいは抗HA抗体を用いてウエスタンブロット法により解析した結果を示す。コントロールには、FALGタグベクターとHAタグベクターと共発現させた細胞（VFLAG/VHA）、及び、HAタグベクターとFLAG-Kank3遺伝子と共発現させた細胞（Kank3/ VHA）を用いた。IPは免疫沈降を、WBはウエスタンブロッテイングを、FLAGはFLAGタグを、HAはHAタグを示す。図５に示すように、Kank3は14-3-3ファミリー中のgamma, epsilon, eta, thetaと結合することが観察された。
Binding of Kank3 protein to 14-3-3 protein family
Using 293T cell eluate co-expressed with FLAG-Kank3 gene and HA-14-3-3beta, gamma, epsilon, zeta, eta, theta, and sigma gene, immunoprecipitate with FLAG agarose resin Shows the results of Western blot analysis using anti-FLAG antibody or anti-HA antibody. For control, cells co-expressed with FALG tag vector and HA tag vector (V FLAG / V HA ), and cells co-expressed with HA tag vector and FLAG-Kank3 gene (Kank3 / V HA ) were used. . IP indicates immunoprecipitation, WB indicates Western blotting, FLAG indicates a FLAG tag, and HA indicates an HA tag. As shown in FIG. 5, Kank3 was observed to bind to gamma, epsilon, eta, theta in the 14-3-3 family.
Kank3タンパク質および点突然変異を含むタンパク質と14-3-3タンパク質ファミリーとの結合
FLAG-Kank3遺伝子および点突然変異を含むFLAG-Kank3遺伝子をそれぞれHA-14-3-3theta遺伝子と共発現させた293T細胞の細胞溶出液を用いて、FLAG agarose resinで免疫沈降し、その産物をFLAG抗体あるいはHA抗体でウエスタンブロッテイングした後の結果を示す。コントロールには、FALGタグベクターとHAタグベクターと共発現させた細胞（VTag2B/VHA）、及び、FALGタグベクターと14-3-3theta遺伝子と共発現させた細胞（VTag2B/ 14-3-3theta）を用いた。図６に示すように、Kank3タンパク質アミノ酸の３１番目のセリン(Serine)をアラニン(Alanine)に置換することによって、Kank3 タンパク質と14-3-3タンパク質の結合が阻害された。
Binding of Kank3 protein and proteins containing point mutations with the 14-3-3 protein family
Using the cell eluate of 293T cells in which the FLAG-Kank3 gene and the FLAG-Kank3 gene containing a point mutation were co-expressed with the HA-14-3-3theta gene, respectively, immunoprecipitated with the FLAG agarose resin. The results after Western blotting with FLAG antibody or HA antibody are shown. For control, cells coexpressed with FALG tag vector and HA tag vector (V Tag2B / V HA ), and cells coexpressed with FALG tag vector and 14-3-3theta gene (V Tag2B / 14-3 -3theta) was used. As shown in FIG. 6, by substituting the 31st serine of the Kank3 protein amino acid with alanine, the binding between the Kank3 protein and the 14-3-3 protein was inhibited.
Kank3タンパク質および点突然変異を含むタンパク質の発現によるアクチン繊維形成への影響
コントロールベクター(FLAG-GST)、FLAG-Kank3遺伝子及び点突然変異を含むFLAG-Kank3 遺伝子をそれぞれNIH3T3 細胞にトランスフェクションした後、マウス由来の抗FLAG抗体で反応させ、FITCで標識されたヤギ由来の抗マウスIgGの２次抗体によりFLAGタグを検出した（図７）。２次抗体染色と同時にRhodaminで標識されたPhalloidin色素でアクチン繊維を染めた。矢印はコントロールベクター、Kank3遺伝子或いは点突然変異を含むKank3遺伝子を発現している細胞を示す。図７に示すように、Kank3遺伝子の強制発現により、アクチン繊維が消失したことが観察された。一方で、点突然変異を含むKank3遺伝子の強制発現により、アクチン繊維の形成に影響がなかった。
Effect of Kank3 protein and protein containing point mutation on actin fiber formation After transfection of NIH3T3 cells with control vector (FLAG-GST), FLAG-Kank3 gene and FLAG-Kank3 gene containing point mutation, respectively. Reaction was carried out with a mouse-derived anti-FLAG antibody, and a FLAG tag was detected with a secondary antibody of goat-derived anti-mouse IgG labeled with FITC (FIG. 7). At the same time as the secondary antibody staining, actin fibers were dyed with Phalloidin dye labeled with Rhodamin. Arrows indicate cells expressing a control vector, a Kank3 gene or a Kank3 gene containing a point mutation. As shown in FIG. 7, it was observed that the actin fiber disappeared by forced expression of the Kank3 gene. On the other hand, forced expression of the Kank3 gene containing a point mutation did not affect the formation of actin filaments.
配列番号３〜６：プライマー Sequence number 3-6: Primer
Claims (1)
(a) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列からなるタンパク質
(b) 配列番号２で表わされるアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、かつアクチン繊維形成抑制作用を有するタンパク質 An actin polymerization control agent comprising the following protein (a) or (b) as an active ingredient.
(a) a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2
(b) a protein comprising an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 and having an actin fiber formation inhibitory action
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