JP2791375B2 - Production method of lactic acid bacteria fermented liquid - Google Patents

Production method of lactic acid bacteria fermented liquid

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JP2791375B2
JP2791375B2 JP5345082A JP34508293A JP2791375B2 JP 2791375 B2 JP2791375 B2 JP 2791375B2 JP 5345082 A JP5345082 A JP 5345082A JP 34508293 A JP34508293 A JP 34508293A JP 2791375 B2 JP2791375 B2 JP 2791375B2
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Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、完全食といわれる乳を
利用した抗癌作用、血圧降下作用、免疫賦活作用、整腸
作用、抗菌作用、抗変異原効果ががある人体に対して有
用な乳酸菌発酵液の製造方法に関するもので、更に詳し
く説明すれば複数種の乳酸菌と酵母を共生培養し、その
代謝産物である生理活性物質に富んだ乳酸菌発酵液の製
造方法に関するものである。
The present invention is useful for a human body having an anticancer effect, a blood pressure lowering effect, an immunostimulatory effect, an intestinal regulating effect, an antibacterial effect, and an antimutagenic effect utilizing milk, which is called a complete diet. More specifically, the present invention relates to a method for producing a fermented lactic acid bacterium solution rich in a physiologically active substance, which is a metabolite of a lactic acid bacterium, by co-culturing a plurality of types of lactic acid bacteria and yeast.

【0002】[0002]

【従来の技術】近年人類の癌死亡率は急速に増加してい
る。癌の原因となる化学発癌物質はそれ自体若しくはそ
の代謝活性物質がDNAを修飾する変異原物質である。
この変異原物質の作用を抑制する抗変異原物質が食品中
に含まれていることが近年明らかになり、抗癌作用を有
する物質の研究開発が盛んになっている。
2. Description of the Related Art In recent years, human cancer mortality has been rapidly increasing. Chemical carcinogens that cause cancer are mutagens that themselves or their metabolically active substances modify DNA.
In recent years, it has been revealed that food contains an anti-mutagenic substance that suppresses the action of this mutagen, and research and development of substances having an anti-cancer effect have been active.

【0003】従来、癌に対する治療効果のある物質とし
て制癌作用を有するインクマリン系化合物として知られ
ている抗生物質MI43−37F11の類縁体であるイ
ンクマリン誘導体に関するもの(例えば、特開平5−9
7841号)や、抗癌作用のある喜樹という植物エキス
を原料に用いている塩酸イリノテカン等が存在する。
[0003] Ink marine derivatives which are analogs of the antibiotic MI43-37F11, which is conventionally known as an ink marine compound having a carcinostatic action as a substance having a therapeutic effect on cancer (for example, see JP-A-5-9)
No. 7841) and irinotecan hydrochloride which uses a plant extract called Kiki having an anticancer effect as a raw material.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】しかしながら、原材料
が天然物であると否とを問わず、現存する全ての抗癌剤
は、癌細胞に限らず正常な細胞をも破壊し、白血球減少
等の副作用を招来しているという問題点がある。
However, regardless of whether or not the raw material is a natural product, all existing anticancer drugs destroy not only cancer cells but also normal cells, and cause side effects such as leukopenia. There is a problem of being invited.

【0005】そこで、本発明は、食品に備わる機能を微
生物を利用して有用な生理活性物質を引き出し、身体に
副作用等を及ぼさない血圧降下作用、抗癌、抗菌、抗変
異原効果のある乳酸菌発酵液の製造方法を提供すること
を目的とする。
Accordingly, the present invention provides a lactic acid bacterium which has a function of food to extract useful physiologically active substances by utilizing microorganisms and has an antihypertensive action, anticancer, antibacterial and antimutagenic effect which does not cause side effects on the body. It is an object to provide a method for producing a fermentation liquor.

【0006】尚、共生作用の現象を利用して、低酸型と
高酸型の菌株を各々単菌で乳に培養したマザースタータ
ーを各々同比率で牛乳培地に混合培養して発酵乳製品製
造用スターターを製造する方法が提案されている(例え
ば、特公昭45−35221号公報参照)。これは、ヨ
ーグルト等の発酵乳製造用スターターの製造方法であっ
て、生酸速度の異なるものを用いることによりヨーグル
ト等の製品を冷却保存中に酸度が生じることのないよう
にしたもので、本願発明とは、目的、構成、効果を異に
し、全く別異な発明である。
[0006] By utilizing the phenomenon of symbiotic action, a mother starter obtained by culturing low-acid type strains and high-acid type strains individually in milk is mixed and cultured in a milk medium at the same ratio to produce a fermented milk product. A method for producing a starter for use has been proposed (for example, see Japanese Patent Publication No. 45-35221). This is a method for producing a starter for producing fermented milk such as yogurt, which has a different raw acid rate so that acidity does not occur during cooling and preservation of a product such as yogurt. The invention is a completely different invention having a different purpose, configuration, and effect.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本発明者は完全食といわ
れる乳にはカゼイン、ラクトアルブミン等の乳蛋白質が
存在し、該乳蛋白質のアミノ酸配列の中には種々の生理
活性を有するペプチドと同一若しくは極めてこれに近い
分子配列を有するものがあり、乳蛋白質が特定の蛋白分
解酵素により分解されれば生理活性物質が遊離すること
に着目し、本発明を創案するに至った。即ち、ペプチド
等の生理活性物質を乳蛋白質より遊離する特定の酵素は
乳酸菌が分泌した菌体外酵素が好適であるという発想の
下に、乳酸菌による発酵乳を生成し、該生成物をさらに
熟成させ、この熱成過程において乳中の蛋白質、脂質等
が分解されて、人体に対して有用な生理活性物質である
ペプチド、脂肪酸等の低分子の有機酸を得るものであ
る。
Means for Solving the Problems The present inventors have found that milk, which is called complete diet, contains milk proteins such as casein and lactalbumin, and the amino acid sequence of the milk protein includes peptides having various physiological activities. Some of them have the same or very similar molecular sequences, and the inventors have focused on releasing a physiologically active substance when milk protein is degraded by a specific protease, and have come up with the present invention. That is, a fermented milk by lactic acid bacteria is produced under the idea that a specific enzyme that releases a physiologically active substance such as a peptide from milk protein is preferably an extracellular enzyme secreted by lactic acid bacteria, and the product is further aged. Then, in this thermogenesis process, proteins, lipids and the like in milk are decomposed to obtain low molecular organic acids such as peptides and fatty acids which are useful physiologically active substances for the human body.

【0008】その手段として、本発明乳酸菌発酵液の製
造方法は大別して前培養、本培養、乳酸菌発酵液の抽出
という3工程より構成される。前培養としては、複数種
の乳酸菌、ビフィズス菌を各々個別的に単菌で乳に接種
し、この接種したものを各菌の生育最適温度環境下で個
別的に培養する。一方、酵母を乳に接種し、至適温度環
境下で適当時間培養する。この酵母は乳中に培養するこ
となく、ビタミン、アミノ酸等を含有する栄養液に添加
したものであってもよい。
As a means thereof, the method for producing a fermented lactic acid bacterium of the present invention is roughly divided into three steps: preculture, main culture, and extraction of a lactic acid bacterium fermented liquor. As the preculture, a plurality of types of lactic acid bacteria and bifidobacteria are individually inoculated into milk individually, and the inoculated products are individually cultured under an optimal temperature environment for the growth of each microorganism. On the other hand, yeast is inoculated into milk and cultured under an optimal temperature environment for an appropriate time. This yeast may be added to a nutrient solution containing vitamins, amino acids and the like without being cultured in milk.

【0009】次に、前記前培養により得られた各培養菌
液を各々個別的に採取し、一括して乳に接種したものを
異なる温度環境下で適当時間培養する本培養を行う。
[0009] Next, the respective cultures obtained by the pre-culture are individually collected, and the main culture is performed in which the inoculated milk is collectively inoculated in a different temperature environment for a suitable time.

