JP3890611B2 - Novel protease and method for producing the same - Google Patents

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Description

【0001】
【産業上の利用分野】
本発明は、大豆β−コングリシニン分子を構成するサブユニット中に存在する塩基性アミノ酸のカルボキシル末端側でペプチド結合を加水分解により切断する新規プロテアーゼ、その製造方法及びタンパク質の限定加水分解物の製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術】
タンパク質をプロテアーゼで加水分解する際、反応を途中で止めることにより分解途上の加水分解物を入手することができる。このような限定加水分解物の産業上の有用性は一般に広く知られており、その製造方法も、例えば特開昭64-14274号、特開平1-252245号及び特開平1-281043号等に開示されているように、いくつかの限定加水分解法が提案されている。
【0003】
これに類似した研究の例としては、オバルブミンのペプシンによるpH4での分解 (J. Agric. Food Chem. 1988, 36, 417-420) 、大豆7S、11SグロブリンにトリプシンをpH8で作用させた分解 (Agric. Biol. Chem., 46, 11, 2829-2834, 1982 / Agric. Biol. Chem., 42, 11, 2103-2109, 1978) 等がある。
しかし、このような方法で限定加水分解物を調製すると、限定加水分解物もできるが、それと同時に限定加水分解物が更に分解されることにより、低分子画分も生成されていた。また、限定加水分解物を得る反応そのものに厳密な反応の制御が必要であった。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、疾病に与える影響について優れた特性を有するタンパク質源となり得、またタンパク質の物性(例えば粘性、ゲル形成能)が制御された限定加水分解物、及び該限定加水分解物を生産し得る新規プロテアーゼを提供することを目的とする。
【0005】
【課題を解決するための手段】
本発明のプロテアーゼの理化学的性質は下記の通りである。
(1)作用:ペプチド鎖中に存在する塩基性アミノ酸のカルボキシル末端側でペプチド結合を切断する。
(2)基質特異性:大豆β−コングリシニンのαサブユニット及びα′サブユニットにおいて、塩基性アミノ酸のカルボキシル末端側のペプチド結合を選択特異的に加水分解する。特に、大豆β−コングリシニンのαサブユニット及びα′サブユニットにおいてArg−Arg間に特異的に作用する。
(3)至適pH及び安定pH範囲:至適pHは8〜9であり、pH5〜10の範囲内で安定である。
(4)作用適温の範囲:5〜50℃の範囲内で作用し、至適温度は30℃付近である。
(5)阻害、活性化及び安定化
アンチパイン二塩酸塩、(4−アミジノフェニル)メタンスルホニルフルオリド、アプロチニン、ロイペプチン等のセリンプロテアーゼ阻害剤により阻害を受ける。
(6)力価の測定法
本発明のプロテアーゼの活性は、大豆β−コングリシニン(αサブユニット)を基質として用いる。 0.1μmol の基質を含有するpH8の30mMトリス塩酸緩衝液1mlに酵素溶液20μl を加え、30℃にて2時間反応せしめ、 100℃にて10分加熱することにより反応を停止せしめる。この間に分解した基質(αサブユニット)の量を測定する。1分間に1nmole のαサブユニットを分解する酵素の量を1単位とする。
(7)精製方法
大豆11Sグロブリン画分を硫安50%飽和で沈殿する画分をイオン交換クロマトグラフィーによって精製する。
【0006】
本発明のプロテアーゼは、例えば、α′サブユニットを欠失した大豆種子、例えば「毛振」からpH6.5〜9、好ましくはpH8において豆乳を調製し、該豆乳から前記プロテアーゼを採取することにより製造することができる。
ここで用いる豆乳は、例えば、前記種子を粉砕後、場合によりヘキサン等の適当な有機溶媒により脱脂した後、トリス塩酸緩衝液等のpH6.5〜9、好ましくはpH8の緩衝液で抽出することにより得ることができる。
【0007】
本発明のプロテアーゼの前記豆乳からの採取は、好ましくは、前記豆乳をpH6.4に調整した後、遠心し、沈殿した画分(所謂大豆11Sグロブリン画分)をpH7.6の緩衝液に溶解し、これに硫安を50%飽和になるまで添加することにより沈殿した画分を遠心し、次いで、イオン交換クロマトグラフィー等によって精製することにより行うことができる。
【0008】
また、前記豆乳から7Sグロブリン画分を採取し、次いで、塩析により大豆β−コングリシニンの限定加水分解物を採取することにより、外部からプロテアーゼを添加したり、その反応を制御する必要なく、完熟種子中に存在するプロテアーゼの作用によって限定加水分解物を調製することができる。
