JP4258271B2 - Polyamino acid carrier - Google Patents
Polyamino acid carrier Download PDFInfo
- Publication number
- JP4258271B2 JP4258271B2 JP2003137139A JP2003137139A JP4258271B2 JP 4258271 B2 JP4258271 B2 JP 4258271B2 JP 2003137139 A JP2003137139 A JP 2003137139A JP 2003137139 A JP2003137139 A JP 2003137139A JP 4258271 B2 JP4258271 B2 JP 4258271B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- peptide
- polyamino acid
- group
- carrier
- amino
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、免疫反応を利用した標的抗体を検出する分野において、水不溶性担体に低分子抗原を固相化させるために使用するポリアミノ酸担体に関する。
【０００２】
【従来の技術】
医療分野において、生体成分から特定の物質を検出もしくは定量する方法として抗原抗体反応を利用した免疫測定法が広く利用されている。抗原抗体反応に基づく免疫測定法は、特異性が高くかつ検出感度も高いため、臨床検査の重要な手段の一つとなっている。この免疫測定法には、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、免疫比濁法（ＴＩＡ）などが知られている。
【０００３】
これらの測定法を実施するにあたり、被測定物質に対する抗体又は抗原をマイクロタイタープレート、メンブレンフィルター、ビーズなどの水不溶性の固相に結合して使用するが、高感度で安定性の高い診断薬を製造するには抗体又は抗原を上記の水不溶性固相に効率的かつ安定性よく結合させることは非常に重要な技術である。水不溶性の固相としては、例えば、マイクロタイター法に用いられる担体として、ポリスチレン又はその共重合体の粒子である人工担体が開発されている（特開昭５８−２０９９８４号、特開昭６２−１１８２５６号）。合成高分子による人工担体は、化学的、物理的に均質かつ安定であり、大量生産も可能であるという利点を有する。さらに、ゼラチンと水溶性多糖類とからなる水不溶性の人工担体（特開昭５７−１５３６５８号、特開昭５７−１６０４６５号）、及びポリアミノ酸と水溶性多糖類とからなる水不溶性の人工担体（特開平２−１０３４７０号、特開平６−１３００６０号）等が開示されている。しかし、製造工程が多段階にわたり複雑であるため、低分子抗原を結合させた各種担体を製造することは困難である。
【０００４】
上記のような水不溶性の固相（担体）に抗原又は抗体を結合させる方法には、主に物理吸着、共有結合等による方法が知られている（「固定化酵素」千畑一郎編 講談社サイエンティフィク（１９８６）第９−４５頁参照）。共有結合による方法に比べ、物理吸着法は簡便であり、かつ、吸着させる抗原又は抗体の活性を損なうことがないという利点を有する。しかしながら、抗原が低分子である場合、水不溶性固相との相互作用が弱いため、抗原を物理吸着させることは困難であった。
【０００５】
従来、上記の問題点を解決するため、低分子抗原をキャリア蛋白質（高分子担体）に、架橋剤又はカップリング剤を使用して共有結合させる方法が知られている（特開昭５６−７１０２３号）。この方法に用いるキャリア蛋白質としては、例えば、ウシの血清アルブミン、ヒトの血清アルブミン、卵のアルブミン、ポリリジン等を用いることができる。しかしながら、ウシの血清アルブミン、ヒトの血清アルブミン、卵のアルブミン等の天然由来の蛋白質を担体として用いた場合、生体成分中の免疫グロブリンの一部がキャリア蛋白質に対して反応性を示す場合があり、このような非特異的反応を低下させる必要があった。
【０００６】
上記のキャリア蛋白質に、低分子の抗原を共有結合させる方法としては、従来から行われているハプテン抗原の作製法（「酵素免疫測定法」蛋白質核酸酵素 別冊３１（１９８７）第２８−３３頁）、ハプテンの酵素標識法（「酵素免疫測定法」蛋白質核酸酵素 別冊３１（１９８７）第４６−５０頁）を適用することができ、例えば抗原に存在する官能基を活性化する方法、キャリア蛋白質に存在する官能基を活性化する方法、抗原及びキャリア蛋白質の双方に反応性を有する２価架橋剤を用いる方法等が知られている。しかしながら、抗原の官能基を活性化する場合、抗原自体の活性が消失したり、抗原が複数の官能基をあわせもっていると抗原−抗原分子間での結合又は重合反応が起きたりという問題が指摘されている。また、２価の反応基を持つ架橋剤としてはグルタルアルデヒドが繁用されている。グルタルアルデヒドは中性水溶液中では簡単な操作により反応を行うことができるという利点を有するが、抗原あるいはキャリア蛋白質単独で重合反応を起こしやすく、結合効率が悪いという欠点を持つ。一方、キャリア蛋白質の官能基を活性化して抗原と結合させる方法には、過ヨウ素酸酸化法が知られている（特開平８−１１４５９２号）。この方法は、キャリア蛋白質のジオール構造を過ヨウ素酸で酸化し、生じたアルデヒドを利用して、抗原のアミノ基と結合させるものである。この方法は、キャリア蛋白質と抗原との結合効率が良く、官能基の活性化による抗原自身の活性の低下を防ぐことができる。しかしながら、分子中にジオール構造を十分に持たないポリリジンのようなキャリア蛋白質では利用することができない。
【０００７】
【特許文献１】
特開昭５６−７１０２３号公報
【０００８】
【特許文献２】
特開平８−１１４５９２号公報
【０００９】
【特許文献３】
特開昭５８−２０９９８４号公報
【００１０】
【特許文献４】
特開昭６２−１１８２５６号公報
【００１１】
【特許文献５】
特開昭５７−１５３６５８号公報
【００１２】
【特許文献６】
特開昭５７−１６０４６５号公報
【００１３】
【特許文献７】
特開平２−１０３４７０号公報
【００１４】
【特許文献８】
特開平６−１３００６０号公報
【００１５】
【非特許文献１】
「固定化酵素」千畑一郎編 講談社サイエンティフィク（１９８６）第９−４５頁
【００１６】
【非特許文献２】
「酵素免疫測定法」蛋白質核酸酵素 別冊３１（１９８７）第２８−３３頁
【００１７】
【非特許文献３】
「酵素免疫測定法」蛋白質核酸酵素 別冊３１（１９８７）第４６−５０頁
【００１８】
【発明が解決しようとする課題】
検体中の微量の標的抗体を検出するために、低分子抗原の活性を損なうことなく担体に結合させることができれば、医療分野における各種疾病等の迅速かつ簡便な診断に使用することが可能となる。
【００１９】
従って、本発明の目的は、低分子抗原であるペプチドを高効率で、しかもペプチドの活性を損なうことなく結合できるポリアミノ酸担体を提供することである。また、本発明の目的は、前記ポリアミノ酸担体にペプチドを結合させたペプチド結合担体の製造方法、及び該方法によって製造されるペプチド結合ポリアミノ酸担体を提供することである。
【００２０】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、特定のアミノ酸残基を有するポリアミノ酸及び特定の反応基を有するポリアミノ酸担体を用いることにより、ペプチドの抗原性を損なわずにポリアミノ酸担体に結合させることができることを見出し、本発明を完成させた。
【００２１】
具体的には、本発明のペプチド結合用ポリアミノ酸担体は、ポリアミノ酸担体の側鎖にアミノ基、カルボキシル基、スルフヒドリル基若しくは水酸基から選択される反応基を有する、単一若しくは２ないし４種類のアミノ酸から選択されるアミノ酸残基からなるポリアミノ酸、及び前記反応基の全部又は一部に、架橋構造を介して又は介さずに結合している、ジオール構造若しくはアミノアルコール構造とからなる、ことを特徴とする。また、本発明は、前記ポリアミノ酸担体にペプチドを結合させたペプチド結合担体の製造方法、及び該方法によって製造されたペプチド結合ポリアミノ酸担体を提供する。
【００２２】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の説明のために、好ましい実施形態に関して詳述する。
【００２３】
（１）ポリアミノ酸担体
▲１▼アミノ酸
本発明のポリアミノ酸担体に使用するアミノ酸の具体例としては、グリシン、アラニン、バリン、ノルバリン、ロイシン、イソロイシン、ノルロイシン、セリン、スレオニン、システイン、メチオニン、アスパラギン、グルタミン、プロリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン等の中性アミノ酸；アスパラギン酸、グルタミン酸等の酸性アミノ酸；リジン、オルニチン、アルギニン、ヒスチジン等の塩基性アミノ酸が挙げられる。
【００２４】
ポリアミノ酸担体を構成するアミノ酸は、その側鎖に、反応基、例えば、アミノ基、カルボキシル基、スルフヒドリル基、又は水酸基を有することが好ましい。
【００２５】
好ましくは、アミノ基を有するアミノ酸は、アスパラギン、グルタミン、プロリン、トリプトファン、リジン、アルギニン、ヒスチジン、オルニチンである。
【００２６】
好ましくは、カルボキシル基を有するアミノ酸は、アスパラギン酸、グルタミン酸である。
【００２７】
好ましくは、スルフヒドリル基を有するアミノ酸は、システインである。
【００２８】
好ましくは、水酸基を有するアミノ酸（ヒドロキシアミノ酸）は、セリン、スレオニンである。
【００２９】
より好ましくは、本発明のポリアミノ酸担体に使用するアミノ酸は、リジン、オルニチンである。最も好ましくは、リジンである。
【００３０】
また、上記アミノ酸は、グリシン以外の場合、少なくとも一つの不斉炭素原子をもち、光学的に活性であり、Ｄ形、Ｌ形に区別されるが、本発明のおいては、これらの形を区別することなく使用することができる。
【００３１】
さらに、本発明のポリアミノ酸担体に使用されるアミノ酸は、その側鎖の反応基を適当な保護基で保護されたアミノ酸誘導体であってもよい。本明細書において「アミノ酸」と言及するときは、このようなアミノ酸誘導体も含む。保護基は、アミノ酸の反応基を保護するために使用可能な化合物であれば、特に限定されないが、例えば、アミノ酸の水酸基にはｔ−ブチル（ｔ−Ｂｕ）基、ベンジル（Ｂｚｌ）基等、アミノ基にはｔ−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基、ベンジルオキシカルボニル（Ｚ）基、９−フルオレニルメトキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）基等が使用できる。
【００３２】
▲２▼ポリアミノ酸
本発明のポリアミノ酸担体に使用するポリアミノ酸は、典型的には、前記アミノ酸又はアミノ酸誘導体から選択される単一又は２ないし４種類のアミノ酸残基により構成される。
【００３３】
ポリアミノ酸が単一アミノ酸から構成される場合には、側鎖にアミノ基、カルボキシル基、スルフヒドリル基又は水酸基から選択される反応基を有するアミノ酸が使用される。ポリアミノ酸が２から４種類のアミノ酸から構成される場合には、側鎖にアミノ基、カルボキシル基、スルフヒドリル基若しくは水酸基から選択される反応基を有するアミノ酸を含むランダムポリマー又は２ないし４種類のアミノ酸残基で構成される単位（リジン−アラニン等）の繰り返し構造からなるポリマーを使用することができる。２ないし４種類のアミノ酸からなるランダムポリマーとして、より好ましくは、リジンと中性アミノ酸（アラニン、フェニルアラニン、セリン、トリプトファン、チロシン）からなるランダムポリマー、オルニチンと中性アミノ酸（ロイシン、セリン、トリプトファン、チロシン）からなるランダムポリマー、グルタミン酸と中性アミノ酸（アラニン、ロイシン、フェニルアラニン、チロシン）からなるランダムポリマー又はアルギニンと中性アミノ酸（セリン、トリプトファン、チロシン、プロリン、スレオニン）からなるランダムポリマー等が使用できる。さらに、リジンとグルタミン酸からなるランダムポリマー又はリジンとグルタミン酸と中性アミノ酸（アラニン、チロシン）からなるランダムポリマー等が使用できる。
【００３４】
