JP3792651B2 - 二重区画包装においてレチノイド、レチノイドブースター、およびフィトエストロゲンを含んでいるスキンケア製品 - Google Patents
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Description
約0.001%から約10%のレチノイドを含む第一組成物、
0.0001%から約50%の少なくとも1つのレチノイドブースターと約0.001%から約10%のフィトエストロゲンとを含む第二組成物、
第一組成物を保存するための第一区画、および
第二組成物を保存するための第二区画であって、第一区画と第二区画とが互いに接合されている区画。
(a)2つのブースターであって、どちらもB2、B3、B4から成る同じ群から選ばれるもの、
(b)下記のものから成る群から選ばれるブースターの二成分の組合わせ:
B1/B2、B1/B3、B1/B4、B1/B5、B2/B3、B2/B4、B2/B5、B3/B4、B3/B5、B4/B5、
(c)下記のものから成る群から選ばれるブースターの三成分の組合わせ:
B1/B2/B3、B1/B2/B4、B1/B2/B5、B1/B3/B4、B1/B3/B5、B1/B4/B5、B2/B3/B4、B2/B3/B5、B2/B4/B5、B3/B4/B5、
(d)下記のものから成る群から選ばれるブースターの四成分の組合わせ:
B1/B2/B3/B4、B1/B2/B3/B5、B1/B2/B4/B5、B1/B3/B4/B5、B2/B3/B4/B5、および
(e)ブースターの5つのグループの組合わせ:B1/B2/B3/B4/B5。
オール−トランス−レチノール、オール−トランス−レチノイン酸、パルミトイル−CoA、ジラウロイルホスファチジルコリン、NAD、およびNADPHは、シグマケミカル社(Sigma Chemical Company)から購入された。これらのミクロソームアッセイのためのレチノイドの保存溶液は、HPLCグレードアセトニトリル中で作製された。HPLC分析用のすべてのレチノイド標準保存溶液は、エタノール中で調製され、−70℃においてN2雰囲気下に保存され、保存から取り出された時は、黄色灯下で氷上に維持された。その他の薬品および阻害剤は、化粧品材料供給業者または化学会社、例えばアルドリッチ社(Aldrich)またはインターナショナル・フレーバーズ・アンド・フレグランシーズ(International Flavors and Fragrances)から商品として入手可能であった。
2.1 RPEミクロソームの単離(J.C.Saari & D.L.Bredberg、「レチナール色素上皮におけるCoAおよび非CoA依存性レチナールエステル化(CoA and Non−CoA Dependent Retinol Esterification in Retinal Pigment Epithelium)」、J.Bill.Chem.263、8084〜8090(1988)から修正された)。
下記手順は、J.C.Saari & D.L.Bredberg、「ウシレチナール色素上皮ミクロソームのARATおよびLRAT活性(ARAT & LRAT Activities of Bovine Retinal Pigment Epithelial Microsomes)」、Methods Enzymol.190、156−163(1990)に記載されているものの修正方法である。下記緩衝液を調製し、4℃で保存した:0.1M PO4/5mM ジチオトレイトール、pH7.0(PO4/DTT)。アッセイ当日に、緩衝液1mLあたり2mgのBSAを添加して、PO4/DTT/BSA使用緩衝液を作った。1mMレチノール基質を、アセトニトリル中で調製し、窒素ガス下−20℃で黄色ビンに保存した。使用緩衝液(アリコートとして保存されているもの)中の4mMパルミトイル−CoAの溶液およびエタノール中の4mMジラウロイルホスファチジルコリンの溶液を調製し、−20℃で保存した。阻害剤は、H2O、エタノール、アセトニトリル、またはDMSO中の10mM保存溶液として調製した。反応停止溶液は、50μg/mLブチル化ヒドロキシトルエン(BHT)を含む純粋エタノールを用いて調製し、50μg/mL BHTを含むヘキサン溶液を、抽出のために用いた。
下記の保存溶液を調製した。
50mM KH2PO4、pH7.4緩衝液、濾過滅菌されたもの、
DMSO中10mMオールトランスレチノール(シグマR7632)、
