JP4431498B2 - 動物投与用ポリマー組成物 - Google Patents
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Classifications
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Description
YBX I
式中、Yは、H2C=CR−CO−A−、H2C=CR−C6H4−A1−、H2C=CR−CH2A2、R2O−CO−CR=CR−CO−O、RCH=CH−CO−O−、RCH=C(COOR2)CH2CO−O、
ヒト血液から得られる単核細胞の接着性を見るin vitro方法を用いて、PCをベースとする材料に対する潜在的な免疫応答を評価した。
次いで、細胞をPBS中で調製した0.2%(v/v)Triton X-100(シグマ・アルドリッチ社、プール、ドーセット州、英国)0.5mlを添加することによって透過化処理し、室温において8分間インキュベーションした。次いで、試料を上記の通りに滅菌PBS中で洗浄した。脱イオン水中で調製した9%(v/v)過酸化水素(シグマ・アルドリッチ社、プール、ドーセット州、英国)0.5mLを各試料に添加し、4℃において一晩インキュベーションした。過酸化水素とともにインキュベーションした後、試料を滅菌PBS中で洗浄した。次いで、湿度チャンバー(滅菌PBS中に浸漬された濾紙(BDHラボラトリー・サプライズ社、プール、ドーセット州、英国)が並べられたペトリ皿(インビトロゲン社、ペイズリー、英国))中のパラフィルム片(BDHラボラトリー・サプライズ社(BDH Laboratory Supplies)、プール、ドーセット州、英国)の上に試料を置いた。
PBS中で1%FCS(インビトロゲン社、ペイズリー、英国)によって1:20希釈したCD68(マクロファージ特異的細胞表面受容体)一次抗体(ダコー社(DAKO)、ケンブリッジシャー州(Cambridgeshire)、英国)50μLを各試料に添加し、1時間室温でインキュベーションして、非特異的結合を阻害した。インキュベーション後、この試料をPBS40mL中に10回浸漬し、この浸漬プロセスをフレッシュなPBS中で2回繰り返した。次いで、高速染色キット(シグマ・アルドリッチ社、プール、ドーセット州、英国)をキットに同梱されている指示書に従って試料に適用し、ビオチン化二次抗体(緩衝生理食塩水中のヤギ抗マウス免疫グロブリン及び0.1%ナトリウムアジド)一滴(〜50μL)を各試料に添加し、室温において5分間インキュベーションした。次いで、試料を上記の通りにPBS中で洗浄した。
次いで、ペルオキシダーゼ試薬(緩衝生理食塩水中で共役されている)一滴(〜50μL)を各試料に添加し、室温において5分間インキュベーションした。試料を上記の通りにPBS中で洗浄し、基質試薬50μL(脱イオン水4mL、酢酸緩衝液(2.5M、pH5.0)2滴(〜100μL)、AECクロモゲン(N,N−ジメチルホルムアミド中の3−アミノ−9−エチルカルバゾール)2滴(〜100μL)、及び3%過酸化水素(脱イオン水中)1滴(〜50μL))を各々試料に添加した。次いで、試料をPBS中で再度洗浄し、最後に脱イオン水中で洗浄した後、ベクタシールド試料装着用物質(Vectasheild mountant)(ベクターラボ社(Vectorlabs)、ピーターバラ州(Peterborough)、英国)約20μLを用いて顕微鏡スライド上に備え付けた。接着性のマクロファージ及び単球細胞の数を光学顕微鏡(ラボールラックス(Laborlux)12、ライツ(Leitz)、ドイツ)を用いて倍率400倍の下で1視野あたりの計数を行った。1視野あたりの細胞の平均数は、1複製試料あたり30のランダムな視野から計数した。図1の結果は、倍率400倍の下で観察された1視野あたりの細胞の平均数(30の視野から得られたもの)及び18の複製試料から得られた標準誤差を示す。
