JP2023545359A - 抗her2抗体-薬物複合体治療のためのスコアリング方法 - Google Patents

抗her2抗体-薬物複合体治療のためのスコアリング方法 Download PDF

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Abstract

癌患者が抗体薬物複合体(ADC)治療にどのように応答するかを予測する方法は、各癌細胞に対する単一細胞ADCスコアに基づいて予測応答スコアを計算することを含む。ADCは、ADCペイロードと、各癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含み、タンパク質はヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である。組織試料は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色される。組織のデジタル画像中の癌細胞が検出される。各癌細胞について、単一細胞ADCスコアは、癌細胞の膜及び/又は細胞質並びに/或いは隣接する癌細胞の膜及び細胞質における色素の染色強度に基づいて計算される。ADC治療に対する癌患者の応答は、統計的演算を使用して組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって予測される。【選択図】図14

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2020年9月12日に提出された米国仮特許出願第63/077,604号明細書の優先権を主張し、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
電子的に提出された配列表の参照
電子的に提出された配列表の内容(名称:DSADC_400_Seqlisting.txt:サイズ:24,662バイト;及び作成日:2021年9月9日)は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、リンカー構造を介して抗HER2抗体にコンジュゲートされた薬物を有する抗体薬物複合体を用いる治療に対して、癌患者がどのように応答するかを示すスコアを算出する方法に関する。
所与の治療に対する癌患者の応答確率を評価することは、癌患者の治療レジメンを決定する上で不可欠な工程である。そのような評価は、多くの場合、癌患者からの組織試料の組織学的分析に基づいており、標準的な等級付けスキームを使用して癌を同定及び分類することを伴う。免疫組織化学(IHC)染色を使用して、特定のタンパク質を発現するマーカ陽性細胞を、そのタンパク質を発現しないマーカ陰性細胞と区別することができる。IHC染色は、典型的には、タンパク質特異的抗体に連結された1つ以上の色素及び対比染色剤である別の色素を包含する複数の色素を含む。一般的な対比染色はヘマトキシリンであり、これはDNAを標識し、したがって核を染色する。
タンパク質特異的染色又はバイオマーカを使用して、所定の治療に対する応答を示す可能性が高い癌患者の組織の領域を同定することができる。例えば、上皮細胞を染色するバイオマーカは、疑われる腫瘍領域を同定するのに役立ち得る。次いで、他のタンパク質特異的バイオマーカを使用して、癌性組織内の細胞を特性決定する。特定のバイオマーカによって染色された細胞を同定及び定量化することができ、その後、陽性に染色された細胞及び陰性に染色された細胞の数を示すスコアを病理学者が視覚的に推定することができる。次いで、このスコアを、同じ方法で計算された他の癌患者のスコアと比較することができる。所与の癌治療に対するこれらの他の患者の応答が既知である場合、病理学者は、癌患者について計算されたスコアと他の患者のスコアとの比較に基づいて、癌患者が所与の治療に応答する可能性がどの程度あるかを予測することができる。しかしながら、病理学者による視覚的評価は、変動性及び主観が生じやすい。
1つの有望な癌治療は、抗原が癌細胞の表面上に発現される抗体にコンジュゲートされた細胞傷害性を有する薬物を有する抗体薬物複合体(ADC)を含む。ADCは抗原に結合し、細胞内在化を受けて、薬物を癌細胞に選択的に送達し、それらの癌細胞内に薬物を蓄積し、それらを死滅させる。治療用HER2抗体薬物複合体を含む治療に対する癌患者の応答を示す再現性のある客観的スコアを生成するためのコンピュータベースの方法が求められている。
癌患者が抗体薬物複合体(ADC)を含む治療にどのように応答するかを予測する方法は、各癌細胞に対する単一細胞ADCスコアに基づいて応答スコアを計算することを含む。ADCは、ADCペイロードと、各癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む。組織試料は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色される。組織試料のデジタル画像が取得される。デジタル画像に対して画像解析を行って、畳み込みニューラルネットワークを用いて癌細胞を検出する。各癌細胞について、単一細胞ADCスコアは、癌細胞の膜及び/又は細胞質並びに/或いは癌細胞に所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質における色素の染色強度に基づいて計算される。統計的演算を使用して組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって、ADC治療に対する癌患者の応答を予測する応答スコアが生成される。応答スコアが所定の閾値より高い患者は、ADCを含む治療に推奨される。
一実施形態では、抗体薬物複合体(ADC)で治療された癌患者の生存確率を示すスコアを生成する方法は、単一細胞ADCスコアを計算することを含む。癌患者の組織試料は、診断抗体に連結された色素を用いて免疫組織化学的に染色される。ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)タンパク質を標的とするADC抗体とを含む。診断抗体は、組織試料中の癌細胞上のHER2タンパク質に結合する。組織試料のデジタル画像を取得し、画像解析を用いてデジタル画像中の癌細胞を検出する。各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算する。単一細胞ADCスコアはまた、場合により、癌細胞の細胞質中の色素の染色強度、並びに癌細胞に対して所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよい。得られた癌患者の生存確率を示す定量的連続スコア(QCS)は、統計的演算を用いて組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって生成される。全ての単一細胞ADCスコアの集合は、平均を決定すること、中央値を決定すること、又は所定の割合で分位を決定することによって行われる。別の態様では、全ての単一細胞ADCスコアの集合は、事前に定義された閾値を使用する閾値演算を含む。所定の閾値よりも大きい単一細胞ADCスコアを有する全ての細胞は、単一細胞ADC陽性と標識される。集合は、単一細胞ADC陽性細胞の数を全癌細胞の数で除算することによって行われる。
一実施形態では、抗体薬物複合体(ADC)に対する癌患者の応答を予測する方法は、癌細胞を検出することと、各癌細胞について単一細胞ADCスコアを計算することとを含む。ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む。タンパク質は、ヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である。組織試料は、診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色される。診断抗体は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する。組織試料のデジタル画像が取得され、デジタル画像において癌細胞が検出される。各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算する。単一細胞ADCスコアはまた、場合により、癌細胞の細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよく、且つ癌細胞に対して所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよい。各膜の染色強度は、膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、各細胞質の染色強度は、細胞質のピクセルにおける褐色DABシグナルの平均光学密度に基づいて計算される。統計的演算を用いて、組織試料の全ての単一細胞ADCスコアの集合に基づいて、ADCに対する癌患者の応答が予測される。
別の実施形態では、抗体薬物複合体(ADC)に対して所定の応答を示す癌患者を同定する方法は、応答スコアを生成することを含む。ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む。癌患者の組織試料は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色される。組織試料のデジタル画像を取得し、畳み込みニューラルネットワークを用いてデジタル画像中の癌細胞を検出する。各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算する。単一細胞ADCスコアはまた、場合により、癌細胞の細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよく、且つ単一細胞スコアが計算される癌細胞に対して所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよい。QCSスコアは、統計的演算を用いて組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって生成された応答スコアである。癌患者は、QCSスコアが閾値を超えるか否かに基づいて、ADCに対して所定の応答を示すものとして同定される。閾値よりも大きいQCSスコアを示す患者はQCS陽性(QCS+)とみなされ、他の全ての患者はQCS陰性(QCS-)とみなされる。所定の応答は、平均腫瘍サイズの減少である。別の態様では、QCSスコアと閾値との間の差は、癌患者がADCに対して所定の応答を示すものとして正しく同定される確率を示す。小さな差は確率が低いことを示し、大きな差は癌患者が正確に特定される確率が高いことを示す。別の実施形態において、所定の応答は、予め定義された期間内の患者の死が非応答とみなされるように、患者の生存によって示される。一態様では、所定の期間は、標準治療に従って治療された患者の平均生存時間の2倍である。
一実施形態では、抗体薬物複合体(ADC)で癌患者を治療する方法は、治療スコアの形態でQCSスコアを生成することを含む。ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む。タンパク質は、ヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である。癌患者の組織試料は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色される。組織試料のデジタル画像が取得され、デジタル画像において癌細胞が検出される。各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアが計算される。単一細胞ADCスコアはまた、場合により、癌細胞の細胞質中の色素の染色強度、並びに癌細胞に対して所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよい。治療スコアは、統計的演算を用いて組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって生成される。治療スコアが所定の閾値を超える場合、ADCを含む治療が癌患者に投与される。別の態様では、患者の治療前のHER2染色組織試料がQCS陽性(QCS+)としてスコア付けされる場合にのみ、ADCを含む治療が癌患者に投与される。
別の実施形態では、抗体薬物複合体(ADC)で癌患者を治療する方法は、治療を行う臨床医によって実施される。ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む。タンパク質は、ヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である。ADCを含む治療は、応答スコアが所定の閾値を超える場合に癌患者に投与される。QCS応答スコアは、統計的演算を使用して癌患者の組織試料の単一細胞ADCスコアを集合することによって生成された。各単一細胞ADCスコアは、膜中の色素の染色強度に基づいて各癌細胞について計算された。単一細胞ADCスコアはまた、場合により、各癌細胞の細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよく、且つ単一細胞ADCスコアが計算された各癌細胞への所定の距離より近い他の癌細胞の膜及び細胞質中の色素の染色強度に基づいてもよい。癌細胞は、癌患者の組織試料のデジタル画像において検出された。組織試料は、組織試料中の癌細胞上のタンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を使用して免疫組織化学的に染色された。
他の実施形態及び利点は、以下の詳細な説明に記載されている。この概要は、本発明を定義する趣旨ではない。本発明は、特許請求の範囲によって定義される。
添付の図面は、同様の符号が同様の構成要素を示す場合、本発明の実施形態を示す。
HER2タンパク質のアミノ酸配列(配列番号1)を示す図である。 抗HER2抗体の重鎖のアミノ酸配列(配列番号2)を示す図である。 抗HER2抗体の軽鎖のアミノ酸配列(配列番号3)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRH1のアミノ酸配列(配列番号4)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRH2のアミノ酸配列(配列番号5)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRH3のアミノ酸配列(配列番号6)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRL1のアミノ酸配列(配列番号7)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRL2(SAS)のアミノ酸配列(配列番号8)を示す図である。 抗HER2抗体のCDRL3のアミノ酸配列(配列番号9)を示す図である。 抗HER2抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列(配列番号10)を示す図である。 抗HER2抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列(配列番号11)を示す図である。 抗HER2抗体の重鎖のアミノ酸配列(配列番号12)を示す図である。 8つの薬物-リンカー単位を有する抗HER2抗体薬物複合体であるトラスツズマブデルクステカンを示す図である。 分析システムが癌患者からの組織のデジタル画像を分析し、癌患者が抗HER2抗体薬物複合体を含む治療にどのように応答する可能性が高いかを予測する工程のフローチャートである。 図14の工程2の画像解析プロセスを示すデジタル画像を示す図である。 図14の工程2の画像解析プロセスの別の実施形態のデジタル画像を示す図である。 癌細胞の核オブジェクトを検出する画像解析工程を示す図である。 核オブジェクトを使用して膜を検出する画像分析工程を示す図である。 癌細胞の膜オブジェクトを検出する画像解析工程を示す図である。 画像解析ソフトウェア環境における画像解析工程の結果のスクリーンショットである。 画像解析セグメンテーションに使用されるスクリプト及びスクリプトを使用して得られた細胞オブジェクト測定値を示す図である。 膜及び細胞質ピクセルのグレー値を使用した画像解析からの染色強度の試料定量結果を示す図である。 図22の画像の膜及び細胞質における例示的な定量的染色量を列挙する図である。 抗HER2 ADC治療が癌細胞を死滅させる機構を示す図である。 隣接細胞へのADCペイロードの取込みを説明するための、細胞分離に基づく図23に示す3つの細胞のそれぞれについての単一細胞ADCスコアの計算を示す図である。 単一細胞スコアが算出される式を示す図である。 どのように一貫して病理学者が互いに比較して膜にアノテーションを行うかを示す図である。 図14の方法の画像解析を使用して検出された膜が病理学者によって同定された膜とどのように相関するかを比較する図である。 HER2 IHC1+及びHER2 IHC2+/ISH-スコアを有する50名の患者の各々が、進行性疾患、安定状態を有していたか、又は抗HER2 ADC治療に対する応答を示したかどうかを示す図である。 新規スコアリング方法からのスコアが「HER2陽性」に分類された患者の腫瘍縮小に関する応答を示す図である。 IHCスコアリングの「HER2陰性」カテゴリーからの患者のサブグループが依然として抗HER2 ADC治療に対して好ましい客観的奏効率を示したことを示す図である。 図14の新規スコアリング方法を用いた従来の「HER2陰性」カテゴリーから「QCS陽性」及び「QCS陰性」への患者の層別化を示す図である。 