JP3732868B2 - 新規なアスコルビン酸酸化酵素、該酵素をコードする遺伝子及び該酵素の製造法並びにその用途 - Google Patents
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する新しい酵素、より詳細には、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素との反応によってＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生成する反応を触媒し、尚かつ極めて優れた安定性を有する新規なＬ−アスコルビン酸酸化酵素（以下、ＡＳＯＤという。）を提供する。更に本発明は、微生物を用いた当該ＡＳＯＤの製造法、該ＡＳＯＤをコードする遺伝子、当該遺伝子を含んでなる形質転換体、これを用いたＡＳＯＤの製造法並びに該ＡＳＯＤを含有してなる検査用試薬組成物、食品用添加物、食品或いは臨床検査分野における試薬組成物に関する。
【０００２】
【従来の技術】
Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する酵素としては、アスコルビン酸に作用し、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と水を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素（以下、ＡＳＯという。）やラッカーゼが知られており、国際生化学連合（I.U.B）の分類によれば、それぞれEC 1.10.3.3及びEC 1.10.3.2に分類される。
【０００３】
上記のＡＳＯは、従来より各種植物に分布することが知られており、カボチャ〔M. H. Lee and C. R. Dawson（1973）J. Biol. Chem., 248, 6596頁〕及びキュウリ〔T. Nakamura, N. Makino and Y. Ogura（1968）J. Biochem., 64, 189頁〕などから単離されている。
【０００４】
一方、微生物由来のＡＳＯとしてミロセシウム ベルカリア（Myrothecium verrucaria）の菌糸〔G. A. White and R. M. Krupka（1965）Arch. Biochim. Biphys., 110, 448頁 〕や胞子〔舟木ら（1987）日本栄養食糧学会誌, 40, 47頁〕、アエロバクター アエロゲネス（Aerobacter aerogenes）〔W. A. Volk and J. L. Larssen（1963）Biochim. Biophys. Acta., 67, 576頁〕或いはアクレモニウム エスピー（Acremonium sp.）HI-25〔S. Murao et al.（1992）Biosci. Biotechnol. Biochem., 56, 847頁〕由来の報告がある。
【０００５】
これらのＡＳＯは食品分野や臨床検査分野に広く使用されている。食品分野としては、例えばアスコルビン酸と併用するなどして食品中の脱酸素等や水産練り製品などの品質改良に使用される。
【０００６】
また臨床検査分野としては、例えばパーオキシダーゼを利用した過酸化水素と色原体との共役呈色反応を利用する分野において、その呈色反応を強力に妨害するアスコルビン酸の影響回避のために用いられる。通常の血清アスコルビン酸の濃度は１mg/dl以下で有り余り問題とはならないが、例えば尿中アスコルビン酸濃度は高い値となる。また、点滴補液などで大量のアスコルビン酸を投与するときなどは血中濃度も上昇し、共存するアスコルビン酸の影響は非常に大きい。
【０００７】
アスコルビン酸の影響を除去するためには、▲１▼アルカリ処理、▲２▼銅イオンや鉄イオンによる処理、▲３▼過ヨウ素酸による処理、▲４▼ＡＳＯによる処理が行われるが、通常は▲４▼のＡＳＯを臨床検査用試薬に共存させることによって解決している。
【０００８】
更に、上記記載のＡＳＯ以外で、アスコルビン酸に作用する酵素として、Physarum polycephalum（モジホコリカビ）から得られ、アスコルビン酸に作用して過酸化水素を生成する作用を有する酵素も知られている〔Plant physiology, 30, 58頁(1955)〕。しかしながら、本酵素については詳細な性質については検討されていない。
【０００９】
また、最近になって、トリコデルマ（Trichoderma）属又はモルティエレラ（Mortierella）属由来で上記と同様の性質、即ちアスコルビン酸に作用して過酸化水素を生成する作用を有するアスコルビン酸酸化酵素も報告されている（特開平6-209770）。
【００１０】
これらのアスコルビン酸に作用する酵素のうちで、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と水を生じる反応を触媒する上記の植物由来のＡＳＯ遺伝子はクローニングされている〔J. Ohkawa et. al.,Proc. Natl. Acid. Sci. USA, 86, 1239(1989)〕。
【００１１】
しかし微生物由来のＡＳＯあるいはＬ−アスコルビン酸に作用し、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生じる反応を触媒するＡＳＯＤの遺伝子に関する報告はなされていない。
【００１２】
【発明が解決しようとする課題】
最近、臨床検査用測定試薬の多くが、従来の凍結乾燥品から液状品へとかわりつつある。液状品の品質補償期間は、10℃で１年間と言われているが、液状の測定試薬に配合される各種酵素の安定性の良否が、品質決定の第一要因であり、上記した植物及び微生物由来のＡＳＯは、この液状測定試薬への適用という点では、安定性に問題があった。
【００１３】
本発明の目的は、安定性に優れた新規なアスコルビン酸酸化酵素を提供することにある。また、当該ＡＳＯＤの製造法及びそれを含有してなる臨床検査組成物、食品添加物、食品或いは臨床分野における試薬組成物を提供するものである。また、本発明のＡＳＯＤは、植物及び微生物由来のＡＳＯに比べ極めて優れた保存安定性を有していることが特徴であり、液状測定試薬への配合に非常に有効である。
【００１４】
また、モジホコリカビ由来やトリコデルマ属又はモルティエレラ属由来の、アスコルビン酸に作用してＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素は、その溶液中での安定性の点において満足できるものではなく、従来の課題を解決するにはほど遠いものである。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、新規なアスコルビン酸酸化酵素を得るために広く自然界にその給源を求め、特に各種微生物起源の新規なアスコルビン酸酸化酵素につき鋭意研究を重ねてきた。その過程で新たに土壌から単離したユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株を培養することによって従来のＡＳＯとは異なり、アスコルビン酸に作用してＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒し、その安定性が著しく良好な酵素を産生することを見い出すと共に、この新規なＡＳＯＤを工業的に製造する方法を確立し、ＡＳＯＤを単離し、精製し、その性質等の解明に成功し、更に当該酵素を遺伝子工学的手法により大量生産する方法をも確立した。
【００１６】
即ち、ユウペニシリウム属由来の染色体ＤＮＡよりＡＳＯＤをコードする遺伝子をクローニングし、当該遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能をコードするＤＮＡ配列を有するプラスミドを得、当該プラスミドを有する形質転換体を創製し、当該形質転換体を培養することによってＡＳＯＤを製造する方法を確立した。
【００１７】
更にまた、当該酵素はその安定性において非常に優れた性質を持っている為、当該ＡＳＯＤの液状試薬への利用等の応用面について鋭意検討し、本発明を完成した。
【００１８】
本発明のＡＳＯＤの触媒するアスコルビン酸の酸化反応は式１で示され、これまで示されている従来の植物由来のＡＳＯの反応とは区別され、モジホコリカビ由来やトリコデルマ属又はモルティエレラ属由来の酵素と同じ反応を触媒する。
【００１９】
【式１】
【００２０】
本発明の第１は、Ｌ−アスコルビン酸を基質とし、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒し、尚かつ安定性に優れた新規なＡＳＯＤを提供する。
【００２１】
本発明の第２は、上記のＡＳＯＤの製造法を提供する。
本発明の第３は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子を提供する。
本発明の第４は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子及び当該遺伝子の発現を促進するＤＮＡ配列を含んでなる組み換え体ＤＮＡを有する形質転換体を提供する。
本発明の第５は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子及び当該遺伝子の発現を促進するＤＮＡ配列を含んでなる組み換え体ＤＮＡを有する形質転換体を培養し、培養物よりＡＳＯＤを採取することを特徴とするＡＳＯＤの製造法を提供する。
本発明の第６は上記のＡＳＯＤを含有してなる試薬組成物を提供する。
本発明の第７は上記のＡＳＯＤを含有してなる食品添加物を提供する。
本発明の第８は上記のＡＳＯＤを含有してなるＬ−アスコルビン酸測定用試薬組成物を提供する。
【００２２】
即ち、本発明は、Ｌ−アスコルビン酸１分子と分子状酸素１分子からＬ−デヒドロアスコルビン酸１分子と過酸化水素１分子を生成する反応を触媒し、Ｌ−アスコルビン酸に作用し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的には作用せず、至適pHが約６付近にあり、37℃、16時間の処理で約pH３〜８の範囲で安定であり、至適温度が約37℃付近にあり、pH6.8、16時間の処理で約50℃迄安定であり、37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、アジ化ナトリウムで実質的に阻害されない性質を有する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２３】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株より得ることができ、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２４】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株より得ることができ、Ｌ−アスコルビン酸に作用しＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生成する反応を触媒し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的には作用せず、至適pHが約６付近にあり、37℃、16時間の処理で約pH３〜８の範囲で安定であり、至適温度が約37℃付近にあり、pH6.8、16時間の処理で約50℃迄安定であり、37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、アジ化ナトリウムで実質的に阻害されない性質を有する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２５】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株を培養し、アスコルビン酸酸化酵素を生産せしめ、これを採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００２６】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸配列をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００２７】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００２８】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、そのＮ末端アミノ酸配列が配列番号：１で示されるアスコルビン酸酸化酵素をコードする遺伝子と、当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００２９】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸配列を含むアスコルビン酸酸化酵素をコードする遺伝子と、当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３０】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００３１】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００３２】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３３】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３４】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を配合してなる試薬組成物。
【００３５】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、ユウペニシリウム（Eupenicillium）属由来のアスコルビン酸酸化酵素を含有してなる試薬組成物。
【００３６】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を含有して成る食品用添加剤。
【００３７】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、ユウペニシリウム（Eupenicillium）属由来のアスコルビン酸酸化酵素を含有してなる食品用添加剤。
【００３８】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を含有してなるＬ−アスコルビン酸測定用試薬組成物。
【００３９】
本発明はこれらを提供するものである。次いでこれらの発明について詳細に説明する。
【００４０】
本発明者らは、新規なアスコルビン酸酸化酵素を生産する微生物を得るため、広く自然界に給源を求め土壌から分離した菌株が新規なアスコルビン酸酸化酵素を生産することを見いだした。
【００４１】
本発明者らが分離した菌株について、その菌学的性質を、K. B. Raper & C. Thomの"A manual of the Penicillia"に基づいて同定した結果、本菌はユウペニシリウム ブレフェルディアム（Eupenicillium brefeldianum）と同定され、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315と命名した。
【００４２】
以下、本菌の菌学的性質を記載する。
▲１▼生育
麦芽寒天上での生育は比較的速く、１〜２mm菌高の白色羊毛状菌糸は粗い。やがて菌糸は肉眼的に薄れ、基質表面に密着して多量の子嚢果を形成する。集落は平坦で黄色〜黄土色となる。集落裏面は淡褐色、Czapek寒天培地での生育は遅く、集落は放射状に発展し、表面は白色菌叢が密で、やがてフエルト状となる。集落の周辺は波状で、茶褐色の子嚢が密集する。集落裏面は濃褐色で発育根状菌糸が明確となり、40℃でさらにこれが顕著となる。MY40寒天培地では菌叢は重厚でジュウタン状、裏面は濃褐色、オートミール寒天培地では粉状に多量の子嚢果が形成し、集落の周辺は赤色を呈する。
【００４３】
【００４４】
【００４５】
尚、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315は、通商産業省工業技術院生命工学工業技術研究所にFERM BP-5053として寄託されている。
【００４６】
本菌株以外のユウペニシリウム属に属する菌株について、検討した結果、その他のユウペニシリウムに属する菌株も本発明のＡＳＯＤを生産することを確認した。その他のユウペニシリウム属に属する菌株としては例えば、Eupenicillium javanicum IFO-31735、Eupenicillium alutaceum IFO-31728、Eupenicillium erubescens IFO-31734等が挙げられる。
【００４７】
【表１】
【００４８】
特に、本発明者らが土壌から新たにスクリーニングしたユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315から著量の本発明のＡＳＯＤが生産される。
【００４９】
ユウペニシリウム属に属する菌株を用いて新規なＡＳＯＤを製造するための菌株の培養法としては、液体培養、固体培養のいずれでも良いが、より好ましくは液体培養が利用できる。液体培養法としては例えば、以下のようにして行うことができる。
【００５０】
使用できる培地としては、新規なＡＳＯＤを生産する微生物が生育可能な培地であれば、如何なるものでも良い。例えば、グルコース、シュクロース、グリセリン、デキストリン、糖蜜、有機酸等の炭素源、更に硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、或いは、ペプトン、酵母エキス、コーンスティープリカー、カゼイン加水分解物、肉エキス等の窒素源、更にカリウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩、リン酸塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩等の無機塩を添加したものを用いることができる。
【００５１】
培地のpHは例えば約３〜９、好ましくは約5.5〜6.5程度に調製し、培養温度は通常約10〜50℃、好ましくは約25〜37℃程度で、１〜20日間、好ましくは３〜12日間程度好気的条件下で培養する。例えば振盪培養法、ジャーファーメンターによる好気的深部培養法が利用できる。
【００５２】