上記の参照実施例1で用いたクロスリンク可能なPCポリマーでコーティングしたステンレス鋼ロッドをウサギの筋肉内で移植し、線維性被膜形成をPEネガティブコントロール移植片から得られるものと比較した。13週目における移植片周囲での線維性被膜形成の統計分析によって、PCでコーティングした移植片ではカプセルが少なく、試料はしばしば成熟した脂肪組織によって取り囲まれていることが明らかになったが、このことはこの移植片が十分に寛容され、動物に許容されていることを示している(図2a及び図2b)。
参照実施例1で用いたポリマーとしての成分を有するクロスリンク可能なPCポリマーをWO−A−9830615で概説した通りに調製して単離し、アセトン中に沈殿させて回収した。回収した材料をオーブン中で70℃において4時間乾燥させクロスリンクさせた。一連の篩(クリスティソン社(Christison)、ゲーツヘッド(Gateshead)、英国、63〜830μm、ステンレス鋼、直径200mm)を用いて、粒子状材料をサイズ範囲に分けた。粒子が室温において水中で水和して平衡した場合、この粒子は50〜55%の範囲の水含量に達した。
WO92/07885に一般的に記載されている通り、MPCが約7モル%で存在し、クロスリンク剤は約0.5モル%の量で存在する、エチレングリコールジメタクリレートとクロスリンクした2−ヒドロキシ−エチルメタクリレート中のMPCの溶液のバルク共重合により、代替のクロスリンクしたPCポリマーを調製した。バルクキセロゲル材料を粉砕して粒子とし、実施例1で記載した篩分け技術を用いてサイズ分けした。図4は、特定の開口の篩上で保持されているキセロゲル粒子(すなわち、水中で平衡化する前)の顕微鏡写真を示している。粒子は水和したときに急速に膨潤し、約60%の水含量に達した。
エチルセルロース(エトキシ含量48%、アルドリッチ社)0.25gを500mlの攪拌反応容器中のジクロロメタン100g及びヘキサン50gの溶液に添加した。溶液を窒素で脱酸素化し、攪拌速度を250rpmに調整した。
1wt%アゾビスイソブチロニトリル(AIBN)を開始剤として用いて、エタノール中の30wt%MPC、50wt%ラウリルメタクリレート、10wt%ヒドロキシプロピルメタクリレート、及び10wt%アリルメタクリレートを含有するモノマー枯渇フリーラジカル重合技術により、ポリマーを合成した。この溶液をアセトン中に沈殿させると85%の白色ポリマーを生じ、これを真空中において一晩室温で乾燥させた。
ポリマーをWO−A−0029481で概説した方法に従って調製した。以下の式のアニオンポリマー及びカチオンポリマーを調製し、純水に溶解して、各々17.5wt%溶液を生成し、続いてこの溶液を1:1の体積で十分に混合し、同じwt%組成物のPC多イオン複合体(PIC)ゲルを得た:LMAは、ラウリルメタクリレート(n−ドデシル)メタクリレートであり、DMAは、N,N−ジメチルアクリルアミドである。カチオノマー:MPC25LMA15TEM60(TEM=コリンメタクリレートクロライド、Mw207)、アニオマー:MPC30DMA10SSS60(SSS=スチレンスルホン酸ナトリウム、Mw207)。
参照実施例1に記載されたクロスリンク可能なポリマーの20wt%クロロホルム溶液中に、平均サイズ1000ミクロンのポリビニルアルコール(PVA)発泡粒子(コック社(Cook Inc.)、米国)を置いた。数分後、この溶液をデカントし、粒子を空気乾燥して溶媒を除去した。この粒子を70℃のオーブン中に置いてコーティングの硬化を行った。図9は、コーティング塗布前後の粒子の目視比較を示している。粒子のサイズ及び形状は実質的に変わっていないが、コーティングは幾分目に光る表面を読み取れる。
吸取り紙上に詰め物をして乾燥したが脱水されていないPVAゲル球状体(バイオキュア社(Biocure Inc)がWO−A−0168720の実施例2に従って製造したがアニオンコモノマーを含んでおり、膨潤したミクロスフィアを懸濁する連続水性液体を伴った水性組成物として供給される)を用いて、実施例6と同じ手順を繰り返した。コーティングを上記の通りにクロスリンクさせると、ゲル球状体の水和サイズが硬化工程中に約10分の1に縮小するのが観察された。脱水された球状体のFT−IRは、塗布されたPCコーティングに特徴的なカルボニル伸縮の存在を示している(図11)。コーティングした球状体は、水和したときにその元の寸法及び形状を回復していることが認められた。
