JP3886547B2

JP3886547B2 - Spices having antibacterial activity and antibacterial agents made from the same

Info

Publication number: JP3886547B2
Application number: JP26684694A
Authority: JP
Inventors: 義弘河智; 良三中原; 郁男勝見; 亜季子加味; 営次石井; 純子尾立
Original assignee: 株式会社カネカサンスパイス; 大阪市
Priority date: 1994-02-09
Filing date: 1994-10-31
Publication date: 2007-02-28
Anticipated expiration: 2022-02-28
Also published as: JPH07267873A

Description

【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、メチシリン耐性黄色ぶどう球菌によって引きおこされる難治性の感染性の治療及び予防に有効な薬剤、および食中毒の防止に有効な薬剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
黄色ぶどう球菌（Staphylococcus aureus）はヒトの皮膚、鼻前庭、腸管内、そして自然環境に広く分布している病原菌であり、食中毒、化膿性疾患の病原菌として知られている。つまり、黄色ぶどう球菌は、ヒトへの腸炎起因菌として最も身近にあり、かつ毒性の強い細菌として注目されてきた。黄色ぶどう球菌の感染による病気（黄色ぶどう球菌感染症）の治療方法は、抗生物質ペニシリンに始まる現代抗菌療法の進歩、発展に伴い、臨床的にはすでに解決されたもの考えられていたため、長い間、問題とされることがなかった。
【０００３】
ところが、１９８０年代後半になってから、黄色ぶどう球菌感染症の治療上の問題が再び起こってきた。メチシリン耐性黄色ぶどう球菌（Methicillin resistant Staphylococcus aureus：以下、ＭＲＳＡと省略する）の出現である。メチシリンは、ペニシリンに耐性化した黄色ぶどう球菌に効力を有する抗菌薬として最初に開発されたペニシリン耐性ぶどう球菌用の抗生物質である。そこで、メシチリンに耐性を示す黄色ぶどう球菌に、メチシリンの名称を付して、一般的にＭＲＳＡと呼んでいる。
【０００４】
しかし、ＭＲＳＡの本態は、メチシリンのみならず、現在市販されているほとんどすべてのβ−ラクタム剤に耐性を示す性質を有している点にある。β−ラクタム剤と呼称される抗菌薬には、耐性ぶどう球菌用ペニシリンをはじめとするすべてのペニシリン系、第１、第２、第３世代と呼ばれるすべてのセフェム系、あるいはモノバクタム系、カルバペネム系といった、現在、臨床において用いられている抗菌薬のほとんどが含まれる。従って、有効なβ−ラクタム系の薬剤がほとんど無いというのが、現在のＭＲＳＡの１つの問題点である。
【０００５】
さらに、ＭＲＳＡはβ−ラクタム剤のみならず、多くのアミノグリコシド系やマクロライド系抗生剤にも耐性を示し、最近開発されたニューキノロン系薬にも耐性を示しつつある。言い換えると、ＭＲＳＡとは、今日の多剤耐性菌を最も具現化した菌である。
【０００６】
また、ＭＲＳＡが大病院であるほど、大きな問題となっている。これは大病院ほど、白血病や癌等で免疫不全状態になっている患者、あるいは高度熱傷患者、または寝たきり老人や未熟児等といった免疫力の低下した患者をより多く抱えているからである。病院内に定着しやすい本菌によって、これらの患者は重篤な感染症におかされており、社会的にも大きな問題となっている。
【０００７】
従って、ＭＲＳＡによる感染対策、あるいはＭＲＳＡの治療方法を見いだすことが重要な問題点である。ＭＲＳＡ感染対策として、化学療法（除菌）、殺菌・消毒（手指の消毒，機械・器具の殺菌・消毒，口腔・耳鼻咽喉の消毒）などがおこなわれているが十分ではなく、また、ＭＲＳＡ対応の除菌剤、殺菌剤、繊維等が開発されているが根本的な解決策とはなっていない。
【０００８】
他方、食中毒も微生物によって発生する。食中毒菌として、サルモネラ菌、病原性大腸菌、カンピロバクターなどがあるが、特に芽胞を形成する細菌が食中毒の原因にもなる。芽胞を形成する細菌は、好気性細菌（Bacillus属細菌、例えば、セレウス菌）と嫌気性細菌（Clostridium属細菌、例えば、ボツリヌス菌、ウェルシュ菌）とに大別される。これらの細菌は、人の生活環境、河川、塵埃等に広く分布し、食品中にも広く分布する。これらの細菌は、野菜、穀類、食品原料中に芽胞の形態としても存在する。そして、芽胞は食品として製造、加工あるいは調理されたときに、温度、湿度、栄養等の条件が整うと発芽、増殖し、腐敗、変敗を引き起こし、一部の芽胞菌は食中毒を引き起こす。
【０００９】
そこで、わが国においては、食中毒防止の観点から、食肉製品、魚肉練り製品、あるいはこれらの原料として添加される糖類、デンプン、香辛料の製造において、耐熱芽胞数に基準が設けられている。この基準によると、耐熱性細菌（芽胞）の数が１ｇ当たり1、000個以下とされている。この基準を満たすべく、上記食品あるいは原料が加熱殺菌される。
【００１０】
しかし、上記細菌が形成する芽胞は、熱あるいは乾燥に対して抵抗性が強く、通常の加熱条件、例えば、栄養細胞の殺菌条件である、100℃、20〜30分では死滅せず、芽胞で汚染された加工食品を加熱しても、芽胞が死滅せず、増殖して、食品の品質劣化、腐敗あるいは食中毒に関与する。他方、ハム、ソーセージ等の魚肉練り製品、食肉製品等では、風味の劣化の問題から厳しい加熱条件は適用できず、芽胞が生存する場合が多い。また、缶詰、レトルト食品では、通常、121℃、20〜40分の殺菌を行うが、芽胞が死滅しない場合がある。さらに、安全性の観点から化学殺菌剤の使用も限定されている。
【００１１】
従って、上記ＭＲＳＡ、あるいは食中毒細菌およびその芽胞に対する抗菌剤が望まれていた。
【００１２】
最近、天然由来で安全性の高い抗菌物質として漢方薬である甘草等については紹介されている。しかし、まだ実用化されるには至っていない（生活衛生(Seikatsu Eisei)37,15-19 (1993)）。
【００１３】
香辛料は古くから抗菌活性があることが知られており、サルモネラ菌、病原性大腸菌、腸炎ビブリオ、セレウス菌などの食中毒菌、更に、黄色ぶどう球菌に対して抗菌活性のあるものが報告されている（日本食品工業学会誌、29巻、112ー116頁(1982)）。しかし、ＭＲＳＡに対して、あるいは一部の食中毒菌に対して有効な香辛料は、現在のところ知られていない。