即ち、豆乳調製中に、pH以外何ら反応を制御することなく、限定加水分解物を調製することができる。これは、プロテアーゼの基質特異性にも関係するが、それだけではなく、基質であるβ−コングリシニン分子の立体構造にも関連していると考えられる。即ち、このβ−コングリシニン分子の溶液中での立体構造とプロテアーゼの基質及び反応特異性との組み合わせによって、非常に簡便に限定加水分解物が得られると考えられる。
【0009】
前記7Sグロブリン画分の採取は、常法により行うことができ、例えば、脱脂大豆を例えばトリス塩酸緩衝液で抽出後、pH6.4の沈殿画分を除去した後、pH4.8の沈殿画分を採取し、pH7.6の水溶液で7Sグロブリン画分を溶解する Thannらの方法(J. Agric. Food Chem., 24 (6), P1119) 、脱脂大豆を希カルシウム塩溶液で抽出して分画する方法(特開昭48-56843号公報)、米国特許第3953611 号明細書記載の one convenient method "7S SOYBEAN PROTEIN ISOLATE" 、特公昭60-3812 号公報記載の大豆蛋白の分画法、特公平3-65138 号公報記載の大豆蛋白の製造法、特開昭61-236795 号公報記載の蛋白の分画法により行うことができる。
【0010】
更に、大豆種子又はその処理物、例えば豆乳等の大豆β−コングリシニン含有物を前記プロテアーゼ又はその粗酵素で処理した後、大豆β−コングリシニンの限定加水分解物を採取することによっても限定加水分解物を調製することができる。ここで用いる前記粗酵素としては、例えばα′サブユニットを欠失した大豆種子からpH6.5〜9、好ましくはpH8において調製した豆乳から採取されたプロテアーゼ含有物が挙げられる。
【0011】
この方法は、好ましくは、α′サブユニットを欠失した大豆種子からpH6.5〜9、好ましくはpH8において調製した豆乳から採取されたプロテアーゼ含有物で大豆種子から調製した豆乳をpH6.5〜9、好ましくはpH8において処理した後、該豆乳から前述した常法に従い7Sグロブリン画分を採取することにより行うことができる。
【0012】
以上のようにして得られたαサブユニットの限定加水分解物は、αサブユニットのアミノ末端から127 番目から543 番目までの領域であり、一次構造がcDNAから推定されて明らかになっている。この配列からアミノ酸組成を求めると、Trp、Cysは1残基も含まず、またMetも1残基しか含んでいない。このため、例えばタンパク質の粘性及びゲル形成能が低下した限定加水分解物とすることができ、更に、Trpは脳の代謝において、その誘導物質がある種の疾病に悪い影響を及ぼすため、これを含まないタンパク質は、それらの疾病の患者に対してタンパク質の供給源として重要な役割を果たしうる。また、悪性腫瘍の進行をMet欠乏タンパク質が遅らせるという報告があるが、このような患者に対しても、有力なタンパク質源となりうると考えられる。
【0013】
【実施例】
〔実施例1〕 プロテアーゼの製造
α′欠失系統の大豆種子(例えば毛振品種)100 gを粉砕後、ヘキサンにより脱脂し、10倍量のトリス塩酸緩衝液(30mM、pH8)で約1時間抽出することによって豆乳を調製した(オカラ成分を遠心で除いた)。この豆乳を氷冷しながら、pH6.4に調整し、一晩静置した。約10,000gで遠心し、沈殿した画分(所謂大豆11Sグロブリン画分)を標準緩衝液(35mMリン酸緩衝液、pH7.6、0.4Mの塩化ナトリウムを含む)約150ml に溶解し、これに硫安を50%飽和になるまで添加することにより沈殿した画分を遠心することにより得た。
【0014】
この沈殿画分が、求める粗酵素含有画分である(約1U/mg)。
〔実施例2〕 限定加水分解物の調製
実施例1で調製した豆乳より、pH6.4で沈殿しなかった画分をpH4.8に調整し、この条件で沈殿した画分(所謂7S画分)を同じく標準緩衝液に溶解し、硫安50%飽和で沈殿する画分を遠心操作により除き、硫安90%飽和にした。
【0015】
この沈殿画分を硫安65%飽和溶液で抽出した画分が限定加水分解物を主として含有する画分である。
この操作で、純度90%の限定加水分解物が約1g得られる。
〔実施例3〕 限定加水分解物を主成分として含む7Sグロブリン画分の調製
実施例1でα′欠失系統の大豆種子(例えば毛振品種)100 gから調製した粗酵素含有画分を、普通品種の大豆100 gより調製した豆乳(pH8)に添加し、約1時間攪拌した。この豆乳をpH6.4に調整し、沈殿しなかった画分をpH4.8に調整し、沈殿させることによって限定加水分解物を含む7Sグロブリン画分を約20g得た。
【0016】
〔試験例1〕 限定加水分解物の非ゲル化特性
実施例2で調製した限定加水分解物の加熱によるゲル化特性を動的粘弾性測定装置を用いて、次の条件で測定した。

Figure 0003890611