実施例3に記載の通りに合成したPCをベースとするミクロスフィアを、短期ヒツジ肺塞栓形成モデルにおいてPVA粒子(コック社)と比較して評価した。
(i)動物:3匹の妊娠していない成体Pre−Alpesヒツジ
i. 体重範囲40〜60kg
(ii)PC球状体(実施例3に記載の通り)
(iii)PVA粒子(コック社)
(iv)クオシナ(Qosina)又はBDHポリプロピレンシリンジ及び三方向連結具
(v) ビシペイク(Visipaque)320造影剤
(vi)テルモ社レッジエーロ(Terumo Leggiero)診断用カテーテル
(i)麻酔
ヒツジには手順を行う前24時間は食事を与えなかった。体重1kgあたり15mgのチオペンタールナトリウム(ネスドナル社(Nesdonal);スペシア・ローヌ−プーランク(Specia Rhone−Poulenc)、パリ、フランス)の筋内注入によって麻酔を行った。各動物を背臥位に配置し、挿管し、1.5%ハロタン(トルフィールス社(Trofiels)ツーク、スイス)及び98.5%酸素(CFPO社、パリ、フランス)の混合物で麻酔し、ユニット(ロジック0.5;オーメダ社(Ohmeda)、スティートン(Steeton)、イングランド)で酸素供給した。呼気終末(End−tidal)CO2レベルを連続的に測定し、モニター(N1000;ネルコール社(Nellcor)、プレザントン、カリフォルニア州)により26mmHgと36mmHgとの間で維持した。95%より高いレベルで維持された末梢動脈酸素飽和を耳に付けられた探針によりモニタリングした。本手順の間、心電図を用いて各動物を連続的にモニタリングした。
静脈大腿手法(venous femoral approach)を用いて、塞栓形成を行った。4‐F又は5‐Fの誘導針(introducer)のシースを大静脈中に置いた。心臓の右の腔へ大静脈の逆行性カテーテル挿入を行い、肺動脈の近位のカテーテル挿入を行った。5‐Fの誘導カテーテルを導入し、肺動脈分枝の非常に選択的なカテーテル挿入を行った。対照の血管造影図をとり、続いて粒子のフリーフロー中で塞栓形成する(造影剤と混合する)。繰り返し選択的な対照の血管造影図をとり、続いて非常に選択的に塞栓形成する。球状体/粒子を各々注入した後、カテーテルを食塩水2.5mlでパージした。血管造影図による評価で近位の動脈流が減少したとき、塞栓形成を停止した。各試料に対して、同じ終点の塞栓形成を用いた。
以下の評価を直ぐに行った:
適用及び操作の容易性、塞栓形成の有効性(血管造影図による評価:閉塞レベル、動脈閉塞の程度)、終点、注入された球状体/粒子の体積、血管の塞栓形成時間、塞栓形成時の還流又は副作用、動物の体重(含入時にすべての動物に対して体重測定する)。
PCミクロスフィア及びPVA粒子は両方とも、血管において効果的に塞栓を形成した。PVAは血管内で凝集してより近位での閉塞を生成する傾向があったのに対し、PCミクロスフィアはより遠くまで移動した。PVA粒子はカテーテル内で集塊及び凝集する傾向を有していたのに対し、圧縮性PCミクロスフィアは送達に関する問題はなかった。両方とも塞栓形成剤に対して許容できる形式で扱った。観察するのが容易である造影剤を用いて、同種浮遊混合物を保持する青色のPCミクロスフィアがシリンジ中に容易に見られた。PC球及びPVA粒子の両方とも、塞栓形成に対して許容し得る終点を生じた。
7日後に動物を屠殺し、塞栓形成された肺組織の断面図に対して病理学的な評価及び組織学的な評価を行った。直接10%中性緩衝化ホルマリンを気管内注入し浸漬し、2週間ホルマリンで染色することによって肺を固定した。種々の肺領域において肉眼による検査を行った。試料を一連のアルコール中で脱水し、キシレン中に設置し、パラフィン中に包埋し、3〜4μmの切片にした。各切片を顕微鏡スライド上に備え付け、ヘマトキシリン−エオシン(H&E)染色によって染色し、光学顕微鏡下で調べた。PC球状体とPVA粒子との比較によって、PCミクロスフィアでは変わった組織反応がないことが示された。図12は、PC微小球状体及びPVA粒子を含有する塞栓形成血管由来の断面図を示している。