また、固体培養法としては例えば、以下のように行うことができる。固体培養の培地としては、新規なＡＳＯＤを生産する微生物が生育可能な培地であればいかなるものでも良い。例えば、小麦ふすま、米、大豆、とうもろこし、稲わら、麦わら等を単独或いは２種以上混合して使用することができる。また、カリウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩、リン酸塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩等の無機塩類を添加することができる。
【００５３】
培地の水分含量は例えば50〜300％、好ましくは80〜120％程度に調整し、培養温度は通常10〜50℃、好ましくは25〜40℃で１〜30日間、好ましくは３〜12日間程度培養する
【００５４】
得られた培養物より菌体を除去した培養ろ液又は固体培養抽出液からＡＳＯＤを通常の手段で単離し、本発明の新規なＡＳＯＤを得ことができる。
【００５５】
例えば培養ろ液から、ＡＳＯＤを単離精製するには、硫安塩析、アルコール沈降、イオン交換樹脂を用いるクロマトグラフィー、ゲルろ過法、ヒドロキシルアパタイト吸着樹脂を用いるクロマトグラフィー等を用い常法により処理して、精製ＡＳＯＤを得ることができる。
【００５６】
更に、より具体的に本発明を詳述する。即ち、新規なＡＳＯＤを生産する菌株としてユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315を使用し、液体培地で培養して得られた精製した新規なＡＳＯＤの諸性質について以下に詳述する。
【００５７】
(1) 至適pH：pH3.0〜8.0の範囲でブリトン−ロビンソン（Britton-Robinson's ）緩衝液を使用し、30℃にて10分間反応させた場合の相対活性の結果を図１に示す。本酵素は、約pH６付近に至適pHを有する。
【００５８】
(2) 至適温度：本酵素を100mM リン酸カリウム緩衝液（pH5.5）中で種々の温度で10分間反応させた場合の相対活性の結果を図２に示す。本酵素は、pH5.5において約37℃付近に至適温度を有する。
【００５９】
(3) pH安定性：本酵素を種々のpHのブリトン−ロビンソン緩衝液中で37℃、16時間インキュベートした後の残存活性を測定した結果を図３に示す。本酵素は上記条件下で約pH３〜８の範囲で安定である。
【００６０】
(4) 温度安定性：本酵素を100mM PIPES緩衝液（pH6.8）中で種々の温度で16時間インキュベートした後の残存相対活性を図４に示す。本酵素は、上記条件下で約50℃以下で安定である。
【００６１】
(5) 分子量：約135,000（Sephadex G-200によるゲルろ過法）
【００６２】
(6) 阻害剤：各種阻害剤と共に37℃、２時間インキュベートした後の残存相対活性を表２に示す。本酵素は、アジ化ナトリウム、ジチオスレイトール、キレート剤のジエチルジチオカルバメートで実質的に阻害されずヨード酢酸により阻害される。
【００６３】
【表２】
【００６４】
(7) 金属イオンの影響：各種金属イオンの活性に及ぼす影響を表３に示す。
【００６５】
【表３】
【００６６】
(8) Ｌ−アスコルビン酸に対するミハエリス定数（Km値）：4.9×10-4Ｍ（分光光度法）
【００６７】
(9) 基質特異性：Ｌ−アスコルビン酸を特異的に酸化し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的に作用せず、Ｌ−アスコルビン酸リン酸エステル−マグネシウム塩、Ｌ−アスコルビン酸−６−パルミテート、Ｌ−アスコルビン酸−２，６−ジパルミテート等のアスコルビン酸誘導体にも実質的に作用しない。又、ヒドロキノン、ピロガロールは基質としない。
【００６８】
(10)保存安定性：50mM PIPES緩衝液（pH6.5）［0.02% デヒドロ酢酸、１mM EDT A含有］にＡＳＯＤを溶解し、37℃で保存し、残存相対活性を測定した。
【００６９】
対照として、アクレモニウム（Acremonium）sp. HI-25由来（旭化成工業製）、キュウリ由来（天野製薬製）のＡＳＯを使用した。その結果を図５に示す。
【００７０】
その結果、本発明のＡＳＯＤを上記条件下で保存した場合の保存安定性は極めて良好で、例えば上記条件下での１ヶ月における残存活性は少なくとも 50％であり、対照として用いた他のＡＳＯと比べ際だった特徴を有している。
【００７１】
例えば、アクレモニウム sp. HI-25由来のＡＳＯは１ヶ月後の残存活性は僅か５％程度とほとんど失活している。また、キュウリ由来のＡＳＯは数日でほとんど活性を示さないほどに失活している。
【００７２】
このように本願発明のＡＳＯＤの溶液での安定性は、特別な安定化剤を加えることなく、単独で極めて優れた安定性を有している。
【００７３】
以上の結果をまとめ、更に既知酵素（アクレモニウム エスピー HI-25由来、ミロセシウム ベルカリアの胞子由来、特開平6-209770記載の酵素、キュウリ由来）と比較した結果を表４に示す。
【００７４】
【表４】
【００７５】
尚、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315以外の菌株からもＡＳＯＤが精製できる。得られたこれらのＡＳＯＤについても上記と同様にしてその性質を測定した結果、例えばEupenicillium javanicum IFO 31735、Eupenicillium alutaceum IFO 31728、Eupenicillium erubescens IFO 31734から上述と同様に培養して得られた酵素は、至適pH、至適温度、pH安定性、温度安定性、分子量、阻害剤、金属イオンの影響、Ｌ−アスコルビン酸に対するミハエリス定数（Km値）、基質特異性、保存安定性などの点で同様の性質を有していた。
【００７６】
更に本発明のＡＳＯＤをコードする遺伝子について詳述する。目的とする遺伝子をクローニングするためには、部分アミノ酸配列により推定したオリゴヌクレオチドをプローブとして用いるハイブリダイゼーションスクリーニングや抗体を用いたイムノスクリーニングなどの通常用いられてる方法が使用できる。
【００７７】
あるいはまた、精製した蛋白質、或いは酵素法・化学法による蛋白質の切断によって生じた内部ペプチドのＮ末端アミノ酸配列のうち、異なる２ケ所のアミノ酸配列をもとにオリゴヌクレオチドをデザインし、合成する。これらオリゴヌクレオチドをセンスプライマー、アンチセンスプライマーとしたＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ）法により、ＤＮＡ断片を得ることができる。合成オリゴヌクレオチドとしては混合物或いはイノシンを含んだものも使用できる［Ｓ．Ｙａｍａｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ，Ｇｅｎｅ，１０３巻，６１頁（１９９１）］。得られたＤＮＡ断片をプローブとして、例えばユウペニシリウム ブレフェルディアムＡＰＣ−９３１５のゲノムＤＮＡライブラリーからＡＳＯＤ遺伝子をＤＮＡ断片として得ることができる。
【００７８】
同様にしてユウペニシリウム属の他の菌株からもＡＳＯＤ遺伝子を含むＤＮＡ断片を得ることができる。ユウペニシリウム属の他の菌株としては例えば表１に挙げた菌株が挙げられる。
【００７９】
更に上記遺伝子をクローニングした後、イントロンを含まないｃＤＮＡを、例えばＰＣＲ法により得ることができる。ＰＣＲのプライマーには例えば、ＡＳＯＤ遺伝子のコード領域の開始コドンの直上流と終止コドンの直下流の塩基配列をもとにデザインし、合成したオリゴヌクレオチドを用いることができる。これらのイントロンの有無、配列及び挿入位置は、遺伝子発現系の諸要素、例えば宿主細胞の種類等に応じて当業者か容易に選択し得るものである。
【００８０】
また、ＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有するプラスミドは、例えば上記ＤＮＡ断片を当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含むプラスミドに連結することにより得ることができる。ここで、当該遺伝子の発現を促進する機能をコードするＤＮＡ配列は、使用する宿主微生物内で機能するものであれば如何なるものでも使用できる。
【００８１】
本発明の上記プラスミドを有する形質転換体は、例えば当該プラスミドを糸状菌、酵母などの宿主微生物へ導入することにより、菌体内及び菌体外にＡＳＯＤを生産する形質転換体として得ることができる。宿主微生物としては、組み換えＡＳＯＤを生産する能力を有するものであればいずれでも良いが、例えばユウペニシリウム属、ペニシリウム属、アスペルギルス属、サッカロマイセス属、大腸菌、バチルス属、動物細胞などが挙げられる。
【００８２】
本発明のＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する上記形質転換体の培養及び培養物からのＡＳＯＤの製造法としては、例えばユウペニシリウム属からのＡＳＯＤの製造法と同一の方法が適用できる。
【００８３】
即ち、本発明によりＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する微生物を培養することにより培養物よりＡＳＯＤを採取することが可能となる。
【００８４】
本発明において臨床検査用試薬組成物とはパーオキシダーゼを用いた過酸化水素と色原体との共役反応を用いて生体成分の測定を行う臨床検査用試薬組成物をいう。当該試薬組成物において、本発明のＡＳＯＤを用い、試料中のＬ−アスコルビン酸の影響を回避することができる。本発明のＡＳＯＤは各種の臨床検査用試薬に適用できるが、特に本発明のＡＳＯＤが至適pHが中性付近に有することより、中性付近で多く行われる各種生体成分の測定に好適に利用できる。
【００８５】
例えばコレステロール、中性脂肪、遊離脂肪酸、リン脂質、尿酸、クレアチニン、無機リン、シアル酸の測定など、パーオキシダーゼの存在下で過酸化水素と色原体との酸化縮合反応を利用する測定系にはすべてに適用できる。その場合、本発明のＡＳＯＤの使用量は対象とする試料中のＬ−アスコルビン酸の濃度及び測定系のスケールにもよるが、通常0.1〜100単位／assay使用される。例えば、0.4ml系での反応では0.5〜10単位／assay、好ましくは１〜５単位／assayが使用される。
【００８６】
更に、本発明のＡＳＯＤは保存安定性の項で示したように既存のＡＳＯと比較して溶液の安定性の点で非常に優れている。よって、臨床検査用試薬が液状化試薬として使用される場合には安定性の面で非常に有利である。即ち、従来のＡＳＯは安定性が劣っているため、試薬の保存期間中の失活のため、大過剰の添加が必要となるために、結果としてコストが高くつき、さらには夾雑する物質の影響を受けやすくなるという欠点を有することとなる。
【００８７】
また、上記臨床検査用測定試薬は、保存中の腐敗防止のためアジ化ナトリウムを使用することが多い。植物由来或いは、Acremonium sp. HI-25由来のＡＳＯはアジ化ナトリウムにより活性が阻害されるため、防腐剤の使用法に工夫を必要とする。
【００８８】
本発明の新規ＡＳＯＤは、アジ化ナトリウムによる活性阻害は認められず、この点においても優位性を示す。
【００８９】
本発明のＡＳＯＤの触媒する反応は過酸化水素を生ずるが、これは、例えばパーオキシダーゼ存在下、4-アミノアンチピリン又はその誘導体或いはフェノール系化合物又はN,N-ジ置換アニリン系化合物の縮合反応により、或いはカタラーゼを共存させることにより消去することができる。
【００９０】
現在多くの臨床検査試薬は、例えば２試薬系の第１試薬で内在生の妨害物質消去のため、過酸化水素の消去系を備えており、ＡＳＯＤの酸化反応により生ずる過酸化水素は各種生体成分の測定値に影響はない。
【００９１】
このように、本発明の新規なＡＳＯＤは従来のＡＳＯと比較して、保存安定性が非常に優れていること、アジ化ナトリウムによって阻害されないこと、中性付近に至適pHを有していること等より臨床検査用試薬への添加量を少なくすることができ、その結果としてコストの削減や夾雑物質の影響を回避することも容易となる。
【００９２】
更に従来のＡＳＯは４−アミノアンチピリンとフェノールに代表される水素供与体の縮合反応の触媒能を有しており、生体成分を酸化酵素／パーオキシダーゼ系で測定する際、試薬ブランクが上昇するという問題があった。
【００９３】
本発明のＡＳＯＤは既存の植物、或いは微生物由来のＡＳＯと比較してこの試薬ブランクが低値を示すことにより、生体成分の酸化酵素／パーオキシダーゼ系での測定により好適に利用できる。
【００９４】
また、本発明のＡＳＯＤは食品用にも使用される。例えば、食品にＬ−アスコルビン酸が十分に含まれる場合には、本発明のＡＳＯＤを添加する。また、十分に含まれない又は含まれない食品に対してはＬ−アスコルビン酸若しくはその塩などと本発明のＡＳＯＤを添加する。このことによってＡＳＯＤによってＬ−アスコルビン酸が酸化され食品中の酸素が消費され、食品の劣化を防ぐことができる。
【００９５】
また、同じように食品中にＬ−アスコルビン酸とＡＳＯＤを共存させることにより食品中にデヒドロアスコルビン酸を生成させ、魚畜肉製品、水産練り製品の品質を高めることができる。即ち、これらの製品の品質を決定する重要な因子である粘着性やあし（のび）と呼ばれる弾力性を蛋白質中のＳＨ基をＳ−Ｓ結合させることにより改善することができる。
【００９６】
上記のような食品に対する使用量としてはｇ当たり0.001単位以上であり、好ましくは0.01単位が使用されうる。また、食品中のＬ−アスコルビン酸が不足する場合にはＬ−アスコルビン酸又はその塩を添加することもできその場合には食品に対して0.01〜1.0重量％程度が添加される。
【００９７】
上記のように食品に対して本発明のＡＳＯＤを使用すると食品中に過酸化水素が生成するが、この過酸化水素は加熱工程を含む食品製造においては分解され、必要に応じてカタラーゼ等を用いて分解することも可能であり、食品安全面でも使用に問題はない。
【００９８】
本発明のＡＳＯＤは、従来のＡＳＯと異なり、Ｌ−アスコルビン酸に作用してＬ−アスコルビン酸１モルから過酸化水素１モルを生成する反応を触媒する。この性質を利用して生成する過酸化水素を測定することにより食品中或いは生体成分中のＬ−アスコルビン酸濃度を測定することができる。
【００９９】
過酸化水素の測定にはパーオキシダーゼ存在下、４−アミノアンチピリンとフェノール等の水素供与体との縮合反応の利用、又はメタノール存在下、カタラーゼを作用させ生成するホルムアルデヒドをホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼを用いて測定する方法、過酸化水素電極を用いて測定する方法等が挙げられる。
【０１００】
又、アスコルビン酸の還元力を利用したアスコルビン酸測定系において既存のＡＳＯと同様にブランク側の反応に利用することもできる。
【０１０１】
尚、本発明においてＡＳＯＤ活性の測定方法は以下に示す通りである。
10mM Na2HPO4 0.5ml，１mM EDTAを含む0.2M KH2PO4 0.45ml、試料 0.1mlを混合し、30℃，５分間プレインキュベートする。１mM EDTAを含む0.001N HClにＬ−アスコルビン酸を10mMになるように溶解した基質 0.05mlを添加し、30℃，10分間インキュベーションを行った。0.2Ｎ HCl 3.0mlの添加で反応を停止し、245nmにおける吸光度の減少を測定する。
【０１０２】
ＡＳＯＤの１単位は、１分間にＬ−アスコルビン酸を１μmol分解する酵素量である。
【０１０３】
以下、実施例をあげて本発明を詳細に説明する。実施例に使用したプラスミドなどは一例として挙げたものであり、本発明に使用できるものであればこれらに限定されるものではない。また本発明は以下の実施例に限定されるものではなく、本発明の技術分野における通常の変更をすることができる。
【０１０４】
【実施例】
実施例１ ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315 の培養
グリセロール ２％（W/V）、ポリペプトン １％（W/V）、魚肉エキス（和光純薬工業社製）２％（W/V）、K2HPO4 0.2％（W/V）、MgSO4・７H2O 0.01％（W/V）、アデカノール（旭電化工業社製）0.001％（W/V）、pH6.0よりなる培地20Ｌを30Ｌ容のジャーファメンターに仕込み、121℃で30分間殺菌した。他方、同組成培地を用い、500ml容坂口フラスコで37℃，３日間予め振盪培養しておいたユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315（FERM BP-5053）の培養液100mlを前記培地に無菌的に植菌し、37℃で６日間通気攪拌培養（200rpm、ジャー培養の通気量：１vvm）した。培養ろ液のＡＳＯＤ活性は0.15unit／mlであった。
【０１０５】
実施例２ ＡＳＯＤの精製
実施例１で得られた培養物を東洋ろ紙 No.２を用いてろ別し、培養ろ液12Ｌを得た。限外ろ過のモジュールを用いて１Ｌ迄濃縮し、この濃縮液に1.5倍量の冷エタノールを添加し、冷蔵室で一晩攪拌した。遠心分離により、沈殿を回収し、10mM酢酸緩衝液（pH5.0）で溶解した。
【０１０６】
予め、同緩衝液で平衡化させたDEAE-Sepharoseに沈殿溶解液を供し、同緩衝液で洗浄して、DEAE-Sepharose未吸着画分を回収した。この画分を予め20mM酢酸緩衝液（pH4.4）で平衡化させたS-Sepharoseに供し、同緩衝液で十分洗浄した後、０〜200mM食塩のリニアグラジェントにて溶出させる。活性画分を回収後、限外ろ過のモジュールを用いて脱塩、濃縮する。更にこの濃縮液を同緩衝液にて平衡化させたSephacryl S-200に供し、ゲルろ過を行う。溶出してくる活性画分を回収後、限外ろ過のモジュールにて脱塩、濃縮し、凍結乾燥により粉末を得た。得られたＡＳＯＤ粉末の比活性は1,495unit／mgタンパク質であった。
【０１０７】
実施例３ 酵素反応生成物の同定と化学量論
20mM酢酸緩衝液（pH5.0）中に実施例２で得られたＡＳＯＤ標品10UとＬ−アスコルビン酸（終濃度０−50mM）を混合し、攪拌しながら充分に反応させる。得られた反応液50μlと４−アミノアンチピリン（終濃度３mM）、フェノール（同1.1mM）、パーオキシダーゼ（西洋ワサビ由来：同24U）、トリトンＸ−100（同0.02％）を含む100mMリン酸緩衝液（pH7.0）2.95mlを混合し、37℃にて反応させたところ、501μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、516μmoleの過酸化水素の生成が認められた。
【０１０８】
又、メタノール存在下、生成する過酸化水素にカタラーゼを作用させ、生じたホルムアルデヒドをホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼで定量し、Ｌ−アスコルビン酸消費量と過酸化水素生成量に定量性が認められた。
