JP4374419B2 - 多能性幹細胞培養用の組成物とその使用 - Google Patents

Description

本発明は、多能性幹細胞培養用の組成物とその使用、特に支持細胞や血清が存在しない培地における多能性幹細胞の培養を可能にする組成物及びこれを含有する培地並びにそれらの使用に関する。

多能性幹細胞は、少なくともそれぞれ１種類ずつの外胚葉、中胚葉、内胚葉に属する分化細胞に分化する能力を有する自己複製可能な幹細胞であり、胚性幹細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ：ＥＳ細胞）、胚性生殖細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｇｅｒｍ ｃｅｌｌ：ＥＧ細胞）、胚性癌細胞（ｅｍｂｒｙｏｎａｌ ｃａｒｃｉｎｏｍａ ｃｅｌｌ：ＥＣ細胞）、多能性成体前駆細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ ａｄｕｌｔ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌｓ：ＭＡＰ細胞）、成体多能性幹細胞（ａｄｕｌｔ ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ：ＡＰＳ細胞）などを包含する。以下、これらのうちＥＳ細胞を例に挙げて、本発明を詳細に説明する。
ＥＳ細胞は、初期胚に存在する多能性幹細胞集団に由来する細胞株であって、生殖細胞を含む種々の細胞に分化する能力を有しており、特定の培養条件下で多能性を維持したまま増殖させることができる。このような条件下で培養されたＥＳ細胞を胚盤胞又は桑実胚に注入すると、キメラ動物（２種の異なるゲノムを有する動物）が生成される。遺伝子操作されたＥＳ細胞に由来する生殖細胞を有するキメラ動物を交配することにより、操作された遺伝子を持つ動物個体を作成することができる。このため、ＥＳ細胞は、ノックアウトマウス（特定遺伝子の機能が改変されたマウス）を含むトランスジェニック動物の作成に広く用いられている。また、シャーレ内でＥＳ細胞を分化誘導して特定の分化細胞を得る技術も開発されている。この技術をヒトＥＳ細胞に適用することにより、細胞移植治療に必要な分化細胞が得られることから、将来的には医療の分野におけるＥＳ細胞の利用も期待されている。
以上のように、ＥＳ細胞を分化させることなく、多能性（分化能）を保持したまま増殖又は樹立させる培養技術は、既に開発されている。すなわち、ＥＳ細胞を培養する培地には、通常、血清（例えば、ウシ胎児血清（ｆｅｔａｌ ｃａｌｆ ｓｅｒｕｍ：ＦＣＳ）、ウマ血清、ヤギ血清）を添加する。血清はＥＳ細胞の分化を抑制し、増殖又は樹立を促進する種々の液性因子を供給するものであるが、これらの因子は現在まで同定されていない。また、血清はロット間の変動が大きいので、多大な労力を要する予備スクリーニングによって、適切なものを選別する必要がある。
また、別の培養技術として、ＥＳ細胞は、不活性化して増殖を停止させた胎児性初代培養線維芽細胞やＳＴＯ細胞などを支持細胞として使用し、その上に植えられ培養されている。この際、支持細胞は、ＥＳ細胞付着のためのマトリックスを提供すると共に、ＥＳ細胞の分化を抑制し、増殖を促進する種々の液性因子を放出すると考えられている。そのような液性因子の１つとして白血病阻害因子（ｌｅｕｋｅｍｉａ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｆａｃｔｏｒ：ＬＩＦ）が知られており（米国特許第５，１８７，０７７号）、これは様々な動物に由来するＥＳ細胞の分化抑制能を有するところから、多くの場合、血清、支持細胞、ＬＩＦを組合せて使用している。また、血清含有培地に大量の組換えＬＩＦタンパク質を添加することにより、支持細胞非依存性のＥＳ細胞をゼラチンコートプレート上で培養することも可能とされている（米国特許第５，１６６，０６５号）。
上記したような血清や支持細胞の使用は、ヒトＥＳ細胞に由来する分化細胞を細胞移植治療に応用しようとする際、大きな問題を生じる。すなわち、ヒトＥＳ細胞の培養は、通常、ウシ胎児血清を含む培地を使用して、不活性化したマウス胎児性初代培養線維芽細胞を支持細胞として行なわれてきたが、これら異種動物由来の生体成分は、常に未知病原体の感染源となりうる。また、米国食品医薬局の草案では、異種細胞と共培養されたヒト細胞の移植は異種移植（ｘｅｎｏｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ）と見なされ、被移植者の生活制限がなされることになる。
従って、ＥＳ細胞のような多能性幹細胞の細胞生物学的特性の解析やその医学的応用において、その単離、培養は、異種動物由来の感染源や異種細胞を含まない培地、すなわち支持細胞や血清を含まない、人為的調製が可能な、成分が明らかな培地を使用して行うことが望ましいことは明らかである。
このような要望に答えるべく、種々の研究が行われ、提案がなされてきた。その代表例として、血清を含む培地に大量の組換えＬＩＦタンパク質を添加することにより、支持細胞非依存性のＥＳ細胞をゼラチンコートプレートの上で培養する方法がある（米国特許第５，１６６，０６５号）。また、血清に代えて特定の置換物を含む胚性幹細胞培養用培地（特開２００１−５０８３０２号公報）が提案され、支持細胞の存在下で、血清を含まない培地による培養を可能にしている。しかしながら、大量の組換えＬＩＦタンパク質を培地に供給しても、血清の代わりに特定の置換物を含む、成分が明らかな培地で支持細胞非依存性のＥＳ細胞をゼラチンコートプレート上で安定に培養することは不可能であった。即ち、従来の技術では、血清の代わりに血清置換物を使用して培養すると、支持細胞非依存性多能性幹細胞であっても、ゼラチンコートプレート上で低密度播種条件で増殖又は樹立させることは不可能であった。
また、ＥＳ細胞の樹立や遺伝子操作のためには、低密度播種条件下でさえもＥＳ細胞を増殖させる必要があるが、上記の条件ではその要求を満たさない。