上記の単一又は２ないし４種類のアミノ酸により構成されたポリアミノ酸は、天然のタンパク質のアミノ酸配列には見出されにくいものである。このような人工的な配列が生体内に侵入し抗体の産生を誘起する可能性は、通常極めて低いと考えられる。よって、血清、血漿等の生体成分中には本発明のポリアミノ酸担体に対する抗体がほとんど存在しないため、ウシ血清アルブミン等の天然由来の蛋白質からなる担体と異なり、免疫測定において担体に対する非特異的反応が実質的に生じない又は大幅に軽減されることとなる。本発明のポリアミノ酸担体に使用するポリアミノ酸は、前記構造を有するものであれば特に限定はされないが、側鎖の反応基と架橋構造又はアミノアルコール構造との結合の容易さから、ポリアミノ酸がリジン残基又はオルニチン残基を含んでいることが好ましい。
【００３５】
本発明のポリアミノ酸担体に使用するポリアミノ酸は、一般的な合成方法、例えば、前記アミノ酸のＮ−炭酸無水物を乳化重合又は不均一重合する方法（特開平９−１５１２５０号）等で製造することができる。また、市販されているポリアミノ酸（例えば、ポリ−Ｌ−リジン ＭＷ３０，０００−７０，０００又はＭＷ１５０，０００−３００，０００等（シグマ社））を使用することも可能である。
【００３６】
本発明のポリアミノ酸担体に使用するポリアミノ酸の分子量は、ポリアミノ酸を合成するための重合条件、例えば、溶媒、触媒、重合温度、反応時間等を変化させることによって、調節することができる。前記ポリアミノ酸の分子量は、好ましくは粘度平均分子量１，０００〜３００，０００、より好ましくは粘度平均分子量８，０００〜３００，０００である。
【００３７】
また、本発明のポリアミノ酸担体は、構成するアミノ酸の側鎖にある反応基と架橋構造、及び／又は、架橋構造とジオール構造若しくはアミノアルコール構造がアミド結合によって結合していることが好ましい。あるいは、前記反応基とジオール構造若しくはアミノアルコール構造が、架橋構造を介さずに、直接、アミド結合によって結合していてもよい。
【００３８】
本願明細書において、「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」には、酸化によってアルデヒド基を生成できる化学構造を有する化合物が含まれる。ここで、「ジオール構造」とは、２個の水酸基が２個の相異なる炭素原子に結合している構造をいう。また、「アミノアルコール構造」とは、同一分子内にアミノ基とアルコール性の水酸基を有する構造であり、隣り合う２個の炭素原子の一方にアミノ基を有し、他方にアルコール性の水酸基を有する構造が好ましい。本発明のペプチド結合用ポリアミノ酸担体は、「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」の酸化処理によってアルデヒド基を生成し、当該アルデヒド基部分にペプチドを結合させることが可能である。
【００３９】
本発明において使用する「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」を有する化合物は、さらに、架橋構造と、あるいはポリアミノ酸担体を構成するアミノ酸の側鎖にある反応基と直接、結合できるような基を有することが望ましい。例えば、架橋構造又は反応基（以下、「架橋構造等」という場合がある。）がアミノ基を有する場合、「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」を有する化合物はカルボキシル基を有し、架橋構造等とアミド結合を形成することが好ましい。架橋構造等がカルボキシル基を有する場合には、「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」を有する化合物はアミノ基を有し、架橋構造等とアミド結合を形成できることが好ましい。「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」を有する化合物は、好ましくはヒドロキシアミノ酸、最も好ましくは、セリン残基、スレオニン残基である。
【００４０】
本願明細書において、「架橋構造」とは、本発明のポリアミノ酸を構成するアミノ酸又はアミノ酸誘導体の側鎖にある反応基と、アルデヒド基を生成させるためのジオール構造若しくはアミノアルコール構造とを連結するための架橋剤の構造である。
【００４１】
本発明において使用される架橋剤は、前記反応基とジオール構造若しくはアミノアルコール構造とを結合させ得る化合物である。好ましくは、架橋構造の一方の末端がカルボキシル基及び他の末端がアミノ基からなる化合物、又は架橋構造の両端がアミノ基である化合物（ジアミノ化合物）である。例えば、架橋構造の一方の末端がカルボキシル基及び他の末端がアミノ基からなる化合物で、かつ、前記反応基がアミノ基の場合、架橋構造中のカルボキシル基は前記反応基とアミド結合を形成し、そして架橋構造中のアミノ基は、好ましくはカルボキシル基を有するジオール構造若しくはアミノアルコール構造とアミド結合をする。あるいは、架橋構造の両端がアミノ基である化合物（ジアミノ化合物）で、かつ、前記反応基がカルボキシル基の場合、架橋構造中のもう一方のアミノ基は、好ましくはカルボキシル基を有するジオール構造若しくはアミノアルコール構造とアミド結合を形成する。好ましい架橋構造は、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）又はエチレンジアミンである。
【００４２】
また、架橋構造は、１又はそれより多くの、及び同種又は異種の前記化合物を直鎖状又は分枝鎖状に結合した架橋剤からなっていてもよい。一方、本発明の目的であるように、担体に結合された場合の低分子抗原の活性が損なわなければ、上述した架橋構造はなくてもよく、ポリアミノ酸担体の反応基にジオール構造若しくはアミノアルコール構造が結合してもよい。
【００４３】
また、本発明のポリアミノ酸担体は、架橋構造を介して又は介さずに、ジオール構造若しくはアミノアルコール構造と結合している反応基が、好ましくは、側鎖の反応基のうち３％ないし３０％であり、より好ましくは、５％ないし２０％である。
【００４４】
上記の本発明のポリアミノ酸担体は、下記の製造方法によって調製されるが、より具体的には、後述する実施例１及び２に従って調製することができる。
【００４５】
（２）ポリアミノ酸担体の製造方法
本発明のポリアミノ酸担体の製造方法は、使用するアミノ酸の反応基、ジオール構造若しくはアミノアルコール構造を有する化合物、及び架橋剤の種類に応じて当業者が適当な方法で用いることができる。本発明のポリアミノ酸担体の製造方法の好ましい態様を以下に示すが、本発明のポリアミノ酸担体の特徴を有する限り、その製造方法は限定されない。
【００４６】
本発明のポリアミノ酸担体の製造方法は、例えば、側鎖中の反応基としてアミノ基を有するポリアミノ酸、アミノアルコール構造を有するヒドロキシアミノ酸、及び各末端にカルボキシル基／アミノ基をもつ２価の架橋剤を出発原料として用いる場合には、下記の工程：
（ｉ）ヒドロキシアミノ酸のアミノ基及び水酸基を保護すること；
（ｉｉ）保護されたヒドロキシアミノ酸のカルボキシル基を活性化すること；
（ｉｉｉ）架橋剤のアミノ基と活性化したヒドロキシアミノ酸のカルボキシル基とを反応させ、アミド結合を形成させること；
（ｉｖ）（ｉｉｉ）の化合物中の架橋剤構造由来のカルボキシル基を活性化すること；
（ｖ）ポリアミノ酸のアミノ基と（ｉｖ）の化合物中の架橋剤由来のカルボキシル基と反応させ、アミド結合を形成させること；そして
（ｖｉ）（ｉ）で保護されたヒドロキシアミノ酸のアミノ基及び水酸基を脱保護すること；
を含む。
【００４７】
（ｉ）−（ｉｉｉ）の工程と、（ｉｖ）−（ｖ）の工程は、順序を逆にして、（ｉｖ）−（ｖ）の工程を先に行ってもよい。
【００４８】
ここで、（ｉ）の工程のヒドロキシアミノ酸のアミノ基及び水酸基の保護は、一般的な方法、例えば、生化学実験講座第１巻、タンパク質の化学ＩＶ、化学修飾とペプチド合成、ｐ．２７０、成田耕造ら、東京化学同人（１９７７年）に従って行うことができるが、市販品を用いてもよい。ヒドロキシアミノ酸のアミノ基を保護するための試薬としては、Ｂｏｃ基、Ｚ基、Ｆｍｏｃ基等を使用することができる。また、ヒドロキシアミノ酸残基の水酸基を保護するための試薬としては、ｔ−Ｂｕ基、Ｂｚｌ基等を使用することができる。一方、保護されたヒドロキシアミノ酸残基の脱保護には、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、無水フッ化水素、ＨＢｒ／酢酸、ピペリジン／ＤＭＦ、水酸化ナトリウム水溶液等の酸又はアルカリ溶液を使用することができる。
【００４９】
工程（ｉｉ）及び（ｉｖ）のカルボキシル基の活性化には、例えば、スクシンイミドエステル基、ｐ−ニトロフェニル基を使用することができる。
【００５０】
工程（ｉｉｉ）及び（ｖ）のアミド結合を形成させる反応は、公知の方法を用いて行うことができる。例えば、ＤＭＦ、ジオキサン、ＤＭＳＯ等の溶媒中、炭酸水素ナトリウム、炭酸ナトリウム、トリエチルアミン等の弱アルカリの存在下で、通常、室温で１−２４時間反応させる。
【００５１】
他の側面として、本発明の製造方法によって、架橋構造を有しないポリアミノ酸担体を製造するためには、（ｉｉｉ）及び（ｉｖ）の工程を省略することによって達成し得る。
【００５２】
さらに他の側面として、本発明の製造方法によって、架橋構造を１より多く導入する場合には、（ｉｉｉ）及び（ｉｖ）の工程を繰り返すことによって達成し得る。
【００５３】
また、本発明のポリアミノ酸担体の製造方法は、例えば、側鎖中の反応基としてカルボキシル基を有するポリアミノ酸、アミノアルコール構造を有するヒドロキシアミノ酸残基、及び両末端にアミノ基をもつ架橋剤を用いる場合には、下記の工程：
（ｉ）ヒドロキシアミノ酸のアミノ基及び水酸基を保護すること；
（ｉｉ）ヒドロキシアミノ酸のカルボキシル基を活性化すること；
（ｉｉｉ）架橋剤のアミノ基と活性化したヒドロキシアミノ酸中のカルボキシル基とを反応させ、アミド結合を形成させること；
（ｉｖ）縮合剤を用いてポリアミノ酸中のカルボキシル基と（ｉｉｉ）の化合物中の架橋剤構造由来のアミノ基とを反応させ、アミド結合を形成させること；そして
（ｖ）（ｉ）で保護されたヒドロキシアミノ酸のアミノ基及び水酸基を脱保護すること；
を含む。
【００５４】
ここで、前記工程（ｉｖ）で使用される縮合剤は、アミド結合を形成可能な試薬であれば、特に限定されないが、例えば、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸（ＷＳＣ）、ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）等を使用することができる。
【００５５】
他の好ましい態様として、本発明のポリアミノ酸担体の製造方法によれば、架橋構造を介して又は介さずに、ジオール構造若しくはアミノアルコール構造と結合している反応基の導入パーセントが異なるポリアミノ酸担体を製造することができるが、これは、上記の工程（ｉｉｉ）において生成した化合物の使用量を加減することによって達成される。
【００５６】
上記ポリアミノ酸担体の製造は、公知の方法（例えば、Ｍｅｚｏら、Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌ．Ｒｅｌｅａｓｅ，６３，８１−９５（２０００））に基づいて行うことができる。
【００５７】
（３）ペプチドを結合したポリアミノ酸担体とその製造方法
本発明は、上述したポリアミノ酸担体にペプチドを結合させることを含むペプチド結合担体の製造方法、及び該方法によって製造されるペプチド結合ポリアミノ酸担体に関する。本発明のペプチド結合用ポリアミノ酸担体は、「ジオール構造若しくはアミノアルコール構造」を有することを特徴とする。先ず、これらの構造を酸化処理してアルデヒド基を生成し、次いで、当該アルデヒド基部分にペプチドを結合させることが可能である。
【００５８】
▲１▼製造方法
限定されるわけではないが、本発明のペプチド結合担体の製造方法は、例えば、下記の工程：
（ｉ）ポリアミノ酸担体のジオール構造若しくはアミノアルコール構造を酸化処理によってアルデヒド基を生成すること；
（ｉｉ）一方、所期のペプチドのＮ末端にあらかじめヒドラジノ基を導入すること；そして
（ｉｉｉ）（ｉ）のポリアミノ酸担体と（ｉｉ）のペプチドとを結合させること
を含む。
【００５９】
本発明のペプチド結合担体の製造方法に従えば、ジオール構造若しくはアミノアルコール構造からアルデヒド基を生成させるための酸化処理は特に限定されないが、例えば、過ヨウ素酸酸化法を用いることができる。
【００６０】