【0010】前記本培養により各温度別に得られたスタ
ーターを所定の割合で乳に添加し、さらに恒温環境下で
適当時間培養する。この培養により得られた発酵カード
から発酵液を抽出する。
[0010] The starter obtained at each temperature by the above main culture is added to milk at a predetermined ratio, and further cultured under a constant temperature environment for an appropriate time. The fermentation liquid is extracted from the fermentation curd obtained by this culture.

【0011】[0011]

【作用】乳酸菌を単菌で乳に接種し、最適温度で培養す
ると、乳酸菌が増殖し、乳酸菌の代謝産物に富んだ発酵
乳を生成する。
When lactic acid bacteria are inoculated into milk as a single bacterium and cultured at an optimum temperature, lactic acid bacteria grow and produce fermented milk rich in metabolites of lactic acid bacteria.

【0012】複数種の乳酸菌と酵母を共生培養すると、
構成菌種間には複雑な共生関係が生じる。菌はその自己
増殖性により、代謝産物を菌体外に産生する。菌体外酵
素としては、蛋白分解酵素、脂質分解酵素、糖質分解酵
素等を生成し、乳酸菌にとって最適な環境を形成する。
そのため乳酸菌が一層活性化し、菌にとって有利な物質
をより一層生成する。このような乳酸菌にとっての最適
環境下において、乳酸菌はその機能を充分に発揮し、菌
にとって有利な産生物を産生する。産生物は例えばダイ
アセチル、アセトイン、クエン酸等の香気成分やナイシ
ン等の抗菌成分、低分子のアミノ酸や有機酸等、構成菌
により決定される。この共生培養を異なる温度環境下で
行うと、その温度が至適温度である菌が増殖活性し、代
謝産物を一層多量に産生する。このように本発明が乳酸
菌が分泌した菌体外酵素を利用するのは、バランスのと
れた生理活性物質の混合物を得るためであり、外来性の
酵素では本発明の如くバランスのとれた生理活性物質の
混合物を得ることが出来ないためである。
[0012] When co-cultivating a plurality of types of lactic acid bacteria and yeast,
A complicated symbiotic relationship occurs between the constituent bacterial species. Bacteria produce metabolites extracellularly due to their self-propagation. As extracellular enzymes, they produce proteolytic enzymes, lipolytic enzymes, carbohydrate degrading enzymes, etc., and form an optimal environment for lactic acid bacteria.
As a result, the lactic acid bacteria are more activated, and produce more advantageous substances for the bacteria. Under such an optimal environment for lactic acid bacteria, lactic acid bacteria exert their functions sufficiently and produce products that are advantageous to the bacteria. The product is determined by a constituent bacterium such as an aroma component such as diacetyl, acetoin, or citric acid, an antibacterial component such as nisin, a low-molecular-weight amino acid or an organic acid. If this co-cultivation is performed under different temperature environments, the bacteria at the optimum temperature will proliferate and produce more metabolites. The reason why the present invention utilizes the extracellular enzyme secreted by the lactic acid bacterium is to obtain a balanced mixture of physiologically active substances. This is because a mixture of substances cannot be obtained.

【0013】各温度別に得られたスターターを所定の割
合で乳に添加し、培養すると、生成された乳酸により発
酵液のpHが低下し、等電点付近で発酵カードを形成す
る。即ち、乳酸菌により分泌された蛋白分解酵素が、カ
ゼインを生成してカゼインを含む発酵カードを生成する
ものである。そして、発酵カードより抽出した発酵液は
菌の共生培養により産生したペプチド等の生理活性物質
を含むものである。
When a starter obtained at each temperature is added to milk at a predetermined ratio and cultured, the pH of the fermented liquid is reduced by the generated lactic acid, and a fermented curd is formed near the isoelectric point. That is, the proteolytic enzyme secreted by the lactic acid bacteria produces casein to produce a fermentation curd containing casein. The fermentation liquid extracted from the fermentation curd contains a physiologically active substance such as a peptide produced by co-cultivation of the bacteria.

【0014】[0014]

【実施例1】以下、本発明の好適な実施例について説明
する。ラクトコッカス・ラクティス・サブスピーシス・
ラクチス(Lc.lactis subsp lact
i−s)、ラクトコッカス・ラクチス・サブスピーシス
・クレモリス(Lc.la−ctis subsp c
remoris)、ストレプトコッカス・ラクチス・サ
ブスピーシス・ダイアセチラクチス(Str.lact
is subsp diacetylactis)、ロ
イコノストック・クレモリス(Leu.cr−emor
is)を各々個別的に約25%(W/W)濃度以下の獣
乳に接種し、前記各菌の最適温度による恒温環境下で各
々48時間を限度として培養する。これらの乳酸菌を最
適温度環境下で培養すると、これらの乳酸菌が個別的に
獣乳中で増殖し、その産生乳酸により酸度約0.9%
(W/W)程度の弱い発酵乳が各別に生成される。スト
レプトコッカス・サリバリウス・サブスピーシス・テル
モフィルス(Str.salivarius.subs
p.thermophil−us)、ラクトバチルス・
デルブリッキー・サブスビーシス.ブルガリクス(L
b.delbrueckii subsp.bulga
ricus)、ラクトバチルス・デルブリッキー・サブ
スピーシス・ラクチス(Lb.delbrue−cki
i subsp.lactis)、ラクトバチルス.ヘ
ルベティクス(Lb.helveticus)を各々個
別的に25%(W/W)以下の濃度の獣乳に接種し、こ
れらの菌の最適温度による恒温環境下で48時間を限度
として培養する。前記条件下で培養すると、これらの乳
酸菌が獣乳中で増殖し、酸度が約1.0%(W/W)程
度の発酵乳が個別的に生成される。ラクトバチルス・ア
シドフィラス(Lb.acidophilus)、ラク
トバチルス・カゼイ(Lb.casei)ビフィズス菌
(Bifidobacterium.longum)を
各々個別的に0.5%(W/W)の大豆ペプチドを含有
する約25%(W/W)以下の濃度の獣乳に接種し、こ
れらの菌の最適温度である恒温環境下で48時間を限定
として培養する。この培養により、前記菌株の活性化を
高める。サッカロマイセスセレビジェ(Sacchar
omyces.cerevisiae)を酵母エキス及
びぶどう糖を含有する獣乳に接種し、約30〜32℃で
約48時間を限度として培養する。サッカロマイセスセ
レビジェは乳に培養することなく、ビタミン、アミノ酸
を含有する水溶液に添加した酵母液であってもよい。酵
母は、サッカロマイセスセレビジェに限定することな
く、サッカロマイセス・デルブリッキー(Sacc.d
elbrueckii)、トルロプシィス・ケフィール
(Torulopsis kefir)、乾燥酵母等を
使用することもできる。
Embodiment 1 Hereinafter, a preferred embodiment of the present invention will be described. Lactococcus lactis subsp.
Lactis (Lc. Lactis subsp lact)
is-), Lactococcus lactis subsp. cremoris (Lc. la-ctis subsp c.
remoris), Streptococcus lactis subsp. diaacetylactis (Str. lac)
is subsp diacetylactis), Leuconostoc cremoris (Leu. cr-emor)
is) is individually inoculated into animal milk having a concentration of about 25% (W / W) or less, and cultured for up to 48 hours in a constant temperature environment at an optimum temperature of each of the bacteria. When these lactic acid bacteria are cultured in an optimal temperature environment, these lactic acid bacteria grow individually in animal milk, and the lactic acid produced produces an acidity of about 0.9%.
(W / W) weak fermented milk is produced separately. Streptococcus salivarius subsp. Thermophilus (Str. Salivarius. Subs)
p. thermophil-us), Lactobacillus
Del Bricky Subsbysis. Bulgarix (L
b. delbrueckii subsp. bulga
ricus), Lactobacillus delbricii subsp. lactis (Lb. delblue-cki)
i subsp. lactis), Lactobacillus. Hervetics (Lb. helveticus) are individually inoculated into animal milk at a concentration of 25% (W / W) or less, and cultured for up to 48 hours in a constant temperature environment at an optimum temperature of these bacteria. When cultured under the above conditions, these lactic acid bacteria grow in animal milk, and fermented milk having an acidity of about 1.0% (W / W) is individually produced. Lactobacillus acidophilus (Lb. acidophilus) and Lactobacillus casei (Lb. casei) Bifidobacterium (Bifidobacterium. Longum) are each individually about 0.5% (W / W) containing about 25% (W / W) soy peptide (about 25%). (W / W) Inoculate animal milk at a concentration of not more than (W / W), and culture for 48 hours in a constant temperature environment, which is the optimum temperature for these bacteria. This culture enhances the activation of the strain. Saccharomyces cerevisiae (Sacchar
omyces. cerevisiae) is inoculated into animal milk containing yeast extract and glucose and cultured at about 30-32 ° C for up to about 48 hours. Saccharomyces cerevisiae may be a yeast solution added to an aqueous solution containing vitamins and amino acids without being cultured in milk. Yeasts are not limited to Saccharomyces cerevisiae, but include Saccharomyces del Bricky (Sacc.d.
elbrueckii), Torulopsis kefir, dried yeast and the like can also be used.

