JP4286256B2 - Bence Jones protein assay - Google Patents

Bence Jones protein assay Download PDF

Info

Publication number
JP4286256B2
JP4286256B2 JP2005516435A JP2005516435A JP4286256B2 JP 4286256 B2 JP4286256 B2 JP 4286256B2 JP 2005516435 A JP2005516435 A JP 2005516435A JP 2005516435 A JP2005516435 A JP 2005516435A JP 4286256 B2 JP4286256 B2 JP 4286256B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
ratio
bjp
protein
electrophoresis
immunoassay
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2005516435A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPWO2005062044A1 (en
Inventor
貴成 中野
篤雄 長田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Yamasa Corp
Original Assignee
Yamasa Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yamasa Corp filed Critical Yamasa Corp
Publication of JPWO2005062044A1 publication Critical patent/JPWO2005062044A1/en
Application granted granted Critical
Publication of JP4286256B2 publication Critical patent/JP4286256B2/en
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6854Immunoglobulins
    • G01N33/6857Antibody fragments

Description

本発明は、尿蛋白電気泳動法とイムノアッセイとを併用した尿中ベンスジョーンズ蛋白質の効率的な検定法に関するものである。  The present invention relates to an efficient assay method for urinary Bence Jones protein using a combination of urine protein electrophoresis and immunoassay.

イムノグロブリン重鎖と解離した状態のモノクローナルな遊離イムノグロブリン軽鎖(Free light chain:FLC)は、形質細胞異常などの血液疾患、特に多発性骨髄腫やマクログロブリン血症に見い出されるモノクローナル蛋白質(M蛋白質)の1つである(Br.J.Haematol.,1969,16,599−606)。
1847年、Henry Bence Jonesは患者尿の特異な熱凝集反応を発見し、その原因となったタンパク質をベンスジョーンズ蛋白質(Bence Jones protein:BJP)と命名した(Lancet,1847,2,88−92)。その本態は尿中のモノクローナルなFLCであることが、後に明らかとなった。
BJPは多発性骨髄腫などの有用な臨床マーカーであり、その検定は日常の臨床検査の1つの項目として実施されている。BJPは、分子量が小さく、糸球体を容易に通過し、そのほとんどが尿中に移行するため、実際の臨床検査の場においては、尿中のBJPを電気泳動法で検出している(DRG/PPS対応 臨床検査ガイドライン 第2次案,2000,p.78−82)。
電気泳動法によるBJPの測定を、一般に“スクリーニングアッセイ”もしくは単に“スクリーニング”と称している。通常、ヒト検体中のイムノグロブリンはポリクローナルな組成であるため、電気泳動を実施した場合、検体中のイムノグロブリンはブロードなバンドを示す。一方、M蛋白質は単一な電荷を持ち、シングルバンド(Mバンド)を示すため、電気泳動法により両者を識別することが可能である。
尿蛋白の電気泳動法はBJPのスクリーニング方法として広く採用されているものの、その検出感度や特異性は分析システムや尿の検査前濃縮の程度等に依存し、必ずしも満足できる方法とは言えない。たとえば、電気泳動の支持体として広く用いられているセルロースアセテート膜はイムノグロブリンの分解能が悪く、また、泳動後の蛋白検出用染色色素の種類によってもその検出感度は変化し、結果として電気泳動法は低感度とならざるを得ない。さらに、尿をサンプルとして使用するため、予め尿を濃縮する必要があるが、その場合の濃縮の程度も明確に定められていない。
したがって、電気泳動法を用いたBJPのスクリーニング方法は、施設間での検査精度の差が大きく、臨床検査としては様々な問題を内在している。実際、近年行われた各施設間のコントロールサーベイでは、60mg/dlのBJPがおよそ30%の施設で見逃されていることが明らかとなり、問題となっている。
加えて、上記電気泳動法ではイムノグロブリンの免疫表現型(サブクラス)を同定することができないため、免疫固定法(もしくは免疫電気泳動法)を用いて検出されたM蛋白質のサブクラス(BJP、IgG型M蛋白質、又はIgM型M蛋白質等)を確認する必要がある。また、これらの確認検査で用いる免疫固定法は、非常に煩雑で、かつ検査単価が高額であるため、臨床検査の場においては、最初に電気泳動法でM蛋白質をスクリーニングし、次いで免疫固定法でBJPを確定する手法をとらざるを得ないのが現状である。
Monoclonal free immunoglobulin light chain (FLC) in a state dissociated from immunoglobulin heavy chain is a monoclonal protein (M (Br. J. Haematol., 1969, 16, 599-606).
In 1847, Henry Bence Jones discovered a unique thermal aggregation reaction in patient urine and named the protein responsible for it as Bence Jones protein (BJP) (Lancet, 1847, 2, 88-92). . It was later revealed that this was a monoclonal FLC in urine.
BJP is a useful clinical marker such as multiple myeloma, and its assay is performed as one item of daily clinical examination. BJP has a small molecular weight, easily passes through the glomerulus, and most of it moves into urine. Therefore, in actual clinical examination, BJP is detected by electrophoresis (DRG / PPS-compliant clinical laboratory guidelines second draft, 2000, p. 78-82).
The measurement of BJP by electrophoresis is generally referred to as “screening assay” or simply “screening”. Usually, since immunoglobulins in human specimens have a polyclonal composition, immunoglobulins in specimens show a broad band when electrophoresis is performed. On the other hand, since the M protein has a single charge and exhibits a single band (M band), the two can be distinguished by electrophoresis.
Although electrophoresis of urine proteins is widely adopted as a screening method for BJP, its detection sensitivity and specificity depend on the analytical system and the degree of concentration of urine before testing, and are not necessarily satisfactory. For example, cellulose acetate membranes that are widely used as electrophoresis supports have poor immunoglobulin resolution, and the detection sensitivity varies depending on the type of staining dye for protein detection after electrophoresis. Must be low sensitivity. Furthermore, since urine is used as a sample, it is necessary to concentrate urine in advance, but the degree of concentration in that case is not clearly defined.
Therefore, the screening method for BJP using the electrophoresis method has a large difference in test accuracy between facilities, and has various problems as clinical tests. In fact, in a control survey between facilities conducted in recent years, it became clear that 60 mg / dl of BJP was overlooked in about 30% of facilities, which is a problem.
In addition, since the immunophenotype (subclass) of immunoglobulin cannot be identified by the above electrophoresis method, the subclass of M protein (BJP, IgG type) detected using the immunofixation method (or immunoelectrophoresis method) M protein or IgM type M protein) must be confirmed. In addition, the immunofixation method used in these confirmation tests is very complicated and the test unit price is expensive. Therefore, in clinical testing, the M protein is first screened by electrophoresis, and then the immunofixation method is used. Therefore, the current situation is that a method for determining BJP must be taken.

