JP2023530391A - バレット食道の発症及び食道腺癌の進行を明らかにするマーカーについてのシステム及び方法 - Google Patents
バレット食道の発症及び食道腺癌の進行を明らかにするマーカーについてのシステム及び方法 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本出願は、あらゆる目的のためにその全体が引用により本明細書中に組み込まれている2020年5月19日に出願された米国出願第63/026,818号の恩典を主張する。
ファイル556336SEQLIST.txt中に書かれている配列表は、14キロバイトであり、2021年5月19日に作成された。これは、引用により本明細書中に組み込まれる。
食道腺癌(EAC)は、1970年代以降、発生率と普及率の両方において激しい増加を見せ、毎年50万人以上が診断される、現在、世界で8番目に最も一般的な癌である。この発生率の急増は、肥満とバレット食道(BE)として知られる下部食道の異形成をもたらし得る胃食道逆流症の増加とに関連しており、米国の約200万人がこの疾患を抱えて生きている。あらゆる目的のためにその全体が引用により本明細書中に組み込まれる、Zhangの文献(2013) World J. Gastroenterol. 19(34):5598-5606。時間とともに、食道腺癌の罹患数が増加するにつれて、近代医学による比例した生存統計は増加していない。平均して、診断から13カ月後に死に至り、5年の記録に達するのは18%未満である。これは、1975年からわずか10%の5年生存増加である。あらゆる目的のためにその全体が引用により本明細書中に組み込まれる、Howladerらの文献、SEER Cancer Statistics Review, 1975-2011, National Cancer Institute. Bethesda, MD(2014)。これを、それぞれ、白血病、非ホジキンリンパ腫、腎臓癌、及び前立腺癌患者の1975年における予後と比較した、5年生存患者の50、40、50、及び70パーセント増加と対比されたい。驚くこともないが、EACは、限定されないが、シスプラチン、5-FU、タキソール、及びカルボプラチンを含む、多くの初回化学療法戦術に抵抗することが分かっている。さらに、ある研究により、実際は、外科手術のみによる治療を受けたEAC患者と比べて、外科手術+化学療法による治療を受けたEAC患者の延命効果がないことが示唆された。あらゆる目的のためにその全体が引用により本明細書中に組み込まれる、Rajagopalらの文献(2014) Ann. Palliat. Med. 3(3):203-228。この急速転移性かつ化学療法抵抗性の癌に寄与するものをより良く理解することが必要とされている。
食道腺癌及びバレット食道から食道腺癌への進行についての新規のバイオマーカーに関する組成物及び方法が提供される。
本出願ファイルは、カラーで仕上げられた少なくとも1つ図面を含有する。カラー図面を有する本特許出願のコピーは、請求及び必要な料金の支払いに応じて、特許庁により提供される。
本明細書で互換的に使用される「タンパク質」、「ポリペプチド」、及び「ペプチド」という用語は、コード及び非コードアミノ酸並びに化学的に又は生化学的に修飾又は誘導体化されたアミノ酸を含む、任意の長さのアミノ酸のポリマー形態を含む。これらの用語は、修飾されているポリマー、例えば、修飾されたペプチド骨格を有するポリペプチドも含む。「ドメイン」という用語は、特定の機能又は構造を有するタンパク質又はポリペプチドの任意の部分を指す。
(I.概要)
以下のマーカー遺伝子/タンパク質: ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの1つ又は複数を用いて、対象における食道腺癌を発症するリスクを評価する方法が提供される。対象における1以上の食道腺癌リスク因子の発現を決定する方法も提供される。対象の食道腺癌を治療するか、対象の食道腺癌を予防するか、食道腺癌細胞の増殖を阻害しもしくは減少させるか、食道腺癌細胞の遊走を阻害しもしくは減少させるか、又は食道腺癌細胞の細胞傷害性に対する感受性を増大させもしくは食道腺癌細胞の細胞死を誘導する方法も提供される。
対象における食道腺癌を発症するリスクを評価する方法が提供される。対象における1以上のマーカー遺伝子(すなわち、食道腺癌リスク因子)の発現を決定する方法も提供される。そのような方法は、対象由来の検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することを含むことができる。そのような方法は、検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを対照食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルと比較することをさらに含むことができ、ここで、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも1つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。リスクの増大は、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子のうちの少なくとも1つの発現の増大がなかった場合よりも、対象が食道腺癌を発症する可能性が高いことを意味する。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数の大半の発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも2つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも3つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも4つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも5つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも6つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも7つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも8つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。いくつかの方法において、対照食道組織試料と比べた検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数の各々の発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す。
食道腺癌を治療又は予防する方法、食道腺癌細胞の増殖を阻害し又は減少させる方法、食道腺癌細胞の遊走を阻害し又は減少させる方法、及び食道腺癌細胞の細胞傷害性に対する感受性を増大させ又は食道腺癌細胞の細胞死を誘導する方法も提供される。
添付の配列表に列挙されているヌクレオチド及びアミノ酸配列は、ヌクレオチド塩基の標準的な文字略号、及びアミノ酸の3文字コードを用いて示されている。ヌクレオチド配列は、配列の5'末端から始まり、フォワード方向に(すなわち、各行の左から右に)3'末端まで進むという標準的な慣習に従う。各々のヌクレオチド配列の一方の鎖のみが示されているが、相補鎖は提示されている鎖への何らかの言及によって含まれることが理解される。アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が提供される場合、同じアミノ酸配列をコードするそのコドン縮重変異体も提供されることが理解される。アミノ酸配列は、配列のアミノ末端から始まり、フォワード方向に(すなわち、各行の左から右に)カルボキシ末端まで進むという標準的な慣習に従う。
(実施例1.バレット食道発症及び食道腺癌進行の新規マーカーの同定)
大規模マススペクトロメトリー解析を用いて、食道腺癌(EAC)の攻撃性に寄与する過剰発現及び下方調節パターンを検出した。何らかの化学療法又は放射線が投与される前の食道切除手術から得られたホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織試料を、50人の患者由来のEAC組織、EACに進行した対象由来のバレット食道(BE)組織、及び正常食道扁平上皮の解析に使用した。本発明者らのプラットフォームは、病理学者の指導下の顕微解剖、FFPE組織を消化されたライセートにするLiquid Tissue(登録商標)プロセス、発見マススペクトロメトリー(TripleTOF 6600)、及び伝統的な生物統計学からなっていた。この疾患の攻撃性及び化学療法剤に抵抗するEACの傾向と相関する発病プロセスを特定した。腫瘍サプレッサーがオフになり、成長因子が過剰発現され、化学療法抵抗性マーカーが上方調節され、かつ化学療法感受性マーカーが下方調節される20の関連するプロテオーム事象を特定した。さらに、治療的拮抗作用がEACにおける緩徐な腫瘍発生を示すことができる8つの薬物候補を特定した。20のタンパク質のうち、8つ(CNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2N)は、バレット食道の腺癌への発症と顕著に相関するマーカーであることが示された。8つのマーカーのうち、食道内発症の診断面及び治療面に関して共通の接点を有する4つのタンパク質DAD1、ISG15、S100P、及びUBE2Nをさらなる調査のために選択した。DAD1(10のうち10)、ISG15(9/10)、S100P(8/10)、及びUBE2N(8/10)の過剰発現がBE組織で発見された。隣接するEAC組織において、DAD1(20のうち20)、ISG15(19/20)、S100P(17/20)、及びUBE2N(18/20)タンパク質の顕著な過剰発現が観察された。これらの発現レベルは、正常扁平上皮から異形成度の高いBE組織に移行するときに急増し、より多くのグルコースをエネルギーに使用し(ワールブルグ効果)、増殖度合いを増大させ、かつアポトーシスを抑制すること(これらの特徴は、腺癌組織像に持ち込まれる)により、BEが癌のように作用し始めることを示した。ISG15、S100P、及びUBE2Nの個々のノックダウンは、未処理のEAC細胞株(OE-33)と比較して、細胞増殖の顕著な減少をもたらす一方、48時間にわたるより高いレベルの細胞傷害性を誘導した。DAD1ノックダウンは、最も遅いEAC細胞遊走速度を示した。DAD1、S100P、ISG15、及びUBE21Cの遺伝子ノックダウンは、相互接続する癌経路の全体的な腫瘍形成環境を改善し-関連する腫瘍促進遺伝子を顕著に下方調節する一方で、多くの抗癌因子を上方調節した。これらの発見をまとめると、バレット食道に関連する食道発癌の評価及び治療におけるCNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2Nの診断的及び治療的臨床有用性が示されている。
食道腺癌の転移及び化学療法抵抗性に寄与するプロテオーム環境を特定することにより、改善された診断法及び治療法を開発することができる。化学療法を一度も受けたことがない患者の食道切除術からの混じり物のないEAC試料を入手した。この試料を処理し、顕微解剖した。その後、顕微解剖試料を消化して、Liquid Tissue(登録商標)ライセートにし、発見マススペクトロメトリープラットフォーム(TripleTOF 6600)で解析した。化学療法抵抗性及び感受性、アポトーシス抑制、並びに増殖上方調節に関連する20の重要な標的を同定した。8つの標的(CNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2N)を、分子腫瘍学の診断面及び治療面とのその交差に基づいて、さらなる調査のために選択した。特に、DAD1タンパク質の過剰発現は、シスプラチン抵抗性に寄与する。注目すべきことに、コロンビア大学メディカルセンター(Columbia University Medical Center)(CUMC)で食道切除の治療を受けた123人の患者のうちの95%は、その地域癌専門医によって、第一選択の設定でシスプラチン服用に置かれた4,5。S100P発現は、結腸直腸癌で5-FU(フルオロウラシル)に対する抵抗性を増大させることが分かった6。5-FUは、本発明者らのコホート(n=123)の患者の72%に処方された。本発明者らの発見により、EACは、EACの2つの最も処方される薬物に対する抵抗性を有する可能性が高いので、別の患者管理戦略が必要とされることが示唆されている4。さらに、本発明者らは、EACに対する臨床有用性を有する8つの診断及び治療バイオマーカーを特定した。これらの癌原遺伝子のうちの4つを標的とすることは、インビトロでEACの増殖及び転移能力を減少させることを示した。
CNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2Nは、ヒト生理機能における重要な微生物学的機能を有する。S100タンパク質は、通常は炎症又は細胞損傷に応答して、増殖、分化、及びアポトーシスを管理する、細胞の調節的役割に関与する。ユビキチンは、破壊される損傷細胞をマーキングし、例えば、炎症時又は胆汁酸攻撃後に治癒を促進する細胞増殖手段のシグナルを送る調節タンパク質である7。これらのプロセスが機能不全であるか又は過度に活動的であるとき、発癌が生じ得る。
DAD1(細胞死に対する防御因子)は、効率的なグリコシル化に必要とされる酵素である。DAD1は、プログラム細胞死の負の調節因子であることが分かっており、癌細胞がアポトーシスを回避するのを助けることに関係があるとされている8。DAD1は細胞アポトーシスを抑制するが、DAD1発現の低下は、小細胞肺癌マウスモデルでより容易に細胞死を引き起こすことが分かった9。本発明者らの医療センターのEAC患者の97%は、第一選択の設定でシスプラチンにより治療された4。しかしながら、DAD1タンパク質レベルの過剰発現は、シスプラチン抵抗性に寄与することが分かり、DAD1は、本発明者らのヒトEAC試料の100%で過剰発現されることが分かった。本発明者らは、DAD1が、正常食道組織と比較して、EAC腫瘍で5.08倍を超えるレベルで発現されることを見出した(P<0.0001)。本発明者らの発見は、シスプラチンによる治療がDAD1の発現増加を有する患者の場合に不適切であり得ることを示している。EACにおけるDAD1の役割は、これまで不明であった。
ISG15(インターフェロン刺激遺伝子15)は、自然免疫応答において重要な役割を果たすユビキチン様タンパク質である。Desaiの文献(2015)は、「[ISG15が]重要な癌タンパク質並びに癌の潜在的な診断及び治療標的として浮上している」ことを報告している10。膵腺癌において、腫瘍関連マクロファージはISG15を分泌し、それにより、腫瘍内の癌幹細胞の表現型を増強し-癌幹細胞の自己再生を強化し、浸潤能を増大させ、かつ腫瘍形成能を増大させる11。最近、癌幹細胞は、腺癌の発生及び転移進行において主要な役割を果たすことが分かった。ISG15は、乳房細胞の悪性形質転換に寄与することも分かり、結腸直腸癌におけるより悪い予後と関連している10,12。それにもかかわらず、EACにおけるISG15の役割は、現在、報告されていない。ISG15特異的小干渉RNA(siRNA)を用いたISG15発現のノックダウンは、ポリユビキチン化タンパク質のレベルを増大させることが示され、ユビキチン媒介性タンパク質代謝回転の調節におけるISG15の拮抗的役割を示唆した10。ISG15は、破壊されるようにマーキングされたタンパク質内のほとんど全てのペプチド結合が切断を受けやすいようにするプロセスを破壊する13。EACに対してFDAにより承認されたドキソルビシンは、ISG15が豊富に存在する腫瘍においてより大きい効力を有することが分かっているが、食道切除術のために本発明者らの医療センターに回された患者の6%のみが第一選択の設定でドキソルビシンを受けた。EAC腫瘍の約95%がISG15を過剰発現していたという本発明者らの発見は、ドキソルビシンが高レベルのISG15を発現するEAC患者で有益であり得ることを示唆している4,14。本発明者らは、ISG15が、正常食道組織と比較して、EAC腫瘍で7.29倍を超えるレベルで発現されることを見出した(P<0.0001)。
S100Pは、幅広い細胞の細胞質及び/又は核内に局在し、細胞周期進行及び分化などのいくつかの細胞プロセスの調節に関与する15。S100Pは、RAGEに結合し、それを活性化することにより、その機能を果たし、おそらくは、細胞分裂機構に、多くの固形腫瘍でしばしば上方調節される古典的なチロシンキナーゼ/KRAS増殖経路を迂回させる。S100P由来RAGE拮抗ペプチドは、膵癌で腫瘍成長及び転移を遅延させることが分かっている16。顕著な相関は、胃癌及び卵巣癌におけるS100Pの高発現とより短い全生存(OS)と薬物抵抗性の増大の間で見出された17。S100Pは、膵癌の攻撃性においても重要な役割を果たし、これは、RAGEを活性化するその能力によって媒介される可能性が高い18。S100Pノックダウンは、子宮内膜癌細胞株で細胞増殖を抑制する一方、細胞アポトーシスを強化することが分かった19。S100Pの発現は、胃癌における薬物抵抗性を増大させ、結腸直腸癌細胞におけるインビトロでの5-FUに対する化学療法感受性を減少させる6。本発明者らの医療センターでEACの治療を受けた患者の87%は、第一選択の設定で5-FUを処方された4。本発明者らは、S100Pが、正常食道組織と比較して、EAC腫瘍で6.42倍を超えるレベルで発現されることを見出した(P<0.0001)。本発明者らの知る限り、EACにおけるS100Pの役割は、これまで報告されていない。本発明者らの発見は、EAC腫瘍をS100P発現についてモニタリングすることができること及びS100P発現の増大が5-FUによるもの以外の治療を示すことを示唆している。
UBE2N(ユビキチン結合酵素E2 N)は、乳癌、膵臓癌、結腸癌、前立腺癌、及び卵巣癌で過剰発現されることが分かっている。UBE2Nの過剰発現は、乳癌の肺への転移に必要とされることが分かっている20。このマーカーの阻害は、神経芽腫で細胞死を引き起こした21。UBE2Nは、NFκβ炎症活性化という発癌と関連する機構にとって極めて重要であるユビキチン鎖を特異的に構築する。興味深いことに、UBE2N阻害は、自然免疫シグナル伝達、細胞生存、RNAスプライシング、及びDNA損傷応答に関与する~140個のタンパク質のユビキチン化を顕著に変化させた22。この研究の遺伝子発現部門からの本発明者らの発見は、UBE2Nの上流位置を確証した。siRNA媒介ノックダウンによるUBE2Nの阻害は、直接的及び周辺的な癌経路に対するこれらの試験されたマーカーの最大の効果を及ぼした。解析された経路のうちの50%超がUBE2Nノックダウンによってプラスの影響を受けた。本発明者らは、UBE2Nが、正常食道組織と比較して、EAC腫瘍で6.88倍を超えるレベルで発現されることを見出した(P<0.0001)。したがって、UBE2Nの発現の増大は、正常組織からEACへの進行を示し、これを用いて、EACに対する易罹患性もしくはEACを発症するリスクをモニタリングするか、又はEACを診察することができる。本発明者らの知る限り、EAC進行におけるUBE2N役割の役割は、過去に報告されていない。
CNDP2(細胞質ゾル非特異的ジペプチダーゼ)は、MAPK経路を活性化することにより、胃癌において機能的腫瘍サプレッサーとして働く36。CNDP2は、逆タンパク質分解による乳酸塩及びアミノ酸からのN-ラクトイル-アミノ酸の生成を触媒する37。CNDP2のレベルの上昇は、p38及びJNK/MAPK経路を活性化して、細胞アポトーシスを誘導する。より低レベルのCNDP2は、ERK MAPK経路を活性化して、細胞増殖を促進する。CNDP2は、肝細胞癌細胞において腫瘍サプレッサーとしての役割を果たすことができる36。特に、CNPD2の上方調節は、結腸癌の増殖を促進し、逆に、CNDP2の過小発現は、胃癌を有する患者にとってより望ましい予後をもたらす36,38。本発明者らは、CNDP2が、正常食道組織と比較して、バレット組織で2.85倍を超えるレベルで発現されることを見出した(P<0.0001)。したがって、CNDP2の発現の増大は、正常組織からバレット食道及び/又はEACへの進行を示し、これを用いて、バレット食道及び/もしくはEACに対する易罹患性又はバレット食道及び/もしくはEACを発症するリスクをモニタリングすることができる。本発明者らの知る限り、EAC進行におけるCNDP2の役割は、これまで報告されていない。
GPI(グルコース-6-ホスフェートイソメラーゼ)は、ワールブルグ効果を伴う経路と関連する主要な解糖酵素であり、この経路では、癌細胞が解糖経由で高率にエネルギーを産生する。GPIは、内皮細胞運動を刺激する腫瘍分泌型サイトカイン及び血管新生因子(AMF)として機能することができる。GPIはHER2発現を増強し、HER2過剰発現はGPI発現を増強する。GPIは、乳癌細胞において、トラスツズマブを用いたHER2に基づく療法に対する抵抗性を付与する可能性が高く、患者を治療するときの追加の標的とみなされるべきである。正常食道組織が、前癌性食道組織に進行し、その後、癌性食道組織へと進行するにつれて、GPIが上方調節されるという発見は、ワールブルグ効果が食道内発症で生じていることを立証する。本発明者らの発見は、前悪性バレット食道組織由来の細胞が、通常癌細胞と関連するエネルギー代謝経路の変化を通じて、絶え間なく変化する選択的微小環境に適応し得ることを示唆している。GPIプロテオーム発現傾向は、まだEAC発症と関連付けられていない。
LTF(ラクトトランスフェリン)は、母乳及び粘膜分泌物などの外分泌液中に見られる主要な鉄結合性かつ多機能性タンパク質であり、かつ抗微生物活性を保有する。LTFは、Cアデノウイルスという種の上皮細胞への結合を促進し、アデノウイルス感染を促進する。LTFは、TLR4シグナル伝達経路を刺激し、NFκB活性化及びその後の炎症促進性サイトカイン産生をもたらすと同時に、リポ多糖(LPS)刺激性TLR4シグナル伝達も妨害する。LTFは、アポトーシス細胞によって分泌されたとき、アポトーシスの部位への好中球顆粒球遊走を阻害し、VEGF媒介性内皮細胞遊走及び増殖を刺激する。LTFは、鼻咽頭癌、胃癌、及び子宮内膜癌の悪性形質転換と関連付けられている39-41。本発明者らは、正常食道組織と比較してBE及びEAC組織で8.8倍高く発現されることになるLTFを、BE及び/もしくはEACを評価する際の又はBE及び/もしくはEACを発症するリスクを評価する際のマーカーとして使用することができることを見出した。本発明者らの知る限り、LTF過剰発現がBEの腫瘍形成の促進と関連しないことはこれまで知られていない。
SET核癌原遺伝子は、転写されて、アポトーシス、転写、ヌクレオソームアセンブリ、及びヒストンシャペロニングに関与するマルチタスクタンパク質になる。SETは、癌の開始及び進行を促進する42。SETは、アポトーシスと、それに続く、細胞傷害性Tリンパ球による攻撃(これは、発癌の顕著な特徴である)を阻害する。SETは、癌細胞における治療抵抗性の発生を促進することも示されている。SETアンタゴニストは、EACではない、いくつかの癌について、現在、臨床研究中である。SETは、正常食道組織と比較して、EACで2.5倍を超えるレベルで発現される。それゆえ、SET発現の解析を用いて、EAC又はEACを発症するリスクを評価することができる。本発明者らの知る限り、SET上方調節は、これまでBE異形成進行と関連付けられていない。
(2.1.患者選択)
2004~2015年に収集されたネオアジュバント化学放射線療法を受けていない82人の患者由来の食道切除患者標本を入手した。ほとんどの症例により、遠位食道から採取された近位切除マージンに位置する腫瘍、バレット食道、及び正常食道粘膜の複数のブロックが提供された。これら82人の患者のうち、約12人が扁平上皮細胞癌及び胃癌組織像が原因で脱落した。本発明者らの研究のマススペクトロメトリー部門のために、本発明者らは、全て無作為に選択された、20個の食道腺癌試料、10個のバレット食道試料、及び20個の正常扁平上皮粘膜試料を使用した。50個の標本のうちの15個(30%)は、女性患者由来のものであり、これは、この疾患の性別発現の国内割合を反映している。20個の正常食道標本のうちの9個及び20個の腺癌標本のうちの10個は、目に見えるバレット食道を有さない患者由来のものであった。
ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)組織を10ミクロンで切り出し、1つの5μm切片をH&Eで染色した。正常層状扁平上皮食道粘膜、バレット食道、及び浸潤性腺癌を標的とするために、標本の入手可能な肉眼所見に基づいて、パラフィンブロックを選択した。これらの肉眼病変に相当する部分の組織学検査スライドは、有資格病理学者によって調べられた。所望の病変に相当することが組織学的に確認された場合、目的の部分を丸で囲んだ。その後、その調べられたH&Eの下の連続切片未染色スライドを丸で囲んだ部分から顕微解剖した。