【００１４】
本発明者らは、ＭＲＳＡに対して、あるいは食中毒菌に対して抗菌活性を有する香辛料およびその抽出物について研究を行い、本発明を完成したものである。
【００１５】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は上記問題を解決するためになされたものであって、その目的とするところは、ＭＲＳＡに対して有効な抗菌活性を有し、耐性菌が出現することがなく、あるいは食中毒菌に対して有効な抗菌活性を有し、かつ安全性の高い抗菌剤を提供することにある。
【００１６】
本発明の別の目的は、安全性が高く、適用の範囲が広い食中毒に対する抗菌剤を提供することにある。
【００１７】
【課題を解決するための手段】
本発明の香辛料は、ＭＲＳＡに対して抗菌性を有する香辛料であり、そのことにより、上記目的が達成される。
【００１８】
本発明の香辛料からの抽出物は、ＭＲＳＡに対して抗菌性を有する抽出物であって、そのことにより、上記目的が達成される。
【００１９】
また、本発明の抗菌剤は、ＭＲＳＡに対して抗菌性を有する上記香辛料、あるいは上記抽出物を含有する抗菌剤であって、そのことにより、上記目的が達成される。
【００２０】
さらに、本発明の香辛料、あるいは抽出物は、ＭＲＳＡ及び食中毒菌に対して抗菌活性を有し、このことにより上記目的が達成される。
【００２１】
本発明の香辛料からの抽出物は、芽胞形成菌に対して抗菌性を有し、このことにより、上記目的が達成される。
【００２２】
本発明に使用される香辛料は、香辛料として販売されているものであって、ＭＲＳＡに対して抗菌性を有するものであればいずれをも使用し得る。好適な香辛料としては、クローブ、オールスパイス、オレガノ、シナモン、マジョラム、ローズマリー、ナットメグ、あるいはセージが挙げられる。
【００２３】
本発明でいう抽出物は、香辛料からの抽出物であって、ＭＲＳＡに対して抗菌性を有する抽出物であれば、いずれをも使用し得る。香辛料としては、上記抗菌活性を有するクローブ、オールスパイス、オレガノ、シナモン、マジョラム、ローズマリー、ナットメグ、あるいはセージが好適に用いられ得るが、これらに限定されない。抗菌活性からは、特に、ローズマリーあるいはセージからの抽出物が好ましい。香辛料に抗菌活性が無くとも、抽出物に抗菌活性があれば、その香辛料も用いられ得る。
【００２４】
ここでいう抽出物は、香辛料から抽出した抽出液、その抽出液を濃縮した濃縮液、あるいは上記抽出液あるいは濃縮液を乾燥して得られる物、および、さらに上記抽出液あるいは濃縮液からさらに精製した物も包含する。
【００２５】
抽出物は、香辛料を水、あるいは有機溶剤で抽出して得られる。有機溶剤として、例えば、ヘキサン、アセトン、dimethyl sulfoxide（以下、ＤＭＳＯと省略する）、アルコール、例えば、メチルアルコール、エチルアルコールが挙げられる。水または上記有機溶剤を、香辛料の重量に対して等量から20倍量を加えて、室温あるいは適当な温度（例えば２５〜５０℃）に加温して、数時間から１日放置し、抽出する。好ましくは、5-10倍量用いて、３７℃で抽出する。このようにして得られる抽出液は、そのまま、あるいはさらに精製して抗菌活性の測定に使用し得る。
【００２６】
精製は、さらに溶媒による抽出、イオン交換樹脂あるいはカラムクロマトグラフィーによる精製など、公知の方法が使用し得る。
【００２７】
香辛料のＭＲＳＡに対する抗菌活性は、病院由来S.aureus T581（以下ＳＡ．Ｂ株）、S.aureus T582（以下ＳＡ．Ｃ株）、S.aureus T583（以下ＳＡ．Ｄ株）を用いて測定し得る。上記菌株を、Trypticase Soy broth（ＴＳＢ）培地で、３７℃で、18-24時間培養し、培養液を滅菌生理食塩水で約１０⁶cfu/mlに希釈して、感受性測定用菌液として用い得る。得られた感受性測定用菌液0.1mlを、Mueller-Hinton寒天培地（BBL）に塗抹し、その表面を乾燥させた後、粉末化した香辛料を20〜50mgのせ、３７℃で培養して、香辛料の周辺に生じるＭＲＳＡ生育阻止円の形成およびその大きさを測定することによって、測定し得る。抽出物の抗菌活性は、香辛料の抗菌活性の測定と同様の方法で測定し得る。すなわち、上記の方法で得られた抽出物を浸み込ませた感受性測定用ディスク（8mm、薄手：アドバンテック）を、香辛料の代わりに寒天培地上にのせて培養し、ＭＲＳＡ生育阻止円の形成およびその大きさを調べることによって、測定し得る。
【００２８】
本発明の香辛料、あるいは抽出物は、ＭＲＳＡに対する抗菌活性のみならず、食中毒菌に対しても抗菌活性を有するが、このような活性を有する香辛料としてクローブ、シナモンまたはオレガノが挙げられる。これらの香辛料、あるいは抽出物の抗菌活性は、ＭＲＳＡに対する抗菌活性と全く同様にして測定され得る。また、抽出物のＭＩＣ（minimun inhibitory concentration）は、各抽出物を段階的に希釈し、阻止円を形成し得る最小の濃度を測定することにより求め得る。
本発明の香辛料、あるいは抽出物が有効である食中毒菌としては、サルモネラ菌、病原性大腸菌、セレウス菌、あるいはカンピロバクターが挙げられる。
【００２９】
食中毒菌に対する抗菌活性の測定に使用し得る細菌としては、以下の菌株が挙げられる：
（１）黄色ブドウ球菌：メチシリン感受性黄色ブドウ球菌（ＭＳＳＡ）として、Staphylococcus aureus（S.aureus）209P（以下ＳＡ．Ａ株）および鶏卵由来S.aureus OCIS 501（以下ＳＡ．Ｅ株）、食中毒事例由来のS.aureusのOCIS 41株、OCIS 49株、OCIS 62株、OCIS 67株、OCIS 91株、およびOCIS 95株、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）として病院由来S.aureus T581（以下ＳＡ．Ｂ株）、S.aureus T582（以下ＳＡ．Ｃ株）、S.aureus T583（以下ＳＡ．Ｄ株）、食中毒事例由来のS.aureusのOCIS 100およびOCIS 104、病院由来のT655、T672、01、および03、
（２）大腸菌：Escherichia coli NIHJ JC2（以下、ＥＣ．Ａ株）、E.coli 41F（出血性大腸菌、以下、ＥＣ．Ｂ株）、E.coli H10407（毒素原性大腸菌、以下、ＥＣ．Ｃ株）および E.coli B/M702（毒素原性大腸菌、以下、ＥＣ．Ｄ株）、下水由来のE.colin OCIE 1501（以下、ＥＣ．Ｅ株）、
