JP2530662B2 - Method for producing D-asparagine - Google Patents
Method for producing D-asparagineInfo
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Description
【発明の詳細な説明】 <産業上の利用分野> 本発明は医薬中間体として有用なD−アスパラギンを
選択資化法によって工業的に製造する方法に関するもの
である。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION <Industrial Application Field> The present invention relates to a method for industrially producing D-asparagine useful as a pharmaceutical intermediate by a selective assimilation method.
<従来の技術> DL−5−カルバモイルメチルヒダントインを微生物に
よりN−カルバミル−D−アスパラギンにしたのち、加
水分解によりD−アスパラギンを得る方法はすでに知ら
れている(特開昭61−152291号公報)。<Prior Art> A method for obtaining D-asparagine by hydrolyzing N-carbamyl-D-asparagine after converting DL-5-carbamoylmethylhydantoin by a microorganism is already known (Japanese Patent Application Laid-Open No. 61-152291). ).
<発明が解決しようとする問題点> 前記方法はDL−5−カルバモイルメチルヒダントイン
からD−アスパラギンを得る方法として優れている。<Problems to be Solved by the Invention> The above method is excellent as a method for obtaining D-asparagine from DL-5-carbamoylmethylhydantoin.
しかしながら、DL−5−カルバモイルメチルヒダント
インからN−カルバミル−D−アスパラギンを得る反応
の収率は60%以上と高いが、生菌体を使用する場合には
50g/もの分離菌体を必要とすること、また得られたN
−カルバモイル−D−アスパラギンからD−アスパラギ
ンへの加水分解が困難なことなど工業的な製造法として
有利な方法とはいえない。However, the yield of the reaction for obtaining N-carbamyl-D-asparagine from DL-5-carbamoylmethylhydantoin is as high as 60% or more, but when using viable cells,
It requires as much as 50 g / separate bacterial cells, and the obtained N
It is difficult to say that carbamoyl-D-asparagine is hydrolyzed to D-asparagine, which is not an advantageous method as an industrial production method.
<問題点を解決するための手段および作用> そこで、本発明者らは工業的に実用化可能な方法を提
供することを目的として、DL−アスパラギンを含有する
培地で微生物を培養することによりL−アスパラギンの
みを選択資化せしめ、D−アスパラギンを製造する方法
を検討した。<Means and Actions for Solving Problems> Therefore, for the purpose of providing a method that can be industrially put to practical use, the present inventors have studied L by culturing a microorganism in a medium containing DL-asparagine. -A method for selectively assimilating asparagine to produce D-asparagine was examined.
この方法によれば、L−アスパラギンは微生物が生育
するためのエネルギーとして消費されるためにL−アス
パラギンを全量資化した時点では培地中にD−アスパラ
ギンのみが蓄積され、他の副生物はほとんど存在しない
ことになる。According to this method, since L-asparagine is consumed as energy for the growth of microorganisms, only D-asparagine is accumulated in the medium at the time when the entire amount of L-asparagine is assimilated, and most of the other by-products. It doesn't exist.
加えて、選ばれた微生物がラセマーゼを保有しない
か、あるいは保有したとしても不活性化される条件下で
培養することにより、DL−アスパラギンに含まれるD−
アスパラギンは実質的に理論量蓄積されることになる。In addition, by culturing under conditions in which the selected microorganism does not carry racemase, or is inactivated even if it does, D- contained in DL-asparagine
Asparagine will be accumulated in a theoretical amount.
本発明者らは、このような条件に合致する微生物を探
究すべく鋭意検討した結果、本発明に到達した。The inventors of the present invention have arrived at the present invention as a result of diligent studies in order to search for microorganisms that meet such conditions.