【0015】上記前培養により得た各培養菌液を濃度約
25%(W/W)以下の獣乳に各々同量宛接種する。接
種量は獣乳に対し、夫々0.01〜4.00%(V/
V)程度であるが、2.00%(V/V)以下であるこ
とが好ましい。接種後、22〜40℃の範囲内で高温、
中温、低温の各温度を選択し、各恒温環境下で夫々約2
4〜60時間培養した。高温環境下で培養したものをス
ターター1、中温環境下で培養したものをスターター
2、低温環境下で培養したものをスターター3とする。
スターター1、スターター2、スターター3を400倍
率で顕微鏡観察を行った結果、スターター1には、酵母
が1視野に1個、乳酸菌は桿菌と球菌が8対2の割合で
存在し、全体としては長桿菌が多く観察された。スター
ター2には、酵母が1視野に3個、乳酸菌は桿菌と球菌
が同一割合で存在し、長桿菌、短桿菌、単球菌、双球
菌、連鎖球菌が共にバランスよく生育していることが判
明した。スターター3には、酵母が10視野に1個、乳
酸菌は桿菌と球菌が3対7の割合で全体的に球菌が多
く、とりわけ双球菌が多いことが判明した。前記スター
ター1、スターター2、スターター3を下記に示す表1
の組成に従って獣乳へ添加し、約22〜40℃で各時間
培養した。培養時間が長時間であるのは、乳酸菌と酵素
の共生により、一層生理活性物質に富んだ代謝産物を得
るためである。
Each of the cultures obtained by the above pre-culture is inoculated in the same amount into animal milk having a concentration of about 25% (W / W) or less. The inoculation amount was 0.01 to 4.00% (V /
V), but preferably 2.00% (V / V) or less. After inoculation, high temperature within the range of 22 to 40 ° C,
Select each of the medium temperature and low temperature, about 2 each in each constant temperature environment
The culture was performed for 4 to 60 hours. The one cultured in a high temperature environment is referred to as a starter 1, the one cultured in a medium temperature environment is referred to as a starter 2, and the one cultured in a low temperature environment is referred to as a starter 3.
As a result of microscopic observation of the starter 1, the starter 2, and the starter 3 at a magnification of 400, the starter 1 contained one yeast in one visual field, and lactic acid bacteria contained bacilli and cocci at a ratio of 8: 2. Many long rods were observed. In the starter 2, three yeasts are present in one field of view, and lactobacilli and bacilli are present in the same ratio, and it is found that long bacilli, short bacilli, monococci, diplococci, and streptococci grow in a well-balanced manner. did. In the starter 3, it was found that one yeast per 10 fields of view, and lactobacilli were mostly abundant in bacillus and cocci in a ratio of 3 to 7, and particularly abundant in diplococci. The starter 1, starter 2, and starter 3 are shown in Table 1 below.
Was added to animal milk according to the composition described above and cultured at about 22 to 40 ° C. for each hour. The reason why the culture time is long is to obtain a metabolite rich in more physiologically active substances by symbiosis of the lactic acid bacteria and the enzyme.

【0016】[0016]

【表1】 [Table 1]

【0017】得られた発酵カードのpH、乳酸菌数、酵
母数は下記に示す表2の通りであった。
The pH, the number of lactic acid bacteria and the number of yeasts of the obtained fermented curd were as shown in Table 2 below.

【0018】[0018]

【表2】 [Table 2]

【0019】得られた発酵カードを個別的に約70℃迄
加熱しながら撹拌する。この撹拌加熱処理により、発酵
カードは固形物と液体に分離される。撹拌終了後、放置
し室温迄冷却せしめた後、固形物の排除を行う。排除方
法は如何なる方法であってもよいが、本実施例ではメリ
タフィルタペーパー(メリタジャパン株式会社の商品
名)で濾過し、得られた濾液を約80℃の加熱殺菌処理
後冷却し、乳酸菌発酵液を得る。この加熱殺菌処理は行
わなくてもよい。得られた発酵液は透明な黄褐色を呈す
る。後述の試験例に示す通り、発酵カードから排除され
た乳酸菌発酵液自体が極めて強い抗菌作用を有するため
である。
The obtained fermented curds are individually stirred while being heated to about 70 ° C. By this stirring and heating treatment, the fermented curd is separated into a solid and a liquid. After completion of the stirring, the mixture is allowed to cool to room temperature, and then, solids are removed. Although any elimination method may be used, in this embodiment, the solution is filtered with Melita filter paper (trade name of Melita Japan Co., Ltd.), and the obtained filtrate is heated and sterilized at about 80 ° C., then cooled, and lactic acid bacteria fermented. Obtain a liquid. This heat sterilization need not be performed. The obtained fermentation liquor has a clear yellow-brown color. This is because the lactic acid bacteria fermented liquid itself removed from the fermentation curd itself has an extremely strong antibacterial action, as shown in the test examples described below.

【0020】[0020]

【実施例2】前述の実施例1と同様に、ラクトコッカス
・ラクティス・サブスピーシズ・ラクチス、ラクトコッ
カス・ラクチス・サブスピーシズ・クレモリス、ストレ
プトコッカス・ラクチス・サブスピーシズ・ダイアセチ
ラクチス、ロイコノストック・クレモリスを各々個別的
に約25%(W/W)以下の濃度の獣乳に接種し、前記
各菌の最適温度による恒温環境下で各々48時間を限度
として培養する。これらの乳酸菌を最適温度環境下で培
養すると、これらの乳酸菌が個別的に獣乳中で活性化
し、増殖する。ストレプトコッカス・サリパリウス・サ
プスピーシズ・テルモフィルス、ラクトバチルス、デル
ブリッキー・サプスピーシズ・ブルガリクス、ラクトパ
チルス・デルブリッキー・サプスピーシズ・ラクチス、
ラクトバチルス・ヘルベティクスを個別的に濃度約25
%(W/W)以下の獣乳に接種し、これら各菌の最適温
度による恒温環境下で48時間を限度として培養する。
ラクトバチルス・アシドフィラス、ラクトバチルス・カ
ゼイを各々個別的に0.5%(W/W)の大豆ペプチド
を含有する濃度約25%(W/W)以下の獣乳に接種
し、これら各菌の最適温度環境下で約48時間を限度と
して培養する。サッカロマイセスセレビジェを酵母エキ
ス及びぶどう糖を含有する乳に接種し、約30〜32℃
で約20〜25時間培養する。この酵母サッカロマイセ
スセレビジェは乳に培養することなく、ビタミン、アミ
ノ酸を含有する水溶液に溶解した酵母液であってもよ
い。前述の実施例1と同様に乾燥酵母を使用してもよ
い。
Example 2 In the same manner as in Example 1 described above, Lactococcus lactis subspecies lactis, Lactococcus lactis subspecies cremoris, Streptococcus lactis subspecies diacetillac, and Leuconostoc cremoris were each individually isolated. Specifically, animal milk having a concentration of about 25% (W / W) or less is inoculated, and cultured under a constant temperature environment at an optimum temperature of each of the bacteria for a maximum of 48 hours. When these lactic acid bacteria are cultured in an optimal temperature environment, these lactic acid bacteria are individually activated and propagated in animal milk. Streptococcus saliparius subspecies Thermophilus, Lactobacillus, Delbrikie subspecies Bulgarix, Lactobacillus delbricii subspecies Lactis,
Lactobacillus hervetics individually at a concentration of about 25
% (W / W) or less, and cultured for up to 48 hours in a constant temperature environment at the optimum temperature of each of these bacteria.
Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus casei were individually inoculated into animal milk containing not more than 0.5% (W / W) soy peptide and having a concentration of about 25% (W / W) or less. Incubate for up to 48 hours under optimal temperature conditions. Saccharomyces cerevisiae is inoculated into milk containing yeast extract and glucose, at about 30-32 ° C.
For about 20-25 hours. This yeast Saccharomyces cerevisiae may be a yeast solution dissolved in an aqueous solution containing vitamins and amino acids without culturing it in milk. Dry yeast may be used as in Example 1 described above.