マススペクトロメトリー解析に使用されるホルマリン固定パラフィン包埋ヒト組織試料を脱パラフィン処理し、再水和させ、ヘマトキシリンで染色し、それゆえ、組織標本のトポグラフィーを正確な顕微解剖に使用することができた。試料が病理学者の指定したマージン内にあるように、解剖前及び解剖後の画像を取得した(第2.2節を参照)。
臨床的に、マススペクトロメトリープラットフォームは、通常、血清、尿、血液、及び新鮮な又は凍結された組織標本をプロテオーム調査に使用する。ホルマリン架橋組織試料は、マススペクトロメトリーに適合するライセートへと完全には消化されず、そのため、高価な機械を適切に稼働させないか又は故障させるリスクが増大することが分かっている。本明細書に開示される方法は、FFPE組織を完全に消化して、マススペクトロメトリーに適した小さいペプチドにすることができる。FFPE組織を処理して、マススペクトロメトリーに適合するライセートにする方法は、約24時間かかり、FFPE組織のホルマリン架橋を完全に無効にする。タンパク質を小さいペプチドに分解することは、外科手術又は内視鏡検査後の不十分な組織固定の効果を失わせる。標本は、患者から切除されるとすぐに、新鮮な固定剤又はホルマリン固定剤に入れられるという保証はなく、それゆえ、診断医のコントロールの範囲外であるタンパク質分解を受ける可能性がある。標的化マススペクトロメトリー解析は、検出されているマーカーにのみ存在する巨大タンパク質内の小さいユニークな識別ペプチドを測定する。したがって、不適切な固定によるタンパク質分解又は破壊は、結果に悪影響を及ぼさない45。マススペクトロメトリー解析は、抗体認識に必要とされるタンパク質エピトープ完全性の必要性を排除する。さらに、液体生検は、将来の実験のために、無期限に保存することができる。
(マススペクトロメトリー:)
データ非依存型取得(DIA) SWATH-MS実験を以前に記載されている通りに実施した46。試料は全て、市販の6600 TripleTOF(登録商標)(Sciex)マススペクトロメーターを用いる逆相高圧液体クロマトグラフィーエレクトロスプレーイオン化タンデムマススペクトロメトリー(RP-HPLC-ESI-MS/MS)によって解析した。マススペクトロメーターをnanoFlex cHiPLCシステム(Eksigent)と連動させた。試料は全て、100%溶媒A(HPLC水中0.1%(v/v)ギ酸)を用いる10μL/分で8.5分間及び2μL/分で1分間の段階的流量を用いてローディングした。試料を、5%溶媒B(0.1%(v/v)ギ酸を含むアセトニトリル)~35%溶媒Bの線形勾配を用いて、180分の期間にわたって、0.3μL/分の流量で分析カラムから溶出させた。カラムを90%溶媒Bで15分間洗浄することにより再生し、5%溶媒Bで15分間再平衡化した。スペクトルのオートキャリブレーションは、25fmolのβ-ガラクトシダーゼの動的LC-MS及びMS/MS取得を用いて、6つ毎の試料を取得した後に行われた。SWATH-MSスペクトルのライブラリーを作製するために使用された試料を従来のデータ依存型取得(DDA)に供し、ProteinPilotソフトウェアv.4.2(Sciex)を用いて、ライブラリーを作製した。実験試料を、可変swathを用いるマススペクトルの周期的DIAに供した。イオンを、ローリングコリジョンエネルギーを用いて、衝突セル中で各々のMS/MS実験用にフラグメント化した。
DIA試料のスペクトルアラインメント及び標的化データ抽出を、上で作製されたMDM参照スペクトルライブラリーを用いるPeakView v.1.2(Sciex)を用いて実施した。全てのDIAファイルをロードし、10分の抽出ウィンドウ及び以下のパラメータ: 5つのペプチド、5つのトランジション、>99%のペプチド信頼度、共有ペプチドの除外、及び50ppmに設定されたXIC幅を用いて、.txtフォーマットで同時にエクスポートした。このエクスポートは、(1)個々のイオンの強度曲線下面積、(2)所与のペプチドの個々のイオンの合計強度、及び(3)所与のタンパク質のペプチドの合計強度についての定量的出力を含む3つの異なるファイルの作成をもたらす。実験的混入因子及び逆順は、統計解析の前に、データセットから除去した。
標準的な脱パラフィン及び再水和法を用いて、本発明者らの組織を免疫蛍光に触れさせた。本発明者らは、抗原賦活化を、2Lの水に溶解させた2000mLのBoster Immunoleader抗原溶液中、95℃で20分間実施した。試料を5%ウマ血清及び0.25%tritonバッファー中で2時間ブロッキングした。本発明者らは、試料を、8つのタンパク質のうちの4つを標的とする一次抗体で、4℃で一晩染色した。本発明者らは、PBSで希釈したS100Pを除いて、全てブロッキング溶液に希釈した、DAD1(1:100希釈)抗ウサギポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-20062)、ISG15(1:100希釈)抗ウサギポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-31865)、S100P(1:30希釈)抗マウスモノクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - MA5-24106)、及びUBE2N(1:200希釈)抗ウサギポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-29687)を使用した。一次抗体を洗い流した後、DAD1、ISG15、及びUBE2N試料は、Alexa Fluor 594ロバ抗ウサギ二次抗体(Invitrogen - A21207)を受け、S100Pは、Alexa Fluor 488ロバ抗マウス抗体(Invitrogen - A21202)を受けた。両方の二次抗体を1:200の比でブロッキング溶液に希釈し、室温で1.5時間組織を染色させておいた。DAPI濃縮封入血清を添加した後、本発明者らの組織切片にカバースリップを付けた。免疫蛍光後のイメージングをOlympus VS120 Slide Scannerで行い、免疫蛍光定量を、国立衛生研究所(National Institute of Health)により利用可能にされた64-ビットのJava 1.8.0_112に付属しているImageJで完了した。
インビトロ研究に使用される食道腺癌細胞株は、AddexBio製のOE-33(No.C0013003)であった。この細胞を10%FBS中のRPMI-1640で増殖させた。細胞培養の前に、細胞をプレーティングし、70%コンフルエントのときに、OptiMEMと25nM siRNA又はRNAiMAX lipofectamineのみで増殖させた。siRNA処理は、siNEG、siPOS(GAPDH)、siDAD1(No.145787)、siS100P(No.142895)、siISG15(No.137859)、及びsiUBE2N(No.12328)であった。これらの実験に使用されたノックダウンsiRNA試薬は、Ambion(登録商標)製のSilencer(登録商標)プレデザインドsiRNA(Cat #. AM16708A)であった。細胞をsiRNAとともに48時間インキュベートし、その後、これをDPBSで洗浄し、溶解バッファーで溶解させた。その後、細胞ライセートを、DNA、RNA、及びタンパク質の同時抽出用に処理した。
4つのマーカーのsiRNAノックダウンの後、本発明者らは、RNA、DNA、及びタンパク質を、インタラクトームの成分の同時精製用のQiagen製のAllPrepミニキットを用いて、食道腺癌細胞の様々な処理バッチから単離した。本発明者らは、QIAshredderを用いて、処理細胞を破壊し、ホモジナイズした。その後、RNA試料を用いて、遺伝子発現解析用のcDNAライブラリーを作製した。これらの試料由来のタンパク質及びDNA材料を-20℃で保存した。RNA濃度をThermo Fisher Scientific製のNanoDrop 2000c分光光度計で定量した。本発明者らは、RT2プロファイルPCRアレイと適合するQiagen製のRT2 First Strandキットを使用し、このプラットフォームに含まれる逆転写対照の検出の結果を最適化した。
本発明者らは、本発明者らのcDNA鋳型をすぐに使用できる適当なPCRマスターミックス(SYBR(登録商標) Green)と混合し、その後、同じプレートの各々のウェルに等量を分注し、その後、Bio-Rad製のC100(商標)サーマルサイクラーのCFX96(商標)リアルタイムシステムでリアルタイムPCRサイクリングプログラムを実行した。本発明者らは、Cancer PathwayFinder RT2 Profiler PCR Arrayを使用した。これは、血管新生、アポトーシス、細胞周期、DNA修復などと関連する遺伝子の上方調節及び下方調節パターンを同時に解析する。処理されたEAC細胞株を複数の未処理EAC対照に対して正規化した。熱サイクルプロトコルは、95℃で3分間温め、95℃で10秒間、その後、55℃で30秒間を40回循環させるものであった。
OE-33腺癌細胞を増殖させ、トリプシン処理し、カウントし、1,000,000細胞/Lの濃度又は1,000細胞/μLになるように希釈した。これにより、本発明者らは、10,000個のOE-33細胞を含む各々のウェルをちょうど10μLの培地/細胞にして標準化することが可能になった。DAD1、ISG15、S100P、UBE2N、及び本発明者らのベクターなし陰性対照、及びGAPDH陽性対照についての本発明者らのsiRNAストックは、5マイクロモル濃度であった。以下の実験のために、本発明者らは、2.78ピコモル/cm2の濃度のsiRNAを、OE-33食道腺癌細胞株で、全ての標的ベクターに使用した。本発明者らは、プレート又はウェルのサイズに応じて、cm2当たり57μLの培地、siRNA、及びlipofectamineを用いて、全ての実験を標準化した。
細胞をT75フラスコ中で70%コンフルエンシーまで増殖させた。細胞をT75中で16時間血清飢餓状態にし、細胞周期を同期させた。その後、細胞を、フラスコ当たり5mLを添加し、37℃で4分間インキュベートすることにより、1×トリプシンEDTAで剥離させた。その後、細胞を800rpmで5分間スピンダウンした。その後、OE-33細胞を1mLの無血清RPMI 1640に再懸濁させ、Countess II FL自動細胞カウンター(Thermo Fisher)を用いてカウントした。細胞を1,000,000細胞/mLの濃度に希釈し、10μL(10,000細胞)を96-ウェルプレート中の各々のウェルに添加した。各々のウェルは、1cm2当たり2.78ピコモルのsiRNAと1cm2当たり57μLの全容量(培地+細胞+lipofectamine+siRNA)とを含む無血清培地を含有していた。その後、細胞をsiRNAとともに48時間インキュベートし、その後、アッセイした。
遺伝子ノックダウンの後、細胞を48時間増殖させておいた。その後、培地をデカントし、新鮮な無血清培地を各々のウェルに添加した。本発明者らは、10μLのMTT(3-(4,5-ジメチルチアゾール-2-イル)-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミド)を添加した。これは、DNA合成の副生成物であるNADPHと接触したときにホルマザンに変換されて、紫色を生じる黄色いテトラゾリウム塩であり、その吸光度は、ある期間にわたる増殖率の代用物としての役割を果たすことができる。MTTを培地に直接添加し、37℃で3.5時間インキュベートしておいた。MTTがホルマザンに変換するのに十分な時間を許した後、本発明者らは、MTT/培地を除去し、100μLのDMSO(ジメチルスルホキシド)を添加して、ホルマザンを細胞から取り除き、これにより、信頼性のある比色読み取りが可能になる。プレートをゆっくりと旋回させて、室温で1時間置いた。可溶化の後、単層によって摂取された紫色の色素の量をプレートリーダーにて570nmで定量することができる。