図14の新規スコアリング方法を使用した151名の患者の「QCS陽性」及び「QCS陰性」への層別化を示す図である。 図34Aは、従来のHER2 IHCスコアがバーの網掛けによって示される乳癌患者の新規応答スコアを示す棒グラフである。図34Bは、図34Aにおいて層別化されたQCS陽性患者及びQCS陰性患者の客観的奏効率(ORR)及び無増悪生存期間(mPFS)中央値を示す表である。 単一細胞ADCスコア陽性癌細胞に隣接する単一細胞ADCスコア陰性癌細胞も考慮される新規方法の実施形態を使用して同定されたHER2陰性患者の2つの群の無増悪生存期間のカプラン・マイヤー曲線のグラフである。 新規QCSスコアリング法を使用して同定されたJ101試験全体の2つの患者群についての無増悪生存期間のカプラン・マイヤー曲線のグラフである。 図36のカプラン・マイヤー曲線に示される患者の2つの群を層別化するための新規QCSスコアリング方法で使用される特徴の表である。 151名の乳癌患者を、抗HER2 ADC治療に応答してより長い及びより短い無増悪生存期間(PFS)を示す乳癌患者に層別化するために使用されるモデルの腫瘍浸潤リンパ球(TIL)ベース及びHER2染色ベースの特徴の表である。 図39Aは、図38に列挙されたTIL密度特徴のカプラン・マイヤー曲線である。図39Bは、図38に列挙されたHER2+細胞密度特徴のカプラン・マイヤー曲線である。図39Cは、図38に列挙したHER2+近傍スコア特徴のカプラン・マイヤー曲線である。 図40Aは、J101試験の151名の患者の中からHER2陽性と指定されたちょうど72名の患者についての、図38に列挙されたTIL密度特徴のカプラン・マイヤー曲線である。図40Bは、J101試験における合計151名の患者のうちのちょうど72名のHER2陽性患者についてのHER2+細胞密度の特徴についてのカプラン・マイヤー曲線である。図40Cは、J101試験における合計151名の患者のうちのちょうど72名のHER2陽性患者についてのHER2+近傍スコア特徴についてのカプラン・マイヤー曲線である。 図41Aは、J101試験における合計151名の患者のうちのちょうど65名のHER2陰性患者についてのTIL密度特徴についてのカプラン・マイヤー曲線である。図41Bは、J101試験における合計151名の患者のうちのちょうど65名のHER2陰性患者についてのHER2+細胞密度特徴のカプラン・マイヤー曲線である。図41Cは、J101試験における合計151名の患者のうちのちょうど65名のHER2陰性患者についてのHER2+近傍スコア特徴についてのカプラン・マイヤー曲線である。 従来のHER2 IHCスコアがバーの網掛けによって示される胃癌患者の新規応答スコアを示す棒グラフである。 胃癌患者を、抗HER2 ADC治療に応答してより長い及びより短い無増悪生存期間(PFS)を示すものに層別化するために使用されるモデルのHER2染色に基づく特徴の表である。 胃癌患者を、抗HER2 ADC治療に応答してより長い及びより短い全生存期間(OS)を示すものに層別化するために使用されるモデルのHER2染色に基づく特徴の表である。 J101試験の32名の胃癌患者のPFSに基づく、図43に列挙された特徴membOD_density_10のカプラン・マイヤー曲線である。 J101試験の32名の胃癌患者のOSに基づく、図44に列挙された特徴membOD_density_10のカプラン・マイヤー曲線である。
本発明は、癌患者が抗HER2抗体薬物複合体を使用する治療にどのように応答するかを示すスコアを計算するための新規な方法を提供する。本発明の別の態様は、ADCで治療された癌患者の生存確率を示す癌患者のスコアを計算する方法に関する。本発明の別の態様は、ADCに対する癌患者の応答を予測するための方法に関する。本発明の別の態様は、ADCに対して所定の応答を示す癌患者を同定することに関する。本発明の更に別の態様は、治療スコアが所定の閾値を超える場合、ADCを含む治療を投与することによって癌患者を治療する方法に関する。
I.定義
本発明の理解を促進するために、多数の用語及び表現が以下に定義される。「癌」という用語は、「腫瘍」という用語の意味と同じ意味を有するように使用される。
本発明において、「HER2」は、ヒト上皮増殖因子受容体2(neu又はErbB-2とも称され得る)と同義であり、HER1(EGFR又はErbB-1)、HER3(ErbB-3)、及びHER4(ErbB-4)とともに受容体タンパク質チロシンキナーゼの上皮増殖因子受容体(EGFR)サブファミリーに属する膜貫通受容体である。HER2は、HER1、HER3、又はHER4とのヘテロ二量体形成による細胞間チロシン残基の自己リン酸化によって活性化されることにより、正常細胞及び腫瘍細胞における細胞増殖、分化、及び生存に重要な役割を果たすことが知られている。本発明において、「HER2タンパク質」は、HER2と同じ意味で使用される。HER2タンパク質の発現は、免疫組織化学(IHC)又は免疫蛍光(IF)等の当業者に周知の方法を用いて検出され得る。
図1は、HER2タンパク質のアミノ酸配列(配列番号1)を示す。配列番号1では、アミノ酸残基1~652からなるアミノ酸配列は、「HER2タンパク質の細胞外ドメイン」と呼ばれ、アミノ酸残基653~675からなるアミノ酸配列は、「HER2タンパク質の膜貫通ドメイン」と呼ばれ、アミノ酸残基676~1255からなるアミノ酸配列は、「HER2タンパク質の細胞間ドメイン」と呼ばれる。
本発明において、「抗HER2抗体」とは、HER2に特異的に結合する抗体を意味する。抗HER2抗体は、HER2に結合する活性を有し、それによってHER2発現細胞に内在化され、HER2に結合する活性を示した後、抗体はHER2発現細胞に移動する。抗HER2抗体は、腫瘍細胞を標的とし、腫瘍細胞に結合し、腫瘍細胞内に内在化し、腫瘍細胞に対して殺細胞活性を示し、リンカーを介して抗腫瘍活性を有する薬物とコンジュゲートして抗体薬物複合体を形成することができる。
図2は、抗HER2抗体の重鎖のアミノ酸配列(配列番号2)を示し、図3は、抗HER2抗体の軽鎖のアミノ酸配列(配列番号3)を示す。
図4は、抗HER2抗体のCDRH1のアミノ酸配列(配列番号4)を示し、図5は、抗HER2抗体のCDRH2のアミノ酸配列(配列番号5)を示し、図6は、抗HER2抗体のCDRH3のアミノ酸配列(配列番号6)を示す。
図7は、抗HER2抗体のCDRL1のアミノ酸配列(配列番号7)を示し、図8は、抗HER2抗体のCDRL2(SAS)のアミノ酸配列(配列番号8)を示し、図9は、抗HER2抗体のCDRL3のアミノ酸配列(配列番号9)を示す。
図10は、抗HER2抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列(配列番号10)を示し、図11は、抗HER2抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列(配列番号11)を示す。図12は、抗HER2抗体の別の重鎖のアミノ酸配列(配列番号12)を示す。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体の抗HER2抗体は、好ましくは、配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1(配列番号2のアミノ酸残基26~33からなるアミノ酸配列)と、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2(配列番号2のアミノ酸残基51~58からなるアミノ酸配列)と、配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3(配列番号2のアミノ酸残基97~109からなるアミノ酸配列)とを含む重鎖と、配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1(配列番号3のアミノ酸残基27~32からなるアミノ酸配列)と、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2(配列番号3のアミノ酸残基50~52からなるアミノ酸配列)と、配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3(配列番号3のアミノ酸残基89~97からなるアミノ酸配列)とを含む軽鎖とを含む抗体であり、より好ましくは、配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域(配列番号2のアミノ酸残基1~120からなるアミノ酸配列)と、配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域(配列番号3のアミノ酸残基1~107からなるアミノ酸配列)とを含む抗体であり、更により好ましくは、配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖とを含む抗体、又は配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖(配列番号2のアミノ酸残基1~449からなるアミノ酸配列)と、配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、を含む抗体である。
本発明において、「HER2陽性」及び「HER2過剰発現」という用語は、免疫組織化学的方法でHER2の発現について3+のスコアが与えられた癌組織、並びに免疫組織化学的方法でHER2の発現について2+のスコアが与えられ、in situハイブリダイゼーション法でHER2の発現について陽性と判定される癌組織を指す。本発明のin situハイブリダイゼーション法として、蛍光in situハイブリダイゼーション法(FISH)、及びデュアルカラーin situハイブリダイゼーション法(DISH)が挙げられる。
本発明において、「HER2陰性」とは、免疫組織化学的方法においてHER2の発現が0のスコアが与えられた癌組織、免疫組織化学的方法においてHER2の発現が1+のスコアが与えられた癌、及び免疫組織化学的方法においてHER2の発現が2+のスコアが与えられ、in situハイブリダイゼーション法においてHER2の発現が陰性であると決定された癌組織を指す。
本発明において、「HER2-低」とは、免疫組織化学的方法においてHER2の発現が0+のスコア(平均>0及び<1+)が与えられた癌組織、免疫組織化学的方法においてHER2の発現が1+のスコアが与えられた癌、及び免疫組織化学的方法においてHER2の発現が2+のスコアが与えられ、in situハイブリダイゼーション法においてHER2の発現が陰性であると決定された癌組織を指す。0+として分類される組織は、非常に弱いがノイズのないHER2発現を示す。
本発明において、「QCS陽性」(QCS+)という用語は、抗HER2 ADC治療に対する応答を示す可能性が高い癌を指す。「QCS陰性」(QCS-)という用語は、抗HER2 ADC治療に対する応答を示す可能性が低い癌を指す。頭字語QCSは、Quantitative Continuous Scoreの略である。本発明の新規な予測方法の結果は、一般に、定量的連続スコアと呼ばれ、応答スコア、治療スコア又は予測される生存期間の指標であり得る。QCSスコアは、患者について得られた単一細胞ADCスコアの全てに対して統計的演算を行うことによって得られる。QCSスコアに所定の閾値を適用することにより、「QCS陽性」患者と「QCS陰性」患者とを識別する。癌患者をQCS陽性群及びQCS陰性群に層別化することにより、ADCを含む治療から利益を得る可能性が高いQCS+患者の同定が可能になる。
II.抗HER2抗体薬物複合体。
本発明において、抗HER2抗体薬物複合体のリンカー及び薬物からなる部分構造は、「薬物-リンカー」と呼ばれる。薬物-リンカーは、チオエーテル結合を介して抗HER2抗体にコンジュゲートされ得る。したがって、薬物-リンカーは、抗体の鎖間ジスルフィド結合部位(重鎖間の2つの部位及び重鎖と軽鎖との間の2つの部位)に形成されたチオール基(システイン残基の硫黄原子)に結合され得る。本発明で用いられる抗HER2抗体薬物複合体は、薬物-リンカーが下記式で表される抗HER2抗体薬物複合体であることが好ましく、
[式1]
式中、Aは抗HER2抗体との接続位置を表す。
本発明の薬物リンカーは、トポイソメラーゼI阻害剤であるエキサテカン(IUPAC名:(1S,9S)-1-アミノ-9-エチル-5-フルオロ-1,2,3,9,12,15-ヘキサヒドロ-9-ヒドロキシ-4-メチル-10H,13H-ベンゾ[デ]ピラノ[3’,4’:6,7]インドリジノ[1,2-b]キノリン-10,13-ジオン(化学名:(1S,9S)-1-アミノ-9-エチル-5-フルオロ-2,3-ジヒドロ-9-ヒドロキシ-4-メチル-1H,12H-ベンゾ[デ]ピラノ[3’,4’:6,7]インドリジノ[1,2-b]キノリン-10,13(9H,15H)-ジオン)としても表される)を含む。エキサテカンは、抗体薬物複合体の細胞傷害性ペイロードであり、抗腫瘍効果を有する。エキサテカンは、下記式によって表されるカンプトテシン誘導体である。
[式2]
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、好ましくは、DS-8201としても知られるトラスツズマブデルクステカンである。本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、以下の式で表され得る。
[式3]
角括弧内に示される薬物-リンカーは、チオエーテル結合を介して抗HER2抗体にコンジュゲートされる。nの意味は、いわゆるコンジュゲートした薬物分子の平均数(薬物対コンジュゲート比DAR)の意味と同じであり、1つの抗体分子当たりのコンジュゲートした薬物-リンカーの単位の平均数を示す。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体における抗体1分子当たりの薬物-リンカーコンジュゲートの平均単位数は、好ましくは2~8、より好ましくは3~8、更に好ましくは7~8、更により好ましくは約8である。
図13は、「DL」と命名された8つの薬物-リンカー単位を有する抗HER2抗体薬物複合体であるトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)を示す。図13に示されるトラスツズマブデルクステカンのトラスツズマブ部分はヒト化抗HER2 IgG1 mAbであり、IgG1は抗HER2抗体のアイソタイプを示す。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、癌細胞への細胞内在化を受けた後、リンカー部分で切断され、以下の式で表される化合物を放出する。
[式4]
上に示す化合物は、本発明で用いられる抗HER2抗体薬物複合体の抗腫瘍活性の主要な供給源であり、トポイソメラーゼI阻害作用を有する。
本発明で用いられる抗HER2抗体薬物複合体はまた、抗HER2抗体薬物複合体が標的タンパク質HER2を発現する癌細胞に内在化し、次いで、上記化合物は、標的タンパク質HER2を発現しない隣接癌細胞に対しても抗腫瘍効果を発揮するバイスタンダー効果を有する。
III.抗HER2抗体の産生。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、国際公開第2015/115091号パンフレットに開示されているように製造され得る。
本発明で用いられる抗HER2抗体は、HER2から選択される任意のポリペプチドを抗原又はHER2のアミノ酸配列として動物に免疫し、インビボで産生された抗体を回収した後、抗体を精製することにより得ることができる。この抗原の起源は、ヒトに限定されず、動物を、マウス、ラット、及び同類のもの等の非ヒト動物に由来する抗原で免疫化し得る。この場合には、得られた異種抗原に結合する抗体と、ヒト抗原との交差反応性を試験して、ヒト疾患に適用可能な抗HER2抗体に関してスクリーニングし得る。
或いは、抗原に対する抗体を産生する抗体産生細胞を骨髄腫細胞と融合させてハイブリドーマを確立し、そこからモノクローナル抗体が得られる。
抗原は、抗原タンパク質をコードする遺伝子を産生させるように宿主細胞を遺伝子操作することによって得ることができる。具体的には、抗原遺伝子の発現を可能にするベクターを調製し、宿主細胞に導入して、この遺伝子を発現させる。そのようにして発現された抗原は、精製され得る。抗体は、上記の遺伝子操作された抗原発現細胞又は抗原を発現する細胞株で動物に免疫付与する方法によっても得ることができる。
本発明で使用される抗HER2抗体は、キメラ抗体又はヒト化抗体等のヒトに対する異種抗原性を低下させる目的で人工的に修飾された組換え抗体であるか、又はヒト由来の抗体、すなわちヒト抗体の遺伝子配列のみを有する抗体である。キメラ抗体としては、抗体の可変領域及び定常領域が異なる種に由来する抗体、例えばマウス由来又はラット由来抗体の可変領域をヒト由来の定常領域に接合したキメラ抗体を例に挙げることができる。
ヒト化抗体について、抗体は、異種抗体の相補性決定領域(CDR)のみをヒト由来抗体に組み込むことにとって得られるか、又は抗体は、CDRグラフティング法により、異種抗体のフレームワークのアミノ酸残基の一部及び異種抗体のCDR配列をヒト抗体に移植することによって得られるか(国際公開第90/07861号パンフレット)、又は抗体は、遺伝子変換突然変異誘発戦略を用いてヒト化される(米国特許第5821337号明細書)。
ヒト抗体について、抗体は、ヒト抗体の重鎖及び軽鎖の遺伝子を含むヒト染色体断片を有するヒト抗体産生マウスを用いて作製される。代替として、抗体はファージディスプレイによって得られ、抗体はヒト抗体ライブラリから選択される。
