JP4551903B2 - 真核細胞トランスフェクションのための培養装置および方法 - Google Patents
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Description
(a)該生体分子が相互作用することのできるポリマーまたは脂質で被覆された固体表面を用意する工程、
(b)生体分子が該ポリマーまたは脂質と相互作用するように、固体表面に生体分子を加える工程、
(c)細胞内への生体分子の導入にとって十分な密度および適切な条件下で、細胞を表面上に播種する工程、および
(d)生体分子が細胞に送達されたかどうかを検出する工程、
を含む方法に向けられる。
実施例1
細胞培養/トランスフェクション装置の調製
インビトロで哺乳類細胞にプラスミドDNAをトランスフェクトしてトランスフェクション効率を評価するために、塩化カルシウムおよび線状ポリエチレンイミン(L-PEI)を使用した。96ウェル細胞培養プレート(Corning Costar,カタログ番号3997)のウェル底部に、トランスフェクション試薬をゼラチン(タイプB;SIGMA-ALDRICH,カタログ番号G-9391)と共に固着させた。塩化カルシウムの場合、0.5μmol/ウェルの塩化カルシウムを0.5mg/ウェルのゼラチンと共に固着させた。PEIの場合、3.5μg/ウェルのPEIを0.05mg/ウェルのゼラチンと共に固着させた。これらの試薬およびゼラチンを25μlの脱イオン水(各ウェルあたり)に溶解し、ウェルに分配した。次にウェルを風乾した。
293細胞に関する細胞培養/トランスフェクション装置によるトランスフェクション
opti-MEM I(Invitorgen,カタログ番号31985-070)25μl中のpCMV-GFPプラスミド50ngを各ウェルに加え、25分間室温に保った。次に、10%仔ウシ血清(Invitrogen)を含むダルベッコ変法イーグル培地(DMEM)(Invitrogen,カタログ番号11965-084)100μl中の293細胞5×104個を加え、7.5%CO2中、37℃でインキュベートした。24時間のインキュベーション後に、落射蛍光顕微鏡(IX70,オリンパス)を使ってGFP蛍光を観察することにより、トランスフェクション効率を見積った。
293細胞に関する従来のトランスフェクション
293細胞培養物(DMEM中5×105細胞/ml)100μlを96ウェルプレートに播種し、7.5%CO2中、37℃で24時間インキュベートした。培養後に、opti-MEMに溶解したpCMV-GFPプラスミド-トランスフェクション試薬混合物(最終濃度:プラスミド;10ng/μl、トランスフェクション試薬;表2に記載のとおり)を調製し、室温で15分間インキュベートすることにより、プラスミド-トランスフェクション試薬複合体を形成させた。次に、プラスミド-トランスフェクション試薬複合体15μlを各ウェルに加え、7.5%CO2中、37℃で24時間インキュベートした。実施例2に記述したようにトランスフェクション効率を見積った。その結果、従来の方法ではL-PEIは有効だったが、塩化カルシウムは適切でなかった。従来の方法では2つのインキュベーション段階および複雑な調製が要求される。
複数細胞株アッセイ
哺乳類細胞(293細胞、COS-7細胞およびHeLa細胞)に対するトランスフェクション効率を測定した。96ウェルプレートの底部にさまざまな条件で塩化カルシウムおよびゼラチンを固着させることによって、細胞培養/トランスフェクション装置を調製した。pCMV-GFPのトランスフェクションを実施例2に記載したプロトコールに従って行なった。ただし、播種する細胞の数は、COS-7細胞およびHeLa細胞の場合は10%仔ウシ血清を含むDMEM 100μl中2×104個とし、293細胞の場合は10%仔ウシ血清を含むDMEM 100μl中5×104個とした。
細胞培養/トランスフェクション装置を使ったsiRNA送達
siRNAは、生命科学研究領域において、特定遺伝子の役割を調査するための重要なツールである。細胞培養/トランスフェクション装置について上に説明した方法論をsiRNA送達に応用した。
センス配列:CGUACGCGGAAUACUUCGAdTdT(配列番号1)
アンチセンス配列:UCGAAGUAUUCCGCGUACGdTdT(配列番号2)。
これら2つの断片をアニールして二本鎖を形成させた。
細胞培養/トランスフェクション装置を使った同時トランスフェクション
典型的なウイルスベクター製造では、2以上のプラスミドが細胞中にトランスフェクトされる。同時トランスフェクションによって、ウイルスベクター製造に関する細胞培養/トランスフェクション装置の有効性をシミュレートすることができる。
細胞培養/トランスフェクション装置:ラージスケール応用