このような現状を克服し、電気泳動法とイムノアッセイとの2種類の方法を使用し、検査の信頼性を向上させ、また確定検査にあたる免疫固定法の実施回数を少なくすることができるか否かに関し、検討した報告がある(Clin.Chim.Acta,1997,262,121−130)。すなわち、上記報告においては、電気泳動法、イムノアッセイ、免疫固定法のそれぞれの結果を対比し、インタクトなイムノグロブリンに結合している軽鎖も含めた、尿中のκ型軽鎖とλ型軽鎖との全体(total)量及びその量比(total量とκ/λ比)に異常がなく、かつ電気泳動法で異常なバンドが認められない場合には、BJP陰性と判断可能なことを示唆している。
しかし、上記検討には以下に示すような種々の問題があり、実際の臨床検査の場に置いて使用するに当たり、必ずしも信頼性できる結論とはなっていない。
(1)感度の問題
上記検討の結果、感度は100%であると結論付けているが、必ずしもBJP特異的とは言えない。すなわち、インタクトなイムノグロブリンに結合している軽鎖も含めた、尿中のκ型軽鎖とλ型軽鎖の全体(total)を定量し、その量と比を算出しているが、インタクトなイムノグロブリンM蛋白質(例えばIgG−κ−M蛋白質など)が尿中に存在する場合、FLC特異的でなく、軽鎖全量を測定するイムノアッセイではその量と比が必然的に異常となる。この量及び比の異常はBJP以外のイムノグロブリンM蛋白質の存在に由来する異常であり、必ずしもBJP特異的とは言えない。ここで感度とはBJPを伴う尿検体のうち、陽性の結果を示した検体の割合(%)をいう(実施例(4)を参照)。
また、上記検討で採用したイムノアッセイの測定感度は悪く、試験に供したサンプルの約半数は測定感度以下となって、以後の検討がなされておらず、信頼性のあるデータとはいえない。
(2)確認検査回数削減の問題
上記検討の結果、免疫固定法による確認検査の回数を52%削減できると結論付けているが、電気泳動法とイムノアッセイとの2種類の方法を組み合わせたメリットが全く示されていない。すなわち、上記報告では電気泳動法による検査結果をイムノアッセイで単に確かめただけであって、電気泳動でM蛋白質を示す検体はイムノアッセイの結果に係わらず、免疫固定法の確認検査を必要としており、従来の手法と変わるところがない。なぜ確認検査を52%削減できることの根拠が示されていない。
また、免疫固定法による確認検査において、電気泳動法でM蛋白質が検出されない場合であってもBJP陽性であるケースがあり、M蛋白質が確認されない場合、イムノアッセイの結果に係わらず、すべてBJP陰性(NO BJP)と結論付けるのは強引に過ぎ、科学的な信頼性も低い。
本発明者らは、より現実的で、効率的なBJPの検定法に関し、鋭意検討を重ねた結果、(1)イムノアッセイにおけるFLCのκ鎖とλ鎖の比(κ/λ比)を基に、BJP陽性を判定できること、(2)電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、電気泳動におけるM蛋白質の有無とイムノアッセイにおけるFLCのκ鎖とλ鎖の比(κ/λ比)を基に、一定の処理手順(アルゴリズム)により判断することで、効率的にBJPを検定することができることを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、以下の内容を包含する。
[1]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合にはBJP陽性と判断するステップ
[2]ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、上記[1]記載の方法。
[3]ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、上記[1]記載の方法。
[4]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロプリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である場合にはBJP陽性と判断するステップ
[5]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である場合にはBJP陽性の疑いありと判断するステップ
[6]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である場合にはBJP陽性の疑いありと判断するステップ
[7]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のBJPを検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である場合にはBJP陰性と判断するステップ
[8]ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、上記[4]〜[7]のいずれかに記載の方法。
[9]ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、上記[4]〜[7]のいずれかに記載の方法。
[10]電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質の有無とκ/λ比を指標に、ケースAの場合にはBJP陽性と判断し、ケースBとCの場合にはBJP陽性の疑いありと判断し、免疫固定法でBJPの有無をさらに確認し、ケースDの場合にはBJP陰性と判断するステップ
(ケースA)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースB)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
(ケースC)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースD)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
[11]ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、上記[10]記載の方法。
[12]ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、上記[10]記載の方法。
[13]イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求め、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合にはBJP陽性と判断するベンスジョーンズ蛋白質(BJP)の検定法。
Whether or not it is possible to overcome the current situation, use two types of methods, electrophoresis and immunoassay, improve the reliability of the test, and reduce the number of times of the immunofixation method for the definitive test (Clin. Chim. Acta, 1997, 262, 121-130). That is, in the above report, the results of electrophoresis, immunoassay, and immunofixation were compared, and the κ-type light chain and λ-type light in urine, including the light chain bound to intact immunoglobulin, were included. If there is no abnormality in the total amount of the chain (total amount) and the amount ratio (total amount and κ / λ ratio) and no abnormal band is observed by electrophoresis, it can be judged as BJP negative. Suggests.
However, the above examination has various problems as described below, and it is not always a reliable conclusion when it is used in an actual clinical test.
(1) Sensitivity problem As a result of the above examination, it is concluded that the sensitivity is 100%, but it is not necessarily BJP-specific. That is, the total amount of κ-type light chain and λ-type light chain in urine, including the light chain bound to intact immunoglobulin, is quantified, and the amount and ratio are calculated. When an immunoglobulin M protein (such as IgG-κ-M protein) is present in urine, it is not FLC specific, and the amount and ratio are necessarily abnormal in an immunoassay that measures the total amount of light chain. This amount and ratio abnormality is an abnormality derived from the presence of immunoglobulin M protein other than BJP, and is not necessarily BJP-specific. Here, sensitivity refers to the percentage (%) of samples that showed a positive result among urine samples with BJP (see Example (4)).
Further, the measurement sensitivity of the immunoassay employed in the above examination is poor, and about half of the samples subjected to the test are below the measurement sensitivity, and no further examination has been made, so it cannot be said to be reliable data.
(2) Problem of reduction in the number of confirmation tests As a result of the above examination, it has been concluded that the number of confirmation tests by the immunofixation method can be reduced by 52%, but there is a merit of combining two methods of electrophoresis and immunoassay. Not shown at all. That is, in the above report, the test result by electrophoresis was simply confirmed by immunoassay, and specimens showing M protein by electrophoresis require confirmation test of immunofixation method regardless of the result of immunoassay. There is no difference from this method. There is no rationale for why confirmation testing can be reduced by 52%.
In addition, in the confirmation test by the immunofixation method, there are cases in which B protein is positive even if M protein is not detected by electrophoresis, and if M protein is not confirmed, all are BJP negative regardless of the immunoassay result ( The conclusion of NO BJP) is only brute force and the scientific reliability is low.
As a result of intensive studies on a more realistic and efficient BJP assay, the present inventors have (1) based on the ratio of κ chain to λ chain (κ / λ ratio) of FLC in immunoassay. , BJP positivity can be determined, (2) The combination of electrophoresis and immunoassay, constant based on the presence of M protein in electrophoresis and the ratio of κ chain to λ chain (κ / λ ratio) in the immunoassay It was found that it is possible to efficiently test BJP by judging by the processing procedure (algorithm) of the above, and the present invention was completed.
That is, the present invention includes the following contents.
[1] A method for assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by carrying out the following steps in combination with electrophoresis and immunoassay.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
When M protein is confirmed and the κ / λ ratio is 0.1 ± 0.05 or less or 5.5 ± 2.75 or more, a step of judging BJP positive [2] Step 1, Step 2, Step 3 The method according to [1], which is performed in the order of:
[3] The method described in [1] above, which is performed in the order of step 2, step 1, and step 3.
[4] A method for assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by using electrophoresis and immunoassay together and performing the following steps.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglopurin κ chain and free immunoglobulin λ chain in a urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
When M protein is confirmed and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more, a step of judging BJP is positive [5] Combined electrophoresis and immunoassay A method for assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
When M protein is confirmed and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84, it is judged that there is a suspicion of BJP positive [6] Electrophoresis and immunoassay And testing the Bence Jones protein (BJP) in the urine sample by performing the following steps.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
If M protein is not confirmed and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more, a step of judging that there is a suspicion of BJP positive [7] A method for assaying BJP in a urine sample by performing the following steps in combination with an immunoassay.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
If the M protein is not confirmed and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84, it is determined that the BJP is negative [8] Step 1, Step 2, Step The method according to any one of [4] to [7], which is performed in the order of 3.
[9] The method according to any one of [4] to [7], which is performed in the order of step 2, step 1, and step 3.
[10] A method for assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by using electrophoresis and immunoassay together and performing the following steps.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
Based on the presence or absence of M protein and the κ / λ ratio, in case A, it is determined that BJP is positive, in cases B and C, it is determined that there is a suspicion of BJP. Further confirmation, in the case of Case D, a step of judging BJP negative (Case A)
M protein is confirmed, and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case B)
M protein is identified and the κ / λ ratio is greater than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.
(Case C)
M protein is not confirmed, and κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case D)
M protein is not confirmed, and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.
[11] The method described in [10] above, which is performed in the order of step 1, step 2, and step 3.
[12] The method according to [10], which is performed in the order of step 2, step 1, and step 3.
[13] The content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in a urine sample is measured by immunoassay, and the ratio (κ / λ ratio) is determined. The κ / λ ratio is 0.1 ± 0. Bence Jones protein (BJP) test method for judging BJP positive when .05 or less or 5.5 ± 2.75 or more.