（３）サルモネラ菌：食品由来のSalmonella Enteritidis 910225NIPT4（以下Ｓａｌ．Ａ株）および922701 PT4（以下、Ｓａｌ．Ｂ株）、食中毒由来S.Enteritidis 909342PT34（以下、Ｓａｌ．Ｃ株）、S.Typhimurium 8701NM（以下Ｓａｌ．Ｄ株）および8842MS（以下、Ｓａｌ．Ｅ株）、
（４）芽胞菌（セレウス菌）：食中毒や食中毒事例などから分離されたBacilluscereus株としては、Bacillus cereus OCI 9170135（以下、BC.A株）、同OCI 9170137（以下、BC.B株)、同OCI 902303（以下、BC.C株)、同OCI 902309（以下、BC.D株)、および同OCI 107（以下、BC.E株）、
（５）カンピロバクター：Campylobacter jejuni CIP 702（以下、ＣＪ株）およびC.coli CIF 7080（以下、ＣＣ株）、
（６）腸炎ビブリオ菌：食中毒患者から分離されたVibrio parahaemolyticus OCI885227 K64（以下、VP株）、
（７）エルシニア：ヒト由来Yersinia enterocolitica OCI 22 （以下、YE株）、および、
（８）エロモナス：ヒト由来Aeromonas hydrophila OCI 37（以下、AH株）が挙げられる。
【００３０】
上記菌株は大阪市立環境科学研究所に保存されている。
【００３１】
上記菌株は、適当な培地、例えばTrypticase Soy broth（ＴＳＢ）培地で、３７℃で、18-24時間培養し、培養液を滅菌生理食塩水で約１０⁶cfu/mlに希釈して、感受性測定用菌液として用い得る。カンピロバクターを用いる場合は、血液寒天培地（Brucella agar(BBL)に馬脱繊維血液を７％加えたもの）で微好気下、３７℃で２日間培養し、滅菌生理食塩水に約１０⁸cfu/mlに懸濁したものを同様に用い得る。
【００３２】
これらの菌株を用いて、本発明の香辛料、あるいは抽出物が食中毒菌に抗菌活性を有することは、上記のＭＲＳＡと同様の方法で、測定し得る。
【００３３】
本発明の香辛料あるいは抽出物が有効である芽胞を形成する食中毒菌としては、セレウス菌、ウエルシュ菌あるいはクロステリディウム属の細菌が挙げられる。
【００３４】
食中毒菌に対する抗菌活性の測定に使用し得るセレウス細菌としては、Bacillus cereus株、例えば、上記、ＢＣ．Ａ株、ＢＣ．Ｂ株、ＢＣ．Ｃ株、ＢＣ．Ｄ株、ＢＣ．Ｅ株が挙げられる。
【００３５】
抗菌性の測定は、例えば、以下のようにして行い得る。
【００３６】
香辛料のエタノール抽出液を、エタノール濃度がそれぞれ80,40,16,8,4,2および１V/V％となるように滅菌水で順次希釈し、各溶液2〜2.5mlを滅菌試験管にとり、各溶液の1/100量の感受性測定用菌液を添加し、直ちに攪拌して、添加後10秒、20秒、30秒、1分、および2分後に、セレウス菌の場合にはさらに、５分、10分および15分後に、その50μlとり、3〜4mlのＴＳＢ培地に加え、37℃で1〜2日培養する。培養後の生菌の有無を確認するため、その1白金耳を寒天培地に塗布してコロニーを形成させることにより行う。なお、本願において、香辛料あるいは抽出物が、細菌および芽胞と接触して、これらを死滅させる場合に、抗菌性があるという。
【００３７】
上記方法で抗菌活性を有することが確認された香辛料あるいは抽出物は、ＭＲＳＡあるいは食中毒に対する抗菌剤として使用され得る。抗菌剤の形態としては、静脈内注射、皮下注射、筋肉注射等の非経口投与形態、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、細粒剤、散剤等の経口投与形態、座剤、外用液剤、軟膏剤等の局所投与の形態があるが、限定されない。製剤化に用いられる添加剤としては、賦形剤、崩壊剤、分散剤、可塑剤、充填剤等が挙げられる。剤形としては、例えば、乳剤、水和剤、水溶液、錠剤、カプセル剤、分剤、丸剤などが挙げられる。
【００３８】
本発明のＭＲＳＡ、食中毒菌、あるいは芽胞形成細菌に対する抗菌活性を有する香辛料あるいは抽出物は、安全性が高いため、医薬品としての用途以外にも、感染防止、予防目的とした消毒・殺菌剤、除菌効果のある繊維、室内の洗浄、食器の洗浄等の利用、あるいは、食品へ直接添加することも可能である。
【００３９】
以下、本発明のＭＲＳＡに対する抗菌活性、および食中毒菌に対する抗菌活性を有する香辛料および香辛料からの抽出物について、実施例で説明する。
【００４０】
【実施例】
（実施例１）一次スクリーニング
まず、２８種類の香辛料を用い、ＭＲＳＡを含む食中毒菌に対する抗菌活性の有無の一次スクリーニングを行った。
【００４１】
１）使用香辛料
赤唐辛子，ジンジャー，マスタード，オニオン，ガーリック，クローブ，オールスパイス，シナモン，ナットメグ，メース，クミン，メッチ，コリアンダー，カルダモン，ディル，フェンネル，アニス，スターアニス，ウコン，オレガノ，セージ，セロリ，タイム，マジョラム，バジル，ローレル，ローズマリー，ペパーミント。
【００４２】
２）使用菌株
（１）黄色ブドウ球菌：メチシリン感受性黄色ブドウ球菌（ＭＳＳＡ）として、ＳＡ．Ａ株、ＳＡ．Ｅ株、S.aureus OCIS 41株、OCIS 49株、OCIS 62株、OCIS 67株、OCIS 91株、およびOCIS 95株、
メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）としてＳＡ．Ｂ株、ＳＡ．Ｃ株、ＳＡ．Ｄ株、S.aureusのOCIS 100、OCIS 104、T655、T672、01、03、
（２）大腸菌：ＥＣ．Ａ株、ＥＣ．Ｂ株、ＥＣ．Ｃ株、ＥＣ．Ｄ株、およびＥＣ．Ｅ株、
（３）サルモネラ菌：Ｓａｌ．Ａ株、Ｓａｌ．Ｂ株、Ｓａｌ．Ｃ株、Ｓａｌ．Ｄ株、およびＳａｌ．Ｅ株、
（４）芽胞菌（セレウス菌）：ＢＣ．Ａ株、ＢＣ．Ｂ株、ＢＣ．Ｃ株、ＢＣ．Ｄ株、ＢＣ．Ｅ株、および、
（５）カンピロバクター：ＣＪ株およびＣＣ株。
【００４３】
３）培養方法及び接種菌液の調製
上記菌株をTrypticase Soy broth（ＴＳＢ）に植菌し、37℃、一日培養した。培養液を滅菌生理食塩水で１０⁶ｃｆｕ／ｍｌに希釈し、接種用菌液とした。
【００４４】
カンピロバクターの場合は、血液寒天培地で微好気下、３７℃で２日間培養した菌を滅菌生理食塩水に１０⁸ｃｆｕ／ｍｌに懸濁したものを同様に用いた。
【００４５】
４）香辛料の抗菌活性の一次スクリーニング
Mueller-Hinton寒天培地（ＢＢＬ）20mlを含む直径90mlのペトリ皿中の寒天上に各細菌の接種用菌液0.1mlを塗抹し、その表面を乾燥させた後、各香辛料を20〜50mgのせ、37℃で一日培養した。培養後、香辛料の周辺に阻止円がみられたものを一次スクリーニング陽性とした。結果を表１に示す。
【００４６】
【表１】

