JP2506992B2 - 採血管 - Google Patents
採血管Info
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- blood collection
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measurement Of The Respiration, Hearing Ability, Form, And Blood Characteristics Of Living Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 （産業上の利用分野） 本発明は、血中の解糖による血糖の低下を速効的に阻
止することにより、血糖の初期値を維持し、かつ血糖検
査用検体と同一検体で同時に生化学検査か行なえる採血
管に関する。
止することにより、血糖の初期値を維持し、かつ血糖検
査用検体と同一検体で同時に生化学検査か行なえる採血
管に関する。
（従来の技術） 各種の臨床検査や病理学的研究のため血液成分の測定
がなされている。これらの血液成分の測定の為に使用す
る採血管は、ガラス製もしくは合成樹脂製の採血管本体
と該採血管本体の口部に使用するゴム製もしくは合成樹
脂製の栓体とからなり、これら採血管には、その底部
に、検査目的に応じて予め解糖阻止剤、抗凝固剤その他
の薬剤が粉末、顆粒又は水溶液の状態で収容されている
ものがある。
がなされている。これらの血液成分の測定の為に使用す
る採血管は、ガラス製もしくは合成樹脂製の採血管本体
と該採血管本体の口部に使用するゴム製もしくは合成樹
脂製の栓体とからなり、これら採血管には、その底部
に、検査目的に応じて予め解糖阻止剤、抗凝固剤その他
の薬剤が粉末、顆粒又は水溶液の状態で収容されている
ものがある。
一般に、血液成分の検査を行う場合には、採血から測
定まである程度の時間を要する。特に、大病院や検査セ
ンターなどでは、多数の検体を扱うため、検査業務の流
れからいっても採血後少くとも室温下で数時間保存され
ることは避けられないし、場合によっては集配されてき
た検体にいたっては、更に長時間保存されることがあ
る。
定まである程度の時間を要する。特に、大病院や検査セ
ンターなどでは、多数の検体を扱うため、検査業務の流
れからいっても採血後少くとも室温下で数時間保存され
ることは避けられないし、場合によっては集配されてき
た検体にいたっては、更に長時間保存されることがあ
る。
血中のグルコース（血糖）の測定は、糖代謝状態の検
査のための重要な測定項目である。
査のための重要な測定項目である。
血糖検査の場合、採血後の保存期間中に解糖により血
糖値が低下し易いので、その抑制を目的として解糖阻止
剤が収容された採血管が利用されている。従来、解糖阻
止剤としてフッ化塩、モノハロゲン化酢酸金属塩、クエ
ン酸およびＤ−マンノースなどが知られている。しか
し、これらの公知の解糖阻止剤には以下のような問題点
があった。
糖値が低下し易いので、その抑制を目的として解糖阻止
剤が収容された採血管が利用されている。従来、解糖阻
止剤としてフッ化塩、モノハロゲン化酢酸金属塩、クエ
ン酸およびＤ−マンノースなどが知られている。しか
し、これらの公知の解糖阻止剤には以下のような問題点
があった。
フッ化塩とモノハロゲン化酢酸金属塩は、それぞれエ
ノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸脱水素酵素
の作用を阻害することにより解糖阻止効果を有するが、
これらの酵素は解糖系の下位の酵素であるため、阻止効
果発現までに時間がかかり、その間に血糖が少し低下す
るので速効性に乏しいという問題があった。しかし、阻
止効果が１度発現すると、それ以後は持続的に血糖は維
持される。また、これらの解糖阻止剤は、血液検体に溶
血をおこす傾向があり、溶血すれば赤血球よりヘモグロ
ビンやカリウムが血漿中に漏出する。従って、この場合
は、これらの項目を正確に測定できない。さらに、比色