滅菌水中200mMニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェート、ナトリウム塩(NADP)(シグマN0505)、
適切な溶媒中40mMテスト化合物(水、緩衝液、エタノール、クロロホルム、またはDMSO)、
50mM KH2PO4、pH7.4緩衝液(4μg/μl)中ラット肝臓ミクロソームの1:10希釈液。
400μLの最終容積を生じるための緩衝液、
25μl希釈ミクロソーム(最終=100μg)−対照のために沸騰ミクロソームを用い、テストサンプルのために通常のミクロソームを用いる、
200mM NADP 4μl(最終=2mM)、
40mMテスト化合物1μl(最終=100μM)、
10mMレチノール8μl(最終=200μM)。
すべての保存溶液は、下記のような置換えを行なって前記のように調製した。
DMSO中10mMオールトランスレチナルデヒド(シグマR2500)(レチノールの代わり)、
200mM、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドホスフェート、還元形態、四ナトリウム塩(NADPH)、滅菌液中、(シグマN7505)(NADPの代わり)。
400μLの最終容積を生じるための緩衝液、
25μL希釈ミクロソーム(最終=100μg)−対照のために沸騰ミクロソームを用い、テストサンプルのために通常のミクロソームを用いる、
200mM NADPH 4μl(最終=2mM)、
40mMテスト化合物1μl(最終=100μM)、
10mMレチナルデヒド3μl(最終=75μM)。
2.6.1.CRABPIIの合成
a.発現系
遺伝子CRABPIIを、pET29a−c(+)プラスミド(ノバゲン社(Novagen))中にクローンした。このクローン遺伝子は、強力なバクテリオファージT7転写および翻訳シグナルの制御下にあった。T7ポリメラーゼ源は、ホスト細胞E.coli BLR(DE3)pLysS(ノバゲン社)によって供給された。この後者のものは、IPTGの存在によって誘発される、lacUV5制御下にあるT7ポリメラーゼの染色体コピーを有する。このプラスミドは、製造業者のプロトコル(ノバゲン社)にしたがった形質転換によって、E.Coli BLR(DE3)pLysS細胞に転移された。
これらの形質転換細胞の一晩培養物を、50μg/mLカナマイシンおよび25μg/mLクロラムフェニコールを含む2xYT中に1:100で希釈した。これらの細胞は、600nmにおけるODが0.6から0.8に達するまで、37℃において振とうして成長した。ついでIPTGを、1mMの最終濃度まで添加し、この培養物をさらに2時間インキュベートした。これらの細胞は、室温において10分間5000gで遠心分離によって採集した。このペレットを−20℃で保存した。
精製は、Norris and Li、1997に記載されている方法にしたがって実施した。
この凍結ペレットを室温で解凍し、新たに調製された溶解緩衝液(50mM トリス−HCl、pH8、10%(w/v)スクロース、1mM EDTA、0.05%(w/v)ナトリウムアジド、0.5mM DTT、10mM MnCl2、2.5mMフッ化フェニルメチルスルホニル、2.5mMベンズアミジン、6μg/mL DNase)1から2ペレット容積中に再懸濁した。溶解物を室温で30分間インキュベートした。それ以上の溶解は、音波処理によって実施した(10,000psiにおける6回の30秒バーストと、氷上での5回の30秒遅延を交互に)。この溶解物の不溶フラクションを、4℃で1時間15000rpmにおける遠心分離によって除去し、上澄み液を−20℃で保存する。
工程aからの上澄み液を、室温においてセファクリルS−300(ファルマシア社(Pharmacia))の2.5×100cmカラムに添加した。溶離緩衝液は、20mMトリス−HCl、pH8、0.5mM DTT、0.05%アジ化ナトリウムであった(緩衝液A)。流量は2mL/分であった。回収された2−mLフラクションを、280nmにおける紫外線吸光度についてチェックした。ピークを示すフラクションを、SDS−PAGEによって、CRABPIIの存在について調べた。