【００４７】
表１に記載の香辛料は、左欄の使用したすべての菌株に対して抗菌活性があった。
【００４８】
（実施例２）香辛料抽出液の調製および抗菌活性の測定（二次スクリーニング）
２８種類の香辛料をヘキサン、アセトン、ＤＭＳＯ、および滅菌水に対して、各香辛料を１０w/v%となるように加え、１日浸漬し、各上清を抽出液とした。ただし、滅菌水による浸漬は３７℃で４〜５時間処理後、メンブランフィルター（アドバンテック）により濾過し、これを抽出液とした。各香辛料抽出液２０μｌを感受性測定用ディスク（８ｍｍ，薄手：アドバンテック）に浸み込ませたものを、前述の一次スクリーニングの場合と同様に各寒天上にのせ、培養し、その阻止円の形成を調べた。結果を表２に示す。
【００４９】
【表２】

【００５０】
大腸菌、サルモネラ菌、およびカンピロバクターに対しては、香辛料抽出物は二次スクリーニングでは抗菌活性が検出されなかったが、後述の濃縮物を用いた表３では活性が示されている。従って、抽出物の濃度が低かったことに由来するものと思われる。
【００５１】
黄色ブドウ球菌（ＭＳＳＡ、およびＭＲＳＡ）、およびセレウス菌の上記使用したすべての菌株に対して、表２に記載の香辛料のヘキサン、アセトン、ＤＭＳＯおよび水の溶媒抽出物はすべて抗菌活性を有していた。
【００５２】
（実施例３）ディスク法による香辛料抽出液のＭＩＣ（minimum inhibitory concentration：最小発育阻止濃度）の測定
一次スクリーニングと二次スクリーニングにより抗菌活性を有する可能性が考えられる香辛料抽出濃縮物（香辛料をヘキサンで抽出し、ヘキサンを真空下で除去したもの）についてのＭＩＣ測定を行った。各抽出濃縮物をＤＭＳＯに加え、ＤＭＳＯ１０％液を作製し、これを原液としてＤＭＳＯにより順次２倍希釈液を作成した。各希釈液を前述のディスクに吸収させ、以下一次スクリーニングと同様に菌株を塗抹した寒天上にのせ、培養後ディスクの周辺の阻止円形成を調べた。各細菌に対し、阻止円のみられる希釈系列のうち、最大の希釈倍率すなわち最小の濃度をディスク法によりＭＩＣとした。食中毒菌に対する抗菌活性を表３に、黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡとＭＳＳＡ）に対する抗菌活性を表４に示す。
【００５３】
【表３】

【００５４】
【表４】

【００５５】
（実施例４）
香辛料としてオールスパイス、シナモン、クローブ、ナットメグ、マジョラム、オレガノ、ローズマリー、およびセージを用い、それぞれの重量に対して、10倍量のエタノールを加え、室温で16時間攪拌抽出し、ヌッチェで減圧ろ過した。ろ液の、香辛料のエタノール抽出液を、エタノール濃度が８０V/V％となるように滅菌水で希釈し、各溶液2mlを滅菌試験管にとり、各溶液に20μlの感受性測定用菌液（１０⁸cells/ml）を添加し、直ちに攪拌して、添加後10秒、20秒、30秒、1分、および2分後に、セレウス菌の場合にはさらに、５分、10分および15分後に、その50μlを3〜4mlのＴＳＢ培地に加え、37℃で1〜2日培養した。培養後1白金耳を寒天培地に塗布してコロニーを形成させることにより、抗菌力を測定した。表５にその結果を示す。
【００５６】
なお、感受性測定用菌液はＴＳＢ培地で、３７℃で、4〜5時間静置培養し、同ＴＳＢ培地で約１０⁸cfu/mlに希釈したものを用いた。
【００５７】
【表５】

【００５８】
表５に示すように、試験した細菌は、セレウス菌を除き、80％のエタノール濃度でも10秒以内で死滅した。セレウス菌はアルコールにも耐性であるが、クローブおよびローズマリーのエタノール抽出液は、それぞれ、10秒以内で、および120秒で、セレウス菌を死滅させた。
【００５９】
なお、表には示していないが、各香辛料のエタノール抽出液は、抗菌活性を有することは確認している。
【００６０】
セレウス菌について、さらに検討した。結果を表６に示す。
【００６１】
【表６】