【0021】上記前培養により得た各培養菌液を濃度約
25%(W/W)以下の獣乳に各々同量宛接種する。接
種量は獣乳に対し、夫々0.01〜4.00%(V/
V)で特に2.00%(V/V)以下であることが好ま
しい。接種後、22〜40℃の範囲内で高温、中温、低
温の各温度を選択し、各恒温環境下で夫々約24〜60
時間培養した。高温環境下で培養したものをスターター
1、中温環境下で培養したものをスターター2、低温環
境下で培養したものをスターター3とする。前記スター
ター1、スターター2、スターター3を終濃度で0.1
%になるように獣乳に添加した。約31℃で120時間
静置培養し、発酵カードを得た。得られた発酵カードの
pHは3.5、乳酸菌数1.3×10個/ml、酵母
数8.8×10個/mlであり、120時間の培養に
よっても乳酸菌の生存率が高いことが判明した。この発
酵カードを撹拌しながら約70℃まで加熱し、固形物分
とその浸出液とを分離後、放置して室温まで冷却し、前
述の実施例1と同様に濾過等の手段により濾液を得る。
得られた濾液は、約80℃の加熱殺菌処理後冷却し、透
明な黄褐色の乳酸菌発酵液を得る。前述の実施例1と同
様に濾液の殺菌処理は、その強い抗菌作用ゆえに必ずし
も必要ではない。本実施例により得た乳酸菌発酵液は、
pH3.5、乳酸酸度1.8%(W/W)、糖度6.7
%(W/W)、窒素(N)含有量0.07%(W/W)
であり、窒素含有量を乳蛋白質に換算すると0.46%
(W/W)であった。
Each culture solution obtained by the above preculture is inoculated in the same amount to animal milk having a concentration of about 25% (W / W) or less. The inoculation amount was 0.01 to 4.00% (V /
V), particularly preferably 2.00% (V / V) or less. After inoculation, each of high temperature, medium temperature and low temperature is selected within the range of 22 to 40 ° C., and each temperature is about 24 to 60 under each constant temperature environment.
Cultured for hours. The one cultured in a high temperature environment is referred to as a starter 1, the one cultured in a medium temperature environment is referred to as a starter 2, and the one cultured in a low temperature environment is referred to as a starter 3. The starter 1, starter 2, and starter 3 were added at a final concentration of 0.1.
% To animal milk. The culture was allowed to stand still at about 31 ° C. for 120 hours to obtain a fermentation card. The pH of the obtained fermentation curd was 3.5, the number of lactic acid bacteria was 1.3 × 10 9 cells / ml, and the number of yeast cells was 8.8 × 10 5 cells / ml. The survival rate of lactic acid bacteria was high even after culturing for 120 hours. It has been found. The fermentation curd is heated to about 70 ° C. with stirring to separate the solid matter and the leachate, and then left to cool to room temperature. A filtrate is obtained by means of filtration or the like as in Example 1 described above.
The obtained filtrate is heat-sterilized at about 80 ° C. and then cooled to obtain a clear yellow-brown lactic acid bacteria fermented liquid. Sterilization treatment of the filtrate is not always necessary, as in Example 1 described above, because of its strong antibacterial action. The lactic acid bacteria fermentation liquor obtained according to this example is:
pH 3.5, lactic acid content 1.8% (W / W), sugar content 6.7
% (W / W), content of nitrogen (N) 0.07% (W / W)
It is 0.46% when the nitrogen content is converted into milk protein.
(W / W).

【0022】[0022]

【実施例3】ラクトコッカス・ラクティス・サブスピー
シズ・ラクティス、ラクトコッカス・ラクティス・サブ
スピーシズ・クレモリス、ストレプトコッカス・ラクテ
ィス・サブスピーシズ・ダイアセチラクチス、ロイコノ
ストック・クレモリスを各々単菌で濃度12%(W/
W)の還元脱脂乳に接種し、25℃の恒温環境下で、各
々21時間静置培養した。ストレプトコッカス・サリバ
リウス・サブスピーシズ・テルモフィルス、ラクトバチ
ルス・デルブリッキー・サブスピーシズ・ブルガリク
ス、ラクトバチルス・デルブリッキー・サブスピーシズ
・ラクチス、ラクトバチルス・ヘルベティクスを各々個
別的に単菌で濃度12%(W/W)の還元脱脂乳に接種
し、37℃の恒温環境下で各々16時間静置培養した。
ラクトバチルス・アシドフィラス、ラクトバチルス・カ
ゼイを各々個別的に0.5%(W/W)の大豆ペプチド
を含む濃度12%(W/W)の還元脱脂乳に接種し、3
7℃の恒温環境下で各々16時間静置培養した。サッカ
ロマイセスセレビジェを0.5%(W/W)の大豆ペプ
チド及び0.5%(W/W)のぶどう糖を含有する濃度
12%(W/W)の還元脱脂乳に接種し、31℃の恒温
環境下で23時間静置培養した。
Example 3 Lactococcus lactis subsp. Lactis, Lactococcus lactis subsp. Cremoris, Streptococcus lactis subsp. Cerevisiae diacetylactis, and Leuconostoc cremoris each at a concentration of 12% (W /
The reduced skim milk of W) was inoculated and allowed to stand still for 21 hours under a constant temperature environment of 25 ° C. Streptococcus salivarius subspecies thermophilus, Lactobacillus delbricii subspecies bulgaricus, Lactobacillus delbricii subspecies subsp. The reduced skim milk was inoculated and allowed to stand still for 16 hours under a constant temperature environment of 37 ° C.
Lactobacillus acidophilus and Lactobacillus casei were individually inoculated into 12% (W / W) reduced skim milk containing 0.5% (W / W) soybean peptide, and 3%.
Each was cultured for 16 hours in a constant temperature environment of 7 ° C. for 16 hours. Saccharomyces cerevisiae was inoculated into a 12% (W / W) reduced skim milk containing 0.5% (W / W) soy peptide and 0.5% (W / W) glucose, at 31 ° C. The culture was allowed to stand in a constant temperature environment for 23 hours.