CRABPIIを含む2mLのゲル濾過フラクションを、第四アミン陰イオン交換カラムFPLC(高速タンパク質液体クロマトグラフィー)型モノQ(ファルマシア社)に添加した。CRABPIIは、100%緩衝液Aから30%緩衝液Bまでの勾配緩衝液(100%緩衝液B=緩衝液A+250mM NaCl)を用いて、室温で20分間にわたって溶出した。1mLフラクションを毎分回収した。再度、CRABPIIの存在をSDS−PAGEによってチェックした。CRABPIIを4℃で保存し、その後ガラスビンプラットホームアタッチメント(エドワーズ・ハイ・バキュアム・インターナショナル社(Edwards High Vacuum International))を備えたマイクロモデュリョ(Micromodulyo)1.5Kを用いて凍結乾燥した。これらの乾燥サンプルを、結合アッセイに用いるまで室温で保存した。
CRABPIIの発現および精製は、7%から15%ポリアクリルアミドゲル(バイオラッド社)上の変性SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法(SDS−PAGE)を用いて確認した。10μlのサンプルと、2×負荷緩衝液(100mMトリス−HCl、pH6.8、4%SDS、0.2%BPB、20%グリセロール、1mM DTT)10μlとを混合し、加熱(80℃で2分)によって変性した。これらのサンプルを、1×トリス−グリシン緩衝液(バイオラッド社)中に浸漬されたゲルに添加し、定電流(25mA)を室温で1時間加えた。クマシーブルー染色後、タンパク質を、ベンチマーク着色タンパク質ラダー(ギブコ社(GibcoBRL))を用いて確認された分子量にしたがって同定した。
220pmolのCRABPIIを、総容積70μL中に15pmolの放射性オールトランスレチノイン酸(NEN)を有する20mMトリス−HCl緩衝液pH7.4中でインキュベートした。競合アッセイのために、もう1つの過剰リガンド(6670:1、670:1、または70:1)を、このミックスに添加した。反応は、暗所で室温において1時間行なわれた。結合オールトランスレチノイン酸から未結合オールトランスレチノイン酸を分離するために、6kDカットオフミニクロマトグラフィーカラム(バイオラッド社)を用いた。保存緩衝液を、マイクロプレックス(Microplex)マニフォールドを用いて、製造業者の指示にしたがって(ファルマシア社)処分した。これらのサンプルをカラムに添加し、分離は30分間にわたって重力によって行なわれた。CRABPIIに結合したレチノイン酸(「RA」)は、濾過物中に現われたが、一方、遊離RAはカラムに残留した。この濾過物の放射能を、シンチレーションカウンターによって測定した。
下記手順は、R.Martini & M.Murray、「ラット肝臓ミクロソームレチノイン酸4−ヒドロキシル化へのp450 3A酵素の参加(Participation of P450 3A Enzymes in Rat Hepatic Microsomal Retinoic Acid 4−Hydroxylation)」、Archives Biochem.Biophys.303、57−66(1993)に記載されている方法の修正方法である。下記のアッセイ緩衝液を調製し、4℃で保存する:0.1M P04/0.1mM EDTA/5mM MgCl2、pH7.4。アッセイ当日、緩衝液中60mM NADPH溶液を調製する。阻害剤保存溶液、酸性化エタノール/BHT停止溶液、およびヘキサン/BHTを上記のように調製する。1mMレチノイン酸使用溶液は、15mM保存溶液(DMSO中)をエタノールで希釈することによって調製した。
37℃で5分間インキュベートし、ついで5μLの1mMレチノイン酸使用溶液を添加する。37℃で60分間インキュベーションを続行するが、ガラスビンに蓋をしない。酸化プロセスには、NADPHに加えて分子O2が必要だからである。酸性化エタノール/BHTで反応を停止し、前記のようにヘキサン/BHTで抽出する。下記のようにHPLCシグナルの統合によって、急速に溶離する極性レチノイン酸代謝物(4−オキソレチノイン酸であると推測される)を定量化する。
HPLCによるレチノイド定量化のためのサンプルは、100μLのメタノールを用いて残渣を各ガラスビン中に溶解して調製した。この溶液を、1mLのシェルバイアルの中の150μLのガラスの円錐管に移し替え、きっちりと蓋をし、ウオーターズ(Waters)715オートサンプラー(Autosampler)の中に入れた。60μLのアリコートを直ちに注入し、レチノイド含量について分析した。