【０１０９】
更に、同反応液中の生成物をHPLC法、ジニトロフェニルヒドロラジン比色法、ｏ−フェニレンジアミン蛍光法によりデヒドロアスコルビン酸と同定した。蛍光法による測定の結果、61.0μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、生成するデヒドロアスコルビン酸は60.0μmoleであった。
【０１１０】
又、反応中の酸素消費量を酸素電極にて測定したところ10μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、9.5μmoleの酸素が消費された。
【０１１１】
以上の結果より、本発明のＡＳＯＤはＬ−アスコルビン酸１モルを１モルの酸素を水素受容体として酸化し、１モルのデヒドロアスコルビン酸と１モルの過酸化水素を生成する反応を触媒することが明らかとなった。
【０１１２】
実施例４ Eupenicillium javanicum IFO 31735 、 Eupenicillium alutaceum IFO 31728 及び Eupenicillium erubescens IFO 31734 の培養
これらの菌株を実施例１に従って培養し、更に実施例２に従って精製して得られたＡＳＯＤの比活性は各々1,356unit／mgタンパク質、1,631unit／mgタンパク質及び1,567unit／mgタンパク質であり、これらの酵素は何れもＬ−アスコルビン酸１モルを１モルの酸素を水素受容体として酸化し、１モルのデヒドロアスコルビン酸と１モルの過酸化水素を生成する反応を触媒する。
【０１１３】
実施例５ ＡＳＯＤ遺伝子のクローニング
(1) 菌体の取得
グリセロール−ポリペプトン培地［２％グリセロール，３％ポリペプトン，0.2% KH2PO4,0.01% MgSO4・7H2O,0.001% アデカノール （pH6.0）］にユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315（FERM BPー5053）を接種し、37℃において48時間通気攪拌培養し、培養物をろ過して菌体を得た。
【０１１４】
(2) 染色体ＤＮＡの調製
得られた湿菌体４ｇを液体窒素中で凍結し、そのまま、液体窒素及び海砂を入れた乳鉢に移し、乳棒で微細な粉末とした。
【０１１５】
得られた粉末を、３mgプロテイナーゼＫを含む６mlのLysis緩衝液〔150mM EDTA・2Na，50mM トリス−塩酸緩衝液（pH8.0），１％ザルコシン〕に懸濁後、65℃，５分間処理し、遠心分離により上清を得た。
【０１１６】
これに30μlのRNase A（10mg/ml）を加え、37℃、20分処理してＲＮＡを分解した後、１倍量のフェノール、１倍量のフェノール：クロロホルム（１：１）及び１倍量のクロロホルム：イソアミルアルコール（24：１）でそれぞれ１回ずつ抽出した後、エタノール沈降により得た沈殿を２mlのＴＥ〔150mM EDTA・2Na，50mM トリス−塩酸緩衝液（pH8.0）〕に溶解した。更に2.2mlの20％ポリエチレングリコール8000-2.5M NaClを加え、混合後、生じた沈殿物を遠心により集め、0.2mgの染色体ＤＮＡを得、ＴＥに溶解した。
【０１１７】
(3) ｍＲＮＡの調製
シグイン（Chigwin）等の方法〔Biochemistry、18巻、5294頁（1979）〕に従って全ＲＮＡを得た。即ち(2)で得た粉末の半分量を20mlのＧＴＣ液（６Ｍグアニジンチオイソシアネイト、５mMクエン酸ナトリウム、8.5％ザルコシン、0.1M β−メルカプトエタノールを含有）に懸濁し、10,000×ｇ、15分の遠心分離により、菌体破片及び海砂を除いた。
【０１１８】
得られた上清を、超遠心分離用チューブ中、5.7Ｍの塩化セシウム溶液上に重層し、33,000rpm、25℃、18時間の条件で超遠心分離して、沈澱物を得た。この沈澱物を水に溶解し、0.025倍量の１Ｎ−酢酸及び0.5倍量の冷エタノールを加え、混合後、生じた沈澱物を遠心により集め、水に溶解し、不純物を遠心により除去して全ＲＮＡを得た（約10mg）。この内の４mgをｍＲＮＡを選択するために、オリゴ（dT）セルロース−スパン−カラムキット（ファルマシア社製）に供し、ｍＲＮＡ画分（80μｇ）を得た。
【０１１９】
（４）遺伝子ライブラリーの作成
（２）で得られた全ＤＮＡをＢｇｌＩＩで分解する。分解されたＤＮＡを子牛の腸由来のアルカリフォスファターゼ（ベーリンガー社製）を用いて脱リン酸し、Ｆｒｉｃｓｈａｕｆらの方法〔Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１７０巻、８２７−８４２頁（１９８７）〕に従って、λＤＡＳＨＩＩ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）のＢａｍ ＨＩサイトにライゲートした。
【０１２０】
ライゲーション混合物はインビトロでパッケージし、Ｅ．Ｃｏｌｉ ＸＬ１−Ｂｌｕｅ ＭＲＡ（Ｐ２）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）にトランスフェクションした。その結果、３．８×１０５のインデペンデントクローンよりなるライブラリーが作成できた。
【０１２１】
(5) ＡＳＯＤの部分アミノ酸配列の決定
実施例２で得られた精製ＡＳＯＤタンパク質をエンドグリコシダーゼＨ処理し糖鎖を除去した。糖鎖除去ＡＳＯＤをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動に供した後、ＰＶＤＦ（Polyvinylidene difluoride）膜（MILLIPORE社製）に電気的にブロッティングした。クマシーブリリアントブルー R-250で染色されたＡＳＯＤのバンドを切り出し、エドマン法によるアミノ酸配列自動分析装置（アプライド バイオシステムズ社製）を用いてＮ末端からのアミノ酸配列（配列番号：１）を決定した。
【０１２２】
次いで、糖鎖除去ＡＳＯＤを公知の方法〔タンパク質 一次構造（新生化学実験講座 第一巻）、92頁、日本生化学会編 （1990）〕に従って、Ｎ−ヒドロキシルアミンにより分解した。ペプチド断片混合液を上述したと同様の方法でＰＶＤＦ膜にブロッティングし、クマシーブリリアントブルー R-250で染色された一つのペプチド（ペプチドＤ）のバンドを切り出し、同様の方法でペプチドＤのＮ末端アミノ酸配列（配列番号：２）を決定した。
【０１２３】
次いで得られた糖鎖除去ＡＳＯＤ［３mg/ml,100mM リン酸緩衝液（pH8.0）］にリジルエンドペプチターゼ(Takara社製）を添加し、37℃，18時間反応させて分解した。分解物をピュアシル（Puresil）C18カラム（商品名：Waters Chromatography社製）を用いて逆相ＨＰＬＣ法により精製した。ペプチド流量は1.0ml/分，0.05%トリフルオロ酢酸中で０〜80％アセトニトリルの直線勾配により溶出した。
【０１２４】
約34分のリテンション時間に溶出するペプチド（ペプチドL-34）と約39分に溶出するペプチド（ペプチドL-39）を分離し、エドマン法によりそれぞれのＮ末端からのアミノ酸配列（配列番号：３及び配列番号：４）を決定した。
【０１２５】
(6) ＰＣＲ法に用いたプライマーＤＮＡの合成
(5)で決定されたＡＳＯＤタンパク質のＮ末端部位のアミノ酸配列の３番目のプロリンから10番目のグリシンに対応する塩基配列を予想し、オリゴヌクレオチドを合成した。このオリゴヌクレオチドをＰＣＲのセンスプライマーとした。センスプライマーの配列を以下に示す。
【０１２６】
【０１２７】
同様にして、(5)で決定されたペプチドＤのＮ末端からのアミノ酸配列の６番目のプロリンから13番目のアスパラギン酸に対応する塩基配列を予想し、オリゴヌクレオチドを合成した。このオロゴヌクレオチドをＰＣＲのアンチセンスプライマーとした。アンチセンスプライマーの配列を以下に示す。
【０１２８】
【０１２９】
合成したＤＮＡはそれぞれ20μＭの濃度になるようにＴＥに溶解した。
【０１３０】
(7) ＡＳＯＤ遺伝子を含有する部分ＤＮＡ断片の取得
ＡＳＯＤを含む特定のＤＮＡ領域を、ＰＣＲ法によって、単離増幅した〔Saiki, R. F. et al., Science、230巻、1350−1354頁（1985）〕、Mullia, K. B. 及びFaloona,F. A., Methods in Enzymology、155巻、335−350頁（1987）〕。
【０１３１】
(a) ＰＣＲ法によるＤＮＡ断片の増幅
反応は、Gene AmpTM kit（パーキンエルマージャパン社製）を用い、同社のＤＮＡ Thermal Cycler（ＤＮＡ増幅装置）により行った。反応溶液の組成は以下の通りである。
【０１３２】
【０１３３】
上記の反応液100μlを混合し、ミネラルオイル（Sigma社製）100μlを加えた。次に反応液の入ったチューブをＤＮＡ Thermal Cyclerにセットし、以下の条件で反応を行った。
【０１３４】
94℃ 45秒
45℃ １分
72℃ ２分
【０１３５】
この条件下で反応を30サイクル行った後、更に72℃で５分間インキュベートした。
【０１３６】
(b) 増幅されたＤＮＡの回収
反応後、ミネラルオイルを除き、100μlのクロロホルムを加え、混合し、 15,000回転／分、２分間の遠心分離（トミー精工社製）を行い、上清を100μl回収した。このうち５μlを用い、１％アガロース電気泳動で回収されたＤＮＡのサイズと量を確認した。その結果約400bpのＤＮＡ断片が約２μg増幅されていることが判った。
【０１３７】
残りの95μlを１％低融点アガロース電気泳動にかけ、約400bpに相当するバンドを切り出し、65℃で溶かした後、１倍量のフェノールを加え混合し、遠心後、水層部分をさらにフェノール／クロロホルム及びクロロホルムで順次処理した後、水層に３Ｍ酢酸ナトリウムを0.1倍量、エタノールを２倍量添加し、−80℃で15分間置いた。次に15,000回転/分、10分間、４℃の遠心後、沈澱を20μlのＴＥに溶かした。この操作で約１μgのＤＮＡ断片が回収された。
【０１３８】
このＤＮＡ断片にＴ４ＤＮＡポリメラーゼを作用させて両末端を平滑化し、ｐＵＣ１９のＳｍａＩサイトにサブクローニングし、プラスミドｐＡＳ０１を得た。このプラスミドを２本鎖のままポリエチレングリコールにより精製し、アルカリで変性させた後、シーケナーゼシステム（ＵＳＢ社製）を用いて、デオキシヌクレオチドチェーンターミネーション法により５’−及び３’−部位の塩基配列を決定した。
【０１３９】
その結果、5'-及び3'-部位の塩基配列は部分ＡＳＯＤのＮ末端の４位〜 20位のアミノ酸配列及びペプチドＤの１位〜13位のアミノ酸配列をコードする塩基配列とそれぞれ完全に一致した。
【０１４０】
このフラグメントは全長のゲノムＤＮＡクローンを分離するための遺伝子ライブラリーのスクリーニングにおいてプローブとして使用した。
【０１４１】
(8) ＡＳＯＤ遺伝子を含有するファージの分離
(7)(b)で得られた400bpのＰＣＲによる生産物をマルチプライムＤＮＡラベリングシステム（アマシャム社製）を用いて[α-32P]dCTPでラベルし、これをプローブとしてユウペニシリウム ブレフェエルディアムAPC-9315からの7.5×104のインデペンデントファージからなる遺伝子ライブラリーからＡＳＯＤ遺伝子を有するファージをスクリーニングした。
【０１４２】
即ち、プラークをナイロン膜Hybond N+（アマシャム社製）にリフティングし、アルカリ固定した後、このフィルターと上記のラベルした400bpのＤＮＡ断片をハイブリダイズさせた。
【０１４３】
その結果、14個のプラークがプローブにハイブリダイズした。それらのプラークから分離した14個の組換え体ファージを制限酵素地図とサザンブロッティングによって分析した。
【０１４４】
これらのファージにはすべてに共通して、400bpのＰＣＲ生成物と強くハイブリダイズする18kbp BglII及び4.2kbp EcoRIの各フラグメントを有していた。
【０１４５】
(9) ＡＳＯＤ遺伝子を含有するＤＮＡ断片の塩基配列の決定
4.2kbp EcoRI断片をpUC19のEcoRIサイトにサブクローニングし、4.2kbp EcoRI断片が互いに逆方向に挿入されたプラスミドpASO3およびpASOR3を作成した。この4.2kbp EcoRI断片の制限酵素地図を図６に示す。
【０１４６】
この両プラスミドをエキソヌクレアーゼIII、なた豆のヌクレアーゼを用いていくつかの欠失プラスミドを作成し、それらのプラスミドについて、(7)(b)に記載の方法で塩基配列を決定した。決定した塩基配列から予測されるアミノ酸配列には、精製したＡＳＯＤのＮ末端から決定した20残基のアミノ酸配列、ペプチドＤの20残基のアミノ酸配列、及びペプチドL-34，L-39の各12残基のアミノ酸配列が完全に含まれていた。ここで、図６中の＊印をつけたSalI切断部位から下流のの塩基配列は配列番号：５に示すとおりであった。
【０１４７】
成熟ＡＳＯＤのＮ末端アミノ酸は＊印をつけたSalI切断部位の塩基配列がコードするValであった。この成熟ＡＳＯＤのＮ末端アミノ酸であるValの上流に、プレプロ領域と推定されるMetから始まる18アミノ酸残基が見られた。図６の矢印はこのMetからＡＳＯＤのＣ末端アミノ酸までをコードするＤＮＡ領域を示す。
【０１４８】
(10) ｃＤＮＡ断片の単離
(a) ＰＣＲのための鋳型１本鎖ｃＤＮＡの合成
(3)で得られたｍＲＮＡ（１μg）から下記の組成液20μl中で１本鎖ｃＤ
ＮＡを調製した。
【０１４９】
【０１５０】
(b) ＰＣＲ法によるｃＤＮＡの増幅
(10)(a)で得られた１本鎖ｃＤＮＡを鋳型として、(7)(a)で述べたＰＣＲ法により増幅した。尚、センスプライマーとして、
【０１５１】
EX-1: 5'-ATT CTA GAC ATC ATG CGT TCC TAT ACT TTG-3'
【０１５２】
アンチセンスプライマーとして、
【０１５３】
B-1 : 3'-CGT TGG CTC ACA ACA ACT ATC CTA GGT G-5'
【０１５４】
の各オリゴヌクレオチドをＤＮＡ合成機を利用して合成した。これらの塩基配列は4.2kbp EcoRI断片中のＡＳＯＤ遺伝子のコード領域の開始コドンの直上流と終始コドンの直下流の塩基配列を部分的に決定し、これらの配列情報をもとにデザインした。
【０１５５】
ＰＣＲの結果、約1.0kbpのｃＤＮＡ断片が得られた。この断片をXbaI/BamHI消化後、pUC19のXbaI/BamHIサイトにサブクローニングしてpAXB1を得た。この約1.0kbpのXbaI/BamHI断片の制限酵素地図を図７に示す。ここで両端のXbaI，BamHI両サイトはｃＤＮＡのクローニングに用いたＰＣＲプライマーの塩基配列由来である。このＤＮＡ断片について(5)に従い塩基配列を決定した。開始コドンから終始コドンまでの塩基配列は、例えばEco47III部位近傍に見られたイントロンの配列以外は、ゲノム遺伝子の塩基配列と一致した。
【０１５６】
(11) ＡＳＯＤ発現カセットの構築
(10)で得たpAXB1を制限酵素XbaIおよびBamHIで処理後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、約1.0kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をpY1（特開平6-245777）のXbaI/BamHIサイトにクローニングし、pAC1を得た。（図８）
【０１５７】
実施例６ ＡＳＯＤ遺伝子の酵母サッカロマイセス セレビシエでの発現
実施例５の(11)で得られたpAC1をHindIIIで部分消化後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、ＡＳＯＤの発現カセットである約2.1kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をサッカロマイセス セレビシエの選択マーカーとなるLeu2遺伝子を有する形質転換プラスミドpL1（Biosci. Biotech. Biochem., 56, 315-319 (1992)）のHindIIIサイトに連結し、pLAC1を得た（図９）。
【０１５８】
このpLAC1を用いて、サッカロマイセス セレビシエSHY2株（ATCC 44770）を、伊藤らの方法〔J. Bacteriol.，153巻、163-168頁（1983）〕により形質転換した。得られた形質転換体をPYGal培地（２％ガラクトース、２％ポリペプトン、１％酵母エキス）50mlにて30℃、３日間振とう培養した。
【０１５９】
得られた培養上清液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はプラスミドpLAC1を有する形質転換体の場合、0.3U/mlであった。対照として選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpL1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養し、ＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６０】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行った。ウエスタンブロッティング解析には、精製ＡＳＯＤを用いてウサギで作製した抗ＡＳＯＤ抗体を用いた。その結果、pLAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６１】
実施例７ ＡＳＯＤ遺伝子のペニシリウム カマンベルチィーでの発現
ペニシリウム カマンベルチィーの選択マーカーとなるハイグロマイシンＢ耐性遺伝子を有する形質転換プラスミドpH1（特開平6-245776記載の方法で製する）を制限酵素HindIIIで処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、ハイグロマイシンＢ耐性遺伝子を含む約2.2kbp ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにより平滑化した後、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、pHAC1を得た（図１０）。
【０１６２】
次にこのpHAC1を用いて、ペニシリウム カマンベルチィーを、特開平6-245776に記載の方法に準じて形質転換した。選択培地に生育してきた形質転換体を大豆油培地（３％大豆油、0.5％酵母エキス、0.3%NaNO3、0.1%K2HPO4、0.05%KCl、0.05%MgSO4・7H2O、0.001%FeSO4・12H2O）100mlにて30℃、７日間振とう培養した。