本発明の技術的課題は、このように従来、不可能とされてきた、支持細胞や血清を使用しない、人為的に調製できる成分が明らかな培地による、多能性幹細胞の培養を可能にすることにある。
本発明者らは、上記の課題を解決すべく種々研究を重ねた結果、未分化状態を維持させつつ多能性幹細胞を増殖又は樹立させるにあたり、当該培養をアデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下で行なうことにより、上記課題が解決できる事実を見出し、この知見に基づいて本発明を完成するに至った。
「アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件」を作成する最も典型的な具体例は、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を多能性幹細胞の培養培地に添加又は配合することである。これにより当該培地に支持細胞や血清が存在しなくとも、多能性幹細胞を分化させることなく、その分化能を保持したまま、増殖又は樹立することが可能となる。
従って、本発明の主たる目的は、少なくとも１種のアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を含有する、多能性幹細胞培養用の組成物を提供するにある。他の目的は、そのような組成物を含む、多能性幹細胞培養用の培地を提供するにある。さらに他の目的は、そのような培地を使用する、多能性幹細胞の培養方法を提供するにある。さらにまた他の目的は、上記したような培地で培養し、増殖又は樹立された未分化多能性幹細胞を提供するにある。これら及びその他の目的は、当業者にとって、以下に記載する本発明の詳細な説明から明らかとなろう。
本発明のある態様では、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の少なくとも１種を含有する、多能性幹細胞培養用の組成物が提供される。本発明の組成物は、場合により培地補充物である。本発明の組成物は、多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ、多能性幹細胞を増殖させるためのものである。好ましくは、該アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質は、ＳＱ２２５３６（９−（テトラヒドロ−２−フラニル）−アデニン）、２’，５’−ジデオキシアデノシン、９−シクロペンチルアデニン、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−ジホスフェート、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−モノホスフェート及びＭＤＬ−１２，３３０Ａ（シス−Ｎ−（２−フェニルシクロペンチル）アザシクロトリデセ−１−エン−２−アミン）からなる群から選択されるか、又は、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、脳ナトリウム利尿ペプチド（ＢＮＰ）及び下垂体細胞アデニル酸シクラーゼ活性化ペプチド（ＰＡＣＡＰ）並びにそれらと実質的に同様の生理活性を有するペプチドから選択される。
本発明の別の態様では、上記のいずれかの組成物を含む、多能性幹細胞培養用の培地が提供される。好ましくは、該培地は、支持細胞及び／又は血清を含まない。さらに好ましくは、該培地は、支持細胞及び血清を含まない。これらの培地は、細胞培養用最小培地であり得、また、さらに分化抑制因子、血清置換物及び抗酸化剤を含むことができる。
本発明のさらなる態様では、多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ、多能性幹細胞を増殖又は樹立するための多能性幹細胞の培養方法であって、当該培養をアデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下で行うことを特徴とする方法が提供される。好ましくは、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件は、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものである。また、本培養方法は、上記の培地中で行うことができる。
本発明の培養方法では、好ましくは、多能性幹細胞はＥＳ細胞である。また、多能性幹細胞は哺乳類由来であり得る。さらに、多能性幹細胞はヒト由来であり得る。
さらに、上記の方法により増殖又は樹立させた、多能性を保持する未分化多能性幹細胞が提供される。
本発明のさらなる態様では、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下に未分化状態の多能性幹細胞を培養することを特徴とする、未分化状態の多能性幹細胞クローン集団の調製方法が提供される。さらに、生体から未分化状態の多能性幹細胞を単離し、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下に未分化状態の多能性幹細胞を培養することを特徴とする、未分化状態の多能性幹細胞クローン集団の調製方法が提供される。好ましくは、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件は、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものである。また、本調製方法における培養は、上記の培地中で行うことができる。
好ましくは、本調製方法は、１個の多能性幹細胞を培養してそのクローン細胞集団を得ることを特徴とする。あるいは、本調製方法は、近接する多能性幹細胞同士の相互作用により当該多能性幹細胞の未分化増殖が誘導されるよりも低密度な播種条件にある多能性幹細胞を、上記の培地で培養してそのクローン集団を得ること、又は、支持細胞及び／又は血清が存在せず、かつ、上記の組成物が存在しない条件下では未分化増殖を起こさない多能性幹細胞を、上記の培地で培養してそのクローン集団を得ることを特徴とする。特に好ましくは、１個の多能性幹細胞を上記の培地で培養してそのクローン集団を得ることを特徴とする。
上記の調製方法では、好ましくは、多能性幹細胞はＥＳ細胞である。また、多能性幹細胞は哺乳類由来であり得る。さらに、多能性幹細胞はヒト由来であり得る。
本発明はまた、上記の調製方法で得られる、未分化多能性幹細胞クローン集団を提供する。
本発明の別の態様は、多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ培養し、多能性幹細胞を増殖又は樹立させるための、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質又はアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を含有する組成物の使用である。
本発明により、多能性幹細胞を、血清や支持細胞を用いることなく、成分が明らかな培地で培養し、多分化能を保持した未分化多能性幹細胞を増殖又は樹立させることが可能になる。その結果、増殖又は樹立した多能性幹細胞は、血清や支持細胞に由来する病原体によって汚染されることがなく、又、異種細胞との共培養に基づく特別の制限を回避できることとなる。