測定結果を図1に示す。この図から、実施例2で調製したβ−コングリシニンの限定加水分解物は、10%という高濃度において加熱してもゲルを形成せず、従って粘度(G′:貯蔵弾性率)が上昇しないことがわかる。
【0017】
【発明の効果】
本発明によれば、疾病に与える影響について優れた特性を有するタンパク質源となり得、しかもタンパク質の限定加水分解の程度が容易に制御された限定加水分解物、及び該限定加水分解物を生産し得る新規プロテアーゼを提供することができる。これまでは、完熟種子中に存在するプロテアーゼで、β−コングリシニンを限定加水分解するプロテアーゼは見つかっていなかった。また、本発明のプロテアーゼのように基質特異性が高く、しかも切断箇所が明らかなプロテアーゼに関する知見は初めてであり、酵素活性の高いプロテアーゼも初めてである。
【図面の簡単な説明】
【図1】動的粘弾性の測定結果を示す図である。
【符号の説明】
● 大豆β−コングリシニン
▲ 大豆β−コングリシニンの限定加水分解物[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to a novel protease that cleaves a peptide bond by hydrolysis at the carboxyl terminal side of a basic amino acid present in a subunit constituting a soybean β-conglycinin molecule, a method for producing the same, and a method for producing a limited hydrolyzate of the protein. About.
[0002]
[Prior art]
When hydrolyzing a protein with a protease, a hydrolyzate in the course of decomposition can be obtained by stopping the reaction halfway. The industrial utility of such a limited hydrolyzate is generally widely known, and its production method is also described in, for example, JP-A Nos. 64-14274, 1-252245 and 1-281043. As disclosed, several limited hydrolysis methods have been proposed.
[0003]
Examples of similar studies include degradation of ovalbumin with pepsin at pH 4 (J. Agric. Food Chem. 1988, 36, 417-420), degradation of trypsin on soybean 7S and 11S globulins at pH 8 ( Agric. Biol. Chem., 46, 11, 2829-2834, 1982 / Agric. Biol. Chem., 42, 11, 2103-2109, 1978).
However, when a limited hydrolyzate is prepared by such a method, a limited hydrolyzate can also be produced, but at the same time, the limited hydrolyzate is further decomposed to produce a low molecular fraction. In addition, the reaction itself for obtaining the limited hydrolyzate requires strict reaction control.
[0004]
[Problems to be solved by the invention]
INDUSTRIAL APPLICABILITY The present invention can be a protein source having excellent characteristics with respect to the influence on diseases, can produce a limited hydrolyzate with controlled physical properties (eg, viscosity, gel-forming ability) of the protein, and the limited hydrolyzate. An object is to provide a novel protease.
