JP2023506547A - Ｂ型肝炎ウイルス感染を処置するためのｃｏｐｓ３阻害剤の使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、ＨＢＶ感染、特に慢性ＨＢＶ感染の処置に使用するためのＣＯＰＳ３阻害剤に関する。本発明は、特に、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡ等のｃｃｃＤＮＡを不安定化するためのＣＯＰＳ３阻害剤の使用に関する。本発明はまた、ＣＯＰＳ３に相補的であり、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡのレベルを低下させることができる核酸分子に関する。医薬組成物及びＨＢＶ感染の処置におけるその使用も本発明に含まれる。

Description

本発明は、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染、特に慢性ＨＢＶ感染の処置及び／又は予防に使用するためのＣＯＰＳ３阻害剤に関する。本発明は、特に、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡ等のｃｃｃＤＮＡを不安定化するためのＣＯＰＳ３阻害剤の使用に関する。本発明はまた、ＣＯＰＳ３に相補的であり、ＣＯＰＳ３の発現を低下させることができる核酸分子、例えばｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ及びアンチセンスオリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドに関する。本発明はまた、医薬組成物、並びにＨＢＶ感染の処置及び／又は予防におけるその使用も含む。

Ｂ型肝炎は、逆転写を介して複製する小型肝臓指向性ウイルスであるＢ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）に起因する感染性疾患である。慢性ＨＢＶ感染は、肝硬変及び肝細胞癌のような重篤な肝疾患に対する重要な因子である。慢性ＨＢＶ感染に対する現在の処置は、多機能逆転写酵素であるウイルスポリメラーゼを標的とする、ラミブジン、アデホビル、エンテカビル、テノホビル・ジソプロキシル、及びテノホビル・アラフェナミド等のペグ化１型インターフェロン又はヌクレオシ（チ）ド類似体の投与に基づいている。処置の成功は、通常、Ｂ型肝炎表面抗原（ＨＢｓＡｇ）の消失として測定される。しかしながら、Ｂ型肝炎ウイルスＤＮＡは感染後も体内に残存するため、完全なＨＢｓＡｇクリアランスが達成されることは稀である。ＨＢＶの持続は、核内で安定に維持されているＨＢＶゲノムのエピソーム型によって媒介される。このエピソーム型は「共有結合閉環状ＤＮＡ」（ｃｏｖａｌｅｎｔｌｙ ｃｌｏｓｅｄ ｃｉｒｃｕｌａｒ ＤＮＡ：ｃｃｃＤＮＡ）と呼ばれる。ｃｃｃＤＮＡは、ウイルス複製中間体であるプレゲノムＲＮＡ（ｐｒｅｇｅｎｏｍｉｃ ＲＮＡ：ｐｇＲＮＡ）を含む、全てのＨＢＶ転写物の鋳型として役立つ。ｃｃｃＤＮＡのいくつかのコピーの存在は、末期のＨＢＶ感染を再開するのに充分であろう。ＨＢＶに対する現在の処置はｃｃｃＤＮＡを標的としない。しかしながら、慢性ＨＢＶ感染の治癒には、ｃｃｃＤＮＡの排除が必要であろう（Ｎａｓｓａｌ，Ｇｕｔ．２０１５ Ｄｅｃ；６４（１２）：１９７２－８４．ｄｏｉ：１０．１１３６／ｇｕｔｊｎｌ－２０１５－３０９８０９によって概説される）。