本発明では、抗HER2抗体の修飾された変異体を用いることもできる。修飾された変異体は、本発明による抗体を化学的又は生物学的修飾に供することによって得られる変異体を指す。化学修飾された変異体の例は、化学部分とアミノ酸骨格との連結を含む変異体、化学部分とN連結又はO連結した糖鎖との連結を含む変異体を含む。生物学的に修飾された変異体の例は、翻訳後修飾(例えば、N結合型又はO結合型のグリコシル化、N末端又はC末端のプロセシング、脱アミド化、アスパラギン酸の異性化、又はメチオニンの酸化)により得られた変異体、原核生物の宿主細胞で発現させることによりN末端にメチオニン残基が付加された変異体を含む。また、本発明で使用される抗HER2抗体又は抗原を検出又は単離可能に標識された抗体、例えば、酵素標識抗体、蛍光標識抗体、及び親和性標識抗体も修飾変異体の意味に含まれる。本発明で使用される抗HER2抗体のこのような修飾変異体は、抗体の安定性及び血中滞留性の向上、それらの抗原性の低減、並びに抗体又は抗原の検出又は単離に有用である。
また、本発明で用いられる抗HER2抗体に連結するグリカン(グリコシル化、脱フコシル化等)の修飾を制御することにより、抗体依存性細胞傷害活性を高めることができる。抗体のグリカンの修飾を調節するための技術は、国際公開第99/54342号パンフレット、国際公開第00/61739号パンフレット及び国際公開第02/31140号パンフレットに開示されている。しかしながら、技術はこれらに限定されない。本発明の抗HER2抗体として、グリカンの修飾が制御された抗体を用いることもできる。
培養された哺乳動物細胞中で産生された抗体の重鎖のカルボキシル末端におけるリジン残基が欠失されることは知られており、培養された哺乳動物細胞中で産生された抗体の重鎖のカルボキシル末端における2つのアミノ酸残基(グリシン及びリジン)が欠失され、新たにカルボキシル末端に位置するプロリン残基がアミド化されることも知られている。しかしながら、重鎖のそのような欠失及び修飾は、本抗体の抗原結合親和性及びエフェクター機能(補体の活性化、抗体依存性細胞毒性等)に影響を及ぼさない。従って、本発明で使用される抗HER2抗体には、こうした修飾を受けた抗体及び抗体の機能的フラグメントも含まれ、また、重鎖のカルボキシル末端において1又は2のアミノ酸が欠失した欠失変異体、欠失変異体のアミド化によって得られる変異体(例えば、カルボキシル末端のプロリン残基がアミド化された重鎖)等も含まれる。本発明で使用される抗HER2抗体の重鎖のカルボキシル末端で欠失を有する欠失変異体の種類は、抗原結合親和性及びエフェクター機能が保存されている限り、上記の変異体に限定されない。本発明で使用される抗HER2抗体を構成する2つの重鎖は、完全長重鎖及び上記欠失変異体からなる群から選択される1種類であってもよいし、それらから選択される2種類を組み合わせたものであってもよい。各欠失変異体の量の比は、本発明で使用される抗HER2抗体を産生する培養哺乳動物細胞の種類及び培養条件によって影響され得る。しかしながら、本発明では、抗HER2抗体の2つの重鎖の両方においてカルボキシル末端の1つのアミノ酸残基が欠失した抗体も用いることができる。
IV.抗HER2抗体薬物複合体の製造。
本発明の抗HER2抗体薬物複合体の製造に用いることができる薬物-リンカー中間体は、下記式で表される。
[式5]
薬物-リンカー中間体は、化学名N-[6-(2,5-ジオキソ-2,5-ジヒドロ-1H-ピロール-1-イル)ヘキサノイル]グリシルグリシル-L-フェニルアラニル-N-[(2-{[(1S,9S)-9-エチル-5-フルオロ-9-ヒドロキシ-4-メチル-10,13-ジオキソ-2,3,9,10,13,15-ヘキサヒドロ-1H,12H-ベンゾ[de]ピラノ[3’,4’:6,7]インドリジノ[1,2-b]キノリン-1-イル]アミノ}-2-オキソエトキシ)メチル]グリシンアミドとして表すことができ、国際公開第2015/115091号パンフレットの開示に基づいて製造することができる。本発明で用いられる抗HER2抗体薬物複合体は、上記の薬物-リンカー中間体を、チオール基(或いはスルフヒドリル基ともいう)を有する抗HER2抗体と反応させることにより製造することができる。
スルフヒドリル基を有する抗HER2抗体は、当業者に周知の方法により得ることができる。例えば、抗体中の鎖間ジスルフィド当たり0.3~3モル当量のトリス(2-カルボキシエチル)ホスフィンヒドロクロリド(TCEP)等の還元剤を使用し、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)等のキレート剤を含有する緩衝液中で抗HER2抗体と反応させることにより、抗体中に部分的又は完全に還元された鎖間ジスルフィドを含むスルフヒドリル基を有する抗HER2抗体を得ることができる。
更に、スルフヒドリル基を有する抗HER2抗体当たり2~20モル当量の薬物-リンカー中間体を使用することにより、抗体分子当たり2~8の薬物分子がコンジュゲートされた抗HER2抗体薬物複合体が産生され得る。
産生された抗HER2抗体薬物複合体の抗体分子当たりのコンジュゲートされた薬物分子の平均数は、例えば、280nm及び370nmの2つの波長における抗HER2抗体薬物複合体及びそのコンジュゲーション前駆体のUV吸光度を測定することに基づき算出する方法(UV法)又は抗体薬物複合体を還元剤で処理することにより得られたフラグメントをHPLC測定によって定量することに基づき計算する方法(HPLC法)によって求めることができる。
抗HER2抗体と薬物-リンカー中間体とのコンジュゲーション、及び抗HER2抗体薬物複合体の抗体分子当たりのコンジュゲートされた薬物分子の平均数の計算は、国際公開第2015/115091号パンフレットの開示に従って行うことができる。
V.抗HER2抗体薬物複合体の使用。
本発明の抗体薬物複合体は、癌細胞の増殖を遅延させ、その増殖を抑制し、更に癌細胞を破壊することができる。これらの作用により、癌による症状の緩和、癌患者の生活の質(QOL)の向上、癌患者の生命の維持が達成され、治療効果が得られる。癌細胞の破壊に至らない場合であっても、癌細胞の増殖を抑制又は制御することにより、癌患者のより長期の生存を達成するとともに、より高いQOLを達成することができる。
本発明の抗体薬物複合体は、患者への全身治療としての適用、更には癌組織への局所適用による治療効果を発揮することが期待され得る。
抗体薬物複合体は、1つ以上の薬学的に適合性の成分が含有された医薬組成物として投与され得る。薬学的に適合する成分は、抗HER2抗体薬物複合体の投与量、投与濃度等を考慮して、当該技術分野で一般的に用いられている製剤添加剤等から適宜選択することができる。例えば、本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、ヒスチジン緩衝剤等の緩衝剤、スクロース等の賦形剤、及びポリソルベート80等の界面活性剤を含む医薬組成物として投与され得る。本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体を含む医薬組成物は、注射剤として、水性注射剤若しくは凍結乾燥注射剤として、又は更に凍結乾燥注射剤として使用することができる。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体を含有する医薬組成物が水性注射剤である場合、それを適切な希釈剤で希釈し、次いで静脈内注入として与えることができる。希釈剤の例は、デキストロース溶液及び生理食塩水を含み得る。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体を含有する医薬組成物が凍結乾燥注射剤である場合、それを注射グレードの水で溶解し、次いで適切な希釈剤で必要な量に希釈し、次いで静脈内注入として与えることができる。希釈剤の例は、デキストロース溶液及び生理食塩水を含む。
本発明の医薬組成物を投与するために用いられうる投与経路の例は、静脈内、皮内、皮下、筋肉内、及び腹腔内の経路を含み得る。
本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体は、ヒトに1~180日間隔で投与することができ、数週間間隔で投与することができ、好ましくは3週間間隔で投与することができる。本発明で使用される抗HER2抗体薬物複合体を、1回の投与当たり約0.001~100mg/kgの用量で投与し得、好ましくは、1回の投与当たり0.8~12.4mg/kgの用量で投与し得る。抗HER2抗体薬物複合体は、好ましくは0.8mg/kg~8mg/kgの用量で3週間に1回投与され得、より好ましくは3週間に1回の用量で5.4mg/kg~6.4mg/kgで投与される。
VI.抗HER2抗体薬物複合体に対する患者応答を予測する方法。
図14は、分析システムが癌患者からの組織のデジタル画像を分析し、癌患者が抗HER2抗体薬物複合体(ADC)を含む治療にどのように応答する可能性が高いかを予測する方法7の工程1~6のフローチャートである。一実施形態では、本方法は、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する患者のADCに対する応答を予測する。一実施形態では、方法は、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、非小細胞肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部腺癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、及び前立腺癌からなる群から選択される癌を有する患者のADCに対する応答を予測する。一実施形態では、方法は、乳癌患者のADCに対する応答を予測する。別の実施形態では、方法は、胃癌患者のADC応答を予測する。更に別の実施形態では、方法は、肺癌患者のADC応答を予測する。
第1の工程1では、1つ以上のバイオマーカ又は染色を使用して染色された癌患者からの組織切片の高解像度デジタル画像が取得される。
ADC治療の有効性を予測するために、ADC治療によって標的化されるのと同じタンパク質を標的化する色素が結合した診断バイオマーカが使用される。一実施形態では、抗HER2 ADCは、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートした抗HER2抗体を含み、薬物-リンカーは以下の式によって表され、
[式1]
式中、Aは抗HER2抗体との接続位置を表す。いくつかの実施形態において、抗HER2抗体は、配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1と、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2と、配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3とを含む重鎖と、配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1と、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2と、配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3とを含む軽鎖と、を有する抗体である。
いくつかの更なる実施形態において、抗HER2抗体は、配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域とを含む抗体である。いくつかの更なる実施形態では、抗HER2抗体は、配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖とを含む抗体である。特定の実施形態では、抗HER2抗体は、配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖とを含む抗体である。一実施形態において、スコアリングが対象とする抗HER2ADCは、上記の式3によって表されるように、トラスツズマブデルクステカンである。したがって、実施形態では、診断バイオマーカはHER2タンパク質も標的とする。
工程2では、予め訓練された畳み込みニューラルネットワークが、3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)等の色素に連結された診断抗体で染色された癌患者の組織のデジタル画像を処理する。癌細胞の膜における色素の染色強度は、対応するセグメント化された膜オブジェクトに関連する全てのピクセルの色素の平均染色強度に基づいて決定される。更に、単一のピクセルにおける色素の染色強度は、ピクセルの赤色成分、緑色成分及び青色成分に基づいて計算される。画像解析処理の結果は、デジタル画像内の各ピクセルについて、ピクセルが細胞核に属する確率及びピクセルが細胞膜に属する確率を表す2つの後方画像層である。
工程2の別の実施形態では、2つの予め訓練された畳み込みネットワークが組織のデジタル画像を処理する。第1のネットワークによる処理の結果は、デジタル画像内の各ピクセルについて、ピクセルが細胞核に属する尤度を表す後方画像層である。第2のネットワークによる処理の結果は、デジタル画像内の各ピクセルについて、ピクセルが細胞膜に属する尤度を表す後方画像層である。
工程3では、核及び膜の後層のヒューリスティック画像解析に基づいて個々の癌細胞が検出される。細胞膜オブジェクト及び任意選択で細胞質オブジェクトも含む癌細胞オブジェクトが生成される。
工程4では、各癌細胞について単一細胞ADCスコアが決定される。単一細胞ADCスコアは、(1)細胞膜中のDABの量、及び(2)ADCペイロード取込み量の代用測定に基づく。DABの量は、膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づく各膜の染色強度によって決定される。ADCペイロード取込みの量は、細胞膜中及び任意選択でまた細胞の細胞質中のDABの量に基づいて、更に任意選択でまた、スコアが決定される細胞に隣接する細胞の膜及び細胞質中のDABの量に基づいて推定される。細胞の細胞質中のDABの量は、各細胞質の染色強度によって決定され、これは細胞質のピクセルにおける褐色DABシグナルの平均光学密度に基づいて計算される。隣接細胞中のDABの量は、スコアが決定されている細胞の所定の距離内のそれらの癌細胞について決定される。
工程5において、デジタル画像内の全ての癌細胞の単一細胞ADCスコアに対する統計的演算に基づいて、組織のデジタル画像について患者スコアQCSが計算される。患者スコアは、癌患者が抗HER2 ADCを含む治療にどのように応答するかを示す。工程4の単一細胞ADCスコア及び工程5の統計的演算のタイプのパラメータは、ADC治療に対する既知の応答を有する患者の訓練コホートを使用して最適化される。最適化目標は、訓練コホートにおけるスコア陽性患者対スコア陰性患者の群のカプラン・マイヤー解析における低いp-値である。
工程6において、スコアが所定の閾値よりも大きい場合、抗HER2 ADCを含む治療がスコア陽性患者に推奨される。
いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が5以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が6以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が7以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が9以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が10以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が15以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が20以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも50%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも50%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも60%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも60%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも70%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも70%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも80%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも80%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも90%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも90%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、腫瘍細胞の少なくとも95%が5以上、8以上、又は25以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞の少なくとも95%が8以上の膜光学密度を有する場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1250細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1600細