【０１６３】
得られた培養液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpHAC1による形質転換株の場合14.9U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpH1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６４】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pHAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６５】
実施例８ ＡＳＯＤ遺伝子のアスペルギルス オリゼでの発現
アスペルギルス オリゼの選択マーカーとなるniaD遺伝子を有する形質転換プラスミドpSTA14（Mol. Gen. Genet.,218巻、99-104頁(1989)）を制限酵素HindIII処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、niaD遺伝子を含む約5.5kb ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにより平滑化した後、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、プラスミドpNAC1を得た（図１１）。
【０１６６】
このpNAC1を用いて、アスペルギルス オリゼA01.1株（Mol. Gen. Genet.、218巻、99-104頁(1989)）を、Unklesらの方法（Mol. Gen. Genet.、218巻、99-104頁 (1989)）に準じて形質転換した。選択培地に生育してきた形質転換体を実施例７と同様の方法で培養した。
【０１６７】
得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpNAC1による形質転換株の場合2.0U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpSTA14のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６８】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従い糖鎖除去後、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pNAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６９】
実施例９ ＡＳＯＤ遺伝子のアスペルギルス ニガーでの発現
実施例７に記載したpHAC1を用いて、アスペルギルス ニガーを特開平6-245776に記載の方法に準じて形質転換した。ただし重層するソフトアガー中のハイグロマイシンＢ濃度は307.5μg/mlとした。選択培地に生育してきた形質転換体を実施例７と同様の方法で培養した。
【０１７０】
得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpHAC1による形質転換株の場合0.2U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpH1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１７１】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pHAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１７２】
実施例１０ ＡＳＯＤ遺伝子のユウペニシリウム ブレフェルディアムでの発現
ユウペニシリウム ブレフェルディアムの選択マーカーとなるフレオマイシン耐性遺伝子を有する形質転換プラスミドpUT720を制限酵素EcoRI及びXbaIで処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、フレオマイシン耐性遺伝子を含む約3.1kbp ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにて平滑化し、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、プラスミドpPAC1を得た（図１２）。
【０１７３】
次にこのpPAC1を用いて、ユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315株（FERM BP-5053）を以下の方法で形質転換した。
【０１７４】
ユウペニシリウム ブレフェルディアムの胞子懸濁液（２×108）100μlを100mlのぶどう糖−ペプトン培地（栄研化学社製）に接種し37℃、48時間振とう培養後、培養物をろ過し菌体を集めた。この菌体を10mlのプロトプラスト化緩衝液［1.2Mソルビトール,10mM リン酸緩衝液(pH6.0)］に懸濁し、ろ過することにより洗浄菌体を集めた。
【０１７５】
この洗浄菌体を５mg/mlのライジング エンザイム（Sigma Product number L-2265,Sigma社製）を含むプロトプラスト化緩衝液に懸濁し、30℃で２時間振とう後、ガラスフィルター３Ｇ２でろ過し、ろ液を2000rpm，５分間の遠心分離に供し沈澱物を得た。この沈澱物をソルビトール溶液［1.2Mソルビトール,50mM CaCl2,10mM トリス塩酸緩衝液(pH7.5)］に懸濁し、沈澱物を回収した。この操作を再度繰り返し、プロトプラストを沈澱物として回収した。
【０１７６】
沈澱物にプロトプラスト濃度が２×108／mlとなるようにソルビトール溶液を加え、懸濁し、プロトプラスト溶液を得た。プロトプラスト溶液50μlに、４μlのpPAC1溶液（１μg/μl）、6.25μlのＰＥＧ溶液［50% PEG4000,50mM CaCl2,10mM トリス塩酸緩衝液,(pH7.5)］を加え混合後、氷上に30分間静置した。次に0.5mlのＰＥＧ溶液を加え、更に１mlのソルビトール溶液を加え混合した。
【０１７７】
この混合液300μlを17mlの1.5％アガロースを含むＰＤ［2.4％ポテト−デキストロース−ブロス（Difco社製）］からなるプレートにのせ、更に予め48℃に保温しておいた0.7％アガロースを含むＰＤ３mlを重層し、30℃、24時間放置後、1.54mg/mlのフレオマイシン（CAYLA社製）、0.7％アガロースを含むＰＤ３mlを重層し、30℃、４日間放置し、プレート上に出現したコロニーを1.5％アガロースを含むＰＤスラント培地に植え継ぎ、形質転換株として保存した。
【０１７８】
選択培地に生育してきた形質転換株を２×グリセロール−ポリペプトン培地［４％グリセロール，６％ポリペプトン，0.4% KH2PO4,0.02% MgSO4・7H2O,0.001% アデカノール （pH6.0）]100mlに接種し、37℃、６日間振とう培養した。
【０１７９】
得られた培養液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpPAC1による形質転換株の場合18.5U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpUT720のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は1.8u/mlであった。
【０１８０】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pPAC1による形質転換体、対照のpUT720による形質転換体ともに、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。また、pPAC1による形質転換体のシグナルはpUT720による形質転換体に比べ約10倍強いシグナルが得られた。
【０１８１】
実施例１１ ＡＳＯＤ遺伝子のユウペニシリウム ブレフェルディアムでの発現
実施例５の(9)で得られたpASO3をEcoRIで消化後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、ＡＳＯＤ遺伝子を含む約4.2kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をユウペニシリウム ブレフェルディアムの選択マーカーとなるフレオマイシン耐性遺伝子を有するpUT720（CAYLA社製）のEcoRIサイトにクローニングしpASOE1を得た（図１３）。
【０１８２】
このpASOE1を用いて、ユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315株を実施例１０に従って形質転換した。
【０１８３】
形質転換株はいずれも、300μg/mlのフレオマイシンを含む培地においても良好に生育したのに対し元株であるユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315は40μg/ml以上のフレオマイシンを含む培地では生育不能であった。この形質転換株が獲得したフレオマイシン耐性の性質は２回の単胞子分離後も安定に保持されていた。
【０１８４】
形質転換株を実施例１０記載の方法で培養した。得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性は、プラスミドpASOE1を有する形質転換体の場合、25.8U/mlであった。また、選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpUT720のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は1.4U/mlであった。
【０１８５】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pASOE1による形質転換体、対照のpUT720による形質転換体ともに、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。また、pASOE1による形質転換体のシグナルはpUT720による形質転換体に比べ約18倍強いシグナルが得られた。
【０１８６】
実施例１２ 血中のコレステロールの測定
血清中の全コレステロールの測定の際のアスコルビン酸による干渉作用を除去するために実施例２で得られたＡＳＯＤ、実施例１１で得られたＡＳＯＤ及びキュウリ由来のＡＳＯを添加し、その効果を測定した。
【０１８７】
【０１８８】
【０１８９】
ヒト管理血清（リピッドセーラムII，栄研化学製）10μlに（試薬−１）2.25mlを添加し、37℃，５分間インキュベーションした後、（試薬−２）0.75mlを添加し、更に37℃，５分間インキュベーションを行った。その後、500nmにおけるの吸光度を測定した。盲検としてヒト血清の代わりに精製水を使用した。
【０１９０】
【表５】
【０１９１】
表５から明らかな様に、本発明のＡＳＯＤの添加により、キュウリ由来ＡＳＯと同様に、Ｌ−アスコルビン酸による発色阻害を防止できる。形質転換体により生産されたＡＳＯＤを用いても同様の結果が得られることが判る。
【０１９２】
実施例１３ ＡＳＯＤ配合試薬の安定性
実施例１２で調製した（試薬−１）を37℃で20日間保存し、用時調製した（試薬−２）を用いて実施例４と同様にしてコレステロールの定量を行った。その結果、キュウリ由来のＡＳＯを用いた場合と比べ明らかに本発明のＡＳＯＤを用いた試薬は安定性に優れている。同様に実施例１１により得られたＡＳＯＤを用いて調製した試薬についてもその安定性は優れている。
【０１９３】
【表６】
【０１９４】
実施例１４ 血中のトリグリセライドの測定
血清中のトリグリセライド測定の際のアスコルビン酸による干渉作用を除去するために実施例２で得られたＡＳＯＤを添加し、その結果を測定した。
【０１９５】
【０１９６】
【０１９７】
ヒト管理血清（リピッドセーラムII，栄研化学）27μl、Ｌ−アスコルビン酸（50mg／ml）３μlに試薬１（2.25ml）を添加し、37℃、５分間インキュベーションした後、試薬−２（0.75ml）を添加し、更に37℃、５分間インキュベーションを行った。その後、555nmにおける吸光度を測定した。Ｌ−アスコルビン酸の代わりに精製水を使用し、対照とした。
【０１９８】
【表７】
【０１９９】
表７の結果から明らかなように本発明のＡＳＯＤにより、アスコルビン酸による発色阻害を防止できる。又、本発明のＡＳＯＤによるＬ−アスコルビン酸酸化に伴って生成する過酸化水素は測定値に影響しないことがわかる。同様に実施例１１により得られたＡＳＯＤを用いて調製した試薬を用いても測定値には影響しないことを確認した。
【０２００】
実施例１５ Ｌ−アスコルビン酸の定量
種々の濃度のＬ−アスコルビン酸を含む20mM酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液（pH4.0）10μlに本発明のＡＳＯＤ 40μl（0.5U）を添加し、37℃、10分間反応し、Ｌ−アスコルビン酸を完全にデヒドロアスコルビン酸に変換する。
【０２０１】
次いで、３mM ４−アミノアンチピリン、１mM フェノール、８U／ml パーオキシダーゼを含む100mM リン酸緩衝液（pH7.0）2.95mlを添加し、37℃、５分間反応させ、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応の際に生じる過酸化水素量を４−アミノアンチピリンとフェノールの酸化縮合色素の505nmにおける吸光度にて測定した。その結果を図１４に示す。
【０２０２】
図において横軸はＬ−アスコルビン酸濃度（mM）を縦軸は505nmにおける吸光度値を示す。図１４より被検液のＬ−アスコルビン酸含有量と吸光度の比例関係を利用して被検液中のＬ−アスコルビン酸量を良好に測定できることが明らかである。また、実施例１１で得られた酵素を用いても同様の結果が得られた。
【０２０３】
実施例１６ 食品中のアスコルビン酸の定量
実施例１５に基づき、レモン果汁中のＬ−アスコルビン酸量を測定した。同時にヒドラジン比色法による測定を行い、測定対照とした。
【０２０４】
その結果、レモン果汁100ml中に含まれるアスコルビン酸量は本発明の方法では37.0mg（実施例１５の検量線より算出）、ヒドラジン比色法［（総アスコルビン酸量）−（デヒドロアスコルビン酸量）］では35.9mgであった。
【０２０５】
上記結果より本発明ＡＳＯＤを用いて食品中のＬ−アスコルビン酸量は良好に測定できることが明らかである。また、実施例１１で得られた酵素を用いても同様の結果が得られた。
【０２０６】
実施例１７
他のユウペニシリウム属（表１）の菌株について、及び実施例４及び実施例５〜実施例１１で得られた酵素について実施例１２〜実施例１６と同様にして、各種測定を行った結果、同様の結果が得られた。
【発明の効果】
本発明によれば、新規なＡＳＯＤ及び該ＡＳＯＤをコードする遺伝子が提供され、該遺伝子を組み込んだ形質転換体を培養することによりＡＳＯＤを大量かつ安価に製造することもできる。本発明のＡＳＯＤを用いることによって、臨床検査試薬、特に液状試薬の製造において、干渉物質除去の目的で添加されていた既知のＡＳＯの不安定性に起因する種々の安定化剤の添加、保存期間中の失活に対する過剰添加が不要となる。即ち、更に本発明のＡＳＯＤは従来のＡＳＯと比較して、保存安定性が非常に優れていること、アジ化ナトリウムによって阻害されないこと、中性付近に至適pHを有していること等より臨床検査用試薬への添加量を少なくすることができ、その結果としてコストの削減や夾雑物質の影響を回避することも容易となる。
【０２０７】
【配列表】
配列番号：１
配列の長さ：２０
配列の型：アミノ酸
配列
Val Asp Pro Ala Ala Val Tyr Asn Gly Gly Tyr Asn Ser Thr Lys 15
Asn Val Ala Leu Arg 20
【０２０８】
配列番号：２
配列の長さ：２０
配列の型：アミノ酸
配列
Gly Ile Ala Lys Ser Pro Ala Trp Tyr Thr Trp Arg Asp His Phe 15
Leu Leu Val Gly Pro 20
【０２０９】
配列番号：３
配列の長さ：１２
配列の型：アミノ酸
配列
Phe Thr Gln Trp Ala Ile Ser Ala Glu Gly Gln Lys 12
【０２１０】
配列番号：４
配列の長さ：１２
配列の型：アミノ酸
配列
Asn Gly Ser Asp Pro Phe Glu Val Ala Trp Tyr Lys 12
【０２１１】
配列番号：５
配列の長さ：３０
配列の型：核酸
配列
GTC GAC CCT GCT GCC GTC TAC AAT GGA GGG 30
Val Asp Pro Ala Ala Val Tyr Asn Gly Gly 10
【図面の簡単な説明】
【図１】ＡＳＯＤの至適pHを示す。
【図２】ＡＳＯＤの至適温度を示す。
【図３】ＡＳＯＤのpH安定性を示す。
【図４】ＡＳＯＤの温度安定性を示す。
【図５】アスコルビン酸酸化酵素の保存安定性を示すグラフである。
【符号の説明】
図中で黒丸は本願発明のＡＳＯＤの結果を示し、白丸はアクレモニウムsp. HI-25由来のＡＳＯを示し、白三角はキュウリ由来のＡＳＯを示す。
【図６】ＡＳＯＤ遺伝子を含有するＤＮＡ断片の制限酵素地図を示す。
【図７】ＡＳＯＤをコードするｃＤＮＡの制限酵素地図を示す。
【図８】組換えプラスミドpAC1の構築手順を示す。
【図９】組換えプラスミドpLAC1の構築手順を示す。
【図１０】組換えプラスミドpHAC1の構築手順を示す。
【図１１】組換えプラスミドpNAC1の構築手順を示す。
【図１２】組換えプラスミドpPAC1の構築手順を示す。
【図１３】組換えプラスミドpASOE1の構築手順を示す。
【図１４】実施例１５のＬ−アスコルビン酸の検量線を示す。
【産業上の利用分野】
本発明は、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する新しい酵素、より詳細には、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素との反応によってＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生成する反応を触媒し、尚かつ極めて優れた安定性を有する新規なＬ−アスコルビン酸酸化酵素（以下、ＡＳＯＤという。）を提供する。更に本発明は、微生物を用いた当該ＡＳＯＤの製造法、該ＡＳＯＤをコードする遺伝子、当該遺伝子を含んでなる形質転換体、これを用いたＡＳＯＤの製造法並びに該ＡＳＯＤを含有してなる検査用試薬組成物、食品用添加物、食品或いは臨床検査分野における試薬組成物に関する。
