JP4676789B2 - 乳酸菌の酸耐性に関わる遺伝子 - Google Patents
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gasseri、L. johnsonii、L.
acidophilus、L.casei、L.plantarum、L.rhamnosus等のラクトバチルス属、Bifidobacterium
longum、B.breve、B.bifidum等のビフィドバクテリウム属の細菌などが利用されている。
shock proteinの増加(非特許文献1)、GABA antiporterとglutamate decarboxylase activity(GAD)関連遺伝子の破壊株による酸耐性の低下(非特許文献2)、あるいは脱炭酸反応に関与する遺伝子破壊株による酸耐性の低下(非特許文献3)などが報告されている。
OLL2716株(以下LG21株;寄託番号 FERM BP-6999)に注目して検討を開始した。LG21株は、他の乳酸菌と比べても人工胃液耐性が高いことやpH4.0に調整したMRS培地での増殖効率が高いことが示されている。
chain reaction)法などで、転写量は酸耐性遺伝子の塩基配列をもとにしたノーザンブロッティング法や定量的なPCR法など、またタンパク質量は、二次元電気泳動やウエスタンブロッティング法など、それぞれ公知の方法で定量できる。これらのいずれかの方法を用いて測定対象微生物における本願遺伝子の存否、転写量、および発現量の少なくとも一つを測定することで、発酵製造やプロバイオティックスなどの分野で有用な形質である酸耐性度の高い微生物株をスクリーニングすることが可能となる。
(1)配列番号1に記載の塩基配列を有する酸耐性遺伝子(#905)。
(2) (1)に記載の遺伝子を導入して作成され、酸耐性能が向上した微生物の形質転換体。
(3) (1)に記載の塩基配列又は当該遺伝子によってコードされる蛋白質を検出すること、を特徴とする酸耐性微生物のスクリーニング方法。
遺伝子を発現させるためには、配列番号1記載の遺伝子をベクターに導入すればよい。組換えベクターには、公知の発現系を有するプラスミドやファージ、コスミド等に本発明の遺伝子を用いることもできる。
形質転換体の作製は常法によって行えばよい。このとき宿主細胞として、宿主内に挿入された遺伝子を維持、増殖、発現させ得るものであればいずれも使用可能である。宿主には、例えば、ラクトコッカス属細菌、ラクトバチルス属細菌、ビフィドバクテリウム属細菌、酢酸菌、枯草菌、大腸菌、その他の細菌などが挙げられる。遺伝子#905を失活した微生物を作製するには、突然変異、相同組換え等の手法を用いて行えばよい。
配列番号1記載の塩基配列を用いた酸耐性度の高い微生物をスクリーニングするには、配列番号1記載の遺伝子にハイブリダイズする遺伝子をスクリーニングし、配列番号1記載の配列の一部分から調製したプライマーを用いて転写量を測定するか、そのタンパク質を定法にしたがって測定すればよい。
[実施例1] 酸性条件でつくられるLG21株のタンパク質解析
LG21株の細胞内で作られるタンパク質を調べるため、LG21株を初発pH6.5またはpH4.5に調整した10%ホエイ粉末を含む培地(以下ホエイ培地)50mlに接種し、37℃にて対数増殖期(OD660=1.0)になるまで培養した。培養菌体を遠心処理(8,000rpm/5min/室温)にて回収し、50mM
Tris buffer(pH8.0)にて洗浄してから、タンパク質調製液(7M urea, 2M thiourea, 0.5% TritonX-100, 1mM MgCl2, 0.5% IPG
buffer, 1mM DTT, 1mM PMSF, 4μg/ml RnaseA, 1U/ml endonuclease)1mlに懸濁し、超音波による菌体破砕により細胞内タンパク質溶液を調製した。二次元電気泳動装置(Multiphor 2 system/Amersham
Biosciences)を用いて、等電点(pI値:4-7)と分子量により二次元的にタンパク質を分離した。Silver
Stain MS kit(和光純薬工業社製)による染色によりタンパク質スポットを検出し、画像解析ソフト(ImageMaster
2D Elite/ Amersham Biosciences)による処理を行ったところ、約300のタンパク質スポットが再現性よく検出された(図1)。初発pH6.5とpH4.5で培養した菌体から得られたタンパク質マップの画像解析結果を比較したなかで、初発pH4.5の培養条件で著しく発現量が増加したタンパク質スポットは多数検出されたが、その中で特に顕著な違いのあるスポット1個を含む部分的な泳動図を図2に示した。図2の初発pH4.5で高発現したタンパク質スポットはpH6.5で発現した当該スポットに比べ4倍程度の増加であり、酸性の培養条件によって強く発現されることが判明した。
