JP2024023511A - 慢性リンパ球性白血病のｂ細胞受容体を標的とする抗体およびその使用 - Google Patents
慢性リンパ球性白血病のｂ細胞受容体を標的とする抗体およびその使用 Download PDFInfo
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Abstract
【課題】慢性リンパ球性白血病（ＣＬＬ）の処置のための抗体を提供する。【解決手段】Ｒ１１０変異免疫グロブリンラムダ可変３－２１（ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０）によって特徴付けられるＣＬＬ細胞のＢ細胞受容体（ＢＣＲ）を標的とし、特定のアミノ酸配列を有するＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための抗体、および該抗体と薬学的に許容される担体または賦形剤とを含む、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための医薬組成物を提供する。【選択図】なし
Description
本発明は、慢性リンパ球性白血病（ＣＬＬ）の処置のための抗体を提供する。これらの抗体は、Ｒ１１０変異免疫グロブリンラムダ可変３－２１（ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０）によって特徴付けられるＣＬＬ細胞のＢ細胞受容体（ＢＣＲ）を標的とする。
本発明は、前述の抗体をコードする核酸配列、それを含むベクター、医薬組成物、および使用説明書を含むキットも提供する。
発明の背景
抗体療法は、Ｂ系列細胞の悪性形質転換由来の白血病およびリンパ腫の処置のための非常に有効な試薬であることが証明されている。リツキシマブなどのモノクローナル抗体の承認以来、ＣＬＬを有する患者の奏効率、長期転帰、および生活の質は著しく改善した。
抗体療法は、Ｂ系列細胞の悪性形質転換由来の白血病およびリンパ腫の処置のための非常に有効な試薬であることが証明されている。リツキシマブなどのモノクローナル抗体の承認以来、ＣＬＬを有する患者の奏効率、長期転帰、および生活の質は著しく改善した。
ＣＬＬは、骨髄、リンパ節、末梢血および脾臓に進行性に蓄積するＢリンパ球のＣＤ５陽性亜群のクローン増殖の結果生じる不均一な、Ｂリンパ球由来の悪性腫瘍である（Rozman C, Montserrat E. Chronic lymphocytic leukemia. N Engl J Med. 1995; 333: 1052-1057）。この疾患は、西洋諸国において最も一般的なタイプの白血病であり、高齢患者に典型的に発生し、女性と比較して男性のＣＬＬを発症するリスクは２倍に増加する（Kipps TJ, Stevenson FK, Wu CJ, Croce CM, Packham G, Wierda WG, et al. Chronic lymphocytic leukemia. Nat Rev Dis Primers (2017) 3:1-12）。
臨床的および生物学的証拠は、BurgerおよびChiorazzi（Burger JA, Chiorazzi N. B cell receptor signaling in chronic lymphocytic leukemia. Trends Immunol 2013; 34: 592-601）により総説されたようにＢＣＲがＣＬＬ細胞のクローン選択および生存における主要因のうちの１つであることを示した。
ＢＣＲは、非共有結合的に会合している抗原結合性サブユニットおよびシグナル伝達サブユニットから構成される多タンパク質構造体である。抗原結合性サブユニットは、各軽鎖中に１つの定常ドメインおよび各重鎖中に３つの定常ドメインを有する２本の同一の重鎖および２本の同一の軽鎖を含む膜免疫グロブリンからなる。各重鎖は軽鎖と会合して、抗原結合部位を形成する。各軽鎖および各重鎖は、抗原結合部位を形成する可変ドメインを含む。Ｉｇｈ、ＩｇｌおよびＩｇｋ座にコードされる免疫グロブリン遺伝子は、１個または複数の定常エクソンの上流に多数のＶ（可変の）、Ｄ（多様性）およびＪ（連結）遺伝子セグメントを含む。発生中のＢ細胞において、免疫グロブリン遺伝子再構成は、Ｖ、ＤおよびＪ遺伝子セグメントをランダムに会合させて、Ｉｇｈ座に完全なＶエクソンを、ＩｇｋまたはＩｇｌ座のいずれかにＶおよびＪ遺伝子セグメントを作成する。遺伝子セグメントのコンビナトリアル連結、結合多様性ならびにランダムな重鎖および軽鎖ペアリングを通じて、それぞれ個々のＢ細胞前駆体は、その独自のほぼ唯一の抗原結合性サブユニットを生成し、その抗原結合親和性は、体細胞超変異（ＳＨＭ）によりさらに洗練され得る。
ＢＣＲのシグナル伝達部分は、ＩｇαおよびＩｇβ（ＣＤ７９ａ／ＣＤ７９ｂ）タンパク質のジスルフィド結合ヘテロダイマーから構成される。ＩｇαおよびＩｇβはそれぞれ、それらの細胞質尾部内に抗原結合時のＢＣＲ凝集後にシグナル伝達を開始する単一の免疫受容体チロシンベースの活性化モチーフ（ＩＴＡＭ）を含む（Flaswinkel, H., Reth, M., 1994. Dual role of the tyrosine activation motif of the Ig-alpha protein during signal transduction via the B cell antigen receptor. EMBO J. 13, 83-89）。
抗原結合は、ＳｒｃファミリーキナーゼＬｙｎを急速に活性化して、Ｉｇα／Ｉｇβのリン酸化をもたらす。これは、ＢＣＲ、様々なチロシンキナーゼ、アダプタータンパク質、およびシグナル伝達酵素から構成される膜の細胞質側で大きいシグナル伝達複合体の形成を開始する。近位のＢＣＲシグナル伝達はタンパク質チロシンキナーゼＳｙｋ（脾臓チロシンキナーゼ）によって媒介され、これは、ＩｇαおよびＩｇβのリン酸化ＩＴＡＭにリクルートされ、アダプタータンパク質ＳＬＰ６５およびその下流のシグナル伝達酵素ブルトンチロシンキナーゼ（ＢＴＫ）およびホスホリパーゼＣγ２（ＰＬＣγ２）とのＳｙｋの会合を介してシグナルの伝播につながる。シグナル伝達複合体を生じるシグナルは、カルシウム動員、ホスホイノシチド３－キナーゼ（ＰＩ３Ｋ）、核因子－κＢ（ＮＦ－κＢ）、活性化Ｔ細胞の核因子（ＮＦ－ＡＴ）、マイトジェン活性化プロテインキナーゼ（ＭＡＰＫ）、およびラット肉腫（ＲＡＳ）シグナル伝達経路を含む下流経路を活性化する（Burger JA and Chiorazzi N, 2013も参照）。
Ｂ細胞受容体を通じた成熟Ｂ細胞の慢性活性化は、ＣＬＬの成立および進展において鍵となる過程であることが示されている（Stevenson FK, Krysov S, Davies AJ, Steele AJ, Packham G. B-cell receptor signaling in chronic lymphocytic leukemia Blood. 2011; 118: 4313-4320）。これは、マウスＢ１サブセットの発症が強く、かつ長いＢＣＲ刺激に依存することを示した、恒常的活性型ＢＣＲサロゲートとしてＥＢＶタンパク質ＬＭＰ２Ａを使用した研究とも一致した（Casola S, Otipoby KI, Alimzhanov M, et al. B cell receptor signal strength determines B cell fate. Nat Immunol 2004; 5: 317-27）。さらに、細胞上の２つの隣接するＢＣＲの相互作用に起因する原発性ＣＬＬ Ｂ細胞の抗原非依存的な自律性シグナル伝達は、ＣＬＬ発症の決定的なドライバーとして識別されており、結果としてＢＣＲ近位のシグナル伝達分子のチロシンリン酸化の増加をもたらし、周期シグナル伝達およびＣａ２＋動員の増加につながる（Duehren-von Minden M et al. Chronic lymphocytic leukemia is driven by antigen-independent cell-autonomous signalling. Nature. 2012; 489: 309-313）。
プロテインキナーゼＳｙｋが持続的なＢＣＲシグナル伝達を通じて恒常的にリン酸化されることが十分に記述されており、幾つかの研究は、ＰＫＣ、ホスホイノシチド３－キナーゼおよびマイトジェン活性化プロテインキナーゼｐ３８など、正常Ｂ細胞におけるＢＣＲ結合の下流のシグナル伝達経路の他の鍵となる分子もＢ－ＣＬＬ細胞において恒常的に活性化され、結果として幾つかの生存促進分子および下流経路の活性または発現の制御解除をもたらすことを明らかにした（Gobessi S, Laurenti L, Longo PG, Carsetti L, Berno V, Sica S et al. Inhibition of constitutive and BCR-induced Syk activation downregulates Mcl-1 and induces apoptosis in chronic lymphocytic leukemia B cells. Leukemia 2009; 23: 686-697. Ringshausen I, Schneller F, Bogner C, Hipp S, Duyster J, Peschel C et al. Constitutively activated phosphatidylinositol-3 kinase (PI-3K) is involved in the defect of apoptosis in B-CLL: association with protein kinase C delta. Blood 2002; 100: 3741-3748. Plate JM. PI3-kinase regulates survival of chronic lymphocytic leukemia B-cells by preventing caspase 8 activation. Leuk Lymphoma 2004; 45: 1519-1529. Sainz-Perez A, Gary-Gouy H, Portier A, Davi F, Merle-Beral H, Galanaud P et al. High Mda-7 expression promotes malignant cell survival and p38 MAP kinase activation in chronic lymphocytic leukemia. Leukemia 2006; 20: 498-504.）。
ＮＦ－ｋＢまたはＰＩ３Ｋ／ＡＫＴなどの恒常的に活性化されたシグナル伝達経路は、鍵となる抗アポトーシスタンパク質、特にＢ細胞リンパ腫２（Ｂｃｌ－２）およびアポトーシス阻害タンパク質（ＩＡＰ）ファミリーの幾つかのメンバーの転写および過剰発現につながることが示されている（Loeder S et al. A novel paradigm to trigger apoptosis in chronic lymphocytic leukemia. Cancer Res. 2009; 69: 8977-8986）。Ｂｃｌ－２自体に加えて、Ｍｃｌ－１がＣＬＬ細胞におけるアポトーシスの障害の決定的なプレーヤであり、ＢＣＲシグナルは報告によると、ＰＩ３Ｋ／ＡＫＴ経路を通じてＭｃｌ－１発現を上方制御することが十分に確認されている（Petlickovski A, Laurenti L, Li X, Marietti S, Chiusolo P, Sica S, Leone G, Efremov DG. Sustained signaling through the B-cell receptor induces Mcl-1 and promotes survival of chronic lymphocytic leukemia B cells. Blood. 2005; 105: 4820-4827）。
ＢＣＲの異なる態様は、主なＣＬＬ疾患サブタイプを識別することが認識されている。例えば、ＢＣＲ免疫グロブリン重鎖（ＩＧＨＶ）の可変領域内の体細胞超変異のレベルは、数十年間予後マーカーとして使用されてきた。変異ＩＧＨＶ遺伝子を有する、すなわち、その最も近い生殖系列との９８％未満のＩＧＨＶ遺伝子同一性を示すＣＬＬ患者（Ｍ－ＣＬＬ）は一般に、９８％以上の生殖系列同一性を有する未変異ＩＧＨＶ遺伝子を有するＣＬＬ患者（Ｕ－ＣＬＬ）よりも緩徐進行性の疾患経過を有する。しかし、変異ＩＧＨＶ遺伝子状態がある種の疾患経過と相関し得ないこの規則の例外が観察されている。例えば、大部分は変異ＢＣＲを発現するがＩＧＨＶ３－２１遺伝子を使用するケースは、最悪の臨床転帰のうちの１つを有していた。異なるが、ＩＧＨＶにより決定されるアプローチは、高度に均質な生物学的特徴、臨床症状および転帰をそれぞれ有する予後的に重要な異なるサブセットにＣＬＬ症例のおよそ３０％がカテゴリー化されることになった。このカテゴリー化は、変異および未変異のケースの中に、相同性が高い重鎖相補性決定領域３（Ｈ－ＣＤＲ３）配列を保有するステレオタイプのＢＣＲが存在するという観察に基づいている。このアプローチに続いて、変異ＩＧＨＶ３－２１によって特徴付けられるＣＬＬ症例をいわゆるサブセット＃２に割り当てることができた（Stamatopoulos K, Belessi C, Moreno C, et al. Over 20% of patients with chronic lymphocytic leukemia carry stereotyped receptors: pathogenic implications and clinical correlations. Blood. 2007; 109(1): 259-270; Agathangelidis A., et al. Stereotyped B-cell receptors in one-third of chronic lymphocytic leukemia: A molecular classification with implications for targeted therapies. Blood. 2012; 119: 4467-4475）。
注目すべきことに、サブセット＃２によるＩＧＨＶ３－２１の使用は、軽鎖中のアミノ酸位置１１０におけるアルギニンでのグリシンの後天的な置換（ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０）と共に免疫グロブリンラムダ可変３－２１鎖の発現と関連して常に観察されてきた。ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０のアルギニン１１０（Ｒ１１０）の原因は、免疫グロブリンラムダＪおよび定常遺伝子の間のスプライス部位での単一のＧ＞Ｃ置換である。あるＢＣＲ内の生殖系列にコードされたリシン１６（Ｋ１６）、および隣接するＢＣＲのチロシン－アスパラギン酸－セリン－アスパラギン酸（ＹＤＳＤ）モチーフ内のアスパラギン酸（Ｄ）５０および５２と併せたＲ１１０の存在は、ＢＣＲ－ＢＣＲ相互作用を可能にし、したがって細胞自律性シグナル伝達をトリガーすることが確認されている（図６および図７；Minici, C. et al., Distinct homotypic B-cell receptor interactions shape the outcome of chronic lymphocytic leukemia, Nature Comm. 2017; 8:15746）。
ＢＣＲ軽鎖に焦点を合わせたＣＬＬ患者の大規模コホートのエピジェネティック、ゲノム、およびトランスクリプトームの特徴付けの過程で、およそ６０％のＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０のケースが非ステレオタイプのＢＣＲを保有することが明らかになった。これは、サブセット＃２が、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０によって特徴付けられるＣＬＬの単なるマイナーなサブグループであることを強調する（Stamatopoulos B, Smith T, Crompot E, et al. The Light Chain IgLV3-21 Defines a New Poor Prognostic Subgroup in Chronic Lymphocytic Leukemia: Results of a Multicenter Study. Clin Cancer Res. 2018; 24(20): 5048-5057. Nadeu F, Royo R, Clot G, et al. IGLV3-21R110 identifies an aggressive biological subtype of chronic lymphocytic leukemia with intermediate epigenetics. Blood. 2021; 137(21): 2935-2946）。