【０００２】
【従来の技術】
Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する酵素としては、アスコルビン酸に作用し、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と水を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素（以下、ＡＳＯという。）やラッカーゼが知られており、国際生化学連合（I.U.B）の分類によれば、それぞれEC 1.10.3.3及びEC 1.10.3.2に分類される。
【０００３】
上記のＡＳＯは、従来より各種植物に分布することが知られており、カボチャ〔M. H. Lee and C. R. Dawson（1973）J. Biol. Chem., 248, 6596頁〕及びキュウリ〔T. Nakamura, N. Makino and Y. Ogura（1968）J. Biochem., 64, 189頁〕などから単離されている。
【０００４】
一方、微生物由来のＡＳＯとしてミロセシウム ベルカリア（Myrothecium verrucaria）の菌糸〔G. A. White and R. M. Krupka（1965）Arch. Biochim. Biphys., 110, 448頁 〕や胞子〔舟木ら（1987）日本栄養食糧学会誌, 40, 47頁〕、アエロバクター アエロゲネス（Aerobacter aerogenes）〔W. A. Volk and J. L. Larssen（1963）Biochim. Biophys. Acta., 67, 576頁〕或いはアクレモニウム エスピー（Acremonium sp.）HI-25〔S. Murao et al.（1992）Biosci. Biotechnol. Biochem., 56, 847頁〕由来の報告がある。
【０００５】
これらのＡＳＯは食品分野や臨床検査分野に広く使用されている。食品分野としては、例えばアスコルビン酸と併用するなどして食品中の脱酸素等や水産練り製品などの品質改良に使用される。
【０００６】
また臨床検査分野としては、例えばパーオキシダーゼを利用した過酸化水素と色原体との共役呈色反応を利用する分野において、その呈色反応を強力に妨害するアスコルビン酸の影響回避のために用いられる。通常の血清アスコルビン酸の濃度は１mg/dl以下で有り余り問題とはならないが、例えば尿中アスコルビン酸濃度は高い値となる。また、点滴補液などで大量のアスコルビン酸を投与するときなどは血中濃度も上昇し、共存するアスコルビン酸の影響は非常に大きい。
【０００７】
アスコルビン酸の影響を除去するためには、▲１▼アルカリ処理、▲２▼銅イオンや鉄イオンによる処理、▲３▼過ヨウ素酸による処理、▲４▼ＡＳＯによる処理が行われるが、通常は▲４▼のＡＳＯを臨床検査用試薬に共存させることによって解決している。
【０００８】
更に、上記記載のＡＳＯ以外で、アスコルビン酸に作用する酵素として、Physarum polycephalum（モジホコリカビ）から得られ、アスコルビン酸に作用して過酸化水素を生成する作用を有する酵素も知られている〔Plant physiology, 30, 58頁(1955)〕。しかしながら、本酵素については詳細な性質については検討されていない。
【０００９】
また、最近になって、トリコデルマ（Trichoderma）属又はモルティエレラ（Mortierella）属由来で上記と同様の性質、即ちアスコルビン酸に作用して過酸化水素を生成する作用を有するアスコルビン酸酸化酵素も報告されている（特開平6-209770）。
【００１０】
これらのアスコルビン酸に作用する酵素のうちで、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と水を生じる反応を触媒する上記の植物由来のＡＳＯ遺伝子はクローニングされている〔J. Ohkawa et. al.,Proc. Natl. Acid. Sci. USA, 86, 1239(1989)〕。
【００１１】
しかし微生物由来のＡＳＯあるいはＬ−アスコルビン酸に作用し、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生じる反応を触媒するＡＳＯＤの遺伝子に関する報告はなされていない。
【００１２】
【発明が解決しようとする課題】
最近、臨床検査用測定試薬の多くが、従来の凍結乾燥品から液状品へとかわりつつある。液状品の品質補償期間は、10℃で１年間と言われているが、液状の測定試薬に配合される各種酵素の安定性の良否が、品質決定の第一要因であり、上記した植物及び微生物由来のＡＳＯは、この液状測定試薬への適用という点では、安定性に問題があった。
【００１３】
本発明の目的は、安定性に優れた新規なアスコルビン酸酸化酵素を提供することにある。また、当該ＡＳＯＤの製造法及びそれを含有してなる臨床検査組成物、食品添加物、食品或いは臨床分野における試薬組成物を提供するものである。また、本発明のＡＳＯＤは、植物及び微生物由来のＡＳＯに比べ極めて優れた保存安定性を有していることが特徴であり、液状測定試薬への配合に非常に有効である。
【００１４】
また、モジホコリカビ由来やトリコデルマ属又はモルティエレラ属由来の、アスコルビン酸に作用してＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素は、その溶液中での安定性の点において満足できるものではなく、従来の課題を解決するにはほど遠いものである。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、新規なアスコルビン酸酸化酵素を得るために広く自然界にその給源を求め、特に各種微生物起源の新規なアスコルビン酸酸化酵素につき鋭意研究を重ねてきた。その過程で新たに土壌から単離したユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株を培養することによって従来のＡＳＯとは異なり、アスコルビン酸に作用してＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒し、その安定性が著しく良好な酵素を産生することを見い出すと共に、この新規なＡＳＯＤを工業的に製造する方法を確立し、ＡＳＯＤを単離し、精製し、その性質等の解明に成功し、更に当該酵素を遺伝子工学的手法により大量生産する方法をも確立した。
【００１６】
即ち、ユウペニシリウム属由来の染色体ＤＮＡよりＡＳＯＤをコードする遺伝子をクローニングし、当該遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能をコードするＤＮＡ配列を有するプラスミドを得、当該プラスミドを有する形質転換体を創製し、当該形質転換体を培養することによってＡＳＯＤを製造する方法を確立した。
【００１７】
更にまた、当該酵素はその安定性において非常に優れた性質を持っている為、当該ＡＳＯＤの液状試薬への利用等の応用面について鋭意検討し、本発明を完成した。
【００１８】
本発明のＡＳＯＤの触媒するアスコルビン酸の酸化反応は式１で示され、これまで示されている従来の植物由来のＡＳＯの反応とは区別され、モジホコリカビ由来やトリコデルマ属又はモルティエレラ属由来の酵素と同じ反応を触媒する。
【００１９】
【式１】
本発明の第１は、Ｌ−アスコルビン酸を基質とし、Ｌ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒し、尚かつ安定性に優れた新規なＡＳＯＤを提供する。
【００２１】
本発明の第２は、上記のＡＳＯＤの製造法を提供する。
本発明の第３は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子を提供する。
本発明の第４は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子及び当該遺伝子の発現を促進するＤＮＡ配列を含んでなる組み換え体ＤＮＡを有する形質転換体を提供する。
本発明の第５は、上記ＡＳＯＤをコードする遺伝子及び当該遺伝子の発現を促進するＤＮＡ配列を含んでなる組み換え体ＤＮＡを有する形質転換体を培養し、培養物よりＡＳＯＤを採取することを特徴とするＡＳＯＤの製造法を提供する。
本発明の第６は上記のＡＳＯＤを含有してなる試薬組成物を提供する。
本発明の第７は上記のＡＳＯＤを含有してなる食品添加物を提供する。
本発明の第８は上記のＡＳＯＤを含有してなるＬ−アスコルビン酸測定用試薬組成物を提供する。
【００２２】
即ち、本発明は、Ｌ−アスコルビン酸１分子と分子状酸素１分子からＬ−デヒドロアスコルビン酸１分子と過酸化水素１分子を生成する反応を触媒し、Ｌ−アスコルビン酸に作用し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的には作用せず、至適pHが約６付近にあり、37℃、16時間の処理で約pH３〜８の範囲で安定であり、至適温度が約37℃付近にあり、pH6.8、16時間の処理で約50℃迄安定であり、37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、アジ化ナトリウムで実質的に阻害されない性質を有する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２３】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株より得ることができ、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応を触媒する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２４】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株より得ることができ、Ｌ−アスコルビン酸に作用しＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生成する反応を触媒し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的には作用せず、至適pHが約６付近にあり、37℃、16時間の処理で約pH３〜８の範囲で安定であり、至適温度が約37℃付近にあり、pH6.8、16時間の処理で約50℃迄安定であり、37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、アジ化ナトリウムで実質的に阻害されない性質を有する新規なアスコルビン酸酸化酵素。
【００２５】
ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株を培養し、アスコルビン酸酸化酵素を生産せしめ、これを採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００２６】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸配列をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００２７】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を含むアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００２８】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、そのＮ末端アミノ酸配列が配列番号：１で示されるアスコルビン酸酸化酵素をコードする遺伝子と、当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００２９】
図面の図６の制限酵素地図において矢印で示した部分に含まれるＤＮＡ断片であり、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸配列を含むアスコルビン酸酸化酵素をコードする遺伝子と、当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３０】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００３１】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子。
【００３２】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１で示されるＮ末端アミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３３】
図面の図７の制限酵素地図に示されるｃＤＮＡ断片で、配列番号：１、配列番号：２、配列番号：３及び配列番号：４で示されるアミノ酸をコードする塩基配列を有するアスコルビン酸酸化酵素遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する形質転換体を培養し、当該培養物よりアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
【００３４】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を配合してなる試薬組成物。
【００３５】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、ユウペニシリウム（Eupenicillium）属由来のアスコルビン酸酸化酵素を含有してなる試薬組成物。
【００３６】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を含有して成る食品用添加剤。
【００３７】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、ユウペニシリウム（Eupenicillium）属由来のアスコルビン酸酸化酵素を含有してなる食品用添加剤。
【００３８】
37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒するアスコルビン酸酸化酵素を含有してなるＬ−アスコルビン酸測定用試薬組成物。
【００３９】
本発明はこれらを提供するものである。次いでこれらの発明について詳細に説明する。
【００４０】
本発明者らは、新規なアスコルビン酸酸化酵素を生産する微生物を得るため、広く自然界に給源を求め土壌から分離した菌株が新規なアスコルビン酸酸化酵素を生産することを見いだした。
【００４１】
本発明者らが分離した菌株について、その菌学的性質を、K. B. Raper & C. Thomの"A manual of the Penicillia"に基づいて同定した結果、本菌はユウペニシリウム ブレフェルディアム（Eupenicillium brefeldianum）と同定され、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315と命名した。
【００４２】
以下、本菌の菌学的性質を記載する。
▲１▼生育
麦芽寒天上での生育は比較的速く、１〜２mm菌高の白色羊毛状菌糸は粗い。やがて菌糸は肉眼的に薄れ、基質表面に密着して多量の子嚢果を形成する。集落は平坦で黄色〜黄土色となる。集落裏面は淡褐色、Czapek寒天培地での生育は遅く、集落は放射状に発展し、表面は白色菌叢が密で、やがてフエルト状となる。集落の周辺は波状で、茶褐色の子嚢が密集する。集落裏面は濃褐色で発育根状菌糸が明確となり、40℃でさらにこれが顕著となる。MY40寒天培地では菌叢は重厚でジュウタン状、裏面は濃褐色、オートミール寒天培地では粉状に多量の子嚢果が形成し、集落の周辺は赤色を呈する。
【００４３】
尚、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315は、通商産業省工業技術院生命工学工業技術研究所にFERM BP-5053として寄託されている。
【００４６】
本菌株以外のユウペニシリウム属に属する菌株について、検討した結果、その他のユウペニシリウムに属する菌株も本発明のＡＳＯＤを生産することを確認した。その他のユウペニシリウム属に属する菌株としては例えば、Eupenicillium javanicum IFO-31735、Eupenicillium alutaceum IFO-31728、Eupenicillium erubescens IFO-31734等が挙げられる。
【００４７】
【表１】
特に、本発明者らが土壌から新たにスクリーニングしたユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315から著量の本発明のＡＳＯＤが生産される。
【００４９】
ユウペニシリウム属に属する菌株を用いて新規なＡＳＯＤを製造するための菌株の培養法としては、液体培養、固体培養のいずれでも良いが、より好ましくは液体培養が利用できる。液体培養法としては例えば、以下のようにして行うことができる。
【００５０】
使用できる培地としては、新規なＡＳＯＤを生産する微生物が生育可能な培地であれば、如何なるものでも良い。例えば、グルコース、シュクロース、グリセリン、デキストリン、糖蜜、有機酸等の炭素源、更に硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、或いは、ペプトン、酵母エキス、コーンスティープリカー、カゼイン加水分解物、肉エキス等の窒素源、更にカリウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩、リン酸塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩等の無機塩を添加したものを用いることができる。
【００５１】
培地のpHは例えば約３〜９、好ましくは約5.5〜6.5程度に調製し、培養温度は通常約10〜50℃、好ましくは約25〜37℃程度で、１〜20日間、好ましくは３〜12日間程度好気的条件下で培養する。例えば振盪培養法、ジャーファーメンターによる好気的深部培養法が利用できる。
【００５２】
また、固体培養法としては例えば、以下のように行うことができる。固体培養の培地としては、新規なＡＳＯＤを生産する微生物が生育可能な培地であればいかなるものでも良い。例えば、小麦ふすま、米、大豆、とうもろこし、稲わら、麦わら等を単独或いは２種以上混合して使用することができる。また、カリウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩、リン酸塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩等の無機塩類を添加することができる。