Claims (29)
- 水不溶性かつ水吸収性のポリマーマトリクスであるコアを含有し、室温において平衡状態で生理食塩水を吸水させる場合、40〜4000μmの範囲の直径を有し、少なくとも30重量%の水含量を有するミクロスフィアであって、前記ポリマーマトリクスは下記一般式Iのモノマーを含有するエチレン性不飽和モノマーから形成されることを特徴とする、ミクロスフィア。
YBX (I)
(式中、Yはエチレン性不飽和基H2C=CR−CO−A−であり、
Aは−O−または=NR1であり、
Rは水素またはC1〜4アルキルであり、
R1は水素、C1〜4アルキル、またはBXであり、
Bは直鎖または分岐アルカンジイルであり、
Xは下記一般式IIIの両性イオン基であり、
R5は同じであるか異なり、各R5は、水素又はC1〜4アルキルであり、mは1〜4である。) - 生理食塩水を十分に吸水させる場合、少なくとも50重量%の水含量を有することを特徴とする、請求項1に記載のミクロスフィア。
- 前記ポリマーマトリクスが実質的に非生分解性であることを特徴とする、請求項1または2に記載のミクロスフィア。
- 無菌であることを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載のミクロスフィア。
- 式中、該基R5は、同じであることを特徴とする、請求項4に記載のミクロスフィア。
- 該基R5は、メチルであることを特徴とする、請求項5に記載のミクロスフィア。
- 式中、Rは、水素又はメチルであることを特徴とする、請求項1〜6のいずれかに記載のミクロスフィア。
- 式中、Aは、O又はNHであることを特徴とする、請求項1〜7のいずれかに記載のミクロスフィア。
- 前記エチレン性不飽和モノマーが、下記一般式Vのコモノマーをさらに含有することを特徴とする、請求項1〜8のいずれかに記載のミクロスフィア。
(式中、R10は、水素、ハロゲン、C1〜4アルキル、及び基COOR14から選択され、
R14は、水素及びC1〜4アルキルから選択され、
R11は、水素、ハロゲン、及びC1〜4アルキルから選択され、
R12は、水素、ハロゲン、C1〜4アルキル、及び基COOR14から選択され、但し、R10及びR12は両方ともCOOR14ではなく、
R13は、C1〜10アルキル、C1〜20アルコキシカルボニル、モノ−(C1〜20アルキル)アミノカルボニルもしくはジ−(C1〜20アルキル)アミノカルボニル、C6〜20アリール(アルカリールを含む)、C7〜20アラルキル、C6〜20アリールオキシカルボニル、C1〜20−アラルキルオキシカルボニル、C6〜20アリールアミノカルボニル、C7〜20アラルキル−アミノ、ヒドロキシル、又はC2〜10アシルオキシ基であり、それらはいずれも、ハロゲン原子、アルコキシ、オリゴ−アルコキシ、アリールオキシ、アシルオキシ、アシルアミノ、アミン(モノアルキルアミノ及びジアルキルアミノならびにトリアルキルアンモニウムを含み、アルキル基は置換されていてもよい)、カルボキシル、スルホニル、ホスホリル、ホスフィノ、(モノアルキルホスフィン及びジアルキルホスフィンならびにトリアルキルホスホニウムを含む)、両性イオン、ヒドロキシル基、ビニルオキシカルボニル及びその他のビニル置換基又はアリル置換基、ならびにトリアルコキシシリル基などの反応性シリル基又はシリルオキシ基から選択される1つ以上の置換基を有していてもよく、あるいは、
R13及びR12又はR13及びR11は一緒に、−CONR15COを形成し、R15は、C1〜20アルキル基である。) - 前記コモノマーが非イオン性コモノマーであることを特徴とする、請求項9に記載のミクロスフィア。
- 前記コモノマーがC1〜24アルキル(アルク)−アクリレートもしくは−アクリルアミド、モノヒドロキシ−もしくはジヒドロキシ−C1〜6−アルキル(アルク)−アクリレートもしくは−アクリルアミド、オリゴ(C2〜3アルコキシ)C2〜18−アルキル(アルク)−アクリレートもしくは−アクリルアミド、アクリルアミドスチレン、酢酸ビニル、又はN−ビニルラクタムであることを特徴とする、請求項10に記載のミクロスフィア。