法を使用する血糖測定法においても誤差を与える。ま
た、これらの解糖阻止剤は、赤血球中の解糖系酵素の選
択的な阻害剤ではなく、酵素一般を阻害するため、血液
検体中の酵素成分の測定を行なえない。すなわち、これ
らの解糖阻止剤を使用すると、血糖検査と共に、カリウ
ムやナトリウムのような電解質や各種の酵素の検査のよ
うな、所謂生化学検査とを、同一検体を使用して同時に
出来ないという問題点があった。
ノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸脱水素酵素
の作用を阻害することにより解糖阻止効果を有するが、
これらの酵素は解糖系の下位の酵素であるため、阻止効
果発現までに時間がかかり、その間に血糖が少し低下す
るので速効性に乏しいという問題があった。しかし、阻
止効果が１度発現すると、それ以後は持続的に血糖は維
持される。また、これらの解糖阻止剤は、血液検体に溶
血をおこす傾向があり、溶血すれば赤血球よりヘモグロ
ビンやカリウムが血漿中に漏出する。従って、この場合
は、これらの項目を正確に測定できない。さらに、比色
法を使用する血糖測定法においても誤差を与える。ま
た、これらの解糖阻止剤は、赤血球中の解糖系酵素の選
択的な阻害剤ではなく、酵素一般を阻害するため、血液
検体中の酵素成分の測定を行なえない。すなわち、これ
らの解糖阻止剤を使用すると、血糖検査と共に、カリウ
ムやナトリウムのような電解質や各種の酵素の検査のよ
うな、所謂生化学検査とを、同一検体を使用して同時に
出来ないという問題点があった。
クエン酸は、ホスホフルクトキナーゼという解糖系の
上位の酵素を阻害するので、速効的な解糖阻止効果を示
す。しかし、クエン酸は、強酸性（pH1〜２）なので、
血液と混合されると血液のpHが酸性（pH4〜５）とな
り、赤血球が変性し溶血が激しくおこる。溶血すると、
前述のフッ化塩やモノハロゲン化酢酸金属塩と同様に、
血糖と生化学検査を同一検体で同時に測定し得ない。
上位の酵素を阻害するので、速効的な解糖阻止効果を示
す。しかし、クエン酸は、強酸性（pH1〜２）なので、
血液と混合されると血液のpHが酸性（pH4〜５）とな
り、赤血球が変性し溶血が激しくおこる。溶血すると、
前述のフッ化塩やモノハロゲン化酢酸金属塩と同様に、
血糖と生化学検査を同一検体で同時に測定し得ない。
Ｄ−マンノースは、グルコースと同様にヘキソキナー
ゼの基質となるので、ヘキソキナーゼのグルコースの解
糖作用において、グルコースに競合する。このことによ
り、解糖を阻止するため、速効性がある。また、溶血を
おこすことがないので、血糖と生化学検査と同一検体で
一応は、同時に行なえる。しかし、血糖測定法のうち
で、最近多く使用されているグルコース脱水素酵素を用
いる方法では、基質特異性の低い酵素が使われている場
合、グルコースだけでなく、異性対のＤ−マンノースも
脱水素される。そのため正の誤差の原因になるという問
題点が残っている。例えば、グルコースデヒドロゲナー
ゼの基質特異性が低い場合、グルコース測定値が500〜1
000mg/dlという値となり、正常値の５〜10倍の正の誤差
を与える。
ゼの基質となるので、ヘキソキナーゼのグルコースの解
糖作用において、グルコースに競合する。このことによ
り、解糖を阻止するため、速効性がある。また、溶血を
おこすことがないので、血糖と生化学検査と同一検体で
一応は、同時に行なえる。しかし、血糖測定法のうち
で、最近多く使用されているグルコース脱水素酵素を用
いる方法では、基質特異性の低い酵素が使われている場
合、グルコースだけでなく、異性対のＤ−マンノースも
脱水素される。そのため正の誤差の原因になるという問
題点が残っている。例えば、グルコースデヒドロゲナー
ゼの基質特異性が低い場合、グルコース測定値が500〜1
000mg/dlという値となり、正常値の５〜10倍の正の誤差
を与える。
従って、フッ化塩、モノハロゲン化酢酸金属塩、クエ
ン酸またはＤ−マンノースなどが収容された採血管を使
用すると、血糖検査用検体と同一検体で同時に生化学検
査を正確に行うことができなかった。