すなわち、DL−アスパラギンを炭素源および窒素源と
して含む培地中で、L−アスパラギンのみを資化しD−
アスパラギンを実質的に資化しない選択資化能を有する
微生物を見い出すべく研究した結果、バクテリウム属フ
ラボバクテリウム属、クレブシェラ属、プロビデンシア
属、シュードモナス属、ピキア属、キャンディダ属、ト
ルロプシス属、クリプトコッカス属、ロドトルラ属、ロ
ドスポリジウム属に属する微生物をDL−アスパラギンを
含有する培地中で培養することにより、数+g/以上の
蓄積濃度でD−アスパラギンが得られることを見い出
し、本発明を完成した。That is, in a medium containing DL-asparagine as a carbon source and a nitrogen source, only L-asparagine was assimilated and D-asparagine was used.
As a result of research to find a microorganism having a selective assimilation ability that does not substantially utilize asparagine, the genus Flavobacterium, Klebsiella, Providencia, Pseudomonas, Pichia, Candida, Torlopsis, Cryptococcus It was found that D-asparagine can be obtained at a cumulative concentration of several g / g / or more by culturing microorganisms belonging to the genera Rhodotorula and Rhodosporidium in a medium containing DL-asparagine, and completed the present invention.
すなわち、本発明はDL−アスパラギンを含有する培地
中で、バクテリウム(Bacterium)属フラボバクテリウ
ム(Flavobacterium)属、クレブシェラ(Klebsiella)
属、プロビデンシア(Providencia)属、シュードモナ
ス(Pseudomonas)属、ピキア(Pichia)属、キャンデ
ィダ(Candida)属、トルロプシス(Torulopsis)属、
クリプトコッカス(Cryptococcus)属、ロドトルラ(Rh
odotorula)属、ロドスポリジウム(Rhodospoudium)属
に属しかつL−アスパラギンを資化しD−アスパラギン
を実質的に資化しない能力を有する微生物を培養し、培
養液中からD−アスパラギンを単離採取することを特徴
とするD−アスパラギンの製造法である。That is, the present invention, in a medium containing DL-asparagine, genus Flavobacterium (genus Flavobacterium), Klebsiella (Klebsiella)
Genus, Providencia (Providencia), Pseudomonas (Pseudomonas), Pichia (Pichia), Candida (Candida), Torulopsis (Torulopsis),
Cryptococcus spp., Rhodotorula (Rh
A microorganism belonging to the genus odotorula and the genus Rhodospoudium and having the ability to utilize L-asparagine and substantially not assimilate D-asparagine is cultured, and D-asparagine is isolated and collected from the culture solution. And a method for producing D-asparagine.
ここで、D−アスパラギンを実質的に資化しない能力
を有する微生物とは、本発明の効果を実質的に阻害しな
い範囲においてD−アスパラギンを少量のみ資化する微
生物、あるいは、L−アスパラギンを資化したのち、L
−アスパラギンの不存在下ではD−アスパラギンを資化
する微生物も含まれる。Here, the microorganism having the ability of not substantially utilizing D-asparagine means a microorganism that utilizes only a small amount of D-asparagine or L-asparagine within a range that does not substantially impair the effects of the present invention. After turning into L
-In the absence of asparagine, microorganisms that assimilate D-asparagine are also included.
本発明で使用する微生物としては具体的にはたとえば
次のものが挙げられる。Specific examples of the microorganism used in the present invention include the following.