また、本発明のポリアミノ酸担体に結合されるペプチドには、検体中の標的抗体に対する抗原を用いることができる。このような抗原の大きさは、特に限定されないが、標的抗体に対する抗原のエピトープを少なくとも１つ含むペプチドであることが好ましい。本願明細書において、「ペプチド」というときは、２個以上のアミノ酸残基がアミド結合によって結合したものをいう。本発明によれば、使用されるペプチドは、アミノ酸残基が３個以上あればよく、好ましくは３−５０個、より好ましくは１０−２０個である。
【００６１】
なお、本発明に使用されるペプチドは特に限定されず、天然産のペプチド、遺伝子工学的手法により組換えＤＮＡから発現されたペプチド、化学合成したペプチド、あるいは蛋白質の酵素処理によって生成したペプチドの何れでもよい。例えば、本願明細書中の実施例３では、ＨＩＶ−２外皮タンパク質ｇｐ３６由来のアミノ酸配列を有する、１２ｍｅｒ及び１８ｍｅｒのアミノ酸残基からなるＨＩＶ−２ ｇｐ３６合成ペプチドを使用した。
【００６２】
さらに、本発明は、ポリアミノ酸担体に生成されたアルデヒド基と、前記ペプチド中のアミノ基を結合させることを特徴とする。この結合には、該ポリアミノ酸担体へペプチドの結合効率、ペプチドの活性を損なわないこと、及びペプチドへの抗体の反応性等を考慮して、ペプチド中の側鎖ではなくＮ末端のアミノ基を使用することが好ましい。または、アミノ基を有するアミノ酸をペプチドのＮ末端若しくはＣ末端に結合し、該アミノ酸を使用することが好ましい。
【００６３】
より好ましくは、ポリアミノ酸担体のアルデヒド基とペプチドのアミノ基の選択的結合性を高めるため、ぺプチドの末端にあらかじめヒドラジノ基を導入したペプチドを調製し、使用する。最も好ましくは、後述する実施例２に示すように、ヒドラジノ基の導入のために使用される試薬として、ε−アミノ基にヒドラジノ基を有するヒドラジノベンゾイルリジンを用いる。
【００６４】
▲２▼ペプチド結合ポリアミノ酸担体
本発明のペプチド結合ポリアミノ酸担体は、固相に結合させることにより抗体又は抗原を測定するための免疫測定試薬として用いることができる。前記固相としては、ポリスチレン、ポリエチレン、セファロース等の材質からなるプレート、ビーズ、メンブレンなどが使用できる。これらの固相は、緩衝液中に溶解したペプチド結合ポリアミノ酸担体と接触させることにより、その表面にポリアミノ酸担体を物理吸着できる固相である。緩衝液としては、ペプチド結合ポリアミノ酸担体が安定に存在でき、固相への吸着が阻害されないｐＨが中性からアルカリ性の条件であれば、一般的な緩衝液、例えばリン酸緩衝液、トリス−ＨＣｌ緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水が使用できる。このように本発明のペプチド結合ポリアミノ酸担体は、穏和な条件で固相に結合させることができるので、ペプチドの抗原性を損なうことなく簡便に免疫測定に供することができる。
【００６５】
このようなペプチド結合ポリアミノ酸担体が吸着した固相からなる免疫測定試薬は、サンドイッチ法、競合法等の公知の免疫測定法に使用することができる。例えば、ヒトについての抗ＨＩＶ−１抗体を測定する場合には、ＨＩＶ−１由来のペプチド断片または合成ペプチドを結合したポリアミノ酸担体を固相に吸着させた免疫測定試薬に、検体又は希釈した検体を接触させ、第１の免疫複合体を形成させた後、固相を洗浄し、続いて、標識抗ヒトＩｇＧ抗体をこの免疫複合体と接触させ、生じた第２の免疫複合体を検出することによって、検体中の抗ＨＩＶ−１抗体を検出することができる。
【００６６】
【実施例】
以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
【００６７】
実施例１．セリン化ポリリジン（ＳｐＫ１）の合成
（ａ）Ｎα−ｔ−ブトキシカルボニル−Ｏ−ｔ−ブチル−Ｌ−セリル−γ−アミノ酪酸（１）の合成
アミノアルコール構造を有するセリンと架橋剤としてγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）を用いて、標記の架橋構造を有するセリンを合成した（スキーム１）。市販されているセリンのアミノ基及び水酸基があらかじめ保護されているセリンを使用した。
【００６８】
Ｎα−ｔ−ブトキシカルボニル−Ｏ−ｔ−ブチル−Ｌ−セリン２．６１ｇ、Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミド１．２７ｇをＮ，Ｎ−ジメチルフォルムアミド（以下、ＤＭＦという。）に溶解し、氷冷下、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩２．１１ｇを加え、室温で終夜攪拌した。
【００６９】
反応液に酢酸エチルと水を加え、よく攪拌して分液した。水相を酢酸エチルで抽出し、有機相を合わせて、５％クエン酸水溶液、水、５％炭酸水素ナトリウム水溶液、水の順で洗浄し、無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥させた。
【００７０】
酢酸エチルを溜去し、残渣をＤＭＦに溶解し、ＧＡＢＡ１．０３ｇと炭酸水素ナトリウム０．８４ｇを水に溶解して加え、終夜攪拌した。
【００７１】
反応液に酢酸エチルと水を加え、６Ｎ塩酸でｐＨを約３として分液した。水相を酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル相を合わせて水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。
【００７２】
酢酸エチルを溜去すると結晶化した。ｎ−ヘキサンを加えて結晶を濾取した。収量２．７７ｇ（８０％）
（ｂ）Ｎα−ｔ−ブトキシカルボニル−Ｏ−ｔ−ブチル−Ｌ−セリル−γ−アミノ酪酸 Ｎ−コハク酸イミドエステル（２）
上記で調製した化合物（１）のカルボキシル基をスクシンイミドエステルで活性化した（スキーム１）。
【００７３】
化合物（１）１．０４ｇ、Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミド０．３８ｇをＤＭＦに溶解し、氷冷下１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩０．６３ｇを加え、室温で終夜攪拌した。
反応液に水と酢酸エチルを加え、よく攪拌して分液した。水相を酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル相を合わせて５％クエン酸水溶液、水、５％炭酸水素ナトリウム水溶液、水の順で洗浄し、無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥した。
【００７４】
酢酸エチルを溜去すると結晶化した。ｎ−ヘキサンを加えて結晶を濾取した。収量１．２１ｇ（９１％）
スキーム１
【００７５】
【化１】
（ｃ）ポリリジン｛Ｂｏｃ−セリン（ｔ−ブチル）−γ−アミノ酪酸｝（３）上記で製造した化合物（２）とポリリジンとをペプチド結合させて、標記化合物（３）を得た（スキーム２）。
【００７７】
ポリリジン（シグマ社製Ｎｏ．Ｐ２６３６、ＭＷ（粘度）３０，３００）２０ｍｇを０．１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液１ｍｌに溶解し、化合物（２）８．９ｍｇをＤＭＦ２００μｌに溶解して加え、室温で３時間攪拌した。反応液に酢酸１００μlを加えて透析チューブに移し、水に対して室温３時間透析した後、凍結乾燥した。収量２２．０ｍｇ
スキーム２
【００７８】
【化２】
（ｄ）ポリリジン｛Ｂｏｃ−セリン（ｔ−ブチル）−γ−アミノ酪酸、スクシニル｝（４）
上記で製造した化合物（３）におけるポリリジンの未反応のアミノ基に無水コハク酸を反応させ、修飾した（スキーム３）。
【００８０】
上記の化合物（３）１０ｍｇを１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液１ｍｌに溶解し、無水コハク酸２５ｍｇをＤＭＦ２５０μｌに溶解して加え、室温で２時間攪拌した。反応液を透析チューブに移し、水に対し４℃で一夜透析した後、凍結乾燥した。収量１３．７ｍｇ
（ｅ）ポリリジン｛セリン−γ−アミノ酪酸、スクシニル｝（５）
上記で製造した化合物（４）を脱保護し、標記化合物（５）を得た（スキーム３）。
【００８１】
化合物（４）の全量を水２５μｌとトリフルオロ酢酸５００μｌに溶解して、室温で１時間攪拌した。反応液に水を加えて凍結乾燥した。１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解し、水に対して室温で３時間透析した後、凍結乾燥した。収量１０．７ｍｇ
スキーム３
【００８２】
【化３】
加水分解後のアミノ酸分析により、ポリリジンの反応基の中で、アミノアルコール構造が結合している反応基の割合を調べた。化合物（２）とポリリジンの反応基をモル比１：５で混合した場合には、ポリリジンの反応基４．６に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応していた。
【００８４】
（ｆ）さらに、アミノアルコール構造と結合している反応基の割合が異なるポリリジン担体を調製するため、上記の化合物（２）とポリリジンの混合比を変化させて、同様の方法でセリン化ポリリジンを調製した。上記の化合物（２）とポリリジンの反応基のモル比が１：１０で混合した場合には、ポリリジンの反応基９．６に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応した。また、上記の化合物（２）とポリリジンの反応基のモル比が１：２０で混合した場合には、ポリリジンの反応基１９．２に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応した。
【００８５】
実施例２．セリン化ポリリジン（ＳｐＫ２）の合成２
分子量の異なるポリリジンを用いて、上記実施例１と同様の方法でセリン化ポリリジン（ＳｐＫ２）を調製した。ポリリジンは、シグマ社製Ｎｏ．Ｐ１３９９、ＭＷ（粘度）１８９，４００を５０ ｍｇ用いた。アミノアルコール構造と結合している反応基の割合が異なるポリリジン担体を調製するため、上記の化合物（２）とポリリジンの反応基のモル比が１：１０で混合した場合には、ポリリジンの反応基９．９に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応した。また、上記の化合物（２）とポリリジンの反応基のモル比が１：２０で混合した場合には、ポリリジンの反応基２０．２に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応した。
【００８６】
実施例３．ヒドラジノペプチドの合成
（１）４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）安息香酸の合成
４−ヒドラジノ安息香酸１５．２ｇをアルゴン気流下、水５０ｍｌに縣濁し、水酸化ナトリウム４．８ｇを加えて溶解した。二炭酸ジ−ｔ−ブチル２６．２ｇを１，４−ジオキサン５０ｍｌに溶解して加えて、一夜攪拌した。減圧下に溶媒を約半分溜去し、水を加えて酢酸エチルで２回洗った。水相に酢酸エチルを加え、６Ｎ塩酸で中和し、分液した。もう一度酢酸エチルを加え、６Ｎ塩酸でｐＨを３に調整し、分液した。酢酸エチル相を合わせて、水で２回洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を溜去すると結晶が析出した。結晶を濾取し、酢酸エチルで洗った。収量１６．９ｇ（６７％）
母液を濃縮すると結晶が析出した。濾取し酢酸エチルで洗浄した。収量４．８ｇ。合わせて２１．７ｇ（８６％）。
【００８７】
（２）４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）安息香酸Ｎ−スクシンイミドエステルの合成
４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）安息香酸５．０５ｇとＮ−ヒドロキシスクシンイミド２．５３ｇをジメチルホルムアミド（以下ＤＭＦ）に溶解し、氷冷下、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩４．２２ｇを加え終夜攪拌した。反応液に酢酸エチルを加え、水、５％炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水で洗った。結晶が析出した。濾取し、五酸化二燐上で乾燥した。母液を濃縮し、析出した結晶を濾取し、五酸化二燐上で乾燥した。初めに析出した結晶と合わせて６．１５ｇ（８８％）の表題化合物を得た。
【００８８】