【００５３】
培地の水分含量は例えば50〜300％、好ましくは80〜120％程度に調整し、培養温度は通常10〜50℃、好ましくは25〜40℃で１〜30日間、好ましくは３〜12日間程度培養する
【００５４】
得られた培養物より菌体を除去した培養ろ液又は固体培養抽出液からＡＳＯＤを通常の手段で単離し、本発明の新規なＡＳＯＤを得ことができる。
【００５５】
例えば培養ろ液から、ＡＳＯＤを単離精製するには、硫安塩析、アルコール沈降、イオン交換樹脂を用いるクロマトグラフィー、ゲルろ過法、ヒドロキシルアパタイト吸着樹脂を用いるクロマトグラフィー等を用い常法により処理して、精製ＡＳＯＤを得ることができる。
【００５６】
更に、より具体的に本発明を詳述する。即ち、新規なＡＳＯＤを生産する菌株としてユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315を使用し、液体培地で培養して得られた精製した新規なＡＳＯＤの諸性質について以下に詳述する。
【００５７】
(1) 至適pH：pH3.0〜8.0の範囲でブリトン−ロビンソン（Britton-Robinson's ）緩衝液を使用し、30℃にて10分間反応させた場合の相対活性の結果を図１に示す。本酵素は、約pH６付近に至適pHを有する。
【００５８】
(2) 至適温度：本酵素を100mM リン酸カリウム緩衝液（pH5.5）中で種々の温度で10分間反応させた場合の相対活性の結果を図２に示す。本酵素は、pH5.5において約37℃付近に至適温度を有する。
【００５９】
(3) pH安定性：本酵素を種々のpHのブリトン−ロビンソン緩衝液中で37℃、16時間インキュベートした後の残存活性を測定した結果を図３に示す。本酵素は上記条件下で約pH３〜８の範囲で安定である。
【００６０】
(4) 温度安定性：本酵素を100mM PIPES緩衝液（pH6.8）中で種々の温度で16時間インキュベートした後の残存相対活性を図４に示す。本酵素は、上記条件下で約50℃以下で安定である。
【００６１】
(5) 分子量：約135,000（Sephadex G-200によるゲルろ過法）
【００６２】
(6) 阻害剤：各種阻害剤と共に37℃、２時間インキュベートした後の残存相対活性を表２に示す。本酵素は、アジ化ナトリウム、ジチオスレイトール、キレート剤のジエチルジチオカルバメートで実質的に阻害されずヨード酢酸により阻害される。
【００６３】
【表２】
(7) 金属イオンの影響：各種金属イオンの活性に及ぼす影響を表３に示す。
【００６５】
【表３】
(8) Ｌ−アスコルビン酸に対するミハエリス定数（Km値）：4.9×10-4Ｍ（分光光度法）
【００６７】
(9) 基質特異性：Ｌ−アスコルビン酸を特異的に酸化し、Ｄ−アラボアスコルビン酸には実質的に作用せず、Ｌ−アスコルビン酸リン酸エステル−マグネシウム塩、Ｌ−アスコルビン酸−６−パルミテート、Ｌ−アスコルビン酸−２，６−ジパルミテート等のアスコルビン酸誘導体にも実質的に作用しない。又、ヒドロキノン、ピロガロールは基質としない。
【００６８】
(10)保存安定性：50mM PIPES緩衝液（pH6.5）［0.02% デヒドロ酢酸、１mM EDT A含有］にＡＳＯＤを溶解し、37℃で保存し、残存相対活性を測定した。
【００６９】
対照として、アクレモニウム（Acremonium）sp. HI-25由来（旭化成工業製）、キュウリ由来（天野製薬製）のＡＳＯを使用した。その結果を図５に示す。
【００７０】
その結果、本発明のＡＳＯＤを上記条件下で保存した場合の保存安定性は極めて良好で、例えば上記条件下での１ヶ月における残存活性は少なくとも 50％であり、対照として用いた他のＡＳＯと比べ際だった特徴を有している。
【００７１】
例えば、アクレモニウム sp. HI-25由来のＡＳＯは１ヶ月後の残存活性は僅か５％程度とほとんど失活している。また、キュウリ由来のＡＳＯは数日でほとんど活性を示さないほどに失活している。
【００７２】
このように本願発明のＡＳＯＤの溶液での安定性は、特別な安定化剤を加えることなく、単独で極めて優れた安定性を有している。
【００７３】
以上の結果をまとめ、更に既知酵素（アクレモニウム エスピー HI-25由来、ミロセシウム ベルカリアの胞子由来、特開平6-209770記載の酵素、キュウリ由来）と比較した結果を表４に示す。
【００７４】
【表４】
尚、ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315以外の菌株からもＡＳＯＤが精製できる。得られたこれらのＡＳＯＤについても上記と同様にしてその性質を測定した結果、例えばEupenicillium javanicum IFO 31735、Eupenicillium alutaceum IFO 31728、Eupenicillium erubescens IFO 31734から上述と同様に培養して得られた酵素は、至適pH、至適温度、pH安定性、温度安定性、分子量、阻害剤、金属イオンの影響、Ｌ−アスコルビン酸に対するミハエリス定数（Km値）、基質特異性、保存安定性などの点で同様の性質を有していた。
【００７６】
更に本発明のＡＳＯＤをコードする遺伝子について詳述する。目的とする遺伝子をクローニングするためには、部分アミノ酸配列により推定したオリゴヌクレオチドをプローブとして用いるハイブリダイゼーションスクリーニングや抗体を用いたイムノスクリーニングなどの通常用いられてる方法が使用できる。
【００７７】
あるいはまた、精製した蛋白質、或いは酵素法・化学法による蛋白質の切断によって生じた内部ペプチドのＮ末端アミノ酸配列のうち、異なる２ケ所のアミノ酸配列をもとにオリゴヌクレオチドをデザインし、合成する。これらオリゴヌクレオチドをセンスプライマー、アンチセンスプライマーとしたＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ）法により、ＤＮＡ断片を得ることができる。合成オリゴヌクレオチドとしては混合物或いはイノシンを含んだものも使用できる［Ｓ．Ｙａｍａｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ，Ｇｅｎｅ，１０３巻，６１頁（１９９１）］。得られたＤＮＡ断片をプローブとして、例えばユウペニシリウム ブレフェルディアムＡＰＣ−９３１５のゲノムＤＮＡライブラリーからＡＳＯＤ遺伝子をＤＮＡ断片として得ることができる。
【００７８】
同様にしてユウペニシリウム属の他の菌株からもＡＳＯＤ遺伝子を含むＤＮＡ断片を得ることができる。ユウペニシリウム属の他の菌株としては例えば表１に挙げた菌株が挙げられる。
【００７９】
更に上記遺伝子をクローニングした後、イントロンを含まないｃＤＮＡを、例えばＰＣＲ法により得ることができる。ＰＣＲのプライマーには例えば、ＡＳＯＤ遺伝子のコード領域の開始コドンの直上流と終止コドンの直下流の塩基配列をもとにデザインし、合成したオリゴヌクレオチドを用いることができる。これらのイントロンの有無、配列及び挿入位置は、遺伝子発現系の諸要素、例えば宿主細胞の種類等に応じて当業者か容易に選択し得るものである。
【００８０】
また、ＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有するプラスミドは、例えば上記ＤＮＡ断片を当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含むプラスミドに連結することにより得ることができる。ここで、当該遺伝子の発現を促進する機能をコードするＤＮＡ配列は、使用する宿主微生物内で機能するものであれば如何なるものでも使用できる。
【００８１】
本発明の上記プラスミドを有する形質転換体は、例えば当該プラスミドを糸状菌、酵母などの宿主微生物へ導入することにより、菌体内及び菌体外にＡＳＯＤを生産する形質転換体として得ることができる。宿主微生物としては、組み換えＡＳＯＤを生産する能力を有するものであればいずれでも良いが、例えばユウペニシリウム属、ペニシリウム属、アスペルギルス属、サッカロマイセス属、大腸菌、バチルス属、動物細胞などが挙げられる。
【００８２】
本発明のＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する上記形質転換体の培養及び培養物からのＡＳＯＤの製造法としては、例えばユウペニシリウム属からのＡＳＯＤの製造法と同一の方法が適用できる。
【００８３】
即ち、本発明によりＡＳＯＤをコードする遺伝子と当該遺伝子の発現を促進する機能を有するＤＮＡ配列を含んでなる組換えＤＮＡを有する微生物を培養することにより培養物よりＡＳＯＤを採取することが可能となる。
【００８４】
本発明において臨床検査用試薬組成物とはパーオキシダーゼを用いた過酸化水素と色原体との共役反応を用いて生体成分の測定を行う臨床検査用試薬組成物をいう。当該試薬組成物において、本発明のＡＳＯＤを用い、試料中のＬ−アスコルビン酸の影響を回避することができる。本発明のＡＳＯＤは各種の臨床検査用試薬に適用できるが、特に本発明のＡＳＯＤが至適pHが中性付近に有することより、中性付近で多く行われる各種生体成分の測定に好適に利用できる。
【００８５】
例えばコレステロール、中性脂肪、遊離脂肪酸、リン脂質、尿酸、クレアチニン、無機リン、シアル酸の測定など、パーオキシダーゼの存在下で過酸化水素と色原体との酸化縮合反応を利用する測定系にはすべてに適用できる。その場合、本発明のＡＳＯＤの使用量は対象とする試料中のＬ−アスコルビン酸の濃度及び測定系のスケールにもよるが、通常0.1〜100単位／assay使用される。例えば、0.4ml系での反応では0.5〜10単位／assay、好ましくは１〜５単位／assayが使用される。
【００８６】
更に、本発明のＡＳＯＤは保存安定性の項で示したように既存のＡＳＯと比較して溶液の安定性の点で非常に優れている。よって、臨床検査用試薬が液状化試薬として使用される場合には安定性の面で非常に有利である。即ち、従来のＡＳＯは安定性が劣っているため、試薬の保存期間中の失活のため、大過剰の添加が必要となるために、結果としてコストが高くつき、さらには夾雑する物質の影響を受けやすくなるという欠点を有することとなる。
【００８７】
また、上記臨床検査用測定試薬は、保存中の腐敗防止のためアジ化ナトリウムを使用することが多い。植物由来或いは、Acremonium sp. HI-25由来のＡＳＯはアジ化ナトリウムにより活性が阻害されるため、防腐剤の使用法に工夫を必要とする。
【００８８】
本発明の新規ＡＳＯＤは、アジ化ナトリウムによる活性阻害は認められず、この点においても優位性を示す。
【００８９】
本発明のＡＳＯＤの触媒する反応は過酸化水素を生ずるが、これは、例えばパーオキシダーゼ存在下、4-アミノアンチピリン又はその誘導体或いはフェノール系化合物又はN,N-ジ置換アニリン系化合物の縮合反応により、或いはカタラーゼを共存させることにより消去することができる。
【００９０】
現在多くの臨床検査試薬は、例えば２試薬系の第１試薬で内在生の妨害物質消去のため、過酸化水素の消去系を備えており、ＡＳＯＤの酸化反応により生ずる過酸化水素は各種生体成分の測定値に影響はない。
【００９１】
このように、本発明の新規なＡＳＯＤは従来のＡＳＯと比較して、保存安定性が非常に優れていること、アジ化ナトリウムによって阻害されないこと、中性付近に至適pHを有していること等より臨床検査用試薬への添加量を少なくすることができ、その結果としてコストの削減や夾雑物質の影響を回避することも容易となる。
【００９２】
更に従来のＡＳＯは４−アミノアンチピリンとフェノールに代表される水素供与体の縮合反応の触媒能を有しており、生体成分を酸化酵素／パーオキシダーゼ系で測定する際、試薬ブランクが上昇するという問題があった。
【００９３】
本発明のＡＳＯＤは既存の植物、或いは微生物由来のＡＳＯと比較してこの試薬ブランクが低値を示すことにより、生体成分の酸化酵素／パーオキシダーゼ系での測定により好適に利用できる。
【００９４】
また、本発明のＡＳＯＤは食品用にも使用される。例えば、食品にＬ−アスコルビン酸が十分に含まれる場合には、本発明のＡＳＯＤを添加する。また、十分に含まれない又は含まれない食品に対してはＬ−アスコルビン酸若しくはその塩などと本発明のＡＳＯＤを添加する。このことによってＡＳＯＤによってＬ−アスコルビン酸が酸化され食品中の酸素が消費され、食品の劣化を防ぐことができる。
【００９５】
また、同じように食品中にＬ−アスコルビン酸とＡＳＯＤを共存させることにより食品中にデヒドロアスコルビン酸を生成させ、魚畜肉製品、水産練り製品の品質を高めることができる。即ち、これらの製品の品質を決定する重要な因子である粘着性やあし（のび）と呼ばれる弾力性を蛋白質中のＳＨ基をＳ−Ｓ結合させることにより改善することができる。
【００９６】
上記のような食品に対する使用量としてはｇ当たり0.001単位以上であり、好ましくは0.01単位が使用されうる。また、食品中のＬ−アスコルビン酸が不足する場合にはＬ−アスコルビン酸又はその塩を添加することもできその場合には食品に対して0.01〜1.0重量％程度が添加される。
【００９７】
上記のように食品に対して本発明のＡＳＯＤを使用すると食品中に過酸化水素が生成するが、この過酸化水素は加熱工程を含む食品製造においては分解され、必要に応じてカタラーゼ等を用いて分解することも可能であり、食品安全面でも使用に問題はない。
【００９８】
本発明のＡＳＯＤは、従来のＡＳＯと異なり、Ｌ−アスコルビン酸に作用してＬ−アスコルビン酸１モルから過酸化水素１モルを生成する反応を触媒する。この性質を利用して生成する過酸化水素を測定することにより食品中或いは生体成分中のＬ−アスコルビン酸濃度を測定することができる。
【００９９】
過酸化水素の測定にはパーオキシダーゼ存在下、４−アミノアンチピリンとフェノール等の水素供与体との縮合反応の利用、又はメタノール存在下、カタラーゼを作用させ生成するホルムアルデヒドをホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼを用いて測定する方法、過酸化水素電極を用いて測定する方法等が挙げられる。
【０１００】
又、アスコルビン酸の還元力を利用したアスコルビン酸測定系において既存のＡＳＯと同様にブランク側の反応に利用することもできる。
【０１０１】
尚、本発明においてＡＳＯＤ活性の測定方法は以下に示す通りである。
10mM Na2HPO4 0.5ml，１mM EDTAを含む0.2M KH2PO4 0.45ml、試料 0.1mlを混合し、30℃，５分間プレインキュベートする。１mM EDTAを含む0.001N HClにＬ−アスコルビン酸を10mMになるように溶解した基質 0.05mlを添加し、30℃，10分間インキュベーションを行った。0.2Ｎ HCl 3.0mlの添加で反応を停止し、245nmにおける吸光度の減少を測定する。
【０１０２】
ＡＳＯＤの１単位は、１分間にＬ−アスコルビン酸を１μmol分解する酵素量である。
【０１０３】
以下、実施例をあげて本発明を詳細に説明する。実施例に使用したプラスミドなどは一例として挙げたものであり、本発明に使用できるものであればこれらに限定されるものではない。また本発明は以下の実施例に限定されるものではなく、本発明の技術分野における通常の変更をすることができる。
【０１０４】
【実施例】
実施例１ ユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315 の培養
グリセロール ２％（W/V）、ポリペプトン １％（W/V）、魚肉エキス（和光純薬工業社製）２％（W/V）、K2HPO4 0.2％（W/V）、MgSO4・７H2O 0.01％（W/V）、アデカノール（旭電化工業社製）0.001％（W/V）、pH6.0よりなる培地20Ｌを30Ｌ容のジャーファメンターに仕込み、121℃で30分間殺菌した。他方、同組成培地を用い、500ml容坂口フラスコで37℃，３日間予め振盪培養しておいたユウペニシリウム ブレフェルディアム APC-9315（FERM BP-5053）の培養液100mlを前記培地に無菌的に植菌し、37℃で６日間通気攪拌培養（200rpm、ジャー培養の通気量：１vvm）した。培養ろ液のＡＳＯＤ活性は0.15unit／mlであった。
【０１０５】
実施例２ ＡＳＯＤの精製
実施例１で得られた培養物を東洋ろ紙 No.２を用いてろ別し、培養ろ液12Ｌを得た。限外ろ過のモジュールを用いて１Ｌ迄濃縮し、この濃縮液に1.5倍量の冷エタノールを添加し、冷蔵室で一晩攪拌した。遠心分離により、沈殿を回収し、10mM酢酸緩衝液（pH5.0）で溶解した。
【０１０６】
予め、同緩衝液で平衡化させたDEAE-Sepharoseに沈殿溶解液を供し、同緩衝液で洗浄して、DEAE-Sepharose未吸着画分を回収した。この画分を予め20mM酢酸緩衝液（pH4.4）で平衡化させたS-Sepharoseに供し、同緩衝液で十分洗浄した後、０〜200mM食塩のリニアグラジェントにて溶出させる。活性画分を回収後、限外ろ過のモジュールを用いて脱塩、濃縮する。更にこの濃縮液を同緩衝液にて平衡化させたSephacryl S-200に供し、ゲルろ過を行う。溶出してくる活性画分を回収後、限外ろ過のモジュールにて脱塩、濃縮し、凍結乾燥により粉末を得た。得られたＡＳＯＤ粉末の比活性は1,495unit／mgタンパク質であった。
【０１０７】
実施例３ 酵素反応生成物の同定と化学量論
20mM酢酸緩衝液（pH5.0）中に実施例２で得られたＡＳＯＤ標品10UとＬ−アスコルビン酸（終濃度０−50mM）を混合し、攪拌しながら充分に反応させる。得られた反応液50μlと４−アミノアンチピリン（終濃度３mM）、フェノール（同1.1mM）、パーオキシダーゼ（西洋ワサビ由来：同24U）、トリトンＸ−100（同0.02％）を含む100mMリン酸緩衝液（pH7.0）2.95mlを混合し、37℃にて反応させたところ、501μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、516μmoleの過酸化水素の生成が認められた。
【０１０８】
又、メタノール存在下、生成する過酸化水素にカタラーゼを作用させ、生じたホルムアルデヒドをホルムアルデヒドデヒドロゲナーゼで定量し、Ｌ−アスコルビン酸消費量と過酸化水素生成量に定量性が認められた。
【０１０９】
更に、同反応液中の生成物をHPLC法、ジニトロフェニルヒドロラジン比色法、ｏ−フェニレンジアミン蛍光法によりデヒドロアスコルビン酸と同定した。蛍光法による測定の結果、61.0μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、生成するデヒドロアスコルビン酸は60.0μmoleであった。