ある期間にわたる細胞死を、Vybrant(商標) G6PD放出細胞傷害性アッセイ(Thermo Fisher - V23111)を用いて測定した。このアッセイでは、レサズリンという青色の色素がレゾルフィンという赤色の色素に還元され、その後、蛍光プレートリーダーによって測定されて、処理後の細胞死の割合を定量することができる。レサズリンは、細胞膜が壊れたときに放出され、それにより、細胞死の割合の代用物としての役割を果たす分子であるG6PD(グルコース-6-リン酸デヒドロゲナーゼ)と接触するようになったときに還元される。細胞をそれぞれのsiRNAで処理し、48時間インキュベートした。その後、10,000個の細胞を96-ウェルプレートの各々のウェルに移して、各々の処理群についてn=12をもたらした。50μLのレサズリンをノックダウン処理細胞及び3つの対照(溶解した未処理細胞、陽性対照、及び陰性対照)のウェル当たり10,000個の細胞に添加し、37℃で24時間インキュベートしておいた。蛍光プレート読み取りを550nm(励起)及び590nm(放出)で行い、各々のウェル中のレゾルフィン(赤色)のレベルを測定した。その後、プレートを、T=0から始めて最初の30分間、10分間隔で、その後、1時間でアッセイした。
スクラッチアッセイは、細胞遊走速度をインビトロで測定するための簡単で安価な手段である。2つの12-ウェルプレートに、処理したOE-33細胞及び未処理のOE-33細胞を播種した。その後、培地を、siRNA陰性対照、GAPDHを標的とするsiRNA陽性対照、及びsiDAD1、siUBE2N、siISG15、siS100Pを含む無血清RPMI-1640でトランスフェクトするか、又は未処理とし、90%コンフルエントまで約36時間増殖させた。縦のスクラッチを200μLピペット端で作り出した。培地を除去し、Opti-MEMと交換し、0時間、12時間、及び16時間の時点でイメージングして、創傷閉塞の速度を4×倍率でモニタリングした。
タンパク質濃度をNanoDrop(商標) One/OneC Microvolume UV分光光度計で定量した。25μgのタンパク質を各々の試料泳動用の各々のラインにローディングした。本発明者らは、その会社ウェブサイト(http://www.abcam.com/protocols/general-western-blot-protocol)に記載されているAbcamの一般的なウェスタンブロットプロトコルに従った。本発明者らは、SDS-PAGEゲル電気泳動を、70Vで30分間、その後、100Vで1時間実行した。本発明者らは、タンパク質を、ゲルから0.45μmニトロセルロース膜(Bio-Rad 162-0115)に、冷たい泳動水の下、30Vで一晩転写させた。次に、本発明者らは、TBST中の3%ウシ血清アルブミン(BSA)を用いて、膜を室温で1時間ブロッキングした。一次抗体染色のために、本発明者らは、1:500の比で希釈したDAD1ポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-20062)、1:1000の比で希釈したISG15ポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-31865)、1:1000の比で希釈したS100Pモノクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - MA5-24106)、及び1:1000の比で希釈したUBE2Nポリクローナル抗体(Thermo Fisher Scientific - PA5-29687)を用いて、ニトロセルロース膜におけるその存在について染色した。前後に穏やかに揺らしながら、一次抗体を膜と4℃で一晩反応させておいた。一次抗体をTBSTで、各々5分間、3回洗い流した。DAD1、ISG15、及びUBE2Nの二次抗体は、ブロッキングバッファーに、1:10000の比で、室温で1時間希釈したヤギ抗ウサギ(Novus Biologicals - NB7160)及びS100Pヤギ抗マウス(Novus Biologicals - NB7539)であった。イメージングシグナルの顕色のために、本発明者らは、イメージングから1分以内に膜上に同時に注がれる1mLのルミノールエンハンサー溶液と混合した1mLの過酸化物溶液を用いるPierce(登録商標) ECLウェスタンブロッティング基質(Thermo Scientific - 32209)を使用し、Bio-Rad製のChemiDoc(商標) MPイメージングシステムで画像を捕捉した。4つの標的タンパク質は全て、約17kDaに存在する。
(2.12.1.マススペクトロメトリー)
合計617個のタンパク質を質量分光測定-SWATH解析によって同定及び定量した。マススペクトロメトリー値を、統計解析の前に、2を底とする対数に変換した。一元配置固定効果ANOVAを用いて、3つの組織型(正常扁平上皮食道上皮、バレット食道、及び腺癌腫瘍組織)間の差異を検出した。ベンジャミーニ・ホッホベルク法を用いて、これらのANOVA検定のうちのどれが、偽発見率を0.05以下に制御しながら、タンパク質発現と組織型の間の検出可能な関連を示すかを決定した。事後t-検定に、0.00085のアルファを割り当て、多重比較のためのテューキー・クレーマー調整を用いて調整した。本発明者らの計算は全て、SAS 9.4で処理した。
バレット食道、正常扁平上皮、及び腺癌腫瘍からの63の蛍光強度読み取りを、ランダムな組織区画内で始まり、(組織の間質部分を回避して)目的の部分を中心に時計回りに向かう各々の区域の5つの部分を定量するImageJバージョン1.8.0_112を用いて定量した。蛍光強度の定量後、値を平均化し、タンパク質及び処理群の各々についてのSD及びSEMを計算した。食餌の異なる4匹のユカタンミニブタ由来の47の健康な粘膜の蛍光強度読み取りを用いて、マーカーのうちの4つの発現レベルを非疾患対照コホートで計算した。
QIAGENデータ解析ツールを用いて、PCRデータを解析し、siNEG対照群と比較した。データを、5つのハウスキーピング対照(ACTB、B2M、GAPDH、HPRT1、及びRPLP0)の幾何平均を用いて正規化した。調節倍率、変化倍率、平均ΔCT、及び2-ΔC Tを全て計算した。対照と比較して有意な変化を有する遺伝子をここで強調した。
処理群の平均を標準偏差及び標準誤差の計算とともに出した。ここから、本発明者らは、平均の差がANOVAを用いて群間で有意かどうかを決定し、その後、P-値をテューキー検定で出した。外れ値をグラブスの検定で決定したが、本発明者らは、これらの一連の実験で1つの外れ値(S100P、MTT増殖アッセイ)しか有さなかった。
(3.1.一貫した顕著な過剰発現)
本発明者らは、全てマススペクトロメトリーを用いて、FFPE組織中の数千のタンパク質を精査する方法を設計した。FFPE組織試料を消化して、遠位食道の3つの異なる組織像(正常扁平上皮、前癌性バレット粘膜、及び食道腺癌腫瘍)中の腫瘍タンパク質の定量を同時に可能にするマススペクトロメトリー適合ライセートにした。マススペクトロメトリー解析は、その質量及び電荷によってペプチドを測定する際に、抗体ベースのアッセイを上回る利益を提供する。したがって、マススペクトロメトリー解析は、抗体ベースのアッセイに付随する問題、例えば、非特異的結合又は主観的解釈を回避する。
図4Aは、正常扁平上皮食道上皮、バレット食道、及び食道腺癌におけるDAD1、S100P、ISG15、及びUBE2Nの発現を示したグラフを示している(****P<0.0001、***P<0.001、**P<0.01、*P<0.1)。図4Bは、正常扁平上皮食道上皮、バレット食道、及び食道腺癌におけるタンパク質の発現を示したヒートマップを示している。
免疫蛍光を用いて、マススペクトロメトリー解析から得られた定量的データの定性的確認を提供した。DAD1、S100P、ISG15、及びUBE2Nに対する抗体を用いて、タンパク質の発現を、正常組織、バレット食道組織、及び食道腺癌組織で可視化した。予想通り、各々の遺伝子について、蛍光シグナルの増大が、正常組織と比較して、バレット食道組織及び食道腺癌組織で観察された(表3及び図5を参照)。特に、S100Pは、食道腺癌組織と比較して、バレット組織で顕著により高い発現を有し、これは、それが前癌性粘膜から悪性組織像への進行においてより大きな役割を果たすことを示し得る。
粘膜又は非疾患遠位食道におけるDAD1、ISG15、S100P、及びUBE2N発現を評価するために、動物モデルを使用した。この解析は、疾患組織で観察される増加発現が異常の結果ではない証拠を提供するために実施した。4匹の異なるユカタンミニブタに、高コレステロール、高フルクトース;ビタミンD欠乏;ビタミンD十分;又はビタミンD補充と分類された食餌を給餌した。4匹の動物からのデータを平均すると、遠位食道上皮において、DAD1は、22.48の平均IFスコアを有し、ISG15は、27.73の平均IFスコアを有し、S100Pは、22.33の平均IFスコアを有し、UBE2Nは、26.65の平均IFスコアを有していた。遠位食道におけるIFスコアは、正常組織試料で以前に観察されたスコアと同程度であり、S100P、DAD1、ISG15、及びUBE2Nのいずれも、正常食道組織でより高くは発現されないことを示した。DAD1は、4匹のブタの遠位食道上皮で観察された発現レベルを合わせた、22.48の平均IFスコアを有していた。本発明者らのヒトモデルにおいて、DAD 1は、EACで91.24、BEで87.63、正常粘膜で34.167の免疫蛍光スコアを受け取った。ISG15は、様々な食餌の4匹全てのブタのFIUを合わせたとき、27.73の平均IFスコアを有していた。本発明者らのヒトFFPE研究において、ISG15の免疫蛍光は、EAC試料で71.83、BE試料で63.57、正常扁平上皮食道上皮で31.626であった。S100Pは、本発明者らのヒト研究のEACでの110.25、BEでの136.33、及び正常扁平上皮食道粘膜での32.34と比較して、本発明者らのブタモデルにおいて22.33 FIUのスコアであった。UBE2Nは、EACでの84.85、BEでの72.40、及び正常ヒト組織での36.20と比較して、26.65 FIUのスコアであった。
DAD1、ISG15、S100P、及びUBE2Nに特異的なsiRNAを、EAC細胞株におけるDAD1、ISG15、S100P、及びUBE2Nの発現をノックダウンするその能力について解析した。細胞を上記の通りに処理し、タンパク質発現についてウェスタンブロットにより解析した。3連のノックダウン試料の4つのウェスタンブロットを3連の未処理対照の隣で泳動させた。図6に示されているように、siRNAは、DAD1、ISG15、S100P、及びUBE2Nの各々の発現を顕著に阻害した。これらのノックダウンの定量をGAPDHに対して正規化した。4つのマーカーは全て、17kDaに近い分子量を有していた。
MTT比色アッセイは、ISG15、S100P、及びUBE2Nに対するsiRNAで処理されたEAC細胞の細胞増殖の減少を示した(図7)。S100Pのノックダウンは、食道腺癌細胞株(OE-33)における細胞増殖を低下させるのに最大の効果を有した。UBE2N及びISG15のノックダウンも、未処理の細胞と比較して、細胞増殖の統計的に有意な阻害を示した。陽性対照(GAPDH)のノックダウンは、未処理対照及び陰性対照と比較して、細胞増殖の統計的に有意な低下を有した(P<0.01)。DAD1のノックダウンは、対照と比較して統計的に有意なより遅い増殖速度をもたらした。
食道内発癌の顕著な特徴のうちの1つは、全身に急速に遊走し、拡散する腺癌細胞の能力である。癌細胞の遊走の阻害は、通常、患者における全生存率の延長をもたらし、癌を限局させ続けるのを助け、所属リンパ節又は遠位臓器への拡散を減速させる。OE-33細胞におけるDAD1、ISG15、S100P、及びUBE2NのsiRNA媒介性ノックダウンを用いて、これらの遺伝子の抑制が未処理対照及び処理対照と比較して細胞遊走を阻害するかどうかを決定した。細胞遊走をスクラッチアッセイを用いてモニタリングした。12-ウェルプレート中の細胞を90%コンフルエンスまで増殖させ、その後、スクラッチを200μLピペット端で細胞に対して縦に入れた。その後、画像を時間0で並びに12及び16時間後に取得して、創傷閉塞の割合を決定した。16時間にわたるより高いパーセンテージのスクラッチ閉塞は、より高い割合の遊走と相関している。表4に示されているように、閉塞の平均パーセンテージ(各々のノックダウンについて、N=3)は、4つの対照群(各々の群について、N=3)と比較して、4つのノックダウンでより低かった。スクラッチ閉塞の減少は、この初期実験で試験された4つの遺伝子のいずれについても、16時間では統計的に有意でなかったが、それでも、これらの結果は、これら4つの遺伝子の阻害が食道腺癌細胞における細胞遊走の速度を減少させ得ることを示唆している。DAD1ノックダウンは、対照及び他の4つのマーカーと比較して最も遅い遊走の速度を達成した。図8及び表4を参照されたい。ISG15及びUBE2Nノックダウンも、対照と比較して、より遅い遊走速度を示した。S100Pノックダウンは、遊走速度に対して最も少ない影響を及ぼし、OE-33腺癌細胞における他の4つの遺伝子ノックダウンと比較して16時間後の創傷閉塞は78.0%であったが、それでも、4つの対照よりも少ない遊走を示した。両方の未処理細胞株(lipofectamineあり又はなし)は、8つの群のうち最も高い割合の遊走を有しており、スクラッチから16時間後、創傷閉塞は、ほぼ完全であった。siNEG対照は、16時間後、39.1%(-DAD1)、73.2%(-ISG15)、78.0%(-S100P)、及び73.6%(-UBE2N)と比較して、94.6%の平均閉塞パーセンテージを有していた。siPOS対照は、89.8%の平均創傷閉塞パーセンテージを有しており、これは、4つのマーカー遺伝子ノックダウンの各々と比較して、より速い遊走の速度であった。
食道腺癌は、癌性細胞が細胞死を引き起こす正常な機構から逃れるのを可能にする回避機構をたびたび発達させる。siRNAを用いて、EAC OE-33細胞におけるDAD1、ISG15、S100P、及びUBE2N発現をノックダウンした。その後、処理された細胞を解析し、ノックダウンが細胞死を増大させるかどうか及び/又は細胞傷害性に対する感受性を増大させるかどうかを決定した。S100P(P<0.0001)、UBE2N(P<0.0001)、及びISG15(P<0.01)のノックダウンは、各々、ノックダウンから48時間後に、本発明者らの陰性対照と比較して、増大した細胞傷害性の割合を示した(図9)。S100P及びUBE2Nのノックダウンは、特に、尋常でない割合の細胞傷害性を誘導した。
形質転換及び腫瘍形成に関与する6つの生物学的経路を代表する84個の遺伝子の下方調節及び過剰発現パターンを定量するQIAGEN製のCancer PathwayFinder PCRアレイを用いて、DAD1、ISG15、S100P、又はUBE2Nが腫瘍形成環境において果たす役割を解析した。DAD1、ISG15、S100P、及びUBE2Nを標的とするsiRNAでトランスフェクトされたOE-33腺癌細胞を使用した。図10A~10Dに示されているように、4つのマーカーのノックダウンは、腫瘍促進因子を下方調節する一方で、腫瘍抑制因子を上方調節するのに強いプラスの効果を有していた。これらのデータは、食道腺癌に関与する遺伝子を同定する際の記載されているマススペクトロメトリー解析法の有用性を示している。
CNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2Nは、EACを発症するリスクを解析する際の有用な診断を提供する。これらの遺伝子の解析は、個々の対象に基づいて臨床行為を指導することができる情報も提供する。EACの課題のうちの1つは、多くの人々が、癌を発症することなく、BEを発症することである。EASを発症するリスクが最も高い対象を特定することを用いて、より早い段階で悪性形質転換を検出し、転帰を改善することができる。分子診断によって現在提供されている胃食道癌の8つの最も使用されるマーカーと比較して、DAD1、ISG15、S100P、UBE2Nは、遙かにより高いパーセンテージのEACに存在する(表5及び6並びに図11を参照)48-55。それゆえ、これらのマーカーは、病理学的解析及び臨床的患者管理戦略における改善された診断有用性を表す。本発明者らは、DAD1、ISG15、S100P、UBE2Nが癌原遺伝子であることを示した。これらの上方調節は、アポトーシスを低下させ、タンパク質破壊を阻害する一方で、転移を促進することにより、EAC細胞の増殖をもたらす。したがって、これらの遺伝子の発現レベルの解析は、治療的介入の有効な標的としての役割を果たし、これらの腫瘍を標的療法及び化学療法に対して敏感にするのに役立つことができる。
標的実現可能性のために、及び標的化マススペクトロメトリーのためのアッセイを開発するために、UBE2N、DAD1、ISG15、CNDP2、GPI、SET、LTF、及びS100Pの標的ペプチドを設計、作製、及び評価した。
UBE2N(UniProt P61088)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、UBE2Nに特有である表7のペプチドを選択した。
DAD1(UniProt P61803)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、DAD1に特有である表9のペプチドを選択した。
ISG15(UniProt P05161)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、ISG15に特有である表11のペプチドを選択した。
CNDP2(UniProt Q96KP4)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、CNDP2に特有である表11のペプチドを選択した。
GPI(UniProt P06744)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、GPIに特有である表13のペプチドを選択した。全15個のペプチドがGPIの全てのアイソフォームで共通している。
SET(UniProt Q01105)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、SETに特有である表17のペプチドを選択した。
LTF(UniProt P02788)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、LTFに特有である表19のペプチドを選択した。全16個のペプチドが全てのアイソフォームで共通している。
S100P(UniProt P25815)標的ペプチドを標的化マススペクトロメトリーの標的実現可能性について評価した。以下の除外基準:メチオニン(M)なし、システイン(C)なし、及びアルギニン(R)又はリジン(K)と、それに続くプロリン(P)なし(すなわち、RP又はKPなし)をインシリコマッピングに使用した。以下の組入れ基準:5~25アミノ酸のペプチド配列長、及び完全トリプシン消化配列のみをインシリコマッピングに使用した。これらの基準に基づいて、S100Pに特有である表21のペプチドを選択した。
(材料及び方法)
(1.試薬及び溶液の調製)
1.1. 150mLの蒸留水を850mLのエタノール/試薬アルコールに添加することにより、1リットルの85%エタノール/試薬アルコールを調製する。
2.1.処理されるスライドの数に対して適切な容器及び試薬の容量については、下の表を参照されたい。
注意1:ガラスのコプリンジャー又は緑色の染色皿などの、キシレンに適した容器を使用する。ポリスチレンのペトリ皿は、使用しない。キシレンを使用する場合、この試薬を用いる工程は全て、ヒュームフード内で実施する。
4.1 マイヤーヘマトキシリン染色液の適用は、スライドをペトリ皿の中に平らに置いて行うことができる。しかしながら、蒸留水及び段階的アルコール工程は、処理されている特定のセットのスライドの数に適切なものが何であるかに応じて、ペトリ皿、コプリンジャー、スライドマイヤー、又は染色皿のいずれかで行うことができる。
(6.顕微解剖)
6.1.目的の組織部分を有資格病理学者にマーキングしてもらい、レーザーマイクロダイセクター(CellCut, MMI, Germany)を用いて、レーザー顕微解剖して、組織ペレットを回収した。顕微解剖を、研究標的タンパク質の発現レベルの決定のための少なくとも8mm2の組織材料を提供するスケールで実施した。図29Aは、バレット粘膜の顕微解剖を示した図である。或いは、図29Bに示されているように、針解剖を使用することができる。
(7.一般的な情報)
7.1.汚染物を持ち込むことを回避するために、清潔な区域で作業し、清潔な手袋をプロトコル全体を通じて着用することができる。清潔な手袋が外来粒子を持ち込み得る表面に触れるのを回避する。皮膚、毛髪、衣服、ほこり、及び微粒子などの汚染源への試料、試薬、装置、及び補給品の曝露を減らす。
8.1.総顕微解剖容積(mm3)を取得する。以下の等式:塩/洗剤を含まないバッファー(μL)=総顕微解剖容積(mm3)÷0.004μL/mm3を用いて、各々のチューブに添加される塩/洗剤を含まないバッファーの容量を計算する。
9.1.複数のチューブを試料用に処理した場合、その試料用のチューブをまとめてプールすることができる。
10.1.消化されたライセート調製物の容量に基づいて、各々の反応チューブに添加されるトリプシンの容量を計算する。0.05μLの容量の1μg/μLトリプシン溶液を全ての1μLの塩/洗剤を含まないバッファーに使用する。情報を記録する。例えば:
11.1.マイクロBCAアッセイを実施して、タンパク質濃度を決定する。
12.1.各々の反応チューブに添加される還元試薬(100mM DTT)の容量を、タンパク質決定のためのトリプシンの添加及びアリコートの除去後のMSライセート調製物の最終容量に基づいて計算する。
13.1.品質管理システムチェック
正常食道及び食道腺癌FFPE試料を上記のように処理し、試料を、標的化マススペクトロメトリーを(上記の通りに)用いて及び実施例2に記載されているペプチドを用いて、CNDP2、DAD1、GPI、ISG15、LTF、S100P、SET、及びUBE2Nの発現について解析した。表23及び図30A~30Bに示されている結果は、実施例1の発見マススペクトロメトリーを用いて観察されたことを裏付けている。本発明者らは、食道腺癌におけるこれらの新規マーカーの一貫した過剰発現を見出した。標的療法用に承認されている唯一のバイオマーカーHER2が食道腺癌(EAC)腫瘍の18%でしか過剰発現されていないので、これは重要である。対照的に、ISG15は、試験されたEAC腫瘍の90%で過剰発現され、LTFは、試験されたEAC腫瘍の70%で過剰発現され、CNDP2は、試験されたEAC腫瘍の100%で過剰発現され、DAD1は、試験されたEAC腫瘍の70%で過剰発現され、SETは、試験されたEAC腫瘍の90%で過剰発現され、UBE2Nは、試験されたEAC腫瘍の70%で過剰発現され、S100Pは、試験されたEAC腫瘍の90%で過剰発現され、かつGPIは、試験されたEAC腫瘍の60%で過剰発現された。これは、発癌時のこれらのマーカーの一貫した上方調節を裏付けているだけでなく、標的療法によって阻害するための潜在的な新しい標的を明らかにしている。
Claims (118)
- 対象の食道腺癌を発症するリスクを評価する方法であって、
(a)該対象由来の検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定すること(ここで、該1以上のマーカー遺伝子は、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、GPI、及びこれらの任意の組合せ:からなる群から選択される);並びに
(b)該検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを対照食道組織試料中の該1以上のマーカー遺伝子の発現レベルと比較すること(ここで、該対照食道組織試料と比べた該検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子の1つ又は複数のうちの少なくとも1つの発現の増大は、食道腺癌を発症するリスクの増大を示す)
:を含む、前記方法。 - 前記1以上のマーカー遺伝子がISG15を含む、請求項1記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がLTFを含む、請求項1又は2記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がCNDP2を含む、請求項1~3のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がDAD1を含む、請求項1~4のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がSETを含む、請求項1~5のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がUBE2Nを含む、請求項1~6のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がS100Pを含む、請求項1~7のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がGPIを含む、請求項1~8のいずれか一項記載の方法。
- (I)前記1以上のマーカー遺伝子が、ISG15、LTF、DAD1、及びこれらの任意の組合せからなる群から選択されるか;
(II)該1以上のマーカー遺伝子が、CNDP2、SET、GPI、及びこれらの任意の組合せからなる群から選択されるか;
(III)該1以上のマーカー遺伝子が、ISG15、LTF、DAD1、CNDP2、SET、GPI、及びこれらの任意の組合せからなる群から選択されるか;
(IV)該1以上のマーカー遺伝子が、UBE2N、S100P、及びこれらの任意の組合せからなる群から選択されるか、又は
(V)該1以上のマーカー遺伝子が、ISG15、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、GPI、及びこれらの任意の組合せからなる群から選択される
:請求項1記載の方法。 - 前記対象が胃食道逆流症もしくはバレット食道を有するか、又はそれらを有する疑いがある、請求項1~10のいずれか一項記載の方法。
- 前記対象がバレット食道を有し、前記検査用食道組織試料がバレット食道組織試料であり、前記方法がバレット食道から食道腺癌に進行するリスクを評価する、請求項11記載の方法。
- 前記対象がヒトである、請求項1~12のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が単離された食道組織試料を含む、請求項1~13のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が生検試料を含む、請求項1~14のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が、新鮮な試料、凍結試料、保存試料、ホルマリン固定試料、又はホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料を含む、請求項1~15のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道試料が顕微解剖試料を含む、前記請求項1~16のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が粘膜試料又はバレット食道粘膜試料を含む、請求項1~17のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から分離されている粘膜試料又はバレット食道粘膜試料を含み、ここで、該検査用食道組織試料が正常粘膜組織から分離されているバレット食道粘膜試料を含むか、又は該検査用食道組織試料が非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されているバレット食道粘膜試料を含む、請求項1~18のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から分離されているホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)粘膜試料又はFFPEバレット食道粘膜試料を含み、ここで、該検査用食道組織試料が正常粘膜組織から分離されているFFPEバレット食道粘膜試料を含むか、又は該検査用食道組織試料が非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されているFFPEバレット食道粘膜試料を含む、請求項19記載の方法。
- 工程(a)の前に、前記検査用食道組織試料から粘膜組織を選択的に単離して、非粘膜組織から分離されている検査用食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ前記1以上のマーカー遺伝子の発現レベルが該検査用食道粘膜試料中で決定されるか、
工程(a)の前に、該検査用食道組織試料からバレット食道粘膜組織を選択的に単離して、正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ該1以上のマーカー遺伝子の発現レベルが該検査用バレット食道粘膜試料中で決定されるか、又は
工程(a)の前に、該検査用食道組織試料からバレット食道粘膜組織を選択的に単離して、非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ該1以上のマーカー遺伝子の発現レベルが該検査用バレット食道粘膜試料中で決定される、
請求項1~20のいずれか一項記載の方法。 - 粘膜組織を選択的に単離する工程が顕微解剖を含む、請求項21記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料がホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料である、請求項21又は22記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が正常食道粘膜を含む、請求項1~23のいずれか一項記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が前記対象に由来するものである、請求項1~24のいずれか一項記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が、胃食道逆流症、バレット食道、又は食道腺癌を有さない1以上の対照対象に由来するものである、請求項1~24のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、該1以上のマーカー遺伝子によってコードされたメッセンジャーRNA(mRNA)の発現を測定するためのアッセイを実施することを含む、請求項1~26のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、該1以上のマーカー遺伝子によってコードされたタンパク質の発現を測定するためのアッセイを実施することを含む、請求項1~27のいずれか一項記載の方法。
- 前記アッセイが、マススペクトロメトリーアッセイ、免疫組織化学アッセイ、免疫アッセイ、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)、アルファLISAアッセイ、又は酵素結合免疫吸収スポット(ELISpot)アッセイを含む、請求項28記載の方法。
- 前記アッセイが前記マススペクトロメトリーアッセイを含む、請求項29記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料がホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料であり、前記方法が、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、該FFPE試料を処理して、ホルマリン架橋を無効にすることをさらに含み、任意に、ここで、該処理が洗剤を含まないバッファー中で該FFPE試料を加熱することを含む、請求項30記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、該検査用食道組織試料を1以上のプロテイナーゼで消化することを含む、請求項30記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、該FFPE試料を処理して、ホルマリン架橋を無効にし、その後、該検査用食道組織試料を1以上のプロテイナーゼで消化することを含む、請求項31記載の方法。
- 前記1以上のプロテイナーゼがトリプシンを含む、請求項32又は33記載の方法。
- 前記マススペクトロメトリーアッセイが標的化マススペクトロメトリーアッセイを含む、請求項30~34のいずれか一項記載の方法。
- 前記マススペクトロメトリーアッセイがトリプル四重極マススペクトロメーターで行われる、請求項30~35のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がISG15を含み、ISG15の発現レベルを決定することが配列番号11又は配列番号12に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~36のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がLTFを含み、LTFの発現レベルを決定することが配列番号54又は配列番号58に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~37のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がCNDP2を含み、CNDP2の発現レベルを決定することが配列番号20又は配列番号31に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~38のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がDAD1を含み、DAD1の発現レベルを決定することが配列番号7又は配列番号9に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~39のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がSETを含み、SETの発現レベルを決定することが配列番号50に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~40のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がUBE2Nを含み、UBE2Nの発現レベルを決定することが配列番号1又は配列番号5に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~41のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がS100Pを含み、S100Pの発現レベルを決定することが配列番号67又は配列番号68に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~42のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上のマーカー遺伝子がGPIを含み、GPIの発現レベルを決定することが配列番号35又は配列番号39に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項30~43のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの2つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~44のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの3つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~45のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの4つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~46のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの5つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~47のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの6つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~48のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの7つ以上の発現レベルを決定することを含む、請求項1~49のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIの発現レベルを決定することを含む、請求項1~50のいずれか一項記載の方法。
- 前記対照食道組織試料と比べた前記検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子のうちの1つ又は複数の大部分の発現の増大が食道腺癌を発症するリスクの増大を示す、請求項1~51のいずれか一項記載の方法。
- 前記対照食道組織試料と比べた前記検査用食道組織試料中のマーカー遺伝子のうちの1つ又は複数の各々の発現の増大が食道腺癌を発症するリスクの増大を示す、請求項1~52のいずれか一項記載の方法。
- 前記対象がヒトであり、かつバレット食道を有し、前記方法がバレット食道から食道腺癌に進行するリスクを評価し、
ここで、前記検査用食道組織試料が単離されたバレット食道粘膜試料を含み、前記対照食道組織試料が正常食道粘膜を含み、
ここで、該検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが該検査用食道組織試料をトリプシンで消化し、その後、標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施して、該1以上のマーカー遺伝子によってコードされるタンパク質の発現を測定することを含み、
ここで、該検査用食道組織試料中の1以上のマーカー遺伝子の発現レベルを決定することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIの発現レベルを決定することを含み、かつここで:
(I)ISG15の発現レベルを決定することが配列番号11又は配列番号12に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(II)LTFの発現レベルを決定することが配列番号54又は配列番号58に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(III)CNDP2の発現レベルを決定することが配列番号20又は配列番号31に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(IV)DAD1の発現レベルを決定することが配列番号7又は配列番号9に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(V)SETの発現レベルを決定することが配列番号50に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(VI)UBE2Nの発現レベルを決定することが配列番号1又は配列番号5に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(VII)S100Pの発現レベルを決定することが配列番号67又は配列番号68に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;かつ
(VIII)GPIの発現レベルを決定することが配列番号35又は配列番号39に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、
請求項1~53のいずれか一項記載の方法。 - 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から及び正常粘膜組織から分離されているホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)バレット食道粘膜試料を含み、
ここで、前記方法がバレット食道粘膜組織を顕微解剖によって該検査用食道組織試料から選択的に単離して、非粘膜組織から及び正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生し、その後、該検査用バレット食道粘膜試料を消化前に処理して、ホルマリン架橋を無効にすることをさらに含む、請求項54記載の方法。 - 対象における1以上の食道腺癌リスク因子の発現を決定する方法であって、該対象から得られた検査用食道組織試料中の該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することを含み、ここで、該1以上の食道腺癌リスク因子が、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの1つ又は複数を含む、前記方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを対照食道組織試料中の該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルと比較することをさらに含む、請求項56記載の方法。
- (I)前記1以上の食道腺癌リスク因子が、ISG15、LTF、及びDAD1のうちの1つもしくは複数を含むか;
(II)該1以上の食道腺癌リスク因子が、CNDP2、SET、及びGPIのうちの1つもしくは複数を含むか;
(III)該1以上の食道腺癌リスク因子が、ISG15、LTF、DAD1、CNDP2、SET、及びGPIのうちの1つもしくは複数を含むか;
(IV)該1以上の食道腺癌リスク因子が、UBE2N及びS100Pのうちの1つもしくは複数を含むか;又は
(V)該1以上の食道腺癌リスク因子が、ISG15、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、及びGPIのうちの1つもしくは複数を含む
:請求項56又は57記載の方法。 - 前記対象が胃食道逆流症もしくはバレット食道を有するか、又はそれらを有する疑いがあり、或いは該対象がバレット食道を有し、かつ前記検査用食道組織試料がバレット食道組織試料である、請求項56~58のいずれか一項記載の方法。
- 前記対象がヒトである、請求項56~59のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が単離された食道組織試料を含む、請求項56~60のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が生検試料を含む、請求項56~61のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が、新鮮な試料、凍結試料、保存試料、ホルマリン固定試料、又はホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料を含む、請求項56~62のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道試料が顕微解剖試料を含む、請求項56~63のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が粘膜試料又はバレット食道粘膜試料を含む、請求項56~64のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から分離されている粘膜試料又はバレット食道粘膜試料を含み、ここで、該検査用食道組織試料が正常粘膜組織から分離されているバレット食道粘膜試料を含むか、又は該検査用食道組織試料が非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されているバレット食道粘膜試料を含む、請求項56~65のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から分離されているホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)粘膜試料又はFFPEバレット食道粘膜試料を含み、ここで、該検査用食道組織試料が正常粘膜組織から分離されているFFPEバレット食道粘膜試料を含むか、又は該検査用食道組織試料が非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されているFFPEバレット食道粘膜試料を含む、請求項66記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施する前に、前記検査用食道組織試料から粘膜組織を選択的に単離して、非粘膜組織から分離されている検査用食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルが該検査用食道粘膜試料中で測定されるか、
該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施する前に、該検査用食道組織試料からバレット食道粘膜組織を選択的に単離して、正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルが該検査用バレット食道粘膜試料中で決定されるか、又は
該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施する前に、該検査用食道組織試料からバレット食道粘膜組織を選択的に単離して、非粘膜組織及び正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生することをさらに含み、かつ該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルが該検査用バレット食道粘膜試料中で決定される、
請求項56~67のいずれか一項記載の方法。 - 前記粘膜組織を選択的に単離する工程が顕微解剖を含む、請求項68記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料がホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料である、請求項68又は69記載の方法。
- 前記方法が、前記検査用食道組織試料中の前記1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを対照食道組織試料中の該1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルと比較することをさらに含む、請求項56~70のいずれか一項記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が正常食道粘膜を含む、請求項71記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が前記対象由来のものである、請求項71又は72記載の方法。
- 前記対照食道組織試料が、胃食道逆流症、バレット食道、又は食道腺癌を有さない1以上の対照対象由来のものである、請求項71又は72記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが該1以上の食道腺癌リスク因子によってコードされるメッセンジャーRNA(mRNA)の発現を測定するためのアッセイを実施することを含む、請求項56~74のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが該1以上の食道腺癌リスク因子によってコードされるタンパク質の発現を測定するためのアッセイを実施することを含む、請求項56~75のいずれか一項記載の方法。
- 前記アッセイが、マススペクトロメトリーアッセイ、免疫組織化学アッセイ、免疫アッセイ、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)、アルファLISAアッセイ、又は酵素結合免疫吸収スポット(ELISpot)アッセイを含む、請求項76記載の方法。
- 前記アッセイが前記マススペクトロメトリーアッセイを含む、請求項77記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料がホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)試料であり、前記方法が、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、該FFPE試料を処理して、ホルマリン架橋を無効にすることをさらに含み、任意に、ここで、該処理が該FFPE試料を洗剤を含まないバッファー中で加熱することを含む、請求項78記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、該検査用食道組織試料を1以上のプロテイナーゼで消化することを含む、請求項78記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、前記マススペクトロメトリーアッセイを実施する前に、前記FFPE試料を処理して、ホルマリン架橋を無効にし、その後、該検査用食道組織試料を1以上のプロテイナーゼで消化することを含む、請求項79記載の方法。
- 前記1以上のプロテイナーゼがトリプシンを含む、請求項80又は81記載の方法。
- 前記マススペクトロメトリーアッセイが標的化マススペクトロメトリーアッセイを含む、請求項78~82のいずれか一項記載の方法。
- 前記マススペクトロメトリーアッセイがトリプル四重極マススペクトロメーターで行われる、請求項78~83のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がISG15を含み、かつISG15の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号11又は配列番号12に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~84のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がLTFを含み、かつLTFの発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号54又は配列番号58に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~85のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がCNDP2を含み、かつCNDP2の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号20又は配列番号31に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~86のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がDAD1を含み、かつDAD1の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号7又は配列番号9に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~87のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がSETを含み、かつSETの発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号50に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~88のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がUBE2Nを含み、かつUBE2Nの発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号1又は配列番号5に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~89のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がS100Pを含み、かつS100Pの発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号67又は配列番号68に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~90のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の食道腺癌リスク因子がGPIを含み、かつGPIの発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが配列番号35又は配列番号39に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む、請求項78~91のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの2つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~92のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの3つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~93のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの4つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~94のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの5つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~95のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの6つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~96のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIのうちの7つ以上の発現レベルを測定することを含む、請求項56~97のいずれか一項記載の方法。
- 前記検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIの発現レベルを測定することを含む、請求項56~98のいずれか一項記載の方法。
- 前記対象がヒトであり、かつバレット食道を有しており、
ここで、前記検査用食道組織試料が単離されたバレット食道粘膜試料を含み、
ここで、該検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、該検査用食道試料をトリプシンで消化し、その後、標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み、
ここで、該検査用食道組織試料中の1以上の食道腺癌リスク因子の発現レベルを測定するためのアッセイを実施することが、ISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIの発現レベルを測定することを含み、かつここで、
(I)ISG15の発現レベルを測定することが配列番号11又は配列番号12に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(II)LTFの発現レベルを測定することが配列番号54又は配列番号58に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(III)CNDP2の発現レベルを測定することが配列番号20又は配列番号31に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(IV)DAD1の発現レベルを測定することが配列番号7又は配列番号9に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(V)SETの発現レベルを測定することが配列番号50に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(VI)UBE2Nの発現レベルを測定することが配列番号1又は配列番号5に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;
(VII)S100Pの発現レベルを測定することが配列番号67又は配列番号68に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含み;かつ
(VIII)GPIの発現レベルを測定することが配列番号35又は配列番号39に示される標的ペプチドの検出及び定量のための標的化マススペクトロメトリーアッセイを実施することを含む
:請求項56~99のいずれか一項記載の方法。 - 前記検査用食道組織試料が非粘膜組織から及び正常粘膜組織から分離されているホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)バレット食道粘膜試料を含み、
ここで、前記方法が、バレット食道粘膜組織を顕微解剖によって該検査用食道組織試料から選択的に単離して、非粘膜組織から及び正常粘膜組織から分離されている検査用バレット食道粘膜試料を産生し、その後、該検査用バレット食道粘膜試料を消化前に処理して、ホルマリン架橋を無効にすることをさらに含む、
請求項100記載の方法。 - 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のISG15の発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号11又は12に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のLTFの発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号54又は58に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のCNDP2の発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号20又は31に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のDAD1の発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号7又は9に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中における標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するためのSETの発現を決定するための配列番号50に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のUBE2Nの発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号1又は5に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のS100Pの発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号67又は68に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 対象由来の単離された検査用食道組織試料中のGPIの発現を決定するための標的化マススペクトロメトリーアッセイで使用するための配列番号35又は39に示される配列を含む単離されたペプチド。
- 前記単離されたペプチドが重同位体で標識されている、請求項102~109のいずれか一項記載の単離されたペプチド。
- 食道腺癌を有する対象の食道腺癌を治療するか、又は食道腺癌を発症するリスクのある対象の食道腺癌を予防する方法であって、1以上の阻害剤の治療有効量を該対象に投与することを含み、ここで、該1以上の阻害剤が、該対象の食道組織におけるISG15、LTF、CNDP2、DAD1、SET、UBE2N、S100P、及びGPIから選択される1以上の食道腺癌リスク因子の発現又は活性を低下させる、前記方法。
- 前記食道腺癌リスク因子が、ISG15、DAD1、UBE2N、及びS100Pから選択される、請求項111記載の方法。
- 食道腺癌細胞の増殖を阻害するか又は減少させる方法であって、1以上の阻害剤を該食道腺癌細胞に投与することを含み、ここで、該1以上の阻害剤が、ISG15、UBE2N、及びS100Pから選択される1以上の食道腺癌リスク因子の発現又は活性を低下させる、前記方法。
- 食道腺癌細胞の遊走を阻害するか又は減少させる方法であって、1以上の阻害剤を該食道腺癌細胞に投与することを含み、ここで、該1以上の阻害剤が、ISG15、DAD1、UBE2N、及びS100Pから選択される1以上の食道腺癌リスク因子の発現又は活性を低下させる、前記方法。
- 食道腺癌細胞の細胞傷害性に対する感受性を増大させ又は食道腺癌細胞の細胞死を誘導する方法であって、1以上の阻害剤を該食道腺癌細胞に投与することを含み、ここで、該1以上の阻害剤が、ISG15、UBE2N、及びS100Pから選択される1以上の食道腺癌リスク因子の発現又は活性を低下させる、前記方法。
- 前記食道腺癌細胞が食道腺癌を有する対象におけるのものである、請求項113~115のいずれか一項記載の方法。
- 前記1以上の阻害剤が前記1以上の食道腺癌リスク因子の発現を低下させる、請求項111~116のいずれか一項記載の方法。
- 前記阻害剤がRNAi剤又はアンチセンスオリゴヌクレオチドを含む、請求項111~117のいずれか一項記載の方法。
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