（３）Ｎα−（９−フルオレニルメトキシカルボニル）−Ｎε−（４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）ベンゾイル）−Ｌ−リジンの合成
Ｎα−（９−フルオレニルメトキシカルボニル）−Ｌ−リジン３．０ｇと炭酸水素ナトリウム０．６５ｇを水とＤＭＦに縣濁し、氷冷下、４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）安息香酸Ｎ−スクシンイミドエステル２．７ｇをＤＭＦに溶解して加えた。室温で終夜攪拌した。反応液に酢酸エチルと水を加え、６Ｎ塩酸で酸性にし、分液した。水相を酢酸エチルで２回抽出し、酢酸エチル相を合わせて水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥した。溶媒を溜去し、得られた油状の残渣を、減圧下に乾燥すると固化した。収量３．５０ｇ（７５％）。
【００８９】
（４）ヒドラジノ基を有するＨＩＶ−２ｇｐ３６合成ペプチドの合成
ＨＩＶ−２外皮タンパク質ｇｐ３６より誘導される抗体を検出するための抗原ペプチドとして、ＨＩＶ−２ｇｐ３６のアミノ酸配列から１１残基及び１７残基を選択し、ペプチドの合成をおこなった。公知のＦｍｏｃ法に従い、ペプチド合成機ＰＳＳＭ−８（島津製作所）を用いて、１１残基及び１７残基のアミノ酸を結合させ、最後にＮα−（９−フルオレニルメトキシカルボニル）−Ｎε−（４−（ｔ−ブトキシカルボニルヒドラジノ）ベンゾイル）−Ｌ−リジンを加えることにより、Ｎ末端のリジンにヒドラジノ基を有するＨＩＶ−２ｇｐ３６合成ペプチドを作成した。
【００９０】
ヒドラジノペプチドの構造
１２残基の配列
Lys（HBz）−Asn−Ser−Trp−Gly−Cys−Ala−Phe−Arg−Gln−Val− Cys（配列番号１）
HBz ＝ヒドラジノベンゾイル
１８残基の配列
Lys（HBz）−Gln−Asp−Gln−Ala−Arg−Leu−Asn−Ser−Trp−Gly−Cys−Ala−Phe−Arg−Gln−Val− Cys（配列番号２）
実施例４．セリン化ポリリジンとヒドラジノペプチドとの複合体の作製
上記実施例２で製造した、ポリリジンの反応基２０．２に対してアミノアルコール構造が１の割合で反応した化合物（５）を過ヨウ素酸酸化し、上記実施例３で製造したヒドラジノペプチドを結合したペプチド結合ポリリジン担体を調製した（スキーム４）。
【００９１】
化合物（５）２ｍｇを１０ｍＭ炭酸水素ナトリウム水溶液１ｍｌに溶解し、１００ｍＭ過ヨウ素酸ナトリウム水溶液４０μｌを加えて、室温で２０分間攪拌した。反応液を１０ｍＭ炭酸水素ナトリウム水溶液で平衡化したＰＤ−１０カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけて、同溶液で溶出した。最初の溶出液２．５ｍｌは採取せず、続く２．０ｍｌを回収した。この溶液にヒドラジノペプチドを１０ｍＭ炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解して（１ｍｇ／ｍｌ）加え、室温で３時間攪拌した。４００ｍＭヒドロキシアミン塩酸塩／１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液１０μｌを加え、３０分間撹拌した。酢酸２０μｌを加え、３０分間撹拌した。酢酸２０μｌを加えて溶液のｐＨを約５として透析チューブに移し、水に対して４℃、一夜透析した後、凍結乾燥した。
【００９２】
加水分解後のアミノ酸分析によりペプチドの導入率を調べたところ、ポリリジンの反応基２０に対してペプチドを１の割合（ポリリジン担体上のアミノアルコール構造１に対して、ペプチドを約１の割合）で混合した場合には、ポリリジンの反応基４５．５に対してペプチドが１の割合で反応した。また、ポリリジンの反応基４０に対してペプチドを１の割合（ポリリジン担体上のアミノアルコール構造１に対して、ペプチドを約０．５の割合）で混合した場合には、ポリリジンの反応基６２．５に対してペプチドが１の割合で反応した。
【００９３】
スキーム４
【００９４】
【化４】
参考例１．卵白アルブミンとヒドラジノペプチドとの複合体の作製
以下の実施例６において、本発明のペプチド結合ポリリジン担体による免疫反応と比較検討するために、上記実施例３で製造したヒドラジノペプチドを天然由来の蛋白質である卵白アルブミンに結合させた。
【００９６】
卵白アルブミン４ｍｇを１ｍｌの水に溶解し、１００ｍＭ過ヨウ素酸ナトリウム水溶液２００μｌを加え、室温で２０分間攪拌した。反応液を１ｍＭ酢酸水溶液で平衡化したＰＤ−１０カラム（アマシャムバイオサイエンス社製）にかけて、同溶液で溶出した。最初の溶出液２．５ｍｌを採取せず、続く２．０ｍｌを回収した。
【００９７】
この溶液２０００μｌに２００ｍＭ炭酸ナトリウム水溶液２０μｌを加えた後、１７残基の抗原ペプチドからなるヒドラジノペプチド０．６４ｍｇを０．１Ｍ炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解（３ｍｇ／ｍｌ）して加え、室温で３時間攪拌した。反応液を透析チューブに移し、リン酸緩衝化食塩水（ＰＢＳ）に対して、４℃で一夜透析し、２ｍｌの溶液が得られた。ＢＣＡ法（ＰＩＥＲＣＥ社製）によるタンパク定量値は０．７１２ｍｇ／ｍｌであった。
【００９８】
実施例５．ペプチド結合ポリリジン担体によるＨＩＶ−２抗体の検出（１）
ＨＩＶ−２外皮タンパク質ｇｐ３６により誘導される抗体を検出するために、実施例１及び２で製造したペプチド結合ポリリジン担体を用いて簡易クロマトアッセイを行った。
【００９９】
（１）材料
ＨＩＶ−２ｇｐ３６合成ペプチド１２ｍｅｒ結合ポリリジン
ＨＩＶ−２ｇｐ３６合成ペプチド１８ｍｅｒ結合ポリリジン
アルカリホスファターゼ標識ＨＩＶ−２ｇｐ３６合成ペプチド１８ｍｅｒ
リン酸緩衝液：１０ｍＭリン酸緩衝液（０．１％ＢＳＡ，０．０５％ＳＤＳ，３％ ｓｕｃｒｏｓｅ）
基質液：５−Ｂｒｏｍｅ−４−ｃｈｌｏｒｏ−３−ｉｎｄｏｌｙｌ−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（ＲＯＣＨＥ，ＵＳＡ）
ＨＩＶ−２抗体陽性血清（Ｂｏｓｔｏｎ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａ Ｉｎｃ．，ＭＡ，ＵＳＡ）
ＨＩＶ−２抗体陰性血清（Ｔｒｉｎａ Ｉｎｃ．，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）
（２）実験方法及び結果
所定濃度に希釈した合成ペプチド結合ポリリジンを５×５０ｍｍに切断されたニトロセルロース膜ストリップ上に約０．７５μｌ点着した。この試験ストリップを特許第３２３７５４０号に記載のイムノクロマト試験用具にセットした。検体として、ＨＩＶ−２抗体陽性血清（ＰＲＦ２０２−０１、ＰＲＦ２０２−０５、ＰＲＦ２０２−０１５）をＨＩＶ−２抗体陰性血清で希釈して用いた。特開平９−２２９９３８号に記載の方法に準じて免疫反応を行い、反応の有無を確認した。その結果を表１に示す。
【０１００】
本発明の合成ペプチド結合ポリリジンをニトロセルロース膜上に固相化した場合、ＨＩＶ−２抗体陽性血清はいずれも顕著な反応を示した。対照としてペプチドのみを固相化した場合は、反応は認められなかった。陰性対照のＨＩＶ−２抗体陰性血清での反応は検出されなかった。本発明の合成ペプチド結合ポリリジンは、担体の分子量、ペプチドの結合数及びペプチド長に関らず、ペプチドの抗原性が損なわれることなく免疫測定の固相抗原として有用であることが明らかとなった。
【０１０１】
【表１】
実施例６．ペプチド結合ポリリジン担体によるＨＩＶ−２抗体の検出（２）
ＨＩＶ−２外皮タンパク質ｇｐ３６により誘導される抗体を検出するために、上述した実施例１及び２によって製造したペプチド結合ポリリジン担体を用いて、イムノブロッティングアッセイを行った。本発明のペプチド結合ポリリジン担体の効果を検討するために調製したペプチド結合卵白アルブミンと比較した。
【０１０３】
（１）材料
ＨＩＶ−２ ｇｐ３６合成ペプチド １８ｍｅｒ
ＨＩＶ−２ ｇｐ３６ペプチド１８ｍｅｒ結合オボアルブミン（ＯＶＡ；Ｓｉｇｍａ Ｃｈａｍｅｃａｌ Ｃｏ．Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＵＳＡ）
ＨＩＶ−２ ｇｐ３６ペプチド１８ｍｅｒ結合セリン化ポリリジン
炭酸緩衝液： ０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液、約ｐＨ９．０
リン酸緩衝液： ０．１Ｍリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、または０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ＰＢＳ−Ｔ）を含むもの
ＨＲＰＯウサギ抗マウスＩｇＧ（ＤＡＫＯ Ａ／Ｓ，デンマーク）
ＨＲＰＯウサギ抗ヒトＩｇＧ（ＤＡＫＯ Ａ／Ｓ，デンマーク)
基質液： １−クロロ４−ナフトール、０．０１％過酸化水素水（自社製）
検体：
抗ＨＩＶ−２ ｇｐ３６モノクローナル抗体（富士レビオ社製）
ＨＩＶ−２抗体陽性血清（Ｂｏｓｔｏｎ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａ Ｉｎｃ．，ＭＡ，ＵＳＡ）
ＨＩＶ−２抗体陰性検体（Ｔｒｉｎａ Ｉｎｃ．，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）
（２）実験方法及び結果
炭酸緩衝液で所定濃度に希釈した合成ペプチド、合成ペプチド結合ＯＶＡ、あるいは合成ペプチド結合セリン化ポリリジンを、５×５０ｍｍに切断されたニトロセルロース膜ストリップ上に約２μｌ点着した。この試験ストリップをインキュベーターを用いて３７℃で約１５分間乾燥させた。試験ストリップを試験管に入れ、検体として、ＰＢＳ−Ｔを用いて所定濃度に希釈したＨＩＶ−２モノクローナル抗体（陽性対照）、ＨＩＶ−２抗体陽性血清またはＨＩＶ−２抗体陰性血清（陰性対照）を加えた。３７℃で約３０分間緩やかに撹拌しながらインキュベートした後、ＰＢＳ−Ｔで３回洗浄した。
【０１０４】
次いで、ＰＢＳ−Ｔで希釈したＨＲＰＯウサギ抗マウスＩｇＧあるいはＨＲＰＯウサギ抗ヒトＩｇＧ液に試験ストリップを浸した。室温で３０分間緩やかに撹拌しながらインキュベートした後、ＰＢＳ−Ｔで３回洗浄した。
【０１０５】
その後、基質液を適量加えた。目視にて反応の有無を確認した。その結果を表２に示す。
【０１０６】
【表２】
合成ペプチドを固相化した場合、ＨＩＶ−２モノクローナル抗体（陽性対照）、ＨＩＶ−２抗体陽性血清又はＨＩＶ−２抗体陰性血清（陰性対照）のいずれの検体の場合も、検体中のＨＩＶ−２抗体は検出されなかった。合成ペプチド結合ＯＶＡを固相化した場合は、ＨＩＶ２陽性血清で顕著に検出されるが、陰性対照であるＨＩＶ２陰性血清を使用している場合にも検出された。
【０１０８】
これに対し、本発明の合成ペプチド結合ＳｐＫ（セリン化ポリリジン）を固相化した場合、ＨＩＶ２陽性ヒト血清及び陽性対照のＨＩＶ−２モノクローナル抗体は顕著な反応性が観察されたのに対し、陰性対照のＨＩＶ２陰性血清は反応性が全く観察されなかった。
【０１０９】
また、合成ペプチド結合ＯＶＡではなくＯＶＡを固相した場合も、陰性対照であるＨＩＶ２陰性血清に対して反応性がみられた。この結果は、ＯＶＡを担体として用いた場合には、血清に対して非特異的な反応があることを示す。一方、合成ペプチド結合ＳｐＫを担体として用いた場合には、ＯＶＡで見られる非特異的な結合（陰性対照のＨＩＶ２陰性血清に対する反応性）が見られないことを示している。
【０１１０】
【配列表】
【発明の効果】
本発明により、ポリアミノ酸担体が提供され、該担体を用いたペプチド結合ポリアミノ酸担体の使用による検体中のペプチドに対する抗体の検出を非特異的な反応を抑制し、迅速かつ簡便に行うことが可能となった。したがって、該ポリアミノ酸担体は、医療分野において、各種疾患の診断等に有用であることが明らかになった。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a polyamino acid carrier used for immobilizing a low-molecular antigen on a water-insoluble carrier in the field of detecting a target antibody utilizing an immune reaction.