【００６２】
表６に示すように、各抽出液は、セレウス菌に対して、抗菌活性に差があった。しかし、ローズマリーのエタノール抽出液は、すべての試験した菌株に対して、抗菌活性を有していた。なお、この表は、80％に希釈したエタノール抽出物で10秒間（ただし、BC.A株に対してのみ120秒間）処理した場合の結果であり、ローズマリーが芽胞菌に対して有効であることが認められた。
【００６３】
さらに、ローズマリーのエタノール抽出液は、複数種のセレウス菌に対して抗菌活性を示すことが認められた。
【００６４】
以上の結果、オールスパイス、シナモン、クローブ、ナットメグ、マジョラム、オレガノ、ローズマリー、セージがＭＲＳＡに抗菌性を示す。特に、これらの香辛料のうち、ローズマリーとセージの抽出濃縮液はＭＲＳＡ活性が高い抗菌力を示す。また、クローブ、シナモン、オレガノは、食中毒菌にも抗菌活性を有することから食中毒の予防に有効に利用し得る。
【００６５】
また、セレウス菌のような芽胞菌にも香辛料又はその抽出物が有効であることがわかり、食中毒の予防に有効に利用し得る。
【００６６】
【発明の効果】
本発明のＭＲＳＡ、食中毒菌あるいは芽胞形成細菌に対しても抗菌活性を有する香辛料あるいは抽出物は、安全性が高いため、医薬品としての用途以外にも、感染防止、予防を目的とした消毒・殺菌剤、除菌効果のある繊維、室内の洗浄、食器の洗浄等への利用に用いることができ、あるいは、食品へ直接添加することもできる。[0001]
[Industrial application fields]
The present invention relates to a drug effective for the treatment and prevention of intractable infectivity caused by methicillin-resistant Staphylococcus aureus, and a drug effective for preventing food poisoning.
[0002]
[Prior art]
Staphylococcus aureus is a pathogen that is widely distributed in human skin, nasal vestibule, intestinal tract, and natural environment, and is known as a pathogen of food poisoning and purulent diseases. In other words, Staphylococcus aureus has attracted attention as the most familiar and highly toxic bacterium that causes enteritis in humans. The treatment method for diseases caused by Staphylococcus aureus infection (Staphylococcus aureus infection) has been considered to have been solved clinically with the progress and development of modern antibacterial therapy starting with the antibiotic penicillin. It was never a problem.
[0003]
However, since the late 1980s, the problem of treating Staphylococcus aureus infections has recurred. This is the emergence of methicillin resistant Staphylococcus aureus (hereinafter abbreviated as MRSA). Methicillin is an antibiotic for penicillin-resistant staphylococci that was first developed as an antibacterial agent effective against Staphylococcus aureus that has become resistant to penicillin. Therefore, Staphylococcus aureus that is resistant to methicillin is generally called MRSA with the name of methicillin.
[0004]
However, the essential form of MRSA is that it has resistance to not only methicillin but also almost all commercially available β-lactam agents. Antibacterial drugs called β-lactams include all penicillins, including resistant staphylococcal penicillins, all cephems called first, second, and third generations, or monobactams, carbapenems, etc. This includes most of the antibacterial drugs currently used in clinical practice. Therefore, one of the problems with current MRSA is that there are almost no effective β-lactam drugs.
[0005]
Furthermore, MRSA is resistant not only to β-lactams but also to many aminoglycosides and macrolide antibiotics, and is also being resistant to recently developed new quinolones. In other words, MRSA is a bacterium that most embodies today's multi-drug resistant bacterium.
[0006]
In addition, the larger the MRSA, the greater the problem. This is because larger hospitals have more patients who are immunocompromised due to leukemia, cancer, etc., severely burned patients, bedridden elderly people, premature infants, etc. who have weakened immunity. These bacteria, which are easily established in hospitals, have caused serious infectious diseases for these patients, which is a serious social problem.
[0007]
Therefore, it is an important problem to find out a countermeasure for infection by MRSA or a method for treating MRSA. As countermeasures against MRSA infection, chemotherapy (disinfection), sterilization / disinfection (hand disinfection, sterilization / disinfection of machinery / equipment, disinfection of oral cavity, otolaryngology), etc. are not sufficient, but MRSA compliance Disinfectants, disinfectants, fibers, etc. have been developed but are not the fundamental solution.
[0008]
On the other hand, food poisoning is also caused by microorganisms. Examples of food poisoning bacteria include Salmonella, pathogenic Escherichia coli, and Campylobacter, but bacteria that form spores can also cause food poisoning. Bacteria that form spores are roughly classified into aerobic bacteria (Bacillus bacteria, such as Bacillus cereus) and anaerobic bacteria (Clostridium bacteria, such as Clostridium botulinum and Clostridium perfringens). These bacteria are widely distributed in the human living environment, rivers, dust, and the like, and are also widely distributed in foods. These bacteria also exist in the form of spores in vegetables, cereals and food ingredients. When the spore is produced, processed or cooked as a food, conditions such as temperature, humidity, and nutrition are established, germinate, proliferate, cause decay and deterioration, and some spores cause food poisoning.
[0009]
Therefore, in Japan, from the viewpoint of preventing food poisoning, standards are set for the number of heat-resistant spores in the production of meat products, fish paste products, or sugars, starches and spices added as raw materials thereof. According to this standard, the number of heat-resistant bacteria (spores) is 1,000 or less per gram. In order to satisfy this standard, the food or raw material is heat sterilized.
[0010]
However, the spore formed by the above-mentioned bacteria is highly resistant to heat or drying and does not die under normal heating conditions, for example, sterilization conditions of vegetative cells at 100 ° C. for 20 to 30 minutes. Even if the contaminated processed food is heated, the spores are not killed, but proliferate and participate in food quality deterioration, spoilage or food poisoning. On the other hand, for fish paste products such as ham and sausage, meat products and the like, severe heating conditions cannot be applied due to the problem of flavor deterioration, and spores often survive. In addition, canned and retort foods are usually sterilized at 121 ° C. for 20 to 40 minutes, but the spores may not be killed. Furthermore, the use of chemical disinfectants is also limited from the viewpoint of safety.
[0011]
Therefore, an antibacterial agent against MRSA or food poisoning bacteria and spores thereof has been desired.
[0012]
Recently, licorice, which is a herbal medicine, has been introduced as a highly safe antibacterial substance derived from nature. However, it has not yet been put into practical use (Seikatsu Eisei 37, 15-19 (1993)).
[0013]
Spices have long been known to have antibacterial activity and have been reported to have antibacterial activity against food poisoning bacteria such as Salmonella, pathogenic Escherichia coli, Vibrio parahaemolyticus, Bacillus cereus, and Staphylococcus aureus ( Journal of the Japan Food Industry Association, 29, 112-116 (1982)). However, there are currently no known spices that are effective against MRSA or some food poisoning bacteria.
[0014]
The present inventors have studied the spices having antibacterial activity against MRSA or food poisoning bacteria and extracts thereof, and have completed the present invention.
[0015]
[Problems to be solved by the invention]
The present invention has been made to solve the above-described problems, and the object of the present invention is to have effective antibacterial activity against MRSA, without causing resistant bacteria, or against food poisoning bacteria. Another object of the present invention is to provide a highly safe antibacterial agent having effective antibacterial activity.
[0016]
Another object of the present invention is to provide an antibacterial agent against food poisoning that is highly safe and has a wide range of applications.
[0017]
[Means for Solving the Problems]
The spices of the present invention are spices having antibacterial properties against MRSA, whereby the above object is achieved.
[0018]
The extract from the spices of the present invention is an extract having antibacterial activity against MRSA, whereby the above object is achieved.
[0019]
Moreover, the antibacterial agent of the present invention is an antibacterial agent containing the above-mentioned spice or antibacterial agent having antibacterial activity against MRSA, whereby the above-mentioned object is achieved.
[0020]
Furthermore, the spice or extract of the present invention has antibacterial activity against MRSA and food poisoning bacteria, thereby achieving the above object.
[0021]
The extract from the spices of the present invention has antibacterial properties against spore-forming bacteria, thereby achieving the above object.
[0022]
The spices used in the present invention are sold as spices, and any can be used as long as they have antibacterial properties against MRSA. Suitable spices include cloves, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, or sage.
[0023]
The extract as used in the present invention is an extract from a spice, and any extract that has antibacterial activity against MRSA can be used. As the spices, clove, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, or sage having the antibacterial activity can be preferably used, but are not limited thereto. From the antibacterial activity, an extract from rosemary or sage is particularly preferable. Even if the spice has no antibacterial activity, the spice can be used if the extract has the antibacterial activity.
[0024]
The extract here refers to an extract extracted from a spice, a concentrate obtained by concentrating the extract, or an extract obtained by drying the extract or concentrate, and further purified from the extract or concentrate. Also included.
[0025]
The extract is obtained by extracting spices with water or an organic solvent. Examples of the organic solvent include hexane, acetone, dimethyl sulfoxide (hereinafter abbreviated as DMSO), alcohols such as methyl alcohol and ethyl alcohol. Add water or the above-mentioned organic solvent in an equivalent amount to 20 times the weight of the spice, warm to room temperature or a suitable temperature (for example, 25 to 50 ° C.), and leave it for several hours to one day for extraction. To do. Preferably, extraction is performed at 37 ° C. using 5 to 10 times the amount. The extract thus obtained can be used as it is or after further purification to measure antibacterial activity.
[0026]
For the purification, a known method such as extraction with a solvent, purification with an ion exchange resin or column chromatography can be used.