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1670細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1700細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1800細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1900細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が2000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも8の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が1500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が2000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が2500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が2750細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3250細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が4000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が5000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが90以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが91以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが92以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが93以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが94以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが95以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが96以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが97以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが98以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが99以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが99.5以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合、患者はQCS陽性である。上記の実施形態では、バイナリ空間近接スコアは、以下のように計算される。空間近接スコア=([OD>8の腫瘍細胞の数]+[OD>8の少なくとも1つの腫瘍細胞の50μm近傍にあるOD<=8の腫瘍細胞の数])/[全腫瘍細胞の数]。
いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが20以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが30以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが40以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが50以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが60以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが70以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが80以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、連続的な空間近接スコアが90以上である場合、患者はQCS陽性である。上記の実施形態では、連続的な空間近接スコアは、隣接の距離によって重み付けされた、25μm以内の各腫瘍細胞及び任意の隣接腫瘍細胞の累積光学密度の10%分位点である。
いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が50細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が100細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が125細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が150細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が160細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が165細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が168細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が170細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が175細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が180細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が190細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が200細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が300細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が400細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が500細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が600細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が700細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が735細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が750細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が800細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が900細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が1000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が2000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が3000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が4000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が5000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
いくつかの実施形態では、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合、及びb)腫瘍面積内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態では、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合、及びb)バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合、患者はスコア陽性である。いくつかの実施形態では、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合、及びb)連続空間近接スコアが50以上である場合、患者はスコア陽性である。いくつかの実施形態では、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合、及びb)間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が735細胞/mm以上である場合、患者はスコア陽性である。
いくつかの実施形態において、患者は、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合;b)腫瘍領域内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合;及びc)バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合、又は連続空間近接スコアが50以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、患者は、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合;b)腫瘍領域内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合;c)バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合;及びd)連続空間近接スコアが50以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合;b)腫瘍領域内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合;c)バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合、又は連続空間近接スコアが50以上である場合;及びd)間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が735細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。いくつかの実施形態において、a)腫瘍細胞の少なくとも90%が8.4以上の膜光学密度を有する場合;b)腫瘍領域内の少なくとも20の膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が3000細胞/mm以上である場合;c)バイナリ空間近接スコアが99.8以上である場合;e)連続空間近接スコアが50以上である場合;及びd)間質中の腫瘍浸潤リンパ球の密度が735細胞/mm以上である場合、患者はQCS陽性である。
VII.予測及びスコアリング方法の例。
A.染色された組織の画像分析。
ここで、染色された癌組織の特定の画像に関連して、図14の方法を説明する。
工程1では、組織試料中の癌細胞上の関連タンパク質に結合する診断抗体に連結された色素を用いて、組織試料を免疫組織化学的に染色する。図15(左上画像)は、工程1で取得された染色組織の一部のデジタル画像17である。画像17は、色素に連結された抗Her2診断抗体で免疫組織化学的に染色された癌患者からの組織を示す。この実施例では、診断抗体は、タンパク質HER2を標的とするVentana PATHway抗HER-2/neu(4B5)ウサギモノクローナル一次抗体である。他の例では、診断抗体は、タンパク質HER2も標的とするウサギ抗ヒト抗体であるDako HercepTest一次抗体であり得る。抗Her2/neu抗体は、3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)染色が組織試料中のタンパク質Her2/neuの位置を示すように、膜タンパク質Her2/neuに結合する。
工程2では、デジタル画像17に対して画像解析を行って、畳み込みニューラルネットワークを用いて癌細胞の核及び膜の後方画像層を生成する。画像解析は、核、膜及び細胞質等の癌細胞及びそれらの成分を検出するために使用される。図15は、工程2の画像解析処理を示す。畳み込みニューラルネットワークは、デジタル画像17の各ピクセルについて、各ピクセルが細胞の核(図15右上画像)又は膜(図15左下画像)のいずれかに属する確率を示す後層(グレー値画像)を生成する。高い確率は黒で、低い確率は白で示されている。
図16は、工程2の画像解析を実行する方法の別の実施形態を示す。畳み込みニューラルネットワークは、ピクセルごとに、核までの距離(図16右上画像)又は膜までの距離(図16左下画像)を示す回帰層(グレー値画像)を生成する。大きい距離は白色で示され、小さい距離は黒色で示されている。図15と図16との比較は、図16の実施形態の画像解析が、図15の実施形態よりも厚い膜オブジェクトを生成するが、より小さい核オブジェクトを生成することを示す。
一実施形態では、畳み込みニューラルネットワークは、入力画像17から非常に低い空間サイズ(1~16ピクセル)を有するボトルネック層に向かう一連の畳み込み層と、入力画像17と同じサイズを有する後層に向かう一連の逆畳み込み層とを含む。このネットワークアーキテクチャは、U-Netと呼ばれる。畳み込みニューラルネットワークの重みの訓練は、複数の訓練画像内の核及び膜の手動アノテーション層を生成し、次いで、生成された後層が手動で生成されたアノテーション層に最も類似するようにネットワーク重みを最適化アルゴリズムによって調整することによって実行される。
別の実施形態では、核及び膜のアノテーション層は、複数の訓練画像において自動的に生成され、手動で補正される。上皮領域及び核中心は、それぞれ領域及び点として手動でアノテーションされる。各訓練画像について、膜分割は、アノテーション核中心によって播種され、アノテーション上皮領域の範囲によって制約された領域成長様アルゴリズム(例えば、ウォーターシェッドセグメンテーション)を適用することによって自動的に生成される。訓練画像が与えられると、核セグメント化は、ブロブ検出アルゴリズム(例えば、最大安定極値領域MSERアルゴリズムによって)を適用し、アノテーション核中心を含む検出されたブロブのみを核として選択することによって自動的に生成される。自動的に生成された膜及び核のセグメント化は、視覚的に検討され、必要に応じて手動で修正される。補正工程は、以下の方法:不正確にセグメント化された膜又は核を拒絶すること、正確にアノテーションされた膜又は核を明示的に受け入れること、又は膜又は核の形状を精密化することのうちの1つを含む。アノテーション膜又は核を有する各画像について、アノテーション層が作成される。一実施形態では、アノテーション層の各ピクセルは、アノテーションオブジェクト(膜又は核)に属する場合、「1」が割り当てられ、そうでない場合、「0」が割り当てられる。別の実施形態では、アノテーション層のピクセルは、最も近いアノテーションオブジェクトまでの距離を表す。ネットワーク重みは、生成された後層が自動的に生成された膜及び核アノテーション層に最も類似するように最適化アルゴリズムによって調整される。
図17は、各々が細胞膜及び細胞質を含む個々の癌細胞対象物が検出される工程3を示す。ヒューリスティック画像解析プロセスは、畳み込みニューラルネットワークによって生成された核後層を使用して細胞核をセグメント化するために、ウォーターシェッドセグメンテーションを使用する。セグメント化は、核オブジェクトを生成する。各核オブジェクトには、固有の識別子(UID)が割り当てられる。個々に識別された核は、図17に暗いオブジェクトとして示されている(右下の画像)。検出された核は、入力画像17(左上画像)及び核(右上画像)及び膜(左下画像)の後層にもオーバーレイとして表示される。
一実施形態では、ウォーターシェッドセグメンテーションは、事前定義された第1のサイズ閾値での核後層の閾値化を含む。第1のサイズ閾値を超える全ての単一の接続されたピクセルは、核オブジェクトに属するとみなされる。16um^2未満の面積を有する核オブジェクトは破棄される。各核オブジェクトにはUIDが割り当てられている。後続の工程では、核オブジェクトは、追加された核後方ピクセルが第2の所定の閾値よりも大きくなければならない、より小さい核後方に向かって成長される。
図18は、核オブジェクトを使用して膜のセグメント化を検出及び改善する更なるセグメント化工程を示す。領域成長アルゴリズムは、検出された核オブジェクトをシードとして使用して、膜後層の膜の隆起部(おおよその細胞境界)まで成長させる。検出された膜(右下の画像)は、入力画像17(左上の画像)並びに核(右上の画像)及び膜(左下の画像)の後層にオーバーレイとして示されている。