[0002]
[Prior art]
In the medical field, an immunoassay method using an antigen-antibody reaction is widely used as a method for detecting or quantifying a specific substance from a biological component. An immunoassay based on an antigen-antibody reaction is one of important means for clinical examination because of its high specificity and high detection sensitivity. As this immunoassay method, an enzyme immunoassay method (EIA), a radioimmunoassay method (RIA), an immunoturbidimetric method (TIA) and the like are known.
[0003]
In carrying out these measurement methods, antibodies or antigens against the substance to be measured are used after being bound to a water-insoluble solid phase such as a microtiter plate, membrane filter, or bead, but a highly sensitive and highly stable diagnostic agent is used. For production, it is a very important technique to efficiently and stably bind an antibody or antigen to the water-insoluble solid phase. As the water-insoluble solid phase, for example, as a carrier used in the microtiter method, an artificial carrier which is a particle of polystyrene or a copolymer thereof has been developed (Japanese Patent Laid-Open Nos. 58-209984 and 62-62). 118256). Artificial carriers made of synthetic polymers have the advantage of being chemically and physically homogeneous and stable and capable of mass production. Furthermore, a water-insoluble artificial carrier comprising gelatin and a water-soluble polysaccharide (Japanese Patent Laid-Open Nos. 57-153658 and 57-160465), and a water-insoluble artificial carrier comprising a polyamino acid and a water-soluble polysaccharide. (JP-A-2-103470, JP-A-6-130060) and the like are disclosed. However, since the production process is complicated in many steps, it is difficult to produce various carriers to which a low molecular antigen is bound.
[0004]
As a method for binding an antigen or antibody to a water-insoluble solid phase (carrier) as described above, methods mainly using physical adsorption, covalent bonding, etc. are known (“Immobilized enzyme” edited by Ichiro Chibata, Kodansha Scientific) Fig. (1986) pp. 9-45). Compared to the covalent bond method, the physical adsorption method is simple and has the advantage that the activity of the antigen or antibody to be adsorbed is not impaired. However, when the antigen is a low molecule, it is difficult to physically adsorb the antigen because of weak interaction with the water-insoluble solid phase.
[0005]
Conventionally, in order to solve the above problems, a method of covalently binding a low molecular antigen to a carrier protein (polymer carrier) using a cross-linking agent or a coupling agent is known (Japanese Patent Laid-Open No. 56-71023). issue). Examples of carrier proteins used in this method include bovine serum albumin, human serum albumin, egg albumin, polylysine, and the like. However, when naturally derived proteins such as bovine serum albumin, human serum albumin and egg albumin are used as a carrier, some of the immunoglobulins in biological components may be reactive with the carrier protein. It was necessary to reduce such non-specific reactions.
[0006]
As a method for covalently binding a low molecular weight antigen to the above carrier protein, a conventional method for producing a hapten antigen ("Enzyme Immunoassay" Protein Nucleic Acid Enzyme Supplement 31 (1987), pages 28-33) The hapten enzyme labeling method (“Enzyme Immunoassay” Protein Nucleic Acid Enzyme Supplement 31 (1987) pp. 46-50) can be applied, for example, a method for activating a functional group present in an antigen, carrier protein A method for activating an existing functional group, a method using a divalent cross-linking agent having reactivity with both an antigen and a carrier protein are known. However, when activating a functional group of an antigen, problems such as the loss of the activity of the antigen itself or the occurrence of a binding or polymerization reaction between the antigen and the antigen molecule when the antigen has a plurality of functional groups are pointed out. Has been. Further, glutaraldehyde is frequently used as a crosslinking agent having a divalent reactive group. Glutaraldehyde has the advantage that the reaction can be carried out by a simple operation in a neutral aqueous solution, but it has the disadvantage that the antigen or carrier protein alone is liable to cause a polymerization reaction and the binding efficiency is poor. On the other hand, the periodate oxidation method is known as a method for activating a functional group of a carrier protein to bind to an antigen (Japanese Patent Laid-Open No. 8-114592). In this method, the diol structure of the carrier protein is oxidized with periodic acid, and the resulting aldehyde is used to bind to the amino group of the antigen. This method has good binding efficiency between the carrier protein and the antigen, and can prevent a decrease in the activity of the antigen itself due to the activation of the functional group. However, it cannot be used with a carrier protein such as polylysine that does not have a sufficient diol structure in the molecule.
[0007]
[Patent Document 1]
JP-A-56-71023
[0008]
[Patent Document 2]
JP-A-8-114592
[0009]
[Patent Document 3]
JP 58-209984 A
[0010]
[Patent Document 4]
Japanese Patent Laid-Open No. 62-118256
[0011]
[Patent Document 5]
JP-A-57-153658
[0012]
[Patent Document 6]
JP-A-57-160465
[0013]
[Patent Document 7]
Japanese Patent Laid-Open No. 2-103470
[0014]
[Patent Document 8]
JP-A-6-130060
[0015]
[Non-Patent Document 1]
"Immobilized enzyme" edited by Ichiro Chibata, Kodansha Scientific (1986), pages 9-45
[0016]
[Non-Patent Document 2]
"Enzyme immunoassay" Protein Nucleic Acid Enzyme Supplement 31 (1987) pp. 28-33
[0017]
[Non-Patent Document 3]
"Enzyme Immunoassay" Protein Nucleic Acid Enzyme Supplement 31 (1987) pp. 46-50
[0018]
[Problems to be solved by the invention]
In order to detect a small amount of target antibody in a specimen, if it can be bound to a carrier without impairing the activity of a low molecular antigen, it can be used for quick and simple diagnosis of various diseases in the medical field. .
[0019]
Therefore, an object of the present invention is to provide a polyamino acid carrier capable of binding a peptide that is a low molecular antigen with high efficiency and without impairing the activity of the peptide. Another object of the present invention is to provide a method for producing a peptide bond carrier in which a peptide is bound to the polyamino acid carrier, and a peptide bond polyamino acid carrier produced by the method.
[0020]
[Means for Solving the Problems]
The present inventors have found that by using a polyamino acid having a specific amino acid residue and a polyamino acid carrier having a specific reactive group, it can be bound to the polyamino acid carrier without impairing the antigenicity of the peptide, The present invention has been completed.
[0021]
Specifically, the polyamino acid carrier for peptide bonds of the present invention has a single or 2 to 4 types of polyamino acid carriers having a reactive group selected from an amino group, a carboxyl group, a sulfhydryl group or a hydroxyl group in the side chain of the polyamino acid carrier. A polyamino acid comprising an amino acid residue selected from amino acids, and a diol structure or an amino alcohol structure bonded to all or a part of the reactive group via a cross-linked structure or not. Features. In addition, the present invention provides a method for producing a peptide-bonded carrier in which a peptide is bound to the polyamino acid carrier, and a peptide-bound polyamino acid carrier produced by the method.
[0022]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Hereinafter, preferred embodiments will be described in detail for the purpose of explaining the present invention.
[0023]
(1) Polyamino acid carrier
▲ 1 ▼ Amino acid
Specific examples of amino acids used in the polyamino acid carrier of the present invention include glycine, alanine, valine, norvaline, leucine, isoleucine, norleucine, serine, threonine, cysteine, methionine, asparagine, glutamine, proline, phenylalanine, tyrosine, tryptophan, etc. Neutral amino acids; acidic amino acids such as aspartic acid and glutamic acid; and basic amino acids such as lysine, ornithine, arginine and histidine.
[0024]
The amino acid constituting the polyamino acid carrier preferably has a reactive group such as an amino group, a carboxyl group, a sulfhydryl group, or a hydroxyl group in its side chain.
[0025]
Preferably, the amino acid having an amino group is asparagine, glutamine, proline, tryptophan, lysine, arginine, histidine, ornithine.
[0026]
Preferably, the amino acid having a carboxyl group is aspartic acid or glutamic acid.
[0027]
Preferably, the amino acid having a sulfhydryl group is cysteine.
[0028]
Preferably, the amino acid having a hydroxyl group (hydroxyamino acid) is serine or threonine.
[0029]
More preferably, the amino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention is lysine or ornithine. Most preferred is lysine.
[0030]
In addition to the glycine, the amino acid has at least one asymmetric carbon atom, is optically active, and is distinguished into a D form and an L form. Can be used without distinction.
[0031]
Furthermore, the amino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention may be an amino acid derivative whose side chain reactive group is protected with a suitable protecting group. In the present specification, the term “amino acid” includes such amino acid derivatives. The protecting group is not particularly limited as long as it is a compound that can be used to protect the reactive group of the amino acid. For example, the hydroxyl group of the amino acid includes a t-butyl (t-Bu) group, a benzyl (Bzl) group, and the like. As the amino group, t-butoxycarbonyl (Boc) group, benzyloxycarbonyl (Z) group, 9-fluorenylmethoxycarbonyl (Fmoc) group and the like can be used.
[0032]
(2) Polyamino acid
The polyamino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention is typically composed of single or 2 to 4 types of amino acid residues selected from the above amino acids or amino acid derivatives.
[0033]
When the polyamino acid is composed of a single amino acid, an amino acid having a reactive group selected from an amino group, a carboxyl group, a sulfhydryl group or a hydroxyl group in the side chain is used. When the polyamino acid is composed of 2 to 4 kinds of amino acids, a random polymer containing amino acids having a reactive group selected from an amino group, a carboxyl group, a sulfhydryl group or a hydroxyl group in the side chain, or 2 to 4 kinds of amino acids A polymer having a repeating structure of units composed of residues (such as lysine-alanine) can be used. As a random polymer composed of 2 to 4 kinds of amino acids, more preferably, a random polymer composed of lysine and neutral amino acids (alanine, phenylalanine, serine, tryptophan, tyrosine), ornithine and neutral amino acids (leucine, serine, tryptophan, tyrosine) ), A random polymer composed of glutamic acid and a neutral amino acid (alanine, leucine, phenylalanine, tyrosine), or a random polymer composed of arginine and a neutral amino acid (serine, tryptophan, tyrosine, proline, threonine). Furthermore, a random polymer composed of lysine and glutamic acid or a random polymer composed of lysine, glutamic acid and neutral amino acids (alanine, tyrosine) can be used.
[0034]
The polyamino acids composed of the above single or 2 to 4 kinds of amino acids are difficult to find in the amino acid sequences of natural proteins. The possibility that such an artificial sequence enters the living body and induces antibody production is usually considered to be extremely low. Therefore, since there are almost no antibodies against the polyamino acid carrier of the present invention in biological components such as serum and plasma, non-specific reactions to the carrier in immunoassay are different from carriers made of naturally derived proteins such as bovine serum albumin. Will not occur substantially or will be greatly reduced. The polyamino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention is not particularly limited as long as it has the structure described above. However, the polyamino acid is selected from the ease of bonding between the side chain reactive group and the crosslinked structure or amino alcohol structure. It preferably contains a lysine residue or ornithine residue.
[0035]
The polyamino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention is produced by a general synthesis method, for example, a method of emulsion polymerization or heterogeneous polymerization of N-carbonic anhydride of the amino acid (Japanese Patent Laid-Open No. 9-151250). be able to. Moreover, it is also possible to use a commercially available polyamino acid (for example, poly-L-lysine MW 30,000-70,000 or MW 150,000-300,000 (Sigma)).
[0036]
The molecular weight of the polyamino acid used in the polyamino acid carrier of the present invention can be adjusted by changing the polymerization conditions for synthesizing the polyamino acid, for example, the solvent, the catalyst, the polymerization temperature, the reaction time and the like. The molecular weight of the polyamino acid is preferably a viscosity average molecular weight of 1,000 to 300,000, more preferably a viscosity average molecular weight of 8,000 to 300,000.
[0037]
In the polyamino acid carrier of the present invention, it is preferable that the reactive group in the side chain of the constituent amino acid and the crosslinked structure, and / or the crosslinked structure and the diol structure or amino alcohol structure are bonded by an amide bond. Alternatively, the reactive group and the diol structure or aminoalcohol structure may be directly bonded via an amide bond without using a crosslinked structure.