ン酸またはＤ−マンノースなどが収容された採血管を使
用すると、血糖検査用検体と同一検体で同時に生化学検
査を正確に行うことができなかった。
（発明が解決しようとする課題） 本発明は、上記従来の問題点を解決するものであり、
その目的とするところは、血中の解糖による血糖の低下
を速効的に阻止することにより、血糖の初期値を維持
し、かつ血糖検査用検体と同一検体で同時に生化学検査
が、共に正確に行なえる採血管を提供することにある。
その目的とするところは、血中の解糖による血糖の低下
を速効的に阻止することにより、血糖の初期値を維持
し、かつ血糖検査用検体と同一検体で同時に生化学検査
が、共に正確に行なえる採血管を提供することにある。
（課題を解決するための手段） 本発明の採血管は、２−デオキシ−Ｄ−グルコースま
たはその誘導体が血液検体1mlあたり2.5〜15mgの割合と
なるように収容されていることが特徴であり、そのこと
により上記目的が達成される。
たはその誘導体が血液検体1mlあたり2.5〜15mgの割合と
なるように収容されていることが特徴であり、そのこと
により上記目的が達成される。
本発明の２−デオキシ−Ｄ−グルコース誘導体とは、
２−アミノ−２−デオキシ−Ｄ−グルコース（以下、Ｄ
−グルコサミン）、または２−アセトアミド−２−デオ
キシ−Ｄ−グルコースなどを云う。
２−アミノ−２−デオキシ−Ｄ−グルコース（以下、Ｄ
−グルコサミン）、または２−アセトアミド−２−デオ
キシ−Ｄ−グルコースなどを云う。
使用される２−デオキシ−Ｄ−グルコースまたはその
誘導体の量は、血液検体1mlあたり、2.5〜15mg、好まし
くは５〜10mgとなるように採血管に加えられる。2.5mg
より少ないときは、速効的な解糖阻止効果が不完全であ
り、15mgより多すぎると、血液の浸透圧に異常をきたし
溶血をおこすことがある。
誘導体の量は、血液検体1mlあたり、2.5〜15mg、好まし
くは５〜10mgとなるように採血管に加えられる。2.5mg
より少ないときは、速効的な解糖阻止効果が不完全であ
り、15mgより多すぎると、血液の浸透圧に異常をきたし
溶血をおこすことがある。
また、本発明の採血管に、更にヘパリン塩のような血
液抗凝固剤、または、トロンビンのような血液凝固促進
剤を加えることは任意である。
液抗凝固剤、または、トロンビンのような血液凝固促進
剤を加えることは任意である。
本発明の採血管は、次のようにして製造される。採血
管本体の材質は、ガラス製、合成樹脂製のどちらでもよ
い。合成樹脂製のものは、射出成形法によって製造され
るのが最も効率が良く、その他には、ブロー成形、圧縮
成形、トランスファー成形、真空成形、キャスト成形等
の適宜の方法によって製造される。
管本体の材質は、ガラス製、合成樹脂製のどちらでもよ
い。合成樹脂製のものは、射出成形法によって製造され
るのが最も効率が良く、その他には、ブロー成形、圧縮
成形、トランスファー成形、真空成形、キャスト成形等
の適宜の方法によって製造される。
この採血管本体に、２−デオキシ−Ｄ−グルコースま
たはその誘導体（以下、該薬剤とする）が、粉末、顆粒
または水溶液の状態で収容された後、ゴム製もしくは合
成樹脂製の栓体で閉蓋される。また、該薬剤の粉末また
は顆粒を適当な溶媒に分散させたものを、ガラスや合成
樹脂製のペレットやビーズにコーティングし、このペレ
ットやビーズを採血管本体に収容してもよい。また、上
記の溶媒に分散したものを、採血管本体内壁にコーティ
ングしてもよい。
たはその誘導体（以下、該薬剤とする）が、粉末、顆粒
または水溶液の状態で収容された後、ゴム製もしくは合
成樹脂製の栓体で閉蓋される。また、該薬剤の粉末また
は顆粒を適当な溶媒に分散させたものを、ガラスや合成
樹脂製のペレットやビーズにコーティングし、このペレ
ットやビーズを採血管本体に収容してもよい。また、上
記の溶媒に分散したものを、採血管本体内壁にコーティ
ングしてもよい。
また、採血管は常圧のものばかりでなく、該薬剤が収
容された後、内部を減圧にすることにより所謂真空採血
管としてもよい。