実施例1で選択した図2のタンパク質をコードする遺伝子を特定するため、該スポットを切り出し、Silver Stain MS kit(和光純薬工業社製)の脱色液を添加して15分間浸せきした。その後3回以上蒸留水にて洗浄を行い、脱色液を完全に除去してからTrypsin digestion処理 (35℃、overnight) を行い、LC-MS/MS解析(Q-Tof2/Micromass)を行った。得られたプロダクトイオンの数値をMascotにより、すべての生物種を対象にデータベース(NCBInr)検索した。その結果、本タンパク質スポットは、Lactobacillus gasseri のhypothetical protein(Accession No. ZP_00046762)と同定された。質量解析により得られた解析データをもとにLG21株のゲノムデータベース(明治乳業株式会社食機能科学研究所解析データ)と照合した結果、機能未知の遺伝子#905と同定された(配列番号1)。
実施例2に示す結果から、酸耐性に関連すると推定された遺伝子#905の機能を推定しようとした。得られたアミノ酸配列(配列番号2)をデータベースで比較した結果、該タンパク質と相同性のあるタンパク質がいくつか見出された。Lactobacillus
gasseri ATCC33323株のputative NADH-flavin
reductase と97%(215aa)、L.johnsonii
NCC533株のhypothetical protein LJ0019と92% (215aa)、Leuconostoc mesenteroides subsp. mesenteroides ATCC8293株のputative NADH-flavin
reductaseと47%(215aa)、Oenococcus
oeni PSU-1株の putative NADH-flavin
reductase と42%(217aa)、L.plantarum
WCFS1株のhypothetical protein lp_2212と44%(217aa)、Bacillus subtilis
subsp. subtilis 168株のhypothetical
protein ywnBと33%(217 aa)などである。しかし、これらタンパク質の機能はいずれも明確になっておらず、酸耐性との関連性を示す証拠は全く認められない。したがって、本発明で見出されたLG21株由来の遺伝子#905は機能が未知であり、酸耐性など産業的有用性との関連が示唆されたことがないものであることが判明した。
以上のように、塩基配列およびアミノ酸配列による相同性検索結果から、ガセリ菌LG21株の遺伝子#905はこれまでのところ機能の推定ができず、酸耐性など産業的有用性との関連が示唆されたことがないことが明確となった。
次に、遺伝子#905の機能を検討するために、本遺伝子を欠失した株(遺伝子#905破壊株)を相同組換えによる二重交叉によって作製した。LG21株の染色体から遺伝子#905の両端の配列を含む前後1kb断片をPCR法により増幅した。プライマー設計に用いたシーケンス情報は、LG21株のゲノム解析データをもとに設計したものであり、以下に示すプライマーを合成して用いた(配列表参照)。
遺伝子)断片を得た。この断片を温度感受性複製ベクターpTERM09に挿入してプラスミドpTERM905(図3)を構築し、そのDNAを調製した。
上記のようにして作製したプラスミドDNAは、エレクトロポレーション法を用いてLG21株に導入した。温度感受性ベクターは、低温では複製できるが高温では複製できない。32℃の低温条件下にて形質転換体を取得し、この菌株を高温(37℃)及びエリスロマイシン(Em)添加(25μg/ml)による選択圧をかけて培養すると、プラスミドは複製されずに、染色体上の#905遺伝子内部に相同組換えにより取り込まれた。これにより、染色体上の#905遺伝子にプラスミドpTERM905全体が組込まれたシングルクロスオーバー株を取得した。その後、32℃の低温条件とEm選択圧をかけない条件下で培養し、2回目の相同組換えを行うことで、プラスミド由来の#905Del遺伝子(内部配列欠損)と機能を有する#905遺伝子が入れ替わり、外来遺伝子を含まない#905遺伝子破壊株(ダブルクロスオーバー)を取得した。#905遺伝子破壊株の#905Del遺伝子領域については、PCR及びシークエンサーによる塩基配列の解析を行い、#905遺伝子の一部(438bp)が欠失していること(配列番号7)、また二次元電気泳動による図2に示したタンパク質スポット(○印内)が発現していないことを確認した。