[0038]
In the present specification, the “diol structure or amino alcohol structure” includes a compound having a chemical structure capable of generating an aldehyde group by oxidation. Here, the “diol structure” refers to a structure in which two hydroxyl groups are bonded to two different carbon atoms. The “aminoalcohol structure” is a structure having an amino group and an alcoholic hydroxyl group in the same molecule, having an amino group on one of adjacent two carbon atoms and an alcoholic hydroxyl group on the other. The structure which has is preferable. The polyamino acid carrier for peptide bonding of the present invention can generate an aldehyde group by oxidation treatment of “diol structure or aminoalcohol structure”, and bond the peptide to the aldehyde group moiety.
[0039]
The compound having a “diol structure or aminoalcohol structure” used in the present invention further has a group that can be directly bonded to a crosslinked structure or a reactive group in the side chain of the amino acid constituting the polyamino acid carrier. Is desirable. For example, when a crosslinked structure or a reactive group (hereinafter sometimes referred to as “crosslinked structure or the like”) has an amino group, a compound having a “diol structure or amino alcohol structure” has a carboxyl group, It is preferable to form an amide bond. When the crosslinked structure or the like has a carboxyl group, the compound having a “diol structure or amino alcohol structure” preferably has an amino group and can form an amide bond with the crosslinked structure or the like. The compound having a “diol structure or amino alcohol structure” is preferably a hydroxy amino acid, most preferably a serine residue or a threonine residue.
[0040]
In the present specification, the “crosslinked structure” means that a reactive group in the side chain of the amino acid or amino acid derivative constituting the polyamino acid of the present invention is linked to a diol structure or aminoalcohol structure for generating an aldehyde group. This is the structure of the crosslinking agent.
[0041]
The crosslinking agent used in the present invention is a compound capable of binding the reactive group to a diol structure or amino alcohol structure. Preferably, it is a compound in which one end of the crosslinked structure is a carboxyl group and the other end is an amino group, or a compound (diamino compound) in which both ends of the crosslinked structure are amino groups. For example, when one end of the crosslinked structure is a compound composed of a carboxyl group and the other end is an amino group, and the reactive group is an amino group, the carboxyl group in the crosslinked structure forms an amide bond with the reactive group. The amino group in the crosslinked structure preferably forms an amide bond with the diol structure or amino alcohol structure having a carboxyl group. Alternatively, when the both ends of the crosslinked structure are compounds (diamino compounds) and the reactive group is a carboxyl group, the other amino group in the crosslinked structure is preferably a diol structure or amino group having a carboxyl group. Forms an amide bond with the alcohol structure. A preferred cross-linked structure is γ-aminobutyric acid (GABA) or ethylenediamine.
[0042]
The cross-linked structure may be composed of a cross-linking agent in which one or more and the same or different compounds are bonded in a linear or branched manner. On the other hand, as the object of the present invention, as long as the activity of the low molecular weight antigen when bound to the carrier is not impaired, the above-mentioned cross-linked structure may be omitted, and the reactive group of the polyamino acid carrier may have a diol structure or amino alcohol. Structures may be combined.
[0043]
In the polyamino acid carrier of the present invention, the reactive group bonded to the diol structure or aminoalcohol structure is preferably 3% to 30% of the reactive groups in the side chain, with or without a cross-linked structure. More preferably, it is 5% to 20%.
[0044]
The polyamino acid carrier of the present invention is prepared by the following production method, and more specifically, can be prepared according to Examples 1 and 2 described later.
[0045]
(2) Production method of polyamino acid carrier
The method for producing the polyamino acid carrier of the present invention can be used by a person skilled in the art by an appropriate method depending on the type of the reactive group of the amino acid used, the compound having a diol structure or aminoalcohol structure, and the type of the crosslinking agent. Although the preferable aspect of the manufacturing method of the polyamino acid carrier of this invention is shown below, as long as it has the characteristic of the polyamino acid carrier of this invention, the manufacturing method is not limited.
[0046]
The method for producing a polyamino acid carrier of the present invention includes, for example, a polyamino acid having an amino group as a reactive group in the side chain, a hydroxyamino acid having an amino alcohol structure, and a divalent bridge having a carboxyl group / amino group at each end. When an agent is used as a starting material, the following steps:
(I) protecting the amino group and hydroxyl group of the hydroxy amino acid;
(Ii) activating the carboxyl group of the protected hydroxyamino acid;
(Iii) reacting the amino group of the crosslinking agent with the carboxyl group of the activated hydroxyamino acid to form an amide bond;
(Iv) activating a carboxyl group derived from a crosslinker structure in the compound of (iii);
(V) reacting an amino group of the polyamino acid with a carboxyl group derived from a crosslinking agent in the compound of (iv) to form an amide bond; and
(Vi) deprotecting the amino group and hydroxyl group of the hydroxyamino acid protected by (i);
including.
[0047]
The steps (i)-(iii) and (iv)-(v) may be reversed in order, and the steps (iv)-(v) may be performed first.
[0048]
Here, the protection of the amino group and hydroxyl group of the hydroxy amino acid in the step (i) can be performed by a general method such as biochemistry experiment course volume 1, protein chemistry IV, chemical modification and peptide synthesis, p. 270, Kozo Narita et al., Tokyo Chemical Doujin (1977), but commercially available products may also be used. As a reagent for protecting the amino group of hydroxyamino acid, Boc group, Z group, Fmoc group and the like can be used. Moreover, as a reagent for protecting the hydroxyl group of a hydroxy amino acid residue, a t-Bu group, a Bzl group, etc. can be used. On the other hand, an acid or alkali solution such as trifluoroacetic acid (TFA), anhydrous hydrogen fluoride, HBr / acetic acid, piperidine / DMF, sodium hydroxide aqueous solution or the like may be used for deprotection of the protected hydroxyamino acid residue. it can.
[0049]
For the activation of the carboxyl group in the steps (ii) and (iv), for example, a succinimide ester group or a p-nitrophenyl group can be used.
[0050]
The reaction for forming an amide bond in steps (iii) and (v) can be performed using a known method. For example, in a solvent such as DMF, dioxane, or DMSO, the reaction is usually performed at room temperature for 1 to 24 hours in the presence of a weak alkali such as sodium bicarbonate, sodium carbonate, or triethylamine.
[0051]
As another aspect, in order to produce a polyamino acid carrier having no crosslinked structure by the production method of the present invention, it can be achieved by omitting the steps (iii) and (iv).
[0052]
As yet another aspect, when more than one cross-linked structure is introduced by the production method of the present invention, it can be achieved by repeating the steps (iii) and (iv).
[0053]
The method for producing a polyamino acid carrier of the present invention includes, for example, a polyamino acid having a carboxyl group as a reactive group in the side chain, a hydroxyamino acid residue having an amino alcohol structure, and a crosslinking agent having an amino group at both ends. If used, the following steps:
(I) protecting the amino group and hydroxyl group of the hydroxy amino acid;
(Ii) activating the carboxyl group of the hydroxy amino acid;
(Iii) reacting the amino group of the crosslinking agent with the carboxyl group in the activated hydroxyamino acid to form an amide bond;
(Iv) reacting a carboxyl group in the polyamino acid with an amino group from the crosslinker structure in the compound of (iii) using a condensing agent to form an amide bond; and
(V) deprotecting the amino group and hydroxyl group of the hydroxyamino acid protected in (i);
including.
[0054]
Here, the condensing agent used in the step (iv) is not particularly limited as long as it is a reagent capable of forming an amide bond. For example, 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride ( WSC), dicyclohexylcarbodiimide (DCC), and the like can be used.
[0055]
As another preferred embodiment, according to the method for producing a polyamino acid carrier of the present invention, the polyamino acid carrier having different introduction percentages of reactive groups bonded to the diol structure or aminoalcohol structure with or without a cross-linked structure is used. This can be achieved by adjusting the amount of the compound produced in step (iii) above.
[0056]
The polyamino acid carrier can be produced based on a known method (for example, Mezo et al., J. Control. Release, 63, 81-95 (2000)).
[0057]
(3) Polyamino acid carrier to which peptide is bound and method for producing the same
The present invention relates to a method for producing a peptide bond carrier comprising binding a peptide to the polyamino acid carrier described above, and a peptide bond polyamino acid carrier produced by the method. The polyamino acid carrier for peptide bonds of the present invention has a “diol structure or amino alcohol structure”. First, these structures can be oxidized to produce an aldehyde group, and then a peptide can be bound to the aldehyde group moiety.
[0058]
(1) Manufacturing method
Although not necessarily limited, the method for producing the peptide-binding carrier of the present invention includes, for example, the following steps:
(I) generating an aldehyde group by oxidizing the diol structure or amino alcohol structure of the polyamino acid carrier;
(Ii) On the other hand, introducing a hydrazino group beforehand at the N-terminus of the intended peptide; and
(Iii) binding the polyamino acid carrier of (i) to the peptide of (ii)
including.
[0059]
According to the method for producing a peptide-bonded carrier of the present invention, the oxidation treatment for generating an aldehyde group from a diol structure or an amino alcohol structure is not particularly limited. For example, a periodate oxidation method can be used.
[0060]
Moreover, the antigen couple | bonded with the polyamino acid carrier of this invention can use the antigen with respect to the target antibody in a test substance. The size of such an antigen is not particularly limited, but is preferably a peptide containing at least one epitope of the antigen against the target antibody. In the present specification, “peptide” refers to a peptide in which two or more amino acid residues are bonded by an amide bond. According to the present invention, the peptide used should have 3 or more amino acid residues, preferably 3-50, more preferably 10-20.
[0061]
The peptide used in the present invention is not particularly limited, and any of a naturally occurring peptide, a peptide expressed from recombinant DNA by a genetic engineering technique, a chemically synthesized peptide, or a peptide generated by enzymatic treatment of a protein. But you can. For example, in Example 3 in the present specification, an HIV-2 gp36 synthetic peptide consisting of 12-mer and 18-mer amino acid residues having an amino acid sequence derived from HIV-2 coat protein gp36 was used.
[0062]
Furthermore, the present invention is characterized in that an aldehyde group generated on a polyamino acid carrier is bound to an amino group in the peptide. In consideration of the binding efficiency of the peptide to the polyamino acid carrier, the activity of the peptide is not impaired, and the reactivity of the antibody to the peptide, the N-terminal amino group is used instead of the side chain in the peptide. It is preferable to use it. Alternatively, it is preferable to use an amino acid having an amino group bound to the N-terminus or C-terminus of the peptide.
[0063]
More preferably, a peptide having a hydrazino group introduced in advance at the end of the peptide is prepared and used in order to enhance the selective binding between the aldehyde group of the polyamino acid carrier and the amino group of the peptide. Most preferably, as shown in Example 2 described later, hydrazinobenzoyllysine having a hydrazino group in the ε-amino group is used as a reagent used for introducing a hydrazino group.
[0064]
(2) Peptide bond polyamino acid carrier
The peptide-bonded polyamino acid carrier of the present invention can be used as an immunoassay reagent for measuring an antibody or an antigen by binding to a solid phase. As the solid phase, a plate, a bead, a membrane, or the like made of a material such as polystyrene, polyethylene, or sepharose can be used. These solid phases are solid phases capable of physically adsorbing the polyamino acid carrier on the surface thereof by contacting with the peptide-bonded polyamino acid carrier dissolved in the buffer solution. As the buffer, the peptide-bonded polyamino acid carrier can be stably present, and the pH at which the adsorption to the solid phase is not inhibited is neutral to alkaline. For example, a general buffer such as a phosphate buffer, Tris- HCl buffer and phosphate buffered saline can be used. Thus, since the peptide-bonded polyamino acid carrier of the present invention can be bound to a solid phase under mild conditions, it can be easily subjected to immunoassay without impairing the antigenicity of the peptide.
[0065]
Such an immunoassay reagent comprising a solid phase adsorbed with a peptide-bonded polyamino acid carrier can be used in a known immunoassay method such as a sandwich method or a competitive method. For example, when measuring an anti-HIV-1 antibody for humans, a sample or diluted sample is used in an immunoassay reagent in which a polyamino acid carrier bound with a peptide fragment derived from HIV-1 or a synthetic peptide is adsorbed on a solid phase. Is contacted to form a first immune complex, the solid phase is then washed, and then a labeled anti-human IgG antibody is contacted with the immune complex and the resulting second immune complex is detected. Thus, the anti-HIV-1 antibody in the specimen can be detected.