図1は、イムノアッセイにおけるFLC測定法の標準曲線の一例を示す図である。
図2は、尿中FLCの測定結果の一例を示す図である。図中、○;BJPκ陽性検体、△;BJPλ陽性検体、X;BJP陰性検体をそれぞれ示し、図中の線2本はROC解析で決定したκ/λ比のカットオフ値を示す。
図3は、FLC測定法と電気泳動法の組み合わせ時のBJP検定手法(アルゴリズム)の一例を示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing an example of a standard curve of an FLC measurement method in an immunoassay.
FIG. 2 is a diagram showing an example of the measurement result of urinary FLC. In the figure, ◯: BJPκ positive specimen, Δ: BJPλ positive specimen, X: BJP negative specimen, respectively, and two lines in the figure show the cutoff value of κ / λ ratio determined by ROC analysis.
FIG. 3 is a diagram illustrating an example of a BJP test method (algorithm) when combining the FLC measurement method and the electrophoresis method.

本発明で使用する試料は、尿検体であれば特に限定されず、具体的には臨床にて採取される尿採取形態(保存剤添加尿、1日尿、早朝第一尿など)を試料として使用することができる。
本発明は、上述したように、イムノアッセイによりBJP陽性を検定する方法(方法1)と、電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、特定のステップにより尿試料中のBJPを検定する方法(方法2)の2つの方法を包含するものである。
(方法1)
イムノアッセイによりBJP陽性を検定する方法としては、イムノアッセイにより尿試料中のFLCκ鎖とFLCλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求め、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合には、BJP陽性と判断するBJPの検定法である。
本発明で採用するイムノアッセイは、尿中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖とを測定できる方法であれば特に制限はない。具体的には、尿において微量に存在するFLCに対して十分な測定感度を有し、インタクトなイムノグロブリンに対する交差反応性をほとんど示さず(例えば1%以下)、尿中のFLC以外の成分の影響を受けない方法が好適であり、好ましくは本発明者らが開発した酵素免疫測定法を例示することができる(J.Immunol.Methods,2003,275,9−17)。
測定後、測定されたFLCのκ鎖とλ鎖との値を基に、その量比(κ/λ比)を算出し、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合にはBJP陽性と判断する。
BJP陽性検体はκ/λ比が大きく変動していることから、後述実施例に示すように、指標として用いるκ/λ比は、受診者動作特性(ROC)分析(Clin.Chem.,1993,39,561−577)により、免疫固定法の結果と比較した場合でもBJP検定の陽性予測率が80%以上の数値となるように、0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上、好ましくは0.1±0.03以下又は5.5±1.65以上という基準を用いて判定することで、高い精度で診断することが可能となる。なお、陽性予測率とはBJP陽性結果を示した検体が実際にBJPを伴っている割合(%)をいう(実施例(4)を参照のこと)。
また、対象となる患者群によってこの比は変動する事があり得るため、上記範囲内を目安に、その都度臨床的に適切な比を設定する必要がある。
(方法2)
電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、尿試料中のBJPを検定する方法は、以下のステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行うことが好ましいが、ステップ1とステップ2は順序が逆であってもかまわない。
(1)ステップ1
ステップ1は、電気泳動により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップである。
本発明で採用する電気泳動法とは、公知の方法であり、具体的には、セルロースアセテート膜やアガロースゲルなどを支持体とし、検体に含まれる蛋白質を電気的に泳動し、泳動された蛋白質を染色法並びに物理化学的に検出する方法をいう(High−Resolution Electrophoresis and Immunofixation,1994,第2章、Butterworth−Heinemann)。泳動後、Mバンドの有無によりM蛋白質の有無を判断する。
(2)ステップ2
ステップ2は、上述したイムノアッセイと同様の方法により尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖とのそれぞれの含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップである。
(3)ステップ3
ステップ3は、M蛋白質の有無とκ/λ比とを指標に、それぞれのケース毎にBJP陰性、BJP陽性、及び/またはBJP陽性の疑いありと判断するステップである。
BJP陽性のみを判定する目的では、上記イムノアッセイの時と同じ、0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上、好ましくは0.1±0.03以下又は5.5±1.65以上という数値をκ/λ比として採用し、ステップ1でM蛋白質が確認され、ステップ2で求めたκ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合には、BJP陽性と判断することができる。
なお、BJP陽性のみの判定は、上述したようにイムノアッセイ単独(方法1)でも可能であるものの、ステップ1の電気泳動によるM蛋白質の確認を追加し、これを加味して判断することで、より確実な判定を行うことができる。
次に、BJP陽性のみならず、陰性及び/又はBJP陽性の疑いありまで判定する目的では、受診者動作特性(ROC)分析(Clin.Chem.,1993,39,561−577)により、免疫固定法の結果と比較した場合でもBJP検定の診断正確度が80%以上、好ましくは90%以上の数値、具体的には、後述の実施例で示されているような、BJP陰性検体の測定値を効率よく排除できる数値である、0.2±0.1と1.67±0.84、好適には0.2±0.03と1.67±0.5範囲内の数値をκ/λ比として採用することができる。
この場合のBJPの判定は、ステップ1のM蛋白質の有無とステップ2のκ/λ比との結果から以下の4つのケースで判断する。すなわち、ケースAの場合にはBJP陽性と判断し、ケースBとCの場合にはBJP陽性の疑いありと判断し、免疫固定法でBJPの有無を更に確認し、ケースDの場合にBJP陰性と判断する。
(ケースA)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースB)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
(ケースC)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースD)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
The sample used in the present invention is not particularly limited as long as it is a urine sample, and specifically, a urine collection form (preservative-added urine, daily urine, early morning first urine, etc.) collected clinically is used as a sample. Can be used.
In the present invention, as described above, the method of assaying BJP positivity by immunoassay (Method 1), the method of assaying BJP in a urine sample by a specific step using both electrophoresis and immunoassay (Method 2) These two methods are included.
(Method 1)
As a method of testing for BJP positivity by immunoassay, the content of FLCκ chain and FLCλ chain in a urine sample is measured by immunoassay, and the quantitative ratio (κ / λ ratio) is determined. When it is ± 0.05 or less or 5.5 ± 2.75 or more, it is a BJP test method for determining BJP positive.
The immunoassay employed in the present invention is not particularly limited as long as it can measure urinary free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain. Specifically, it has sufficient measurement sensitivity for FLC present in trace amounts in urine, shows little cross-reactivity to intact immunoglobulin (for example, 1% or less), and contains components other than FLC in urine. A method that is not affected is suitable, and an enzyme immunoassay developed by the present inventors can be exemplified (J. Immunol. Methods, 2003, 275, 9-17).