[0005]
[Means for Solving the Problems]
The physicochemical properties of the protease of the present invention are as follows.
(1) Action: Cleavage of a peptide bond at the carboxyl terminal side of a basic amino acid present in a peptide chain.
(2) Substrate specificity: In the α subunit and α ′ subunit of soybean β-conglycinin, the peptide bond on the carboxyl terminal side of the basic amino acid is selectively hydrolyzed. In particular, it acts specifically between Arg and Arg in the α subunit and α ′ subunit of soybean β-conglycinin.
(3) Optimal pH and stable pH range: The optimal pH is 8-9, and is stable within the range of pH 5-10.
(4) Range of temperature suitable for action: It works within a range of 5 to 50 ° C, and the optimum temperature is around 30 ° C.
(5) Inhibition, activation and stabilization Inhibited by serine protease inhibitors such as antipain dihydrochloride, (4-amidinophenyl) methanesulfonyl fluoride, aprotinin and leupeptin.
(6) Method for measuring titer The activity of the protease of the present invention uses soybean β-conglycinin (α subunit) as a substrate. Add 20 μl of the enzyme solution to 1 ml of pH 8 30 mM Tris-HCl buffer containing 0.1 μmol of the substrate, react at 30 ° C. for 2 hours, and terminate the reaction by heating at 100 ° C. for 10 minutes. The amount of substrate (α subunit) decomposed during this period is measured. One unit is the amount of enzyme that degrades 1 nmole of α subunit per minute.
(7) Purification method The fraction that precipitates the soybean 11S globulin fraction at 50% ammonium sulfate saturation is purified by ion exchange chromatography.
[0006]
The protease of the present invention is prepared by, for example, preparing soybean milk at a pH of 6.5 to 9, preferably pH 8, from soybean seeds lacking the α ′ subunit, for example, “Shari”, and collecting the protease from the soybean milk. Can be manufactured.
The soy milk used here is extracted, for example, after pulverizing the seeds, optionally degreased with a suitable organic solvent such as hexane, and then extracted with a buffer solution of pH 6.5-9, preferably pH 8, such as Tris-HCl buffer. Can be obtained.
[0007]
The protease of the present invention is preferably collected from the soymilk, after the soymilk is adjusted to pH 6.4, centrifuged, and the precipitated fraction (so-called soybean 11S globulin fraction) is dissolved in a buffer solution of pH 7.6. The fraction precipitated by adding ammonium sulfate to 50% saturation can be centrifuged and then purified by ion exchange chromatography or the like.
[0008]
In addition, by collecting 7S globulin fraction from the soymilk, and then collecting limited hydrolyzate of soybean β-conglycinin by salting out, it is not necessary to add protease from the outside or control the reaction, so that it is fully ripe Limited hydrolysates can be prepared by the action of proteases present in seeds.
In other words, the limited hydrolyzate can be prepared during the preparation of soymilk without controlling any reaction other than pH. This is related not only to the substrate specificity of the protease, but also to the three-dimensional structure of the substrate β-conglycinin molecule. That is, it is considered that a limited hydrolyzate can be obtained very simply by a combination of the three-dimensional structure of this β-conglycinin molecule in solution with the protease substrate and reaction specificity.
[0009]
The 7S globulin fraction can be collected by a conventional method. For example, after extracting defatted soybean with, for example, Tris-HCl buffer, the pH 6.4 precipitate fraction is removed, and then the pH 4.8 precipitate fraction is extracted. And the 7S globulin fraction is dissolved in an aqueous solution of pH 7.6 (J. Agric. Food Chem., 24 (6), P1119), and defatted soybeans are extracted with dilute calcium salt solution. A convenient method "7S SOYBEAN PROTEIN ISOLATE" described in US Pat. No. 3,953,611, a soybean protein fractionation method described in Japanese Patent Publication No. 60-3812, It can be carried out by the method for producing soybean protein described in Japanese Patent Publication No. 3-65138 and the protein fractionation method described in Japanese Patent Laid-Open No. 61-236795.