[0027]
Antibacterial activity of spices against MRSA was measured using hospital-derived S.aureus T581 (hereinafter SA.B strain), S.aureus T582 (hereinafter SA.C strain), S.aureus T583 (hereinafter SA.D strain). obtain. The above strain is cultured in Trypticase Soy broth (TSB) medium at 37 ° C. for 18-24 hours, and the culture solution is diluted to about 10 ⁶ cfu / ml with sterile physiological saline and used as a bacterial solution for sensitivity measurement. obtain. After smearing 0.1 ml of the obtained bacterial solution for sensitivity measurement on Mueller-Hinton agar medium (BBL) and drying the surface, 20-50 mg of powdered spice is put on it and cultured at 37 ° C. Can be measured by measuring the formation and size of the MRSA growth inhibition circle that occurs around The antibacterial activity of the extract can be measured by a method similar to the measurement of the antibacterial activity of spices. That is, the sensitivity measurement disc (8 mm, thin: Advantech) impregnated with the extract obtained by the above method was cultured on an agar medium instead of spices, and MRSA growth inhibition circle formation and It can be measured by examining its size.
[0028]
The spices or extracts of the present invention have not only antibacterial activity against MRSA but also antibacterial activity against food poisoning bacteria. Examples of spices having such activity include cloves, cinnamon and oregano. The antibacterial activity of these spices or extracts can be measured in exactly the same way as the antibacterial activity against MRSA. Further, the MIC (minimun inhibitory concentration) of the extract can be obtained by diluting each extract stepwise and measuring the minimum concentration that can form an inhibition circle.
Examples of food poisoning bacteria for which the spices or extracts of the present invention are effective include Salmonella, pathogenic Escherichia coli, Bacillus cereus, and Campylobacter.
[0029]
Bacteria that can be used to measure antimicrobial activity against food poisoning bacteria include the following strains:
(1) Staphylococcus aureus: Staphylococcus aureus (S. aureus) 209P (hereinafter referred to as SA.A strain) and hen egg-derived S. aureus OCIS 501 (hereinafter referred to as SA.E strain) as methicillin-sensitive Staphylococcus aureus (MSSA), food poisoning cases S. aureus T581 (hereinafter referred to as SA. Aureus) derived from hospitals as OCIS 41 strain, OCIS 49 strain, OCIS 62 strain, OCIS 67 strain, OCIS 91 strain, and OCIS 95 strain derived from S. aureus derived from methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). B.), S.aureus T582 (hereinafter referred to as SA.C strain), S.aureus T583 (hereinafter referred to as SA.D strain), S.aureus OCIS 100 and OCIS 104 derived from food poisoning cases, hospital-derived T655, T672, 01 , And 03,
(2) E. coli: Escherichia coli NIHJ JC2 (hereinafter referred to as EC.A strain), E. coli 41F (hemorrhagic Escherichia coli, hereinafter referred to as EC.B strain), E. coli H10407 (toxogenic Escherichia coli, hereinafter referred to as EC.C) Strain) and E. coli B / M702 (toxogenic Escherichia coli, hereinafter referred to as EC.D strain), E. coliin OCIE 1501 derived from sewage (hereinafter referred to as EC.E strain),
(3) Salmonella: Food-derived Salmonella Enteritidis 910225NIPT4 (hereinafter referred to as Sal. A strain) and 922701 PT4 (hereinafter referred to as Sal. B strain), food poisoning-derived S. Enteritidis 909342PT34 (hereinafter referred to as Sal. C strain), S. Typhimurium 8701NM ( Hereinafter Sal. D strain) and 8842MS (hereinafter referred to as Sal. E strain),
(4) Spore bacteria (Bacillus cereus): Bacillus cereus strains isolated from food poisoning and food poisoning cases include Bacillus cereus OCI 9170135 (hereinafter BC.A strain), OCI 9170137 (hereinafter BC.B strain), OCI 902303 (hereinafter referred to as BC.C), OCI 902309 (hereinafter referred to as BC.D), and OCI 107 (hereinafter referred to as BC.E),
(5) Campylobacter: Campylobacter jejuni CIP 702 (hereinafter referred to as CJ strain) and C. coli CIF 7080 (hereinafter referred to as CC strain),
(6) Vibrio parahaemolyticus: Vibrio parahaemolyticus OCI885227 K64 (hereinafter referred to as VP strain) isolated from a food poisoning patient,
(7) Yersinia: human-derived Yersinia enterocolitica OCI 22 (hereinafter referred to as YE strain), and
(8) Aeromonas: human-derived Aeromonas hydrophila OCI 37 (hereinafter referred to as AH strain).
[0030]
The above strains are stored at the Osaka City Environmental Science Laboratory.
[0031]
The above strain is cultured in an appropriate medium such as Trypticase Soy broth (TSB) medium at 37 ° C. for 18-24 hours, and the culture solution is diluted to about 10 ⁶ cfu / ml with sterilized physiological saline to measure sensitivity. It can be used as a bacterial solution. When Campylobacter is used, it is cultured for 2 days at 37 ° C. under microaerobic condition on blood agar medium (Brucella agar (BBL) supplemented with 7% equine defibrinated blood) and about 10 ⁸ cfu in sterile physiological saline. Those suspended in / ml can be used as well.
[0032]
Using these strains, it can be measured by the same method as MRSA described above that the spices or extracts of the present invention have antibacterial activity against food poisoning bacteria.
[0033]
Examples of food poisoning bacteria that form spores in which the spices or extracts of the present invention are effective include Bacillus cereus, Clostridium perfringens or Clostridium bacteria.
[0034]
Examples of Bacillus cereus bacteria that can be used for the measurement of antibacterial activity against food poisoning bacteria include Bacillus cereus strains, for example, BC. A strain, BC. B strain, BC. C strain, BC. D strain, BC. E strain is mentioned.
[0035]
The antibacterial measurement can be performed, for example, as follows.
[0036]
Dilute the spice ethanol extract sequentially with sterilized water so that the ethanol concentration is 80,40,16,8,4,2 and 1V / V%, respectively, take 2-2.5ml of each solution into a sterile test tube, Add 1/100 volume of the solution for susceptibility measurement of each solution, and stir immediately. After addition, 10 seconds, 20 seconds, 30 seconds, 1 minute, and 2 minutes. After 10 minutes, 15 minutes, 50 μl is taken, added to 3-4 ml of TSB medium, and cultured at 37 ° C. for 1-2 days. In order to confirm the presence or absence of viable bacteria after the culture, one platinum loop is applied to an agar medium to form colonies. In the present application, a spice or extract is said to have antibacterial properties when it comes into contact with bacteria and spores to kill them.
[0037]
The spices or extracts that have been confirmed to have antibacterial activity by the above method can be used as antibacterial agents against MRSA or food poisoning. Antibacterial forms include parenteral dosage forms such as intravenous injection, subcutaneous injection, and intramuscular injection, oral dosage forms such as tablets, capsules, granules, fine granules, powders, suppositories, liquids for external use, and ointments. Such as, but not limited to, topical administration forms. Additives used for formulation include excipients, disintegrants, dispersants, plasticizers, fillers and the like. Examples of the dosage form include emulsions, wettable powders, aqueous solutions, tablets, capsules, dispensers, pills and the like.
[0038]
The spices or extracts having antibacterial activity against MRSA, food poisoning bacteria, or spore-forming bacteria of the present invention are highly safe, so that they can be used not only as pharmaceuticals but also as disinfectants and disinfectants for the purpose of infection prevention and prevention. It is also possible to use fibers having fungicidal effects, washing indoors, washing dishes, etc., or adding directly to foods.
[0039]
Hereinafter, the spices having antibacterial activity against MRSA of the present invention and antibacterial activity against food poisoning bacteria and extracts from the spices will be described in Examples.
[0040]
【Example】
(Example 1) Primary screening First, 28 kinds of spices were used to perform primary screening for antimicrobial activity against food poisoning bacteria containing MRSA.
[0041]
1) Used spices Red pepper, ginger, mustard, onion, garlic, cloves, allspice, cinnamon, nutmeg, mace, cumin, metch, coriander, cardamom, dill, fennel, anise, star anise, turmeric, oregano, sage, celery , Thyme, marjoram, basil, laurel, rosemary, peppermint.
[0042]
2) Strain used (1) Staphylococcus aureus: As methicillin sensitive Staphylococcus aureus (MSSA), SA. A strain, SA. E, S.aureus OCIS 41, OCIS 49, OCIS 62, OCIS 67, OCIS 91, and OCIS 95,
As methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA), SA. B strain, SA. C strain, SA. D strain, OCIS 100, OCIS 104, T655, T672, 01, 03 of S. aureus,
(2) E. coli: EC. A strain, EC. B strain, EC. C strain, EC. D strain, and EC. E stock,
(3) Salmonella: Sal. A strain, Sal. B strain, Sal. C strain, Sal. Strain D, and Sal. E stock,
(4) Spore bacteria (Bacillus cereus): BC. A strain, BC. B strain, BC. C strain, BC. D strain, BC. E stock and
(5) Campylobacter: CJ strain and CC strain.
[0043]
3) Preparation of culture method and inoculum solution The above strain was inoculated into Trypticase Soy broth (TSB) and cultured at 37 ° C for one day. The culture solution was diluted to 10 ⁶ cfu / ml with sterilized physiological saline to obtain a bacterial solution for inoculation.
[0044]
In the case of Campylobacter, a suspension obtained by suspending bacteria cultured at 37 ° C. for 2 days in a blood agar medium in sterile physiological saline at 10 ⁸ cfu / ml was similarly used.
[0045]
4) Primary screening of antibacterial activity of spices
After smearing 0.1 ml of the bacterial solution for inoculation of each bacterium on the agar in a Petri dish with a diameter of 90 ml containing 20 ml of Mueller-Hinton agar medium (BBL) and drying the surface, each spice is put on 20-50 mg, Cultured at 37 ° C for one day. After culturing, those with a circle of inhibition around the spice were considered positive for primary screening. The results are shown in Table 1.
[0046]
[Table 1]