After the measurement, the quantitative ratio (κ / λ ratio) is calculated based on the measured values of the κ chain and λ chain of FLC, and the κ / λ ratio is 0.1 ± 0.05 or 5.5 or 5.5. When it is ± 2.75 or more, it is judged as BJP positive.
Since the κ / λ ratio of BJP-positive specimens fluctuates greatly, the κ / λ ratio used as an index, as shown in the examples below, is determined based on the operating characteristics of the examinee (ROC) (Clin. Chem., 1993, 39, 561-577), so that the positive prediction rate of the BJP test becomes a numerical value of 80% or more even when compared with the result of the immunofixation method, 0.1 ± 0.05 or 5.5 ± 2. By making a determination using a criterion of 75 or more, preferably 0.1 ± 0.03 or less or 5.5 ± 1.65 or more, diagnosis can be performed with high accuracy. In addition, a positive prediction rate means the ratio (%) with which the sample which showed the BJP positive result is actually accompanied by BJP (refer Example (4)).
In addition, since this ratio may vary depending on the target patient group, it is necessary to set a clinically appropriate ratio each time within the above range.
(Method 2)
The method of assaying BJP in a urine sample using both electrophoresis and immunoassay is preferably performed in the following order of Step 1, Step 2, and Step 3, but Step 1 and Step 2 are in reverse order. It does not matter.
(1) Step 1
Step 1 is a step of confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis.
The electrophoresis method employed in the present invention is a known method. Specifically, the protein contained in the specimen is electrophoresed and electrophoresed using a cellulose acetate membrane or agarose gel as a support. Is a staining method as well as a physicochemical detection method (High-Resolution Electrophoresis and Immunofixation, 1994, Chapter 2, Butterworth-Heinemann). After electrophoresis, the presence or absence of M protein is determined by the presence or absence of M band.
(2) Step 2
Step 2 is a step of measuring the contents of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by the same method as the above-described immunoassay, and determining the quantitative ratio (κ / λ ratio). is there.
(3) Step 3
Step 3 is a step of determining that there is a suspicion of BJP negative, BJP positive, and / or BJP positive for each case, using the presence or absence of M protein and the κ / λ ratio as indices.
For the purpose of judging only BJP positive, the same as in the above immunoassay, 0.1 ± 0.05 or less or 5.5 ± 2.75 or more, preferably 0.1 ± 0.03 or less or 5.5 ± 1 A numerical value of .65 or more is adopted as the κ / λ ratio, the M protein is confirmed in Step 1, and the κ / λ ratio obtained in Step 2 is 0.1 ± 0.05 or 5.5 ± 2.75 or more. If it is, it can be determined that the BJP is positive.
In addition, although it is possible to determine only BJP positive by immunoassay alone (method 1) as described above, it is possible to add the confirmation of M protein by electrophoresis in step 1 and to make a determination by taking this into account. A reliable determination can be made.
Next, for the purpose of determining not only BJP positive but also suspicion of negative and / or BJP positive, immunofixation is performed by a patient operating characteristic (ROC) analysis (Clin. Chem., 1993, 39, 561-577). Even when compared with the results of the method, the diagnostic accuracy of the BJP test is a numerical value of 80% or more, preferably 90% or more, specifically, the measured value of a BJP negative sample as shown in the examples described later. Are numerical values within the range of 0.2 ± 0.1 and 1.67 ± 0.84, preferably 0.2 ± 0.03 and 1.67 ± 0.5. It can be employed as the λ ratio.
The determination of BJP in this case is made in the following four cases from the results of the presence or absence of the M protein in step 1 and the κ / λ ratio in step 2. That is, in case A, it is determined that BJP is positive, in cases B and C, it is determined that there is a suspicion of BJP positive, the presence or absence of BJP is further confirmed by immunofixation method, and in case D, BJP is negative Judge.
(Case A)
M protein is confirmed, and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case B)
M protein is identified and the κ / λ ratio is greater than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.
(Case C)
M protein is not confirmed, and κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case D)
M protein is not confirmed, and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.