容された後、内部を減圧にすることにより所謂真空採血
管としてもよい。
また、該採血管内部に血漿（血清）分離剤を収容して
おくことは任意である。
おくことは任意である。
本発明の採血管の使用方法は、上記のようにして製造
された採血管に、被採血者からの血液を加えた後、遠心
分離して血漿または血清分画を得、それを各種の検査の
検体として使用する。
された採血管に、被採血者からの血液を加えた後、遠心
分離して血漿または血清分画を得、それを各種の検査の
検体として使用する。
（作用） 採血管に収容されている２−デオキシ−Ｄ−グルコー
スまたはその誘導体は解糖系のヘキソキナーゼによるグ
ルコース→グルコース−６−リン酸の反応において、Ｄ
−グルコースと競合する。そのため、グルコース−６−
リン酸の生成が阻害され、赤血球膜中へ入るグルコース
−６−リン酸の量が極端に減少する。つまり赤血球膜の
糖輸送機構が阻害される。このように、解糖系が初期の
段階で阻害されるため解糖阻止の速効性を有する。
スまたはその誘導体は解糖系のヘキソキナーゼによるグ
ルコース→グルコース−６−リン酸の反応において、Ｄ
−グルコースと競合する。そのため、グルコース−６−
リン酸の生成が阻害され、赤血球膜中へ入るグルコース
−６−リン酸の量が極端に減少する。つまり赤血球膜の
糖輸送機構が阻害される。このように、解糖系が初期の
段階で阻害されるため解糖阻止の速効性を有する。
また、２−デオキシ−Ｄ−グルコースまたはその誘導
体は、Ｄ−マンノースのように基質特異性の低いグルコ
ース脱水素酵素の基質でないので、グルコース値の正の
誤差を与えることがない。
体は、Ｄ−マンノースのように基質特異性の低いグルコ
ース脱水素酵素の基質でないので、グルコース値の正の
誤差を与えることがない。
また、２−デオキシ−Ｄ−グルコースまたはその誘導
体は、血液1mlあたり15mg以下で使用すれば、血液検体
を溶血させることもなく、生化学検査に悪影響をひき起
こさない。
体は、血液1mlあたり15mg以下で使用すれば、血液検体
を溶血させることもなく、生化学検査に悪影響をひき起
こさない。
（実施例） 以下に本発明の実施例につき説明する。
実施例１ 内径が1.5cm、長さが11cmのポリエチレンテレフタレ
ート製の採血管本体を作り、その中にＤ−グルコサミン
30.0mgおよびヘパリンNa90uを収容した後、ブチルゴム
製の栓体で閉蓋して採血管とした。
ート製の採血管本体を作り、その中にＤ−グルコサミン
30.0mgおよびヘパリンNa90uを収容した後、ブチルゴム
製の栓体で閉蓋して採血管とした。
この採血管に健常人からの新鮮血6mlを加え、閉蓋
後、転倒混和した。これを室温で、採血後４時間放置し
た。
後、転倒混和した。これを室温で、採血後４時間放置し
た。
次に3000rpmで５分間遠心分離し、血漿を採取した。
この血漿を使用して、次に示す20項目の生化学検査と血
糖の測定を行った。
この血漿を使用して、次に示す20項目の生化学検査と血
糖の測定を行った。
チモール混濁試験（TTT），硫酸亜鉛試験（ZTT），ア
ルカリ性フォスフアターゼ（ALP）,GOT,GPT,LDH,ロイシ
ンアミノペプチダーゼ（LAP），γ−GTP,クレアチンフ
ォスフォキナーゼ（CPK），尿酸（UA），β−リポ蛋白
（β−LP），血清総蛋白（TP），アミラーゼ（AMY），
クレアチニン（CRTN），血清コリンエステラーゼ（Ch
E），ビリルビン（Bil），アルブミン（Alb）,Na,K,Fe 血糖は、協和メデックス社製のグルコース定量試薬
「デタミナ−GL−Ｒ」を用いて、グルコースデヒドロゲ
ナーゼ法によって測定した。原理は以下の通りである。
ルカリ性フォスフアターゼ（ALP）,GOT,GPT,LDH,ロイシ
ンアミノペプチダーゼ（LAP），γ−GTP,クレアチンフ
ォスフォキナーゼ（CPK），尿酸（UA），β−リポ蛋白
（β−LP），血清総蛋白（TP），アミラーゼ（AMY），
クレアチニン（CRTN），血清コリンエステラーゼ（Ch
E），ビリルビン（Bil），アルブミン（Alb）,Na,K,Fe 血糖は、協和メデックス社製のグルコース定量試薬