表皮中の末端分化プロセスの間、角化膜(CE)として知られているタンパク質の15nm厚さの層が、細胞周辺部の内側表面上に形成される。このCEは、多くの別個のタンパク質から構成されており、これらのタンパク質は、表皮中に発現された少なくとも2つの異なるトランスグルタミナーゼ(TGase)の作用によって触媒されたNε−(Y−グルタミル)リシンイソジペプチド結合の形成によって互いに架橋されている。TGase Iは、この表皮の分化層、特に顆粒層中に豊富に発現されるが、未分化基底表皮中には存在しない。したがってTGaseIは、さらに分化された状態を示す高いTGase Iレベルを有する表皮ケラチン生成細胞分化の有用なマーカーである。TGase I抗体を用いるELISAベースのTGase Iアッセイを用いて、下記実施例における培養ケラチン生成細胞の分化の状態を評価した。
(i)%(ブースター+レチノール阻害/対照阻害)−%(ROH阻害/対照阻害)、これは、レチノール単独よりも優れた、ブースター+レチノール誘発TGase阻害の追加の効果を測定する。あるいは、
(ii)多ブースター濃度の阻害効果が調べられた時のIC50値として。これは、10−7Mの一定のレチノール濃度と組合わせた場合にTGaseを50%阻害するブースターの濃度を提供する。
本発明の一部として、驚くべきことに、フィトエストロゲンはレチノイドの皮膚効果を相乗作用的に改良することが発見された。本質的にはフィトエストロゲンがレチノイドへの皮膚の感受性を高める。
レチノイド類を含む組成物は一般に不安定であり、化学分解を受けることがある。さらには、ブースターはレチノイド効果を向上させるのに有利であるが、驚くべきことに、同時にレチノイドの化学的不安定性にも寄与することが発見された。ブースター誘発のレチノール不安定化は、両方の成分が単一配合物に含まれている時に、高められたレチノイド組成物の全体の有効性を減少させる。したがってレチノイド崩壊に対して保護する一方で、なおもレチノイドブースターの有利な効果を与えるために、本発明は、第一区画にレチノイドを含んでいる第一組成物、および第二区画に少なくとも1つのレチノイドブースターを含んでいる第二組成物が入っている二重区画包装を提供する。第一組成物は皮膚に第一効果を与えるが、一方、第二組成物は、第一効果の作用を高めるかまたは向上させる働きをする。
本発明による製品はまた、この組成物が皮膚に付けられる時にその分布を促進するように、第一組成物と第二組成物とのどちらかまたはその両方において、活性成分用の希釈剤、分散剤、またはキャリヤーとして作用するための、化粧品的に許容しうるビヒクルも含んでいる。
本発明の第一組成物および第二組成物のうちのどちらか1つまたは両方において、油中水エマルジョンあるいは水中油エマルジョンを供給するための乳化剤とともに、主として、用いられる乳化剤の平均親水性親油性バランス(HLB)に応じて、油または油性物質が存在してもよい。
本発明の局所皮膚処理組成物は、ローション、流動クリーム、クリーム、またはジェルとして配合することができる。
レチノール(トウイーン80中50%)を、約50%水性エタノール中に溶解し、標準96ウエル分光光度計を用いて96ウエルプレート中200μl容積で測定された時に約0.6の360nmにおけるODを生じる溶液を用意した。
25歳から30歳の女性志願者の太陽光線から保護された、腕の内側から得られたヒトの成人の繊維芽細胞を用いた。細胞を、10%FBSを含む1:1DMEM/Hams F12培地中で成長させ、標準大気酸素圧下5%CO2雰囲気中で37℃に維持した。第三継代の成人繊維芽細胞を、12ウエルプレートにおいて2500細胞/ml/ウエルの接種密度で10%FBSを含むDMEM培地中に成長させた。80%密集成長にあるこれらの細胞を、無血清かつ無フェノールレッド(PRF)DMEM培地中で2回濯ぎ洗いした。4時間フィト−化合物での前処理を実施し、ついでレチノイドを投与し、48時間インキュベートした。インキュベーション後、これらのウエルを1×PBSで2回洗浄し、この細胞単層を、100μl細胞溶解緩衝液(1×PBS、1%トリトン(Triton)X、0.5%ナトリウムデオキシコレート、プロテアーゼ阻害剤(イソプロパノール中10mg/ml PMSF、10μl/ml)を含む0.1%SDSを含む)中に採集した。この懸濁液を、14000rpmで10分間回転させ、上澄み液を回収し、この上澄み液のアリコートをタンパク質定量化に用いた。タンパク質濃度を、ピアス(Pierce)タンパク質キットを用いて測定した。100μl上澄み液(細胞溶解物)の残りは、このサンプルを5分間沸騰させて40μlサンプル緩衝液(ノベックス(NOVEX))と0.5%ベータメルカプトエタノール(BME)との混合物中に変性させた。ついで等量のタンパク質を、SDS−PAGEによるタンパク質分析、およびCRABP−2タンパク質発現に対するウエスタン免疫ブロッティングのために、16%トリス−グリシンゲル上に載せた。