ＣＯＰ９（構成的光形態形成９）シグナロソームは、イソペプチダーゼ活性を有するタンパク質複合体である。これは、Ｃｕｌｌｉｎ－ＲＩＮＧユビキチンリガーゼのカリンサブユニットからのＮＥＤＤ８タンパク質の加水分解を触媒し、Ｃｕｌｌｉｎ－ＲＩＮＧユビキチンリガーゼの脱アセチル化を担う。さらに、脱アセチル化カリン－ＲＩＮＧ複合体に結合することができ、それによって複合体を不活性化形態で保持することができる。したがって、ＣＯＰ９シグナロソームは、Ｃｕｌｌｉｎ－ＲＩＮＧユビキチンリガーゼの不活性化因子として機能する。哺乳動物では、シグナル伝達、タンパク質安定性、タンパク質リン酸化、細胞周期調節及びアポトーシス等の様々な過程にシグナロソームが関与している。ＣＯＰシグナル伝達体は、全ての真核生物に見られる。ヒトでは、ＣＯＰ９シグナロソームは、８つのサブユニットを含み、約３５０ｋＤａのサイズを有する。全てのサブユニットは、シグナロソームの完全な機能に必須であると思われる。（Ｌｉｎｇａｒａｊｕ ｅｔ ａｌ．（２０１４）Ｎａｔｕｒｅ．５１２（７５１３）：１６１－５．ｄｏｉ：１０．１０３８／ｎａｔｕｒｅ１３５６６．ＰＭＩＤ ２５０４３０１１）．

ＣＯＰＳ３（ＣＯＰ９シグナロソームサブユニット３）は、シグナロソームの第３のサブユニットであり、複合体の完全性を維持する。これは、横紋筋特異的β１Ｄインテグリン尾部に結合することが示されており、その細胞内局在は、分化した骨格筋細胞において変化する。ＣＯＰＳ３の他の名称は、ＪＡＢ１含有シグナロソームサブユニット３、シグナロソームサブユニット３、ＣＳＮ３及びＳＧＮ３である。

様々な刊行物は、ＲＮＡｉベースの技術を使用した標的細胞におけるＣＯＰＳ３のダウンレギュレーションを記載しており、これらの刊行物のいくつかを以下に引用する。

Ｂａ ｅｔ ａｌ．は、Ｃ２Ｃ１２細胞におけるＣＯＰＳ３のダウンレギュレーションのためのｓｈＲＮＡの使用を記載している。ＣＯＰＳ３のダウンレギュレーションは、いくつかのＣＯＰ９サブユニットの不安定化並びに核ＮＦ－κＢ局在化の増加及び成長速度の低下を伴った（Ｂａ ｅｔ ａｌ．，ＢＭＣ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ Ｔｏｘｉｃｏｌ．２０１７ Ｊｕｎ １７；１８（１）：４７．ｄｏｉ：１０．１１８６／ｓ４０３６０－０１７－０１５４－５）。

Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ．は、卵母細胞におけるＣＯＰ９シグナロソームの各サブユニットのｓｉＲＮＡ媒介ノックダウンの効果を調べた。ＣＯＰＳ３ノックダウンは、分裂Ｉ停止、成熟促進因子（ＭＰＦ）活性の破壊、及び後期促進複合体／シクロスポリン（ＡＰＣ／Ｃ）基質の分解の減少をもたらす（Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ．，ＰＬｏＳ Ｏｎｅ．２０１１；６（１０）：ｅ２５８７０．ｄｏｉ：１０．１３７１／ｊｏｕｒｎａｌ．ｐｏｎｅ．００２５８７０）。

Ｙｏｎｅｄａ－Ｋａｔｏ ｅｔ ａｌ．は、骨髄性白血病因子１（Ｍｙｅｌｏｉｄ ｌｅｕｋｅｍｉａ ｆａｃｔｏｒ １）がＣＯＰ９シグナロソームサブユニット３を介してＣＯＰ１を抑制することによりｐ５３を制御することを示した。具体的には、ｓｉＲＮＡによるＣＯＰＳ３タンパク質レベルの低下は、ＭＬＦ１誘導性Ｇ１停止を抑止し、遺伝毒性ストレスによるｐ５３の活性化を損なわせた（Ｙｏｎｅｄａ－Ｋａｔｏ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ ＥＭＢＯ Ｊｏｕｒｎａｌ（２００５）２４，１７３９－１７４９．ｄｏｉ：１０．１０３８／ｓｊ．ｅｍｂｏｊ．７６００６５６）。