【0023】上記前培養により得た各培養菌液を濃度1
2%(W/W)の還元脱脂乳に各々0.25%(V/
V)ずつ接種する。接種したものを3分し、37℃、3
1℃、25℃の各恒温環境下で42時間静置培養した。
恒温環境下で培養したものをスターター1、31℃の恒
温環境下で培養したものをスターター2、25℃の恒温
環境下で培養したものをスターター3とする。これらス
ターター1、スターター2、スターター3を終濃度で
0.1%になるように部分脱脂乳に添加した。31℃の
恒温環境下で120時間の静置培養により発酵カードを
得た。得られた発酵カードのpHは3.5、乳酸菌数は
1.3×10個/ml、酵母菌数8.8×10個/
mlであった。実施例1若しくは2と同様に、発酵カー
ドを撹拌しながら70℃まで加温後、常温環境下に放置
し冷却した。次に濾過して濾液を得、この濾液を80℃
の加熱殺菌処理後冷却して、乳酸菌発酵液を得た。得ら
れた乳酸菌発酵液は透明な黄褐色を呈する。
Each of the cultures obtained by the above pre-culture was subjected to a concentration of 1
0.25% (V / W) in 2% (W / W) reduced skim milk
V) Inoculate each. Inoculate for 3 minutes, 37 ° C, 3
The culture was allowed to stand still for 42 hours under a constant temperature environment of 1 ° C. and 25 ° C.
The one cultured in a constant temperature environment is referred to as a starter 1, the one cultured in a constant temperature environment of 31 ° C. is referred to as a starter 2, and the one cultured in a constant temperature environment of 25 ° C. is referred to as a starter 3. Starter 1, Starter 2 and Starter 3 were added to partially skim milk so that the final concentration was 0.1%. A fermentation curd was obtained by stationary culture for 120 hours under a constant temperature environment of 31 ° C. The pH of the obtained fermentation curd was 3.5, the number of lactic acid bacteria was 1.3 × 10 9 cells / ml, and the number of yeast cells was 8.8 × 10 5 cells / ml.
ml. As in the case of Example 1 or 2, the fermentation curd was heated to 70 ° C. while stirring, and then left to cool in a room temperature environment. Next, the mixture was filtered to obtain a filtrate.
And then cooled to obtain a lactic acid bacteria fermented liquid. The obtained fermented lactic acid bacterium has a clear yellow-brown color.

【0024】[0024]

【実施例4】前述の実施例3と同様の工程で前培養等を
行ないスターター1、スターター2、スターター3を得
た。これらスターター1、スターター2、スターター3
を終濃度で0.1%になるように部分脱脂乳に添加し、
31℃の恒温環境下で480時間静培養することによ
り、発酵カードを得た。得られた発酵カードのpHは
3.5、乳酸菌数は1.1×10個/ml、酵母菌数
は3.9×10個/mlであった。前述の実施例3と
同様に発酵カードを70℃まで撹拌しながら加温後常温
に冷却し、濾過して透明な黄褐色を呈する乳酸菌発酵液
を得た。
Example 4 Pre-culture and the like were carried out in the same steps as in Example 3 to obtain starters 1, 2 and 3. Starter 1, Starter 2, Starter 3
Is added to the partially skimmed milk to a final concentration of 0.1%,
A fermentation curd was obtained by statically culturing in a constant temperature environment of 31 ° C. for 480 hours. The pH of the obtained fermentation curd was 3.5, the number of lactic acid bacteria was 1.1 × 10 7 cells / ml, and the number of yeast cells was 3.9 × 10 6 cells / ml. The fermentation curd was heated to 70 ° C. while being stirred and cooled to room temperature in the same manner as in Example 3, and then filtered to obtain a fermented lactic acid bacterium having a transparent yellowish brown color.

【0025】上述の実施例1、2、3、4においては、
連鎖球菌属(Streptococcus)、乳酸桿菌
属(Lactobacillus)、ロイコノストック
属(Leuconostoc)のものを乳酸菌として使
用したが、本発明はこれに限定されるものではなく、他
の属に該当するあらゆる種類の乳酸菌を使用する場合も
本発明に含まれる。又、培養時間、温度、本培養におけ
る接種比率等も上述の実施例1、2、3、4に示される
値に限定されず、これら以外の値によるものも本発明に
含まれる。得られた乳酸菌液が味等において変化は見ら
れる場合はあるものの、その作用効果は同じであるから
である。
In the first, second, third and fourth embodiments,
Streptococcus, Lactobacillus, and Leuconostoc species were used as lactic acid bacteria, but the present invention is not limited thereto, and the present invention is not limited thereto. The use of lactic acid bacteria of the present invention is also included in the present invention. Further, the culturing time, temperature, inoculation ratio in the main culturing and the like are not limited to the values shown in Examples 1, 2, 3, and 4, but those based on other values are also included in the present invention. This is because although the obtained lactic acid bacteria solution may change in taste and the like, its action and effect are the same.

【0026】又、上記実施例に示す如く、食品に備わる
機能を微生物を使用して菌体外酵素を引き出し、生理活
性物質を得る方法は、乳と乳酸菌により生理活性物質を
得る製造方法のみならず、例えば納豆等からでも調整可
能である。
Further, as shown in the above-mentioned embodiment, the method for obtaining a physiologically active substance by extracting extracellular enzymes by using a microorganism for the function provided in food is only a production method for obtaining a physiologically active substance from milk and lactic acid bacteria. In addition, for example, it can be adjusted from natto or the like.

【0027】[0027]

【試験例1】6種類の菌株大腸菌エシェリヒィア・コリ
(Escherichia co−li)、腸炎ビブリ
オ菌(Vibrio Parahaemolyticu
s)、サルモネラ菌(Salmonella typh
imurium)、ブィフィドバクテリウム・ブフィダ
ム(Bifidobacterium bifid−u
m)、クロストリディウム・スポロジェネェス(Clo
stridium sporogenes)、バクテロ
イデス・ブルガタス(Bacteroidesvulg
atus)を試験菌として使用し抗菌活性の測定をし
た。抗菌活性の測定はペーパーディスク法で行った。寒
天平板培地10ミリリットルに乳酸菌発酵液50マイク
ロリットルを含浸させたペーパーディスクをのせ、48
時間培養した。ディスクの周囲に形成した円形透明な阻
止円(溶菌班)の直径を測定し、コントロールディスク
(pH3.5の乳酸水溶液50マイクロリットル)と比
較した。その結果は下記の表3に示す通り、乳酸菌発酵
液はNo.5を除いて腸炎ビブリオ菌及びサルモネラ菌
に対して抗菌活性が認められたが、No.1では大腸菌
とクロストリディウム・スポロジェネェスに対し、N
o.3は大腸菌に対し、No.4は大腸菌とパクテロイ
デス・ブルガタスに対して抗菌活性が検出された。表3
中、試料1、2、3は前記表2に示す乳酸菌発酵液1、
乳酸菌発酵液2、乳酸菌発酵液3、試料4は実施例2で
得た乳酸菌発酵液、5はビフィズス菌(Bifidob
acterium longum)を単菌で培養して得
た乳酸菌発酵液、6はラクトバチルス・ラクチス(La
ctobacillus l−actis)を単菌で培
養して得た乳酸菌発酵液、7はラクトバチルス・ブルガ
リカス(Lactobacillus bulgari
cus)を単菌で培養して得た乳酸菌発酵液、8はラク
トバチルス・アシドフィラス(Lactoba−cil
lus acidophilus)を単菌で培養して得
た乳酸菌発酵液、9はストレプトコッカス・テルモフィ
ラス(Strept−coccusthermophi
lus)を単菌で培養した乳酸菌発酵液10はコントロ
ールである。++は溶菌班の直径が15mm以上、+は
溶菌班の直径が10mm以上、±は溶菌班の直径が10
mm未満、−は溶球班が観察されないことを示すもので
ある。
[Test Example 1] Six strains of Escherichia coli (Escherichia coli) and Vibrio parahaemolyticu (Vibrio parahaemolyticus).
s), Salmonella typhi
imurium), Bifidobacterium bifidum (Bifidobacterium bifid-u)
m), Clostridium sporogenes (Clo)
strium sporogenes, Bacteroides vulgartus (Bacteroides vulg)
atus) was used as a test bacterium to measure antimicrobial activity. The antibacterial activity was measured by the paper disk method. A paper disc impregnated with 50 microliters of a fermented lactic acid bacterium solution was placed on 10 ml of an agar plate medium, and 48
Cultured for hours. The diameter of a circular transparent inhibition circle (bacteriolysis plaque) formed around the disk was measured and compared with a control disk (50 microliter of lactic acid aqueous solution of pH 3.5). The results are shown in Table 3 below, and the lactic acid bacteria fermented solution was No. 3 With the exception of Vibrio parahaemolyticus and Salmonella, antibacterial activity was observed except for No. 5. In the case of E. coli and Clostridium sporogenes,
o. No. 3 against E. coli. In No. 4, antibacterial activity was detected against Escherichia coli and Pacteroides burgatas. Table 3
Medium, samples 1, 2, and 3 were lactic acid bacteria fermented liquid 1 shown in Table 2 above.
The lactic acid bacteria fermented solution 2, the lactic acid bacteria fermented solution 3, and the sample 4 are the lactic acid bacteria fermented solution obtained in Example 2, and 5 is Bifidobacterium (Bifidob).
Lactobacillus lactis (La), which is obtained by culturing Lactobacillus acterium longum as a single bacterium.
Lactobacillus bulgaricus (Lactobacillus bulgari), a fermented solution of lactic acid bacteria obtained by culturing C. bacillus l-actis as a single cell.
lactic acid bacterium fermented broth obtained by culturing bacillus cus) with a single bacterium, 8 is Lactobacillus acidophilus (Lactoba-cil)
lactic acid bacterium obtained by culturing L. acidophilus as a single bacterium; 9 is Streptococcus thermophilus (Streptococcus thermophilus);
lactic acid bacterium fermented broth 10 obtained by culturing lac) alone. ++ indicates that the diameter of the lysis spot is 15 mm or more, + indicates that the diameter of the lysis spot is 10 mm or more, and ± indicates that the diameter of the lysis spot is 10 mm.
Less than mm,-indicates that no hot spot was observed.