以下、実施例に基づき本発明を更に具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に何ら限定されるものではない。
[実施例]
(1)尿検体
BJPが疑われた患者287例より採取された尿287検体を用いた。すべての検体について日本臨床検査医学会のガイドライン(臨床病理,2002,50;438−439)に従い、連結不可能匿名化を行った。
(2)電気泳動法ならびに免疫固定法
電気泳動法ならびに免疫固定法はヘレナ社のキットを用いて実施した。免疫固定法に用いる抗血清はダコ社より購入した。尿検体は必要に応じて最大100倍まで濃縮した。
(3)FLC測定法
FLC測定法については文献(J.Immunol.Methods,2003,275,9−17)に従って行った。すなわち、モノクローナル抗体をコートした96穴マイクロプレート(Nunc)に検体あるいは標準濃度溶液を100μl毎加え、室温で2時間反応させた。洗浄した後、二次抗体として抗κ軽鎖型抗体ならびに抗λ軽鎖型抗体の西洋ワサビペルオキシダーゼ標識体を各100μl加え、37℃、30分反応させた。反応後、0.05% Tween20を含むPBSで洗浄し、発色液(OPD、Sigma)を100μl毎分注し発色させた。1N硫酸にて発色を停止後、492nmでの吸光度を測定した。なお、アッセイ用の緩衝液としては1%ウシ血清アルブミンを含む50mMトリス塩酸(pH7.5)を使用した。また、スタンダードとしては、尿中から単離精製したFLCを使用した。標準曲線の例を図1に示す。
(4)診断精度の評価
診断精度の評価は臨床検査分野において一般的に用いられている計算方法を用いた。すなわち、BJPの有無を対照とし、リファレンスの方法としての免疫固定法と評価対象としての本発明法により表1のように区分される。
[表1]