ＣＯＰＳ３は、癌において更に役割を果たす。例えば、Ｐａｎｇ ｅｔ ａｌ．は、ｓｈＲＮＡによるＣＯＰＳ３のノックダウンがヌードマウスにおける肺癌腫瘍成長を阻害することを示した。（Ｐａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｊ Ｃａｎｃｅｒ．２０１７ Ａｐｒ ９；８（７）：１１２９－１１３６．ｄｏｉ：１０．７１５０／ｊｃａ．１６２０１）．同様に、Ｙａｎ ｅｔ ａｌ．は、ｓｉＲＮＡ媒介性のＣＯＰＳ ３遺伝子サイレンシングがＨＯＳ細胞の増殖及び遊走を減少させ、転移に関連し得ることを実証した（Ｙａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ（２０１１）１８，４５０－４５６）。Ｙｕ ｅｔ ａｌ．は、肝細胞癌細胞株（ＳＭＭＣ－７７２１及びＨｅｐ３Ｂ）におけるｓｈＲＮＡを使用したＣＯＰＳ３発現のノックダウンが、異種移植マウスにおいてｉｎ ｖｉｔｒｏ増殖阻害並びにｉｎ ｖｉｖｏ腫瘍重量減少を示すことを示した（Ｙｕ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ（２０１２）６９：１１７３－１１８０，ＤＯＩ １０．１００７／ｓ００２８０－０１１－１８１０－ｘ）。

本発明者らの知る限りでは、ＣＯＰＳ３は、ｃｃｃＤＮＡの安定性及び維持に関してｃｃｃＤＮＡ依存性因子として同定されたことはなく、ＣＯＰＳ３を阻害する分子がＨＢＶ感染処置のためのｃｃｃＤＮＡ不安定化剤として示唆されたこともない。
発明の目的

本発明は、ＨＢＶ感染細胞におけるＣＯＰＳ３（ＣＯＰ９シグナロソームサブユニット３又は構成的光形態形成９シグナロソームサブユニット３）の阻害とｃｃｃＤＮＡの減少との間に関連があり、ＨＢＶ感染個体の処置に関連することを示す。本発明の目的は、ＨＢＶ感染細胞中のｃｃｃＤＮＡを減少させるＣＯＰＳ３阻害剤を同定することである。このようなＣＯＰＳ３阻害剤はＨＢＶ感染の処置に用いることができる。

本発明は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでＣＯＰＳ３の発現を阻害することができる、新規の核酸分子を更に同定する。

本発明は、ＣＯＰＳ３の発現を調節することができ、ＣＯＰＳ３の機能に関連した疾患を処置又は予防するための、核酸を標的とするオリゴヌクレオチドに関する。

したがって、第１の態様では、本発明は、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染の処置及び／又は予防用のＣＯＰＳ３阻害剤を提供する。特に、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡ及び／又はＨＢＶプレゲノムＲＮＡ（ｐｇＲＮＡ）を減少させることができるＣＯＰＳ３阻害剤が有用である。そのような阻害剤は、有利には、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡを減少させることができる１２～６０ヌクレオチド長の核酸分子である。

更なる態様では、本発明は、哺乳動物ＣＯＰＳ３、例えばヒトＣＯＰＳ３、マウスＣＯＰＳ３又はカニクイザルＣＯＰＳ３に少なくとも９０％相補的な、少なくとも１２ヌクレオチド、特に１６～２０ヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列を含む１２～６０ヌクレオチド、例えば１２～３０ヌクレオチドの核酸分子に関する。そのような核酸分子は、ＣＯＰＳ３を発現する細胞においてＣＯＰＳ３の発現を阻害することができる。ＣＯＰＳ３の阻害は、細胞中に存在するｃｃｃＤＮＡの量の減少を可能にする。核酸分子は、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、二本鎖ｓｉＲＮＡ分子又はｓｈＲＮＡ核酸分子（特に化学的に生成されたｓｈＲＮＡ分子）から選択することができる。