バクテリウム・カダベリス (Bacterium cadaveris) ATCC9760 フラボバクテリウム・インドルセチカム (Flavobacterium indoltheticum) ATCC27950 クレブシェラ・プノモニアエ (Klebsiella pneumoniae) ATCC12658 プロビデンシア・レットゲリ (Providencia rettgeri) ATCC9886 シュードモナス・プチダ (Pseudomonas putida) FERM P−15281 ピキア・ブルトニイ (Pichia burtonii) ATCC20279 キァンディダ・ルゴーザ (Candida rugosa) ATCC10571 キァンディダ・フミコーラ (Candida humicola) ATCC36992 トルロプシス・キァンディダ (Torulopsis Candida) IFO0380 クリプトコッカス・ロウレンティ (Cryptococcus laurentii) ATCC36832 ロドトルラ・グルティニス (Rhodotorula glutinis) IFO1099 ロドスポリジウム・トルロイデス (Rhodosporidiam toruloides) ATCC10788 本発明では、上記微生物を使用することにより、DL−
アスパラギンを炭素源、窒素源として含有する培地中で
培養を行うことができる。他の炭素源および/または窒
素源、たとえば、グルコース、グリセロース、塩安など
を含有してもよいが、好ましくは、DL−アスパラギンを
単一炭素源、窒素源として含有する培地中で培養を行
う。Bacterium cadaveris ATCC9760 Flavobacterium indoltheticum ATCC27950 Klebsiella pneumoniae ATCC12658 burtonii) ATCC20279 Candida rugosa ATCC10571 Candida humicola ATCC36992 Torulopsis Candida IFO0380 toruloides) ATCC10788 In the present invention, DL-
The culture can be performed in a medium containing asparagine as a carbon source and a nitrogen source. Other carbon sources and / or nitrogen sources, for example, glucose, glycerose, ammonium chloride, etc. may be contained, but preferably the culture is carried out in a medium containing DL-asparagine as the single carbon source and nitrogen source. .
培地中のDL−アスパラギンの濃度は1中に1〜150
g、好ましくは10〜100gである。DL−アスパラギン濃度
が低いと生産効果が悪く、逆に高いと培養時間が長くな
ったり、微生物の生育が阻害される傾向となる。The concentration of DL-asparagine in the medium is 1 to 150 in 1
g, preferably 10 to 100 g. If the DL-asparagine concentration is low, the production effect will be poor, and conversely, if the DL-asparagine concentration is high, the culture time will be longer and the growth of microorganisms will tend to be inhibited.
DL−アスパラギンは始めから培養液に全量仕込んでも
よいが、濃度が高くなると微生物の生育が遅くなり培養
時間が長くなるので、初濃度を20〜50g/にし、残りの
DL−アスパラギンを分割添加する流加培養が好ましい。DL-asparagine may be added to the culture solution from the beginning, but if the concentration becomes high, the growth of microorganisms will slow down and the culture time will become longer, so the initial concentration is set to 20 to 50 g /
Fed-batch culture in which DL-asparagine is added in portions is preferred.
培養は酸性で実施するのが好ましい。培養液は通常培
養開始時にpH4〜6に調製するが、培養が進むにつれ
て、pHが上昇する。そのままで培養すると、D−アスパ
ラギンの回収率が低下したり、L−アスパラギンの資化
速度が遅くなったりするので、通常、pHを酸性側にコン
トロールする。培養時のpHは通常3〜7、好ましくは4
〜6.5に調整する。調整用の酸としては、たとえば、リ
ン酸、硫酸、塩酸などの無機酸水溶液が好ましい。The culturing is preferably carried out acidic. The culture solution is usually adjusted to pH 4 to 6 at the start of culture, but the pH increases as the culture progresses. If it is cultured as it is, the recovery rate of D-asparagine is lowered and the assimilation rate of L-asparagine is slowed. Therefore, the pH is usually controlled to the acidic side. The pH during culturing is usually 3 to 7, preferably 4
Adjust to ~ 6.5. As the adjusting acid, for example, an aqueous solution of an inorganic acid such as phosphoric acid, sulfuric acid or hydrochloric acid is preferable.
培養温度は通常20〜40℃、好ましくは25〜35℃であ
る。The culture temperature is usually 20 to 40 ° C, preferably 25 to 35 ° C.