図１は、特定ペプチドの補充による血清及び支持細胞不存在下における未分化ＥＳ細胞の増殖を示す図（写真）である。

本明細書において、「多能性」とは、外胚葉、中胚葉、内胚葉に属するいずれの分化細胞にも分化し得る能力、及び外胚葉、中胚葉、内胚葉に属する少なくともそれぞれ１種の分化細胞に分化する能力を意味し、生殖細胞への分化能も、この概念に包含される。
「多能性幹細胞」とは、外胚葉、中胚葉、内胚葉に属するいずれの分化細胞にも分化し得る能力、又は外胚葉、中胚葉、内胚葉に属する少なくともそれぞれ１種類ずつの分化細胞に分化する能力（多分化能）を有する自己複製可能な幹細胞を意味し、ＥＳ細胞、ＥＧ細胞、ＥＣ細胞、ＭＡＰ細胞、ＡＰＳ細胞などが含まれる。その代表例である「胚性幹細胞（ＥＳ細胞）」は、多分化能を有し、他の胚盤胞中に注入されると、生殖細胞をも含む種々の細胞に分化し得る。
「支持細胞」とは、それ自体は増殖できないが、代謝活性を有しており、種々の代謝物質を産生することにより、その上に植えられた他の細胞の増殖を助ける細胞をいう（村松正実ら：「分子細胞生物学辞典」３６７頁（１９９７年）（株）東京化学同人発行参照）。例えば、ＥＳ細胞の場合、不活性化して増殖を停止させた胎児性初代培養繊維芽細胞又はＳＴＯ細胞を支持細胞として使用する。
「支持細胞非依存性多能性幹細胞」とは、血清の存在下、支持細胞を含まない培養条件で増殖し得る多能性幹細胞を意味する。多能性幹細胞は、本来、そのような培養条件では、未分化増殖培養することが困難なものであるが、継代培養を続けることにより、支持細胞非依存性を取得するようになる。
本発明によって提供される多能性幹細胞培養用の組成物は、少なくとも１種のアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を含有することを特徴とする。アデニル酸シクラーゼは、ＡＴＰからｃＡＭＰ（サイクリックＡＭＰ）を生成させる酵素であり、細胞のシグナル伝達における中心的な酵素である。この酵素の活性は、主にＧタンパク質共役型受容体を介してさまざまな細胞外シグナルにより調節され、生じるｃＡＭＰは細胞内第２メッセンジャーとして働く。哺乳動物では、現在までにヒト、マウス、ラット、ウシ、イヌ、ウサギなどで、計１０種類のアデニル酸シクラーゼの存在が報告されている（例えば、Ｐａｔｅｌ，ＴＢ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ ｔｏ ｕｎｒａｖｅｌ ａｄｅｎｙｌｙｌ ｃｙｃｌａｓｅ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎ，Ｇｅｎｅ，２６９，１３−２５，２００１）。ヒトではこのうち９種類について、マウスでは５種類について遺伝子が単離されているが、マウスで単離されたものは全てヒトでもよく配列が保存されていること、及びこれらの分子が細胞増殖制御などの基本的な生命現象に不可欠であることから、多能性幹細胞におけるアデニル酸シクラーゼの機能もこれらの動物種で共有されていると考えられる。
本発明の多能性幹細胞培養用の組成物として使用するアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質は、細胞内及び細胞外シグナル伝達経路のいずれの段階で作用するものであっても、結果的にアデニル酸シクラーゼの活性を抑制するものであればよい。従って、例えば、アデニル酸シクラーゼの活性抑制に至る細胞外シグナルを受容体に与える物質や、アデニル酸シクラーゼを直接阻害する物質が使用でき、受容体とアデニル酸シクラーゼとの間のシグナル伝達を媒介する分子に作用する物質も使用できる。
ある物質が多能性幹細胞のアデニル酸シクラーゼの活性を抑制するか否かを調べるためには、増殖又は樹立させようとする細胞（例えばＥＳ細胞）の培養培地に当該物質を添加し、ｃＡＭＰ生成の抑制度合いを観察すればよい。
アデニル酸シクラーゼを直接阻害する物質の例には、ＳＱ２２５３６（９−（テトラヒドロ−２−フラニル）−アデニン）、２’，５’−ジデオキシアデノシン、９−シクロペンチルアデニン、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−ジホスフェート、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−モノホスフェート、ＭＤＬ−１２，３３０Ａ（シス−Ｎ−（２−フェニルシクロペンチル）アザシクロトリデセ−１−エン−２−アミン）などの化合物が挙げられ、これらはＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ−ＮＯＶＡＢＩＯＣＨＥＭ ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ（Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，ＵＳＡ）などから市販されており、容易に入手できる。これら物質の使用量は、その種類に応じて適宜に決定されてよい。例えば、ＳＱ２２５３６を使用する場合、その培地中の最終濃度は特に限定されるものではないが、普通、１μＭ〜１０ｍＭ、好ましくは１０μＭ〜１ｍＭの最終濃度となるような量で使用する。
多能性幹細胞においてアデニル酸シクラーゼの活性を抑制する物質の他の例としては、次ぎのようなペプチドを挙げることができる：副腎皮質刺激ホルモン（ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ，ａｄｒｅｎｏｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｃ ｈｏｒｍｏｎｅ：ＡＣＴＨ）、脳ナトリウム利尿ペプチド（ｂｒａｉｎ ｎａｔｒｉｕｒｅｔｉｃ ｐｅｐｔｉｄｅ：ＢＮＰ）、下垂体細胞アデニル酸シクラーゼ活性化ペプチド（ｐｉｔｕｉｔａｒｙ ａｄｅｎｙｌａｔｅ ｃｙｃｌａｓｅ ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ：ＰＡＣＡＰ）など。
また、それらペプチドと実質的に同様の生理活性を有するペプチド、すなわち上記ＡＣＴＨ、ＢＮＰ、ＰＡＣＡＰなどのペプチドを構成するアミノ酸配列について一つ又はそれ以上のアミノ酸が欠失、置換及び／又は付加しており、対応する完全長ペプチドと同様の生理活性を有するものも使用することができる。例えば、ＡＣＴＨは、３９個のアミノ酸から成るペプチド（ＡＣＴＨ（１−３９））であって、Ｎ末端１〜２４のアミノ酸は各動物に共通し、２５〜３３のアミノ酸は種によって相違し、Ｎ末端１〜１８に副腎皮質刺激作用があることが知られているが、本発明においては、ＡＣＴＨ（１−３９）に加え、その断片であるＡＣＴＨ（１−２４）、ＡＣＴＨ（１１−２４）なども使用することができる。これらのペプチドは、普通、１ｎＭ〜１００μＭ、好ましくは１〜１０μＭの最終濃度となるような量で使用する。
上記したＡＣＴＨ、ＢＮＰ、ＰＡＣＡＰなど並びにそれらのフラグメント自体はいずれも文献に記載されているか（例えば、米国特許公報第４，４１５，５４６号；今堀和友ら：生化学辞典（第３版）１１７８〜１１７９頁、７２１頁及び２８６〜２８７頁（１９９８）（株）東京化学同人）、又は試薬として市販されているか、若しくは文献記載の方法に準じて製造することが可能なものである。例えば、それらペプチドは、所望のアミノ酸配列を構築するための当業者にとって周知の合成法で作成することができる。また、それらペプチドをコードする遺伝子を大腸菌などの宿主細胞に導入し、ペプチドを発現させ、これを単離、精製する遺伝子操作により製造することもできる。
本発明の組成物は、単一のアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を含んでもよく、複数のアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質をいかなる組合せで含んでもよい。従って、複数の化合物を含む組成物、複数のペプチドを含む組成物、及び化合物とペプチドの両方を含む組成物などを使用できる。あるいは、本発明の組成物は、単一のアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質のみから構成されてもよい。
本発明により、上記組成物を添加した多能性幹細胞培養用の培養培地が提供される。当該組成物は、支持細胞や血清に由来する液性因子の代替物であるから、培養培地に支持細胞や血清が存在しても多能性幹細胞の培養に支障をきたすものではないが、支持細胞や血清が存在すれば、それらに由来する病原体による汚染や、異種移植として特別の制限を回避することができない。従って、好ましくは、培養培地として支持細胞及び／又は血清を含まないものが使用され、より好ましくは、培養培地として支持細胞も血清も含まないものが使用される。
すなわち、本発明の培養培地は、好ましくは細胞培養用最小培地（ｃｅｌｌ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍｉｎｉｍｕｍ ｍｅｄｉｕｍ：ＣＣＭＭ）を基礎培地とし、これに分化抑制因子、血清置換物、抗酸化剤（例えば、２−メルカプトエタノール（２−ＭＥ）、ジチオトレイトール、アスコルビン酸）及び上記した本発明の組成物（すなわち、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質）を含有させたものであって、支持細胞や血清を含有しないものである。それらＣＣＭＭ、分化抑制因子、血清置換物、抗酸化剤及び本発明の組成物は、以下に説明するように、いずれも人為的に調製することの可能な、既知物質であるから、それらによって構成される本発明の培養培地は、生体成分の使用に起因する未知病原体による汚染を回避することができるものである。
基礎培地として使用する「細胞培養用最小培地（ＣＣＭＭ）」は、これに分化抑制因子、血清置換物、抗酸化剤及び本発明の組成物を含有させた場合、多能性幹細胞の未分化増殖を可能にする任意の培地を意味する。
ＣＣＭＭには、通常、標準無機塩（亜鉛、鉄、マグネシウム、カルシウム、カリウムなど）、ビタミン、グルコース、緩衝系、必須アミノ酸などを添加する。その具体例としては、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ），Ｍｉｎｉｍａｌ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ），Ｂａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ（ＢＭＥ），ＲＰＭＩ１６４０，Ｆ−１０，Ｆ−１２，αＭｉｎｉｍａｌ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（αＭＥＭ），Ｇｌａｓｇｏｗ’ｓ Ｍｉｎｉｍａｌ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（ＧＭＥＭ），Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍなどを挙げることができ、市販のものが使用されてもよい。
最も好ましいＣＣＭＭは、表１の組成のＧＭＥＭである。