本発明の更なる態様は、ＣＯＰＳ３の発現及び／又は活性を阻害する一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド又はｓｉＲＮＡに関する。特に、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡを減少させる１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシド及び１つ以上のホスホロチオエート結合を含む修飾アンチセンスオリゴヌクレオチド又は修飾ｓｉＲＮＡが有利である。

更なる態様では、本発明は、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド又はｓｉＲＮＡ等の本発明のＣＯＰＳ３阻害剤と、薬学的に許容され得る賦形剤とを含む医薬組成物を提供する。

更なる態様では、本発明は、有効量の本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は組成物等の本発明のＣＯＰＳ３阻害剤を当該細胞に投与することによって、ＣＯＰＳ３を発現している標的細胞におけるＣＯＰＳ３発現をｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏで調節する方法を提供する。いくつかの実施形態では、ＣＯＰＳ３発現は、いかなる処置もしない又は対照で処置したレベルと比較して、標的細胞において少なくとも５０％、又は少なくとも６０％低下する。いくつかの実施形態では、標的細胞はＨＢＶに感染し、ＨＢＶ感染細胞のｃｃｃＤＮＡは、処置なし又は対照で処置したレベルと比較して、ＨＢＶ感染標的細胞で少なくとも５０％、又は少なくとも６０％減少する。いくつかの実施形態では、標的細胞はＨＢＶに感染し、ＨＢＶ感染細胞のｃｃｃＤＮＡは、処置なし又は対照で処置したレベルと比較して、ＨＢＶ感染標的細胞で少なくとも２５％、例えば少なくとも４０％減少する。いくつかの実施形態では、標的細胞はＨＢＶに感染し、ＨＢＶ感染細胞のｐｇＲＮＡは、処置なし又は対照で処置したレベルと比較して、ＨＢＶ感染標的細胞で少なくとも５０％、又は少なくとも６０％、又は少なくとも７０％、又は少なくとも８０％減少する。

更なる態様では、本発明は、ＣＯＰＳ３のｉｎ ｖｉｖｏ活性に関連する疾患、障害、又は機能障害を処置又は予防するための方法であって、該疾患、障害、又は機能障害に罹患する又は罹患しやすい被験体に、治療又は予防有効量のの本発明のＣＯＰＳ３阻害剤、例えば本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド又はｓｉＲＮＡを投与することを含む、方法を提供する。

本発明の更なる態様は、本発明の核酸分子のコンジュゲート及び本発明の分子を含む医薬組成物である。特に、ＧａｌＮＡｃクラスターのように、肝臓を標的とするコンジュゲートである。