ラージスケール応用のための細胞培養/トランスフェクション装置の態様も調製した。24ウェルプレートおよび6ウェルプレートは常用されており、ウイルスベクター製造は、とりわけインビボ研究にとって、極めて重要である。この目的のために、例えば直径10cmまたは25cmの大きな細胞培養ディッシュで、トランスフェクションを行なうことができる。
Claims (22)
- 核酸が真核細胞に侵入できるかどうかを決定する方法であって、
(a)トランスフェクション用マルチウェルプレートを提供する工程であって、該トランスフェクション用マルチウェルプレートは、少なくとも一部のウェルの底部に、該核酸を含まずトランスフェクション試薬およびマトリックスを含む組成物が少なくとも部分的に被覆されており、該トランスフェクション試薬はカルシウム塩であり、該マトリックスは、ゼラチン、コラーゲン、ラミニン、フィブロネクチン、ウシ血清アルブミン、およびそれらの組み合わせからなる群より選択される、工程、
(b)該核酸がカルシウム塩と相互作用するように、該核酸をマルチウェルプレートに加える工程、
(c)細胞内への核酸の導入にとって十分な密度および適切な条件下で、真核細胞をマルチウェルプレート上に播種する工程、および
(d)該核酸が細胞に送達されたかどうかを検出する工程、
を含む、方法。 - 前記核酸が、プラスミドまたはsiRNAである、請求項1記載の方法。
- 前記カルシウム塩が塩化カルシウムおよび酢酸カルシウムからなる群より選択される、請求項1または2記載の方法。
- 前記金属塩が塩化カルシウムであり、前記マトリックスがゼラチンである、請求項1から3までのいずれかに記載の方法。
- 1ウエル当たりの量が、それぞれ、塩化カルシウム0.25μmol〜1.0μmolおよびゼラチン0.13mg〜0.5mgである、請求項4記載の方法。
- 前記細胞が哺乳類細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が分裂細胞または非分裂細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が形質転換細胞または初代細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が体細胞または幹細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が植物細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が昆虫細胞である、請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
- 真核細胞の核酸によるトランスフェクションのための方法であって、
(a)トランスフェクション用マルチウェルプレートを提供する工程であって、該トランスフェクション用マルチウェルプレートは、少なくとも一部のウェルの底部に、該核酸を含まずトランスフェクション試薬およびマトリックスを含む組成物が少なくとも部分的に被覆されており、該トランスフェクション試薬はカルシウム塩であり、該マトリックスは、ゼラチン、コラーゲン、ラミニン、フィブロネクチン、ウシ血清アルブミン、およびそれらの組み合わせからなる群より選択される、工程、
(b)該核酸がカルシウム塩と相互作用するように、該核酸をマルチウェルプレートに加える工程、および
(c)細胞内への核酸の導入にとって十分な密度および適切な条件下で、真核細胞をマルチウェルプレート上に播種する工程
を含む、方法。 - 前記核酸が、プラスミドまたはsiRNAである、請求項12記載の方法。
- 前記カルシウム塩が塩化カルシウムおよび酢酸カルシウムからなる群より選択される、請求項12または13記載の方法。
- 前記金属塩が塩化カルシウムであり、前記マトリックスがゼラチンである、請求項12から14までのいずれか1項記載の方法。
- 1ウエル当たりの量が、それぞれ、塩化カルシウム0.25μmol〜1.0μmolおよびゼラチン0.13mg〜0.5mgである、請求項15記載の方法。
- 前記細胞が哺乳類細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が分裂細胞または非分裂細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が形質転換細胞または初代細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が体細胞または幹細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が植物細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
- 前記細胞が昆虫細胞である、請求項12から16までのいずれか1項記載の方法。
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