好ましくは、ＣＣＭＭには、０．１ｍＭ非必須アミノ酸及び１ｍＭピルビン酸ナトリウムを加える。非必須アミノ酸はＬ−アラニン、Ｌ−アスパラギン、Ｌ−アスパラギン酸、Ｌ−グルタミン酸、グリシン、Ｌ−プロリン、Ｌ−セリンの混合物で、例えばＭＥＭ ｎｏｎ−ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄｓ ｓｏｌｕｔｉｏｎ １０ｍＭ ｌｉｑｕｉｄ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）として市販されているものを使用する。ピルビン酸ナトリウムは、例えばＭＥＭ Ｓｏｄｉｕｍ ｐｙｒｕｖａｔｅ ｓｏｌｕｔｉｏｎ １００ｍＭ ｌｉｑｕｉｄ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）として市販されているものを使用する。
分化抑制因子は、支持細胞及び多能性幹細胞自身が放出する液性因子であり、未分化細胞の分化を抑制する。代表的な分化抑制因子としては、白血病阻害因子（ＬＩＦ）が挙げられる。分化抑制因子は、元来、生体に存在する物質であるから、生体からの採取も不可能ではないが、病原体の汚染を避けるためにも、又、経済的にも、人為的に合成されるものを使用するのが好ましい。例えば、ＬＩＦのようなタンパク質性の分化抑制因子の場合、遺伝子操作によって製造される組換え分化抑制因子タンパク質を使用するのが好ましい。
抗酸化剤としては、２−メルカプトエタノール、ジチオトレイトール、アスコルビン酸などが使用可能であるが、通常は２−メルカプトエタノールを使用する。これらの物質は市販されており、容易に入手できる。
血清置換物は、これを無血清培養培地に添加することにより、多能性幹細胞の増殖を支持し得る物質を意味する。血清置換物は、単一物質であっても、混合物であってもよく、具体的にはアルブミン（例えば、ウシ血清アルブミン）又はアルブミン置換物（例えば、ウシ下垂体抽出物、コメ加水分解物、ウシ胎児アルブミン、卵アルブミン、ヒト血清アルブミン、ウシ胚抽出物、ＡｌｂｕＭＡＸ Ｉ（登録商標））、アミノ酸（例えば、グリシン、Ｌ−アラニン、Ｌ−アスパラギン、Ｌ−システイン、Ｌ−アスパラギン酸、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−フェアラニン、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−リジン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−グルタミン、Ｌ−アルギニン、Ｌ−メチオニン、Ｌ−プロリン、Ｌ−ヒドロキシプロリン、Ｌ−セリン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−チロシン、Ｌ−バリン）、ビタミン、トランスフェリン又はトランスフェリン置換物（例えば、エチレンジアミンテトラ酢酸、エチレングリコール−ビス（β−アミノエチルエーテル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラ酢酸、デフェロキサミンメシレート、ジメルカプトプロパノール、ジエチレントリアミンペンタ酢酸、トランス−１，２−ジアミノシクロヘキサン−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラ酢酸のような鉄キレート物、クエン酸第２鉄キレート物、硫酸第１鉄キレート物などの鉄キレート化合物）、抗酸化剤（例えば、還元型グルタチオン、アスコルビン酸−２‐−リン酸塩）、インスリン又はインスリン置換物（例えば、塩化亜鉛、硝酸亜鉛、臭化亜鉛、硫酸亜鉛などの亜鉛含有化合物）、コラーゲン前駆体（例えば、Ｌ−プロリン、Ｌ−ヒドロキシプロリン、アスコルビン酸）及び微量元素（例えば、Ａｇ^＋、Ａｌ^３＋、Ｂａ^{２ ＋}、Ｃｄ^２＋、Ｃｏ^２＋、Ｃｒ^３＋、Ｇｅ^４＋、Ｓｅ^４＋、Ｂｒ⁻、Ｉ⁻、Ｍｎ^２＋、Ｆ⁻、Ｓｉ^４＋、Ｖ^５＋、Ｍｏ^６＋、Ｎｉ^２＋、Ｒｂ^＋、Ｓｎ^２＋、Ｚｒ^４＋）から選択される１種又はそれ以上の成分を含有するものである。
なお、血清置換物の一例は、特表２００１−５０８３０２号公報に「無血清真核生物細胞培養培地補充物」として詳記されており、当該公報の記載を参酌して血清置換物の組成を適宜に決定すればよい。代表的な血清置換物は、胚性幹細胞血清置換（ＫＳＲ）としてＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社から販売されており、容易に入手可能である。
上記ＬＩＦ、２−ＭＥ及びＫＳＲは、培養培地中において、それぞれ通常、１〜１００００ｕｎｉｔ／ｍｌ、１〜１０００μＭ、及び０．５〜９０％（ｖ／ｖ）の最終濃度、好ましくは１００〜１０００ｕｎｉｔ／ｍｌ、１０〜１００μＭ、及び５〜２０％の最終濃度となるような量で使用する。本発明の組成物及びこれらの各添加成分は、培地に対して最初から目的の最終濃度となるような量で添加されてもよく、２回又はそれ以上の回数に分けて添加し、最終的に目的の濃度となるような量で使用されてもよい。培養培地は、通常、ｐＨを重炭酸塩により７．０〜８．２、好ましくは７．３〜７．９に調節して使用される。
本発明の組成物及び培養培地は、それぞれ溶液形態又は乾燥形態に調製されてよい。溶液形態の場合、濃縮組成物（例えば１ｘ〜１０００ｘ）として提供されてもよく、使用に際して、適宜に希釈されてもよい。溶液形態又は乾燥形態の組成物又は培養培地を希釈又は溶解するのに使用する液体の種類は、水、緩衝水溶液、生理食塩水溶液などがあり、必要に応じて容易に選択され得る。
好ましくは、本発明の組成物又は培養培地を滅菌して、コンタミネーションを防止する。滅菌方法には、紫外線照射、加熱滅菌、放射線照射及び濾過などがある。
本発明により、多能性幹細胞を培養して、分化能を保持したまま、未分化増殖を行うには、上記した本発明の培養培地、好ましくは細胞培養用最小培地に白血病阻害因子、抗酸化剤、血清置換物及び本発明組成物を含有させてなる培地を使用して、多能性幹細胞を、この分野で採用されている通常の培養条件下で培養すればよい。
多能性幹細胞は、ヒト、サル、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、モルモット、ウシ、ブタ、イヌ、ウマ、ネコ、ヤギ、ヒツジを含む哺乳類、鳥類、爬虫類などの多様な動物に由来するものを使用し得るが、通常は、哺乳類に由来するものである。多能性幹細胞の具体例としては、ＥＳ細胞、ＥＧ細胞、ＥＣ細胞、ＡＰＳ細胞、ＭＡＰ細胞などを挙げることができる。繁用される典型例は、マウスのＥＳ細胞である。培養する多能性幹細胞の数に特に限定はないが、本発明の培養方法は、特に１個の多能性幹細胞を培養して増殖させ、クローン細胞集団を形成させることを可能にする点で有利である。
培養すべき多能性幹細胞は、それ自体、支持細胞依存性のものでもよいが、支持細胞非依存性であるものが好ましい。支持細胞依存性多能性幹細胞を支持細胞非依存性にするには、次のように処理すればよい。すなわち、支持細胞を使用しない培養条件で、数次にわたる継代操作を行い、このような条件に適合した細胞を選択する。
本発明による多能性幹細胞の培養方法における具体的な操作は、培養条件を含め、当該技術分野で常套の操作及び条件に従って、これを行うことができる。例えば、中辻憲夫編：実験医学別冊・ポストゲノム時代の実験講座４「幹細胞・クローン研究プロトコール」、羊土社（２００１年）、Ｈｏｇａｎ，Ｇ．ら編：マウス胚の操作：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｐｌａｉｎｖｉｅｗ，ＮＹ（１９９４）、Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ，Ｅ．Ｊ．編：奇形ガン及び胚性幹細胞、Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ，ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ Ｏｘｆｏｒｄ，ＵＫ（１９８７）などの記載を参酌して適宜に決定することができる。
代表的な継代操作と培養条件を挙げれば、以下のとおりである。すなわち、ＥＳ細胞を継代するには、まず成育したＥＳ細胞のコロニーをリン酸緩衝化生理食塩水（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ：ＰＢＳ）で１〜２回リンスし、その後十分量のトリプシン−ＥＤＴＡ溶液（０．２５％トリプシン−１ｍＭＥＤＴＡ、ＰＢＳ中）を細胞層を覆うように添加して５分間放置する。その後、トリプシン阻害剤を含むＰＢＳ又は血清を含むＥＳ細胞培養用基礎培養液（ＣＣＭＭ＋ＬＩＦ＋２−ＭＥ）を添加し、ピペッティングにより細胞塊を分離する。この細胞懸濁液から、通常遠心分離により細胞を沈殿させる。上清を除去後、沈殿した細胞を血清又は血清置換物を含むＥＳ細胞培養用基礎培養液に再懸濁し、この一部を支持細胞層又はゼラチン化したプラスチックプレート内に播種し、３７℃、５％ＣＯ_２下で培養する。
本発明方法の一つの実施態様として、０．１％（ｗ／ｖ）ゼラチン溶液で処理してゼラチン化したプラスチックプレート内に３７℃に温めた本発明の培養培地を入れ、そこにプレート面積１ｃｍ^２当り１０〜１０００個の多能性幹細胞を播く。プレートをＣＯ_２インキュベーター内に置き、３７℃、５％ＣＯ_２下で培養する。コロニーが成育したら（例えば、Ｅ１４ｔｇ２ａ細胞では７日以内）、新しい培地に播き直し、継代する。継代に際しては、トリプシン阻害剤を含むＰＢＳを使用することが望ましい。
近接する多能性幹細胞同士の相互作用により当該多能性幹細胞の未分化増殖が誘導されるよりも低密度な播種条件とは、具体的には、細胞１個／ｍｍ^２以下の播種条件などが好適なものとして例示される。均一な多能性幹細胞系統の樹立や、遺伝子操作を行った多能性幹細胞の増殖に際し、１つの多能性幹細胞からそのクローン細胞集団を得る工程などは、勿論この条件に該当する。
本発明の好ましい実施態様においては支持細胞や血清が使用されないから、通常の培養方法で行われる血清のロットのスクリーニング、支持細胞の選択及び培養を省くことができる。また、本発明による成分が明らかな培養培地を使用した場合、ゼラチンコートプレート上で低密度播種条件下に単一の支持細胞非依存性多能性細胞を未分化状態で増殖させることが可能である。
なお、本発明は、支持細胞と血清を使用しない細胞培養培地に添加することにより、多能性幹細胞の未分化増殖を可能ならしめるような物質のスクリーニング方法をも提供する。すなわち、細胞培養用最小培地に白血病阻害因子、血清置換物、抗酸化剤及び候補物質を添加してなる培養培地を使用して、支持細胞非依存性の多能性幹細胞（例えばマウスのＥＳ細胞）を培養し、当該多能性幹細胞の未分化コロニーの生成の有無を確認し、顕著な陽性を示すものを本発明により選択するものである。
未分化コロニーの形成は、例えばライシュマン（Ｌｅｉｓｃｈｍａｎ）染色を含むタンパク質染色を使用して形態的に確認できる。また、アルカリフォスファターゼ、ＳＳＥＡ−１、３、４抗原などの未分化細胞マーカーの存在を抗体で確認することも可能である。さらに、Ｏｃｔ−３／４遺伝子やＲｅｘ−１遺伝子の発現も、未分化細胞に特徴的であるから、確認手段として採用されてもよい。通常は、これらの方法を複数組合せて未分化であることを確認する。
上記スクリーニング法を実施する場合の標準培養培地の組成と培養条件は次のとおりである：
標準培養培地の組成：
ＧＭＥＭ、１０％ＫＳＲ、１０μＭ２−ＭＥ、１０００Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ、
０．１ｍＭ非必須アミノ酸、１ｍＭピルビン酸ナトリウム
培地に播種する多能性幹細胞の数：
培養面積１ｃｍ^２当り培養液１ｍｌを使用し、１００個を播種する。
培養条件：３７℃、５％ＣＯ_２
確認及び観察手段：
７日後に培地を観察し、多能性幹細胞の未分化コロニーの数（／１ｃｍ^２）により、次のとおり判定する：