【０１１０】
又、反応中の酸素消費量を酸素電極にて測定したところ10μmoleのＬ−アスコルビン酸の消費に伴い、9.5μmoleの酸素が消費された。
【０１１１】
以上の結果より、本発明のＡＳＯＤはＬ−アスコルビン酸１モルを１モルの酸素を水素受容体として酸化し、１モルのデヒドロアスコルビン酸と１モルの過酸化水素を生成する反応を触媒することが明らかとなった。
【０１１２】
実施例４ Eupenicillium javanicum IFO 31735 、 Eupenicillium alutaceum IFO 31728 及び Eupenicillium erubescens IFO 31734 の培養
これらの菌株を実施例１に従って培養し、更に実施例２に従って精製して得られたＡＳＯＤの比活性は各々1,356unit／mgタンパク質、1,631unit／mgタンパク質及び1,567unit／mgタンパク質であり、これらの酵素は何れもＬ−アスコルビン酸１モルを１モルの酸素を水素受容体として酸化し、１モルのデヒドロアスコルビン酸と１モルの過酸化水素を生成する反応を触媒する。
【０１１３】
実施例５ ＡＳＯＤ遺伝子のクローニング
(1) 菌体の取得
グリセロール−ポリペプトン培地［２％グリセロール，３％ポリペプトン，0.2% KH2PO4,0.01% MgSO4・7H2O,0.001% アデカノール （pH6.0）］にユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315（FERM BPー5053）を接種し、37℃において48時間通気攪拌培養し、培養物をろ過して菌体を得た。
【０１１４】
(2) 染色体ＤＮＡの調製
得られた湿菌体４ｇを液体窒素中で凍結し、そのまま、液体窒素及び海砂を入れた乳鉢に移し、乳棒で微細な粉末とした。
【０１１５】
得られた粉末を、３mgプロテイナーゼＫを含む６mlのLysis緩衝液〔150mM EDTA・2Na，50mM トリス−塩酸緩衝液（pH8.0），１％ザルコシン〕に懸濁後、65℃，５分間処理し、遠心分離により上清を得た。
【０１１６】
これに30μlのRNase A（10mg/ml）を加え、37℃、20分処理してＲＮＡを分解した後、１倍量のフェノール、１倍量のフェノール：クロロホルム（１：１）及び１倍量のクロロホルム：イソアミルアルコール（24：１）でそれぞれ１回ずつ抽出した後、エタノール沈降により得た沈殿を２mlのＴＥ〔150mM EDTA・2Na，50mM トリス−塩酸緩衝液（pH8.0）〕に溶解した。更に2.2mlの20％ポリエチレングリコール8000-2.5M NaClを加え、混合後、生じた沈殿物を遠心により集め、0.2mgの染色体ＤＮＡを得、ＴＥに溶解した。
【０１１７】
(3) ｍＲＮＡの調製
シグイン（Chigwin）等の方法〔Biochemistry、18巻、5294頁（1979）〕に従って全ＲＮＡを得た。即ち(2)で得た粉末の半分量を20mlのＧＴＣ液（６Ｍグアニジンチオイソシアネイト、５mMクエン酸ナトリウム、8.5％ザルコシン、0.1M β−メルカプトエタノールを含有）に懸濁し、10,000×ｇ、15分の遠心分離により、菌体破片及び海砂を除いた。
【０１１８】
得られた上清を、超遠心分離用チューブ中、5.7Ｍの塩化セシウム溶液上に重層し、33,000rpm、25℃、18時間の条件で超遠心分離して、沈澱物を得た。この沈澱物を水に溶解し、0.025倍量の１Ｎ−酢酸及び0.5倍量の冷エタノールを加え、混合後、生じた沈澱物を遠心により集め、水に溶解し、不純物を遠心により除去して全ＲＮＡを得た（約10mg）。この内の４mgをｍＲＮＡを選択するために、オリゴ（dT）セルロース−スパン−カラムキット（ファルマシア社製）に供し、ｍＲＮＡ画分（80μｇ）を得た。
【０１１９】
（４）遺伝子ライブラリーの作成
（２）で得られた全ＤＮＡをＢｇｌＩＩで分解する。分解されたＤＮＡを子牛の腸由来のアルカリフォスファターゼ（ベーリンガー社製）を用いて脱リン酸し、Ｆｒｉｃｓｈａｕｆらの方法〔Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１７０巻、８２７−８４２頁（１９８７）〕に従って、λＤＡＳＨＩＩ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）のＢａｍ ＨＩサイトにライゲートした。
【０１２０】
ライゲーション混合物はインビトロでパッケージし、Ｅ．Ｃｏｌｉ ＸＬ１−Ｂｌｕｅ ＭＲＡ（Ｐ２）（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）にトランスフェクションした。その結果、３．８×１０５のインデペンデントクローンよりなるライブラリーが作成できた。
【０１２１】
(5) ＡＳＯＤの部分アミノ酸配列の決定
実施例２で得られた精製ＡＳＯＤタンパク質をエンドグリコシダーゼＨ処理し糖鎖を除去した。糖鎖除去ＡＳＯＤをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動に供した後、ＰＶＤＦ（Polyvinylidene difluoride）膜（MILLIPORE社製）に電気的にブロッティングした。クマシーブリリアントブルー R-250で染色されたＡＳＯＤのバンドを切り出し、エドマン法によるアミノ酸配列自動分析装置（アプライド バイオシステムズ社製）を用いてＮ末端からのアミノ酸配列（配列番号：１）を決定した。
【０１２２】
次いで、糖鎖除去ＡＳＯＤを公知の方法〔タンパク質 一次構造（新生化学実験講座 第一巻）、92頁、日本生化学会編 （1990）〕に従って、Ｎ−ヒドロキシルアミンにより分解した。ペプチド断片混合液を上述したと同様の方法でＰＶＤＦ膜にブロッティングし、クマシーブリリアントブルー R-250で染色された一つのペプチド（ペプチドＤ）のバンドを切り出し、同様の方法でペプチドＤのＮ末端アミノ酸配列（配列番号：２）を決定した。
【０１２３】
次いで得られた糖鎖除去ＡＳＯＤ［３mg/ml,100mM リン酸緩衝液（pH8.0）］にリジルエンドペプチターゼ(Takara社製）を添加し、37℃，18時間反応させて分解した。分解物をピュアシル（Puresil）C18カラム（商品名：Waters Chromatography社製）を用いて逆相ＨＰＬＣ法により精製した。ペプチド流量は1.0ml/分，0.05%トリフルオロ酢酸中で０〜80％アセトニトリルの直線勾配により溶出した。
【０１２４】
約34分のリテンション時間に溶出するペプチド（ペプチドL-34）と約39分に溶出するペプチド（ペプチドL-39）を分離し、エドマン法によりそれぞれのＮ末端からのアミノ酸配列（配列番号：３及び配列番号：４）を決定した。
【０１２５】
(6) ＰＣＲ法に用いたプライマーＤＮＡの合成
(5)で決定されたＡＳＯＤタンパク質のＮ末端部位のアミノ酸配列の３番目のプロリンから10番目のグリシンに対応する塩基配列を予想し、オリゴヌクレオチドを合成した。このオリゴヌクレオチドをＰＣＲのセンスプライマーとした。センスプライマーの配列を以下に示す。
【０１２６】
同様にして、(5)で決定されたペプチドＤのＮ末端からのアミノ酸配列の６番目のプロリンから13番目のアスパラギン酸に対応する塩基配列を予想し、オリゴヌクレオチドを合成した。このオロゴヌクレオチドをＰＣＲのアンチセンスプライマーとした。アンチセンスプライマーの配列を以下に示す。
【０１２８】
合成したＤＮＡはそれぞれ20μＭの濃度になるようにＴＥに溶解した。
【０１３０】
(7) ＡＳＯＤ遺伝子を含有する部分ＤＮＡ断片の取得
ＡＳＯＤを含む特定のＤＮＡ領域を、ＰＣＲ法によって、単離増幅した〔Saiki, R. F. et al., Science、230巻、1350−1354頁（1985）〕、Mullia, K. B. 及びFaloona,F. A., Methods in Enzymology、155巻、335−350頁（1987）〕。
【０１３１】
(a) ＰＣＲ法によるＤＮＡ断片の増幅
反応は、Gene AmpTM kit（パーキンエルマージャパン社製）を用い、同社のＤＮＡ Thermal Cycler（ＤＮＡ増幅装置）により行った。反応溶液の組成は以下の通りである。
【０１３２】
上記の反応液100μlを混合し、ミネラルオイル（Sigma社製）100μlを加えた。次に反応液の入ったチューブをＤＮＡ Thermal Cyclerにセットし、以下の条件で反応を行った。
【０１３４】
94℃ 45秒
45℃ １分
72℃ ２分
【０１３５】
この条件下で反応を30サイクル行った後、更に72℃で５分間インキュベートした。
【０１３６】
(b) 増幅されたＤＮＡの回収
反応後、ミネラルオイルを除き、100μlのクロロホルムを加え、混合し、 15,000回転／分、２分間の遠心分離（トミー精工社製）を行い、上清を100μl回収した。このうち５μlを用い、１％アガロース電気泳動で回収されたＤＮＡのサイズと量を確認した。その結果約400bpのＤＮＡ断片が約２μg増幅されていることが判った。
【０１３７】
残りの95μlを１％低融点アガロース電気泳動にかけ、約400bpに相当するバンドを切り出し、65℃で溶かした後、１倍量のフェノールを加え混合し、遠心後、水層部分をさらにフェノール／クロロホルム及びクロロホルムで順次処理した後、水層に３Ｍ酢酸ナトリウムを0.1倍量、エタノールを２倍量添加し、−80℃で15分間置いた。次に15,000回転/分、10分間、４℃の遠心後、沈澱を20μlのＴＥに溶かした。この操作で約１μgのＤＮＡ断片が回収された。
【０１３８】
このＤＮＡ断片にＴ４ＤＮＡポリメラーゼを作用させて両末端を平滑化し、ｐＵＣ１９のＳｍａＩサイトにサブクローニングし、プラスミドｐＡＳ０１を得た。このプラスミドを２本鎖のままポリエチレングリコールにより精製し、アルカリで変性させた後、シーケナーゼシステム（ＵＳＢ社製）を用いて、デオキシヌクレオチドチェーンターミネーション法により５’−及び３’−部位の塩基配列を決定した。
【０１３９】
その結果、5'-及び3'-部位の塩基配列は部分ＡＳＯＤのＮ末端の４位〜 20位のアミノ酸配列及びペプチドＤの１位〜13位のアミノ酸配列をコードする塩基配列とそれぞれ完全に一致した。
【０１４０】
このフラグメントは全長のゲノムＤＮＡクローンを分離するための遺伝子ライブラリーのスクリーニングにおいてプローブとして使用した。
【０１４１】
(8) ＡＳＯＤ遺伝子を含有するファージの分離
(7)(b)で得られた400bpのＰＣＲによる生産物をマルチプライムＤＮＡラベリングシステム（アマシャム社製）を用いて[α-32P]dCTPでラベルし、これをプローブとしてユウペニシリウム ブレフェエルディアムAPC-9315からの7.5×104のインデペンデントファージからなる遺伝子ライブラリーからＡＳＯＤ遺伝子を有するファージをスクリーニングした。
【０１４２】
即ち、プラークをナイロン膜Hybond N+（アマシャム社製）にリフティングし、アルカリ固定した後、このフィルターと上記のラベルした400bpのＤＮＡ断片をハイブリダイズさせた。
【０１４３】
その結果、14個のプラークがプローブにハイブリダイズした。それらのプラークから分離した14個の組換え体ファージを制限酵素地図とサザンブロッティングによって分析した。
【０１４４】
これらのファージにはすべてに共通して、400bpのＰＣＲ生成物と強くハイブリダイズする18kbp BglII及び4.2kbp EcoRIの各フラグメントを有していた。
【０１４５】
(9) ＡＳＯＤ遺伝子を含有するＤＮＡ断片の塩基配列の決定
4.2kbp EcoRI断片をpUC19のEcoRIサイトにサブクローニングし、4.2kbp EcoRI断片が互いに逆方向に挿入されたプラスミドpASO3およびpASOR3を作成した。この4.2kbp EcoRI断片の制限酵素地図を図６に示す。
【０１４６】
この両プラスミドをエキソヌクレアーゼIII、なた豆のヌクレアーゼを用いていくつかの欠失プラスミドを作成し、それらのプラスミドについて、(7)(b)に記載の方法で塩基配列を決定した。決定した塩基配列から予測されるアミノ酸配列には、精製したＡＳＯＤのＮ末端から決定した20残基のアミノ酸配列、ペプチドＤの20残基のアミノ酸配列、及びペプチドL-34，L-39の各12残基のアミノ酸配列が完全に含まれていた。ここで、図６中の＊印をつけたSalI切断部位から下流のの塩基配列は配列番号：５に示すとおりであった。
【０１４７】
成熟ＡＳＯＤのＮ末端アミノ酸は＊印をつけたSalI切断部位の塩基配列がコードするValであった。この成熟ＡＳＯＤのＮ末端アミノ酸であるValの上流に、プレプロ領域と推定されるMetから始まる18アミノ酸残基が見られた。図６の矢印はこのMetからＡＳＯＤのＣ末端アミノ酸までをコードするＤＮＡ領域を示す。
【０１４８】
(10) ｃＤＮＡ断片の単離
(a) ＰＣＲのための鋳型１本鎖ｃＤＮＡの合成
(3)で得られたｍＲＮＡ（１μg）から下記の組成液20μl中で１本鎖ｃＤ
ＮＡを調製した。
【０１４９】
(b) ＰＣＲ法によるｃＤＮＡの増幅
(10)(a)で得られた１本鎖ｃＤＮＡを鋳型として、(7)(a)で述べたＰＣＲ法により増幅した。尚、センスプライマーとして、
【０１５１】
EX-1: 5'-ATT CTA GAC ATC ATG CGT TCC TAT ACT TTG-3'
【０１５２】
アンチセンスプライマーとして、
【０１５３】
B-1 : 3'-CGT TGG CTC ACA ACA ACT ATC CTA GGT G-5'
【０１５４】
の各オリゴヌクレオチドをＤＮＡ合成機を利用して合成した。これらの塩基配列は4.2kbp EcoRI断片中のＡＳＯＤ遺伝子のコード領域の開始コドンの直上流と終始コドンの直下流の塩基配列を部分的に決定し、これらの配列情報をもとにデザインした。
【０１５５】
ＰＣＲの結果、約1.0kbpのｃＤＮＡ断片が得られた。この断片をXbaI/BamHI消化後、pUC19のXbaI/BamHIサイトにサブクローニングしてpAXB1を得た。この約1.0kbpのXbaI/BamHI断片の制限酵素地図を図７に示す。ここで両端のXbaI，BamHI両サイトはｃＤＮＡのクローニングに用いたＰＣＲプライマーの塩基配列由来である。このＤＮＡ断片について(5)に従い塩基配列を決定した。開始コドンから終始コドンまでの塩基配列は、例えばEco47III部位近傍に見られたイントロンの配列以外は、ゲノム遺伝子の塩基配列と一致した。
【０１５６】
(11) ＡＳＯＤ発現カセットの構築
(10)で得たpAXB1を制限酵素XbaIおよびBamHIで処理後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、約1.0kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をpY1（特開平6-245777）のXbaI/BamHIサイトにクローニングし、pAC1を得た。（図８）
【０１５７】
実施例６ ＡＳＯＤ遺伝子の酵母サッカロマイセス セレビシエでの発現
実施例５の(11)で得られたpAC1をHindIIIで部分消化後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、ＡＳＯＤの発現カセットである約2.1kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をサッカロマイセス セレビシエの選択マーカーとなるLeu2遺伝子を有する形質転換プラスミドpL1（Biosci. Biotech. Biochem., 56, 315-319 (1992)）のHindIIIサイトに連結し、pLAC1を得た（図９）。
【０１５８】
このpLAC1を用いて、サッカロマイセス セレビシエSHY2株（ATCC 44770）を、伊藤らの方法〔J. Bacteriol.，153巻、163-168頁（1983）〕により形質転換した。得られた形質転換体をPYGal培地（２％ガラクトース、２％ポリペプトン、１％酵母エキス）50mlにて30℃、３日間振とう培養した。
【０１５９】
得られた培養上清液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はプラスミドpLAC1を有する形質転換体の場合、0.3U/mlであった。対照として選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpL1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養し、ＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６０】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行った。ウエスタンブロッティング解析には、精製ＡＳＯＤを用いてウサギで作製した抗ＡＳＯＤ抗体を用いた。その結果、pLAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６１】
実施例７ ＡＳＯＤ遺伝子のペニシリウム カマンベルチィーでの発現
ペニシリウム カマンベルチィーの選択マーカーとなるハイグロマイシンＢ耐性遺伝子を有する形質転換プラスミドpH1（特開平6-245776記載の方法で製する）を制限酵素HindIIIで処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、ハイグロマイシンＢ耐性遺伝子を含む約2.2kbp ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにより平滑化した後、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、pHAC1を得た（図１０）。
【０１６２】
次にこのpHAC1を用いて、ペニシリウム カマンベルチィーを、特開平6-245776に記載の方法に準じて形質転換した。選択培地に生育してきた形質転換体を大豆油培地（３％大豆油、0.5％酵母エキス、0.3%NaNO3、0.1%K2HPO4、0.05%KCl、0.05%MgSO4・7H2O、0.001%FeSO4・12H2O）100mlにて30℃、７日間振とう培養した。
【０１６３】
得られた培養液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpHAC1による形質転換株の場合14.9U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpH1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６４】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pHAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６５】