[0047]
The spices listed in Table 1 had antibacterial activity against all the strains used in the left column.
[0048]
(Example 2) Preparation of spice extract and measurement of antibacterial activity (secondary screening)
Twenty-eight kinds of spices were added to hexane, acetone, DMSO, and sterilized water so that each spice was 10 w / v% and immersed for 1 day, and each supernatant was used as an extract. However, immersion in sterilized water was treated at 37 ° C. for 4 to 5 hours, and then filtered through a membrane filter (Advantech) to obtain an extract. In the same manner as in the primary screening described above, 20 μl of each spice extract solution soaked in a sensitivity measuring disc (8 mm, thin: Advantech) is placed on each agar, cultured, and the inhibition circle formed. Examined. The results are shown in Table 2.
[0049]
[Table 2]

[0050]
For Escherichia coli, Salmonella, and Campylobacter, the spice extract did not detect antibacterial activity in the secondary screening, but the activity is shown in Table 3 using the concentrate described below. Therefore, it seems that it originates in the density | concentration of the extract being low.
[0051]
The solvent extracts of spices hexane, acetone, DMSO and water listed in Table 2 all have antibacterial activity against Staphylococcus aureus (MSSA and MRSA) and all strains of Bacillus cereus used above. It was.
[0052]
(Example 3) Measurement of MIC (minimum inhibitory concentration) of spice extract by disc method Spice extract concentrate that may have antibacterial activity by primary screening and secondary screening MIC measurement was performed on a sample obtained by extracting and removing hexane under vacuum. Each extract concentrate was added to DMSO to prepare a DMSO 10% solution. Using this as a stock solution, a 2-fold diluted solution was sequentially prepared with DMSO. Each diluted solution was absorbed into the above-mentioned disk, and then placed on the agar smeared with the strain in the same manner as in the primary screening, and the formation of inhibition circles around the disk after the culture was examined. For each bacterium, the maximum dilution factor, that is, the minimum concentration in the dilution series in which the inhibition circle was observed was defined as MIC by the disk method. Table 3 shows the antibacterial activity against food poisoning bacteria and Table 4 shows the antibacterial activity against Staphylococcus aureus (MRSA and MSSA).
[0053]
[Table 3]