図１Ａ～Ｌ：オリゴヌクレオチドが「オリゴヌクレオチド」という用語によって表され、アシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分が三価Ｎ－アセチルガラクトサミン部分である、例示的なアンチセンスオリゴヌクレオチドコンジュゲートを示す。図１Ａ～Ｄの化合物は、ジリジンブランチャ（ｂｒａｎｃｈｅｒ）分子、ＰＥＧ３スペーサー、及び３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。図１Ａ（図１Ａ－１及び図１Ａ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）及び図１Ｂ（図１Ｂ－１及び図１Ｂ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）の化合物では、オリゴヌクレオチドはリンカーなしでアシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分に直接結合している。図１Ｃ（図１Ｃ－１及び図１Ｃ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）及び図１Ｄ（図１Ｄ－１及び図１Ｄ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）の化合物では、オリゴヌクレオチドはＣ６リンカーを介してアシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分に結合している。図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。図１Ｌの化合物は、合成の一部として依然として固体支持体上にある間にオリゴヌクレオチドに添加された単量体ＧａｌＮＡｃホスホラミダイドで構成され、Ｘ＝Ｓ又はＯであり、独立してＹ＝Ｓ又はＯであり、ｎ＝１～３である（国際公開第２０１７／１７８６５６号を参照）。図１Ｂ及び図１Ｄは、それぞれＣ６リンカーの有無にかかわらず、本明細書ではＧａｌＮＡｃ２又はＧＮ２とも呼ばれる。 図１Ｂ（図１Ｂ－１及び図１Ｂ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）の化合物では、オリゴヌクレオチドはリンカーなしでアシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分に直接結合している。 図１Ｃ（図１Ｃ－１及び図１Ｃ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）の化合物では、オリゴヌクレオチドはＣ６リンカーを介してアシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分に結合している。 図１Ｄ（図１Ｄ－１及び図１Ｄ－２は、同じ化合物の２つの異なるジアステレオ異性体を示す）の化合物では、オリゴヌクレオチドはＣ６リンカーを介してアシアロ糖タンパク質受容体標的化コンジュゲート部分に結合している。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｅ～Ｋの化合物は、市販のトレブラー分岐分子及び様々な長さ及び構造のスペーサー並びに３つの末端ＧａｌＮＡｃ炭水化物部分を含む。 図１Ｌの化合物は、合成の一部として依然として固体支持体上にある間にオリゴヌクレオチドに添加された単量体ＧａｌＮＡｃホスホラミダイドで構成され、Ｘ＝Ｓ又はＯであり、独立してＹ＝Ｓ又はＯであり、ｎ＝１～３である（国際公開第２０１７／１７８６５６号を参照）。

図１Ａ～Ｄのそれぞれに示される２つの異なるジアステレオ異性体は、コンジュゲーション反応の結果である。したがって、特定のアンチセンスオリゴヌクレオチドコンジュゲートのプールは、２つの異なるジアステレオ異性体のうちの１つのみを含有することができ、又は特定のアンチセンスオリゴヌクレオチドコンジュゲートのプールは、２つの異なるジアステレオ異性体の混合物を含有することができる。

定義
ＨＢＶ感染
「Ｂ型肝炎ウイルス感染」又は「ＨＢＶ感染」と言いう用語は、当該技術分野では一般的に知られており、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）によって引き起こされ、かつ肝臓に影響を及ぼす感染性疾患を指す。ＨＢＶ感染は急性感染又は慢性感染であり得る。慢性Ｂ型肝炎ウイルス（ｃｈｒｏｎｉｃ ｈｅｐａｔｉｔｉｓ Ｂ ｖｉｒｕｓ：ＣＨＢ）感染は、世界中で２億４８００万人に影響する世界的な疾病負荷である。年間およそ６８６，０００人の死亡は、ＨＢＶ関連末期肝疾患及び肝細胞癌（ＨＣＣ）に起因する（ＧＢＤ ２０１３；Ｓｃｈｗｅｉｔｚｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｌａｎｃｅｔ．２０１５ Ｏｃｔ １７；３８６（１０００３）：１５４６－５５）。ＷＨＯは、更なる介入がなければ、ＣＨＢ感染者の数は今後４０～５０年間にわたり現在の高い水準を維持し、累積２０００万人が２０１５と２０３０年の間に死亡すると予測した（ＷＨＯ ２０１６年）。ＣＨＢ感染は特異な臨床症状を呈する同種疾患ではない。感染した個体は、生涯でＣＨＢ関連肝疾患のいくつかの段階を経て進行している。これらの病期もまた標準治療（ｓｔａｎｄａｒｄ ｏｆ ｃａｒｅ：ＳＯＣ）による処置の基礎となる。現在のガイドラインでは、血清ＡＬＴレベル、ＨＢＶ ＤＮＡレベル、及び肝疾患の重症度の３つの基準に基づいて、ＣＨＢに感染した特定の個人のみを処置することを推奨している（ＥＡＳＬ、２０１７年）。この推奨は、ＳＯＣ、すなわちヌクレオシ（チ）ド類似体（ｎｕｃｌｅｏｓ（ｔ）ｉｄｅ ａｎａｌｏｇ：ＮＡ）及びペグ化インターフェロン－アルファ（ＰＥＧ－ＩＦＮ）が治癒的ではなく、かつ長期間投与しなければならず、それによって安全性リスクが増加するという事実による。ＮＡはＨＢＶ ＤＮＡ複製を効果的に抑制する。しかしながら、他のウイルスマーカには非常に限られた影響しか及ぼさない／一切影響を及ぼさない。ＨＢＶ感染の２つの特徴である、Ｂ型肝炎表面抗原（ＨＢｓＡｇ）及び共有結合閉環状ＤＮＡ（ｃｃｃＤＮＡ）は、ＨＢＶ治癒を目的とする新薬の主な標的である。ＣＨＢ患者の血漿中において、ＨＢｓＡｇサブウイルス（中空）粒子は、ＨＢＶビリオンを数で１０３～１０５倍上回る（Ｇａｎｅｍ＆Ｐｒｉｎｃｅ，Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ．２００４ Ｍａｒ １１；３５０（１１）：１１１８－２９）。その過剰は、急性ＨＢＶ感染の消散後に観察された血清学的マーカである中和抗ＨＢｓ抗体を発現できない個体を含む、該疾患の免疫病理発生に寄与すると考えられている。

いくつかの実施形態では、「ＨＢＶ感染」という用語は、「慢性ＨＢＶ感染」を指す。

さらに、この用語は、任意のＨＢＶ遺伝子型による感染を包含する。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ａに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｂに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｃに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｄに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｅに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｆに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｇに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｈに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｉに感染している。

いくつかの実施形態では、処置される患者は、ＨＢＶ遺伝子型Ｊに感染している。

ｃｃｃＤＮＡ（共有結合閉環状ＤＮＡ）
ｃｃｃＤＮＡは感染した肝細胞の核に存在するＨＢＶのウイルスの遺伝的鋳型であり、増殖性感染に必要な全てのＨＢＶ ＲＮＡ転写物を生じ、慢性ＨＢＶ感染の自然経過中のウイルス持続に関与する（Ｌｏｃａｒｎｉｎｉ＆Ｚｏｕｌｉｍ，Ａｎｔｉｖｉｒ Ｔｈｅｒ．２０１０；１５ Ｓｕｐｐｌ ３：３－１４．ｄｏｉ：１０．３８５１／ＩＭＰ１６１９）。ｃｃｃＤＮＡはウイルスのリザーバとして作用し、処置中止後のウイルスリバウンド源であって、長期の、時として生涯の処置を必要とする。ＰＥＧ－ＩＦＮは、その様々な副作用のために、ＣＨＢの小さなサブセットにしか投与することができない。

したがって、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡの分解又は除去により定義される完全治癒をＣＨＢ患者の大部分にもたらすことができる新規の治療法が、強く必要とされている。

化合物
本明細書では、「化合物」という用語は、ＣＯＰＳ３の発現又は活性を阻害することができる任意の分子を意味する。本発明の特定の化合物は、本発明に係るＲＮＡｉ分子若しくはアンチセンスオリゴヌクレオチド等の核酸分子、又はそのような核酸分子を含む任意のコンジュゲートである。例えば、本明細書において、化合物は、ＣＯＰＳ３を標的とする核酸分子、特にアンチセンスオリゴヌクレオチド又はｓｉＲＮＡであり得る。

オリゴヌクレオチド
本明細書で使用される場合、「オリゴヌクレオチド」という用語は、２つ以上の共有結合したヌクレオシドを含む分子として当業者によって一般的に理解されるように定義される。このような共有結合したヌクレオシドはまた、核酸分子又はオリゴマーとも称される場合がある。