[0010]
Further, the limited hydrolyzate may be obtained by treating soybean seed or a processed product thereof, for example, a soybean β-conglycinin-containing material such as soy milk with the protease or a crude enzyme thereof, and then collecting the limited hydrolyzate of soybean β-conglycinin. Can be prepared. Examples of the crude enzyme used here include protease-containing substances collected from soybean milk prepared from soybean seeds lacking the α ′ subunit at pH 6.5 to 9, preferably pH 8.
[0011]
This method preferably comprises soy milk prepared from soybean seeds with a protease-containing product collected from soy milk prepared at a pH of 6.5-9, preferably at pH 8, from soybean seeds lacking the α ′ subunit. 9, preferably after treatment at pH 8, by collecting the 7S globulin fraction from the soymilk according to the conventional method described above.
[0012]
The limited hydrolyzate of the α subunit obtained as described above is the region from the 127th to the 543th from the amino terminus of the α subunit, and the primary structure is deduced from the cDNA. When the amino acid composition is determined from this sequence, Trp and Cys do not contain one residue, and Met contains only one residue. For this reason, for example, it can be a limited hydrolyzate with reduced protein viscosity and gel-forming ability, and Trp has a negative effect on certain diseases in the brain's metabolism. Proteins that do not contain can play an important role as a source of protein for patients with these diseases. Moreover, although there is a report that a Met-deficient protein delays the progression of malignant tumor, it is considered that it can be an effective protein source for such patients.
[0013]
【Example】
[Example 1] Protease production 100 g of soybean seeds (for example, varieties of hair shake) of α′-deficient line were pulverized, defatted with hexane, and about 10 hours with 10 times amount of Tris-HCl buffer (30 mM, pH 8) Soymilk was prepared by extraction (the okara component was removed by centrifugation). The soymilk was adjusted to pH 6.4 while cooling with ice and allowed to stand overnight. Centrifuge at about 10,000 g and dissolve the precipitated fraction (so-called soy 11S globulin fraction) in about 150 ml of standard buffer (containing 35 mM phosphate buffer, pH 7.6, 0.4 M sodium chloride). Fraction precipitated by adding ammonium sulfate to 50% saturation was obtained by centrifuging.
[0014]
This precipitate fraction is a fraction containing the crude enzyme to be obtained (about 1 U / mg).
[Example 2] Preparation of limited hydrolyzate The fraction not precipitated at pH 6.4 was adjusted to pH 4.8 from the soymilk prepared in Example 1, and the fraction precipitated under this condition (so-called 7S fraction) ) Was dissolved in a standard buffer, and the fraction precipitated at 50% saturation with ammonium sulfate was removed by centrifugation to obtain 90% saturation with ammonium sulfate.
[0015]
A fraction obtained by extracting this precipitated fraction with a 65% saturated solution of ammonium sulfate is a fraction mainly containing a limited hydrolyzate.
By this operation, about 1 g of a limited hydrolyzate having a purity of 90% is obtained.
[Example 3] Preparation of 7S globulin fraction containing limited hydrolyzate as a main component The crude enzyme-containing fraction prepared from 100 g of soybean seeds of α'-deficient line (for example, varieties of hair shake) in Example 1, It was added to soy milk (pH 8) prepared from 100 g of normal soybeans and stirred for about 1 hour. The soymilk was adjusted to pH 6.4, the fraction that did not precipitate was adjusted to pH 4.8, and precipitated to obtain about 20 g of 7S globulin fraction containing limited hydrolyzate.
[0016]
[Test Example 1] Non-gelling property of limited hydrolyzate The gelation property by heating of the limited hydrolyzate prepared in Example 2 was measured using a dynamic viscoelasticity measuring device under the following conditions.
Figure 0003890611
The measurement results are shown in FIG. From this figure, the limited hydrolyzate of β-conglycinin prepared in Example 2 does not form a gel even when heated at a high concentration of 10%, and therefore the viscosity (G ′: storage elastic modulus) does not increase. I understand.