【0028】[0028]

【表3】 [Table 3]

【0029】[0029]

【試験例2】7種類の菌株大腸菌(Escherich
ia coli)、腸炎ビブリオ菌(Vibrio p
arahaemolyticus)、サルモネラ菌(S
a−lmonella typhimurium)、ビ
フィドバクテリウム ブフィダム(Bifidobac
terium bifidum)、クロストリディウム
スポロジエネェス(Clostridium spo
rogenes)、バクテロイデス・ブルガタス(Ba
cteroides vulgatus)、スタフィロ
コッカス アウレウス(Staphylococcus
aureus)を試験菌として使用し抗菌活性の測定
をした。抗菌活性の測定はペーパーディスク法で行っ
た。寒天平板培地10ミリリットル上に乳酸菌発酵液5
0マイクロリットルを含浸させたペーパーデイスクをの
せ、48時間培養した。ディスクの周囲に形成した円形
透明な阻止円(溶菌班)の直径を測定し、コントロール
ディスク(pH3.5の乳酸水溶液50マイクロリット
ル)と比較した。試料は、乳酸菌発酵液5ミリリットル
を凍結乾燥し、凍結乾燥標品を蒸留水に溶解した。水酸
化ナトリウム水溶液でpHを3.6に調整し、最終の容
量を1ミリリットルとして乳酸菌発酵液の5培濃縮液と
した。その結果は、下記の表4に示す通り、5培濃縮液
の抗菌活性はNo.5を除いて、用いたすべての試験菌
に対して抗菌活性が認められた。特にNO.1とNo.
4は大腸菌とクロストリディウム スポロジェネェスに
対し強い抗菌活性が認められた。試料1〜10は前記試
験例1と同一の物で、結果を示す記号も同一意味を示
す。
[Test Example 2] Seven types of Escherichia coli (Escherich)
ia coli), Vibrio parahaemolyticus (Vibrio p.
arahaemolyticus, Salmonella (S)
a-lmonella typhimurium), Bifidobacterium bifidum (Bifidobacter)
terium bifidum, Clostridium sporodines sp.
rogenes), Bacteroides burgatas (Ba)
cteroides vulgatas, Staphylococcus aureus (Staphylococcus)
aureus) was used as a test bacterium to measure the antibacterial activity. The antibacterial activity was measured by the paper disk method. Lactic acid bacteria fermentation solution 5 on 10 ml agar plate medium
A paper disk impregnated with 0 microliter was placed on the plate and cultured for 48 hours. The diameter of a circular transparent inhibition circle (bacteriolysis plaque) formed around the disk was measured and compared with a control disk (50 microliter of lactic acid aqueous solution of pH 3.5). As a sample, 5 ml of a lactic acid bacteria fermented solution was freeze-dried, and a freeze-dried sample was dissolved in distilled water. The pH was adjusted to 3.6 with an aqueous solution of sodium hydroxide, and the final volume was adjusted to 1 ml to obtain a 5-fold concentrated lactic acid bacteria fermented solution. The results are as shown in Table 4 below. Except for Example 5, antibacterial activity was observed for all test bacteria used. In particular, NO. 1 and No.
No. 4 exhibited strong antibacterial activity against Escherichia coli and Clostridium sporogenes. Samples 1 to 10 were the same as in Test Example 1, and the symbols indicating the results also had the same meaning.

【0030】[0030]

【表4】 [Table 4]

【0031】[0031]

【試験例3】7種類の菌株大腸菌(Escherich
ia coli)、腸炎ビブリオ菌(Vibrio p
arahaemolyticus)、サルモネラ菌(S
almonella typhimurius)、ビヒ
ィドバクテリウム ブフィダム(Bifidobact
erium bifidum)、クロストリディウムス
ポロジェネェス(Clostridium sporo
genes)、バクテロイデス ブルガタス(Bact
eroides vulgatus)、スタフィロコッ
カス アウレウス(Staphylococcus a
ureus)を試験菌として使用し、乳酸菌発酵液のア
セント分画と抗菌活性の測定をした。抗菌活性の測定は
ペーパーディスク法で行った。寒天平板培地10ミリリ
ットル上に乳酸菌発酵液50マイクロリットルを含浸さ
せたペーパーディスクをのせ、48時間培養した。ディ
スクの周囲に形成した円形透明な阻止円(溶菌班)の直
径を測定し、コントロールディスク(PH3.5の乳酸
水溶液50マイクロリットル)と比較した。アセトン分
画の方法は乳酸菌発酵液1ミリリットルに6.7倍量の
冷アセトン(−20℃)を加え、延伸分離(3000r
pm×5min)によって上清と沈殿区分を減圧下で乾
燥し、蒸溜水に溶解してPHを3.5に調整した。最終
の溶解容量を1ミリリットルとし、その50マイクロリ
ットルを抗菌活性の測定に用いた。上清区分については
アセトン臭がなくなるまで減圧下で濃縮し、蒸溜水を加
え溶解してPHを3.5に調整した。最終の容量を1ミ
リリットルとし50マイクロリットルを抗菌活性の測定
に用いた。その結果は、下記の表5に示す通り、アセト
ン沈殿区分の抗菌活性サルモネラ(Salmonell
a)に対して試料1、2、3及び6に抗菌活性が認めら
れた。この活性成分は比較的分子量の大きいペプチドま
たはタンパク質であると考えられる。試料1〜10は前
記試験例1及び2と同一物で、結果を示す符号も同一意
味を示す。
[Test Example 3] Seven types of Escherichia coli (Escherich)
ia coli), Vibrio parahaemolyticus (Vibrio p.
arahaemolyticus, Salmonella (S)
almonella typhimurius, Bifidobacterium Bifidobacter
erium bifidum, Clostridium sporogenes
geneses), Bacteroides burgatas (Bact)
eroides vulgatas, Staphylococcus aureus (Staphylococcus a)
ureus) was used as a test bacterium, and the ascent fraction and the antibacterial activity of the fermented lactic acid bacteria solution were measured. The antibacterial activity was measured by the paper disk method. A paper disk impregnated with 50 microliters of a fermented lactic acid bacterium solution was placed on 10 ml of an agar plate medium and cultured for 48 hours. The diameter of a circular transparent blocking circle (bacteriolytic plaque) formed around the disk was measured and compared with a control disk (50 microliter of a lactic acid aqueous solution of PH 3.5). Acetone fractionation is carried out by adding 6.7 times the volume of cold acetone (-20 ° C) to 1 ml of the lactic acid bacteria fermentation broth and stretching and separating (3000 r).
(pm × 5 min), the supernatant and the precipitate were dried under reduced pressure, and dissolved in distilled water to adjust the pH to 3.5. The final dissolution volume was 1 milliliter, and 50 microliters were used for the measurement of antibacterial activity. The supernatant was concentrated under reduced pressure until the smell of acetone disappeared, and distilled water was added to dissolve the supernatant to adjust the pH to 3.5. The final volume was 1 milliliter and 50 microliters were used for measuring antimicrobial activity. As shown in Table 5 below, the results were as follows.
Samples 1, 2, 3, and 6 exhibited antibacterial activity for a). This active ingredient is considered to be a relatively high molecular weight peptide or protein. Samples 1 to 10 are the same as those in Test Examples 1 and 2, and the reference numerals indicating the results also have the same meaning.