- 前記ポリマーマトリクスが、共有結合によりクロスリンクしていることを特徴とする、請求項1〜11のいずれかに記載のミクロスフィア。
- 前記マトリクスポリマーが、二価以上のエチレン性不飽和モノマーを含有するエチレン性不飽和モノマーから形成されることを特徴とする、請求項12に記載のミクロスフィア。
- 共有結合を形成させるために分子間反応が起こる条件が供される予め形成されたポリマー上の官能基の反応によって、共有結合によるクロスリンクが行われることを特徴とする、請求項12に記載のミクロスフィア。
- 前記マトリクスポリマーが、ポリビニルアルコールをベースとすることを特徴とする、請求項1〜14のいずれかに記載のミクロスフィア。
- 前記ポリビニルアルコールが、ラジカル重合によるペンダントエチレン性不飽和クロスリンク基の反応によりクロスリンクすることを特徴とする、請求項15に記載のミクロスフィア。
- 塞栓を形成するための薬剤であって、
前記薬剤は請求項1〜16のいずれかに記載のミクロスフィアを含有することを特徴とする薬剤。 - 前記薬剤は前記ミクロスフィアを懸濁するのに十分な量の連続水性媒体を含有することを特徴とする、請求項17に記載の薬剤。
- 前記ミクロスフィアが実質的に球状であることを特徴とする、請求項17又は18に記載の薬剤。
- 十分に水を吸水させる場合、前記ミクロスフィアの直径が150〜3000μmの範囲であることを特徴とする、請求項17〜19のいずれかに記載の薬剤。
- 穏やかな攪拌で前記ミクロスフィアが再分散しない範囲で、該ミクロスフィアが合着しないような室温で貯蔵上安定であることを特徴とする、請求項17〜20のいずれかに記載の薬剤。
- 子宮筋腫塞栓形成、腫瘍もしくは腫瘍切除部位周囲における血管の塞栓形成、拡張蛇行静脈もしくは精索静脈瘤の塞栓形成、動静脈奇形もしくは静脈奇形の塞栓形成、胃腸管出血の止血、瘻孔の塞栓形成、又は避妊目的でのファローピウス管もしくは精細管の塞栓形成のために前記組成物を投与することを特徴とする、請求項17〜21のいずれかに記載の薬剤。
- 請求項1〜16に記載のミクロスフィアの複数の集団を各々別の容器に含有するキットであって、該集団は、ミクロスフィアの直径の範囲で異なっていることを特徴とするキット。
- 室温において平衡状態で生理食塩水を吸水させる場合、前記ミクロスフィアの集団の各サイズの範囲が50〜1000μmであることを特徴とする、請求項23に記載のキット。
- 異なる前記集団の直径が、実質的に互いに重複していないことを特徴とする、請求項24に記載のキット。
- 下記一般式Iの両性イオンモノマーと、液状モノマー混合物として混和性コモノマーとを含むエチレン性不飽和モノマーが連続液体溶媒中に分散して分散相を形成する工程、
開始剤を添加して該分散相中でラジカル重合を開始する工程、
及び該分散相にミクロスフィアの形状のポリマーマトリクスを製造する工程、
前記ミクロスフィアを回収する工程
を含むことを特徴とする、請求項1〜16のいずれかに記載のミクロスフィアを製造する方法。
YBX I
(式中、Yは、エチレン性不飽和基H2C=CR−CO−A−であり、
Aは、−O−又はNR1であり、
Rは、水素又はC1〜4アルキルであり、
R1は、水素、C1〜4アルキル、又はBXであり、
Bは、直鎖または分岐アルカンジイルであり
Xは、下記一般式IIIの両性イオン基であり、
R5は同じであるか異なり、各R5は、水素又はC1〜4アルキルであり、mは1〜4である。) - 前記エチレン性不飽和モノマーが2価以上の官能性クロスリンクモノマーを含むことを特徴とする、請求項26に記載の方法。
- 前記モノマー混合物が水を含有することを特徴とする、請求項26又は27に記載の方法。
- 前記モノマー混合物の添加前に、前記非溶媒が油中水型安定剤を含有していることを特徴とする、請求項26〜28のいずれかに記載の方法。
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