[0066]
【Example】
Hereinafter, the present invention will be described more specifically based on examples. However, the present invention is not limited to the following examples.
[0067]
Example 1. Synthesis of serinated polylysine (SpK1)
(A) NαSynthesis of -t-butoxycarbonyl-Ot-butyl-L-seryl-γ-aminobutyric acid (1)
Using serine having an amino alcohol structure and γ-aminobutyric acid (GABA) as a crosslinking agent, serine having the title crosslinked structure was synthesized (Scheme 1). A commercially available serine in which the amino group and hydroxyl group of serine were previously protected was used.
[0068]
Nα-T-Butoxycarbonyl-Ot-butyl-L-serine 2.61 g and N-hydroxysuccinimide 1.27 g were dissolved in N, N-dimethylformamide (hereinafter referred to as DMF) and cooled with ice. 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (2.11 g) was added, and the mixture was stirred at room temperature overnight.
[0069]
Ethyl acetate and water were added to the reaction mixture, and the mixture was stirred well for separation. The aqueous phase was extracted with ethyl acetate, the organic phases were combined, washed with 5% citric acid aqueous solution, water, 5% sodium hydrogen carbonate aqueous solution and water in this order, and dried over anhydrous magnesium sulfate.
[0070]
Ethyl acetate was distilled off, the residue was dissolved in DMF, 1.03 g of GABA and 0.84 g of sodium hydrogen carbonate were dissolved in water, and the mixture was stirred overnight.
[0071]
Ethyl acetate and water were added to the reaction solution, and the mixture was separated with 6N hydrochloric acid to a pH of about 3. The aqueous phase was extracted with ethyl acetate, and the combined ethyl acetate phases were washed with water and dried over anhydrous magnesium sulfate.
[0072]
When ethyl acetate was distilled off, crystallization occurred. n-Hexane was added and the crystals were collected by filtration. Yield 2.77 g (80%)
(B) Nα-T-Butoxycarbonyl-Ot-butyl-L-seryl-γ-aminobutyric acid N-succinimide ester (2)
The carboxyl group of the compound (1) prepared above was activated with a succinimide ester (Scheme 1).
[0073]
1.04 g of compound (1) and 0.38 g of N-hydroxysuccinimide are dissolved in DMF, and 0.63 g of 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride is added under ice cooling, and at room temperature. Stir overnight.
Water and ethyl acetate were added to the reaction solution, and the mixture was well stirred and separated. The aqueous phase was extracted with ethyl acetate, and the combined ethyl acetate phases were washed with 5% citric acid aqueous solution, water, 5% sodium hydrogen carbonate aqueous solution and water in this order, and dried over anhydrous magnesium sulfate.
[0074]
When ethyl acetate was distilled off, crystallization occurred. n-Hexane was added and the crystals were collected by filtration. Yield 1.21 g (91%)
Scheme 1
[0075]
[Chemical 1]
(C) Polylysine {Boc-serine (t-butyl) -γ-aminobutyric acid} (3) Compound (2) prepared above and polylysine were peptide-bonded to give the title compound (3) (Scheme 2 ).
[0077]
20 mg of polylysine (Sigma, No. P2636, MW (viscosity) 30,300) was dissolved in 1 ml of 0.1 M aqueous sodium hydrogen carbonate solution, and 8.9 mg of compound (2) was dissolved in 200 μl of DMF and added at room temperature for 3 hours. Stir. 100 μl of acetic acid was added to the reaction solution, transferred to a dialysis tube, dialyzed against water for 3 hours at room temperature, and then lyophilized. Yield 22.0mg
Scheme 2
[0078]
[Chemical formula 2]
(D) Polylysine {Boc-serine (t-butyl) -γ-aminobutyric acid, succinyl} (4)
The unreacted amino group of polylysine in the compound (3) produced above was reacted with succinic anhydride for modification (Scheme 3).
[0080]
10 mg of the above compound (3) was dissolved in 1 ml of 1M aqueous sodium hydrogen carbonate solution, 25 mg of succinic anhydride was dissolved in 250 μl of DMF, and the mixture was stirred at room temperature for 2 hours. The reaction solution was transferred to a dialysis tube, dialyzed overnight at 4 ° C. against water, and then freeze-dried. Yield 13.7 mg
(E) Polylysine {serine-γ-aminobutyric acid, succinyl} (5)
The compound (4) produced above was deprotected to give the title compound (5) (Scheme 3).
[0081]
The total amount of compound (4) was dissolved in 25 μl of water and 500 μl of trifluoroacetic acid, and stirred at room temperature for 1 hour. Water was added to the reaction solution and lyophilized. It melt | dissolved in 1M sodium hydrogencarbonate aqueous solution, and dialyzed with water at room temperature for 3 hours, Then, it was freeze-dried. Yield 10.7mg
Scheme 3
[0082]
[Chemical 3]
By amino acid analysis after hydrolysis, the proportion of reactive groups to which an amino alcohol structure was bonded was examined among the reactive groups of polylysine. When the reactive group of compound (2) and polylysine were mixed at a molar ratio of 1: 5, the amino alcohol structure reacted at a ratio of 1 to the reactive group of polylysine 4.6.
[0084]
(F) Furthermore, in order to prepare polylysine carriers having different proportions of reactive groups bonded to the aminoalcohol structure, the mixing ratio of the above compound (2) and polylysine was changed, and serrated polylysine was prepared in the same manner. Prepared. When the molar ratio of the above compound (2) and the reactive group of polylysine was mixed at 1:10, the amino alcohol structure reacted at a ratio of 1 to the reactive group 9.6 of polylysine. When the molar ratio of the above compound (2) to the polylysine reactive group was 1:20, the amino alcohol structure reacted at a ratio of 1 to the polylysine reactive group 19.2.
[0085]
Example 2 Synthesis 2 of serinated polylysine (SpK2)
Serrated polylysine (SpK2) was prepared in the same manner as in Example 1 using polylysine having different molecular weights. Polylysine is available from Sigma No. 50 mg of P1399 and MW (viscosity) 189,400 were used. In order to prepare polylysine carriers having different proportions of reactive groups bonded to the amino alcohol structure, when the molar ratio of the reactive group of the above compound (2) and polylysine is mixed at 1:10, the reactive group of polylysine The amino alcohol structure reacted at a ratio of 1 to 9.9. Further, when the molar ratio of the compound (2) to the polylysine reactive group was 1:20, the amino alcohol structure reacted at a ratio of 1 to the polylysine reactive group 20.2.
[0086]
Example 3 FIG. Synthesis of hydrazino peptides
(1) Synthesis of 4- (t-butoxycarbonylhydrazino) benzoic acid
4-hydrazinobenzoic acid (15.2 g) was suspended in 50 ml of water under an argon stream, and dissolved by adding 4.8 g of sodium hydroxide. 26.2 g of di-t-butyl dicarbonate was dissolved in 50 ml of 1,4-dioxane and added, and the mixture was stirred overnight. About half of the solvent was distilled off under reduced pressure, water was added, and the mixture was washed twice with ethyl acetate. Ethyl acetate was added to the aqueous phase, neutralized with 6N hydrochloric acid and separated. Ethyl acetate was added once more, pH was adjusted to 3 with 6N hydrochloric acid, and liquid separation was performed. The ethyl acetate phases were combined, washed twice with water, and dried over anhydrous magnesium sulfate. Crystals precipitated when the solvent was distilled off. The crystals were collected by filtration and washed with ethyl acetate. Yield 16.9 g (67%)
Crystals precipitated when the mother liquor was concentrated. It was filtered and washed with ethyl acetate. Yield 4.8g. In total 21.7 g (86%).
[0087]
(2) Synthesis of 4- (t-butoxycarbonylhydrazino) benzoic acid N-succinimide ester
4- (t-Butoxycarbonylhydrazino) benzoic acid (5.05 g) and N-hydroxysuccinimide (2.53 g) were dissolved in dimethylformamide (hereinafter referred to as DMF), and 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) was cooled with ice. ) 4.22 g of carbodiimide hydrochloride was added and stirred overnight. Ethyl acetate was added to the reaction mixture, and the mixture was washed with water, 5% aqueous sodium hydrogen carbonate solution and saturated brine. Crystals precipitated. Filtered off and dried over diphosphorus pentoxide. The mother liquor was concentrated, and the precipitated crystals were collected by filtration and dried over diphosphorus pentoxide. Combined with the initially precipitated crystals, 6.15 g (88%) of the title compound was obtained.
[0088]
(3) NαSynthesis of-(9-fluorenylmethoxycarbonyl) -Nε- (4- (t-butoxycarbonylhydrazino) benzoyl) -L-lysine
Nα-(9-Fluorenylmethoxycarbonyl) -L-lysine (3.0 g) and sodium hydrogen carbonate (0.65 g) were suspended in water and DMF, and under ice cooling, 4- (t-butoxycarbonylhydrazino) benzoic acid N- 2.7 g succinimide ester was dissolved in DMF and added. Stir at room temperature overnight. Ethyl acetate and water were added to the reaction solution, acidified with 6N hydrochloric acid and separated. The aqueous phase was extracted twice with ethyl acetate, and the combined ethyl acetate phases were washed with water and dried over anhydrous magnesium sulfate. The solvent was distilled off and the resulting oily residue solidified upon drying under reduced pressure. Yield 3.50 g (75%).
[0089]
(4) Synthesis of HIV-2gp36 synthetic peptide having hydrazino group
11 and 17 residues were selected from the amino acid sequence of HIV-2 gp36 as an antigen peptide for detecting an antibody derived from the HIV-2 coat protein gp36, and the peptide was synthesized. According to the known Fmoc method, amino acids of 11 and 17 residues were combined using a peptide synthesizer PSSM-8 (Shimadzu Corporation), and finally Nα-(9-Fluorenylmethoxycarbonyl) -NεBy adding-(4- (t-butoxycarbonylhydrazino) benzoyl) -L-lysine, an HIV-2gp36 synthetic peptide having a hydrazino group at the N-terminal lysine was prepared.
[0090]
Structure of hydrazinopeptide
12-residue sequence
Lys (HBz) -Asn-Ser-Trp-Gly-Cys-Ala-Phe-Arg-Gln-Val-Cys (SEQ ID NO: 1)
HBz = hydrazinobenzoyl
18-residue sequence
Lys (HBz) -Gln-Asp-Gln-Ala-Arg-Leu-Asn-Ser-Trp-Gly-Cys-Ala-Phe-Arg-Gln-Val-Cys (SEQ ID NO: 2)
Example 4 Preparation of complex of serinated polylysine and hydrazino peptide
The compound (5) produced by reacting the polylysine reactive group 20.2 produced in Example 2 above with a ratio of 1 in the amino alcohol structure was oxidized with periodate, and the hydrazino peptide produced in Example 3 was obtained. A conjugated peptide-bound polylysine carrier was prepared (Scheme 4).
[0091]
2 mg of compound (5) was dissolved in 1 ml of 10 mM sodium hydrogen carbonate aqueous solution, 40 μl of 100 mM sodium periodate aqueous solution was added, and the mixture was stirred at room temperature for 20 minutes. The reaction solution was applied to a PD-10 column (manufactured by Amersham Bioscience) equilibrated with 10 mM aqueous sodium hydrogen carbonate solution and eluted with the same solution. The first 2.5 ml of eluate was not collected and the subsequent 2.0 ml was collected. To this solution, hydrazino peptide was dissolved in 10 mM aqueous sodium hydrogen carbonate solution (1 mg / ml), and stirred at room temperature for 3 hours. 10 μl of 400 mM hydroxyamine hydrochloride / 1M aqueous sodium hydrogen carbonate solution was added and stirred for 30 minutes. Acetic acid 20 μl was added and stirred for 30 minutes. Acetic acid (20 μl) was added to adjust the pH of the solution to about 5, and the solution was transferred to a dialysis tube.
[0092]
When the introduction rate of the peptide was examined by amino acid analysis after hydrolysis, the ratio of the peptide was 1 with respect to the reactive group 20 of polylysine (the ratio of the peptide was about 1 with respect to the amino alcohol structure 1 on the polylysine carrier). When mixed, the peptide reacted at a ratio of 1 to the reactive group 45.5 of polylysine. Further, when the peptide is mixed at a ratio of 1 to the reactive group 40 of polylysine (the ratio of peptide is about 0.5 to aminoalcohol structure 1 on the polylysine carrier), the reactive group 62. The peptide reacted at a ratio of 1 to 5.