本発明の培養方法によって、１個の多能性幹細胞を培養して増殖させ、クローン細胞集団を形成させることができる。このことは、ゲノムを改変した多能性幹細胞の集団が必要な場合、例えばトランスジェニック動物を作成する場合に、有利である。
多能性幹細胞の代表例であるＥＳ細胞を培養するための培地としては、従来、細胞培養用最小培地に、（１）白血病阻害因子、（２）血清、（３）２−メルカプトエタノール、（４）支持細胞を添加したものが使用されてきた。ただし、（１）〜（３）が含有されている場合には、（４）の存在は必須ではなく、ゼラチンでコートしたプレート上に支持細胞非依存性ＥＳ細胞を直接付着させて培養することも可能である。また、（４）の存在を前提とした場合、（２）を（５）血清置換物で置換することができ、血清自体を使用しないＥＳ細胞の培養が可能となる。本発明は、このような血清が使用されない培地に対し、さらに（６）アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を添加することにより、（４）支持細胞の不存在下にＥＳ細胞を培養することを可能ならしめた。
以上、本発明は、「アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件」が、培地に対してアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を添加又は配合する場合を例に挙げて説明されたが、そのような条件を他の適宜の方法で作りだすことも可能である。例えば、多能性幹細胞におけるアデニル酸シクラーゼ遺伝子の発現を抑制する方法（例えばｍＲＮＡやＲＮＡｉを使用）や、遺伝子操作でアデニル酸シクラーゼ活性を阻害する分子を発現させる方法（例えば拮抗型変異体を使用）が採用されてもよい。
本発明の別の態様では、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の少なくとも１種を含有する、多能性幹細胞培養用の培地補充物が提供される。好ましくは、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質は、ＳＱ２２５３６（９−（テトラヒドロ−２−フラニル）−アデニン）、２’，５’−ジデオキシアデノシン、９−シクロペンチルアデニン、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−ジホスフェート、２’，５’−ジデオキシアデノシン３’−モノホスフェート及びＭＤＬ−１２，３３０Ａ（シス−Ｎ−（２−フェニルシクロペンチル）アザシクロトリデセ−１−エン−２−アミン）からなる群から選択されるか、あるいは副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、脳ナトリウム利尿ペプチド（ＢＮＰ）及び下垂体細胞アデニル酸シクラーゼ活性化ペプチド（ＰＡＣＡＰ）並びにそれらと実質的に同様の生理活性を有するペプチドから選択される。
本発明のさらなる態様では、上記の培地補充物を含む、多能性幹細胞培養用の培地が提供される。好ましくは、該培地は、支持細胞及び／又は血清を含まず、より好ましくは、該培地は、支持細胞及び血清を含まない。該培地は、細胞培養用最小培地を基礎培地とすることができる。該培地は、さらに分化抑制因子、血清置換物及び抗酸化剤を含んでもよい。
本発明の他の態様では、多能性幹細胞を培養して未分化多能性幹細胞を増殖させるにあたり、当該培養をアデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下で行うことを特徴とする、多能性幹細胞の培養方法が提供される。本方法では、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件がアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものであり得る。また、該培養を上記の培地で行うことができる。本方法では、１個の多能性幹細胞を培養してそのクローン細胞集団を得ることができ、また、支持細胞及び／又は血清が存在せず、かつ、上記の培地補充物が存在しない条件下では未分化増殖を起こさない多能性幹細胞を、上記の培地で培養してそのクローン集団を得ることができる。好ましくは、本方法では１個の多能性幹細胞を上記の培地で培養してそのクローン集団を得る。本方法では、多能性幹細胞は、ＥＳ細胞であり得、また、多能性幹細胞は哺乳類由来のものであり得る。さらに、多能性幹細胞はヒト由来でもよい。
本発明のさらなる態様では、上記の培養方法で増殖させた、多能性を保持する未分化多能性幹細胞が提供される。
本発明の別の態様では、多能性幹細胞を培養して未分化多能性幹細胞を樹立させるにあたり、当該培養をアデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下で行うことを特徴とする、多能性幹細胞の培養方法が提供される。本方法では、アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件がアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものであり得る。また、該培養を上記の培地で行うことができる。本方法では、多能性幹細胞は、ＥＳ細胞であり得、また、多能性幹細胞は哺乳類由来のものであり得る。さらに、多能性幹細胞はヒト由来でもよい。
本発明のさらなる態様では、上記の培養方法で樹立させた、多能性を保持する未分化多能性幹細胞が提供される。
以下の実施例は、そのような血清も支持培地も使用しない、すべて明らかな成分で調製された培地により、ＥＳ細胞を培養することが可能であることを証明するものである。本発明はこれらの実施例によりなんら限定されるものではない。