「デタミナ−GL−Ｒ」を用いて、グルコースデヒドロゲ
ナーゼ法によって測定した。原理は以下の通りである。
上記の酵素反応で生じるNADPH2を、反応速度（レート
アッセイ）法により340nmで測定した。
アッセイ）法により340nmで測定した。
実施例２ 実施例１の採血管本体に、Ｄ−グルコサミン60.0mgお
よびトロンビン30uを収容後、ブチルゴム製の栓体で閉
蓋して、採血管とした。
よびトロンビン30uを収容後、ブチルゴム製の栓体で閉
蓋して、採血管とした。
この採血管に健常人からの新鮮血6mlを加え、閉蓋
後、転倒混和した。
後、転倒混和した。
これを室温で、採血後４時間放置した。次に、3000rp
mで５分間遠心分離し、血清を採取した。この血清を使
用して、実施例１と同様の項目について測定を行った。
mで５分間遠心分離し、血清を採取した。この血清を使
用して、実施例１と同様の項目について測定を行った。
比較例１ Ｄ−グルコサミン6.0mgおよびヘパリンNa90uを収容し
て採血管とした以外は、実施例１と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
て採血管とした以外は、実施例１と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
比較例２ Ｄ−グルコサミン120mgおよびトロンビン30uを収容し
て採血管とした以外は、実施例２と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
て採血管とした以外は、実施例２と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
比較例３ Ｄ−マンノース30.0mgおよびヘパリンNa90uを収容し
て採血管とした以外は、実施例１と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
て採血管とした以外は、実施例１と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
参考例 トロンビン30uを収容して採血管としたこと採血
管に血液を加え、血液の凝固後すぐに遠心分離して血清
を採取したこと以外は、実施例２と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
管に血液を加え、血液の凝固後すぐに遠心分離して血清
を採取したこと以外は、実施例２と同様にして20項目の
生化学検査と血糖の測定を行った。
この参考例は、それぞれの測定項目における初期値
（ブランク）を測定するために行ったものである。
（ブランク）を測定するために行ったものである。
叙上の各実施例、比較例および参考例における生化学
検査値および血糖測定値を第１表に示した。
検査値および血糖測定値を第１表に示した。
第１表より、実施例１〜２は、生化学検査20項目およ
び血糖の測定値において参考例（ブランク）と有意差は
ない。
び血糖の測定値において参考例（ブランク）と有意差は
ない。
比較例１はＤ−グルコサミンの使用量が少ないため、
少し血糖値の低下がみられた。比較例２はＤ−グルコサ
ミンの量が多すぎるので、少し溶血し、LDH、電解質（N
a,K）の測定値に影響を与えた。
少し血糖値の低下がみられた。比較例２はＤ−グルコサ
ミンの量が多すぎるので、少し溶血し、LDH、電解質（N
a,K）の測定値に影響を与えた。
比較例３はＤ−マンノースがグリコースデヒドロゲナ
ーゼにより分解され、血糖が正常値の５倍という異常高
値を示した。
ーゼにより分解され、血糖が正常値の５倍という異常高
値を示した。
（発明の効果） 本発明の採血管は、２−デオキシ−Ｄ−グルコースま
たはその誘導体が収容されているので、採血された血中
の解糖系が初期の段階で阻害されるため、血中の血糖の
低下を速効的に阻止することにより、血糖の初期値を室
温下で少くとも４時間維持し得、かつ血液を溶血させる
こともなく、また酵素一般の酵素作用を阻害することも