[0054]
[Table 4]

[0055]
Example 4
Use allspice, cinnamon, clove, nutmeg, marjoram, oregano, rosemary, and sage as spices, add 10 times the amount of ethanol to each weight, stir and extract at room temperature for 16 hours, and filter under reduced pressure with Nutsche did. Dilute the spicy ethanol extract of the filtrate with sterilized water so that the ethanol concentration becomes 80 V / V%, take 2 ml of each solution in a sterilized test tube, and add 20 μl of the bacterial solution for sensitivity measurement (10 ⁸ cells / ml), immediately stirred, 10 seconds, 20 seconds, 30 seconds, 1 minute, and 2 minutes after addition, and in the case of Bacillus cereus, after 5 minutes, 10 minutes, and 15 minutes, 50 μl thereof was added to 3-4 ml of TSB medium and cultured at 37 ° C. for 1-2 days. After cultivation, 1 platinum loop was applied to an agar medium to form colonies, and antibacterial activity was measured. Table 5 shows the results.
[0056]
The susceptibility measurement bacterial solution was TSB medium, which was cultured at 37 ° C. for 4 to 5 hours, and diluted with TSB medium to about 10 ⁸ cfu / ml.
[0057]
[Table 5]

[0058]
As shown in Table 5, the tested bacteria died within 10 seconds even at 80% ethanol concentration, except for Bacillus cereus. Although Bacillus cereus is also resistant to alcohol, clove and rosemary ethanol extracts killed Bacillus cereus within 10 seconds and 120 seconds, respectively.
[0059]
Although not shown in the table, it has been confirmed that the ethanol extract of each spice has antibacterial activity.
[0060]
Further studies were made on Bacillus cereus. The results are shown in Table 6.
[0061]
[Table 6]

[0062]
As shown in Table 6, each extract had a difference in antibacterial activity against Bacillus cereus. However, rosemary ethanol extract had antibacterial activity against all tested strains. This table shows the results when treated with ethanol extract diluted to 80% for 10 seconds (but only for BC.A strain for 120 seconds), and rosemary is effective against spore bacteria. It was recognized that
[0063]
Furthermore, it was confirmed that the rosemary ethanol extract exhibited antibacterial activity against several types of Bacillus cereus.
[0064]
As a result of the above, allspice, cinnamon, cloves, nutmeg, marjoram, oregano, rosemary and sage exhibit antibacterial activity against MRSA. In particular, among these spices, rosemary and sage extract concentrates exhibit high antimicrobial activity with high MRSA activity. Clove, cinnamon, and oregano also have antibacterial activity against food poisoning bacteria, and therefore can be effectively used for prevention of food poisoning.
[0065]
Moreover, it turns out that a spice or its extract is effective also for spore bacteria like Bacillus cereus, and can be effectively used for prevention of food poisoning.
[0066]
【The invention's effect】
The spices or extracts having antibacterial activity also against MRSA, food poisoning bacteria or spore-forming bacteria of the present invention have high safety, so that they are disinfected and sterilized for the purpose of prevention and prevention of infection in addition to their use as pharmaceuticals. It can be used for agents, sanitizing fibers, indoor cleaning, tableware cleaning, etc., or can be added directly to food.

Claims

An antibacterial agent for disinfecting methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), comprising a spice selected from the group consisting of clove, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, and sage; Antibacterial agent.

An antibacterial agent for disinfecting methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), comprising an extract of a spice selected from the group consisting of clove, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, and sage Contains antibacterial agent.

The antibacterial agent according to claim 2, wherein the extract is selected from the group consisting of a hexane extract, a DMSO extract, an acetone extract and a sterilized water extract.

The antibacterial agent according to claim 2, wherein the extract is a hexane extract of clove, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, or sage.

The antibacterial agent according to claim 2, wherein the extract is an ethanol extract of clove, allspice, oregano, cinnamon, marjoram, rosemary, nutmeg, or sage.