実施例4で得られた#905遺伝子破壊株(以下、Δ905株と呼ぶ)の表現型をLG21株(野生株)と比較した。Δ905株とLG21株をMRS培地(pH6.5あるいはpH4.5)で培養し、菌の生育速度(図4)及びpH変動(図5)を比較した。その結果、Δ905株は野生株とほぼ同じ生育速度・pH変動を示し、増殖速度とpH低下速度に差は見られなかった。これは、#905遺伝子以外の本株の酸耐性に関わる複数の遺伝子が働いて、培養中のpH低下などに対応したためと考えられる。
Δ905株について人工胃液による酸耐性試験を行った。対照として、LG21株(野生株)についても同様の試験を行った。0.35%ペプシンと0.2%NaClを含む水溶液を塩酸でpH2.0に調整し、0.45μmのフィルターでろ過滅菌したものを人工胃液とした。MRS培地(pH6.5)で培養した菌体(対数増殖期:培養6時間、定常期:培養18時間)を遠心処理(8,000rpm/3min/室温)により回収し、PBS(pH7.2)で菌体を2回洗浄し培地を完全に除去してから、PBSを用いて菌体濃度をOD(660nm)=1.5に調整した。培養した当該菌の懸濁液1mlと人工胃液9mlを混合し、37℃・好気条件にて120分間静置した。混合直後の懸濁液と90分・120分静置後の懸濁液をMRS寒天培地に播種し、37℃で48時間、ガスパックを用いて嫌気培養を行った。培養後、コロニー数を測定し、生残率(%)を算出した。
(試験結果)
対数増殖期の結果を表1及び図6のAに示した。90分間人工胃液中で静置した場合の野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は0.2%と野性株に比べて明確に低下していた。
定常期の結果を表2及び図6のBに示した。90分間および120分間人工胃液中で静置した後の野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は、90分後が49.1%、120分後が14.5%とこの場合も野生株に比べて明確に低下していた。
次に、#905遺伝子が他のストレスにも関与するかどうかを検討した。まず、胆汁酸の主成分であるコール酸Naに対する耐性試験を行った。Δ905株とともに、対照としてLG21株も同じ試験を行った。20mMコール酸Na溶液は、NaOHを用いてpH6.5に調整し、0.45μmのフィルターでろ過滅菌した。MRS培地(pH6.5)で培養した菌体(対数増殖期:培養6時間、定常期:培養18時間)を遠心処理(8,000rpm/3min/室温)により回収し、PBS(pH7.2)で菌体を2回洗浄し培地を完全に除去してから、PBSを用いて菌体濃度をOD(660nm)=1.5に調整した。菌懸濁液1mlと20mMコール酸Na溶液9mlを混合し、37℃・好気条件にて90分間静置した。混合直後の懸濁液と90分静置後の懸濁液を各々MRS寒天培地に播種し、37℃で48時間、ガスパックを用いて嫌気培養を行った。培養後、コロニー数を測定し、生残率(%)を算出した。
(試験結果)
対数増殖期の結果を表3に示した。野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は8.5%を示した。また、定常期の結果を表4に示した。野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は7.1%を示した。
したがって、該遺伝子は酸耐性とともに胆汁酸耐性にも関与する可能性があることが判明した。
次に、Δ905株について、過酸化水素による酸耐性試験を行った。対照として、LG21株についても同様の試験を行った。10mMの過酸化水素溶液を調整し、0.45μmのフィルターでろ過滅菌したものを用いた。MRS培地(pH6.5)で培養した菌体(対数増殖期:培養6時間、定常期:培養18時間)を遠心処理(8,000rpm/3min/室温)により回収し、PBS(pH7.2)で菌体を2回洗浄し培地を完全に除去してから、PBSを用いて各々の菌体濃度をOD(660nm)=1.5に調整した。それらの菌液各々1mlを遠心(10,000rpm/3min/室温)し、上清を除去した後、上記過酸化水素溶液1mlを加えて懸濁し、37℃・好気条件にて60分間静置した。混合直後の懸濁液と60分静置後の懸濁液をBCP加プレートカウント寒天培地に播種し、37℃で72時間、ガスパックを用いて嫌気培養を行った。培養後、コロニー数を測定し、生残率(%)を算出した。
(試験結果)
対数増殖期の結果を表5に示した。野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は8.2%を示した。また、定常期の結果を表6に示した。野生株の生残率を100%とした時のΔ905株の生残率は5.9%を示した。
したがって、該遺伝子は過酸化水素の耐性にも関わっている可能性があることが判明した。
Claims (1)
- 配列番号1に記載の塩基配列を有する酸耐性遺伝子(#905)。
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