ないので、生化学検査のための検体調製にも適してい
る。
たはその誘導体が収容されているので、採血された血中
の解糖系が初期の段階で阻害されるため、血中の血糖の
低下を速効的に阻止することにより、血糖の初期値を室
温下で少くとも４時間維持し得、かつ血液を溶血させる
こともなく、また酵素一般の酵素作用を阻害することも
ないので、生化学検査のための検体調製にも適してい
る。
すなわち、血糖検査用検体と同一検体で同時に生化学
検査が行なえる検体を調製することができる。
検査が行なえる検体を調製することができる。
また、２−デオキシ−Ｄ−グルコースまたはその誘導
体は、Ｄ−マンノースと違って、基質特異性の低いグル
コース脱水素酵素の基質にならないので、グルコース脱
水素酵素を使用する血糖測定法に使用されたとき、正確
な血糖値を得ることができる。
体は、Ｄ−マンノースと違って、基質特異性の低いグル
コース脱水素酵素の基質にならないので、グルコース脱
水素酵素を使用する血糖測定法に使用されたとき、正確
な血糖値を得ることができる。
上述のように、本発明の採血管を使用すると、血糖と
生化学検査測定を同一検体で同時に正確に行なえる検体
を調製できるので、例えば、患者のような被採血者の血
液を無駄にすることなく有効に使用できるので、被採血
者の採血による精神的および肉体的負担を軽減できる。
生化学検査測定を同一検体で同時に正確に行なえる検体
を調製できるので、例えば、患者のような被採血者の血
液を無駄にすることなく有効に使用できるので、被採血
者の採血による精神的および肉体的負担を軽減できる。
血糖と共に多項目の生化学検査を同一検体で同時に測
定できるので、多項目自動分析機にかけることができ、
作業性や効率が上がる。更に、検査に必要な試験管や測
定機器も減らし得るので経済的でもある。
定できるので、多項目自動分析機にかけることができ、
作業性や効率が上がる。更に、検査に必要な試験管や測
定機器も減らし得るので経済的でもある。
Claims (1)
- 【請求項１】２−デオキシ−Ｄ−グルコースまたはその
誘導体が血液検体1mlあたり2.5〜15mgの割合となるよう
に収容されていることを特徴とする採血管。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63247591A JP2506992B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 採血管 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63247591A JP2506992B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 採血管 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0296538A JPH0296538A (ja) | 1990-04-09 |
| JP2506992B2 true JP2506992B2 (ja) | 1996-06-12 |
Family
ID=17165784
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63247591A Expired - Fee Related JP2506992B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 採血管 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2506992B2 (ja) |
-
1988
- 1988-09-30 JP JP63247591A patent/JP2506992B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0296538A (ja) | 1990-04-09 |
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