[0017]
【The invention's effect】
ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, it can become a protein source which has the outstanding characteristic about the influence which it has on a disease, Furthermore, the limited hydrolyzate by which the grade of the limited hydrolysis of protein was easily controlled, and this limited hydrolyzate can be produced. Novel proteases can be provided. So far, no protease has been found that is a protease present in fully-ripened seeds and that hydrolyzes β-conglycinin in a limited manner. Moreover, the knowledge about the protease having high substrate specificity and clear cleavage site like the protease of the present invention is the first and the protease with high enzyme activity is also the first.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a diagram showing measurement results of dynamic viscoelasticity.
[Explanation of symbols]
● Soybean β-conglycinin ▲ Limited hydrolyzate of soybean β-conglycinin

Claims (4)

下記の理化学的性質を有するプロテアーゼ粗酵素
(1)作用:ペプチド鎖中に存在する塩基性アミノ酸のカルボキシル末端側でペプチド結合を切断する。
(2)基質特異性:大豆β−コングリシニンのαサブユニット及びα′サブユニットにおいて、塩基性アミノ酸のカルボキシル末端側のペプチド結合を選択特異的に加水分解する。
(3)至適pH及び安定pH範囲:至適pHは8〜9であり、pH5〜10の範囲内で安定である。
(4)作用適温の範囲:5〜50℃の範囲内で作用し、至適温度は30℃付近である。
(5)阻害、活性化及び安定化
アンチパイン二塩酸塩、(4−アミジノフェニル)メタンスルホニルフルオリド、アプロチニン、ロイペプチンにより阻害を受ける。
(6)採取方法
大豆品種「毛振」の種子からpH6.5〜9において豆乳を調製し、該豆乳から11Sグロブリン画分を採取し、該画分を硫安50%飽和で沈殿させることにより得られる。
Protease crude enzyme having the following physicochemical properties.
(1) Action: Cleavage of a peptide bond at the carboxyl terminal side of a basic amino acid present in a peptide chain.
(2) Substrate specificity: In the α subunit and α ′ subunit of soybean β-conglycinin, the peptide bond on the carboxyl terminal side of the basic amino acid is selectively hydrolyzed.
(3) Optimal pH and stable pH range: The optimal pH is 8-9, and is stable within the range of pH 5-10.
(4) Range of optimal working temperature: The working temperature is in the range of 5 to 50 ° C, and the optimal temperature is around 30 ° C.
(5) Inhibition, activation and stabilization Inhibited by antipain dihydrochloride, (4-amidinophenyl) methanesulfonyl fluoride, aprotinin, leupeptin.
(6) Collection method
It is obtained by preparing soy milk from the seeds of soybean cultivar “Mori” at pH 6.5-9, collecting 11S globulin fraction from the soy milk, and precipitating the fraction with 50% saturation of ammonium sulfate.
大豆品種「毛振」の種子からpH6.5〜9において豆乳を調製し、該豆乳から11Sグロブリン画分を採取することを含む、請求項1記載のプロテアーゼ粗酵素の製造方法。 The method for producing a crude protease according to claim 1, comprising preparing soy milk at a pH of 6.5 to 9 from the seeds of soybean cultivar " Shari " and collecting an 11S globulin fraction from the soy milk. 大豆種子又は大豆種子から調製した豆乳を請求項1記載のプロテアーゼ粗酵素で処理した後、大豆β−コングリシニンの限定加水分解物を採取することを特徴とするタンパク質の限定加水分解物の製造方法。A method for producing a limited hydrolyzate of protein, comprising treating soybean seed or soy milk prepared from soybean seed with the protease crude enzyme according to claim 1, and then collecting a limited hydrolyzate of soybean β-conglycinin. 大豆種子から調製した豆乳が使用され
記豆乳を上記粗酵素で処理する工程が、pH6.5〜9において行われ、且つ
大豆β−コングリシニンの限定加水分解物を採取する工程が、上記の処理工程を経た豆乳から7Sグロブリン画分を採取する工程を含む、
ことを特徴とする請求項3記載の製造方法。
Soy milk prepared from soybean seeds is used ,
Treating the upper Symbol soymilk above crude enzyme is performed in PH6.5~9, and recovering said soybean β- conglycinin limited hydrolyzate, 7S globulin fraction from milk that has undergone the above processing steps Including the step of collecting
The manufacturing method of Claim 3 characterized by the above-mentioned.
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