これらの細胞中で、レチノールおよびレチノイン酸は、特異的細胞結合タンパク質に結合され、これらの主要タンパク質のうちの2つは、CRABP−1およびCRABP−2である(Roosら、Pharmacological Reviews:50、315−333、1998)。これらのタンパク質は、レチノイド代謝において、保存またはシャトルタンパク質のどちらとしても作用することによって、レチノイドの細胞内濃度を調節するように作用する。高レベルまたは低レベルのレチノイドが、細胞死を含む細胞損傷を引き起こし、したがってレチノイドおよびその結合タンパク質の一定レベルの調節は、細胞生存に対して非常に重大なものである。このタンパク質のこれらのレベルは、これらの細胞中のレチノイン酸の量によって調節される。レチノイドの比較的高い細胞レベルは、CRABP−2の発現を増加させる。したがって細胞中のこのタンパク質の量は、これらの細胞のレチノイド活性の尺度である。皮膚細胞は、表皮と真皮との両方に、高レベルのCRABP−2を含む。試験管内繊維芽細胞におけるレチノイド投与へのCRABP−2応答は、ヒトの皮膚応答を予測するレチノイド生物活性の再現可能な尺度として用いられる(Elderら、J.Invest.Dermatol.,106:517−521、1996)。CRABP−2における増加はまた、増加した表皮分化および真皮レチノイド作用とも関連がある。したがってこれらの研究において、本発明者らは、表皮分化の増加(皮膚のコンディショニングおよび乾燥肌効果)、および真皮コラーゲンおよび細胞外マトリックス合成(老化防止、小じわ防止効果)を生じるレチノイド活性の尺度として、繊維芽細胞のCRABP−2発現を用いた。
Claims (10)
- 0.001%から10%のレチノイドを含む第一組成物、
0.0001%から50%の少なくとも1つのレチノイドブースターであって、バニリン、アラキジン酸、リノール酸、ミリスチン酸、アムサクリン、カルベノキソロン、グリチルレチン酸、ホスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、ホスファチジルコリンおよびそれらの混合物からなる群から選択されるものと、0.001%から10%の少なくとも1つのフィトエストロゲンとを含む第二組成物、
第一組成物を保存するための第一区画、並びに
第二組成物を保存するための第二区画であって、第一区画と第二区画とが互いに接合されている区画を含む、安定スキンケア製品。 - 第二組成物が、少なくとも2つのレチノイドブースターを、0.0001%から50%の量において有する、請求項1に記載の安定スキンケア製品。
- レチノイドが第一効果を与え、ブースターおよびフィトエストロゲンが第一効果を高める、請求項1または2に記載の安定スキンケア製品。
- ゲニステイン、ダイゼイン、グリシチン、ビオカニンA、フォルモノネチン(formononetin)、イクオール(equol)およびこれらの混合物から選択される、少なくとも1つのフィトエストロゲンを含む、請求項1ないし3のいずれか1項に記載の安定スキンケア製品。
- レチノイドブースターが、グリチルレチン酸、ホスファチジルコリンおよびそれらの混合物からなる群から選択される請求項1に記載の安定スキンケア製品。
- レチノイドブースターが、グリチルレチン酸およびホスファチジルコリンである請求項2に記載の安定スキンケア製品。
- 皮膚の落屑を改良するための薬剤の調製における、請求項1ないし6のいずれか1項に記載の安定スキンケア製品の第一組成物および第二組成物の使用。
- 表皮分化を改良するための薬剤の調製における、請求項1ないし6のいずれか1項に記載の安定スキンケア製品の第一組成物および第二組成物の使用。
- 乾燥肌、にきび、光損傷肌、小じわの外見、加齢斑、および/または老化肌の処置、角質層の柔軟性の増加、肌の色を明るくすること、および/または皮脂分泌の制御のための薬剤の調製における、請求項1ないし6のいずれか1項に記載の安定スキンケア製品の第一組成物および第二組成物の使用。
- 乾燥肌、にきび、光損傷肌、小じわの外見、加齢斑、および/または老化肌の処置、角質層の柔軟性の増加、肌の色を明るくすること、皮脂分泌の制御、皮膚の落屑の改良、および/または表皮分化の改良のための、請求項1ないし6のいずれか1項に記載の安定スキンケア製品。
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