図19は、検出された細胞の境界ピクセルの領域を膜確率層及び所定の膜層事後閾値まで外側に成長させることによってセグメント化される膜オブジェクトの検出及びセグメント化を示す。より厚い境界領域は膜オブジェクトになる。各膜オブジェクトには、関連する核オブジェクトのUIDと同じUIDが割り当てられる。
膜と核との間の空間は、核のUIDを用いて細胞質に割り当てられる。各膜(図19左上画像参照)及び細胞質(図19左上画像参照)について、DAB染色の平均光学密度は、UIDと共にハードドライブ上のファイルにエクスポートされる。各細胞(核、細胞質及び膜を含むと定義される)について、スライド内の細胞の重心(x、y)の位置もエクスポートされる。ファイルは、ハードディスク、ソリッドステートディスク、又はコンピュータシステム内の専用RAMの一部に存在し得る。
図20は、画像解析ソフト環境における画像解析の結果を示す。図20(左上画像)は、デジタル画像17上のオーバーレイとして核オブジェクト及び膜オブジェクトのセグメント化を示す。図20(左下画像)は、画像17の光学密度提示上のオーバーレイとしての核オブジェクトのセグメント化を示す。暗い光学密度ピクセルは大量のDABに関連付けられ、明るい光学密度ピクセルは少量のDABに関連付けられる。各画像ピクセルのDAB光学密度は、茶色のDAB成分が独立した色になるように赤-緑-青色空間を変換し、その茶色の色成分の対数をとることによって、画像ピクセルの赤-緑-青表現から計算される。免疫蛍光(IF)イメージングが染色を決定するために使用される場合、HER2チャネルは、赤-緑-青の色空間を使用するのとは対照的に、12ビット、16ビット又は32ビットのグレースケール画像として取得される。IFでは、第1の色素としてDAPI(2-[4-(アミノイミノメチル)フェニル]-1H-インドール-6-カルボキシイミドアミド塩酸塩)を用いて核をマークする。核の後層は、畳込みニューラルネットワークの入力として第1の色素の画像を使用して生成される。第2の色素が、診断用抗HER2抗体に連結される。第2の色素からの蛍光シグナルの強度は、DABの光学密度(OD)に対応する。図20(右上の画像)及び図21(上)は、Definiens Developer XDプラットフォーム内でセグメント化画像を生成するために使用される画像解析スクリプトを示す。図20(右下の画像)及び図21(下)は、画像17内の全ての細胞膜オブジェクト及び細胞質オブジェクトについてエクスポートされた測定値を示す。別の実施形態では、画像解析スクリプトは、C++、C#、Java、Python又はR等の別のプログラミング言語を使用して符号化される。
B.予測ADCスコアの計算。
膜オブジェクト及び細胞質オブジェクト内のDAB染色の光学密度に基づいて、デジタル画像17内の各癌細胞について単一細胞ADCスコアが計算される。単一細胞ADCスコアはまた、単一細胞ADCスコアが計算されている癌細胞までの所定の距離よりも近い隣接する癌細胞の膜オブジェクト及び細胞質オブジェクトにおけるDAB色素の染色強度に基づく。スコアは、抗HER2 ADC治療に対する癌患者の応答を予測する。
図22は、膜及び細胞質ピクセルのグレー値を使用した概略図における工程2~3の画像分析からの染色の光学密度の例示的な定量的結果を示す。図15~図20に示すヒューリスティック画像解析の工程は、細胞核、細胞膜及び細胞細胞質への図22の例示的なセグメント化を得るために使用される。図22の明るいグレー値は、高いDAB光学密度、したがって診断抗体によって標的化される大量のタンパク質に関連する。暗いグレー値は、低いDAB光学密度に関連する。より明るいピクセルは、より高いDAB光学密度に対応する。
図23は、図22の画像の膜上及び細胞質内の例示的な定量的染色量を列挙しており、これは図23に一部再現されている。第1、第2及び第3の細胞の膜からの褐色DAB信号の光学密度は、それぞれ0.949、0.369及び0.498である。第1、第2及び第3の細胞の細胞質からの褐色DABシグナルの光学密度は、それぞれ0.796、0.533及び0.369である。図23の模式的な画像において、第1の癌細胞18は、標的タンパク質HER2を多量に発現しており、ADC抗体(図24の効果1)に連結した細胞に入るADCペイロードによって殺傷される可能性が非常に高い。第2の癌細胞19及び第3の癌細胞20は、抗HER2 ADCによって直接殺傷されるのに十分な量の標的タンパク質HER2を発現していない。しかしながら、第1の癌細胞18に対する第2の癌細胞19の近傍に起因して、第1の癌細胞から放出された毒性ペイロードは、第2の癌細胞19も死滅させる(図24の効果3)。第3の癌細胞20は、活性のままであり、最終的に患者の死を引き起こし得る薬物耐性機構の起源であり得る。
図24は、抗HER2 ADC治療が癌細胞を死滅させる機構を示す。例えば、トラスツズマブデルクステカンもこの機構を使用する。第1の工程では、ADC抗体(例えば、トラスツズマブ)が標的タンパク質HER2に結合し、標的タンパク質の天然の機能を阻害し、細胞死をもたらし得る。第2の工程では、ペイロード(例えば、I型トポイソメラーゼ阻害剤)が細胞内に内在化され、ペイロードの毒性によって細胞を死滅させる。このペイロードの取込みは、膜上の標的タンパク質の量、並びに膜上及び細胞質内の標的タンパク質の量の差に依存する。取込み後、ペイロードは、細胞から周囲の組織に放出され得る。第3の工程では、ペイロードは近くの細胞に入ることができ、それらを死滅させることもできる。組織内のペイロードの空間分布は受動拡散によって広がる。
伝統的なHER2スコアリングは、ADC結合による標的タンパク質HER2の阻害の効果、並びにADC抗体と共に癌細胞に入る細胞傷害性ペイロードの効果の両方を反映する。したがって、トラスツズマブ治療の従来のスコアリングは、細胞質中のHER2タンパク質の存在の重要性、及び最初に死滅した癌細胞から放出された後に組織中に拡散する細胞傷害性ペイロードの効果を反映していない。比較すると、新規予測ADCスコアは、隣接する癌細胞に対する細胞傷害性ペイロードの放出の影響を測定する。
図14の方法の工程4では、各癌細胞について単一細胞ADCスコアが決定される。図25は、図23に示す3つの細胞の各々についての単一細胞ADCスコアの計算を示し、隣接細胞へのADCペイロードの取込みを説明するために、細胞分離に基づく指数重み付け係数を組み込む。単一細胞スコアは、図26に示す式又は請求項4に記載の式に基づいて算出することができる。細胞膜(0.949、0.369及び0.498)及び細胞質(0.796、0.533及び0.369)からのDABシグナルについて図23に列挙した光学密度は、図25に示す計算への入力である。第1、第2及び第3の細胞18~20は、それぞれ0.145、0.012及び0.064の単一細胞スコアを有する。
したがって、単一細胞ADCスコアは、DAB光学密度を使用した細胞膜上の標的タンパク質の量の測定及びADCペイロード取込み量の推定を組み込んでいる。図24に示すように、第1の細胞に対するADCペイロードの取込みは、その膜及びその細胞質中の色素の量、並びに第1の細胞の近傍の第2の細胞の膜及び細胞質中の色素の量の両方に依存する。より具体的には、近傍は、第1の癌細胞の周りに所定の半径を有する円板であってもよい。一実施形態では、第1の癌細胞の単一細胞ADCスコアは、関連する癌細胞中心が所定の距離よりも第1の癌細胞中心に近い膜及び細胞質対象のDAB光学密度の数乗の距離加重和によって決定される。一実施形態では、図25の計算で使用されるように、所定の距離は50umである。別の実施形態では、距離重み付けは、第1の癌細胞中心から他の癌細胞中心までのスケーリングされた負のユークリッド距離の指数を合計で計算することを含む。別の実施形態では、合計の累乗は、0、1、及び2に制限される(定数、線形項、二乗)。
図26は、単一細胞ADCスコアを計算するための式の一実施形態を示す。式中の関数aklは、細胞jから細胞iまでの距離|r-r|に依存する。ODMは、細胞jの膜のDAB光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質のDAB光学密度である。定数A_ij、r_norm及びdは、全てのタイプの癌について同じである。しかしながら、患者がADC治療に適格であるかどうかを判定するためのスコアの閾値は、異なる種類の癌に対して同じではない。
特定の癌患者がADC治療にどのように応答するかを示す方法の工程5において、標的タンパク質HER2の染色に基づいて、癌患者からの組織のデジタル画像17について応答スコアが計算されて、スコアは、癌患者が抗HER2 ADC治療にどのように応答するかを示す。応答スコアは、統計的演算を使用して組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって生成される。したがって、スコアは、デジタル画像で検出された全ての癌細胞に対する単一細胞ADCスコアの統計に基づいて計算される。一実施形態では、統計量は、画像17の全ての癌細胞のADCペイロード取込み推定値の所定の分位である。
本方法の工程6において、応答スコアが所定の閾値よりも大きい場合、抗HER2 ADC治療が癌患者に推奨される。工程6の所定の閾値及び工程5の分位点は、既知の単一-細胞ADCスコア及び治療応答パラメータを有する患者のコホートを使用して陽性的中率、陰性的中率、及び陽性推奨の有病率を最適化することによって決定される。
工程5における応答スコアの計算の別の例では、癌患者の組織試料のデジタル画像sが取得され、診断抗体(dAB)で染色される。デジタル画像sに対して画像解析を行い、N個の癌細胞(c0≦i≦Nを検出する。診断抗体(dAB)は、Ventana PATHWAY抗HER-2/neu(4B5)である。細胞cのセグメント化された膜における光学密度は、
として示され、セグメント化された細胞質における光学密度は、
として示される。デジタル画像sに関連する応答スコアsは、癌患者が抗HER2ADC治療に応答する可能性を示す。ADCは、診断抗体と同じHER2タンパク質に特異的に結合する。応答スコアsは、以下のように表すことができ、
[式6]
式中、
は、デジタル画像sで検出された細胞のセットに対する集合演算子である。集合演算は、検出された細胞に関連する陽性値p(c)を表す単一の数である。一例では、集合演算は算術平均である。別の例では、集合演算は、調和平均又は幾何平均等のいくつかの種類の平均のうちの1つである。別の例では、集合動作は、検出された細胞のサブグループの周波数である。別の例では、集合演算は和である。一実施形態では、集合演算は、細胞のサブセットのいくつかの種類の平均のうちの1つである。更に別の例では、集合演算は分位点である。
この用語
は、各細胞について抗HER2 ADC治療に応答する確率を表す陽性関数を表す。細胞の陽性関数は、細胞の隣接細胞に関連するdAB陽性値の集合に対して陽性である。細胞cに関連する陽性値p(c)は、以下のように表される。
[式7]
式中、πは、細胞cとの距離が所定の定数よりも小さい癌細胞として定義される、細胞cを含む、細胞cに近接する隣接癌細胞のセットである。一例では、cとcとの間の距離は、2つの細胞中心間のユークリッド距離である。別の例では、距離はc及びcの膜間の最小距離である。式7中、pdAB(c)は、膜内の光学密度と細胞質内の光学密度とに基づく、細胞cに関する陽性値である。一例では、pdAB(c)は、1を細胞に連結させる関数として規定され、
[式8]
その他の場合は0である。式8において、α、α、α、γ、γ、γ及びTは、予め定義された定数であり、
は、
及び
の間の差を測定する関数である。所定の定数は、抗HER2 ADC治療に対する既知の治療応答を有する癌患者のコホートの統計分析によって決定される。別の例では、pdAB(c)は次のように表される。
[式9]
一例では、関数
は、
として表される

との差に等しい。別の例では、関数
は、
として表される

との間の正の差のみを考慮する。更に別の例では、関数
は、
として表される

との間のコントラストに等しい。
式7において、
は、隣接する癌細胞のセットに対する集合演算子である。集合演算は、隣接細胞に関連付けられたdAB陽性値を表す単一の数である。一例では、集合演算は、以下のように表される、dAB陽性の重み付けされた算術平均であり、
[式10]
式中、
は、隣接細胞cによって影響を受ける細胞cの尤度を計算する重み関数を表す。別の例では、集合動作は、その隣接細胞のdAB陽性値の合計が任意の実定数Tを上回る場合に1を細胞cに関連付け、そうでない場合に0を細胞に関連付ける。別の例では、集合演算は、分位数、周波数尺度、又は調和平均若しくは幾何平均等のいくつかの種類の平均のうちの1つである。一例では、重み関数
は、以下のように表される、細胞cと細胞cとの間の空間距離のガウス関数d(c,c)であり、
[式11]
式中、σ及びαは所定の定数である。別の例では、重み関数は、空間距離のシグモイドであり、
[式12]
式中、σ、α及びβは所定の定数である。別の例では、重み関数は、細胞cと細胞cとの間のユークリッド距離の減少関数である。更に別の例では、重み関数は、細胞cと細胞cとの間の距離のHeaviside関数であり、距離が所定の定数Tよりも小さい場合には1を関連付け、そうでない場合には0を関連付ける。
陽性関数p(c)の1つの特定の例は、1を細胞cに関連付け、
[式13]
その他の場合は0である。
C.乳癌患者に基づく予測方法の検証。
図14の方法に従って生成された新規予測ADCスコアの精度は、トラスツズマブデルクステカン(DS-8201)を用いた第I相臨床試験である患者試験(J101 NCT02564900)に基づいて検証された。J101患者試験のデータセットは、乳癌及び胃癌を含む複数の癌タイプを有する患者の染色組織画像及び治療応答率を含む。予測ADCスコアの最初の検証は、様々なHER2発現レベル(1+、2+、3+)を有する151名の乳癌患者からのデータに基づいていた。応答スコアは病理学者のアノテーションを使用して訓練され、スコアリング方法の性能は、その一般化及び堅牢性を確実にするために未確認のデータで検証された。応答スコアをJ101データに盲目的に適用した。光学密度OD(褐色DAB染色強度のレベル)を検出された膜で計算して、生存予測に関連する特徴を導き出した。奏効スコアの特徴を、陽性群の患者において客観的奏効率(ORR)を最大化し、陰性群の患者において(ORR)を最小化するように選択した。客観的奏効率は、治療に対して部分奏効又は完全奏効のいずれかを示す群の患者の割合である。部分奏効は、30%~100%の腫瘍縮小として定義される。完全奏効は、100%の腫瘍縮小及び腫瘍の排除である。
以下に説明する分析検証は、図14の方法に従って画像分析を使用して検出された膜で測定された光学密度値(R=0.993)と、病理学者がアノテーションした強化膜で測定された光学密度値(R=0.995)との高い相関を実証する。図27は、どのように一貫して病理学者が互いに比較して膜にアノテーションを行うかを示す図である。この図は、第1の病理学者によって特定された膜染色の光学密度を第2の病理学者によって特定された光学密度に対して示す。図中の光学密度のスケールは0から300まで記載されているが、実際の光学密度は0から220までの範囲で測定される。光学密度は、測定された光学密度を220で割ることによって0~1の範囲で本出願において代替的に示されることがある。図28は、画像解析を使用して検出された膜が病理学者によって同定された膜とどのように相関するかを比較する図である。両図の散布プロットの比較は、図14の方法の画像分析が病理学者とほぼ一貫して膜を検出することを実証している。更に、画像解析から得られた応答スコアは、病理学者のHER2 IHC検査スコアリングとほぼ一致していたが、IHC染色カテゴリーとISH染色カテゴリーとの間の広範な定量的重複も示した。図14の方法を用いたスコアリングは、客観的奏効率ORRとアッセイの全範囲にわたるHER2発現増加との間の直接的な線形関係を示した。
現在、HER2標的治療は、癌が、(i)免疫組織化学(IHC)染色からのHER2の発現について>0及び<1+、(ii)免疫組織化学染色からのHER2の発現について1+、並びに(iii)免疫組織化学(ISH)染色からのHER2の発現について2+及びin situハイブリダイゼーション染色からのHER2の発現について陰性(-)の両方のスコアが割り当てられている「HER2低」患者について承認されていない。
図29は、HER2 IHC1+スコアを有するのとは対照的に、応答の質とHER2 IHC2+スコアを有することとの間の低い相関を示す。IHC2+のスコアを有するHER2陰性コホートにおけるJ101試験からの乳癌患者は全て、IHC1+のスコアを有するコホートの患者よりも一貫して良好な応答を有するわけではなかった。図の右側により長いバーで表される患者は、左側の患者よりも腫瘍サイズの大きな減少を示した。腫瘍サイズが30%を超えて縮小した右の患者は、抗HER2 ADC治療に対する応答を示したと考えられる。腫瘍が30%未満だけ縮小し、30%未満だけ増大した患者は、安定状態を有すると考えられる。そして、腫瘍サイズが30%を超えて増加した患者は、進行性疾患を有すると考えられる。図29の図に示される治療に対する応答を示した22名の患者のうち、9人がIHC 1+のスコアを有し、13人がIHC 2+のスコアを有する。したがって、HER2 IHCスコアは、患者が治療に対する応答を示すかどうかの良好な予測因子ではない。
図30は、HER2陽性応答スコアを有したDESTINY-Breast01試験の168名の患者の応答(腫瘍サイズの変化)を示す。図30は、HER2陽性とスコア付けされた患者の約85%が治療に対する応答(>30%の腫瘍縮小)を示し、15%が安定状態を有し、1名の患者のみが進行性疾患を有したことを示す。したがって、ISH+による3+及び2+のHER2 IHCスコアは、2+及び1+のスコアよりも抗HER2 ADC治療に対する応答の良好な予測因子であり、抗HER2 ADC治療に対する無応答の予測因子であった。