ヒトにおいて同定されたＩＧＬＶ３－２１遺伝子の４つの対立遺伝子のうち、対立遺伝子ＩＧＬＶ３－２１＊０１（ＩＭＧＴ／ＬＩＧＭ－ＤＢアクセッション番号Ｘ７１９６６）およびＩＧＬＶ３－２１＊０４（ＩＭＧＴ／ＬＩＧＭ－ＤＢアクセッション番号ＡＣ２７９２０８）は、必須のＫ１６およびＤ５０およびＤ５２をコードし、最後の２つは、研究された大部分のケースにおいて、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０の４９位にチロシンおよび５１位にセリンを含むモチーフに組み込まれた（例示的なＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０については図７参照）。しかし、フェニルアラニンでのチロシンの置換えまたはトレオニンでのセリンの置換えなど、このモチーフ内の機能的に同等の変形もＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＣＬＬ患者において観察されている（Nadeu et al. 2021も参照；変異体については図７も参照）。興味深いことに、対立遺伝子ＩＧＬＶ３－２１＊０１およびＩＧＬＶ３－２１＊０４は、健常ドナーのＢ細胞において著しく過小評価されるのに対し、異なる群により研究された患者における全てのＩＧＬＶ３－２１遺伝子を対立遺伝子ＩＧＬＶ３－２１＊０１または対立遺伝子ＩＧＬＶ３－２１＊０４に割り当てることができた。これは、これらの対立遺伝子がＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０関連ＣＬＬの発症に機構的に必要とされ得ることを示唆する。
名称サブセット＃２Ｌも提案されているＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＣＬＬサブグループは、非常に侵攻性の疾患経過に関連する。実際、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＣＬＬ症例の不良転帰は、ＩＧＨＶ変異状態または重鎖の性質とは無関係である。ＩＧＨＶ３－２１Ｒ１１０は、ＩＧＨＶ１－１８、ＩＧＨＶ３－５３またはＩＧＨＶ３－６４などの異なる重鎖と関連するだけでなく、サブセット＃２（上記参照）などの変異ＣＬＬに見出されるため（Nadeu et al. 2021、上記）、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０は、経験的に定義されたエピジェネティックなステレオタイプに基づく従来のサブセット分類にもＩＧＨＶ変異状態にも限定されないＣＬＬの群を定義する。さらに、ＣＬＬドライバー変異としてのＲ１１０の必須の役割は部位特異的変異誘発実験により確認されており、これは、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０のＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０への復帰が結果としてＢＣＲの自律性シグナル伝達能力の抑止につながったことを明らかにした（Stamatopoulos B, Smith T, Crompot E, et al. 2018も参照）。
最初の処置までの時間（ＴＴＦＴ）および全生存（ＯＳ）をＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０保有ＢＣＲの存在と関係付ける研究は、非ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＣＬＬを有する患者と比較してＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を発現する患者について著しくより短い値を示した。これは、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者のための治療法の早急な必要性を強調する（Nadeu F et al. 2021も参照）。
これらの患者におけるＣＬＬは、単一の薬剤としての、および他の薬物と併用したイデラリシプおよびイブルチニブなどの化学療法剤で通常処置される。イデラリシプは、ＰＩ３Ｋの造血細胞限定δアイソフォームの阻害剤であり、これは、原発性ＣＬＬ細胞においてアポトーシスを促進する（Hoellenriegel J, Meadows SA, Sivina M, et al. The phosphoinositide 3’-kinase delta inhibitor, CAL-101, inhibits B-cell receptor signaling and chemokine networks in chronic lymphocytic leukemia. Blood. 2011; 118: 3603-3612）。イブルチニブは、Ｂ細胞リンパ腫およびＣＬＬ細胞においてアポトーシスを誘導するＢＴＫの阻害剤である（Hermann SE, Gordon AL, Hertlein E, et al. Bruton tyrosine kinase represents a promising therapeutic target for treatment of chronic lymphocytic leukemia and is effectively targeted by PCI-32765. Blood. 2011; 117: 6287-6296）。さらに最近の治療法は、例えば、ＣＤ５２抗体として作用するアレムツズマブなどのモノクローナル抗体、または細胞表面Ｂ系列限定抗原ＣＤ－２０を標的とするオビヌツズマブ、リツキシマブ、およびオファツムマブをますます使用している。これらの抗体を使用することにより、緩解時間をおよそ１０カ月延長することができる。しかし、処置のための最先端の治療法は、薬物標的が正常Ｂ細胞および悪性Ｂ細胞の両方の生存に決定的であるため、患者にとって通常非常にストレスが多く、低レベルのある種の白血球（好中球減少）を含む低血球数が一般的な副作用である。さらに、化学療法剤に関して、高い感染リスク、潜伏感染および免疫系へのオフターゲット効果が更なる副作用として報告されている。一般に、腫瘍細胞だけでなく、免疫系の健康な細胞も損傷するので、治療法の望まれない副作用および薬物のしばしば不十分な効果は高い死亡率につながるとまとめることができる。
そのため、前述の副作用を伴わないＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性ＣＬＬ患者のための１つの特定の処置選択肢が依然としてまだ見出されるべきである。
ＢＣＲを持つＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を標的とする潜在的な抗体に関する現在の調査は、ＣＬＬのこの特定のサブタイプの診断に主に焦点を合わせている。例として、Maityらは、ＣＬＬの予後マーカーとして使用される抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体による免疫表現型研究について記載している。前記診断用抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体はＩｇＧ２ａおよびＩｇκ抗体であると開示されている（Maity PC, Bilal M, Koning MT, et al. IGLV3-21*01 is an inherited risk factor for CLL through the acquisition of a single-point mutation enabling autonomous BCR signalling. PNAS. 2020; 117(8): 4320-4327）。
処置選択肢の開発に向かって前進する第一歩は国際公開第２０１９／００８１２９号に開示されており、これは、血液サンプルからＣＬＬ細胞を除去するために使用することができる抗体を開示している。国際公開第２０１９／００８１２９号の抗体は、マウス宿主に由来するハイブリドーマ細胞株におけるＩｇＧ抗体として表されている。国際公開第２０１９／００８１２９号は、このような抗体のみのそれぞれの可変重鎖および軽鎖ドメインを開示している。
国際公開第２０１９／００８１２９号は、そこに開示された抗体が健常組織および患部組織の間で選択的であることも、それらがｉｎ ｖｉｖｏで適用されたことも示していない。したがって、そのいかなる治療効果も示されていない。
前述から、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置の改善を可能にするはずである特異的、選択的かつ他の組織に対して非交差反応性である処置選択肢、特に抗体が、依然として未知であるものの、必要とされている。
発明の概要
本発明は上記の問題を、第１の態様において、抗体であって、配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、抗体を提供することにより解決する。
本発明は上記の問題を、第１の態様において、抗体であって、配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、抗体を提供することにより解決する。
このような抗体は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに特異的、選択的かつＣＬＬ患者の他の組織に対して非交差反応性に結合し、それによって悪性Ｂ細胞を死滅させる。ＢＣＲのＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０部分の存在を認識する一方、この新しい抗体は、「サブセット＃２ ＣＬＬ」を処置することもでき、これは、ＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０組合せを含むＢＣＲまたはＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を含む任意の他のＣＬＬによって特徴付けられる。
これらの抗体の提供は、結果として本発明の第２の態様につながり、これは、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための前記抗体の提供である。同じく本発明のこの第２の態様は、治療活性量の前記抗体を投与することによる、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置の方法に関する。
これは、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬのための第１の処置選択肢であり、これは、最新技術によって提供される処置に関連する副作用なく悪性Ｂ細胞の選択的死滅を可能にする。それよりさらに、ＣＬＬのマーカーとして識別されたＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲの存在によってのみ特徴付けられるＢ細胞の結合および死滅は、このような処置を、ある種のＩＧＨＶにより定義されるＣＬＬのあらかじめ識別されたサブセットのいずれかにこのようなＣＬＬが属する要求とは無関係にする。
理論に拘束されることなく、本発明の抗体での処置は、共刺激シグナルの非存在下でＢＣＲのＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を介してＢ細胞の過剰活性化を誘導すると考えられる。これは最終的に、結果として抗体により結合されたＣＬＬ細胞におけるアポトーシス誘導につながる。したがって、本発明の抗体での処置は、悪性Ｂ細胞に対して高度に選択的であり、とりわけＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性Ｂ細胞に対してさらにいっそう選択的である。
第３の態様において本発明は、本発明の抗体をコードするＤＮＡ分子（核酸）にも関する。したがって、本発明は、本発明の核酸配列を含むベクターおよび宿主細胞にも関する。
定義
特に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解される意味を有する。しかし、以下の参考文献は、本発明が属する技術分野の当業者に本発明において使用される用語のうちの多くの一般的な定義を提供することができ、このような定義が当技術分野において一般に理解される意味と一致している限り参照および使用することができる。このような参考文献には、これらに限定されないが、Singleton et ah, Dictionary of Microbiology and Molecular Biology (2d ed. 1994); The Cambridge Dictionary of Science and Technology (Walker ed., 1988)；Hale & Marham, The Harper Collins Dictionary of Biology (1991)；およびLackie et al., The Dictionary of Cell & Molecular Biology (3d ed. 1999)；およびCellular and Molecular Immunology, Eds. Abbas, Lichtman and Pober, 2nd Edition, W.B. Saunders Companyが含まれる。当技術分野において一般に理解される意味を有する、本明細書で使用される用語の定義を提供する当業者に利用可能な任意の追加の技術資源を参照することができる。本発明のために、以下の用語がさらに定義される。
特に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解される意味を有する。しかし、以下の参考文献は、本発明が属する技術分野の当業者に本発明において使用される用語のうちの多くの一般的な定義を提供することができ、このような定義が当技術分野において一般に理解される意味と一致している限り参照および使用することができる。このような参考文献には、これらに限定されないが、Singleton et ah, Dictionary of Microbiology and Molecular Biology (2d ed. 1994); The Cambridge Dictionary of Science and Technology (Walker ed., 1988)；Hale & Marham, The Harper Collins Dictionary of Biology (1991)；およびLackie et al., The Dictionary of Cell & Molecular Biology (3d ed. 1999)；およびCellular and Molecular Immunology, Eds. Abbas, Lichtman and Pober, 2nd Edition, W.B. Saunders Companyが含まれる。当技術分野において一般に理解される意味を有する、本明細書で使用される用語の定義を提供する当業者に利用可能な任意の追加の技術資源を参照することができる。本発明のために、以下の用語がさらに定義される。
本明細書および添付の特許請求の範囲で使用される場合、単数形「a」、「and」、および「the」は、文脈により特に明確に示されていない限り、複数の指示対象を含む。したがって、例えば、「遺伝子」への言及は、１種または複数種の遺伝子への言及であり、当業者に既知のその均等物などを含む。
「自律的に活性な」ＢＣＲは、特別なタイプの恒久的に活性なＢＣＲである。従来の活性化は外部抗原に基づいているが、自律的に活性なＢＣＲは、同じ細胞の表面の膜構造とのその相互作用の結果起こる。ＣＬＬの臨床像については、同じ細胞の表面で互いに隣接するＢＣＲ間の自律的な活性化をトリガーする相互作用を示すことができた（例えば、M. Duehren-von Minden et. al; Nature 2012）。
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０は、ＢＣＲの軽鎖可変領域であり、これは、ＢＣＲ－ＢＣＲ相互作用が自律的に活性なＢＣＲを誘導することを可能にする。構造的にこのようなＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０は、配列番号５３により表される配列に対して８０％超の配列同一性によって特徴付けられ、どのような場合でも前記配列の１１０位にアルギニンが存在し、グリシンが存在しない。