実施例８ ＡＳＯＤ遺伝子のアスペルギルス オリゼでの発現
アスペルギルス オリゼの選択マーカーとなるniaD遺伝子を有する形質転換プラスミドpSTA14（Mol. Gen. Genet.,218巻、99-104頁(1989)）を制限酵素HindIII処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、niaD遺伝子を含む約5.5kb ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにより平滑化した後、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、プラスミドpNAC1を得た（図１１）。
【０１６６】
このpNAC1を用いて、アスペルギルス オリゼA01.1株（Mol. Gen. Genet.、218巻、99-104頁(1989)）を、Unklesらの方法（Mol. Gen. Genet.、218巻、99-104頁 (1989)）に準じて形質転換した。選択培地に生育してきた形質転換体を実施例７と同様の方法で培養した。
【０１６７】
得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpNAC1による形質転換株の場合2.0U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpSTA14のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１６８】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従い糖鎖除去後、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pNAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１６９】
実施例９ ＡＳＯＤ遺伝子のアスペルギルス ニガーでの発現
実施例７に記載したpHAC1を用いて、アスペルギルス ニガーを特開平6-245776に記載の方法に準じて形質転換した。ただし重層するソフトアガー中のハイグロマイシンＢ濃度は307.5μg/mlとした。選択培地に生育してきた形質転換体を実施例７と同様の方法で培養した。
【０１７０】
得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpHAC1による形質転換株の場合0.2U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpH1のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は検出されなかった。
【０１７１】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pHAC1による形質転換体の場合にのみ、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。
【０１７２】
実施例１０ ＡＳＯＤ遺伝子のユウペニシリウム ブレフェルディアムでの発現
ユウペニシリウム ブレフェルディアムの選択マーカーとなるフレオマイシン耐性遺伝子を有する形質転換プラスミドpUT720を制限酵素EcoRI及びXbaIで処理後、分解混合液を１％ 低融点アガロース電気泳動に供し、フレオマイシン耐性遺伝子を含む約3.1kbp ＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片の両末端をT4ＤＮＡポリメラーゼにて平滑化し、実施例５の(11)で得た組換えプラスミドpAC1の制限酵素SspIサイトにクローニングし、プラスミドpPAC1を得た（図１２）。
【０１７３】
次にこのpPAC1を用いて、ユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315株（FERM BP-5053）を以下の方法で形質転換した。
【０１７４】
ユウペニシリウム ブレフェルディアムの胞子懸濁液（２×108）100μlを100mlのぶどう糖−ペプトン培地（栄研化学社製）に接種し37℃、48時間振とう培養後、培養物をろ過し菌体を集めた。この菌体を10mlのプロトプラスト化緩衝液［1.2Mソルビトール,10mM リン酸緩衝液(pH6.0)］に懸濁し、ろ過することにより洗浄菌体を集めた。
【０１７５】
この洗浄菌体を５mg/mlのライジング エンザイム（Sigma Product number L-2265,Sigma社製）を含むプロトプラスト化緩衝液に懸濁し、30℃で２時間振とう後、ガラスフィルター３Ｇ２でろ過し、ろ液を2000rpm，５分間の遠心分離に供し沈澱物を得た。この沈澱物をソルビトール溶液［1.2Mソルビトール,50mM CaCl2,10mM トリス塩酸緩衝液(pH7.5)］に懸濁し、沈澱物を回収した。この操作を再度繰り返し、プロトプラストを沈澱物として回収した。
【０１７６】
沈澱物にプロトプラスト濃度が２×108／mlとなるようにソルビトール溶液を加え、懸濁し、プロトプラスト溶液を得た。プロトプラスト溶液50μlに、４μlのpPAC1溶液（１μg/μl）、6.25μlのＰＥＧ溶液［50% PEG4000,50mM CaCl2,10mM トリス塩酸緩衝液,(pH7.5)］を加え混合後、氷上に30分間静置した。次に0.5mlのＰＥＧ溶液を加え、更に１mlのソルビトール溶液を加え混合した。
【０１７７】
この混合液300μlを17mlの1.5％アガロースを含むＰＤ［2.4％ポテト−デキストロース−ブロス（Difco社製）］からなるプレートにのせ、更に予め48℃に保温しておいた0.7％アガロースを含むＰＤ３mlを重層し、30℃、24時間放置後、1.54mg/mlのフレオマイシン（CAYLA社製）、0.7％アガロースを含むＰＤ３mlを重層し、30℃、４日間放置し、プレート上に出現したコロニーを1.5％アガロースを含むＰＤスラント培地に植え継ぎ、形質転換株として保存した。
【０１７８】
選択培地に生育してきた形質転換株を２×グリセロール−ポリペプトン培地［４％グリセロール，６％ポリペプトン，0.4% KH2PO4,0.02% MgSO4・7H2O,0.001% アデカノール （pH6.0）]100mlに接種し、37℃、６日間振とう培養した。
【０１７９】
得られた培養液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性はpPAC1による形質転換株の場合18.5U/mlであった。選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpUT720のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は1.8u/mlであった。
【０１８０】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pPAC1による形質転換体、対照のpUT720による形質転換体ともに、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。また、pPAC1による形質転換体のシグナルはpUT720による形質転換体に比べ約10倍強いシグナルが得られた。
【０１８１】
実施例１１ ＡＳＯＤ遺伝子のユウペニシリウム ブレフェルディアムでの発現
実施例５の(9)で得られたpASO3をEcoRIで消化後、分解混合物を１％低融点アガロース電気泳動に供し、ＡＳＯＤ遺伝子を含む約4.2kbpのＤＮＡ断片を単離、精製した。このＤＮＡ断片をユウペニシリウム ブレフェルディアムの選択マーカーとなるフレオマイシン耐性遺伝子を有するpUT720（CAYLA社製）のEcoRIサイトにクローニングしpASOE1を得た（図１３）。
【０１８２】
このpASOE1を用いて、ユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315株を実施例１０に従って形質転換した。
【０１８３】
形質転換株はいずれも、300μg/mlのフレオマイシンを含む培地においても良好に生育したのに対し元株であるユウペニシリウム ブレフェルディアムAPC-9315は40μg/ml以上のフレオマイシンを含む培地では生育不能であった。この形質転換株が獲得したフレオマイシン耐性の性質は２回の単胞子分離後も安定に保持されていた。
【０１８４】
形質転換株を実施例１０記載の方法で培養した。得られた培養ろ液について、ＡＳＯＤ活性を測定したところ、ＡＳＯＤ活性は、プラスミドpASOE1を有する形質転換体の場合、25.8U/mlであった。また、選択マーカー遺伝子を有するプラスミドpUT720のみによる形質転換株を用い、上記と同様にして培養及びＡＳＯＤ活性の測定を行ったところ、活性は1.4U/mlであった。
【０１８５】
また、これらの形質転換体の培養ろ液について、実施例５の(6)に従って糖鎖除去後、実施例６と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動及びウエスタンブロッティング解析を行ったところ、pASOE1による形質転換体、対照のpUT720による形質転換体ともに、ＡＳＯＤと同様の分子量のタンパク質のバンドが検出され、このタンパク質がＡＳＯＤに対する抗体と反応することを確認した。また、pASOE1による形質転換体のシグナルはpUT720による形質転換体に比べ約18倍強いシグナルが得られた。
【０１８６】
実施例１２ 血中のコレステロールの測定
血清中の全コレステロールの測定の際のアスコルビン酸による干渉作用を除去するために実施例２で得られたＡＳＯＤ、実施例１１で得られたＡＳＯＤ及びキュウリ由来のＡＳＯを添加し、その効果を測定した。
【０１８７】
ヒト管理血清（リピッドセーラムII，栄研化学製）10μlに（試薬−１）2.25mlを添加し、37℃，５分間インキュベーションした後、（試薬−２）0.75mlを添加し、更に37℃，５分間インキュベーションを行った。その後、500nmにおけるの吸光度を測定した。盲検としてヒト血清の代わりに精製水を使用した。
【０１９０】
【表５】
表５から明らかな様に、本発明のＡＳＯＤの添加により、キュウリ由来ＡＳＯと同様に、Ｌ−アスコルビン酸による発色阻害を防止できる。形質転換体により生産されたＡＳＯＤを用いても同様の結果が得られることが判る。
【０１９２】
実施例１３ ＡＳＯＤ配合試薬の安定性
実施例１２で調製した（試薬−１）を37℃で20日間保存し、用時調製した（試薬−２）を用いて実施例４と同様にしてコレステロールの定量を行った。その結果、キュウリ由来のＡＳＯを用いた場合と比べ明らかに本発明のＡＳＯＤを用いた試薬は安定性に優れている。同様に実施例１１により得られたＡＳＯＤを用いて調製した試薬についてもその安定性は優れている。
【０１９３】
【表６】
実施例１４ 血中のトリグリセライドの測定
血清中のトリグリセライド測定の際のアスコルビン酸による干渉作用を除去するために実施例２で得られたＡＳＯＤを添加し、その結果を測定した。
【０１９５】
ヒト管理血清（リピッドセーラムII，栄研化学）27μl、Ｌ−アスコルビン酸（50mg／ml）３μlに試薬１（2.25ml）を添加し、37℃、５分間インキュベーションした後、試薬−２（0.75ml）を添加し、更に37℃、５分間インキュベーションを行った。その後、555nmにおける吸光度を測定した。Ｌ−アスコルビン酸の代わりに精製水を使用し、対照とした。
【０１９８】
【表７】
表７の結果から明らかなように本発明のＡＳＯＤにより、アスコルビン酸による発色阻害を防止できる。又、本発明のＡＳＯＤによるＬ−アスコルビン酸酸化に伴って生成する過酸化水素は測定値に影響しないことがわかる。同様に実施例１１により得られたＡＳＯＤを用いて調製した試薬を用いても測定値には影響しないことを確認した。
【０２００】
実施例１５ Ｌ−アスコルビン酸の定量
種々の濃度のＬ−アスコルビン酸を含む20mM酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液（pH4.0）10μlに本発明のＡＳＯＤ 40μl（0.5U）を添加し、37℃、10分間反応し、Ｌ−アスコルビン酸を完全にデヒドロアスコルビン酸に変換する。
【０２０１】
次いで、３mM ４−アミノアンチピリン、１mM フェノール、８U／ml パーオキシダーゼを含む100mM リン酸緩衝液（pH7.0）2.95mlを添加し、37℃、５分間反応させ、Ｌ−アスコルビン酸の酸化反応の際に生じる過酸化水素量を４−アミノアンチピリンとフェノールの酸化縮合色素の505nmにおける吸光度にて測定した。その結果を図１４に示す。
【０２０２】
図において横軸はＬ−アスコルビン酸濃度（mM）を縦軸は505nmにおける吸光度値を示す。図１４より被検液のＬ−アスコルビン酸含有量と吸光度の比例関係を利用して被検液中のＬ−アスコルビン酸量を良好に測定できることが明らかである。また、実施例１１で得られた酵素を用いても同様の結果が得られた。
【０２０３】
実施例１６ 食品中のアスコルビン酸の定量
実施例１５に基づき、レモン果汁中のＬ−アスコルビン酸量を測定した。同時にヒドラジン比色法による測定を行い、測定対照とした。
【０２０４】
その結果、レモン果汁100ml中に含まれるアスコルビン酸量は本発明の方法では37.0mg（実施例１５の検量線より算出）、ヒドラジン比色法［（総アスコルビン酸量）−（デヒドロアスコルビン酸量）］では35.9mgであった。
【０２０５】
上記結果より本発明ＡＳＯＤを用いて食品中のＬ−アスコルビン酸量は良好に測定できることが明らかである。また、実施例１１で得られた酵素を用いても同様の結果が得られた。
【０２０６】
実施例１７
他のユウペニシリウム属（表１）の菌株について、及び実施例４及び実施例５〜実施例１１で得られた酵素について実施例１２〜実施例１６と同様にして、各種測定を行った結果、同様の結果が得られた。
【発明の効果】
本発明によれば、新規なＡＳＯＤ及び該ＡＳＯＤをコードする遺伝子が提供され、該遺伝子を組み込んだ形質転換体を培養することによりＡＳＯＤを大量かつ安価に製造することもできる。本発明のＡＳＯＤを用いることによって、臨床検査試薬、特に液状試薬の製造において、干渉物質除去の目的で添加されていた既知のＡＳＯの不安定性に起因する種々の安定化剤の添加、保存期間中の失活に対する過剰添加が不要となる。即ち、更に本発明のＡＳＯＤは従来のＡＳＯと比較して、保存安定性が非常に優れていること、アジ化ナトリウムによって阻害されないこと、中性付近に至適pHを有していること等より臨床検査用試薬への添加量を少なくすることができ、その結果としてコストの削減や夾雑物質の影響を回避することも容易となる。
【０２０７】
【配列表】
配列番号：１
配列の長さ：２０
配列の型：アミノ酸
配列
Val Asp Pro Ala Ala Val Tyr Asn Gly Gly Tyr Asn Ser Thr Lys 15
Asn Val Ala Leu Arg 20
【０２０８】
配列番号：２
配列の長さ：２０
配列の型：アミノ酸
配列
Gly Ile Ala Lys Ser Pro Ala Trp Tyr Thr Trp Arg Asp His Phe 15
Leu Leu Val Gly Pro 20
【０２０９】
配列番号：３
配列の長さ：１２
配列の型：アミノ酸
配列
Phe Thr Gln Trp Ala Ile Ser Ala Glu Gly Gln Lys 12
【０２１０】
配列番号：４
配列の長さ：１２
配列の型：アミノ酸
配列
Asn Gly Ser Asp Pro Phe Glu Val Ala Trp Tyr Lys 12
【０２１１】
配列番号：５
配列の長さ：３０
配列の型：核酸
配列
GTC GAC CCT GCT GCC GTC TAC AAT GGA GGG 30
Val Asp Pro Ala Ala Val Tyr Asn Gly Gly 10
【図面の簡単な説明】
【図１】ＡＳＯＤの至適pHを示す。
【図２】ＡＳＯＤの至適温度を示す。
【図３】ＡＳＯＤのpH安定性を示す。
【図４】ＡＳＯＤの温度安定性を示す。
【図５】アスコルビン酸酸化酵素の保存安定性を示すグラフである。
【符号の説明】
図中で黒丸は本願発明のＡＳＯＤの結果を示し、白丸はアクレモニウムsp. HI-25由来のＡＳＯを示し、白三角はキュウリ由来のＡＳＯを示す。
【図６】ＡＳＯＤ遺伝子を含有するＤＮＡ断片の制限酵素地図を示す。
【図７】ＡＳＯＤをコードするｃＤＮＡの制限酵素地図を示す。
【図８】組換えプラスミドpAC1の構築手順を示す。
【図９】組換えプラスミドpLAC1の構築手順を示す。
【図１０】組換えプラスミドpHAC1の構築手順を示す。
【図１１】組換えプラスミドpNAC1の構築手順を示す。
【図１２】組換えプラスミドpPAC1の構築手順を示す。
【図１３】組換えプラスミドpASOE1の構築手順を示す。
【図１４】実施例１５のＬ−アスコルビン酸の検量線を示す。
Claims (5)
- 以下の酵素化学的性質を有するユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株より得ることができるアスコルビン酸酸化酵素。
a. 作用、基質特異性 Ｌ−アスコルビン酸１分子と分子状酸素１分子からＬ−デヒドロアスコルビン酸１分子と過酸化水素１分子を生成する反応を触媒する。
b. 分子量 135,000 (ゲルろ過)
c. 至適pH 6.0
d. 至適温度 40℃
e. pH安定性 pH 3-8で90%以上残存 (37℃、16時間)
f. 温度安定性 50℃以下で90%以上残存 (pH 6.8、16時間) - ユウペニシリウム（Eupenicillium）属に属する菌株を培養し、培養物から請求項1記載のアスコルビン酸酸化酵素を採取することを特徴とするアスコルビン酸酸化酵素の製造法。
- 37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒する請求項1記載のアスコルビン酸酸化酵素を配合してなる試薬組成物。
- 37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒する請求項1記載のアスコルビン酸酸化酵素を含有して成る食品用添加剤。
- 37℃、１ヶ月における溶液の残存活性が少なくとも50％であり、Ｌ−アスコルビン酸と分子状酸素からＬ−デヒドロアスコルビン酸と過酸化水素を生ずる反応を触媒する請求項1記載のアスコルビン酸酸化酵素を含有してなるＬ−アスコルビン酸測定用試薬組成物。
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