細胞培養最小培地として、グラスゴウ最少必須培地（Ｇｌａｓｇｏｗ ｍｉｎｉｍｕｍ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｍｅｄｉｕｍ：ＧＭＥＭ；Ｓｉｇｍａ社）を使用し、これに（１）１ｘ１０^３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ（ＥＳＧＲＯ，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）、（３）０．１μＭ ２−メルカプトエタノール（ナカライテスク社）、（５）１０％（ｖ／ｖ）ＫＳＲ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を添加した培養液１ｍｌで、１００個の支持細胞非依存性ＥＳ細胞（Ｅ１４ｔｇ２ａ（Ｈｏｏｐｅｒ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２５，２９２（１９８７））、ＣＧＲ８（Ｍｏｕｎｔｆｏｒｄ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９１，４３０３（１９９４））及びそれから派生したＥＳ細胞）を、０．１％（ｗ／ｖ）ゼラチン溶液で処理して、ゼラチン化した１２ウェルプレートの１ウェル内で、３７℃、５％ＣＯ_２下で培養した。
培養５日目以降に、培養液を吸引除去後、プレート面を覆う量のライシュマン（Ｌｅｉｓｃｈｍａｎ）染色液（１．５ｇ Ｌｅｉｓｃｈｍａｎ Ｓｔａｉｎｉｎｇ：Ｓｉｇｍａ社／Ｌメタノール）を加え、室温で１０分間保持し、水洗した（ライシュマン染色）。青染したコロニーを肉眼又は光学顕微鏡で観察した結果、形態的に未分化状態を維持したコロニーの形成は、全く認められなかった（図１（ｇ））。この組成の培養液に、さらに（２）０．３％（ｖ／ｖ）ＦＣＳを添加して培養すると、平均１７個の未分化コロニー形成が認められた（図１（ｄ））。このことから、（１）＋（３）＋（５）の組成では、（２）ＦＣＳに含まれる未分化コロニー形成に必須な成分が欠如していると考えられた。また、同じ培養液組成（（１）＋（３）＋（５））で、ウェル当り１０００個以上のＥＳ細胞を培養すると、未分化コロニーの形成が認められた。この高密度培養上清（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｍｅｄｉｕｍ：ＣＭ）を最終濃度１０％（ｖ／ｖ）で培養液に添加して、ウェル当り１００個のＥＳ細胞を培養すると、平均７個の未分化コロニーの形成が認められた（図１（ｆ））。このことは、ＥＳ細胞自身が未分化コロニー形成に必須な成分を分泌していることを示す。
そこで、種々の既知成長因子、サイトカイン、ペプチドホルモンなどから選択された候補ペプチドを（１）＋（３）＋（５）を含む培地に添加し、ＥＳ細胞を３７℃、５％ＣＯ_２下で培養して、その未分化コロニー形成能を観察した。その結果、１μＭ副腎皮質刺激ホルモン、１μＭ脳ナトリウム利尿ペプチド及び１μＭ下垂体細胞アデニル酸シクラーゼ活性化ペプチドを添加した培地において、形態的に明らかなＥＳ細胞の未分化コロニーの形成が認められた（図１（ｅ）；ペプチドとしてＡＣＴＨを使用）。なお、図１（ａ）〜（ｃ）は、ＧＭＥＭとＬＩＦと２−ＭＥからなる培地にそれぞれＦＣＳ＋支持細胞、ＫＳＲ＋支持細胞及びＦＣＳを添加した場合を示す。
これらのペプチドホルモンの補充によって未分化コロニーを形成したＥＳ細胞では、未分化状態のマーカーであるアルカリフォスファターゼ活性染色試験で陽性であり（図１）、未分化細胞特異的に発現する転写因子Ｏｃｔ−３／４の発現も、相同遺伝子組換え法で導入したレポーター遺伝子の活性により確認された。従って、これらのペプチドは、ＦＣＳやＣＭのように未分化コロニー形成支持能を有するものと理解される。