本明細書で使用される場合、「抗体」という用語は、免疫グロブリン分子、好ましくはジスルフィド結合により典型的に相互接続されている４本のポリペプチド鎖、２本の重（Ｈ）鎖および２本の軽（Ｌ）鎖からなる免疫グロブリン分子を指すことが意図される。各重鎖は、重鎖可変領域（本明細書ではＶＨと略記）および重鎖定常領域からなる。重鎖定常領域は、例えば、３つのドメインＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３を含むことができる。各軽鎖は、軽鎖可変領域（本明細書ではＶＬと略記）および軽鎖定常領域からなる。軽鎖定常領域は、１つのドメイン（ＣＬ）からなる。ＶＨおよびＶＬ領域は、フレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれるより保存されている領域が散在した、相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ばれる超可変性の領域にさらに細分することができる。各ＶＨおよびＶＬは、アミノ末端からカルボキシ末端まで、例えば、以下の順序：ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４で配列された３つのＣＤＲおよび最大４つのＦＲから典型的に構成される。
本明細書で使用される場合、「相補性決定領域（ＣＤＲ；例えば、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、およびＣＤＲ３）という用語は、その存在が抗原結合に必要である抗体可変ドメインのアミノ酸残基を指す。各可変ドメインは典型的には、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２およびＣＤＲ３として識別される３つのＣＤＲ領域を有する。所与のＣＤＲのアミノ酸配列境界は、Ｋａｂａｔら（“Sequences of Proteins of Immunological Interest,” 5th Ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD, 1991; “Kabat” numbering scheme）、ＣｈｏｔｈｉａおよびＬｅｓｋ（J Mol Biol 196: 901-917 (1987)）、およびＬｅｆｒａｎｃら（“IMGT unique numbering for immunoglobulin and T cell receptor variable domains and Ig superfamily V-like domains,” Dev. Comp. Immunol., 27:55-77, 2003; “IMGT” numbering scheme）により記載されたものを含む幾つかの周知のスキームのいずれかを使用して容易に決定することができる。各相補性決定領域は、ＩＭＧＴにより定義されるようなアミノ酸残基を含む。場合によっては、相補性決定領域は、Ｋａｂａｔによって定義されたＣＤＲ領域からのアミノ酸および／またはＣｈｏｔｈｉａの付番方式による超可変ループも含むことができる。
それらの重鎖の定常ドメインのアミノ酸配列に応じて、インタクトな抗体を異なる「クラス」に割り当てることができる。インタクトな抗体の５つの主なクラス：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、およびＩｇＭが存在し、これらのうちの幾つかは、「サブクラス」（アイソタイプ）、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ、およびＩｇＡ２にさらに分けられ得る。異なるクラスの抗体に対応する重鎖定常ドメインは、それぞれ［アルファ］、［デルタ］、［イプシロン］、［ガンマ］、および［ミュー］と呼ばれる。異なるクラスの免疫グロブリンのサブユニット構造および三次元配置は周知である。
本明細書で使用される場合、「抗体」という用語は、抗原結合性断片およびその変異体も含むと理解される。したがって、本発明の文脈における「抗体」へのどのような言及もまた、前記抗体を形成するために組み合わせられる抗体の完全な重鎖または完全な軽鎖を指定することによるなど、特に明記されなければ、抗原結合性断片および／またはその変異体への言及である。
「抗原結合性断片」は本明細書に、抗原結合性領域を保持する抗体／免疫グロブリンの断片（例えば、ＩｇＧの可変領域）と定義される。本発明の抗原結合性断片は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、およびＦｖ断片；二重特異性抗体；単一ドメイン抗体（ＤＡｂｓ）、直鎖状抗体；単鎖抗体分子（ｓｃＦｖ）；ならびに抗体断片から形成される二重および三重特異性などの多重特異性抗体を含む（C. A. K Borrebaeck, editor (1995) Antibody Engineering (Breakthroughs in Molecular Biology), Oxford University Press; R. Kontermann & S. Duebel, editors (2001) Antibody Engineering (Springer Laboratory Manual), Springer Verlag）。「多重特異性」または「多機能性」抗体以外の抗体は、同一のその結合部位のそれぞれを有すると理解される。Ｆ（ａｂ’）２またはＦａｂは、ＣＨ１ドメインおよびＣＬドメインの間に生じる分子間ジスルフィド相互作用を最小化または完全に除去するように操作されてよい。
抗体の「抗原結合性領域」は典型的には、抗体の１つまたは複数の超可変領域、例えば、ＣＤＲ１、ＣＤＲ２、および／またはＣＤＲ３領域に見出される；しかし、可変「フレームワーク」領域も、ＣＤＲに足場を提供することによるなど、抗原結合において重要な役割を果たすことができる。
本発明において企図される抗体または抗原結合性断片の「変異体」は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０に対する抗体または抗原結合性断片の結合活性が維持される分子である。
「ヒト化」抗体は、本明細書において、（ｉ）非ヒト源（例えば、異種免疫系を持つトランスジェニックマウス）由来であり、この抗体はヒト生殖系列配列に基づいているか；（ｉｉ）ここで非ヒト抗体のフレームワーク領域のアミノ酸が遺伝子操作によりヒトアミノ酸配列に部分的に交換されているか、または（ｉｉｉ）可変ドメインのＣＤＲが非ヒト起源からであり、一方、可変ドメインの１つまたは複数のフレームワークがヒト起源のものであり、定常ドメイン（存在する場合）がヒト起源のものであるＣＤＲ移植されたものと定義される。
「キメラ」抗体は、本明細書において、可変ドメインが非ヒト起源由来であり、幾つかまたは全ての定常ドメインがヒト起源由来であるものと定義される。
本明細書で使用される「モノクローナル」抗体という用語は、実質的に均質な抗体の集団から得られる抗体を指し、すなわち、少量存在し得る可能性のある変異、例えば、自然発生変異を除いて、集団を構成する個々の抗体が同一である。したがって、「モノクローナル」という用語は、抗体の特徴を別個の抗体の混合物ではないと示す。異なる決定基（エピトープ）に対する異なる抗体を典型的に含むポリクローナル抗体製剤とは対照的に、モノクローナル抗体製剤の各モノクローナル抗体は、抗原の単一の決定基に対する。それらの特異性に加えて、モノクローナル抗体製剤は、典型的に他の免疫グロブリンによって汚染されていないという点で有利である。「モノクローナル」という用語は、任意の特定の方法による抗体の産生を必要とすると解釈されるべきではない。モノクローナル抗体という用語は具体的には、マウス抗体、キメラ抗体およびヒト化抗体を含む。
本明細書で使用される場合、抗体「特異的に～に結合する」は、対象抗原、例えば、腫瘍関連ポリペプチド抗原標的（ここでは、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０）「～に対して（to/for）特異的である」か、またはこれ「～を特異的に認識し」、このような抗原と１種または複数種の参照抗原を区別することができる。その最も一般的な形態において、「特異的結合」、「特異的に～に結合する」、「～に対して（to/for）特異的な」または「～を特異的に認識する」は、例えば、以下の方法のうちの１つに従って決定される場合に、対象抗原と関連しない抗原を区別する抗体の能力に言及している。このような方法には、これらに限定されないが、フローサイトメトリー、ウエスタンブロット、ＥＬＩＳＡ試験、ＲＩＡ試験、ＥＣＬ試験、ＩＲＭＡ試験、免疫組織学的試験およびペプチドスキャンが含まれる。
「結合親和性」または「親和性」は、分子の単一の結合部位とその結合パートナーとの間の非共有結合性相互作用の総和の強度を指す。特に示されていない限り、本明細書で使用される場合、「結合親和性」または「親和性」は、結合対のメンバー（例えば、抗体および抗原）間の１：１相互作用を反映する固有結合親和性を指す。解離速度定数ＫＤは、平衡会合定数（ｋａ）および解離速度定数（ｋｄ）の比に基づいて通常計算される。解離定数「ＫＤ」は、分子（抗体など）とその結合パートナー（抗原など）との間の親和性、すなわち、どのくらいしっかりとリガンドが特定のタンパク質に結合するかを記述するために一般に使用される。リガンド－タンパク質親和性は、２つの分子間の非共有結合性分子間相互作用の影響を受ける。「高親和性」という用語は、抗体が１０－９Ｍ以下の親和性（ＫＤ）（一価親和性）でＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性ＣＬＬ ＢＣＲに結合することを意味する。抗体は、他の関連しない分子と比較して、標的抗原に対する大幅により高い親和性を有してよい。親和性は、当技術分野において既知の一般的な方法により、例えば、実施例５に従って測定することができる。
本明細書で使用される場合、「エピトープ」という用語は、免疫グロブリンまたはＴ細胞受容体に特異的結合することができる任意のタンパク質決定基を含む。エピトープ決定基は、アミノ酸もしくは糖側鎖、またはそれらの組合せなどの分子の化学的に活性な表面グルーピングから通常なり、特定の三次元構造特徴、ならびに特定の電荷特徴を通常有する。
「単離」抗体は、同定され、それを発現した細胞の成分から分離されたものである。細胞の汚染物質成分は、診断または抗体の治療的使用を妨げるであろう物質であり、酵素、ホルモン、および他のタンパク質性または非タンパク質性溶質を含んでよい。好ましい実施形態において、抗体は、（１）例えば、ローリー法により、ＩＮ－Ｖｉｓ分光法により、またはＳＤＳ－キャピラリーゲル電気泳動（例えばＣａｌｉｐｅｒ ＬａｂＣｈｉｐ ＧＸＩＩ、ＧＸ ９０またはＢｉｏｒａｄ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ装置による）により決定される場合に、９５重量％超の抗体まで、更なる好ましい実施形態において９９重量％超まで、（２）少なくとも１５残基のＮ末端または内部アミノ酸配列を得るのに十分な程度まで、または（３）クーマシーブルーまたは、好ましくは、銀染色を使用する還元または非還元条件下のＳＤＳ－ＰＡＧＥによる均一性まで精製される。抗体の自然環境の少なくとも１つの成分が存在しなくなるため、単離された自然発生抗体は、組換え細胞内にｉｎ ｓｉｔｕで抗体を含む。しかし、通常は、単離抗体は、少なくとも１つの精製ステップにより調製されることになる。
「がん」という用語は、細胞が無制御に分裂し、未制御の細胞成長をもたらす生理的状態または疾患を指す。「腫瘍」は、１種または複数種のがん細胞を含む。
「抗体依存性細胞媒介性細胞傷害」または「ＡＤＣＣ」は、ある種の細胞傷害性細胞（例えば、ＮＫ細胞、好中球、およびマクロファージ）上に存在するＦｃガンマ受容体（ＦｃγＲ）に結合された分泌型Ｉｇにより、これらの細胞傷害性エフェクター細胞が、抗原を持つ標的細胞に特異的に結合し、続いて標的細胞を例えば細胞毒で死滅させることができる細胞傷害の一形態を指す。
「補体依存性細胞傷害」または「ＣＤＣ」は、補体の存在下での標的細胞の溶解を指す。古典的な補体経路の活性化は、（適切なサブクラスの）抗体への補体系の第１の成分（Ｃ１ｑ）の結合により開始され、これらは、それらの同種抗原に結合される。補体活性化を評価するために、ＣＤＣアッセイ、例えば、Gazzano-Santoro et al., J. Immunol. Methods 202: 163 (1996)に記載されているようなＣＤＣアッセイが実施されてよい。改変されたＦｃ領域アミノ酸配列を有するポリペプチド変異体（変異Ｆｃ領域を有するポリペプチド）およびＣ１ｑ結合の増加または減少は、例えば、米国特許第６１９４５５１号明細書および国際公開第１９９９／５１６４２号に記載されている。
参照ポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列に対する「パーセント（％）配列同一性」はそれぞれ、必要であれば、最大パーセント配列同一性を達成するための、配列アライメントおよびギャップ導入後の、参照ポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列それぞれにおける、核酸またはアミノ酸残基それぞれと同一である候補配列中の核酸またはアミノ酸残基それぞれの百分率と定義される。保存的置換は、配列同一性の一部と見なされない。好ましいのはアンギャップドアライメントである。パーセントアミノ酸配列同一性を決定する目的のためのアライメントは、当技術分野の技能の範囲内の様々な方法で、例えば、ＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ－２、ＡＬＩＧＮ、ＬＡＬＩＧＮまたはＭｅｇａｌｉｇｎ（DNASTAR）ソフトウェアなどの公的に利用可能なコンピュータソフトウェアを使用して、達成することができる。当業者は、比較される配列の全長にわたって最大のアライメントを達成するのに必要とされる任意のアルゴリズムを含む、配列のアライメントに適切なパラメータを決定することができる。
発明の詳細な説明
本発明の第１の態様－抗体
本発明の抗体は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに対する特異的親和性を有し、かつ治療利益を対象にもたらすことができる新規なマウス抗体の発見に基づく。治療活性を可能にする抗体およびそれらの有益な特性を以下でより詳しく説明する。
本発明の第１の態様－抗体
本発明の抗体は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに対する特異的親和性を有し、かつ治療利益を対象にもたらすことができる新規なマウス抗体の発見に基づく。治療活性を可能にする抗体およびそれらの有益な特性を以下でより詳しく説明する。
マウス抗体、ヒト化抗体またはキメラ抗体でよい本発明の抗体は多くの文脈で使用することができ、これらは、本明細書においてさらに詳しく説明する。
本発明の第１の態様によれば、抗体であって、配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、抗体が提供される。
これらの抗体は、マウス抗体、ヒト化抗体またはキメラ抗体であり得、それらは、高親和性でＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲに特異的に結合する。
上記で概説したように、これらの抗体はＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲを強く活性化すると考えられる。より具体的には、これらの抗体は、短期間でＳｙｋ、ＢＴＫ、およびＰＩ３Ｋの強いリン酸化につながり、これはアポトーシスを誘導し、したがって最終的にｉｎ ｖｉｖｏで腫瘍成長を阻害する。
本発明の第１の態様の好ましい実施形態は、実施例の表１および表２においてより詳しくさらに特徴付けられる。
したがって、抗体「ｍＡｂ０１－０１」は、本発明の第１の態様の第１の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１に対応する重鎖および配列番号２に対応する軽鎖によって特徴付けられる。
したがって、抗体「ＨＣ０－ＬＣ０」は、本発明の第１の態様の第２の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１１に対応する重鎖および配列番号１２に対応する軽鎖によって特徴付けられる。
したがって、抗体「ＨＣ６－ＬＣ６」は、本発明の第１の態様の第３の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１６に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第３の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ６－ＬＣ７」は、本発明の第１の態様の第４の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１７に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第４の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２２に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ６－ＬＣ８」は、本発明の第１の態様の第５の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１８に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第５の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２３に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ６－ＬＣ９」は、本発明の第１の態様の第６の好ましい実施形態であり、これは、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１９に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第６の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ７－ＬＣ６」は、本発明の第１の態様の第７の好ましい実施形態であり、これは、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１６に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第７の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ７－ＬＣ７」は、本発明の第１の態様の第８の好ましい実施形態であり、これは、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１７に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第８の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２２に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ７－ＬＣ８」は、本発明の第１の態様の第９の好ましい実施形態であり、これは、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１８に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第９の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２３に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
したがって、抗体「ＨＣ７－ＬＣ９」は、本発明の第１の態様の第１０の好ましい実施形態であり、これは、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１９に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
本発明の第１の態様の前記第１０の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第１の態様の抗体は、提供される特定のペプチド配列に限定されない。むしろ、本発明は、変異体も具体化する。本開示ならびに従来利用可能な技術および参考文献を参照して、当業者は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲに結合する能力を有し、それによってＢ細胞を死滅させるこれらの変異体が本発明の範囲内に入ることを理解しながら、本明細書に開示される抗体の機能的変異体を調製、試験および利用することができるであろう。
変異体は、例えば、本明細書に開示されるペプチド配列に対して少なくとも１つの改変された相補性決定領域（ＣＤＲ）（超可変）および／またはフレームワーク（ＦＲ）（可変）ドメイン／位置を有する抗体を含むことができる。この概念をよりよく説明するために、抗体構造の簡単な説明が続く。
抗体は２本のペプチド鎖から構成され、それぞれ１つ（軽鎖）または３つ（重鎖）の定常ドメインおよび可変領域（ＶＬ、ＶＨ）を含み、これらのうちの後者は、それぞれの場合において、４つのＦＲ領域および間を占める３つのＣＤＲ（相補性決定領域）で構成される。抗原結合部位は、１つまたは複数のＣＤＲにより形成されるが、ＦＲ領域は、ＣＤＲに構造フレームワークを提供し、したがって、抗原結合において重要な役割を果たす。ＣＤＲまたはＦＲ領域内の１個または複数のアミノ酸残基を改変することにより、当業者は、変異または多様化抗体配列を日常的に作成することができる。
例として、当業者は、本明細書において提供される抗体の（例えば、表１および／または表２の）配列を使用して、本発明の範囲内であるペプチド変異体を設計することができる。
さらに、変異体は、抗体内の１個または複数のアミノ酸残基、好ましくは１つまたは複数のＣＤＲ内のアミノ酸残基を多様化することにより、かつ抗体変異体の生じるコレクションをスクリーニングすることにより、最適化の出発点として本発明のこの第１の態様の１つの抗体を使用することにより得られてよい。多様化は、トリヌクレオチド変異誘発（ＴＲＩＭ）技術（Virnekiis B. et al., Nucl. Acids Res. 1994, 22: 5600.）を使用してＤＮＡ分子のコレクションを合成することにより行うことができる。抗体は、これらに限定されないが、例えば、改変された半減期（例えば、Ｆｅ部分の修正またはＰＥＧなどの更なる分子の結合）、改変された結合親和性または改変されたＡＤＣＣもしくはＣＤＣ活性につながる修正を含む修正／変形を含む分子を含む。
本明細書に記載される抗体ペプチド配列の分子構造全体を保存するポリペプチド変異体が作製されてよい。個々のアミノ酸の特性を考えれば、幾つかの合理的な置換が当業者によって認識されるであろう。アミノ酸置換、「保存的置換」は、例えば、関与する残基の極性、電荷、溶解度、疎水性、親水性、および／または両親媒性の類似性に基づいて行われてよい。
例えば、（ａ）非極性（疎水性）アミノ酸には、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プラリン（ｐｒａｌｉｎｅ）、フェニルアラニン、トリプトファン、およびメチオニンが含まれ；（ｂ）極性中性アミノ酸には、グリシン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、およびグルタミンが含まれ；（ｃ）正に荷電した（塩基性）アミノ酸には、アルギニン、リシン、およびヒスチジンが含まれ；（ｄ）負に荷電した（酸性）アミノ酸には、アスパラギン酸およびグルタミン酸が含まれる。置換は典型的には群（ａ）～（ｄ）内で行うことができる。加えて、グリシンおよびプラリンは、α－ヘリックスを破壊するそれらの能力に基づいて互いに置換されてよい。同様に、アラニン、システイン、ロイシン、メチオニン、グルタミン酸、グルタミン、ヒスチジンおよびリシンなどのある種のアミノ酸がα－ヘリックスにより一般に見出され、一方、バリン、イソロイシン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファンおよびトレオニンがβ－プリーツシートにより一般に見出される。グリシン、セリン、アスパラギン酸、アスパラギン、およびプロリンがひいては一般に見出される。以下の群：（ｉ）ＳおよびＴ；（ｉｉ）ＰおよびＧ；ならびに（ｉｉｉ）Ａ、Ｖ、ＬおよびＩのうち、幾つかの好ましい置換を行うことができる。既知の遺伝暗号、ならびに組換えおよび合成ＤＮＡ技法を考えれば、熟練した科学者は容易に、保存的なアミノ酸変異体をコードするＤＮＡを構築することができる。
本発明の第１の態様による抗体の第３から第１０の好ましい実施形態は、配列番号１５により示される可変重鎖と少なくとも８３．３％、８５％、９０％、９２％、９５％配列同一、または配列番号２０により示される可変重鎖と少なくとも８２．５％、８５％、９０％、９２％、９５％配列同一である可変重鎖を含んでもよい。
本発明の第１の態様による抗体の第３から第１０の好ましい実施形態は、配列番号１６により示される可変軽鎖と少なくとも９０％、９２％、９５％配列同一、または配列番号１７により示される可変軽鎖と少なくとも８７％、９０％、９２％、９５％同一、または配列番号１８により示される可変軽鎖と少なくとも８０．５％、８５％、９０％、９２％、９５％配列同一、または配列番号１９により示される可変軽鎖と少なくとも７７．７％、８０％、８５％、９０％、９２％、９５％配列同一である可変軽鎖を含んでもよい。
本発明の第１の態様による抗体の好ましい実施形態の全てが、配列番号５（Ｈ－ＣＤＲ １）、配列番号６（Ｈ－ＣＤＲ ２）および配列番号７（Ｈ－ＣＤＲ ３）により表される配列を含む可変重鎖配列を配列番号８（Ｌ－ＣＤＲ １）、配列番号９（Ｌ－ＣＤＲ ２）、配列番号１０（Ｌ－ＣＤＲ ３）により表される配列を含む可変軽鎖配列と組み合わせる。
本発明の第１の態様による抗体は、好ましくは任意のアイソタイプのＩｇＧ（例えば、ＩｇＧ１ ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４）である。それらのそれぞれの抗原結合性断片は、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２またはｓｃＦｖでよい。
より好ましくは、本発明の第１の態様による抗体は、ＩｇＧ１アイソタイプ抗体として表され、さらにより好ましくはヒト化されている。
本発明の第１の態様の最も好ましい抗体は、第２、第３および第７の実施形態の抗体（「ＨＣ０－ＬＣ０」、「ＨＣ６－ＬＣ６」および「ＨＣ７－ＬＣ６」）であり、とりわけ、最も重要な好ましい抗体は、第３および第７の実施形態の抗体（「ＨＣ６－ＬＣ６」および「ＨＣ７－ＬＣ６」）である。
本発明の第１の態様の前記の好ましい実施形態の全てが特に有利である。というのは、それらがＫＤ～１０－１０Ｍの範囲内の非常に高い親和性を示すことが示されており、それらが、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに特異的、選択的かつＣＬＬ患者の他の組織に対して非交差反応性に結合し、それによって悪性Ｂ細胞の選択的死滅を可能にするという本発明の有益な態様を結果としてもたらすからである。
最も好ましい抗体（「ＨＣ０－ＬＣ０」、「ＨＣ６－ＬＣ６」および「ＨＣ７－ＬＣ６」）に関して、それらは、わずか約１．２～２．１ １０－１０Ｍの間の最も高い親和性を示す。第３および第７の好ましい実施形態による抗体「ＨＣ６－ＬＣ６」および「ＨＣ７－ＬＣ６」はさらにヒト化され、それらの免疫原性の低下のためにそれらを治療的使用に特に適したものにする。
本発明の第１の態様の前述の実施形態の全てが、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０に選択的に結合する。上記のＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０のために提供された定義を越えて、前記ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０は、本発明のこの第１の態様の一般に好ましい実施形態において、配列番号５３により表される配列に対して８０％超の配列同一性によってさらに特徴付けられ、ここで、前記配列の１６位にリシンが存在し、５０位および５２位にアスパラギン酸が存在する。本発明のこの第１の態様の一般により好ましい実施形態において、４９位にチロシンまたはフェニルアラニンが存在し、５１位にセリンまたはトレオニンが存在する。本発明のこの第１の態様の一般にさらにより好ましい実施形態において、４９位にチロシンが存在し、５１位にセリンが存在する。
本発明の第２の態様－治療的使用
本発明の第２の態様は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための本発明の第１の態様の抗体の提供に関する。同じく本発明のこの第２の態様は、本発明の第１の態様の治療活性量の抗体を投与することによる、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置の方法に関する。
本発明の第２の態様は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための本発明の第１の態様の抗体の提供に関する。同じく本発明のこの第２の態様は、本発明の第１の態様の治療活性量の抗体を投与することによる、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置の方法に関する。
したがって、本発明のこの第２の態様の第１の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１に対応する重鎖および配列番号２に対応する軽鎖によって特徴付けられる。
本発明のこの第２の態様の第２の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１１に対応する重鎖および配列番号１２に対応する軽鎖によって特徴付けられる。
本発明のこの第２の態様の第３の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１６に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第３の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第４の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１７に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第４の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２２に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第５の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１８に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第５の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２３に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第６の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号１５に対応する可変重鎖領域および配列番号１９に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第６の好ましい実施形態のうち、配列番号１３に対応する重鎖および配列番号２４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第７の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１６に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第７の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第８の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１７に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第８の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２２に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第９の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１８に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第９の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２３に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明のこの第２の態様の第１０の好ましい実施形態において、抗体は、配列番号２０に対応する可変重鎖領域および配列番号１９に対応する可変軽鎖領域によって特徴付けられる。
前記第１０の好ましい実施形態のうち、配列番号２１に対応する重鎖および配列番号２４に対応する軽鎖によって特徴付けられる抗体がより好ましい。
本発明の第１の態様の文脈において述べられたように、本発明の第２の態様の上記で参照した実施形態の全てが、非常に高い親和性を有する抗体に依拠している。そのいずれも約０．３ｎｍの捕捉率で約３・１０－１０Ｍ超の親和性を有さない。それからだけでも本発明の第２の態様は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性である患者におけるＣＬＬの高度に選択的な処置を可能にする。
ここで、これらの抗体（図１参照）は、野生型ＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０変異体と悪性ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０変異体を選択的に区別することができること、および異種移植マウスモデルにおけるこれらの抗体での処置（図５および実施例９参照）は、結果としてヒトＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性Ｂ細胞の著しい枯渇につながり、結果としてＣＬＬの寛解につながることがさらに示された。
したがって、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための抗体が効果的であることが驚くべきことに見出された。
さらに、このような処置のために使用される抗体は、他の組織に対して交差反応性を示さないことを示すことができた（図４、実施例８参照）。
このような抗体の有効用量の決定は、十分に当業者の能力の範囲内である。任意の化合物について、治療的有効用量は、初めに細胞培養アッセイ、例えば、新生細胞、または動物モデル、通常マウス、ウサギ、イヌ、ブタもしくはサルのいずれかにおいて推定することができる。動物モデルは、望ましい濃度範囲および投与経路を達成するためにも使用される。次いで、このような情報を使用して、ヒトにおける有用な用量および投与経路を決定することができる。
治療的有効用量は、処置される症状または状態を寛解する抗体の量を指す。本発明の文脈において、処置されるこのような状態は、臨床的に明らかなＣＬＬであり、これは、自律的に活性なＢＣＲを有するＢ細胞の異常増殖によって引き起こされる。より具体的には、本発明の第２の態様は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つ自律的に活性なＢＣＲを有するＢ細胞の異常増殖によって特徴付けられる臨床的に明らかなＣＬＬに対処する。
本発明の第２の態様の前述の実施形態の全てが、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性である患者におけるＣＬＬの処置に関する。上記のＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０のために提供された定義を越えて、前記ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０は、本発明のこの第２の態様の一般に好ましい実施形態において、配列番号５３により表される配列に対して８０％超の配列同一性によってさらに特徴付けられ、ここで、前記配列の１６位にリシンが存在し、５０位および５２位にアスパラギン酸が存在する。本発明のこの第１の態様の一般により好ましい実施形態において、４９位にチロシンまたはフェニルアラニンが存在し、５１位にセリンまたはトレオニンが存在する。本発明のこの第１の態様の一般にさらにより好ましい実施形態において、４９位にチロシンが存在し、５１位にセリンが存在する。
したがって、治療的有効量は、単回用量として、または複数回用量レジメンに従って患者の処置部位においてＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性ＣＬＬ細胞を枯渇させるのに十分な量の抗体の量であるが、この量は毒物学的に許容される。
本発明の第２の態様において、０．２５～２５ｍｇ／ｋｇ（体重）、より好ましくは１～２０ｍｇ／ｋｇ（体重）、最も好ましくは７超～１５ｍｇ／ｋｇ（体重）、特に好ましい８～１２ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で使用される、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための抗体が好ましい。
これらの投与量は極めて低く、結果として悪性Ｂ細胞の強い枯渇を達成するための約８０ｋｇの平均的なヒト患者に仮定で投与される全薬物量は、特に好ましい６４０～９６０ｍｇの間を超えない。
厳密な投与量は、処置される患者を考慮して個々の医師により選ばれる。投与量および投与は、十分なレベルの活性部分を提供するように、または所望の効果を達成するように調整される。しかし、０．３ｍｇ／ｋｇ以下の週２回投与量が異種移植マウスモデルにおいて既に効果的であり、一方、悪性細胞の強い枯渇を１０ｍｇ／ｋｇ（週２回）の投与量で達成することができたことが本発明により示されている。
本発明の第２の態様による抗体を投与するとき、追加の要因も考慮されてよく、これには、疾患状態、例えば、腫瘍サイズおよび位置の重症度；年齢、体重および患者の性別および食事が含まれ得る。十分な用量を決定する更なる影響要因は、薬物併用、反応感受性、および治療法に対する耐性／応答であり得る。
さらに、投与は１回を超えて実施されてよく、投与の時間および頻度が、投与される個々の投与量にさらに影響し得る。
本発明の第２の態様によれば、抗体は、既知の医薬と共投与されてもよい。したがって、それらは、唯一の医薬品として、または１種もしくは複数種の追加の治療剤と併用して投与されてよく、ここで、併用は、許容できない有害作用を引き起こさない。この併用療法は、本発明の第１の態様による抗体および１種または複数種の追加の治療剤を含む単一の医薬投与製剤の投与、ならびに本発明の第１の態様の抗体およびその独自の別々の医薬投与製剤中の追加の各治療剤の投与を含む。
別々の投与製剤が使用される場合、１種または複数種の追加の治療剤での本発明の第２の態様による処置は、本質的に同じ時間（例えば、同時）でも、時間を別々にずらしてもよい（例えば、順次）。特に、本発明による処置は、アルキル化剤、代謝拮抗剤、植物由来の抗腫瘍剤、ホルモン療法剤、トポイソメラーゼ阻害剤、カンプトテシン誘導体、キナーゼ阻害剤、標的薬物、抗体、インターフェロンおよび／または生物学的応答調節剤、抗血管新生化合物、ならびに他の抗腫瘍薬などの他の抗腫瘍剤との固定または別々の併用で実施されてよい。
本発明の抗体は、がん治療において放射線療法および／または外科的介入と併せて使用されてもよい。
第３の態様－ポリヌクレオチド
本発明は、本発明の第１の態様の抗体をコードするＤＮＡ分子にも関する。
本発明は、本発明の第１の態様の抗体をコードするＤＮＡ分子にも関する。
本発明のＤＮＡ分子は、本明細書に開示される配列に限定されず、その変異体も含む。本発明の範囲内のＤＮＡ変異体は、ハイブリダイゼーションにおけるそれらの物理的特性を参照することにより記載することができる。ＤＮＡを使用して、その補体と、ＤＮＡは二本鎖であるため、核酸ハイブリダイゼーション技法を使用して、その等価体または相同体とを同定することができることを当業者は理解されよう。ハイブリダイゼーションが１００％未満の相補性で起こり得ることも認識されるであろう。しかし、条件の適切な選択を考えれば、ハイブリダイゼーション技法を使用して、特定のプローブとのそれらの構造的関連性に基づいてＤＮＡ配列を区別することができる。このような条件に関するガイダンスについては、Sambrook, J., Fritsch, E. F. and Maniatis, T. (1989) Molecular Cloning: A laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, USA and Ausubel et al., 1995 (Ausubel, F. M., Brent, R., Kingston, R. E., Moore, D. D., Sedman, J. G., Smith, J. A., & S1ruhl, K. eds. (1995). Current Protocols in Molecular Biology. New York: John Wiley and Sons)を参照されたい。
２つのポリヌクレオチド配列間の構造的類似性は、２つの配列が互いにハイブリダイズすることになる条件の「ストリンジェンシー」の関数として表すことができる。本明細書で使用される場合、「ストリンジェンシー」という用語は、条件がハイブリダイゼーションを嫌う程度を指す。ストリンジェントな条件は、ハイブリダイゼーションを強く嫌い、最も構造的に関連する分子のみがこのような条件下で互いにハイブリダイズすることになる。逆に、非ストリンジェントな条件は、より低い程度の構造的関連性を示す分子のハイブリダイゼーションを好む。したがって、ハイブリダイゼーションストリンジェンシーは、２つの核酸配列の構造的関係と直接相関する。以下の関係は、ハイブリダイゼーションおよび関連性の関係付けにおいて有用である（式中、Ｔｍは、核酸二重鎖の融解温度である）：
ハイブリダイゼーションストリンジェンシーは、全ＤＮＡ濃度、イオン強度、温度、プローブサイズ、および水素結合を破壊する薬剤の存在を含む多くの要因の関数である。ハイブリダイゼーションを促進する要因には、高ＤＮＡ濃度、高イオン強度、低温、より長いプローブサイズ、および水素結合を破壊する薬剤の非存在が含まれる。ハイブリダイゼーションは典型的には２段階：「結合」段階および「洗浄」段階で実施される。
本発明の範囲内のさらに別のクラスのＤＮＡ変異体は、それらがコードする産物を参照して記載することができる。これらの機能的に等価なポリヌクレオチドは、遺伝暗号の縮重のために配列番号１～２４に見出される同じペプチド配列をそれらがコードすることによって特徴付けられる。
本明細書において提供されるＤＮＡ分子の変異体は、幾つかの異なる方法で構築することができると認識されている。例えば、それらは完全合成ＤＮＡとして構築されてよい。２０～約１５０ヌクレオチドの範囲内のオリゴヌクレオチドを効率的に合成する方法は広く利用可能である。Ausubel et al., section 2.11, Supplement 21 (1993)を参照されたい。重複オリゴヌクレオチドは、Khorana et al., J. Mol. Biol. 72:209-217 (1971)により初めて報告されたように合成および構築されてよい;Ausubel et al.、上記、Section 8.2も参照。適切なベクターへのクローニングを容易にするために遺伝子の５’および３’末端に操作された好都合な制限部位を有する合成ＤＮＡが好ましくは設計される。
示されるように、変異体を生成する方法は、本明細書に開示されるＤＮＡのうちの１つから出発し、次いで、部位特異的変異誘発を実施する。Ausubel et al.、上記、chapter 8, Supplement 37 (1997)を参照されたい。典型的な方法において、標的ＤＮＡが一本鎖ＤＮＡバクテリオファージビヒクルにクローニングされる。一本鎖ＤＮＡが単離され、所望のヌクレオチド変化を含むオリゴヌクレオチドとハイブリダイズされる。相補鎖が合成され、二本鎖ファージが宿主に導入される。生じる子孫の一部は所望のミュータントを含むことになり、これは、ＤＮＡ配列決定を使用して確認することができる。加えて、子孫ファージが所望のミュータントになる可能性を高める様々な方法が利用可能である。これらの方法は当業者に周知であり、キットがこのようなミュータントの生成に商業的に利用可能である。
本発明の第１の態様と同じく、本発明のこの第３の態様の対応する好ましい実施形態も存在する。
本発明のこの第３の態様の第１の好ましい実施形態において、本発明は、配列番号２５、配列番号２９、配列番号３３および配列番号３８からなるリストから選択される任意の配列により表される本発明の第１の態様の１つの好ましい抗体の重鎖をコードするＤＮＡ分子に関する。
本発明のこの第３の態様の第２の好ましい実施形態において、本発明は、配列番号２６、配列番号３０、配列番号３４、配列番号３５、配列番号３６および配列番号３７からなるリストから選択される任意の配列により表される本発明の第１の態様の１つの好ましい抗体の軽鎖をコードするＤＮＡ分子に関する。
本発明の核酸は、本発明の核酸配列を含む標準的なベクターおよび宿主細胞を使用する抗体の組換え産生に適している。
本発明の更なる態様
本発明の第２の態様において使用される本発明の第１の態様の抗体は、既知の医薬と共投与されてよい。例えば、抗体は、任意の一般的な抗Ｂ細胞抗体と共投与され得る。
本発明の第２の態様において使用される本発明の第１の態様の抗体は、既知の医薬と共投与されてよい。例えば、抗体は、任意の一般的な抗Ｂ細胞抗体と共投与され得る。
本発明は、本発明の第１の態様の実施形態のいずれかによる抗体を含む組成物にも関し、これは、本発明の第２の態様と同様に使用されてよい。
したがって、本発明は、単独の、または少なくとも１種の他の薬剤と組み合わせた本発明の第１の態様による抗体と、薬学的に許容される担体または賦形剤とを含む医薬組成物を含む。
他の薬剤は、例えば安定化化合物でよく、このような少なくとも１種の他の薬剤および本発明の第１の態様による抗体が、これらに限定されないが、生理食塩水、緩衝生理食塩水、デキストロース、および水を含む任意の滅菌した生体適合性医薬担体中で投与されてよい。
本発明の医薬組成物は、当技術分野において既知の方法で、例えば、従来の混合、溶解、乳化、カプセル化、封入または凍結乾燥プロセスにより製造されてよい。
好ましい医薬組成物は、使用前に緩衝液と組み合わせられる、４．５～５．５のｐＨ範囲の１ｍＭ～５０ｍＭヒスチジン、０．１％～２％スクロース、２％～７％マンニトール中の本発明の第１の態様による抗体の凍結乾燥粉末から構成される。
許容される担体中で製剤化された本発明の抗体を含む医薬組成物が調製された後、それらを適切な容器内に置き、示された状態の処置のためにラベルすることができる。
結果として、関連する態様において、本発明は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの使用のためのこのような医薬組成物にも関する。同じく本発明のこの関連する態様は、治療活性量の前記このような医薬組成物を投与することによる、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置の方法に関する。
このような投与は非経口的に通常達成される。非経口送達の方法には、局所、動脈内（腫瘍に直接）、筋肉内、皮下、髄内、髄腔内、脳室内、静脈内、腹腔内、または鼻腔内投与が含まれる。
好ましい投与経路は、静脈内および動脈内（腫瘍に直接）である。
非経口投与のための医薬組成物は、活性化合物の水性溶液を含む。注射のために、本発明の医薬組成物は、水性溶液中で、好ましくはハンクス液、リンゲル液、または生理学的に緩衝化した生理食塩水などの生理学的に適合性の緩衝液中で製剤化されてよい。水性注射懸濁液は、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトール、またはデキストランなど、懸濁液の粘度を増加させる物質を含んでよい。さらに、活性化合物の懸濁液が適切な油性注射懸濁液として調製されてよい。適した親油性溶媒またはビヒクルには、ゴマ油などの脂肪油、またはオレイン酸エチルもしくはトリグリセリドなどの合成脂肪酸エステル、またはリポソームが含まれる。任意選択で、懸濁液は、化合物の溶解度を増加させて、高濃度溶液の調製を可能にする適した安定剤または薬剤を含んでもよい。
局所または経鼻投与のために、浸透される特定のバリアに適切な浸透剤が製剤中で使用される。このような浸透剤は、当技術分野において一般に既知である。
本発明はさらに、本発明の前述の組成物の成分のうちの１つまたは複数で充填された１つまたは複数の容器を含む医薬パックおよびキットに関する。このような容器には、医薬品または生物学的製品の製造、使用または販売を規制する政府機関により規定されたフォームで、ヒトへの投与のための製品の製造、使用または販売の政府機関による承認を示す通知が添付されていてもよい。
別の実施形態において、キットは、本発明の第３の態様による抗体をコードするＤＮＡ配列を含んでよい。好ましくはこれらの抗体をコードするＤＮＡ配列は、宿主細胞へのトランスフェクションおよび宿主細胞による発現に適したプラスミド中に提供される。プラスミドは、宿主細胞内のＤＮＡの発現を制御するプロモーター（しばしば誘導性プロモーター）を含んでよい。プラスミドは、プラスミドへの他のＤＮＡ配列の挿入を容易にして、様々な抗体を産生する適切な制限部位を含んでもよい。プラスミドは、コードされたタンパク質のクローニングおよび発現を容易にする多数の他の要素を含んでもよい。このような要素は当業者に周知であり、例えば、選択マーカー、開始コドン、終止コドンおよび同種のものを含む。
したがって、本発明はさらに、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための、本発明の前述の組成物の成分のうちの１つまたは複数で充填された１つまたは複数の容器を含む前述のパックおよびキットに関する。
本発明の好ましい実施形態は以下の通りである。