Figure 0004286256
この区分に基づき、感度、特異度、陽性予想値、正確度を以下のように定義した。
感度:式a/(a+b)×100で算出され、BJP陽性検体の中で、陽性の検査結果を示した検体の割合を意味する。
特異度:式d/(c+d)×100で算出され、BJP陰性検体の中で、陰性の検査結果を示した検体の割合を意味する。
陽性予測率:式a/(a+c)×100で算出され、BJP陽性の検査結果を示した検体の中で、実際にBJPを伴う検体の割合を意味する。
正確度:式(a+d)/(a+b+c+d)×100で算出され、検査された検体のうち、BJPの陽性と陰性が正しく診断された検体の割合を意味する。
(5)統計解析
受診者動作特性(ROC)分析には統計解析ソフトウェアパッケージ(StatFlex)を用いた。
(6)結果
イムノアッセイの測定結果より、κ/λ比0.1又は5.5をカットオフとした場合、表2に示すように、該当する検体は287例中56例存在した。その中で、κ/λ比5.5以上に該当する全18例あり、そのうち16例がBJPκ陽性で、BJP以外の2例のうち1例は、免疫固定法でも分析不可能であった。一方、κ/λ比0.1以下で該当する全38例あり、そのうち29例がBJPλ陽性であった。残りの9例のうち、5例はインタクトイムノグロブリンM蛋白陽性、3例はBJP陰性、1例は免疫固定法で解析不能の検体であった。このように、κ/λ比0.1又は5.5を基準として評価することにより、免疫固定法で解析不能だった2検体を除いて計算すると、83.3%の陽性予測率(54例中45例)でBJP陽性と判定できる。
[表2]
Figure 0004286256
次に、イムノアッセイ、電気泳動法ならびに免疫固定法の結果を表3に示す。表3から明らかなように、287臨床尿検体のうち免疫固定法により58例にBJPが同定され、14例にインタクトイムノグロブリンMタンパク質が検出された。また、尿蛋白の電気泳動法ではBJP陽性の58例中50例にMバンドが観察された。
[表3]
Figure 0004286256
また、図2に示すように、BJP陽性検体のκ/λ比の中央値はBJPκ型で55.5、BJPλ型で0.0012であった。一方、BJP陰性検体では0.63であった。
これらのデータを基に、ROC分析によりカットオフ値を1.67(BJPκ用)と0.2(BJPλ用)とに定め、図3に示すアルゴリズムにより電気泳動とκ/λ比を組み合わせ、287尿検体について解析を試みた。その結果を表4に示す。
表4から明らかなように、尿蛋白の電気泳動法でMバンドが検出された62例のうち、53例をケースAと判断し、そのうち46検体(86.8%)がBJP陽性であった。
また、Mバンドが検出されなかった225例のうち、183例にκ/λ比の異常は見られなかった。このうち98.9%(183例中181例)がBJP陰性であった。
さらに、287例のうち50例はMバンドまたはκ/λ比の異常のどちらかを示した。このうち10例はBJP陽性であった。
このように、上記のようなカットオフ値を用いた本発明方法により、BJPを感度89.7%(58検体中52例)、特異度81.6%(229例中187例)、正確度84.3%(287例中242例)で検定できることが明らかとなり、BJPの可能性の高い検体を容易に抽出する事が可能となった。
[表4]
Figure 0004286256
EXAMPLES Hereinafter, although this invention is demonstrated more concretely based on an Example, this invention is not limited to a following example at all.
[Example]
(1) Urine sample 287 samples of urine collected from 287 patients suspected of having BJP were used. All samples were anonymized for non-connection according to the guidelines of the Japanese Society for Clinical Laboratory Medicine (Clinical Pathology, 2002, 50; 438-439).
(2) Electrophoresis method and immunofixation method Electrophoresis method and immunofixation method were carried out using a Helena kit. Antisera used for immunofixation was purchased from Dako. Urine samples were concentrated up to 100 times as needed.
(3) FLC measurement method About the FLC measurement method, it carried out according to literature (J.Immunol.Methods, 2003,275,9-17). That is, a sample or a standard concentration solution was added every 100 μl to a 96-well microplate (Nunc) coated with a monoclonal antibody and reacted at room temperature for 2 hours. After washing, 100 μl each of anti-κ light chain antibody and horseradish peroxidase labeled anti-λ light chain antibody as secondary antibodies were added and reacted at 37 ° C. for 30 minutes. After the reaction, the plate was washed with PBS containing 0.05% Tween 20, and a color developing solution (OPD, Sigma) was poured every 100 μl to cause color development. After the color development was stopped with 1N sulfuric acid, the absorbance at 492 nm was measured. As the assay buffer, 50 mM Tris-HCl (pH 7.5) containing 1% bovine serum albumin was used. As a standard, FLC isolated and purified from urine was used. An example of a standard curve is shown in FIG.
(4) Evaluation of diagnostic accuracy The diagnostic accuracy was evaluated using a calculation method generally used in the clinical laboratory field. That is, the presence or absence of BJP is used as a control, and is classified as shown in Table 1 by the immunofixation method as a reference method and the method of the present invention as an evaluation target.
[Table 1]
Figure 0004286256
Based on this category, sensitivity, specificity, expected positive value, and accuracy were defined as follows.
Sensitivity: Calculated by the formula a / (a + b) × 100, and means the proportion of samples showing a positive test result among BJP positive samples.
Specificity: Calculated by the formula d / (c + d) × 100, and means the proportion of samples showing a negative test result among BJP negative samples.
Positive predictive rate: means the ratio of samples actually accompanied by BJP among the samples calculated by the formula a / (a + c) × 100 and showing the test result of BJP positive.
Accuracy: Calculated by the formula (a + d) / (a + b + c + d) × 100, and means the proportion of samples that are correctly diagnosed as positive or negative for BJP, among the tested samples.
(5) Statistical analysis A statistical analysis software package (StatFlex) was used for the operation characteristic of the examinee (ROC).
(6) Results From the immunoassay measurement results, when the κ / λ ratio of 0.1 or 5.5 was used as the cutoff, as shown in Table 2, 56 of the 287 samples were present. Among them, there were 18 cases corresponding to a κ / λ ratio of 5.5 or more, of which 16 cases were BJPκ positive, and 1 case out of 2 cases other than BJP could not be analyzed by the immunofixation method. On the other hand, there were a total of 38 cases with a κ / λ ratio of 0.1 or less, of which 29 were BJPλ positive. Of the remaining 9 cases, 5 cases were intact immunoglobulin M protein positive, 3 cases were BJP negative, and 1 case was a sample that could not be analyzed by immunofixation. As described above, when the evaluation was performed based on the κ / λ ratio of 0.1 or 5.5 and the two samples that could not be analyzed by the immunofixation method were excluded, the positive prediction rate of 83.3% (54 cases) 45 cases) can be determined as BJP positive.
[Table 2]
Figure 0004286256
Next, Table 3 shows the results of immunoassay, electrophoresis and immunofixation. As is clear from Table 3, BJP was identified in 58 cases by immunofixation method among 287 clinical urine specimens, and intact immunoglobulin M protein was detected in 14 cases. In addition, by electrophoresis of urine protein, M band was observed in 50 out of 58 BJP positive cases.
[Table 3]
Figure 0004286256
Further, as shown in FIG. 2, the median value of the κ / λ ratio of the BJP positive specimen was 55.5 for the BJPκ type and 0.0012 for the BJPλ type. On the other hand, it was 0.63 in the BJP negative specimen.
Based on these data, the cutoff value is set to 1.67 (for BJPκ) and 0.2 (for BJPλ) by ROC analysis, and the electrophoresis and κ / λ ratio are combined by the algorithm shown in FIG. We tried to analyze urine samples. The results are shown in Table 4.
As is clear from Table 4, 53 cases were judged to be case A out of 62 cases where M band was detected by electrophoresis of urine protein, and 46 specimens (86.8%) were BJP positive. .
Of the 225 cases in which no M band was detected, no abnormality in the κ / λ ratio was found in 183 cases. Of these, 98.9% (181/183 cases) were BJP-negative.
In addition, 50 of the 287 cases showed either M-band or abnormal κ / λ ratios. Of these, 10 were BJP positive.
Thus, according to the method of the present invention using the cutoff value as described above, the sensitivity of BJP was 89.7% (52 out of 58 samples), the specificity was 81.6% (187 out of 229), and the accuracy was It became clear that the test could be performed at 84.3% (242 out of 287 cases), and it became possible to easily extract a specimen having a high possibility of BJP.
[Table 4]
Figure 0004286256