[0093]
Scheme 4
[0094]
[Formula 4]
Reference Example 1 Preparation of complex of ovalbumin and hydrazino peptide
In Example 6 below, the hydrazino peptide produced in Example 3 was bound to ovalbumin, which is a naturally derived protein, for comparison with the immune reaction with the peptide-bound polylysine carrier of the present invention.
[0096]
4 mg of ovalbumin was dissolved in 1 ml of water, 200 μl of a 100 mM sodium periodate aqueous solution was added, and the mixture was stirred at room temperature for 20 minutes. The reaction solution was applied to a PD-10 column (Amersham Bioscience) equilibrated with 1 mM acetic acid aqueous solution and eluted with the same solution. The initial eluate of 2.5 ml was not collected and the subsequent 2.0 ml was collected.
[0097]
After adding 20 μl of a 200 mM aqueous sodium carbonate solution to 2000 μl of this solution, 0.64 mg of a hydrazino peptide consisting of a 17-residue antigen peptide was dissolved in a 0.1 M aqueous sodium hydrogen carbonate solution (3 mg / ml) and added at room temperature. Stir for hours. The reaction solution was transferred to a dialysis tube and dialyzed overnight at 4 ° C. against phosphate buffered saline (PBS) to obtain 2 ml of solution. The protein quantitative value by BCA method (made by PIERCE) was 0.712 mg / ml.
[0098]
Embodiment 5 FIG. Detection of HIV-2 antibody by peptide-bound polylysine carrier (1)
In order to detect the antibody induced by the HIV-2 coat protein gp36, a simple chromatographic assay was performed using the peptide-bound polylysine carrier produced in Examples 1 and 2.
[0099]
(1) Material
HIV-2 gp36 synthetic peptide 12mer binding polylysine
HIV-2 gp36 synthetic peptide 18mer binding polylysine
Alkaline phosphatase labeled HIV-2gp36 synthetic peptide 18mer
Phosphate buffer: 10 mM phosphate buffer (0.1% BSA, 0.05% SDS, 3% sucrose)
Substrate solution: 5-Bromo-4-chloro-3-indryl-phosphate (ROCHE, USA)
HIV-2 antibody positive serum (Boston Biomedica Inc., MA, USA)
HIV-2 antibody negative serum (Trina Inc., Switzerland)
(2) Experimental method and results
Approximately 0.75 μl of synthetic peptide-bound polylysine diluted to a predetermined concentration was spotted onto a nitrocellulose membrane strip cut to 5 × 50 mm. This test strip was set in an immunochromatographic test tool described in Japanese Patent No. 32237540. As a specimen, HIV-2 antibody-positive serum (PRF202-01, PRF202-05, PRF202-015) was diluted with HIV-2 antibody-negative serum and used. An immune reaction was performed according to the method described in JP-A-9-229938, and the presence or absence of the reaction was confirmed. The results are shown in Table 1.
[0100]
When the synthetic peptide-bound polylysine of the present invention was immobilized on a nitrocellulose membrane, all HIV-2 antibody positive sera reacted significantly. When only the peptide was immobilized as a control, no reaction was observed. No reaction was detected with a negative control HIV-2 antibody negative serum. The synthetic peptide-bound polylysine of the present invention was found to be useful as a solid phase antigen for immunoassay without impairing the antigenicity of the peptide, regardless of the molecular weight of the carrier, the number of peptide bonds, and the peptide length. .
[0101]
[Table 1]
Example 6 Detection of HIV-2 antibody by peptide-bound polylysine carrier (2)
In order to detect the antibody induced by the HIV-2 coat protein gp36, an immunoblotting assay was performed using the peptide-bound polylysine carrier prepared according to Examples 1 and 2 described above. The peptide-bound polylysine carrier of the present invention was compared with the peptide-bound ovalbumin prepared to examine the effect.
[0103]
(1) Material
HIV-2 gp36 synthetic peptide 18mer
HIV-2 gp36 peptide 18mer conjugated ovalbumin (OVA; Sigma Chemical Co. St. Louis, USA)
HIV-2 gp36 peptide 18mer linked serinated polylysine
Carbonate buffer: 0.1 M sodium carbonate buffer, about pH 9.0
Phosphate buffer: 0.1M phosphate buffered saline (PBS) or 0.05% Tween 20 (PBS-T)
HRPO rabbit anti-mouse IgG (DAKO A / S, Denmark)
HRPO rabbit anti-human IgG (DAKO A / S, Denmark)
Substrate solution: 1-chloro-4-naphthol, 0.01% hydrogen peroxide (made in-house)
Sample:
Anti-HIV-2 gp36 monoclonal antibody (Fujirebio)
HIV-2 antibody positive serum (Boston Biomedica Inc., MA, USA)
HIV-2 antibody negative specimen (Trina Inc., Switzerland)
(2) Experimental method and results
About 2 μl of synthetic peptide diluted with carbonate buffer, synthetic peptide-bound OVA, or synthetic peptide-bound serine polylysine was spotted on a nitrocellulose membrane strip cut to 5 × 50 mm. The test strip was dried in an incubator at 37 ° C. for about 15 minutes. A test strip is put into a test tube, and an HIV-2 monoclonal antibody (positive control), HIV-2 antibody positive serum or HIV-2 antibody negative serum (negative control) diluted to a predetermined concentration using PBS-T is used as a specimen. added. After incubation with gentle agitation at 37 ° C. for about 30 minutes, the plate was washed 3 times with PBS-T.
[0104]
The test strip was then immersed in HRPO rabbit anti-mouse IgG or HRPO rabbit anti-human IgG solution diluted with PBS-T. After incubating with gentle agitation for 30 minutes at room temperature, the plate was washed 3 times with PBS-T.
[0105]
Thereafter, an appropriate amount of the substrate solution was added. The presence or absence of reaction was confirmed visually. The results are shown in Table 2.
[0106]
[Table 2]
When the synthetic peptide is solid-phased, HIV-2 monoclonal antibody (positive control), HIV-2 antibody positive serum or HIV-2 antibody negative serum (negative control) in any specimen is HIV-2 in the specimen. No antibody was detected. When the synthetic peptide-bound OVA was immobilized, it was remarkably detected in the HIV2-positive serum, but it was also detected when the negative control HIV2-negative serum was used.
[0108]
In contrast, when the synthetic peptide-bound SpK (serylated polylysine) of the present invention was immobilized, significant reactivity was observed for the HIV2-positive human serum and the positive control HIV-2 monoclonal antibody, whereas it was negative. No reactivity was observed for the control HIV2-negative serum.
[0109]
In addition, when OVA was solid-phased instead of synthetic peptide-bound OVA, reactivity was observed with HIV2-negative serum as a negative control. This result shows that when OVA is used as a carrier, there is a non-specific reaction to serum. On the other hand, when the synthetic peptide-bound SpK is used as a carrier, non-specific binding (reactivity to HIV2-negative serum as a negative control) seen with OVA is not observed.
[0110]
[Sequence Listing]
【The invention's effect】
According to the present invention, a polyamino acid carrier is provided, and detection of an antibody against a peptide in a sample by using a peptide-bound polyamino acid carrier using the carrier can be quickly and easily performed while suppressing nonspecific reactions. It became. Therefore, it was revealed that the polyamino acid carrier is useful for diagnosis of various diseases in the medical field.
Claims (13)
前記反応基の全部又は一部に、架橋構造を介して又は介さずに結合しているジオール構造若しくはアミノアルコール構造
とからなるペプチド結合用ポリアミノ酸担体。A polyamino acid consisting of amino acid residues selected from single or 2 to 4 types of amino acids having a reactive group selected from an amino group, a carboxyl group, a sulfhydryl group or a hydroxyl group in the side chain; A peptide-bonding polyamino acid carrier comprising a diol structure or aminoalcohol structure that is partially bonded with or without a crosslinked structure.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003137139A JP4258271B2 (en) | 2003-05-15 | 2003-05-15 | Polyamino acid carrier |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2003137139A JP4258271B2 (en) | 2003-05-15 | 2003-05-15 | Polyamino acid carrier |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2004340722A JP2004340722A (en) | 2004-12-02 |
| JP4258271B2 true JP4258271B2 (en) | 2009-04-30 |
Family
ID=33526878
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2003137139A Expired - Lifetime JP4258271B2 (en) | 2003-05-15 | 2003-05-15 | Polyamino acid carrier |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4258271B2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11332703B2 (en) | 2011-01-14 | 2022-05-17 | Pinco Sa | Process for the treatment and the winemaking of grapes |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4530895B2 (en) * | 2005-03-29 | 2010-08-25 | 住友ベークライト株式会社 | Solid phase carrier for peptide immobilization and method of using the same |
| JP5499296B2 (en) * | 2009-02-03 | 2014-05-21 | 国立大学法人東京農工大学 | Polypeptides that can control cell adsorption |
| WO2021002481A1 (en) * | 2019-07-02 | 2021-01-07 | 学校法人京都薬科大学 | Renal targeting-type drug delivery carrier having excellent biodegrability |
-
2003
- 2003-05-15 JP JP2003137139A patent/JP4258271B2/en not_active Expired - Lifetime
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11332703B2 (en) | 2011-01-14 | 2022-05-17 | Pinco Sa | Process for the treatment and the winemaking of grapes |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2004340722A (en) | 2004-12-02 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA1220420A (en) | Method of determining antigenically active amino acid sequences | |
| JPH04504416A (en) | How to use and synthesize peptides | |
| JP2774872B2 (en) | HCV peptide antigen and HCV identification method | |
| JPH10504539A (en) | Measurement of specific immunoglobulin using multiple antigens | |
| JP2000508621A (en) | Affinity labeling libraries and their uses | |
| CS256960B1 (en) | Peptides with properties of antigenic determinants and method of their production | |
| JPH03503047A (en) | Polymers and polymer-peptide complexes | |
| JPH07191024A (en) | Synthesizing standard for immunoassay | |
| JP4130505B2 (en) | Elimination of diagnostic method interference by peptides consisting of D-amino acids | |
| JP3387928B2 (en) | Binding substances specific for antibodies and their use in immunoassays or vaccines | |
| JP2005061910A (en) | Immunoassay instrument for measuring hiv antigen-antibody and method therefor | |
| JP4258271B2 (en) | Polyamino acid carrier | |
| JPH08245693A (en) | Synthetic peptide to detect hiv antibody, and its mixture | |
| JP4120846B2 (en) | Activating peptides and conjugates | |
| EP0257421B1 (en) | Antibodies for use in determining human glycoalbumin | |
| JP3404035B2 (en) | Cysteine thiol protected peptides for use in immunoassays | |
| CA2038030C (en) | Synthetic peptides which contain sequences from factor viia, and the use thereof | |
| FR2737209A1 (en) | PEPTIDE CAPABLE OF BEING RECOGNIZED BY ANTIBODIES RECOGNIZING C33 ANTIGEN OF HEPATITIS C VIRUS | |
| Zevgiti et al. | Collagen models as a probe in the decay of works of art: synthesis, conformation and immunological studies | |
| JP2002511853A (en) | HIV antibody detection method and antigen used therefor | |
| Dukic-Stefanovic et al. | Characterization of antibody affinities using an AGE-modified dipeptide spot library | |
| JP2705791B2 (en) | Synthetic antigens for detection of AIDS-related diseases | |
| WO2021045182A1 (en) | Tryptase activity measurement substrate | |
| JPH10259197A (en) | Production of peptide mixture | |
| CS258290B1 (en) | Peptide with antigenic determinants' properties and method of its production |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20060317 |
|
| A711 | Notification of change in applicant |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A712 Effective date: 20060324 |
|
| RD03 | Notification of appointment of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7423 Effective date: 20070117 |
|
| A977 | Report on retrieval |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007 Effective date: 20080205 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20090113 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20090126 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120220 Year of fee payment: 3 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 4258271 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120220 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130220 Year of fee payment: 4 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140220 Year of fee payment: 5 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| S531 | Written request for registration of change of domicile |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313531 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140220 Year of fee payment: 5 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |