JP2023542980A - Foxp3促進モルホリノ - Google Patents

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Abstract

患者においてTregのFOXP3S発現を増加させるための組成物並びにin vitro及びin vivoの方法が、本明細書において開示される。これらの組成物及び方法は、がんの処置を含む、多様な目的のために有用である。【選択図】図9-1

Description

関連出願の相互参照
本出願は、その開示が本明細書に明確に組み込まれる、2020年9月25日に出願された米国特許仮出願第63/083,452号の優先権を主張する。
電子出願された情報の参照による組込み
その全体が参照により組み込まれるのは、添付して同時に提出され、以下:2021年9月7日に作成された、「343969_ST25.txt」と名付けられた3キロバイトのASCII(Text)ファイルとして特定される、コンピューター読み取り可能なヌクレオチド/アミノ酸配列リストである。
連邦政府による支援の記載
本発明は、国立衛生研究所により授与された、AI085046及びCA203737に基づく政府支援を受けてなされた。政府は、本発明において一定の権利を有する。
乳がんは、米国において女性で診断される2番目に多いがんである。現在、一生のうちにどこかで乳がんを発症する米国の女性の平均リスクは、約13%(8人中1人の女性)であり、したがって、2020年には約276,480人の浸潤性乳がんの新しい症例が診断されるであろう。研究は、乳がんの発生率が、人種及び性別にわたって軍人で顕著により高く、出産歴(初産の年齢及び避妊薬の使用)及び有害化学物質への暴露における、軍人の女性と一般集団との間の違いによる可能性が高いことを示した。処置の進歩、スクリーニングによる早期検出、及び意識の向上により、乳がん死亡率は数十年にわたり減少しているが、米国において毎年40,000人を超える患者が疾患により死亡している。
制御性T細胞(Treg)は、免疫系ホメオスタシスの維持に中心的な役割を果たし、免疫介在性炎症、例えば、自己免疫疾患、喘息、及びアレルギーを負に制御する。しかしながら、Tregは、慢性感染症及び腫瘍に対する有効な免疫も抑制する。8666人の乳がん患者を含む15の公表された研究の系統的レビュー及びメタ分析は、乳がんにおける腫瘍浸潤性Treg細胞の増加は、全体的な生存の低下、腫瘍悪性、及び転移を含む、臨床転帰不良と相関することを実証した。これに対し、転移性乳がんを有する患者における、実験的がんワクチンと併用する抗CD25抗体(ダクリズマブ)によるTregの枯渇は、Tregの明らかな及び持続的な減少、並びにCD8及びCD4T細胞のロバストなプライミング及びブーストをもたらす。その結果、この患者の少数のセットにおいて、全体的な生存が改善した。マウス乳がんモデルでは、Tregの枯渇又は下方制御は、抗腫瘍免疫及び腫瘍退縮の増強をもたらした。
FOXP3は、Tregの発生及び機能のマスター制御因子である。ヒト及びマウスの両方におけるFOXP3機能消失変異は、Tregの欠損による致死性の免疫調節不全、多腺性内分泌障害、腸疾患、及びX連鎖症候群(IPEX)を生じる。ヒトFOXP3遺伝子は、mRNA選択的スプライシングにより2つの主要なアイソフォーム-長い全長アイソフォーム(FOXP3L)及びエクソン2領域を欠損するより短いアイソフォーム(FOXP3S)をコードし、マウスFoxp3遺伝子は、Foxp3Lアイソフォームのみをコードする。FOXP3エクソン2領域(2番目のタンパク質コードエクソン;配列番号12)は、Th17分化の制御に重要であることが示されているが、2つのFOXP3アイソフォームは両方とも、強制的な過剰発現下の、in vitroでのTreg分化及び機能の指示に有効であった。しかしながら、CD4T細胞におけるFOXP3L及びFOXP3Sアイソフォームの異所性の過剰発現は、超生理学的な発現レベルを生じ得、in vivoでのTregの機能を表さないようであることが知られていることが多い。したがって、Tregの機能性及び生物学の決定において、これら2つの主要なアイソフォームがいかに異なるかの謎は残っている。
本明細書に開示される、CD4T細胞におけるFOXP3L及びFOXP3Sアイソフォームの相対発現は、がん進行に対する抵抗及びがん免疫療法の有効性に影響することが発見された。
ヒトFOXP3遺伝子は、mRNA選択的スプライシングにより2つの主要なアイソフォーム-長い全長アイソフォーム(FOXP3L)及びエクソン2領域を欠損する短いアイソフォーム(FOXP3S)をコードする。しかしながら、マウスFoxp3遺伝子は、Foxp3Lアイソフォームのみをコードする。したがって、FOXP3LはTreg分化及び機能を指示することができるが、FOXP3Sの役割は分かりにくいままである。出願人は、TregにおいてFOXP3Sのみを発現する遺伝的に改変したマウスモデルが、乳がんの進行に耐性を付与されたことを発見した。さらに、出願人は、FOXP3Sを発現するTregが不安定であり、ヘルパー様T細胞に分化転換することができ、したがって、抗腫瘍免疫の増強を提供することを見出した。さらに、乳がん組織にFOXP3Sが高発現する患者は、FOXP3Sが低発現の患者よりも良い全生存率を示した。
したがって、本開示の一実施形態により、方法は、TregにおけるFOXP3S発現を促進することにより抗腫瘍免疫を増強する、及びより具体的には、乳がんに対する抗腫瘍免疫を増強するために提供される。一実施形態では、方法は、モルホリノアンチセンスオリゴヌクレオチド(MO)を投与して、プレmRNAスプライシング中にエクソン2領域の包括をブロックし、FOXP3発現をFOXP3Sアイソフォームへとシフトするステップを含む。出願人は、この新規のMOが、前臨床マウス乳がんモデル並びに患者由来のex vivo乳がんモデル及び結腸直腸がんモデルにおける腫瘍増殖を効果的に抑制することを確かめた。
一実施形態により、本発明は、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を改変することにより、制御性T細胞(Treg)のヘルパー様T細胞への分化転換を誘導することを対象とする。より詳細には、一実施形態では、TregにおいてFOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度が増加され、場合により、FOXP3Sは改変されたTregに存在する優勢なFOXP3アイソフォームになる。一実施形態では、TregにおけるFOXP3Sの発現を増強するための方法、より詳細には、Tregを誘導してFOXP3L優勢発現からFOXP3S優勢発現にスイッチするための方法が提供される。一実施形態では、方法は、FOXP3S発現と比較してFOXP3Lの発現を減少させるステップ、及び場合によりFOXP3Sの発現を増強するステップを含む。
一実施形態により、FOXP3Lの発現は、FOXP3Lの発現を阻害又は防止する干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトするステップにより減少される。一実施形態では、トランスフェクションステップは、単離されたTreg又は腫瘍浸潤リンパ球において、in vitroで起こる。一実施形態では、干渉オリゴマーはFOXP3エクソン2を標的化し、Tregはin vitro又はin vivoのいずれかでトランスフェクトされる。一実施形態では、Tregは、エクソン2(FOXP3Lにのみ存在する)を標的化する干渉オリゴヌクレオチド及びFOXP3Sアイソフォームをコードする核酸の両方によってトランスフェクトされ、したがって、同時にFOXP3Lの産生を減少させ、FOXP3S産生を増加させる。一実施形態では、干渉オリゴマーは、以下のFOXP3領域TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)を標的化する核酸塩基の配列、若しくはTCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)と少なくとも80%、85%、95%又は99%の配列同一性を有する核酸塩基の配列、その相補鎖、又は配列番号1の10、15、18、20、23若しくは25bp又はそれより大きい連続する配列断片又はその相補鎖を含む。一実施形態では、干渉オリゴマーは、ホスホロジアミデートモルホリノである。一実施形態では、干渉オリゴマーは、GUAUGGACGGUGAAUGG(配列番号10)と少なくとも95%の配列同一性を有する配列を含む干渉RNAであり、場合により、干渉オリゴマーはホスホロジアミデートモルホリノである。
一実施形態により、Tregのヘルパー様T細胞への分化転換を誘導する方法は、がんを処置するために使用され得る。現在の乳がんの処置オプションは、乳がんのサブタイプ及びステージ応じた内分泌療法、化学療法、放射線療法及び外科手術からなる。免疫療法の近年の進歩は、多くのタイプのがんに新しい処置アルゴリズムをもたらし、乳がんを処置するために免疫療法を使用することに強い関心が生じている。通常、Tregは乳がん組織に多く浸潤し、したがって、抗腫瘍免疫を抑制する。しかしながら、出願人は、FOXP3Lと比較して、細胞内濃度が増強されたFOXP3Sを発現するように改変されたTregは、ヘルパー様T細胞に分化転換され、抗腫瘍免疫応答を促進することを発見した。
この発見に基づき、FOXP3標的化オリゴマー(例えば、FOX3のエクソン2を標的化するiRNA又はモルホリノオリゴ(MO))は、細胞のFOXP3Lの産生をFOXP3S発現へとシフトするために使用することができ、抗腫瘍活性を提供するそのようなアプローチの有効性は、前臨床マウスモデル及び患者由来のがんオルガノイドモデルにおいて検証されている。したがって、これらのFOXP3S促進MO、又は細胞内FOXP3S/FOXP3L比を変更する他のメカニズムは、乳がん処置、及び他の固形腫瘍の処置の新規の免疫療法として寄与するであろう。
一実施形態により、in vivoでのFOXP3エクソン2スキッピングを誘導するためにヒトモルホリノ配列又は他の干渉核酸が使用され、したがって干渉部分によって標的化された細胞においてヒトFOXP3LアイソフォームをFOXP3Sアイソフォームへとシフトする。一実施形態では、FOXP3エクソン2スキッピングを誘導するモルホリノは、TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)の配列、若しくはTCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)と少なくとも85%、90%、95%若しくは99%の配列同一性を有する核酸塩基の配列、又は配列番号1の少なくとも10、15、18、20、23若しくは25bp又はそれより大きい連続する核酸塩基を含む配列番号1の断片を含む。一実施形態では、FOXP3エクソン2スキッピングを誘導する干渉部分は、
CCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号3);
CCTGCCCATTCACCGTCCATACC(配列番号4);
TGCCCATTCACCGTCCATACCTG(配列番号5);
GCCCATTCACCGTCCATACCTGG(配列番号6);
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC(配列番号7);及び
TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)
からなる群から選択される配列を含む。一実施形態では、配列番号1~8の群から選択される、1つ又は複数のiRNA又はモルホリノを含む組成物を使用して、FOX3Lのエクソン2をスキップし、標的細胞においてFOXP3Lの細胞内産生をFOXP3S発現へとシフトする。
一実施形態により、ヒトモルホリノ配列又は他の干渉核酸が使用され、FOXP3Lの翻訳をブロックするか、又はエクソン2領域を含有するFOXP3 mRNAの分解を誘導し、したがって、干渉部分によって標的化された細胞においてFOXP3S/FOXP3L比を変更する。一実施形態では、モルホリノ又は他の干渉核酸は、配列番号12の少なくとも10bp若しくはそれより大きい連続する核酸塩基であるCTGCCCACACTGCCCCTAGTCATGGTGGCACCCTCCGGGGCACGGCTGGGCCCCTTGCCCCACTTACAGGCACTCCTCCAGGACAGGCCACATTTCATGCACCAG(配列番号12)の断片、又はその相補鎖を含み、配列番号12と少なくとも85%、90%、95%若しくは99%の配列同一性を有する。
図1A及び1B:FOXP3遺伝子のエクソン2内に欠失変異を有する患者におけるFOXP3Sアイソフォームの発現を示す図である。図1Aは、FOXP3遺伝子のエクソン2内に稀な欠失変異を有する患者が、自己免疫疾患を発症したことを示すデータを示す表である。図1Bでは、患者#2対健常患者におけるFOXP3発現のフロー解析が示される。フローサイトメトリー解析の例は、図1Aの患者#2から単離された末梢血単核細胞(PBMC)におけるCD4T細胞を示す。患者における制御性T細胞、即ちTreg(CD4T細胞の9.3%)は、FOXP3Sアイソフォームのみを発現した(pan-FOXP3抗体によって陽性に染色されるが、エクソン2特異的抗体染色には陰性である)。 図2A~2C:Foxp3Sマウス(Foxp3Sアイソフォームのみを発現する)が、自己免疫寛容を維持できず、抗二本鎖DNA(抗dsDNA)自己抗体を発生させたことを示す図である。図2Aは、WT(Foxp3L)及びFoxp3Sマウス(n=6)の血清中の抗dsDNA IgGのELISA測定を示すグラフである。図2Bは、Foxp3Sマウスの血清中の抗dsDNA IgGのタイムコースを示すグラフである。Foxp3Sマウスは、40日齢の時に抗dsDNA自己抗体を発生し始める。示した日齢でのWT及びFoxp3Sマウスからの血清を、1:500に希釈した(n=10匹のマウス)。図2Cは、固定したマウス3T3線維芽細胞で検出された血清抗核自己抗体(ANA)(血清の1:160希釈)の代表的な画像を提供する。蛍光顕微鏡は、Foxp3Sマウスからの血清が、マウス細胞の核を強く染色し(右下のパネル)、Foxp3SマウスがANAを生成することを示している。DAPI、即ち4’,6-ジアミジノ-2-フェニルインドールは、DNAに結合する蛍光色素であり、したがって、細胞の核を染色する。データは、≧2の独立した実験の1つからの平均±SEMを示す。二元配置分散分析(two way ANOVA)とBonferroniの事後検定により、**:p<0.01;***:p<0.001。 図3A~3C:Foxp3S Tregは不安定であることを示す図である。図3A:ヘテロ接合(Foxp3S/L)の雌マウスの胸腺及び二次リンパ器官におけるFoxp3S Tregの頻度は、Foxp3S Tregが不安定であることを示唆する。ヘテロ接合の雌マウスは、異なる対立遺伝子(Foxp3L及びFoxp3S)を持つ2つのX染色体を有するが、各Treg細胞は、ランダム型X染色体不活性化により1つの対立遺伝子のみを発現するが、両方ではない。したがって、ヘテロ接合の雌マウスには、Tregの2つの集団(Foxp3L Treg及びFoxp3S Treg)がある。約50%のTregが、Tregが発生する胸腺においてFoxp3Sアイソフォームを発現する一方で、末梢リンパ器官におけるFoxp3S Tregの頻度は20~30%に低減する。LN:リンパ節。データは、2つの独立した実験の1つからの平均±SD(n=3匹のマウス)を表す。図3B:系統追跡マウスを使用して、Foxp3L及びFoxp3S Tregの運命を追跡した。floxed STOPカセットのFoxp3-Cre媒介切除は、Foxp3発現を喪失した不安定なTreg細胞でさえも、YFPの構成的、遺伝性発現をもたらす。図3Cに示すデータは、Foxp3S Tregが、Foxp3L Tregと比較してFoxp3発現を喪失する傾向があることを示す(Dim又はNeg集団において)。したがって、図3Aに見られる末梢リンパ器官におけるFoxp3S Tregの頻度の大きな低減は、Foxp3S Tregの不安定性による可能性が最も高い。FL:Foxp3L Treg;FS:Foxp3S Treg。データは、両側t検定により、平均±SEM(n=3匹のマウス):p<0.05;***:p<0.001を表す。 図4A~4C:Foxp3S Tregは、B細胞が自己抗体を産生するのを助けることができるが、Foxp3L Tregはできないことを示す図である。Foxp3S及びFoxp3L Tregは精製され、示したようにT細胞受容体ノックアウト(Tcrb KO)マウスに移植された(図4A)。レシピエントマウスは、Treg細胞移植の3ヶ月後に屠殺された。図4Bは、Foxp3L(FL)、Foxp3S(FS)、又は両方(FL+FS)Tregを移植されたレシピエントマウスの血清中の抗dsDNA IgGのELISA定量を示す。図4Cは、固定したマウス3T3線維芽細胞で検出された、レシピエントマウスの血清中の抗核自己抗体の代表的な画像を提供する。Tcrb KOレシピエントマウス自体は、ヘルパーT細胞及びTregを持たないため、Foxp3S Treg移植したTcrb KOレシピエントマウスに見られる抗dsDNA及び抗核自己抗体シグナルは、Foxp3S Tregが、ヘルパーT細胞と類似した特徴である、B細胞が抗体を産生するのを助けることができるが、一方Foxp3L Tregはこの活性を示さないことを示す。さらに、FL+FS Tregの群において同時に移植したFoxp3L Tregは、Foxp3S Tregによって誘導される自己抗体産生を抑制する。データは、二元配置分散分析とBonferroniの事後検定により、平均±SEM(n=6匹のマウス):p<0.05;***:p<0.001を示す。FS:Foxp3S;FL:Foxp3L。 図5A~5D:Foxp3Sアイソフォームは、異なるタイプの腫瘍増殖からマウスを保護することを示すグラフである。野生型C57BL/6マウス(Foxp3Lアイソフォームのみを発現する)又はホモ接合のFoxp3Sマウス(Foxp3Sアイソフォームのみを発現する)に、様々なタイプのマウスがん細胞を接種し、腫瘍増殖をモニターした。グラフ(図5A~5D)は、1×10個のEO771トリプルネガティブ乳がん(TNBC)細胞(図5A)を注射したマウス;0.5×10個のルイス肺癌(LLC)細胞を注射したマウス(図5B);5×10個のB16メラノーマ細胞を注射したマウス(図5C);及び5×10個のMC38大腸腺癌細胞(図5D)を注射したマウスにおける腫瘍増殖を示す。二元配置分散分析と補正のためのTukeyの検定により、****,p<0.0001(群当たりn=5匹のマウス)。 図6A~6D:WT及びFoxp3Sマウス由来のEO771腫瘍におけるT細胞の機能的特徴付け。図6Aは、WT及びFoxp3Sマウス由来のEO771腫瘍における腫瘍浸潤リンパ球の分布を示す。単一細胞RNAシークエンシングを実施して、EO771細胞接種の10日後にC57BL/6 WT(n=3匹)又はFoxp3Sマウス(n=4匹)から回収した腫瘍浸潤リンパ球を解析した。二元配置分散分析と補正のためのTukeyの検定により、,p<0.05;***,p<0.001.****,p<0.0001。図6Bは、WT(斜線のカラム)又はFoxp3Sマウス由来のEO771 TNBC腫瘍におけるT細胞のクローン増殖の単一細胞T細胞受容体(TCR)プロファイリング解析を示す。図6C及び6Dは、WT(図6C)及びFoxp3Sマウス(図6D)におけるCD4 T細胞、CD8 T細胞、B細胞(α-CD19及びCD20)、及びNK細胞の抗体媒介性枯渇を示す。CD4 T細胞、B細胞、又はNK細胞を枯渇することは、腫瘍増殖を防止するFoxp3Sアイソフォームの能力に影響しない一方で、CD8 T細胞の枯渇は、腫瘍増殖をレスキューした。結果は、Foxp3S Tregの腫瘍抑制機能がCD8 T細胞に依存することを示唆している。 同上。 図7A及び7B トリプルネガティブ乳がん(TNBC)患者組織におけるFOXP3S mRNA発現は、全生存率及び抗腫瘍免疫と正の相関があることを示すグラフである。図7Aは、The Cancer Genome Atlas(TCGA)コホートのFOXP3S mRNAの高発現(>中央値)又は低発現(≦中央値)を示すTNBC患者のカプラン・マイヤー生存曲線(全生存率)を提示する。P値は、両側ログランク検定によって決定された。HR:ハザード比。図7Bは、ヒトTNBC腫瘍組織において計算された細胞傷害性リンパ球の割合とのFOXP3S mRNA発現の正の相関を示す。統計的有意性は、マン・ホイットニー・ウィルコクソン検定によって決定された。 図8A~8F:TNBC処置における腫瘍内Foxp3エクソン2標的化モルホリノ(E2 MO;配列AGCCTGCTCCGATTCCATACCTGAT 配列番号1を含む)の有効性を示す図である。図8Aは、実験デザインを示す。1×10個のEO771 TNBC細胞は、マウスの両側の第4乳房脂肪パッドへと同所性注射された。12、14、16及び18日目に、30nmol/マウスのE2 MO又は対照MOを、左側の腫瘍へと腫瘍内注射するが、右側の腫瘍は、注射せずに内部対照として使用した。図8B及び8Cは、処置した側(図8B)及び未処置の側(図8C)での乳がんの増殖のデータを提示する。E2 MOの腫瘍内注射は、左側(処置した側)の腫瘍増殖を顕著に抑制しただけでなく、右側(未処置の側)の腫瘍増殖も遅延させたことも示した。二元配置分散分析と補正のためのTukeyの検定により、***:p<0.001。図8D:腫瘍内E2 MO処置は、Foxp3L TregをFoxp3S Tregへと変換した。対照群では、Foxp3S Tregは見られないが、E2 MO注射した腫瘍における約20%のTregはFoxp3Sアイソフォームを発現し、未処置の側の腫瘍における約6%のTregもFoxp3Sアイソフォームを発現した。図8E及び8F:E2 MO注射した腫瘍における著しく高い割合のCD4(図8E)及びCD8(図8F)T細胞がIFN-ガンマを発現した。 同上。 図9A~9C:養子細胞移植(ACT)療法におけるマウスFoxp3エクソン2標的化モルホリノ(E2 MO;配列AGCCTGCTCCGATTCCATACCTGAT 配列番号11)を含む)の有効性を示すグラフである。全てのマウスに、下記の処置を受ける前に1×10個のEO771 TNBC細胞を接種した。図9A:ヘテロ接合Foxp3S/Lの雌マウスは、末梢において20~30%のTregのみがFoxp3Sアイソフォームを発現しているにもかかわらず、EO771腫瘍増殖に部分耐性を示した(図3B参照)。抗マウスPD-1(10mg/kg)抗体の腹腔内注射(腫瘍接種後12日目と24日目との間に週に2回)は、Foxp3S/Lマウスの抗腫瘍能をさらに増強するが、WTマウスの抗腫瘍能を増強しなかった。抗腫瘍免疫へのFoxp3S Tregの効果を、図9Bに示す。ドナーWT又はFoxp3Sマウスから単離された2×10個のTregは、12日目にレシピエントC57BL/6 WTマウスに腫瘍内注射された。図9Cは、E2 MOによって処置したT細胞の養子移植の効果が抗腫瘍免疫を増強したことを示す。腫瘍担持C57BL/6 CD45.2 WTマウスの流入領域リンパ節からの全T細胞を抽出し、7日間in vivoで1μMの対照MO(Ctrl)又はE2 MOによって増殖させた。BL/6 CD45.1マウスに1×10個のEO771を接種した。腫瘍接種後10日目に、BL/6 CD45.1マウスは5Gyの全身照射の後、マウス当たり2×10個の増殖したT細胞の養子移植を受けた。マウスに、T細胞移植後、最初の4日間毎日、4×10IU(国際単位)のIL-2を投与した。抗マウスPD-1(10mg/kg、養子細胞移植の2日後、及びその後、全部で3回投与のために週に2回投与した)は、さらに抗腫瘍免疫を増強した。二元配置分散分析と補正のためのTukeyの検定により、**,p<0.01;****,p<0.0001(群当たりn=5匹のマウス)。 同上。 図10A及び10B:ヒトTregへのヒトエクソン2標的化モルホリノの効果を示すグラフである。末梢血単核細胞は、健常ドナーから得て、3週間1μMのE2 MO(ヒトモルホリノオリゴTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)を含む)とともにin vitroで培養した。図10Aに示すように、モルホリノは、TregにおけるFOXP3発現を、エクソン2を欠損する短いアイソフォーム(FOXP3エクソン2が陰性)に効果的にシフトした。E2 MO処置は、TregにおけるCD25(Tregの発生、機能及び安定性に重要)及びCTLA-4(Tregの抑制分子)発現を大きく低減させるが、CD40L(ヘルパーT細胞上に発現された共刺激分子)発現は上方制御した。図10Bに示すように、E2 MO処置したTregは、20ng/mlのIL-12刺激に応答して、よりIFN-γ(パーセンテージ及び平均蛍光強度の増加)を発現する。これらのデータは、3週間E2 MO中で培養したヒトTregがヘルパー様T細胞(低抑制分子及び高共刺激分子)になり得ることを示唆している。 図11A~11H:ヒトエクソン2標的化モルホリノの存在下で増殖した自己TILによる患者由来乳がん及び大腸がんオルガノイド細胞の死滅の増強を示すグラフである。腫瘍浸潤リンパ球(TIL)は、FOXPSアイソフォーム発現を増強する、1μMのエクソン2標的化モルホリノ(ヒトモルホリノオリゴTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)を含むE2 MO)の存在又は非存在下で7日間in vitroで増殖させた。患者由来のオルガノイドは、単独で(TIL無し)、増殖した自己TILと(+TIL)、又はE2 MOの存在下で増殖した自己TILと(+MO TIL)のいずれかで培養した。試験した乳がん試料の結果は、図11A~11Dに示され、4つの試料のうち3つ:UH2103-31(図11B)、UH2011-16(図11C)、及びUH2105-32(図11D)が、E2 MO処置したT細胞による腫瘍オルガノイド細胞の死滅の増強を示した。試験した大腸がん細胞の結果は、図11E~11Hに示され、4つの試料のうち3つ:EH2103-02(図11F)、UH2103-37(図11G)、及びH2105-01(図11H)が、E2 MO処置したT細胞による腫瘍オルガノイド細胞の死滅の増強を示した。オルガノイドサイズは、Image Jソフトウェアを使用して、投影面積(mm)として測定し、異なる患者からの平均±SDとして表した。二元配置分散分析と補正のためのTukeyの検定により、,p<0.05;**,p<0.01;***,p<0.001;****,p<0.0001;n.s.、顕著ではない。 同上。
定義
本発明の記載及び請求において、以下の用語は、以下に記載した定義に従って使用されるであろう。
用語「約」は、本明細書で使用される場合、記載した値又は値の範囲より10%まで大きい若しくは小さいことを意味するが、任意の値又は値の範囲をこの広義にのみ限定することを意図しない。用語「約」によって先行される各値又は値の範囲は、記載した絶対値又は値の範囲の実施形態を包含することも意図する。
本明細書で使用される場合、用語「精製した」及び同様の用語は、本来の又は天然の環境での分子又は化合物と通常関連する夾雑物を実質的に含まない形態の分子又は化合物の単離に関する。本明細書で使用される場合、用語「精製した」は、完全な純度を必要とせず、むしろ相対的な定義と意図される。
用語「単離した」は、そのオリジナルの環境(例えば、自然発生である場合、自然環境)から、参照物質が除去されることを必要とする。例えば、生きた動物に存在する自然発生のポリヌクレオチドは単離されないが、自然システムにおいて一部又は全ての共存する物質から分離された、同じヌクレオチドは単離される。
組織ナノトランスフェクション(TNT)は、核酸配列及びタンパク質をナノスケールで細胞のサイトゾルへと送達することができる、エレクトロポレーションベースの技術である。より詳細には、TNTは、並置した組織細胞膜に穏やかにナノポレートし、電気泳動により積荷(例えば核酸又はタンパク質)を細胞に運ぶ、配置したナノチャンネルを通る高強度及び収束電界を使用する。
本明細書で使用される場合、「調節エレメント」又は「制御配列」は、宿主細胞タンパク質と相互作用して転写及び翻訳を実行する、エンハンサー、プロモーター、5’及び3’非翻訳領域を含む、機能遺伝子の非翻訳領域である。そのようなエレメントは、それらの強度及び特異性が多様であり得る。「真核生物の制御配列」は、真核細胞の宿主細胞タンパク質と相互作用して、哺乳動物細胞を含む真核細胞における転写及び翻訳を実行する、エンハンサー、プロモーター、5’及び3’非翻訳領域を含む、機能遺伝子の非翻訳領域である。
本明細書で使用される場合、「プロモーター」は、遺伝子の転写開始部位に関して、比較的固定された位置にある場合に機能するDNAの配列(1つ又は複数)である。「プロモーター」は、RNAポリメラーゼ及び転写因子の基本相互作用に必要なコアエレメントを含有し、上流エレメント及び応答エレメントを含有し得る。
本明細書で使用される場合、「エンハンサー」は、転写開始部位からの距離と無関係に機能するDNAの配列であり、転写単位の5‘又は3’のいずれかであり得る。さらに、エンハンサーは、イントロン内及びコード配列自体内であり得る。それらは、通常、10bp長と300bp長との間であり、それらはcisに機能する。エンハンサーは、プロモーターの近くで機能して転写を増加させる。プロモーターのように、エンハンサーも、転写の制御を媒介する応答エレメントを含有することが多い。エンハンサーは、発現の制御を決定することが多い。
用語「同一性」は、本明細書で使用される場合、2つ以上の配列間の類似性に関する。同一性は、同一の残基の数を残基の総数によって割り、結果に100を掛けてパーセンテージを得ることによって測定される。したがって、正確に同じ配列の2つのコピーは100%同一性を有するが、互いを比較してアミノ酸又はヌクレオチド欠失、付加、若しくは置換を有する2つの配列は同一性の程度が低い。当業者は、いくつかのコンピュータープログラム、例えば、BLAST(Basic Local Alignment Search Tool、Altschulら(1993) J. Mol. Biol. 215:403~410)などのアルゴリズムを用いるものが、配列同一性を決定するために利用可能であることを認識するであろう。
用語「ストリンジェントな条件」は、Sambrookら、1989、9.52~9.55で議論された特異的ハイブリダイゼーション手順による、第2の標的核酸(即ち、目的の特定の核酸配列)への第1の核酸のハイブリダイゼーションに関して機能的に定義される。Sambrookら、1989 9.47~9.52及び9.56~9.58においても参照。一実施形態では、ストリンジェントな条件は、約50℃~約70℃の温度で、約0.02M~約0.15M NaClを含む溶液を使用して第1及び第2の核酸のハイブリダイゼーションを実施した後、高ストリンジェンシー洗浄緩衝液による洗浄(0.2×SSC、0.1%SDS、65℃)を含む。
本明細書で使用される場合、用語「薬学的に許容される担体」は、任意の標準的な医薬担体、例えば、リン酸緩衝生理食塩水、水、エマルジョン、例えば水中油型又は油中水型エマルジョン、及び様々なタイプの湿潤剤を含む。用語は、米国連邦政府の規制当局によって認可されたか、又はヒトを含む、動物での使用のための米国薬局方に列挙される任意の薬剤も包含する。
本明細書で使用される場合、用語「処置する」は、特定の障害若しくは状態と関連する症状の軽減、及び/又は前記症状を防止若しくは除去することを含む。
本明細書で使用される場合、薬物の「有効」量又は「治療有効量」は、非毒性であるが、所望の効果を提供するのに十分な薬物を指す。「有効」である量は、対象によってか、又は対象内でも経時的に、個体の年齢及び健康状態、投与の様式等に応じて変わるであろう。したがって、正確な「有効量」を特定することはいつも可能なわけではない。しかしながら、任意の個々のケースにおける適切な「有効」量は、通常の実験を使用して、当業者に決定され得る。
本明細書で使用される場合、さらなる指定のない用語「患者」は、任意の温血の飼育脊椎動物(例えば、限定はされないが、家畜、ウマ、ネコ、イヌ及び他のペットを含む)及びヒトを包含することを意図する。
用語「担体」は、化合物又は組成物と組み合わされる場合、その意図される使用又は目的のための化合物又は組成物の調製、保存、投与、送達、有効性、選択性、又は任意の他の特徴を補助又は促進する化合物、組成物、物質、又は構造物を意味する。例えば、担体は、活性成分の任意の分解を最少にする、及び対象における任意の有害副作用を最少にするために選択され得る。
用語「阻害する」は、活性、応答、状態、疾患、又は任意の他の生物学的パラメーターの減少を規定する。これは、限定はされないが、活性、応答、状態、又は疾患の完全な除去を含み得る。これは、例えば、天然又は対照レベルと比較して、活性、応答、状態、又は疾患の10%低減も含み得る。したがって、低減は、天然又は対照レベルと比較して、10、20、30、40、50、60、70、80、90、100%、又は任意の量の間の低減であり得る。
用語「ベクター」又は「構築物」は、ベクター配列が連結された別の核酸を細胞へと輸送することができる核酸配列を指す。用語「発現ベクター」は、細胞による発現のために好適な形態(例えば、転写調節エレメントに連結される)の遺伝子構築物を含有する任意のベクター(例えば、プラスミド、コスミド又はファージ染色体)を含む。「プラスミド」及び「ベクター」は、プラスミドが、ベクターの一般に使用される形態であるため、交換可能に使用される。さらに、本発明は、等価な機能を果たす他のベクターを含むことを意図する。
用語「作動可能に連結された」は、別の核酸配列との核酸の機能的な関係を指す。プロモーター、エンハンサー、転写及び翻訳停止部位、並びに他のシグナル配列は、他の配列に作動可能に連結し得る核酸配列の例である。例えば、転写調節エレメントへのDNAの作動可能な連結は、そのようなDNAの転写が、DNAを特異的に認識、結合、及び転写するRNAポリメラーゼによって、プロモーターから開始されるような、DNAとプロモーターとの間の物理的及び機能的関係を指す。
本明細書で使用される場合、用語「トランスフェクション」又は「トランスフェクト」は、核酸配列、又はその模倣アナログが、真核細胞によって、細胞膜を通過して細胞質へと内部移行されるプロセスを規定する。トランスフェクションは、受動的な手段(例えば受容体媒介取り込み、細胞孔通過)及び物理的(例えば、エレクトロポレーション)、化学的(例えば、カチオン性脂質又はリン酸カルシウム)、又は分子改変(細胞送達又はin vivo安定性を増強する改変)メカニズムを含む外部アシスト手段を含み得る。
本明細書で使用される場合、「干渉オリゴマー」は、転写後遺伝子制御、例えばサイレンシング及びスプライシングに参加する任意の核酸オリゴヌクレオチド又はそのアナログである。干渉オリゴマーの例としては、限定はされないが、センス鎖及び/又はアンチセンス鎖で構成されるホスホロジアミデートモルホリノ、二本鎖RNA(dsRNA)、低分子干渉RNA(siRNA)、及びマイクロRNA(miRNA)が挙げられる。
本明細書で使用される場合、用語「ホスホロジアミデートモルホリノ」は、DNA/RNAのホスホジエステル骨格が、ホスホロジアミデート連結によって接続されたモルホリノ環の骨格と置換される、DNA/RNAアナログを指す。
本明細書で使用される場合、用語「FOXP3S促進モルホリノ」は、細胞への導入時に、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させるであろうホスホロジアミデートモルホリノを指す。一実施形態では、FOXP3S促進ホスホロジアミデートモルホリノは、FOXP3 mRNAからのFOXP3エクソン2の除外を標的化及び誘導し、したがって、FOXP3S発現を促進するオリゴヌクレオチドである。
本明細書で使用される場合、用語「分化転換」は、中間の多能性状態又は前駆細胞型を経由すること無く、ある成熟体細胞が、別の成熟体細胞へと形質転換される人工的なプロセスを規定する。
実施形態
ヒトFOXP3遺伝子は、mRNA選択的スプライシングにより2つの主要なアイソフォーム-長い完全長アイソフォーム(FOXP3L)及びエクソン2領域を欠損するより短いアイソフォーム(FOXP3S)をコードする。しかしながら、マウスFoxp3遺伝子は、Foxp3Lアイソフォームのみをコードする。したがって、FOXP3Lは、Treg発生及び機能を促進するが、FOXP3Sの役割は依然として分かりにくい。出願人は、TregにおいてFOXP3Sのみを発現する遺伝子改変マウスモデルが、乳がん及び大腸がんの進行に耐性を付与されたことを発見した。さらに、出願人は、FOXP3Sを発現するTregが不安定であり、ヘルパー様T細胞に分化転換することができ、したがって抗腫瘍免疫の増強を提供することを見出した。さらに、腫瘍組織により高いFOXP3S転写物を有する乳がん患者は、より良好な全生存率を示した。
したがって、本開示の一実施形態により、方法は、TregにおけるFOXP3S発現を促進することにより抗腫瘍免疫を増強し、より具体的には、乳がんに対する抗腫瘍免疫を増強するために提供される。一実施形態では、方法は、モルホリノアンチセンスオリゴヌクレオチド(MO)を投与して、プレmRNAスプライシング中にエクソン2領域の包括をブロックし、FOXP3発現をFOXP3Sアイソフォームへとシフトするステップを含む。
一実施形態により、本開示は、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を改変することにより、制御性T細胞(Treg)のヘルパー様T細胞への分化転換を誘導することを対象にする。より詳細には、本明細書に開示されるように、方法は、制御性T細胞(Treg)を誘導してFOXP3L産生からFOXP3S産生へとシフトするために提供される。一実施形態では、方法は、FOXP3S発現と比較してFOXP3Lアイソフォームの発現を減少させるステップを含む。一実施形態では、FOXP3Lアイソフォームの発現は、前記TregにおけるFOXP3の発現をFOXP3Sアイソフォームへとシフトするのに有効な量で、FOXP3S促進干渉オリゴマーによって前記Tregをトランスフェクトすることによって減少される。
Tregを誘導してFOXP3の発現をFOXP3Sアイソフォームへとシフトする方法は、in vitro又はin vivoで実施され得る。一実施形態では、制御性T細胞(Treg)又は腫瘍浸潤リンパ球は、患者から回収され、in vitroでヘルパー様T細胞への分化転換を誘導され(FOXP3L産生と比較して細胞のFOXP3S産生を増加させることにより)、次いで患者に戻された。一実施形態では、制御性T細胞(Treg)は患者から回収され、干渉オリゴマーが細胞によって取り込まれ、FOXP3発現を阻害及び/又はサイレンシングする条件下で、FOXP3を標的化する1つ又は複数の干渉オリゴマーと接触される。モルホリノ又はiRNAによるFOXP3Lアイソフォーム発現のサイレンシング又は阻害は、腫瘍反応性Tregがヘルパー様T細胞になるのを誘導するであろう。そのようなin vitroで誘導したヘルパーT細胞は、単独で又は、例えば、in vitroで増殖させた腫瘍浸潤リンパ球との共投与を含む、他の標準的な抗がん療法と併せてのいずれかで患者に再導入され得る。
一実施形態では、Tregは、免疫療法効果の増強の必要がある患者において、FOXP3のエクソン2を標的化する核酸配列、又は核酸配列アナログによりin vivoでトランスフェクトされる。干渉オリゴマーは、Tregがエクソン2標的化干渉オリゴマーを取り込み、場合により、干渉オリゴマーと接触したTregにおいてFOXP3LからFOXP3S発現へと発現をシフトすることにより、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させる条件下で、in vivoでTregと接触して置かれ得る。一実施形態では、FOXP3Sのエクソン2を標的化するために好適なオリゴマーは、配列CCATTCACCGTCCATAC(配列番号2)又はCCAUUCACCGUCCAUAC(配列番号9)又は配列番号2若しくは配列番号9と少なくとも90%、95%若しくは99%の配列同一性を有する配列に特異的に結合する配列を含む。一実施形態では、FOXP3のエクソン2を標的化するのに好適な干渉オリゴマーは、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で配列CCATTCACCGTCCATAC(配列番号2)又はCCAUUCACCGUCCAUAC(配列番号9)に結合する配列を含む。一実施形態により、FOXP3のエクソン2を除外するのに好適な干渉オリゴマーは、
CCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号3)、
CCTGCCCATTCACCGTCCATACC(配列番号4)、
TGCCCATTCACCGTCCATACCTG(配列番号5)、
GCCCATTCACCGTCCATACCTGG(配列番号6)、
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC(配列番号7)、及び
TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)
の群から選択される配列に結合する配列を含む。
一実施形態では、FOXP3Lの発現と比較して、TregにおいてFOXP3Sの発現を増強するための方法、より詳細には、Tregを誘導してFOXP3Lの発現からFOXP3Sの優勢発現へとスイッチするための方法が提供される。一実施形態では、方法は、FOXP3S発現と比較してFOXP3Lの発現を減少させ、場合により、FOXP3Sの発現を増強するステップを含む。一実施形態では、FOXP3S発現と比較してFOXP3Lの発現を減少させるステップは、FOXP3Lの発現に特異的に干渉する干渉オリゴマーをTregの細胞質へと導入することによって、場合により、エクソン2の配列を標的化することによって実施される。一実施形態では、FOXP3Sの発現は、場合によりFOXP3L発現と干渉することと併せて、場合によりTregへとFOXP3Sをコードする核酸配列を導入することにより、増強される。
一実施形態により、FOXP3エクソン2を標的化し、
i)核酸塩基TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)若しくはその完全な相補鎖、又は
ii)TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTGと少なくとも90%、95%若しくは99%の配列同一性を有する核酸塩基の配列若しくはその完全な相補鎖、又は
iii)配列番号1の連続する10、15、17、20若しくは25bp又はそれ以上の断片配列若しくはその相補鎖、又は
iv)i)、ii)又はiii)の任意の組合せ
に結合する配列を含む、干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることにより、FOXP3Lの発現は減少され、FOXP3Sの発現は増加される。一実施形態では、干渉オリゴマーは、例えば低分子干渉RNA(siRNA)、又はマイクロRNA(miRNA)を含む、例えば干渉RNAを含む、オリゴヌクレオチドである。一実施形態では、干渉オリゴマーは、天然DNAのホスホジエステル骨格が非イオン性模倣物によって置き換えられた、改変DNAである。一実施形態では、干渉オリゴマーは、ホスホロジアミデートモルホリノである。一実施形態では、干渉オリゴマーは、GUAUGGACGGUGAAUGGと少なくとも95%の配列同一性を有する配列又はその相補鎖を含む干渉RNAであり、場合により、干渉オリゴマーは、RNA又はホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーとして形成された核酸塩基GUAUGGACGGUGAAUGGを含む。
一実施形態により、FOXP3Lの発現は、FOXP3エクソン2を標的化し、
i)核酸塩基
CTGCCCACACTGCCCCTAGTCATGGTGGCACCCTCCGGGGCACGGCTGGGCCCCTTGCCCCACTTACAGGCACTCCTCCAGGACAGGCCACATTTCATGCACCAG(配列番号12)若しくはその完全な相補鎖、又は
ii)連続する10、15、17、20若しくは25bp若しくはそれ以上の配列番号12の断片配列又はその相補鎖
に結合する配列を含む、干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることによって、減少される。一実施形態では、干渉オリゴマーは、例えば低分子干渉RNA(siRNA)、又はマイクロRNA(miRNA)を含む、例えば干渉RNAを含む、オリゴヌクレオチドである。一実施形態では、干渉オリゴマーは、ホスホロジアミデートモルホリノである。
一実施形態により、Tregは、がんを処置する治療用アプローチとして、ヘルパー様T細胞へと分化転換を誘導される。現在の乳がんの処置オプションは、乳がんのサブタイプ及びステージに応じて、内分泌療法、化学療法、放射線療法及び外科手術からなる。免疫療法の近年の進歩は、多くのタイプのがんに新しい処置アルゴリズムをもたらし、乳がんを処置するために免疫療法を使用することに強い関心が生じている。通常、Tregは乳がん組織に多く浸潤し、したがって、抗腫瘍免疫を抑制する。しかしながら、出願人は、FOXP3Sを発現するTregが、ヘルパー様T細胞に分化転換され、したがって抗腫瘍免疫応答を促進することを発見した。
この発見に基づき、FOXP3標的化オリゴマー(例えば、iRNA又はモルホリノオリゴ(MO))は、細胞のFOXP3Lの産生をFOXP3S発現へとシフトするために使用することができ、抗腫瘍活性を提供するそのようなアプローチの有効性は、前臨床マウスモデル及び患者由来のがんのオルガノイドモデルにおいて立証されている。したがって、これらのFOXP3S促進MO、又は細胞内FOXP3S/FOXP3L比を変更する他のメカニズムは、乳がん処置、及び他の固形腫瘍の処置のための新規免疫療法として機能するであろう。
一実施形態では、患者においてがんを処置する方法は、FOXP3Lを発現する制御性T細胞と比較して、FOXP3Sを発現する制御性T細胞の相対濃度を増加させるステップを含む。一実施形態により、固形腫瘍を有する患者を処置する方法であって、FOXP3Sを発現するTregの数は、前記患者において増加され、場合により、FOXP3Sを発現するTregの数の増加は、腫瘍の部位に局在する、方法が提供される。一実施形態では、FOXP3Sを発現するTregの数は、前記患者へのFOXP3Sを発現するTregの導入により増加される。一実施形態では、T細胞が患者から回収され、T細胞が患者へと再導入される前に、T細胞は処理され、制御性T細胞を誘導してFOXP3LアイソフォームからFOXP3S発現へとシフトさせる。一実施形態では、in vitroで誘導された細胞は、患者へと静脈内に注入されるか、又は固形腫瘍を持つ組織へと注入される。
一実施形態では、乳がんを含む、固形腫瘍を処置する方法は、前記TregにおいてFOXP3S発現を増加させるのに有効な量で干渉オリゴマーによって前記Tregをトランスフェクトすることによって、制御性T細胞(Treg)が腫瘍反応性ヘルパー様T細胞へと分化するのを誘導するステップを含む。一実施形態では、Tregは、FOXP3L発現と干渉する1つ又は複数の干渉オリゴマー及び/又はFOXP3Sアイソフォームをコードする核酸配列によってトランスフェクトされる。一実施形態では、Tregは、FOXP3のエクソン2を標的化する干渉オリゴマーによってトランスフェクトされる。一実施形態では、Tregは、例えば組織ナノトランスフェクションを含む、標準的な技術を使用してin vivoでトランスフェクトされる。一実施形態では、干渉オリゴマーは、Tregのサイトゾルへと導入され、オリゴマーはFOXP3S促進モルホリノである。
一実施形態では、Tregのヘルパー様T細胞への分化転換を誘導することによりがんを処置する方法は、他の公知の免疫学的又は他のがん処置療法と併せて実施される。一実施形態では、本明細書に開示のがんを処置する方法は、前記患者に、免疫チェックポイント遮断抗体を投与するステップをさらに含む。
さらなる実施形態
実施形態1により、制御性T細胞(Treg)活性を変更する方法であって、前記TregにおいてFOXP3アイソフォーム、FOXP3L及びFOXP3Sの細胞内濃度を改変するステップを含み、FOXP3Sアイソフォームの量がFOXP3Lアイソフォームと比較して増加される、方法が提供される。
実施形態2により、FOXP3Lを標的化する干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることにより、場合によりFOXP3のエクソン2を除くことにより、FOXP3Sと比較してFOXP3Lの発現が阻害される、実施形態1の方法が提供される。
実施形態3により、FOXP3Sの発現が、FOXP3Sアイソフォームをコードする核酸によってTregをトランスフェクトすることにより、FOXP3Lと比較して増強される、実施形態1又は2の方法が提供される。
実施形態4により、単離したTregのヘルパー様T細胞への分化転換を誘導するのに十分な量の前記干渉オリゴマーによって前記Tregをトランスフェクトする、実施形態1~3のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態5により、FOXP3Lアイソフォームの相対発現が、
i)配列番号1と少なくとも85%の配列同一性を有する核酸塩基配列、又は
ii)配列番号1の少なくとも連続する10核酸塩基断片;又は
iii)i)若しくはii)の相補鎖
を含むFOXP3L標的化干渉オリゴマーによって前記Tregをトランスフェクトすることにより減少される、実施形態1~4のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態6により、前記干渉オリゴマーが、TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)の核酸塩基配列、又はその相補鎖を含む、実施形態1~5のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態6.5により、FOXP3Lの発現が、FOXP3エクソン2を標的化し、
i)核酸塩基
CTGCCCACACTGCCCCTAGTCATGGTGGCACCCTCCGGGGCACGGCTGGGCCCCTTGCCCCACTTACAGGCACTCCTCCAGGACAGGCCACATTTCATGCACCAG(配列番号12)若しくはその完全な相補鎖、又は
ii)連続する10、15、17、20若しくは25bp若しくはそれ以上の配列番号12の断片配列又はその相補鎖
に結合する配列を含む、干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることによって減少され、場合により、干渉オリゴマーが、例えば低分子干渉RNA(siRNA)、又はマイクロRNA(miRNA)を含む、例えば干渉RNAを含むオリゴヌクレオチドであり、場合により、干渉オリゴマーが、ホスホロジアミデートモルホリノである、実施形態1~6のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態7により、FOXP3Lアイソフォームの相対発現が、CCATTCACCGTCCATAC(配列番号2)又はCCAUUCACCGUCCAUAC(配列番号9)を含む配列に特異的に結合するFOXP3L標的化干渉オリゴマーによって前記Tregをトランスフェクトすることによって減少される、実施形態1~6.5のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態8により、干渉オリゴマーが
CCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号2)、
CCTGCCCATTCACCGTCCATACC(配列番号4)、
TGCCCATTCACCGTCCATACCTG(配列番号5)、
GCCCATTCACCGTCCATACCTGG(配列番号6)、
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC(配列番号7)
TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)及び
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)、又はそのRNAカウンターパート
からなる群から選択される配列に特異的に結合する、実施形態1~7のいずれか1つの方法
が提供される。
実施形態9により、干渉オリゴマーが、GUAUGGACGGUGAAUGG(配列番号10)と少なくとも95%の配列同一性を有する配列を含む干渉RNAである、実施形態1~8のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態10により、前記干渉オリゴマーが、ホスホロジアミデートモルホリノである、実施形態1~9のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態11により、FOXP3Sアイソフォームをコードする遺伝子によって前記Tregをトランスフェクトするステップをさらに含む、実施形態1~10のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態12により、制御性T細胞(Treg)において、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させるステップを含む、患者においてがんを処置する方法が提供される。
実施形態13により、FOXP3Sの相対濃度の増加が、前記単離したTregにおいてFOXP3を標的化する干渉オリゴマーによってin vitroで単離したTregをトランスフェクトすること;及び前記トランスフェクトしたTregを前記患者に再導入することによって達成される、がんを処置する方法が提供される。
実施形態14により、前記TregにおいてFOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させるのに有効な量で、干渉オリゴマーによってin vivoで制御性T細胞(Treg)がトランスフェクトされる、がんを処置する方法が提供される。
実施形態15により、干渉オリゴマーが、FOXP3S促進モルホリノである、実施形態12又は14の方法が提供される。
実施形態16により、干渉オリゴマーが
CCATTCACCGTCCATACCTGGTG
CCTGCCCATTCACCGTCCATACC
TGCCCATTCACCGTCCATACCTG
GCCCATTCACCGTCCATACCTGG
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC
TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT及び
TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG
からなる群から選択される核酸塩基の配列を含む、実施形態1~15のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態17により、前記干渉オリゴマーがホスホロジアミデートモルホリノであり、場合により、干渉オリゴマーがiRNAである、実施形態12~16のいずれか1つの方法が提供される。
実施形態18により、FOXP3Sアイソフォームをコードする遺伝子によって前記Tregをトランスフェクトするステップをさらに含む、実施形態1~17のいずれか1つに記載の方法が提供される。
実施例1
本明細書に開示されるように、本出願人により、FOXP3のエクソン2に欠失変異を持つとして4人の患者が同定された(図1A)。これらの変異は、エクソン2を含有するmRNAにフレームシフトをもたらし、したがって、FOXP3Lのアミノ酸配列を変更及びトランケートした。しかしながら、選択的にスプライスされたFOXP3Sアイソフォーム-変異エクソン2を除く-は、インタクトであると予測される。2つの抗FOXP3抗体-pan-FOXP3抗体(クローン259D)及びエクソン2特異的抗体(クローン150D)による、患者#3からの末梢血単核細胞(PBMC)の染色は、患者の9.3%のCD4T細胞がpan-FOXP3に陽性に染色されるが、エクソン2特異的抗体には陰性であることが示され、FOXP3Sアイソフォームの発現が示された(図1B)。健常対照では、FOXP3S及びFOXP3Lは、所与のTreg細胞において選択的スプライシングにより共発現され、したがって、両抗体に陽性に染色された(図1B)。近年の研究と一致して、本発明者らのデータは、FOXP3Lアイソフォームが無く、FOXP3Sアイソフォーム単独では、自己寛容の維持に不十分であり、自己免疫をもたらすことを実証した。
2つのFOXP3アイソフォームの機能差を研究するため、本発明者らは、エクソン2を欠損するFoxp3の短いアイソフォームをコードする、マウスFoxp3遺伝子(Foxp3S)のエクソン2を欠失させたが、イントロン調節エレメントはインタクトなままにした。Foxp3Sマウスは、胸腺細胞及び胸腺のTreg発生に影響せず、生存可能であり、形態学的に正常であった。Foxp3Lアイソフォームのみを発現するWTマウスと比較して、Foxp3Sマウスは、約40日齢(図2B)で抗dsDNA IgGを発生した(図2A)。2ヶ月齢のFoxp3Sマウスからの血清は、マウス3T3細胞の核を強く染色し(図2C)、抗核自己抗体(ANA)の存在を示している。これらのマウスは、FOXP3Sアイソフォームのみを発現する患者の表現型(図1A)に似た湿疹及び腎障害も発症した(データは示さない)。
Foxp3Sマウスは、自己寛容を維持できないため、本発明者らは、Foxp3Sアイソフォームのみを発現するTregが、エフェクターヘルパーTを抑制する能力を欠損しているか疑った。驚いたことに、in vitro抑制アッセイでは、Foxp3S Treg及びFoxp3L Tregは、十分に等しくレスポンダーCD4T細胞の増殖を抑制した(データは示さない)。本発明者らは、自己免疫疾患の兆候を示さない、ヘテロ接合のFoxp3エクソン2欠失(Foxp3S/L)雌マウスのTregを調べた。無作為X染色体不活性化により、これらのマウスは、Foxp3Sアイソフォーム又はFoxp3Lアイソフォームのいずれかを発現するが、両方ではないTregの2つの集団を有する。Foxp3S/L雌マウスの胸腺における約50%のTregがFoxp3Sアイソフォームを発現したが、その頻度は、約20%まで大きく低減した(図3A)。末梢におけるそのようなFOXP3S Treg頻度の低減は、WT FOXP3対立遺伝子及びエクソン2領域内の欠失変異(c.305delT)によりFOXP3Sアイソフォームのみをコードする他のFOXP3対立遺伝子を持つ女性においても観察された(公開されたデータ)。このヘテロ接合の雌は、50%というよりむしろ、17%のFOXP3Sアイソフォームのみを発現する循環Tregを有した。
末梢において頻度が大いに低減したことから(図3A)、本発明者らは、Foxp3S Tregが不安定であるという仮説を立てた。この仮説を試験するため、本発明者らは、TG:Foxp3GFP-Cre;Rosa26LSL-YFPマウスをFoxp3L(WT)又はFoxp3Sマウスと交雑させ、系統追跡マウス株を作製した(図3B)。本発明者らは、著しく多くのFoxp3S Tregが、Foxp3L Treg(図3C)よりも、Foxp3発現(YFPFoxp3Dim及びYFPFox3)を下方制御し、Foxp3S Tregの不安定性を示している。
胸腺由来Tregが自己反応性TCRを発現するという事実は、Foxp3S Tregが、Foxp3発現の欠損時に自己反応性エフェクターになり、自己免疫をもたらす可能性を示唆している。この仮説を試験するため、本発明者らは、図4Aに示すように、精製したFoxp3S及び/又はFoxp3L Tregを、Tcrb欠損レシピエントマウスに移植した。細胞移植の3ヶ月後、Foxp3S Tregを受けたレシピエントマウスは、抗dsDNA IgG自己抗体(図4B)及び抗核自己抗体(図4C)を発生した。Foxp3S Tregを受けたレシピエントマウスは、Foxp3L Treg又は混合Tregを受けたものよりも濾胞性ヘルパーT細胞及びGC B細胞を著しく増加した。レシピエントTcrb欠損マウスは、αβT細胞を持たないため、Foxp3S Tregを受けたマウスに見られるTfh細胞は、養子移植したTreg由来であり、自己反応性Tfh細胞へと分化転換するFoxp3S Tregの能力を示している。
Foxp3S TregがヘルパーT細胞に分化し、自己反応性免疫応答を媒介し得るという本発明者らのデータ(図4A~4C)は、Foxp3Sマウスが腫瘍進行に耐性を付与し得るという仮説をもたらした。0.5×10個のEO771乳がん細胞(マウストリプルネガティブ乳がん細胞株)は、WT及びFoxp3S雌マウスの第4乳房脂肪パッドへと同所性注射された。全てのWTマウスが、がん細胞注射の17日後に顕著な腫瘍増殖(平均=200mm)を示した一方で、Foxp3Sマウスは、初めは、およそ20~30mmの小さい塊を発生し、次いで退行又は消失した(図5A)。このデータは、Foxp3Sアイソフォームが、EO771腫瘍増殖に対して抗腫瘍免疫を促進することを強く示唆している。同様に、本発明者らは、ルイス肺癌(LLC)(図5B)、B16メラノーマ(図5C)及びMC38大腸腺癌(図5D)の腫瘍増殖を比較し、これら全ての腫瘍増殖がWTマウスにおいてよりもFoxp3Sマウスにおいて著しく遅いことを見出した。
本発明者らは、単一細胞RNAシークエンシングを実施し、WT及びFoxp3SマウスにおいてEO771腫瘍に浸潤する免疫細胞の表現型を決定した。本発明者らは、腫瘍に浸潤する多くのFoxp3S Tregが、ヘルパーT2様表現型を示したが、多くのFoxp3L TregがTreg表現型のままであったことを見出した(図6A)。また、WTマウスにおけるものよりもFoxp3Sマウスにおいて、腫瘍に浸潤するエフェクターCD8細胞傷害性細胞が著しく多かった(図6A)。T細胞受容体(TCR)プロファイリング解析は、WTマウス由来よりもFoxp3Sマウス由来のEO771 TNBC腫瘍においてCD4及びCD8 T細胞の両方のより大きなクローン増殖を実証した(図6B)。Foxp3Sマウスにおいて見られる抗腫瘍免疫の増強は、Foxp3Sマウスにおいて、CD8 T細胞の抗体媒介性枯渇がEO771 TNBC増殖を回復するため、CD8細胞傷害性T細胞に補助を提供するFoxp3S Tregの能力によるようである(図6C及び6D)。
本発明者らは、次に、The Cancer Genome Atlas(TCGA)からの乳がん組織のトランスクリプトームデータセットを解析し、ヒト乳がんにおけるFOXP3Sアイソフォームの臨床的関連性を評価した。トリプルネガティブ乳がん(TNBC)症例では、乳がん組織におけるFOXP3S発現は、より良好な全生存率と相関した(図7A)。このデータセットを使用して、本発明者らは、CIBERSORT-汎用コンピューター法により、TNBC組織に浸潤する免疫細胞の組成を推定した。本発明者らの単一細胞RNAシークエンシング結果(図6A)と一致して、FOXP3Sの高発現は、腫瘍組織に浸潤するCD8及び細胞傷害性リンパ球の増加と正に相関した(図7B)。
実施例2
トリプルネガティブ乳がん処置において、Foxp3アイソフォームをシフトするモルホリノの有効性をマウスモデルで試験した。1×10個のEO771 TNBC細胞は、野生型マウスの両側の第4乳房脂肪パッドへと同所性注射された。12、14、16及び18日目に、30nmol/マウスのFoxp3アイソフォームをシフトするモルホリノ(E2 MO)又は対照MOを左側の腫瘍に腫瘍内注射し、右側の腫瘍は内部対照として残した(図8A)。E2 MOの腫瘍内注射は、左側の処置した腫瘍の増殖を著しく抑制しただけでなく(図8B)、右側の未処置の腫瘍の増殖も遅延させた(図8C)。E2 MO処置は、Foxp3L TregをFoxp3S Tregに変換した。対照MOを受けた腫瘍ではFocp3S Tregは見られなかったが(データは示さない)、E2 MOを注射した腫瘍では、約30%のTregがFoxp3Sアイソフォームを発現した(図8D)。さらに、同じマウスの右側の未処置の腫瘍では、約6%のFoxp3S Tregが腫瘍内に見られた(図8D)。腫瘍浸潤リンパ球の免疫表現型検査は、E2 MO注射した腫瘍において著しく高い割合のCD4(図8E)及びCD8(図8F)T細胞がIFN-γを発現したことを明らかにした。
E2 MOの腫瘍内注射からの結果(図8)は、Foxp3発現のFoxp3Sアイソフォームへのシフトは、抗腫瘍免疫を促進するのに100%に達する必要はないことを示唆している。これを確かめるため、本発明者らは、EO771 TNBC細胞を、末梢において20~30%のTregがFoxp3Sアイソフォームを発現するFoxp3S/Lヘテロ接合マウスに接種した(図3A)。実際、Foxp3S/Lマウスの腫瘍は、WTマウスにおけるよりも著しく遅く増殖した(図9A)。さらに、腫瘍を担持するFoxp3S/Lマウスへの抗PD-1抗体の投与(12日目と24日目との間に10mg/kgで4回投与)は、腫瘍増殖を完全に停止させた一方、腫瘍を担持するWTマウスの、抗PD-1抗体による処置は、腫瘍増殖に効果がなかった(図9A)。
Foxp3S Tregの抗腫瘍免疫をブーストする能力をさらに試験するため、Foxp3S Treg及びFoxp3L Tregをドナーマウスから単離し、接種の12日後に、EO771 TNBCへと2×10個のTregを腫瘍内注射した(図9B)。結果は、Foxp3S Treg単独が、抗腫瘍免疫の増強及び腫瘍増殖を著しく遅延させるのに十分であることを実証した(図9B)。このデータは、in vitroでTregにおけるFoxp3S発現を増加させ、マウスに細胞を戻し、再導入して抗腫瘍免疫をブーストすることが可能であることを示唆している。本発明者らは、次いで、腫瘍担持WTマウスの流入領域リンパ節からの全T細胞を単離し、7日間、アイソフォームをシフトするE2 MO又は対照MO(1μM)の存在下でin vitroで増殖させた。2×10個の増殖させたT細胞を、10日間、WTマウスで増殖した腫瘍に注射した。E2 MOによって増殖したT細胞は、腫瘍増殖を著しく低減させ、PD-1処置との組合せは、有効性をさらに増強した(図9C)。
実施例3
末梢血単核細胞を、健常ドナーから得て、3週間、1μMのアイソフォームをシフトするモルホリノ(E2 MO)とin vitroで培養した。フローサイトメトリー解析は、ほとんどのTregがFOXP3Sアイソフォーム(pan-FOXP3抗体染色に陽性であるが、FOXP3エクソン2特異的抗体染色には陰性である)のみを発現する一方で、MO処置しないTregはFOXP3Lを発現したことを示した(FOXP3エクソン2特異的抗体染色に陽性)(図10A)。MO処置したTregは、阻害分子を下方制御するが、ヘルパーT細胞に通常発現する共刺激分子を上方制御した(データは示さない)。さらに、MO処置したTregは、エフェクターサイトカインIFN-γを高発現した(図10B)。したがって、本発明者らは、ヒトFOXP3発現をFOXP3Sアイソフォームへとシフトするのに非常に有効であり、そのようなアイソフォームのシフトが、共刺激分子及びエフェクターサイトカインを上方制御するヒト制御性T細胞(Treg)をもたらすモルホリノを同定した。
本発明者らは、次に、E2 MOの存在下で増殖した腫瘍浸潤リンパ球が、自己腫瘍細胞の死滅を増強したかどうか試験した。乳がん及び大腸がん患者からの腫瘍摘出を得た。腫瘍オルガノイドは、切除からの腫瘍細胞から生成され、腫瘍浸潤リンパ球(TIL)は、E2 MOの存在下又は非存在下でin vitroで増殖させた。7日間の増殖後、TILを自家腫瘍オルガノイドと共培養し、オルガノイドのサイズを測定した。乳がん患者(図11A~11D)及び大腸がん患者(図11E~11H)からの、4つのE2 MO増殖したTILのうちの3つが、それらの相当するオルガノイドの著しい死滅の増強を示した。

Claims (28)

  1. 制御性T細胞(Treg)活性を変更する方法であって、該TregにおいてFOXP3アイソフォーム、FOXP3L及びFOXP3Sの細胞内濃度を改変するステップを含み、FOXP3Sアイソフォームの量がFOXP3Lアイソフォームと比較して増加される、上記方法。
  2. FOXP3Lを標的化する干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることにより、場合によりFOXP3のエクソン2を標的化することにより、FOXP3Sと比較してFOXP3Lの発現が阻害される、請求項1に記載の方法。
  3. FOXP3Sの発現が、FOXP3Sアイソフォームをコードする核酸によってTregをトランスフェクトすることにより、FOXP3Lと比較して増強される、請求項2に記載の方法。
  4. 単離したTregのヘルパー様T細胞への分化転換を誘導するのに十分な量の干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトする、請求項3に記載の方法。
  5. FOXP3Lアイソフォームの相対発現が、
    i)配列番号1若しくは配列番号12と少なくとも85%の配列同一性を有する核酸塩基配列、又は
    ii)配列番号1若しくは配列番号12の少なくとも連続する10核酸塩基断片;又は
    iii)i)若しくはii)の相補鎖
    を含むFOXP3L標的化干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることにより減少される、請求項4に記載の方法。
  6. 標的化干渉オリゴマーが、TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)の核酸塩基配列、又はその相補鎖を含む、請求項5に記載の方法。
  7. FOXP3Lアイソフォームの相対発現が、CCATTCACCGTCCATAC(配列番号2)又はCCAUUCACCGUCCAUAC(配列番号9)を含む配列に特異的に結合するFOXP3L標的化干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることによって減少される、請求項4に記載の方法。
  8. 干渉オリゴマーが、
    CCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号2)、
    CCTGCCCATTCACCGTCCATACC(配列番号4)、
    TGCCCATTCACCGTCCATACCTG(配列番号5)、
    GCCCATTCACCGTCCATACCTGG(配列番号6)、
    TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC(配列番号7)
    TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT(配列番号8)及び
    TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG(配列番号1)又はそのRNAカウンターパート
    からなる群から選択される配列に特異的に結合する、請求項7に記載の方法。
  9. 干渉オリゴマーが、GUAUGGACGGUGAAUGG(配列番号10)と少なくとも95%の配列同一性を有する配列を含む干渉RNAである、請求項8に記載の方法。
  10. 干渉オリゴマーが、ホスホロジアミデートモルホリノである、請求項8に記載の方法。
  11. FOXP3Sアイソフォームをコードする遺伝子によってTregをトランスフェクトするステップをさらに含む、請求項10に記載の方法。
  12. 制御性T細胞(Treg)において、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させるステップを含む、患者においてがんを処置する方法。
  13. FOXP3Sの相対濃度の増加が、
    単離したTregにおいて、FOXP3を標的化する干渉オリゴマーによって該単離したTregをin vitroでトランスフェクトすること;及び
    トランスフェクトしたTregを前記患者に再導入すること
    によって達成される、請求項12に記載の方法。
  14. Tregにおいて、FOXP3Lと比較してFOXP3Sの細胞内濃度を増加させるのに有効な量で、干渉オリゴマーによってin vivoで制御性T細胞(Treg)がトランスフェクトされる、請求項12に記載の方法。
  15. 干渉オリゴマーが、FOXP3S促進モルホリノである、請求項14に記載の方法。
  16. FOXP3Lの発現が、FOXP3エクソン2を標的化し、
    i)核酸塩基
    CTGCCCACACTGCCCCTAGTCATGGTGGCACCCTCCGGGGCACGGCTGGGCCCCTTGCCCCACTTACAGGCACTCCTCCAGGACAGGCCACATTTCATGCACCAG(配列番号12)若しくはその完全な相補鎖、又は
    ii)連続する10、15、17、20若しくは25bp若しくはそれ以上の配列番号12の断片配列又はその相補鎖
    に結合する配列を含む、干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトすることによって減少される、請求項12に記載の方法。
  17. 干渉オリゴマーが、低分子干渉RNA(siRNA)、及びマイクロRNA(miRNA)からなる群から選択される干渉RNAである、請求項16に記載の方法。
  18. 干渉オリゴマーが、ホスホロジアミデートモルホリノである、請求項16に記載の方法。
  19. 干渉オリゴマーが、
    CCATTCACCGTCCATACCTGGTG
    CCTGCCCATTCACCGTCCATACC
    TGCCCATTCACCGTCCATACCTG
    GCCCATTCACCGTCCATACCTGG
    TCCCTGCCCATTCACCGTCCATAC
    TGCCCATTCACCGTCCATACCTGGT及び
    TCCCTGCCCATTCACCGTCCATACCTGGTG
    からなる群から選択される核酸塩基の配列を含む、請求項12に記載の方法。
  20. 干渉オリゴマーがホスホロジアミデートモルホリノである、請求項19に記載の方法。
  21. 干渉オリゴマーがiRNAである、請求項19に記載の方法。
  22. FOXP3Sアイソフォームをコードする遺伝子によってTregをトランスフェクトするステップをさらに含む、請求項21に記載の方法。
  23. 原発性又は転移性TNBCモデルにおいて、FOXP3S促進モルホリノと組み合わせて免役チェックポイント遮断PD-1抗体を患者に投与するステップをさらに含む、請求項21に記載の方法。
  24. 制御性T細胞(Treg)の腫瘍反応性ヘルパー様T細胞への分化転換を誘導する方法であって、Tregにおいて、FOXP3S発現を増強するのに有効な量のFOXP3S促進干渉オリゴマーによってTregをトランスフェクトするステップを含む、方法。
  25. 制御性T細胞(Treg)が、FOXP3Lのエクソン2に結合する干渉オリゴヌクレオチドによってin vivoでトランスフェクトされ、トランスフェクションが組織ナノトランスフェクションによる、請求項24に記載の方法。
  26. 患者におけるがんの免疫治療処置を増強する方法であって、該患者においてFOXP3Sアイソタイプを発現する制御性T細胞(Treg)の数を増加させるステップを含む、方法。
  27. 増加した数のFOXP3Sアイソタイプを発現するTregが、FOXP3Lの細胞内レベルよりも多いFOXP3Sの細胞内レベルを発現する、請求項26に記載の方法。
  28. 処置されるがんが、固形腫瘍であり、場合により、がんが乳がんである、請求項26又は27に記載の方法。
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