本発明の方法によれば、イムノアッセイ単独、もしくはイムノアッセイと電気泳動法を組み合わせ、一定の処理手順(アルゴリズム)により判断することで、簡便かつ信頼性の高いBJPの検定法を初めて提供することが可能となる。
また、本発明の方法では、尿中の遊離イムノグロブリンκ鎖と尿中遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比を求めることによって、BJPサブクラスの同定も同時に行うことが可能で、確認検査である免役固定法の検査数を約1/6程度に削減することが可能である。
なお、本出願は、日本で出願された特願2003−388617を基礎としており、その内容は本明細書にすべて包含されるものである。
According to the method of the present invention, it is possible to provide a simple and reliable BJP assay method for the first time by judging by a certain processing procedure (algorithm) by combining immunoassay alone or immunoassay and electrophoresis. It becomes.
In the method of the present invention, the BJP subclass can be identified at the same time by measuring the content of urinary free immunoglobulin κ chain and urinary free immunoglobulin λ chain and determining the ratio of the contents. Thus, it is possible to reduce the number of inspections of the licensed fixation method, which is a confirmation inspection, to about 1/6.
In addition, this application is based on Japanese Patent Application No. 2003-388617 for which it applied in Japan, The content is altogether included by this specification.

Claims (13)

電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合にはBJP陽性と判断するステップ
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
The step of judging BJP positive when the M protein is confirmed and the κ / λ ratio is 0.1 ± 0.05 or less or 5.5 ± 2.75 or more
ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the method is performed in the order of step 1, step 2, and step 3. ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、請求項1に記載の方法。The method according to claim 1, wherein the method is performed in the order of step 2, step 1, and step 3. 電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である場合にはBJP陽性と判断するステップ
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
A step of judging BJP positive when the M protein is confirmed and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more
電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である場合にはBJP陽性の疑いありと判断するステップ
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
A step of judging that there is a suspicion of BJP positive when M protein is confirmed and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84
電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である場合にはBJP陽性の疑いありと判断するステップ
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
The step of judging that there is a suspicion of BJP positive when the M protein is not confirmed and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more
電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である場合にはBJP陽性と判断するステップ
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
The step of judging BJP positive when the M protein is not confirmed and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84
ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、請求項4〜7のいずれか一項に記載の方法。The method as described in any one of Claims 4-7 performed in order of step 1, step 2, and step 3. ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、請求項4〜7のいずれか一項に記載の方法。The method as described in any one of Claims 4-7 performed in order of step 2, step 1, and step 3. 電気泳動法とイムノアッセイとを併用し、次のステップを実施することにより尿試料中のベンスジョーンズ蛋白質(BJP)を検定する方法。
(1)ステップ1
電気泳動法により尿試料中のM蛋白質の存在を確認するステップ
(2)ステップ2
イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求めるステップ
(3)ステップ3
M蛋白質の有無とκ/λ比を指標に、ケースAの場合にはBJP陽性と判断し、ケースBとCの場合にはBJP陽性の疑いありと判断し、免疫固定法でBJPの有無をさらに確認し、ケースDの場合にはBJP陰性と判断するステップ
(ケースA)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースB)
M蛋白質が確認され、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
(ケースC)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1以下又は1.67±0.84以上である。
(ケースD)
M蛋白質が確認されず、κ/λ比が0.2±0.1超かつ1.67±0.84未満である。
A method of assaying Bence Jones protein (BJP) in a urine sample by performing the following steps using electrophoresis and immunoassay together.
(1) Step 1
Confirming the presence of M protein in the urine sample by electrophoresis (2) Step 2
Step (3) Step 3 of measuring the content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in the urine sample by immunoassay and determining the ratio (κ / λ ratio)
Based on the presence or absence of M protein and the κ / λ ratio, in case A, it is determined that BJP is positive, in cases B and C, it is determined that there is suspicion of BJP, and the presence or absence of BJP is determined by immunofixation. Further confirmation, in the case of Case D, a step of judging BJP negative (Case A)
M protein is confirmed, and the κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case B)
M protein is identified and the κ / λ ratio is greater than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.
(Case C)
M protein is not confirmed, and κ / λ ratio is 0.2 ± 0.1 or less or 1.67 ± 0.84 or more.
(Case D)
M protein is not confirmed, and the κ / λ ratio is more than 0.2 ± 0.1 and less than 1.67 ± 0.84.
ステップ1、ステップ2、ステップ3の順で行う、請求項10記載の方法。The method according to claim 10, wherein the method is performed in the order of step 1, step 2, and step 3. ステップ2、ステップ1、ステップ3の順で行う、請求項10記載の方法。The method according to claim 10, wherein the method is performed in the order of step 2, step 1, and step 3. イムノアッセイにより尿試料中の遊離イムノグロブリンκ鎖と遊離イムノグロブリンλ鎖との含有量を測定し、その量比(κ/λ比)を求め、κ/λ比が0.1±0.05以下又は5.5±2.75以上である場合にはBJP陽性と判断するベンスジョーンズ蛋白質(BJP)の検定法。The content of free immunoglobulin κ chain and free immunoglobulin λ chain in a urine sample is measured by immunoassay, and the ratio (κ / λ ratio) is determined. The κ / λ ratio is 0.1 ± 0.05 or less. Alternatively, a Bence Jones protein (BJP) test method for determining BJP positive when 5.5 ± 2.75 or more.
JP2005516435A 2003-11-19 2004-11-19 Bence Jones protein assay Active JP4286256B2 (en)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2003388617 2003-11-19
JP2003388617 2003-11-19
PCT/JP2004/017645 WO2005062044A1 (en) 2003-11-19 2004-11-19 Method of bence-jones protein calibration

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPWO2005062044A1 JPWO2005062044A1 (en) 2007-07-12
JP4286256B2 true JP4286256B2 (en) 2009-06-24

Family

ID=34708644

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2005516435A Active JP4286256B2 (en) 2003-11-19 2004-11-19 Bence Jones protein assay

Country Status (2)

Country Link
JP (1) JP4286256B2 (en)
WO (1) WO2005062044A1 (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0501741D0 (en) * 2005-01-27 2005-03-02 Binding Site The Ltd Antibody
CN115684606B (en) * 2022-10-21 2023-11-28 南方医科大学珠江医院 M protein detection method

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH03199966A (en) * 1989-12-27 1991-08-30 Kazutomo Wakasugi Method for measuring free l chain
JP3674529B2 (en) * 2000-09-08 2005-07-20 株式会社東北テクノアーチ Rapid and simple detection method of urinary disease marker protein using absorption label

Also Published As

Publication number Publication date
WO2005062044A1 (en) 2005-07-07
JPWO2005062044A1 (en) 2007-07-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Duranti et al. Determination of kFLC and K Index in cerebrospinal fluid: A valid alternative to assessintrathecal immunoglobulin synthesis
Noda et al. A novel highly quantitative and reproducible assay for the detection of anti-SARS-CoV-2 IgG and IgM antibodies
Velthuis et al. N Latex FLC–new monoclonal high-performance assays for the determination of free light chain kappa and lambda
Tate et al. Quantitative serum free light chain assay–analytical issues
US8426142B2 (en) IgA nephropathy testing method and test kit
AU2014311258B2 (en) Method of identifying biomarkers of neurological diseases and diagnosis of neurological diseases
Huang et al. A novel time-resolved fluoroimmunoassay for the quantitative detection of antibodies against the phospholipase A2 receptor
Venner et al. Comparison of three anti-dsDNA assays: performance and correlation with systemic lupus erythematosus disease activity
Peterson et al. Antibodies to phosphatidylserine/prothrombin complex in antiphospholipid syndrome: analytical and clinical perspectives
Holding et al. Clinical evaluation of the Bioplex 2200 celiac IgA and IgG kits—A novel multiplex screen incorporating an integral check for IgA deficiency
WO2003081236B1 (en) Method and device for predicting cardiovascular events
US9835621B2 (en) Process for detection of alzheimer's disease from a serum sample
Noebauer et al. Analytical evaluation of a fully automated immunoassay for faecal calprotectin in a paediatric setting
Vicente-Steijn et al. Analytical and clinical performance of the fully-automated LIAISONXL calprotectin immunoassay from DiaSorin in IBD patients
Berek et al. Cerebrospinal fluid oligoclonal bands in Neuroborreliosis are specific for Borrelia burgdorferi
JP4286256B2 (en) Bence Jones protein assay
Harding et al. Serum free light chain immunoassay as an adjunct to serum protein electrophoresis and immunofixation electrophoresis in the detection of multiple myeloma and other B-cell malignancies
US20110143382A1 (en) IgA Nephropathy Testing Method And Test Kit
Nakano et al. Ratio of urinary free immunoglobulin light chain κ to λ in the diagnosis of Bence Jones proteinuria
US20160161499A1 (en) Sensitive diagnostic assay for inclusion body mysitis
KR20200080183A (en) Method of diagnosing periodontal disease, composition and kit for the same
Li et al. A novel time-resolved fluoroimmunoassay based on magnetic microspheres method for detecting antibodies against the phospholipase A2 receptor
Ellidag et al. The cutoff level for urine protein in urine immunofixation electrophoresis
Sandholm et al. Quantification of complement proteins with special reference to C1q: Multiplex versus ELISA versus rocket immunoelectrophoresis versus nephelometry
WO1996012507A1 (en) Antibody reagent for detecting dissecting aortic aneurysm and use thereof

Legal Events

Date Code Title Description
TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20090317

A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20090324

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120403

Year of fee payment: 3

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 4286256

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120403

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120403

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130403

Year of fee payment: 4

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130403

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130403

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140403

Year of fee payment: 5

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250