図31は、IHCスコアリングのHER2陰性カテゴリーに含まれた151名のJ101乳癌患者のうち65名のコホートが、抗HER2 ADC治療に対して42%の良好な客観的奏効率ORRを依然として示したことを示す。HER2標的化治療が現在承認されていないJ101患者(n=65)のこのHER2陰性コホートでは、患者の42%が依然として抗HER2 ADC治療に応答し、無増悪生存期間(mPFS)の中央値は11ヶ月であった。したがって、図14の方法を用いたスコアリングを使用して、抗HER2 ADC治療に対して好ましい応答を示すHER2陰性カテゴリーの患者を同定することができる。図31はまた、客観的奏効率が、IHCスコアリングを使用してHER陽性として分類された72名の患者のコホートについて56%であり、それらの患者が14.1ヶ月のmPFSを有する治療に応答したことを示す。
図32は、図14の方法を用いたスコアリングを用いた従来のHER2陰性カテゴリーの乳癌患者65名の更なる層別化を示す。新規予測ADCスコアのカットオフを調整することによって、65名のHER2陰性群の40名の患者を「QCS陽性」として分類した。40名の患者のこのコホートは52%のORRを有し、患者は14.5ヶ月のmPFSを有して、抗HER2 ADC治療に応答した。したがって、図14の方法を用いたスコアリングは、新規応答スコアが抗HER2 ADC治療に対する良好な応答を示す所定の閾値を上回る(所定のカットオフを上回る染色強度に基づく)HER2陰性患者のサブグループを同定することができた。
図33は、図14の方法を用いて151名のJ101乳癌患者全員のスコアリングを行った結果を示す。左上図は、各上皮細胞の細胞中心(小さな点)、核の境界、及び各細胞(膜)の境界を検出したQCS画像解析の結果の一例を示す。核の境界と細胞の境界との間の空間は、細胞質と呼ばれる。
図33の右上のグラフは、151名のJ101患者の膜染色の分布を示す。各バーの高さは、各患者のHER2染色組織画像の中央腫瘍細胞膜光学密度を表す。バーの陰影は、病理学者による各患者の視覚的HER2スコアリングを表す。膜光学密度の>8.04での示された「カットオフ」は、患者のJ101コホート全体の生存分析に基づいて決定された。図33の下のグラフは、単一の患者についての細胞ODスコア及びそれらの分布を表すヒストグラムである。
図34Aは、151名のJ101患者の120名の「QCS陽性」(QCS+)患者と31名の「QCS陰性」(QCS-)患者への層別化を示す図33の右上のグラフのより詳細なバージョンである。120名の患者の群は、それらの組織試料中の細胞の少なくとも90%が0.0365(8.04/220)の所定の閾値を超えるHER2膜染色の光学密度を示したので、「QCS陽性」(QCS+)としてスコア付けされた。120名の「QCS陽性」(QCS+)患者の群は、図34Bの表に示されるように、56%の客観的奏効率ORR及び14.1ヶ月の平均無増悪生存期間(mPFS)を示した。
新規応答スコアはまた、26%の客観的奏効率ORR及び9ヶ月の平均無増悪生存期間(mPFS)を有した31名の患者の「QCS陰性」群を特定した。したがって、図14のスコアリング方法は、病理学者による従来のHER2 IHCスコアリングよりも、抗HER2 ADC治療から利益を得ることができる151名のJ101乳癌患者の大部分を特定した。それにもかかわらず抗HER2 ADC治療から利益を得ることができる従来のHER2陰性IHCスコアリング群から患者を同定する能力は、このHER2陰性群の患者による有効な治療に対する満たされていないニーズが高いため重要である。
応答スコアを生成するために使用される単一細胞スコアの染色強度カットオフは、J101患者を、高いORRを有する第1の群と低いORRを有する第2の群とに分割するように調整される。J101患者のORRが最も高い第1群とORRが最も低い第2群への最良の層別化は、少なくとも最小量のHER2を発現する腫瘍細胞の大部分を含むように単一細胞スコアの染色強度閾値を0.0365(8.04/220)に下げることによって達成された。8.04/220のこの染色強度閾値は、より高いレベルのHER2を発現する細胞のごく一部のみを含むようにより高い染色カットオフを設定した現在の臨床ガイドラインとは対照的である。
図34Aの棒グラフは、151名のJ101乳癌患者のそれぞれについての従来のHER2 IHCスコアを示し、これはバーの網掛けによって示されている。例えば、IHC3+のスコアを有する患者のバーは2番目に濃い灰色であり、IHC1+のスコアを有する患者のバーは白色である。最も高い膜光学密度に対応するHER2 IHC3+スコアを有する患者を除いて、同じHER2 IHCスコアを有する全ての患者が一緒にグループ化されていないことは明らかである。しかしながら、はるかに低い膜光学密度を有する患者もまた、抗HER2 ADC治療に良好に応答する可能性があった。ORRが56%(n=120)の患者群を「HER陽性」と定義する。この群の患者は、組織スライド中の細胞の少なくとも90%が、2+の従来のHER2 IHCスコアに使用される強度閾値よりも低い0.0365(8.04/220)の所定の強度閾値よりも大きいHER2染色の光学密度を示すと同定された。
別の実施形態では、染色強度の少なくとも所定の閾値を有するとカウントされる細胞はまた、閾値を超える染色を有する細胞の近傍内にあるが、それ自体は閾値未満の染色を有する細胞を含む。したがって、応答スコアはまた、所定の光学密度閾値を超える膜染色を示す(陽性細胞)又は陽性細胞から所定の距離内にあるとして細胞を特徴付けることによって、染色された細胞の空間的不均一性を考慮に入れる。
図35は、隣接染色された細胞も考慮する実施形態について、図14の方法を使用して同定されたHER2陰性コホートにおけるJ101乳癌患者の2つの群についての無増悪生存期間のカプラン・マイヤー曲線のグラフである。方法は、HER2陰性コホートにおける65名の乳癌患者の生存確率を示すスコアを生成する。上の曲線は、より良好な生存転帰を有する患者群を示し、これは、細胞の95%が(i)少なくとも最小閾値のHER2染色の光学密度を示したか、又は(ii)最小染色を示す細胞から最小距離内に位置した患者に対応する。
この方法では、0.04077(8.97/220)を超える膜上の平均光学密度を示した各組織試料中の全ての上皮細胞が同定され、それらの細胞は「p1」と呼ばれる。次いで、0.04077未満の平均光学密度を膜上で示したが、p1細胞から20um(ミクロン)の距離内にある、組織試料中の全ての上皮細胞が同定され、それらの細胞は「p2」と呼ばれる。次いで、「p12」細胞のパーセンテージは、(p1の数+p2の数)/(組織試料中の全ての上皮細胞の数)として計算される。患者は、より高い生存確率を有し、p12細胞のパーセンテージが95%より大きい場合、上側カプラン・マイヤー曲線上にある。
上の曲線の患者は16ヶ月の平均無増悪生存期間を有し、下の曲線の患者は9ヶ月の平均無増悪生存期間を有した。より長い生存率及び抗HER2 ADC治療に対するより良好な応答を有する上の曲線の患者は、HER2陰性細胞間のHER2陽性細胞のより均一な分布を有する。HER2陽性細胞の大部分が集合しており、HER2陰性細胞から閾値最小距離(この実施例では20μm)以内で腫瘍組織に分布していない場合、HER2陽性細胞を標的とする抗HER2ADCは、有意なバイスタンダー効果を有するほどHER2陰性細胞に十分接近していない。新規予測QCSスコアは、その細胞傷害性ペイロードをHER2陽性細胞に放出するADCの隣接癌細胞に対する効果から改善された応答を示す、均質なHER2発現を有する患者を同定する。上側カプラン・マイヤー曲線に示されるものと同様の抗HER2 ADC治療に対する応答を達成するために、臨床医は、新規応答スコアが組織試料中の95%のp12細胞を超える各患者に抗HER2 ADC治療を投与するであろう。
図36は、p1細胞の最小距離内のp2細胞も考慮する実施形態について、図14の方法を使用した151名のJ101患者全体からの患者の2つの群についての無増悪生存期間のカプラン・マイヤー曲線のグラフである。本方法は、J101試験の151名の乳癌患者の生存確率を示すスコアを生成する。上の曲線は、より良好な生存転帰を有する患者群を示し、これは、細胞の95%が、(i)少なくとも0.0481の最小閾値(10.59244/220)のHER2染色の光学密度を示したか、又は(ii)最小染色を示す細胞から20umの最小距離内に位置した患者に対応する。上の曲線の患者は19ヶ月の平均無増悪生存期間を有し、下の曲線の患者は11ヶ月の平均無増悪生存期間を有した。
図37は、組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって各癌患者の生存確率を示すスコアを生成するために図14の方法で使用される他のパラメータ及び特徴を示す。図37の下部10の特徴は、ラベル付き特徴の特定のパラメータを使用して得られた2つの曲線間の最良の層別化(ログランクp値によって測定)に従ってランク付けされる。
図37の上の9つの特徴は、ラベル付き特徴の特定のパラメータを使用して得られた上の曲線における患者の平均客観的奏効率に従ってランク付けされる。特徴#1は、陽性腫瘍細胞のパーセンテージに基づいて患者を分類し、陽性は5を超える膜光学密度によって定義される。特徴#2は、陽性腫瘍細胞のパーセンテージに基づいて患者をランク付けし、陽性は、5を超える細胞光学密度(細胞質及び膜の両方の平均光学密度)によって定義される。特徴#3は、陽性/陰性細胞分類を使用して患者を層別化するバイスタンダースコアであり、陽性細胞は25を超える膜光学密度を有し、スコアは半径100um内の全ての細胞を考慮する。特徴#4は、陽性/陰性細胞分類を使用して患者を分類するバイスタンダースコアであり、陽性細胞は10を超える膜光学密度を有し、スコアは半径50um内の全ての細胞を考慮する。特徴#5は、陽性/陰性細胞分類を使用して患者を分類するバイスタンダースコアであり、陽性細胞は25を超える膜光学密度を有し、スコアは半径50um内の全ての細胞を考慮する。特徴#6は、各腫瘍細胞の細胞質光学密度に対する膜光学密度の差を計算し、次いで得られたヒストグラムの15%分位値をとることによって患者をランク付けする。特徴#7は、陽性/陰性細胞分類を使用して患者を分類するバイスタンダースコアであり、陽性細胞は10を超える膜光学密度を有し、スコアは半径10um内の全ての細胞を考慮する。特徴#8は、各腫瘍細胞について、膜光学密度*(膜光学密度-細胞質光学密度)を計算し、次いで、得られたヒストグラムの10%分位値をとることによって、患者を層別化する。特徴#9は、各腫瘍細胞について、膜光学密度*(max(0、膜OD-細胞質OD))を計算し、次いで得られたヒストグラムの10%分位値をとることによって患者をランク付けする。
抗HER2 ADC治療に対する患者の応答を予測するための図14の方法は、場合により、癌細胞対象物の染色特性に加えて、間質腫瘍浸潤リンパ球(TIL)の存在に基づく可能性がある。以下に説明する検証は、同じくTILに基づく図14の修正スコアリング方法が、客観的奏効率(ORR)とHER2発現+TIL有病率の増加との間の更に良好な対応を示したことを実証している。腫瘍浸潤リンパ球(TIL)は、主に細胞傷害性(CD8+)T細胞及びヘルパー(CD4+)T細胞から構成される。CD8+Tリンパ球は好ましい臨床転帰と相関しており、乳房病変中の間質TILの数が多い患者は、トラスツズマブで治療した場合、より良好な生存を示す。TIL有病率をHER2染色から抽出された画像分析に基づく特徴と組み合わせることにより、特にHER2の発現レベルが低い腫瘍を有する乳癌患者について、癌患者が抗HER2 ADC治療にどのように応答するかを予測するために図14の方法によって生成される患者スコアの精度が改善される。
図14の方法の更なる工程において、深層学習ベースの画像解析が、色素に連結された抗Her2診断抗体で免疫組織化学的に染色された組織のデジタル画像に対して行われる。畳み込みニューラルネットワークは、HER2染色IHC画像においてTILを検出するように訓練される。TIL自体はHER2染色されていないが、HER2染色IHC画像から直接TILSを検出するための深層学習ベースのモデルが開発された。TIL検出モデルについては、関心領域の別個のサブセットをTILについてアノテーションした。機能的染色の非存在下では、細胞質がほとんどなく核が均一な質感を有する円形から多角形の比較的小さな細胞として特徴付けられるTILを示すために点アノテーションを使用した。腫瘍関連間質及び上皮内TILに位置するTILのみにアノテーションし、検出した。TIL検出モデルを、アノテーション腫瘍コア領域内の非上皮領域に適用した。得られた後部マップを閾値化し、続いて非最大抑制を行うことによって、TIL中心を検出した。
図14の方法における別の更なる工程では、各HER2染色IHC画像についてTILスコアを計算する。したがって、この方法は、HER2染色に基づくスコアに加えて、染色された組織において検出されたTILの密度をバイオマーカとして使用する。モデルは、以下の3つの密度を計算する。(i)アノテーション腫瘍領域全体内の全てのTILの密度、(ii)セグメント化された腫瘍関連間質におけるTILの密度、及び(iii)上皮内TIL密度。
予測ADCスコアの精度を改善するために、TILに基づく特徴をHER2染色に基づく特徴と組み合わせて使用した。特徴の最適な組合わせは、コホート内の全ての患者のカプラン・マイヤー曲線に対するログランク検定p値によって示されるように、患者コホートを無増悪生存期間(PFS)がより長い群とPFSがより短い群とに最もよく分けるものである。図37の下の表は、ログランクp値によって示されるカプラン・マイヤーグラフの2つの曲線の間で各特徴が個別に達成する層別化によってランク付けされた、3つのTILベースの特徴及び7つのHER2染色特徴を含む。
図38は、3つの更なる特徴の表であり、より長い生存患者及びより短い生存患者についてのそれらのログランク検定p値及びそれらの予測客観的奏効率(ORR)を比較する。図38の表は、TILに基づく特徴、HER2+腫瘍細胞の密度に基づく特徴、及び151名の乳癌患者のコホートのJ101データセットで計算された定義された近隣内のHER2+細胞に基づく特徴を含む。表中のp値は、モデルカットオフを訓練セットで訓練し、次いで検証セットに適用する交差検証によって決定した。得られた交差検証モデルをCMと略す。例えば、TIL密度特徴について、患者を高(QCS+)CM群及び低(QCS-)CM群に層別化するためのカットオフは168である。これは、間質中のTILの数を腫瘍コアの面積(mm^2)で割って測定した腫瘍浸潤リンパ球の密度が168/mm^2を超える場合、患者がCM-high群に属することを意味する。HER2+細胞密度の特徴について、カットオフは1672である。この特徴のために、15を超える膜光学密度を有する腫瘍細胞の数を腫瘍コアの面積(mm^2)で割って測定した陽性腫瘍細胞の密度が1672/mm^2を超える場合、患者はCM-高群に属する。HER2+近傍スコアの場合、カットオフは37である。カットオフは、最初に、全ての腫瘍細胞について、25umの半径を使用して連続バイスタンダースコアを計算してヒストグラムを生成することによって適用される。次いで、全細胞のヒストグラムの5%分位点が37より大きい場合、患者はCM-高群に属する。TIL密度特徴は、151名の患者の最良の層別化を達成し、0.007のログランク検定p値をもたらした。HER2+細胞密度の特徴から、カプラン・マイヤー、ログランクp値0.011が得られ、HER2+近傍スコアの特徴から、p値0.014が得られた。
図39A~Cは、図38の表に列挙された3つの特徴のカプラン・マイヤー曲線を示す。図39Aは、TIL密度のカプラン・マイヤー曲線である。図39Bは、HER2+細胞密度のカプラン・マイヤー曲線である。39Cは、HER2+近傍スコアのカプラン・マイヤー曲線である。p値及びカプラン・マイヤー曲線によって示されるように、TIL密度特徴は、151名の乳癌患者全体に適用した場合、より長い及びより短い無増悪生存期間(PFS)を有する患者間の最良の層別化を提供する。HER2+近傍スコア特徴についての図39Cのカプラン・マイヤー曲線は、特徴bystander_pot_cut1_20についての図36のKaplan-Meier曲線と同様であり、これは、各HER2染色腫瘍細胞の半径20um内の染色されていないバイスタンダー細胞を考慮する。HER2+近傍スコア特徴は、25umの近傍半径を使用する。比較すると、図36の連続バイスタンダー特徴「bystander_pot_cut1_20」は、シグマ=20umの半径及びアルファ=2を使用し、所与の細胞自体を含む所与の細胞の周りの全ての腫瘍細胞の膜光学密度の加重和を決定する。距離依存重み付けは、「exp(-0.5*(dist/sigma)^2)」により算出される。
図40A、図40B及び図40Cは、151名の乳癌患者の中からHER2陽性と指定された72名の患者のみに適用した場合の、図38の表に列挙した3つの特徴のカプラン・マイヤー曲線を示す。ここでも、TIL密度特徴は、0.00095のp値で最良の層別化を達成した。HER2+細胞密度特徴のp値は0.092であり、HER2+近傍スコア特徴のp値は0.046であった。
図41A、図41B、及び図41Cは、151名の乳癌患者の中からHER2陰性と指定された65名の患者のみに適用した場合の、図38の表に列挙した3つの特徴のカプラン・マイヤー曲線を示す。しかしながら、HER2陰性コホートの場合、TIL密度の特徴は、より長い無増悪生存期間(PFS)とより短い無増悪生存期間との間の最悪の層別化を提供した。TIL密度カプラン・マイヤー曲線のp値は0.31である。HER2+近傍スコアは最良の層別化を達成し、p値は0.0061であった。HER2+細胞密度特徴によって達成された層別化は、0.0064のp-値でほぼ良好であった。HER2+近傍スコア特徴に関する図41Cのカプラン・マイヤー曲線は、図35のカプラン・マイヤー曲線と同様である。