上記実施例１において、試験した候補ペプチドのうちで最も低濃度で活性を示したＡＣＴＨ及びそのフラグメントを用いて、その有意性を検討した。上記同様、細胞培養最小培地に（１）ＬＩＦ、（３）２−ＭＥ及び（５）ＫＳＲを添加した培養培地に、ＡＣＴＨ又はそのフラグメントを最終濃度１μＭで添加したとき、ＡＣＴＨ（１−３９）、ＡＣＴＨ（１−２４）、ＡＣＴＨ（１１−２４）は活性を示したが、ＡＣＴＨ（１８−３９）は活性を示さなかった。また、活性を示したもののうちではＡＣＴＨ（１−２４）が最も強い活性を示し、最終濃度０．１μＭでも未分化コロニー形成を支持した。また、１０μＭ ＡＣＴＨ（１−２４）を添加した条件での未分化コロニー形成率及び細胞増殖速度は、０．３％ＦＣＳもしくは１０％ＣＭ添加時と同等であった。
以上の結果から、基礎培地としての細胞培養最小培地に、（１）ＬＩＦ、（３）２−ＭＥ、（５）ＫＳＲ＋（６）ＡＣＴＨ等のペプチドホルモンを添加したものは、血清や支持細胞がなくとも、多能性を維持した未分化状態でＥＳ細胞を増殖させることが可能であることが理解できる。

ＡＣＴＨが細胞内にどのようなシグナルを伝達する結果、血清や支持細胞の非存在下で多能性を維持した未分化状態でＥＳ細胞を増殖させるのかを解明するために、各種シグナル伝達阻害物質を培地に添加して、ＥＳ細胞の増殖を観察した。
ＡＣＴＨは、Ｇタンパク質共役受容体ファミリーに属するＡＣＴＨ受容体を活性化し、ＡＣＴＨ受容体は、Ｇ_αｓサブユニットを含む三量体Ｇタンパク質の活性化を介してアデニル酸シクラーゼを活性化することが知られている。そこで、（１）１ｘ１０^３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ、（３）０．１μＭ ２−ＭＥ、（５）１０％（ｖ／ｖ）ＫＳＲ、及び（６）１０μＭ ＡＣＴＨを添加した細胞培養最小培地に、さらにアデニル酸シクラーゼ阻害剤である（７）ＳＱ２２５３６（９−（テトラヒドロ−２−フラニル）−アデニン）（Ｓｉｇｍａ）１００μＭを添加し、その培地を使用して実施例１と同様にＥＳ細胞を培養した。その結果、予想に反して培養７日目の未分化コロニーの形成は全く阻害されず、むしろ個々のコロニーが顕著に大きくなった。
ＳＱ２２５３６単独の効果を調べるために、（１）１ｘ１０^３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ、（３）０．１μＭ ２−ＭＥ、（５）１０％（ｖ／ｖ）ＫＳＲ、及び（７）ＳＱ２２５３６ １００μＭを添加した細胞培養最小培地を使用して、実施例１と同様にＥＳ細胞を培養した。その結果、ＡＣＴＨを添加した場合と同様に、平均９個の未分化コロニーの形成が認められた。また、ＳＱ２２５３６の代りに、別のアデニル酸シクラーゼ阻害剤である２’，５’−ジデオキシアデノシン（Ｓｉｇｍａ）５００μＭを添加した培地を使用しても、平均８個の未分化コロニーの形成が認められた。これらの結果から、アデニル酸シクラーゼ活性の抑制が、未分化コロニー形成を導くことが明らかになった。
Ｇタンパク質共役型受容体によるアデニル酸シクラーゼの抑制は、通常、リガンド結合によるＧ_αｉサブユニットを含む三量体Ｇタンパク質の活性化を介して起こる。ＡＣＴＨの効果がこのシグナル伝達経路を介するものであるか否かを確認するために、（１）１ｘ１０^３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ、（３）０．１μＭ ２−ＭＥ、（５）１０％（ｖ／ｖ）ＫＳＲ、及び（６）１０μＭ ＡＣＴＨを含む細胞培養最小培地に、Ｇ_αｉの阻害剤である百日咳毒素を最終濃度１００ｎｇ／ｍｌで添加し、その培地を使用して実施例１と同様にＥＳ細胞を培養した。その結果、ＡＣＴＨの効果が抑制され、未分化コロニーの大きさが著しく減少した。このことは、ＡＣＴＨの未分化コロニー形成支持効果が、Ｇ_αｉの活性化を介することを示す。また、ＡＣＴＨ受容体はＧ_αｓと共役するので、ＥＳ細胞においてはＡＣＴＨはその特異的受容体とは異なるＧタンパク質共役型受容体と結合することが示唆される。
以上の結果から、ＡＣＴＨによる未分化コロニー形成支持作用は、以下のシグナル伝達経路を通じて起こることが判明した。▲１▼Ｇ_αｉと共役するＧタンパク質共役型受容体にＡＣＴＨが結合し、▲２▼Ｇ_αｉが活性化され、そして▲３▼アデニル酸シクラーゼの活性が抑制される。従って、血清及び支持細胞を含まない培地中でＥＳ細胞を未分化のまま増殖させるためには、アデニル酸シクラーゼの活性を抑制する方法であれば、どのような方法を採用してもよいことが理解できる。