【0032】[0032]

【表5】 [Table 5]

【0033】アセトン上清区分の抗菌活性は下記の表6
に示す通りである。表6に示すように、乳酸菌発酵液の
抗菌活性は主としてアセトン分画上清区分に認められ
た。またアセトン分画することによりNo.3とNo.
4にClostridiumに対する抗菌活性が検出さ
れてくる。これはアセトン沈殿区分にその活性を中和す
る成分が含まれているため、分画により除去されたこと
を示すのであろう。試料1〜10は前記試験例1、2及
び3と同一物で、結果を示す符号も同一意味を示す。
The antimicrobial activity of the acetone supernatant fraction is shown in Table 6 below.
As shown in FIG. As shown in Table 6, the antibacterial activity of the lactic acid bacteria fermented liquid was mainly observed in the acetone fraction supernatant. In addition, No. 1 was obtained by acetone fractionation. 3 and No.
In No. 4, antibacterial activity against Clostridium is detected. This would indicate that the acetone-precipitated fraction contained components that neutralized its activity and was thus removed by fractionation. Samples 1 to 10 are the same as in Test Examples 1, 2 and 3, and the reference numerals indicating the results also have the same meaning.

【0034】[0034]

【表6】 [Table 6]

【0035】[0035]

【試験例4】腸炎ビブリオ菌(Vibrio para
haemolyticus)を試験菌として、前述の実
施例2で得た乳酸菌発酵液の腸炎ビブリオ菌に対する抗
菌活性のPH依存性について試験測定した。抗菌活性の
測定はペーパーディスク法で行った。寒天平板培地10
ミリリットル上に乳酸菌発酵液50マイクロリットルを
含浸させたペーパーディスクをのせ、48時間培養し
た。ディスクの周囲に形成した円形透明な阻止円(溶菌
班)の直径を測定し、コントロールディスク(塩酸水溶
液50マイクロリットル、酢酸水溶液50マイクロリッ
トル並びに乳酸水溶液50マィクロリットル)と比較し
た。上述の実施例2の乳酸菌発酵液はPHを6.9に調
整した後、遠心分離によって沈殿を除去し、上清を回収
し、塩酸水溶液で個々のPHに調整し抗菌活性を測定し
た。対照として、蒸溜水に塩酸、酢酸並びに乳酸を加
え、同様のPHに調整したものについても抗菌活性を測
定した。その結果は下記の表7に示す通りである。乳酸
菌発酵液の腸炎ビブリオ菌に対する抗菌活性はPH5.
0以下で認められ、特にPH3.6以下では極めて強
い。またPH3.0の酢酸水溶液に抗菌活性が認められ
るが、同じPHの塩酸水溶液及び乳酸水溶液には抗菌活
性は認められない。表7中の結果を示す符号は前記表1
〜表6に示されるものと同一意味を示す。
[Test Example 4] Vibrio parahaemolyticus (Vibrio para)
haemolyticus) was used as a test bacterium, and the pH-dependent antibacterial activity of the fermented lactic acid bacterium obtained in Example 2 on Vibrio parahaemolyticus was measured. The antibacterial activity was measured by the paper disk method. Agar plate medium 10
A paper disk impregnated with 50 microliters of a fermented lactic acid bacterium solution was placed on the milliliter and cultured for 48 hours. The diameter of a circular transparent blocking circle (bacteriolysis spot) formed around the disk was measured and compared with the control disks (50 microliter of hydrochloric acid aqueous solution, 50 microliter of acetic acid aqueous solution, and 50 microliter of lactic acid aqueous solution). The pH of the fermented lactic acid bacterium of Example 2 was adjusted to 6.9, the precipitate was removed by centrifugation, the supernatant was recovered, and the pH was adjusted to individual pH with an aqueous hydrochloric acid solution, and the antibacterial activity was measured. As a control, hydrochloric acid, acetic acid, and lactic acid were added to distilled water, and the antibacterial activity was also measured for those adjusted to the same pH. The results are as shown in Table 7 below. The antibacterial activity of the fermented lactic acid bacterium against Vibrio parahaemolyticus was PH5.
0 or less, and particularly strong at PH 3.6 or less. An antibacterial activity is observed in an aqueous acetic acid solution having a pH of 3.0, but no antibacterial activity is observed in an aqueous hydrochloric acid solution and an aqueous lactic acid solution having the same pH. The symbols indicating the results in Table 7 are those in Table 1 above.
-The same meaning as shown in Table 6 is shown.

【0036】[0036]

【表7】 [Table 7]

【0037】[0037]

【試験例5】前記実施例1及び2で得た乳酸菌発酵液の
抗変異原活性に関する試験を行った。化学発癌物質の多
くは、それ自身が、またはその代謝活性物質がDNAを
修飾する変異原物質である。抗変異原物質とはこの変異
原物質の作用を阻害する物質のことで、発癌を防止する
ものを意味する。材料として供試菌株には、ヒスチジン
要求性、アンピシリン耐性、フレームシフト型突然変異
を有するサルモネラ菌TA98(Salmonella
typhimurium TA98)を使用する。変
異原剤として3−アミノ−1−メチル−5H−ピリド
[4、3−b]indole(Trp〜p2)は0.5
μg/mlの濃度で、N−メチル−N′−ニトロ−N−
ニトロソグアニジン(MNNG)は10μg/mlの濃
度で使用した。抗変異原活性の測定方法は、サルモネラ
変異原試験法(エームステスト)を応用した方法で、1
00マイクロリットルのTrp−p2(またはMNN
G)、100マイクロリットルの乳酸菌発酵液及び10
0マイクロリットルのS−9ミックス(ミクロソーム標
品)を混合し、次に100マイクロリットルのサルモネ
ラ培養を加え、36℃で20分間保持する2ミリリット
ルのビオチンーヒスチジンを含む寒天溶液と混合し、ボ
グル−ボンナー(Vogle Bonner)E培地3
0ミリリットルに重層する。37℃で48時間培養し、
コロニーを計数する。試験は三連で行った。その結果
は、Trp−p2に対しては下記の表8に示すようにN
o.4は最も強い抗変異原性(73%)を示した。
Test Example 5 A test was conducted on the antimutagenic activity of the fermented lactic acid bacterium obtained in Examples 1 and 2. Many chemical carcinogens are mutagens that themselves or their metabolically active substances modify DNA. An anti-mutagen refers to a substance that inhibits the action of this mutagen and that prevents carcinogenesis. The test strains used as materials include Salmonella TA98 (Salmonella) having histidine auxotrophy, ampicillin resistance, and a frameshift mutation.
typhimurium TA98). As a mutagenic agent, 3-amino-1-methyl-5H-pyrido [4,3-b] indole (Trp to p2) is 0.5
At a concentration of μg / ml, N-methyl-N′-nitro-N-
Nitrosoguanidine (MNNG) was used at a concentration of 10 μg / ml. The method of measuring antimutagenic activity is a method applying the Salmonella mutagen test method (Ames test).
00 microliters of Trp-p2 (or MNN)
G), 100 microliters of lactic acid bacteria fermentation broth and 10
Mix 0 microliters of the S-9 mix (microsome preparation), then add 100 microliters of Salmonella culture and mix with 2 ml of an agar solution containing biotin-histidine maintained at 36 ° C. for 20 minutes. -Bonner E Medium 3
Overlay 0 ml. Incubate at 37 ° C for 48 hours,
Count the colonies. The test was performed in triplicate. The results show that for Trp-p2, as shown in Table 8 below, N
o. 4 showed the strongest anti-mutagenicity (73%).