培養は通気しながら攪拌する。通気量は通常、0.5〜
2.0vvm、好ましくは0.6〜1.2vvmである。通気量が少な
すぎるとL−アスパラギン資化速度が遅くなる傾向とな
り、また、多くても効果に変わりなく、むしろ培養液の
蒸発を促進するために培養液濃度が高くなったり、発泡
が激しくなり好ましくない。The culture is agitated with aeration. Aeration rate is usually 0.5-
It is 2.0 vvm, preferably 0.6 to 1.2 vvm. If the amount of aeration is too small, the assimilation rate of L-asparagine will tend to be slow, and even if it is large, the effect will not change, but rather the concentration of the culture solution will be high to promote evaporation of the culture solution, and foaming will become violent. Not preferable.
L−アスパラギンがすべて資化された時点で通常培養
を終了する。L−アスパラギンの全量資化はDOをモニタ
ーすることにより、また、アスパラギンのD、Lを分析
するか、酸の添加量をモニターすることにより知ること
ができる。Normal culture is terminated when L-asparagine is completely assimilated. The total utilization of L-asparagine can be known by monitoring DO, or by analyzing D and L of asparagine or by monitoring the amount of acid added.
L−アスパラギンがすべて資化されたのち、さらに培
養を続けるとD−アスパラギンも徐々に資化される場合
もあるので、培養の終点を明確に知ることが好ましい。After all L-asparagine has been assimilated, further culturing may continue to gradually assimilate D-asparagine, so it is preferable to clearly know the end point of the culture.
かくして得られた培養液を遠心分離により菌体を除去
したのち、通常の方法によってD−アスパラギンを単離
すればよい。たとえば、培養液をイオン交換樹脂SK−1B
(三菱化成(株)製)に通液してアスパラギンを樹脂に
吸着させた後、よく水洗し、次いでアンモニア水溶液で
溶出させた後、溶出液を濃縮することによりD−アスパ
ラギンを単離することができる。ここで得られた粗D−
アスパラギンを水で再結晶すれば精製されたD−アスパ
ラギンが得られる。After removing the bacterial cells from the thus obtained culture solution by centrifugation, D-asparagine may be isolated by a usual method. For example, the culture solution is ion exchange resin SK-1B.
(Made by Mitsubishi Kasei Co., Ltd.) to adsorb asparagine on the resin, wash it well with water, then elute with an aqueous ammonia solution, and then concentrate the eluate to isolate D-asparagine. You can Coarse D-obtained here
Recrystallization of asparagine with water gives purified D-asparagine.
<実施例> 以下、実施例により本発明を具体的に説明する。<Examples> Hereinafter, the present invention will be specifically described with reference to Examples.
実施例においてアスパラギンの光学純度分析は、濃縮
乾燥したD−アスパラギン含有粉末をメタノール−塩酸
によりメチルエステル化したのち3,5−ジニトロフェニ
ルイソシアネートと反応させ、これを次の条件によりHP
LCで分析する方法によって行った。In the examples, the optical purity analysis of asparagine was carried out by concentrating and drying the D-asparagine-containing powder after methyl esterification with methanol-hydrochloric acid and then reacting it with 3,5-dinitrophenylisocyanate.
It was carried out by the method of analyzing by LC.