Ａ．ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための抗体であって、
配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは
配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または
配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、
使用のための抗体。
配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは
配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または
配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、
使用のための抗体。
Ｂ．配列番号１に対応する重鎖および配列番号２に対応する軽鎖によって特徴付けられる、実施形態Ａ記載の使用のための抗体。
Ｃ．配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列によって特徴付けられる、実施形態Ａ記載の使用のための抗体。
Ｄ．配列番号１３に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる、実施形態Ａ記載の使用のための抗体。
Ｅ．配列番号２１に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる、実施形態Ａ記載の使用のための抗体。
Ｆ．キメラ抗体である、実施形態ＡまたはＣ記載の使用のための抗体。
Ｇ．ヒト化抗体である、実施形態ＤおよびＥ記載の使用のための抗体。
Ｈ．０．２５～２５ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、実施形態ＡからＧまでのいずれか１つ記載の使用のための抗体。
Ｉ．１～２０ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、実施形態Ｈ記載の使用のための抗体。
Ｊ．７～１５ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、実施形態Ｈ記載の使用のための抗体。
Ｋ．８～１２ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、実施形態Ｈ記載の使用のための抗体。
Ｌ．ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための、単独の、または少なくとも１種の他の薬剤と組み合わせた前述の実施形態ＡからＧまでのいずれか１つ記載の抗体と、薬学的に許容される担体または賦形剤とを含む医薬組成物。
Ｍ．ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための、実施形態Ｌ記載の医薬組成物を含むキット。
本発明を以下の例によりさらに説明する。例は、特定の実施形態を参照することにより本発明を単に説明するために提供される。これらの例示は、本発明のある特定の態様を例示する一方で、制限を描写したり、開示されている発明の範囲を制限したりしない。
全ての例が標準的な技術を使用して行われた。これらは、特に詳細に記載される場合を除き、当業者に周知かつ日常的である。以下の例の日常的な分子生物学的技術は、上記のSambrook et al., 1989などの標準的な実験マニュアルに記載されているように行うことができる。
図６は、（Miniciらにより記載されたような）ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０軽鎖のＢＣＲ－ＢＣＲホモタイプ相互作用の概略図を示す。重鎖（ＨＣ）および軽鎖（ＬＣ）を含む抗原結合性サブユニット、膜貫通ドメイン（ＴＭ）、ならびにＩｇαおよびＩｇβタンパク質（ＣＤ７９ａ／ＣＤ７９ｂ）のジスルフィド結合ヘテロダイマーから構成されるシグナル伝達サブユニット（ＳＵ）を含む２つの隣接するＢＣＲが示されている。１つのＢＣＲの１１０位の変異アルギニン（Ｒ）が、隣接するＢＣＲの５０位の生殖系列にコードされたアスパラギン酸（Ｄ）と相互作用する。２つのＢＣＲ間の更なる相互作用が、１６位の生殖系列にコードされたアミノ酸残基リシン（Ｋ）および５２位のアスパラギン酸（Ｄ）によって媒介される。
図７は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０の概略図を示す。図７Ａ：１文字表記の例示的なＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０（配列番号５３）。MiniciらによるＢＣＲ－ＢＣＲホモタイプ相互作用に関与するアミノ酸残基が太字で示されている。図７Ｂ：１行目：ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０内のアミノ酸位置。２行目：MiniciらによるＢＣＲ－ＢＣＲホモタイプ相互作用に関与するアミノ酸残基。３～５行目：比較のＹＤＳＤ－モチーフの異なる変異体。アミノ酸は３文字表記で示されている。
本発明の好ましい実施形態は以下の通りである。
実施例
実施例１
マウス抗体の生成
ハイブリドーマ細胞株の免疫化および生成
可溶型のＢＣＲとのマウスの免疫化の組合せ、および完全かつ機能的なＢＣＲに膜結合が提示される細胞系を使用した適した抗体の選択により、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに対するマウス抗体を発生させた。
実施例１
マウス抗体の生成
ハイブリドーマ細胞株の免疫化および生成
可溶型のＢＣＲとのマウスの免疫化の組合せ、および完全かつ機能的なＢＣＲに膜結合が提示される細胞系を使用した適した抗体の選択により、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに対するマウス抗体を発生させた。
最初は、マウスの免疫化のためにＩｇＧ１の形態の可溶型のＢＣＲを得なければならなかった。したがって、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０をカバーする例示的な可変重鎖（ＶＨ）および完全な軽鎖（ＬＣ）ＤＮＡとしてＩＧＨＶ３－２１をコードするＤＮＡセグメントを受託製造業者により標準的な手順を使用して合成した。次いで、これらをポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によりマウスＩｇＧ１定常セグメントと融合させ、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）ベクターにクローニングした。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞に基づくヒト細胞発現系を、例えばRekombinante Antikoerper, Lehrbuch und Kompendium fuer Studium und Praxis, 2. Auflage, Springer Verlag 2019に先に記載されたようなＩｇＧ１（ＶＨについては配列番号４９、およびＬＣについては配列番号５０）の発現のために使用した。ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）ベースのプロトコールをトランスフェクションのために使用した。数回継代した後、上清をプールし、合わせた細胞上清に含まれる培地を、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇカラムを使用して精製した。可溶性ＩｇＧ１の純度および品質をウエスタンブロッティングにより決定した。
その後、組換えで作製された可溶型のＢＣＲでマウスを免疫した（配列番号４９および５０参照）。
次いで、所望の特異性を有する免疫細胞をこれらのマウスから得、細胞融合によりハイブリドーマ細胞に変換することができた。第２に、ＢＣＲの様々な変異体を発現するトリプルノックアウト細胞（ＴＫＯ；遺伝子Ｌａｍｂｄａ５、ＲＡＧ２およびＳＬＰ６５のノックアウト）を用いてＦＡＣＳスクリーニング法を実施して、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲを特異的に標的とする抗体を選択した。
マウスにおける標準的な手順および次世代のハイブリドーマ細胞を使用してモノクローナル抗体を作製した。
このアプローチは、特有のモノクローナル抗体「ｍＡｂ０１－０１」（重鎖については配列番号１、および軽鎖については配列番号２）の単離を可能にした。
モノクローナル抗体の選択
陽性クローンのスクリーニングは、通常通りの酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）によって実施しなかった。標的構造体は膜結合受容体であるため、すなわち、この細胞型に固有の細胞生理的状態をおおむね維持しながら、細胞系における潜在的な抗体の結合を検証することが中心的な重要性を持つ。まず、蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）解析を使用して、プールした上清の群を結合事象に関して調べた。この目的のために、異なるＢＣＲ変異体をトリプルノックアウト（ＴＫＯ）細胞株の表面で発現させた。これは、ＢＣＲ自体を発現できない。
陽性クローンのスクリーニングは、通常通りの酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）によって実施しなかった。標的構造体は膜結合受容体であるため、すなわち、この細胞型に固有の細胞生理的状態をおおむね維持しながら、細胞系における潜在的な抗体の結合を検証することが中心的な重要性を持つ。まず、蛍光活性化セルソーティング（ＦＡＣＳ）解析を使用して、プールした上清の群を結合事象に関して調べた。この目的のために、異なるＢＣＲ変異体をトリプルノックアウト（ＴＫＯ）細胞株の表面で発現させた。これは、ＢＣＲ自体を発現できない。
ＴＫＯ細胞の産生の出発点は、遺伝子Ｌａｍｂｄａ５、ＲＡＧ１またはＲＡＧ２およびＳＬＰ６５のそれぞれのノックアウトを有するトランスジェニックマウスにより形成される（Duehren von Minden et al., 2012, Nature 489, p. 309-313）。ＲＡＧ２またはＲＡＧ１およびＬａｍｂｄａ５のノックアウトの組合せは、プロＢ細胞期からプレＢ細胞期への移行における遮断につながり、これは、重鎖（ＨＣ）のＶＤＪセグメントの初期の再配置によって古典的に特徴付けられる。したがって、それらはプロ／プレＢ細胞である。ＢＣＲの活性は、誘導性ＳＬＰ６５での再構成により測定することができる。このようなマウスの作製は、専門家に既知であり、最新技術に属する。細胞を得るために、マウスを屠殺した後、マウスから大腿骨の骨髄を抽出した。次いで、このようにして得られた細胞を、プロ／プレＢ細胞の生存を促進する条件下で培養した（３７℃、７．５％ ＣＯ２、Ｉｓｃｏｖｅｓ培地、１０％ ＦＣＳ、Ｐ／Ｓ、マウスＩＬ７）。数回継代した後、制御目的のためにＦＡＣＳソーティングを行い、プロ／プレＢ細胞をソーティングし、次いで、培養に戻した。この目的のために使用されるマーカーは専門家に既知である。
「対象ＢＣＲ」での再構成のために、ＶＨをコードする対応する配列をポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によりヒトＩｇＭ定常セグメントと融合させ、ＣＭＶプロモーターをそれぞれ有するそれぞれの発現ベクターに重（ＨＣ）鎖および軽（ＬＣ）鎖をクローニングした。これらをリポフェクションによりパッケージング細胞株（Ｐｈｏｅｎｉｘ細胞株）に導入した。３６時間のインキュベーション後、ウイルス上清を除去し、ＴＫＯ細胞のスピンフェクション（Spinfektion）のために使用した。ＦＡＣＳで抗ＩｇＭおよび抗ＬＣ抗体を使用してＢＣＲ発現を決定した。この目的のために、一部の細胞を採取し、ＰＢＳ中の１００μｌの全体積中、それぞれ抗体５μｌで染色した。上清を抽出する作業とＴＫＯのスピンフェクションのいずれも、広く知られている手順であり、専門家に既知である。ＲＡＧ２またはＲＡＧ１およびＬａｍｂｄａ５のノックアウトにより、「対象ＢＣＲ」のみを表面で発現させることを保証した。
このようにして、２種の異なるＢＣＲ発現ＴＫＯ細胞株を生成し、これらのうちの１種が膜結合ＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＢＣＲを発現した。第２のＢＣＲ発現ＴＫＯ細胞株の生成のために、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０をコードするＤＮＡの１１０位のアルギニンのコドンを周知の部位特異的変異誘発技法により生殖系列配列に戻した（例えば、上記のSambrook et al., 1989参照）。生じたＴＫＯ細胞は、アミノ酸位置１１０にグリシンを有するＩＧＬＶ３－２１（ＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０）を含むＢＣＲを発現した。その表面でＢＣＲ発現がない第３の対照ＴＫＯ細胞株を生成するために、空の発現ベクターによるスピンフェクション（spinfection）を実施した。細胞を再構成する誘導性ＳＬＰ６５を使用することにより、発現したＢＣＲの機能を特徴付けることができ、したがって、選択前に表面のＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＢＣＲの自律的に活性な状態を検証することができた。選別方法はここで、ＦＡＣＳ解析を使用したＳＬＰ６５の誘導後のＣａフラックスの測定およびＩｎｄｏ－１などのＣａ２＋依存性色素の使用である。これらの方法は専門家に既知である（M. Duehren-von Minden et. al; Nature 2012参照）。「標的」としてのこれらの細胞に対して、ここでＦＡＣＳを使用して、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢＣＲに特異的に結合する抗体を同定した。第１のステップは、抗体が結合を示す上清を同定することであった。この第１の選別ラウンドにおいて、幾つかのクローンの上清を組み合わせ、それらの結合プロファイルに関して調べた。ＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲに対する特異的結合が示される場合、陽性結合プロファイルが与えられる。このようなプロファイルを示す群を単離し、第２の選別ラウンド中に再び個々のクローンの結合プロファイルを特徴付けた。蛍光標識抗マウスＩｇＧ抗体を使用したＦＡＣＳ結合アッセイを使用してモノクローナル抗体の結合を検証した。
この選別アプローチは、抗体ｍＡｂ０１－０１の同定につながった。これはＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＢＣＲ陽性ＴＫＯマウス細胞を結合するが、ＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０ ＢＣＲ陽性ＴＫＯマウス細胞を結合しない。
マウス抗体の産生
選別による好ましい抗体の同定後、個々のハイブリドーマクローンからｍＲＮＡを単離し、ｃＤＮＡを作成し、アンカーＰＣＲにより増幅した（Rapid expression cloning of human immunoglobulin Fab fragments for the analysis of antigen specificity of B cell lymphomas and anti-idiotype lymphoma vaccination; Osterroth F, Alkan O, Mackensen A, Lindemann A, Fisch P, Skerra A, Veelken H. J Immunol Methods 1999 Oct 29; 229(1-2):141-53）。モノクローナル抗体ｍＡｂ０１－０１をコードするｃＤＮＡの配列をサンガー配列決定により確認し（ＨＣヌクレオチドについては配列番号２５、ＬＣヌクレオチドについては配列番号２６）、ＣＨＯ細胞における発現に適したベクター内に配置した。
選別による好ましい抗体の同定後、個々のハイブリドーマクローンからｍＲＮＡを単離し、ｃＤＮＡを作成し、アンカーＰＣＲにより増幅した（Rapid expression cloning of human immunoglobulin Fab fragments for the analysis of antigen specificity of B cell lymphomas and anti-idiotype lymphoma vaccination; Osterroth F, Alkan O, Mackensen A, Lindemann A, Fisch P, Skerra A, Veelken H. J Immunol Methods 1999 Oct 29; 229(1-2):141-53）。モノクローナル抗体ｍＡｂ０１－０１をコードするｃＤＮＡの配列をサンガー配列決定により確認し（ＨＣヌクレオチドについては配列番号２５、ＬＣヌクレオチドについては配列番号２６）、ＣＨＯ細胞における発現に適したベクター内に配置した。