図39~41のカプラン・マイヤー曲線の結果は、TILベースの特徴をHER2染色に基づく特徴と組み合わせて使用することにより、抗HER2 ADC治療に有利に応答する患者を同定するための図14の方法の精度が改善されることを示している。しかしながら、TILベースの特徴を使用しても、HER2陰性患者のサブグループの中から、抗HER2 ADC治療に対して良好な応答を示す可能性が高い患者を同定する精度は改善されない。これは、腫瘍浸潤リンパ球(TIL)が抗HER2 ADC治療に対する患者の即時の好ましい応答を達成するために必須ではないが、TILの存在が癌の全体的な進行を遅延させることを示唆する。
D.胃癌患者に基づく予測方法の検証。
トラスツズマブデルクステカン(DS-8201)を用いたJ101試験には、胃癌患者も含まれた。J101試験のデータセットの分析は、抗HER2 ADC治療に対する応答の質と従来のHER2 IHCスコアリングとの間に低い相関があることを示した。図14の方法のQCSスコアリングを使用した予測応答は、従来のHER2 IHCスコアリングの結果から有意に逸脱していた。
図42は、図14の方法を用いた32名のJ101胃癌患者のコホートのスコアリングの結果を示す。この実施形態におけるQCSスコアは、試料中の全ての腫瘍細胞の平均膜光学密度の中央値に基づく。単一細胞ADCスコアを集合するための統計的演算は「中央値」である。各単一細胞ADCスコアは、細胞膜におけるDAB光学密度の平均(average、mean)によって生成される。患者は、増加するQCSスコアに従って順序付けられる。図42は、0、1+、2+及び3+のHER2 IHCスコアがQCSスコアと良好に対応しないことを示す。図42の棒グラフはまた、32名の胃癌患者の臨床転帰を示しており、これを各棒グラフの上に完全奏効(CR)、部分奏効(PR)、安定状態(SD)、及び進行性疾患(PD)として列挙している。図42は、図34Aの乳癌患者と同様の胃癌患者についての結果を示す。
図43は、組織試料の単一細胞ADCスコアを集合することによって、抗HER2 ADC治療を受けた各胃癌患者の生存確率を示すスコアを生成するために図14の方法で使用される6つの特徴の表である。図43の表は、無増悪生存期間(PFS)に基づいて患者を層別化する際の特徴によって達成されたログランク検定p値を比較する。この表はまた、より長い生存患者(カプラン・マイヤー曲線の上の分岐における患者)のコホートに対する予測された客観的奏効率(ORR)を示す。ORRは、ORRに対する陽性的中率(PPV)として表される。陽性的中率(PPV)は、(観察されたORRによって)応答者として正しく予測された患者の数を全ての応答者で割ったものである。ORRは、応答カテゴリーCR、PR(ORR=真)及びSD、PD(ORR=偽)を使用してRECISTによって測定される。図43は、乳癌患者を層別化するために使用される図37~38の特徴と同様の、胃癌患者を層別化するために使用される特徴を示す。より長い生存患者及びより短い生存患者の最良の層別化を提供した特徴は、membOD_density_10(腫瘍面積の平方mm当たり10より大きい膜光学密度(membOD)を有する腫瘍細胞の密度)であり、これは上皮細胞の膜染色の光学密度に基づいていた。membOD_density_10特徴は、0.00594のp値で層別化を達成した。
図44は、無増悪生存期間(PFS)とは対照的に全生存期間(OS)に基づいて抗HER2 ADC治療を受けた患者を層別化するために使用されるモデルの7つのHER2染色に基づく特徴の表である。したがって、機能のリストは、PFSとは対照的に、OSに基づくp-値に対して最適化される。尖度及び歪度の特徴は、全生存率及び達成されたp-値0.0002に基づいて患者の最良の層別化を提供した。
図45は、図43の表に列挙された特徴membOD_density_10のカプラン・マイヤー曲線である。この特徴に基づいて、患者はQCS陽性であり、上皮において10を超える膜光学密度を有する腫瘍細胞の密度が810/mm^2を超える場合、HER2 ADC治療から利益を得る可能性がより高い。特徴membOD_density_10は、PFSに基づく32名の胃癌患者を、23名の患者のより長い生存コホート及び9名の患者のより短い生存コホートに分割し、p値は0.00594であった。
図46は、図44の表に列挙された特徴membOD_density_10のカプラン・マイヤー曲線である。特徴membOD_density_10は、OSに基づく32名の胃癌患者を、23名の患者のより長い生存コホート及び9名の患者のより短い生存コホートに分割し、p値は0.00731であった。
本発明は、説明のために特定の実施形態に関連して説明されたが、本発明はこれに限定されない。記載された実施形態の様々な変更、適合、及び様々な特徴の組合わせは、特許請求の範囲に記載された本発明の範囲から逸脱することなく実施することができる。

Claims (123)

  1. ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む抗体薬物複合体(ADC)に対する癌患者の応答を予測するための応答スコアを生成する方法であって、前記タンパク質は、ヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)であり、
    診断抗体に連結された色素を使用して組織試料を免疫組織化学的に染色することであって、前記診断抗体は、前記組織試料中の前記癌細胞上の前記タンパク質に結合する、染色することと、
    前記組織試料のデジタル画像を取得することと、
    前記デジタル画像において癌細胞を検出することと、
    各癌細胞について、前記癌細胞の膜及び細胞質における前記色素の染色強度に基づいて、並びに前記癌細胞に対して、所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び前記細胞質における前記色素の前記染色強度に基づいて、単一細胞ADCスコアを計算することと、
    統計的演算を用いて前記組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって前記応答スコアを生成することと、を含む、方法。
  2. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項1に記載の方法。
  3. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項1に記載の方法。
  4. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項3に記載の方法。
  5. 前記関数aklは、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項4に記載の方法。
  6. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項5に記載の方法。
  7. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、予め定義されたパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される、請求項1に記載の方法。
  8. 所定の閾値より高い応答スコアを有する患者が、前記ADCを含む治療に推奨される、請求項1に記載の方法。
  9. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
  10. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
  11. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
  12. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
  13. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
  14. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項1~13のいずれか一項に記載の方法。
  15. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項1~13のいずれか一項に記載の方法。
  16. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項1~15のいずれか一項に記載の方法。
  17. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項16に記載の方法。
  18. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項16に記載の方法。
  19. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項16に記載の方法。
  20. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項16に記載の方法。
  21. 抗体薬物複合体(ADC)で治療された癌患者の生存確率を示すスコアを生成する方法であって、
    診断抗体に連結された色素を用いて前記癌患者の組織試料を免疫組織化学的に染色することであって、前記ADCは、ADCペイロードと、癌細胞上のヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)タンパク質を標的とするADC抗体とを含み、前記診断抗体は、前記組織試料中の癌細胞上の前記HER2タンパク質に結合する、染色することと、
    前記組織試料のデジタル画像を取得することと、
    前記デジタル画像において癌細胞を検出することと、
    各癌細胞について、前記癌細胞の膜及び細胞質における前記色素の染色強度に基づいて、並びに前記癌細胞に対して、所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び前記細胞質における前記色素の前記染色強度に基づいて、単一細胞ADCスコアを計算することと、
    統計的演算を用いて前記組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって、前記癌患者の前記生存確率を示す前記スコアを生成することと、
    を含む、方法。
  22. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項21に記載の方法。
  23. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項21に記載の方法。
  24. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項23に記載の方法。
  25. 前記関数aklが、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項24に記載の方法。
  26. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項25に記載の方法。
  27. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、所定のパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される、請求項21に記載の方法。
  28. 前記癌患者の前記生存確率が所定の閾値を超えることを前記スコアが示す場合、前記ADCを含む治療が前記癌患者に推奨される、請求項21に記載の方法。
  29. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項21~28のいずれか一項に記載の方法。
  30. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項21~28のいずれか一項に記載の方法。
  31. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項21~28のいずれか一項に記載の方法。
  32. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項21~28のいずれか一項に記載の方法。
  33. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項21~28のいずれか一項に記載の方法。
  34. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項21~33のいずれか一項に記載の方法。
  35. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項21~33のいずれか一項に記載の方法。
  36. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項21~35のいずれか一項に記載の方法。
  37. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項36に記載の方法。
  38. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項36に記載の方法。
  39. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項36に記載の方法。
  40. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項36に記載の方法。
  41. 抗体薬物複合体(ADC)抗体と、ADCペイロードとを含み、そのADC抗体が癌細胞上のタンパク質を標的とする、抗体薬物複合体に対する癌患者の応答を予測する方法であって、
    診断抗体に連結された色素を使用して組織試料を免疫組織化学的に染色することであって、前記診断抗体が前記組織試料中の前記癌細胞上の前記タンパク質に結合し、前記タンパク質がヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である、染色することと、
    前記組織試料のデジタル画像を取得することと、
    前記デジタル画像において癌細胞を検出することと、
    各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算することと、
    統計的演算を用いて、前記組織試料の全ての単一細胞ADCスコアの集合に基づいて、前記ADCに対する前記癌患者の応答を予測することと、
    を含む、方法。
  42. 各癌細胞の前記単一細胞ADCスコアがまた、前記細胞質中の前記色素の染色強度並びに/或いは前記癌細胞への所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び/又は細胞質中の前記色素の染色強度に基づいて計算される、請求項41に記載の方法。
  43. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び/又は前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項42に記載の方法。
  44. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、且つ/又は各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項41に記載の方法。
  45. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項44に記載の方法。
  46. 前記関数aklは、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項45に記載の方法。
  47. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項46に記載の方法。
  48. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、所定のパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される演算によって行われる、請求項41に記載の方法。
  49. 前記癌患者の前記生存確率が所定の閾値を超えることを前記スコアが示す場合、前記ADCを含む治療が前記癌患者に推奨される、請求項41に記載の方法。
  50. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項41~49のいずれか一項に記載の方法。
  51. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項41~49のいずれか一項に記載の方法。
  52. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項41~49のいずれか一項に記載の方法。
  53. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項41~49のいずれか一項に記載の方法。
  54. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項41~49のいずれか一項に記載の方法。