【0038】[0038]

【表8】 [Table 8]

【0039】MNNGに対しては下記の表9に示すよう
にNo.1とNo.4が強い抗変異原性(75%)を示
した。
For MNNG, as shown in Table 9 below, No. 1 and No. 4 showed strong antimutagenicity (75%).

【0040】[0040]

【表9】 [Table 9]

【0041】上記表8及び9中試料1〜10は前記試験
例1〜4と同一物である。
Samples 1 to 10 in Tables 8 and 9 are the same as Test Examples 1 to 4.

【0042】全体的に単菌で培養した乳酸菌発酵液より
も酵母菌を含む各種乳酸菌を共生させた培養液に、高い
抗変異原性が認められる。即ち本発明の目的である得ら
れた乳酸菌発酵液の抗菌作用、抗ガン作用、抗コレステ
ロール作用など人間の健康維持に関係する生理活性因子
が本発酵液(No.1〜No.4)に存在することが表
8及び表9により実証されている。
Higher anti-mutagenicity is observed in a culture in which various lactic acid bacteria including yeasts are symbiotic than a lactic acid bacterium fermented liquid cultivated as a whole. That is, physiologically active factors related to maintenance of human health, such as antibacterial action, anticancer action, and anticholesterol action, of the obtained lactic acid bacteria fermented liquid, which is the object of the present invention, are present in the fermented liquids (No. 1 to No. 4). This is demonstrated by Tables 8 and 9.

【0043】[0043]

【試験例6】前述の実施例4で得た乳酸菌発酵液の血圧
降下作用に関する試験を行った。20週齢の平均体重3
51.6gの雄のラット12匹を温度24℃湿度50%
の動物室を12時間のサイクルで照明し、飼料は全試験
期間を通し飼育用固形飼料(オリエンタル株式会社の商
品)を用い、水道水と共に自由摂取としたものを試験に
供した。このようにして4週間飼育後、14時間絶食さ
せ、I群のラット6匹には乳酸菌発酵液5mlを経口投
与し、II群のラットには水を5ml経口投与した。投
与後3時間、6時間、9時間、12時間、24時間、4
8時間経過時に血圧測定を行った。測定の際の条件とし
て、測定前10分間38℃の温度環境下に放置した。
尚、試験開始後12時間経過後からは飼料を自由摂取さ
せた。ラット、マウス非観血自動血圧計TK−350
(株式会社エムイサービスの商品名)を用いて血圧を測
定し、その結果は下記の表10及び表11に示す通りで
ある。
Test Example 6 A test on the blood pressure lowering effect of the fermented lactic acid bacterium obtained in Example 4 was conducted. Average weight 3 at 20 weeks of age
12 male rats weighing 51.6 g were treated at a temperature of 24 ° C. and a humidity of 50%.
Were illuminated with a 12-hour cycle, and the feed was fed to the test using a solid feed for breeding (a product of Oriental Co., Ltd.) throughout the entire test period, with tap water being freely taken. After breeding for 4 weeks in this way, the rats were fasted for 14 hours, and 6 rats of Group I were orally administered with 5 ml of fermented lactic acid bacteria solution, and rats of Group II were orally administered with 5 ml of water. 3 hours, 6 hours, 9 hours, 12 hours, 24 hours, 4 hours after administration
Blood pressure was measured after 8 hours. As a condition for the measurement, the sample was left in a temperature environment of 38 ° C. for 10 minutes before the measurement.
After 12 hours from the start of the test, the animals were allowed to freely ingest the feed. Rat, mouse non-invasive automatic blood pressure monitor TK-350
Blood pressure was measured using (trade name of MMI Service Co., Ltd.), and the results are as shown in Tables 10 and 11 below.

【0044】[0044]

【表10】 [Table 10]

【0045】[0045]

【表11】 [Table 11]

【0046】上記表10及び表11より、乳酸菌発酵液
を投与したラットが6、9、12時間後に血圧が降下す
ることが判る。特に、平均降下はスタート時に対し、6
時間後は39%、9時間後は37%に達した。尚、ラッ
トの3時間と6時間後の若干の血圧低下は経日的変化に
よるもので、昼間はラットは安静時に入るため若干血圧
が低下したものと考えられる。
From the above Tables 10 and 11, it can be seen that the blood pressure of the rats to which the fermented lactic acid bacterium solution was administered was lowered 6, 9, and 12 hours later. In particular, the average descent is 6
After 39 hours, it reached 39%, and after 9 hours, it reached 37%. The slight decrease in blood pressure after 3 hours and 6 hours of the rat is due to daily changes, and it is considered that the blood pressure of the rat slightly decreased because the rat entered a resting state in the daytime.

【0047】[0047]

【発明の効果】本発明は、化学的添加物を一切使用する
事なく、多種の乳酸菌と酵母の共生培養を特殊なスター
ターと共に行うため、乳酸菌及び酵母の代謝産物に富ん
だ生理活性物質を生成し、前記の試験例1〜5の結果が
示す通り本発明により得られた乳酸菌発酵液は抗菌作
用、抗癌作用、免疫賦活作用、発癌物質の発現を抑制す
る抗変異原効果成長作用等があり、又試験例10及び1
1の結果が示す通り、血圧降下作用があり、人の健康を
保持するのに顕著な効果がある。
Industrial Applicability The present invention produces a physiologically active substance rich in metabolites of lactic acid bacteria and yeast, since a co-cultivation of various lactic acid bacteria and yeast is performed with a special starter without using any chemical additives. However, as shown in the results of Test Examples 1 to 5, the lactic acid bacteria fermented solution obtained according to the present invention has an antibacterial effect, an anticancer effect, an immunostimulatory effect, an antimutagenic effect that suppresses the expression of carcinogens, and the like. Yes, and Test Examples 10 and 1
As shown in the result of No. 1, it has a blood pressure lowering effect and has a remarkable effect in maintaining human health.

【0048】又、本発明は食品が元来有する機能を、微
生物を使用し、菌体外酵素を引き出し、生理活性物質を
抽出するという方法であるので身体に副作用を与えるこ
となく、身体に作用するのみで安全であるという効果が
ある。そのため、得られた乳酸菌発酵液は医薬品のみな
らず、食品素材等、幅広い用途があるという効果があ
る。
In addition, the present invention is a method of using a microorganism, extracting extracellular enzymes, and extracting a physiologically active substance from foods, since it has the function inherent in foods. There is an effect that it is safe just to do. Therefore, the obtained lactic acid bacteria fermented liquid has an effect that it has a wide range of uses not only for pharmaceuticals but also for food materials and the like.

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 複数種の乳酸菌、ビフィズス菌を個別的
に乳に接種し、この接種したものを各菌の生育最適温度
環境下で各々個別的に適当時間培養後、得られた各培養
菌液を個別的に適当量採取し、酵母と共に一括して乳に
接種したものを異なる温度環境下で適当時間培養したる
後、各温度別に得られた各スターターを夫々所定の割合
で乳に添加し恒温環境下で一定時間培養後、得られた発
酵カードから発酵液を抽出したことを特徴とする乳酸菌
発酵液の製造方法。
1. A method of inoculating milk individually with a plurality of types of lactic acid bacteria and bifidobacteria, culturing the inoculated products individually for an appropriate time under an optimum temperature environment for the growth of each bacterium, and then obtaining each cultured bacterium. A suitable amount of the liquid is individually collected, and after inoculating the milk together with the yeast in a batch at a different temperature environment for a suitable time, each starter obtained at each temperature is added to the milk at a predetermined ratio. A method for producing a fermented lactic acid bacterium, comprising fermenting a fermented liquor from the obtained fermentation curd after culturing for a certain time in a constant temperature environment.
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