二次抗マウスＩｇＧ１－ＡＰＣおよびＩｇＧ２－ＡＰＣ抗体を使用してＩｇＧ１サブタイプとしてのｍＡｂ０１－０１の発現を検証した。この目的のために、二次抗体のみを含むあるバッチならびにｍＡｂ０１－０１および二次抗体を含む別のバッチにおいてＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０発現ＴＫＯ細胞を染色した。その後のＦＡＣＳ解析により、抗体がＩｇＧ１として発現されたことが確認された。
特異的なモノクローナル抗体ｍＡｂ０１－０１を配列決定した。表１に示されるように以下のアミノ酸配列を決定した：ＨＣについては配列番号１、ＬＣについては配列番号２、ＶＨについては配列番号３、ＶＬについては配列番号４。重鎖、Ｈ－ＣＤＲ１、Ｈ－ＣＤＲ２およびＨ－ＣＤＲ３の相補性決定領域（ＣＤＲ）に対応する配列は配列番号５、６および７に含まれ、一方、軽鎖ＣＤＲ、Ｌ－ＣＤＲ１、Ｌ－ＣＤＲ２およびＬ－ＣＤＲ３に対応する配列は配列番号８、９および１０に含まれる。
実施例２
キメラ抗体の生成
マウスモノクローナル抗体ｍＡｂ０１－０１ＶＨおよびＶＬヌクレオチド配列（ＶＨヌクレオチドについては配列番号２７、およびＶＬヌクレオチドについては配列番号２８）を使用してキメラ抗体を合成した。この目的のために、ＰＣＲによりＶＨ配列をヒトＩｇＧ１アイソタイプ定常ドメイン配列（ＩｇＧ１定常ヌクレオチドについては配列番号３１）と融合させ、ＶＬ配列をヒトＩｇＫアイソタイプ定常ドメイン（ＩｇＫ定常ヌクレオチドについては配列番号３２）と融合させ、ＣＨＯベースの一過性発現系を使用して発現させた。生じた抗体を含む細胞培養上清を遠心分離および濾過により清澄化した。キメラ抗体をアフィニティークロマトグラフィーによって細胞培養上清から精製した。還元および変性ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）で判断して、抗体の純度を９５％超と決定した。抗体をＰＢＳ緩衝液中のサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）によってタンパク質含量および濃度に関して分析した。全てのステップを最先端の設備および技法を用いて実施した。
キメラ抗体の生成
マウスモノクローナル抗体ｍＡｂ０１－０１ＶＨおよびＶＬヌクレオチド配列（ＶＨヌクレオチドについては配列番号２７、およびＶＬヌクレオチドについては配列番号２８）を使用してキメラ抗体を合成した。この目的のために、ＰＣＲによりＶＨ配列をヒトＩｇＧ１アイソタイプ定常ドメイン配列（ＩｇＧ１定常ヌクレオチドについては配列番号３１）と融合させ、ＶＬ配列をヒトＩｇＫアイソタイプ定常ドメイン（ＩｇＫ定常ヌクレオチドについては配列番号３２）と融合させ、ＣＨＯベースの一過性発現系を使用して発現させた。生じた抗体を含む細胞培養上清を遠心分離および濾過により清澄化した。キメラ抗体をアフィニティークロマトグラフィーによって細胞培養上清から精製した。還元および変性ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）で判断して、抗体の純度を９５％超と決定した。抗体をＰＢＳ緩衝液中のサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）によってタンパク質含量および濃度に関して分析した。全てのステップを最先端の設備および技法を用いて実施した。
このアプローチは、結果としてキメラ抗体「ＨＣ０－ＬＣ０」を生じた。これの配列を表１にまとめる。
実施例３
ヒト化抗体の生成
Fusion Antibodies Plc、Ｂｅｌｆａｓｔ、Ｎ．Ｉｒｅｌａｎｄによる標準的なＣＤＲ移植技術を使用してマウスＣＤＲを成熟ヒト抗体フレームワークにインシリコ移植することによりｍＡｂ０１－０１のヒト化を行った。ＶＨ／ＶＬ界面および古典的ループ構造にとって重要な鍵となる残基は、ＣＤＲｘプラットホーム（Fusion Antibodies Plc、Ｂｅｌｆａｓｔ、Ｎ．Ｉｒｅｌａｎｄ）を使用してヒト化変異体内にできるだけ維持された。続いて、融合抗体により生成されたヒト化変異体のアミノ酸配列を、Geneiouseソフトウェア（Ｇｅｎｅｉｏｕｓ Ｐｒｉｍｅ ２、Ａｕｃｋｌａｎｄ、Ｎｅｗ Ｚｅａｌａｎｄ）を使用してヌクレオチド配列に変換した。ＰＣＲによりＶＨ配列をヒトＩｇＧ１アイソタイプ定常ドメイン配列（ＩｇＧ１定常ヌクレオチドについては配列番号３１）と、およびＶＬ配列をヒトＩｇＫアイソタイプ定常ドメイン（ＩｇＫ定常ヌクレオチドについては配列番号３２）と融合することにより、１６対のヒト化重鎖および軽鎖を産生し、抗体遺伝子配列がチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）において一過性に発現した。バッチ培養後、発現したヒト化抗体を細胞培養上清から精製し、ＨＣ０－ＬＣ０について実施例２に記載されているように分析した。表２に示されるよう８種のヒト化抗体が首尾よく得られた。
ヒト化抗体の生成
Fusion Antibodies Plc、Ｂｅｌｆａｓｔ、Ｎ．Ｉｒｅｌａｎｄによる標準的なＣＤＲ移植技術を使用してマウスＣＤＲを成熟ヒト抗体フレームワークにインシリコ移植することによりｍＡｂ０１－０１のヒト化を行った。ＶＨ／ＶＬ界面および古典的ループ構造にとって重要な鍵となる残基は、ＣＤＲｘプラットホーム（Fusion Antibodies Plc、Ｂｅｌｆａｓｔ、Ｎ．Ｉｒｅｌａｎｄ）を使用してヒト化変異体内にできるだけ維持された。続いて、融合抗体により生成されたヒト化変異体のアミノ酸配列を、Geneiouseソフトウェア（Ｇｅｎｅｉｏｕｓ Ｐｒｉｍｅ ２、Ａｕｃｋｌａｎｄ、Ｎｅｗ Ｚｅａｌａｎｄ）を使用してヌクレオチド配列に変換した。ＰＣＲによりＶＨ配列をヒトＩｇＧ１アイソタイプ定常ドメイン配列（ＩｇＧ１定常ヌクレオチドについては配列番号３１）と、およびＶＬ配列をヒトＩｇＫアイソタイプ定常ドメイン（ＩｇＫ定常ヌクレオチドについては配列番号３２）と融合することにより、１６対のヒト化重鎖および軽鎖を産生し、抗体遺伝子配列がチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）において一過性に発現した。バッチ培養後、発現したヒト化抗体を細胞培養上清から精製し、ＨＣ０－ＬＣ０について実施例２に記載されているように分析した。表２に示されるよう８種のヒト化抗体が首尾よく得られた。
実施例４
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲおよびＩＧＬＶ３－２１ Ｇ１１０ －ＢＣＲ発現ＴＫＯ細胞へのｍＡｂ０１－０１の結合
蛍光マーカーに結合された抗体を使用したＦＡＣＳアッセイにおいて、選択において観察された抗体ｍＡｂ０１－０１の特異性（実施例１）を検証した。
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲおよびＩＧＬＶ３－２１ Ｇ１１０ －ＢＣＲ発現ＴＫＯ細胞へのｍＡｂ０１－０１の結合
蛍光マーカーに結合された抗体を使用したＦＡＣＳアッセイにおいて、選択において観察された抗体ｍＡｂ０１－０１の特異性（実施例１）を検証した。
この目的のために、実施例１による３種の異なるＴＫＯ細胞株から、２種の細胞混合物、細胞ミックスＡおよび細胞ミックスＢを調製し、続いてｍＡｂ０１－０１－ＡＰＣで染色した（ｍＡｂ０１－０１をImmunotools GmbHによる蛍光マーカーＡＰＣと結合させた）。対照について、各バッチを抗ＩｇＭ抗体（抗ヒトＩｇＭ－ＰＥ、Ｃｌｏｎｅ：ＭＨＭ－８８、BioLegendカタログ番号：３１４５０８）でさらに染色した。
ＰＢＳ緩衝液（Gibco、ｐＨ７．２、カタログ番号２００１２－０１９）中１：１比のＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０Ｂ細胞受容体発現ＴＫＯ細胞およびＢ細胞受容体陰性（空ベクター；対照）ＴＫＯ細胞で細胞ミックスＡを調製した。
ＰＢＳ緩衝液中１：１比のＩＧＨＶ３－２１／ＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０Ｂ細胞受容体発現ＴＫＯ細胞およびＢ細胞受容体陰性（空ベクター；対照）ＴＫＯ細胞で細胞ミックスＢを調製した。
ＰＢＳ緩衝液中の抗体の希釈液（１００μｌの全体積中、５μｇ／ｍｌ ｍＡｂ０１－０１－ＡＰＣ、２μｇ／ｍｌ抗ヒトＩｇＭ－ＰＥ）に細胞ミックスＡまたはＢの細胞をＦＡＣＳチューブあたりおよそ１０６細胞で懸濁させ、暗所にて４℃で１５分間インキュベートした。次に、細胞を冷ＰＢＳ緩衝液１ｍｌで１回洗浄し、冷ＰＢＳ緩衝液２００μＬに再懸濁させた。
ＭＡＣＳＱｕａｎｔ Ａｎａｌｙｚｅｒ １０を使用することによりＦＡＣＳ解析を実施した（Miltenyi Biotec B.V. & Co. KG；装置を製造業者により推奨されるように校正した、流速：低、ミックス サンプル：ミックス 穏やか、モード、標準、取込み量：５０μＬ、サンプル量：２００μＬ）。細胞ミックスＡまたは細胞ミックスＢのＴＫＯ細胞を側方散乱（ＳＳＣ）対前方散乱（ＦＳＣ）においてゲートし、ゲートしたＴＫＯ細胞を抗ＩｇＭ－ＰＥ対ｍＡｂ０１－０１－ＡＰＣドット－プロットにおいて分析して、象限統計を使用して異なるＴＫＯ細胞集団を数えた。
図１Ａ～１Ｄに示されるように、ｍＡｂ０１－０１は、ヒトＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲを発現するマウスＴＫＯ細胞に結合するのに対し、ヒトＩＧＬＶ３－２１Ｇ１１０－ＢＣＲ発現ＴＫＯマウス細胞に対しては結合は起こらない。
実施例５
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ Ｂ細胞受容体に対する抗体の親和性
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢ細胞受容体に対する抗体の結合親和性を定義するために、可溶性組換えバージョンのＢＣＲ（１７０．５ｋＤａ；ＨＣについては配列番号５１およびＬＣについては配列番号５２による配列）を、実施例１に記載されたプロトコールを使用した一過性発現により単量体ヒトＩｇＭとして２９３－ＨＥＫ細胞株において作製し、固定化抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体への結合をＦｏｒｔｅｂｉｏ Ｏｃｔｅｔ装置（Satorius）でＢｉｏ－Ｌａｙｅｒ Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ（BLI）によりモニターした。
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ Ｂ細胞受容体に対する抗体の親和性
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持つＢ細胞受容体に対する抗体の結合親和性を定義するために、可溶性組換えバージョンのＢＣＲ（１７０．５ｋＤａ；ＨＣについては配列番号５１およびＬＣについては配列番号５２による配列）を、実施例１に記載されたプロトコールを使用した一過性発現により単量体ヒトＩｇＭとして２９３－ＨＥＫ細胞株において作製し、固定化抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体への結合をＦｏｒｔｅｂｉｏ Ｏｃｔｅｔ装置（Satorius）でＢｉｏ－Ｌａｙｅｒ Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ（BLI）によりモニターした。
抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体を間接的捕捉試薬、抗ヒトＩｇＧ Ｆｃ抗体によりバイオセンサー上にまず固定化することによりカイネティックアッセイを実施した。抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体を０．０１８７５μｇ／ｍｌの濃度で負荷して、０．３０～０．３４ｎｍの間の抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体捕捉レベルを発生させた。ランニングバッファー（ＰＢＳ、０．０２％ Ｔｗｅｅｎ２０、０，１％ＢＳＡ、０．０５％ナトリウム酸）中の９ｎＭ ＢＣＲ断片溶液を調製し、１：３に段階希釈して、９～０．０１２ｎＭ（９ｎＭ、３ｎＭ、１ｎＭ、０．３３３ｎＭ、０．１１１ｎＭ、０．０３７ｎＭ、および０．０１２ｎＭ）の７種の濃度を得た。次いで、異なる濃度の可溶性ＢＣＲ断片が入ったウェルに抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体捕捉バイオセンサーを９００秒間（会合段階）沈め、その後、ランニングバッファー中の１２００秒の解離ステップが続いた。１０００ｒｐｍの一定の振盪速度でステップを実施した。全ての試薬を製造業者により記載されたように使用した。捕捉抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体の自然解離ならびにセンサー表面への可溶性ＢＣＲ断片の非特異的結合の両方を補償する二重基準補正（緩衝液およびブランクセンサー）後にセンサーグラムを生成した。Ｆｏｒｔｅｂｉｏ Ｄａｔａ Ａｎａｌｙｓｉｓソフトウェア（Satorius）を使用してセンサーグラムを一次１：１結合モデルと適合させることにより得られた会合定数（ｋａ）および解離速度定数（ｋｄ）の比に基づいて解離速度定数（ＫＤ）を計算した。
表３に示されるように、キメラ抗体ＨＣ０－ＬＣ０は、およそ１２０ｎＭのＫＤ値で可溶性ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０Ｂ細胞受容体と結合する。ヒト化抗体ＨＣ６－ＬＣ６およびＨＣ７－ＬＣ６は、キメラ抗体ＨＣ０－ＬＣ０のものと同様の結合特性を示し、キメラ抗体ＨＣ０１ ＬＣ０１の２倍以内の解離定数を示す。全てのヒト化抗体のＫＤ値については、表３を参照されたい。
実施例６
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ陽性ヒトＢ－ＣＬＬ細胞の細胞表面へのマウス抗体ｍＡｂ０１－０１の結合
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－Ｂ細胞受容体陽性ヒトＣＬＬ細胞対非ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ヒトＢ細胞上のｍＡｂ０１－０１の結合特性を決定するために、結合をフローサイトメトリーにより試験した。
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ陽性ヒトＢ－ＣＬＬ細胞の細胞表面へのマウス抗体ｍＡｂ０１－０１の結合
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－Ｂ細胞受容体陽性ヒトＣＬＬ細胞対非ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ヒトＢ細胞上のｍＡｂ０１－０１の結合特性を決定するために、結合をフローサイトメトリーにより試験した。
この目的のために、２名のＣＬＬ患者の凍結保存された末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を使用した。これらの患者のうちの１名におけるＣＬＬをＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０の存在によって特徴付けた。より具体的には、ＣＬＬ細胞は、ＩＧＨＶ４－３９重鎖とのＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０の組合せを含むＢＣＲ（ＩＧＨＶ４－３９／ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ）を発現した。他の患者は、非ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０ ＣＬＬを患っていると診断されていた。例えばBoyum A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood. Scan. J. Clin. Lab. Invest 1968, 21 (Suppl. 97): 77-89により当技術分野において既知である技法を使用して、Ｆｉｃｏｌｌ－Ｐａｑｕｅ ＰＬＵＳ（GE Healthcare Bio-Sciences AB）密度勾配遠心分離によりＰＢＭＣをヘパリン加静脈血から分離することができた。