  55. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項41~54のいずれか一項に記載の方法。
  56. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項41~54のいずれか一項に記載の方法。
  57. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項41~56のいずれか一項に記載の方法。
  58. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項57に記載の方法。
  59. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項57に記載の方法。
  60. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項57に記載の方法。
  61. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項57に記載の方法。
  62. ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む抗HER2抗体薬物複合体(ADC)による治療のための癌患者を同定する方法であって、
    診断抗体に連結された色素を使用して前記癌患者の組織試料を免疫組織化学的に染色することであって、前記診断抗体が前記組織試料中の前記癌細胞上の前記タンパク質に結合し、前記タンパク質がヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)である、染色することと、
    前記組織試料のデジタル画像を取得することと、
    前記デジタル画像において癌細胞を検出することと、
    各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算することと、
    統計的演算を用いて前記組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって応答スコアを生成することと、
    前記応答スコアが閾値を超える場合、前記ADCの投与から利益を得る可能性が高い者として前記癌患者を同定することと、
    を含む、方法。
  63. 前記有望な利益が、平均腫瘍サイズの減少である、請求項62に記載の方法。
  64. 各癌細胞の前記単一細胞ADCスコアがまた、前記細胞質中の前記色素の染色強度並びに/或いは前記癌細胞への所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び/又は細胞質中の前記色素の染色強度に基づいて計算される、請求項62に記載の方法。
  65. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び/又は前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項64に記載の方法。
  66. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、且つ/又は各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項62に記載の方法。
  67. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項66に記載の方法。
  68. 前記関数aklは、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項67に記載の方法。
  69. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項68に記載の方法。
  70. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、所定のパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される、請求項62に記載の方法。
  71. 所定の閾値より高い応答スコアを有する患者が、前記ADCを含む治療に推奨される、請求項62に記載の方法。
  72. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項62~71のいずれか一項に記載の方法。
  73. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項62~71のいずれか一項に記載の方法。
  74. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項62~71のいずれか一項に記載の方法。
  75. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項62~71のいずれか一項に記載の方法。
  76. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項62~71のいずれか一項に記載の方法。
  77. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項62~76のいずれか一項に記載の方法。
  78. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項62~76のいずれか一項に記載の方法。
  79. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項62~78のいずれか一項に記載の方法。
  80. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項79に記載の方法。
  81. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項79に記載の方法。
  82. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項79に記載の方法。
  83. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項79に記載の方法。
  84. 癌を治療する方法であって、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む抗体薬物複合体(ADC)を癌患者に投与することを含み、前記タンパク質がヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)であり、前記方法が、
    診断抗体に連結された色素を使用して前記癌患者の組織試料を免疫組織化学的に染色することであって、前記診断抗体は、前記組織試料中の前記癌細胞上の前記タンパク質に結合する、染色することと、
    前記組織試料のデジタル画像を取得することと、
    前記デジタル画像において癌細胞を検出することと、
    各癌細胞について、膜中の色素の染色強度に基づいて単一細胞ADCスコアを計算することと、
    統計的演算を用いて前記組織試料の全ての単一細胞ADCスコアを集合することによって治療スコアを生成することと、
    前記治療スコアが所定の閾値を超える場合、前記ADCを含む治療を前記癌患者に投与することと、
    を含む、方法。
  85. 各癌細胞の前記単一細胞ADCスコアがまた、前記細胞質中の前記色素の染色強度並びに/或いは前記癌細胞への所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び/又は細胞質中の前記色素の染色強度に基づいて計算される、請求項84に記載の方法。
  86. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び/又は前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項85に記載の方法。
  87. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、且つ/又は各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項84に記載の方法。
  88. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項87に記載の方法。
  89. 前記関数aklは、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項88に記載の方法。
  90. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項89に記載の方法。
  91. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、所定のパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される、請求項84に記載の方法。
  92. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項84~91のいずれか一項に記載の方法。
  93. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項84~91のいずれか一項に記載の方法。
  94. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項84~91のいずれか一項に記載の方法。
  95. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項84~91のいずれか一項に記載の方法。
  96. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項84~91のいずれか一項に記載の方法。
  97. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項84~96のいずれか一項に記載の方法。
  98. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項84~96のいずれか一項に記載の方法。
  99. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項84~98のいずれか一項に記載の方法。
  100. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項99に記載の方法。
  101. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項99に記載の方法。
  102. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項99に記載の方法。
  103. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項99に記載の方法。
  104. 癌を治療する方法であって、ADCペイロードと、癌細胞上のタンパク質を標的とするADC抗体とを含む抗体薬物複合体(ADC)を癌患者に投与することを含み、前記タンパク質がヒト上皮増殖因子受容体2(HER2)であり、前記方法が、
    応答スコアが所定の閾値を超える場合、前記ADCを含む治療を前記癌患者に投与することを含み、前記応答スコアは、統計的演算を使用して前記癌患者の組織試料の単一細胞ADCスコアを集合することによって生成され、各単一細胞ADCスコアは、膜中の色素の染色強度に基づいて各癌細胞について計算され、前記癌細胞は、前記癌患者の前記組織試料のデジタル画像において検出され、前記組織試料は、診断抗体に連結された前記色素を使用して免疫組織化学的に染色され、前記診断抗体は、前記組織試料中の前記癌細胞上の前記タンパク質に結合する、方法。
  105. 各癌細胞の前記単一細胞ADCスコアがまた、前記細胞質中の前記色素の染色強度及び/又は前記癌細胞への所定の距離より近い他の癌細胞の前記膜及び細胞質中の前記色素の前記染色強度に基づいて計算される、請求項104に記載の方法。
  106. 前記癌細胞の検出が、各癌細胞について、前記膜に属するピクセル及び/又は前記細胞質に属するピクセルを検出することを含む、請求項105に記載の方法。
  107. 各膜の前記染色強度が、前記膜のピクセルにおける褐色ジアミノベンジジン(DAB)シグナルの平均光学密度に基づいて計算され、且つ/又は各細胞質の前記染色強度が、前記細胞質のピクセルにおける前記褐色DABシグナルの前記平均光学密度に基づいて計算される、請求項105に記載の方法。
  108. 細胞iについての前記単一細胞ADCスコアが、
    |r-r|<d{a20(|r-r|)xODM +a11(|r-r|)xODMxODC+a02(|r-r|)xODC +a00(|r-r|)}による全ての細胞jの合計として計算され、
    式中、関数aklは、各細胞iに対する各細胞jの距離|r-r|に依存し、ODMは、細胞jの膜における褐色DABシグナルの光学密度であり、ODCは、細胞jの細胞質における褐色DABシグナルの光学密度である、
    請求項104に記載の方法。
  109. 前記関数aklは、前記細胞iに対する前記細胞jの前記距離|r-r|に、以下の関係:予め定義された定数係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2による、akl(|r-r|)=Aklx exp(-|r-r|/rnorm
    において依存する、請求項108に記載の方法。
  110. 前記係数Aoo、A1o、Ao1、A11、A20、Ao2、d及びrnormが、訓練患者のコホートの治療応答との前記応答スコアの前記相関を最適化することによって決定される、請求項109に記載の方法。
  111. 全ての単一細胞ADCスコアの前記集合が、平均を決定することと、中央値を決定することと、所定のパーセンテージを有する分位点を決定することと、からなる群から取得される、請求項104に記載の方法。
  112. 前記ADCがトラスツズマブデルクステカン(DS-8201)である、請求項104~111のいずれか一項に記載の方法。
  113. 前記ADC抗体がトラスツズマブである、請求項104~111のいずれか一項に記載の方法。
  114. 前記ADCペイロードがトポイソメラーゼI阻害剤である、請求項104~111のいずれか一項に記載の方法。
  115. 前記診断抗体が、Ventana抗HER2/neu 4B5である、請求項104~111のいずれか一項に記載の方法。
  116. 前記色素が3,3’-ジアミノベンジジン(DAB)である、請求項104~111のいずれか一項に記載の方法。
  117. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌、肺癌、食道癌、頭頸部癌、食道胃接合部癌、胆道癌、パジェット病、膵臓癌、卵巣癌、子宮癌肉腫、膀胱癌、前立腺癌、尿路上皮癌、消化管間質腫瘍、子宮頸部癌、扁平上皮癌、腹膜癌、肝臓癌、肝細胞癌、子宮内膜癌、腎臓癌、外陰癌、甲状腺癌、陰茎癌、白血病、悪性リンパ腫、形質細胞腫、骨髄腫、多形性神経膠芽腫、肉腫、骨肉腫、及び黒色腫からなる群から選択される癌を有する、請求項104~116のいずれか一項に記載の方法。
  118. 前記癌患者が、乳癌、胃癌、結腸直腸癌及び肺癌からなる群から選択される癌を有する、請求項104~116のいずれか一項に記載の方法。
  119. 前記ADCが、チオエーテル結合を介して薬物-リンカーにコンジュゲートされた抗HER2抗体であり、前記薬物-リンカーが、以下の式によって表され、
    式中、Aは前記抗HER2抗体との接続位置を表す、
    請求項104~118のいずれか一項に記載の方法。
  120. 前記ADCが、
    配列番号4で表されるアミノ酸配列からなるCDRH1、配列番号5で表されるアミノ酸配列からなるCDRH2、及び配列番号6で表されるアミノ酸配列からなるCDRH3を含む重鎖と、
    配列番号7で表されるアミノ酸配列からなるCDRL1、配列番号8のアミノ酸残基1~3からなるアミノ酸配列からなるCDRL2、及び配列番号9で表されるアミノ酸配列からなるCDRL3を含む軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項119に記載の方法。
  121. 前記ADCが、
    配列番号10で表されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域と、
    配列番号11で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項119に記載の方法。
  122. 前記ADCが、
    配列番号12で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
    配列番号3で表されるアミノ酸配列からなる軽鎖と、
    を含む抗HER2抗体を含む、請求項119に記載の方法。
  123. 前記ADCが、
    配列番号2で表されるアミノ酸配列からなる重鎖と、
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    を含む抗HER2抗体を含む、請求項119に記載の方法。
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