上記実施例１において、１ｎＭ副腎皮質刺激ホルモンを使用して培養して得られた未分化コロニー由来のＥＳ細胞を、さらに２回継代した後、これらをマウスの胚盤胞に注入し、偽妊娠雌マウス子宮に移植した。その結果、１００個の移植胚から３３匹の産仔が得られ、３０匹が生後３週以降も生存していたが、これらのうち１７匹は毛色上７０％以上のＥＳ細胞寄与率を示す良好なキメラマウスであった。またこの１７匹のうち１４匹は雄であり、所謂ｍａｌｅ ｄｉｓｔｏｒｔｉｏｎが確認され、それらの交配実験により、生殖細胞系列へのＥＳ細胞の寄与が確認された。このことから、本培養条件が、ＥＳ細胞の多能性を維持するのに十分であることが証明された。

Ｃ５７ＢＬ／６純系マウスから受精後３．５日の胚盤胞期胚３０個を採取し、これから免疫手術法によって単離した内部細胞塊を、それぞれｆｉｂｒｏｎｅｃｔｉｎでコートしたプレート内で、ＣＣＭＭ、（１）１ｘ１０^３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦ、（３）０．１μＭ ２−ＭＥ、０．１ｍＭ非必須アミノ酸、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、（５）１０％（ｖ／ｖ）ＫＳＲ及び（６）１０μＭ ＡＣＴＨからなる培養液で培養した。この結果、少なくとも２つの内部細胞塊は増殖を開始し、最終的にＥＳ細胞株として樹立されるに至った。これにより、この培養法が既に樹立されたＥＳ細胞の培養のみならず、新たなＥＳ細胞株の樹立にも有用であることが証明された。

Claims (27)

1. アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の少なくとも１種を含有する、多能性幹細胞培養用の組成物。
2. 培地補充物である、請求項１記載の組成物。
3. 多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ、多能性幹細胞を増殖させるための、請求項１又は請求項２記載の組成物。
4. アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質が、ＳＱ２２５３６（９−（テトラヒドロ−２−フラニル）−アデニン）、２',５'−ジデオキシアデノシン、９−シクロペンチルアデニン、２',５'−ジデオキシアデノシン３'−ジホスフェート、２',５'−ジデオキシアデノシン３'−モノホスフェート及びＭＤＬ−１２,３３０Ａ（シス−Ｎ−（２−フェニルシクロペンチル）アザシクロトリデセ−１−エン−２−アミン）からなる群から選択される、請求項１ないし請求項３のいずれかに記載の組成物。
5. アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質が、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、脳ナトリウム利尿ペプチド（ＢＮＰ）及び下垂体細胞アデニル酸シクラーゼ活性化ペプチド（ＰＡＣＡＰ）から選択される、請求項１ないし請求項３のいずれかに記載の組成物。
6. 請求項１ないし請求項５のいずれかに記載の組成物を含む、多能性幹細胞培養用の培地。
7. 支持細胞及び／又は血清を含まない、請求項６に記載の培地。
8. 支持細胞及び血清を含まない、請求項６に記載の培地。
9. 細胞培養用最小培地である、請求項６ないし請求項８のいずれかに記載の培地。
10. さらに分化抑制因子、血清置換物及び抗酸化剤を含む、請求項６ないし請求項９のいずれかに記載の培地。
11. 多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ、多能性幹細胞を増殖又は樹立するための多能性幹細胞の培養方法であって、当該培養をアデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下で行うことを特徴とする、方法。
12. アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件がアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものである、請求項１１記載の培養方法。
13. 培養を請求項６ないし請求項１０のいずれかに記載の培地で行う、請求項１１又は請求項１２記載の培養方法。
14. 多能性幹細胞がＥＳ細胞である、請求項１１ないし請求項１３のいずれかに記載の培養方法。
15. 多能性幹細胞が哺乳類由来のものである、請求項１１ないし請求項１４のいずれかに記載の培養方法。
16. 多能性幹細胞がヒト由来のものである、請求項１５に記載の培養方法。
17. アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件下に未分化状態の多能性幹細胞を培養することを特徴とする、未分化状態の多能性幹細胞クローン集団の調製方法。
18. アデニル酸シクラーゼ活性を抑制する条件がアデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用を伴うものである、請求項１７記載の調製方法。
19. 培養を請求項６ないし請求項１０のいずれかに記載の培地で行う、請求項１７又は請求項１８記載の調製方法。
20. １個の多能性幹細胞を培養してそのクローン集団を得る、請求項１７ないし請求項１９のいずれかに記載の調製方法。
21. 近接する多能性幹細胞同士の相互作用により当該多能性幹細胞の未分化増殖が誘導されるよりも低密度な播種条件にある多能性幹細胞を、請求項７又は請求項８に記載の培地で培養してそのクローン集団を得る、請求項１７ないし２０のいずれかに記載の調製方法。
22. １個の多能性幹細胞を請求項７又は請求項８に記載の培地で培養してそのクローン集団を得る、請求項１７ないし請求項２１のいずれかに記載の調製方法。
23. 多能性幹細胞がＥＳ細胞である、請求項１７ないし請求項２２のいずれかに記載の調製方法。
24. 多能性幹細胞が哺乳類由来のものである、請求項１７ないし請求項２３のいずれかに記載の調製方法。
25. 多能性幹細胞がヒト由来のものである、請求項１７ないし請求項２４のいずれかに記載の調製方法。
26. 多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ培養し、多能性幹細胞を増殖又は樹立させるための、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質の使用。
27. 多能性幹細胞の未分化状態を維持させつつ培養し、多能性幹細胞を増殖又は樹立させるための、アデニル酸シクラーゼ活性抑制物質を含有する組成物の使用。

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