解凍され、細胞培養培地（ＲＰＭＩ、Gibco；１０％ＦＣＳ、PAN-Biotec）５ｍｌに再懸濁させたサンプルである細胞３００ｇで遠心分離（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ遠心分離機５４２５Ｒ）し、その後、ＲＰＭＩ １ｍｌへの追加の再懸濁が続いた。Ｎｅｕｂａｕｅｒ Ｃｈａｍｂｅｒを使用することにより細胞数を得た。染色のために１×１０Ｅ６細胞を使用し、ＦＡＣＳチューブに移した。ＰＢＳ緩衝液１００μｌの全体積中抗ＣＤ１９ ＶｉｏＢｒｉｇｈｔ５１５（Miltiny Biotech、Ｋｌｏｎ：ＲＥＡ６７５、）２μｌ、抗ＣＤ５－ＰＥ－Ｖｉｏ７７０（Miltenyi Biotec、Ｋｌｏｎ：ＲＥＡ７８２）２μｌ、およびｍＡｂ０１－０１－ＡＰＣ（ｍＡｂ０１－０１をImmunotools GmbHによる蛍光マーカーＡＰＣと結合させた）５μｌを使用して細胞を染色し、暗所にて４℃で１５分間インキュベートした。次に、細胞を冷ＰＢＳ緩衝液１ｍｌで１回洗浄し、冷ＰＢＳ緩衝液２００μＬに再懸濁させ、ＢＤ ＬＳＲＦｏｒｔｅｓｓａ（商標）Ｃｅｌｌ Ａｎａｌｙｚｅｒ（BDbioscience）を使用したフローサイトメトリーにより分析した。装置を製造業者により推奨されるように校正した。生データの解析は、ＦｌｏｗＪｏ－Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｘ（BDbioscience）を使用することにより実施された。解析ゲートは、図２に示されるように設定された。
図２に示されるように、ｍＡｂ０１－０１は、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性ＣＬＬ Ｂ細胞に排他的に結合するが、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０を持たないＣＬＬ患者のＢＣＲに排他的に結合しない。より具体的には、ｍＡｂ０１－０１は、重鎖の性質に関係なくＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲを認識する。
実施例７
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ陽性マウスＴＫＯ細胞の細胞表面へのキメラ抗体およびヒト化抗体の結合特性
キメラ抗体および２種のヒト化バージョンの特異的ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ結合を比較するために、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲマウスＴＫＯ細胞（実施例１参照）を異なる濃度の抗体ＨＣ０－ＬＣ０、ＨＣ６－ＬＣ６およびＨＣ７－ＬＣ６とインキュベートし、フローサイトメトリーおよびサンドイッチアッセイセットアップにより分析した。ＴＫＯ－空ベクター細胞株（表面ＢＣＲなし）を用いて制御を実施した。
ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ陽性マウスＴＫＯ細胞の細胞表面へのキメラ抗体およびヒト化抗体の結合特性
キメラ抗体および２種のヒト化バージョンの特異的ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ結合を比較するために、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲマウスＴＫＯ細胞（実施例１参照）を異なる濃度の抗体ＨＣ０－ＬＣ０、ＨＣ６－ＬＣ６およびＨＣ７－ＬＣ６とインキュベートし、フローサイトメトリーおよびサンドイッチアッセイセットアップにより分析した。ＴＫＯ－空ベクター細胞株（表面ＢＣＲなし）を用いて制御を実施した。
各細胞株から、７．５×１０Ｅ６細胞を別々の１５ｍｌブルーキャップに移し、１０分間（３００ｇ、４℃で）遠心分離し、ＰＢＳ（Gibco）１，５ｍｌに再懸濁させる。
染色は、９６ウェルプレート（ＶＷＲ、Ｕ字底、無処置）において実施された。各反応について２×１０Ｅ５細胞を使用した。実験セットアップを表４に示す。
異なるヒト化変異体の結合特性を特徴付けるために、２００μｌ／ウェルの全体積中、ＰＢＳ中の１０種の異なる濃度の各抗体を染色のために使用した（１０、５、２．５、０．６２５、０．３１、０．１６、０．０８、０．０４、０μｇ／ｍｌ）。インキュベーションを４℃で３０分間実施した（暗所）。次いで、９６ウェルを３００ｇ、４℃で１０分間遠心分離した（ＶＷＲ、ＭＥＧＡ ＳＴＡＲ １．６Ｒ）。上清を捨て、細胞を氷冷ＰＢＳ１００μｌに再懸濁させた。検出のために、ＡＰＣで標識したヒトＩｇＧ１に向けられた二次抗体を１０μｇ／ｍｌの最終濃度で使用した。
インキュベーションを全体積２００μｌ／ウェル中、暗所にて４℃で１５分間実施し、その後、氷冷ＰＢＳでの追加の洗浄ステップが続いた。細胞を取得のために氷冷ＰＢＳ １５０μｌに再懸濁させた。製造業者の指示に従って校正されたＭＡＣＳ－Ｑｕａｎｔ１０（Miltenyi Biotec）で細胞を分析した。
対照細胞値を引くことにより、全てのＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ ＴＫＯ測定のＭＦＩ（蛍光強度中央値）を中和し、抗体の濃度に対してプロットした。３種全ての抗体についてＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲの結合の濃度依存的な増加を示す関数が生成された。図３に示されるように、２種のヒト化変異体は、抗体濃度の増加と共に次第にキメラ抗体と同一の結合特性を示し、遅くとも１０μｇ／ｍｌにおいてほぼ同一の結合特異性を有する。
実施例８
ｍＡｂ０１－０１の組織交差反応性プロファイル
免疫組織化学（ＩＨＣ）実験においてヒトＣＬＬおよび健常組織に対するｍＡＢ０１－０１の結合特性を決定するために、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲを発現する脾臓組織ならびに健常な脾臓、皮膚、腎臓、心臓、および脳組織の切片に対して免疫染色を実施した。
ｍＡｂ０１－０１の組織交差反応性プロファイル
免疫組織化学（ＩＨＣ）実験においてヒトＣＬＬおよび健常組織に対するｍＡＢ０１－０１の結合特性を決定するために、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲを発現する脾臓組織ならびに健常な脾臓、皮膚、腎臓、心臓、および脳組織の切片に対して免疫染色を実施した。
ＩＨＣの前に、組織切片を脱パラフィンし、水和した。抗原をアンマスクするために、クエン酸塩緩衝液ｐＨ６．０（クエン酸（０．１Ｍ）９ｍｌおよびクエン酸ナトリウム（０．１Ｍ）４１ｍｌ）でのマイクロ波処理を実施した。これのために、切片を泡立っているクエン酸塩緩衝液中で１５分間煮沸し、この後、それらを室温で３０分間冷やし、次いで、それらをＰＢＳ中で３×５分すすいだ。ＩＨＣのために、スライドを湿度チャンバー内で第１の抗体と１：２００の希釈度で室温にて２時間インキュベートした。対照として、全ての組織の切片を第１の抗体がない同一条件下でインキュベートした。その後、スライドをＰＢＳ中で３×５分洗浄した。二次抗体としての西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）とコンジュゲートした抗ＩｇＧ抗体（ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）－ＨＲＰ、Southern Biotech、カタログ番号１０３６－０５）を加湿チャンバー内で１：１００００の希釈度で室温にて１時間インキュベートした。続いて、これをＰＢＳで１０分間洗浄し、ＤＡＢ基質キット（＃３４０６５、Thermo Fisher）を使用して、ＨＲＰの活性を検出した。ＤＡＢ（３，３’－ジアミノベンジジン四塩酸塩）基質を１５分間インキュベートした。Ｆｌｕｏｒｏｍｏｕｎｔ－１をキャッピング剤として使用した。評価を３０分後に行い、ＨＲＰコンジュゲート抗ＩｇＧ抗体が組織に結合された部位において不溶性の褐色反応生成物を示した。
図４に示されるように、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ陽性脾臓切片について陽性染色を観察することができた。したがって、ｍＡｂ０１－０１は、ヒトＣＬＬ組織への結合において交差反応性である。対照的に、脾臓、皮膚、腎臓、心臓、および脳の健常ヒト組織切片において染色は検出されなかった。したがって、ｍＡＢ０１－０１は、健常ヒト組織に対して交差反応性を示さない。
実施例９
患者由来の異種移植モデルにおける抗ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ抗体の試験
抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体の効果を決定するために、患者由来の異種移植モデルを選んだ。用量設定実験のために、４匹のＮＯＤ－ｓｃｉｄ ＩＬ２ｒｇヌル（ＮＳＧ）－マウス（Jackson ImmunoResearch、Qi J et al.: An IgG1-like bispecific antibody targeting CD52 and CD20 for the treatment of B-cell malignancies, Methods 2019, 154:70-76に記載されているように用意された）を含む４群を使用した：
群Ａ：抗体処置なしの対照群
群Ｂ：用量０．３ｍｇ／ｋｇ体重
群Ｃ：用量５ｍｇ／ｋｇ体重
群Ｄ：用量１０ｍｇ／ｋｇ体重
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ患者からのＰＭＢＳを解凍し、ＰＢＳに再懸濁させた。Ｔ細胞は、製造業者により提供された使用説明書に従ってＭｉｌｔｅｎｙｉ ＣＤ３ビーズ（Miltenyi Biotec）を使用することにより分離した。前述のようにＣＤ３／ＣＤ２８ダイナビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ（商標）Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８ ｆｏｒ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｎｄ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ、カタログ番号１１１６１Ｄ、GIBCO）を使用してＴ細胞を７日間培養および増殖した（Qi J et al. Methods, 2019も参照）。
患者由来の異種移植モデルにおける抗ＩＧＬＶ３－２１ Ｒ１１０ －ＢＣＲ抗体の試験
抗ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０抗体の効果を決定するために、患者由来の異種移植モデルを選んだ。用量設定実験のために、４匹のＮＯＤ－ｓｃｉｄ ＩＬ２ｒｇヌル（ＮＳＧ）－マウス（Jackson ImmunoResearch、Qi J et al.: An IgG1-like bispecific antibody targeting CD52 and CD20 for the treatment of B-cell malignancies, Methods 2019, 154:70-76に記載されているように用意された）を含む４群を使用した：
群Ａ：抗体処置なしの対照群
群Ｂ：用量０．３ｍｇ／ｋｇ体重
群Ｃ：用量５ｍｇ／ｋｇ体重
群Ｄ：用量１０ｍｇ／ｋｇ体重
ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０－ＢＣＲ患者からのＰＭＢＳを解凍し、ＰＢＳに再懸濁させた。Ｔ細胞は、製造業者により提供された使用説明書に従ってＭｉｌｔｅｎｙｉ ＣＤ３ビーズ（Miltenyi Biotec）を使用することにより分離した。前述のようにＣＤ３／ＣＤ２８ダイナビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ（商標）Ｈｕｍａｎ Ｔ－Ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８ ｆｏｒ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｎｄ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ、カタログ番号１１１６１Ｄ、GIBCO）を使用してＴ細胞を７日間培養および増殖した（Qi J et al. Methods, 2019も参照）。
７日後、活性化Ｔ細胞およびＰＢＭＣ（マウスあたり２０×１０６ＣＬＬ ＰＢＭＣおよび５×１０５Ｔ細胞）をＮＳＧマウスに静脈内注射した。処置のために、ｍＡｂ０１－０１を異なる投与量で腹腔内に移植後第２週に開始して、週２回、合計３週間与えた。マウスは、毎週始めにヒト血清２５０μｌでプレコンディショニングした。３週間の処置後、マウスを屠殺した。分析のために脾臓を単離し、ｍＡｂ０１－０１およびヒトＣＤ４５、ＣＤ５、およびＣＤ１９に対する抗体（ＣＤ５ ＩｇＧ１ ＵＣＨＴ２、BioLegend；ＣＤ１９ ＩｇＧ１ ＨＩＢ１９、BD Biosciences；ＣＤ４５（ヒト）ＩｇＧ１ Ｈ１３０ Invitrogen）を使用してフローサイトメトリーによりヒトＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性ＣＬＬ Ｂ細胞の存在に関して分析した。フローサイトメトリーのために、細胞を遠心分離により回収し、ＰＢＳ中の氷冷０．１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ（フローサイトメトリー緩衝液）に再懸濁させた。５×１０５細胞を含む１００μＬをＶ字底９６ウェルプレート（Corning）に分配した。細胞をまず５％（ｖ／ｖ）ヤギ血清（Jackson ImmunoResearch）で氷上にて３０分間ブロックし、次いで、製造業者により推奨されるように、示された抗体とインキュベートした。細胞を暗所で氷上にて３０分間インキュベートした。次いで、細胞を氷冷フローサイトメトリー緩衝液で２回洗浄し、フローサイトメトリー緩衝液２００μＬに再懸濁させ、ＦＡＣＳＣａｎｔｏ（BD Biosciences）を使用して分析した。
図５に示されるように、ｍＡｂ０１－０１での処置は、処置された全てのマウスにおいて腫瘍細胞数の減少につながり、１０ｍｇ／ｋｇ ｍＡｂ０１－０１での処置は、この上なく腫瘍成長を低下させた。
Claims (13)
- ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための抗体であって、
配列番号１の重鎖アミノ酸配列および配列番号２の軽鎖アミノ酸配列、もしくは
配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列を有するか、または
配列番号１６、配列番号１７、配列番号１８、および配列番号１９のリストから選択される配列を有する可変軽鎖との任意の組合せで配列番号１５および配列番号２０からなるリストから選択される配列を有する可変重鎖を含む、
抗体。 - 配列番号１に対応する重鎖および配列番号２に対応する軽鎖によって特徴付けられる、請求項１記載の抗体。
- 配列番号１１の重鎖アミノ酸配列および配列番号１２の軽鎖アミノ酸配列によって特徴付けられる、請求項１記載の抗体。
- 配列番号１３に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる、請求項１記載の抗体。
- 配列番号２１に対応する重鎖および配列番号１４に対応する軽鎖によって特徴付けられる、請求項１記載の抗体。
- キメラ抗体である、請求項１または３記載の抗体。
- ヒト化抗体である、請求項４または５記載の抗体。
- ０．２５～２５ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、請求項１から７までのいずれか１項記載の抗体。
- １～２０ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、請求項８記載の抗体。
- ７～１５ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、請求項８記載の抗体。
- ８～１２ｍｇ／ｋｇ（体重）の用量で適用される、請求項８記載の抗体。
- 請求項１から７までのいずれか１項記載の抗体と、薬学的に許容される担体または賦形剤とを含む、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のための医薬組成物。
- 請求項１２記載の医薬組成物を含む、ＩＧＬＶ３－２１Ｒ１１０陽性患者におけるＣＬＬの処置における使用のためのキット。
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