カラム:OA−1000(住友化学) 移動層:n−ヘキサン:ジクロルエタン:エタノール(6
8:28:4) 流 速:1ml/min 検 出:UV254nm 実施例1 乾燥ブイヨン30g/(pH6.0)を含む培地100mlを1
三角フラスコに分注し、120℃、20分間滅菌し、種培養
培地とした。これにキャンディダ・ルゴーザATCC10571
を一白金耳植菌し、30℃で一日振とう培養した。一方、
DL−アスパラギン60g/、リン酸−カリウム2g/、硫
酸マグネシウム0.5g/、粉末酵母エキス1.0g/を含む
培地(pH5.0)900mlを3のミニジャーファーメンター
に仕込み滅菌して主培養培地とした。これに先の種培養
液を接種し、30℃、1.0vvm通気攪拌培養をした。なお、
培養中は2N硫酸によりpH5.0±0.1に調整を行った。約15
時間で培地中のL−アスパラギンは全量資化され、D−
アスパラギン29.3gを含む培養液を得た。Column: OA-1000 (Sumitomo Chemical) Mobile phase: n-Hexane: Dichloroethane: Ethanol (6
8: 28: 4) Flow rate: 1 ml / min Detection: UV254 nm Example 1 100 ml of medium containing 30 g of dry broth / (pH 6.0)
It was dispensed into an Erlenmeyer flask and sterilized at 120 ° C. for 20 minutes to obtain a seed culture medium. This is Candida Lugosa ATCC10571
Was inoculated with 1 platinum loop and cultured at 30 ° C for 1 day with shaking. on the other hand,
A medium (pH 5.0) 900 ml containing DL-asparagine 60 g /, phosphate-potassium 2 g /, magnesium sulfate 0.5 g /, powdered yeast extract 1.0 g / was charged into 3 mini jar fermenters and sterilized to obtain a main culture medium. did. The above seed culture solution was inoculated into this, and cultured at 30 ° C. with aeration and aeration of 1.0 vvm. In addition,
During the culture, the pH was adjusted to 5.0 ± 0.1 with 2N sulfuric acid. About 15
The total amount of L-asparagine in the medium was assimilated and D-
A culture solution containing 29.3 g of asparagine was obtained.
この培養液を10,000rpm、10分間遠心分離して菌体を
除いたのち、イオン交換樹脂SK−1B(H型)を充填した
カラムに通液し、D−アスパラギンを吸着させた。この
カラムを十分水洗したのち、4%アンモニア水でD−ア
スパラギンを溶出した。この溶出液を濃縮、乾固してD
−アスパラギン28.4gを得た。水で再結晶して精製され
たD−アスパラギン25.2gを得た。化学純度99.9%以
上、光学純度99.8%以上であった。The culture was centrifuged at 10,000 rpm for 10 minutes to remove the cells, and then passed through a column packed with ion exchange resin SK-1B (H type) to adsorb D-asparagine. After thoroughly washing this column with water, D-asparagine was eluted with 4% aqueous ammonia. Concentrate and dry the eluate to D
-Obtained 28.4 g of asparagine. Recrystallization from water gave 25.2 g of purified D-asparagine. The chemical purity was 99.9% or higher and the optical purity was 99.8% or higher.
実施例2〜12 乾燥ブイヨン30g/からなる種培地(pH5.0)5mlを18
×180mmφの試験管に分注し、滅菌した。これに表1に
示した微生物を一白金耳植菌し、30℃で1〜2日振とう
培養した。一方、DL−アスパラギン10g/、リン酸−カ
リウム2g/、硫酸マグネシウム0.5g/、粉末酵母エキ
ス0.5g/よりなる主培養培地(pH5.0)5mlを18×180mm
φ試験管に分注して滅菌した。これに先の種培養液を5
%シードで接種し、30℃で振とう培養した。24時間後、
遠心分離して菌体を除いたのち減圧濃縮して乾固ののち
乾燥した。得られた固形分についてHPLCによりアスパラ
ギンのL体、D体の存在率を求めた。Examples 2 to 12 18 ml of 5 ml of seed medium (pH 5.0) consisting of 30 g of dry broth
It was dispensed into a test tube of × 180 mmφ and sterilized. One platinum loop of the microorganisms shown in Table 1 was inoculated into this and cultured at 30 ° C. for 1 to 2 days with shaking. On the other hand, 5 ml of a main culture medium (pH 5.0) consisting of DL-asparagine 10 g /, phosphate-potassium 2 g /, magnesium sulfate 0.5 g /, powdered yeast extract 0.5 g / 18 × 180 mm
It was dispensed into a φ test tube and sterilized. Add the above seed culture to 5
% Seeds and shake culture at 30 ° C. 24 hours later
The cells were centrifuged to remove the cells, concentrated under reduced pressure, dried to dryness, and then dried. The abundance of asparagine L-form and D-form of the obtained solid content was determined by HPLC.
結果を表1に示した。 The results are shown in Table 1.
<発明の効果> 本発明は次の効果を発揮する。 <Effects of the Invention> The present invention exhibits the following effects.
(1)L−アスパラギンを高選択的に資化することがで
きる。(1) L-asparagine can be assimilated highly selectively.
(2)蓄積濃度が高く、短時間でD−アスパラギンが得
られる。(2) The accumulated concentration is high, and D-asparagine can be obtained in a short time.
(3)さらに、DL−アスパラギンを実質的な炭素源およ
び窒素源として微生物を培養することができる。(3) Furthermore, the microorganism can be cultured using DL-asparagine as a substantial carbon source and nitrogen source.
(4)消費されたL−アスパラギンはほとんど炭酸ガス
と水にまで変換されて、培養液中にはD−アスパラギン
以外の副生物は実質的には存在しない。(4) Most of the consumed L-asparagine is converted into carbon dioxide gas and water, and by-products other than D-asparagine are substantially absent in the culture solution.
(5)このために、D−アスパラギンの単離精製が容易
である。(5) Therefore, isolation and purification of D-asparagine is easy.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:22) C12R 1:22) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:40) C12R 1:40) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:84) C12R 1:84) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:72) C12R 1:72) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:88) C12R 1:88) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:645) C12R 1:645) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI technical display location (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:22) C12R 1:22) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:40) C12R 1:40) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:84) C12R 1:84) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:72) C12R 1:72) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1:88) C12R 1:88) (C12P 41/00 (C12P 41/00 C12R 1: 645) C12R 1: 645)
Claims (1)
クテリウム(Bacterium)属、フラボバクテリウム(Fla
vobacterium)属、クレブシェラ(Klebsiella)属、プ
ロビデンシア(Providencia)属、シュードモナス(Pse
udomonas)属、ピキア(Pichia)属、キャンディダ(Ca
ndida)属、トルロプシス(Torulopsis)属、クリプト
コッカス(Cryptococcus)属、ロドトルラ(Rhodotorul
a)属、ロドスポリジウム(Rhodosporldium)属に属し
かつL−アスパラギンを資化しD−アスパラギンを実質
的に資化しない能力を有する微生物を培養し、培養液中
からD−アスパラギンを単離採取することを特徴とする
D−アスパラギンの製造法。1. A bacterium of the genus Bacterium, Flavobacterium (Fla) in a medium containing DL-asparagine.
vobacterium genus, Klebsiella genus, Providencia genus, Pseudomonas (Pse)
udomonas genus, Pichia genus, Candida (Ca
genus ndida, genus Torulopsis, genus Cryptococcus, Rhodotorul
a) A microorganism belonging to the genus Rhodosporldium and having the ability to utilize L-asparagine and substantially not utilize D-asparagine is cultured, and D-asparagine is isolated and collected from the culture solution. A method for producing D-asparagine characterized by the following.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20995087A JP2530662B2 (en) | 1987-08-24 | 1987-08-24 | Method for producing D-asparagine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20995087A JP2530662B2 (en) | 1987-08-24 | 1987-08-24 | Method for producing D-asparagine |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6455194A JPS6455194A (en) | 1989-03-02 |
JP2530662B2 true JP2530662B2 (en) | 1996-09-04 |
Family
ID=16581351
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP20995087A Expired - Lifetime JP2530662B2 (en) | 1987-08-24 | 1987-08-24 | Method for producing D-asparagine |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP2530662B2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102982618A (en) * | 2012-08-29 | 2013-03-20 | 上海研庆电子有限公司 | CPP-ARPL-K roadside parking lock urban common platform |
-
1987
- 1987-08-24 JP JP20995087A patent/JP2530662B2/en not_active Expired - Lifetime
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CN102982618A (en) * | 2012-08-29 | 2013-03-20 | 上海研庆电子有限公司 | CPP-ARPL-K roadside parking lock urban common platform |
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Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6455194A (en) | 1989-03-02 |
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