明細書及び特許請求の範囲に記載されているオリゴヌクレオチドは、概して、７０ヌクレオチド長未満の治療用オリゴヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドは、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、若しくはそれを含み得、又は例えばＣＲＩＳＰＲ ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、アプタマー若しくはリボザイム等の他の核酸分子であり得る。治療用オリゴヌクレオチド分子は、通常、固相化学合成と、その後の精製及び単離によって、研究室内で作製される。しかしながら、ｓｈＲＮＡは、多くの場合、レンチウイルスベクタを用いて細胞に送達され、次いで転写されて一本鎖ＲＮＡを生成し、これにより、ＲＮＡ干渉機構（ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＮＡ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｓｉｌｅｎｃｉｎｇ ｃｏｍｐｌｅｘ：ＲＩＳＣ）を含む）と相互作用することができるＲＮＡステムループ（ヘアピン）ＲＮＡ構造を形成するであろう。本発明の一実施形態では、ｓｈＲＮＡは、化学的に生成されたｓｈＲＮＡ分子である（プラスミド又はウイルスからの細胞ベースの発現に依存しない）。オリゴヌクレオチドの配列に言及する場合には、共有結合したヌクレオチド又はヌクレオシドの核酸塩基部分の配列又は順序、若しくはその修飾が言及される。概して、本発明のオリゴヌクレオチドは、人工であり、化学的に合成され、典型的には精製又は単離される。しかしながら、いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドは標的細胞への侵入時にベクタから転写されるｓｈＲＮＡである。本発明のオリゴヌクレオチドは、１つ以上の修飾ヌクレオシド又はヌクレオチドを含み得る。

いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドは、１０～７０ヌクレオチド長、例えば１２～６０、例えば１３～５０、例えば１４～４０、例えば１５～３０、例えば１６～２５、例えば１６～２２、例えば１６～２０連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。したがって、本発明のオリゴヌクレオチドは、いくつかの実施形態では、１２～２５ヌクレオチドの長さを有し得る。あるいは、本発明のオリゴヌクレオチドは、いくつかの実施形態では、１５～２２ヌクレオチドの長さを有し得る。

いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列は、２４以下のヌクレオチド、例えば２２、例えば２０以下のヌクレオチド、例えば１８以下のヌクレオチド、例えば１４、１５、１６、又は１７ヌクレオチドを含むか、又はそれらからなる。本明細書で提供されるいずれの範囲も、範囲の終点を含むことを理解するべきである。したがって、核酸分子が１２～２５ヌクレオチドを含むと記される場合、１２ヌクレオチド及び２５ヌクレオチドの両方が含まれる。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、又は２２連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。

オリゴヌクレオチド（ｏｌｉｇｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）（複数可）は、哺乳動物における標的核酸の発現の調節用である。いくつかの実施形態では、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、及びアンチセンスオリゴヌクレオチド等の核酸分子は、典型的には、標的核酸（複数可）の発現を阻害するためのものである。

本発明の一実施形態では、オリゴヌクレオチドは、ＲＮＡｉ剤、例えばｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡから選択される。別の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、ＲＮａｓｅ Ｈと相互作用する高親和性修飾アンチセンスオリゴヌクレオチド等の、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドである。

いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドは、例えば２’糖修飾ヌクレオシド等の１つ以上の修飾ヌクレオシド又はヌクレオチドを含んでもよい。

いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドは、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含む。

いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドは、非ヌクレオシド部分（コンジュゲート部分）に結合され得る。

オリゴヌクレオチドのライブラリは、バリアントオリゴヌクレオチドのコレクションとして理解されるべきである。オリゴヌクレオチドのライブラリの目的は様々であり得る。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドのライブラリは、オリゴヌクレオチドのライブラリ内で最も強力な配列を同定する目的で、１つ以上の哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸を標的とする重複する核酸塩基配列を有するオリゴヌクレオチドから構成される。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドのライブラリは、親又は先祖オリゴヌクレオチドのオリゴヌクレオチド設計バリアント（子核酸分子）のライブラリであって、該オリゴヌクレオチド設計バリアントは親核酸分子のコア核酸塩基配列を保持する。

アンチセンスオリゴヌクレオチド
本明細書で使用される場合、「アンチセンスオリゴヌクレオチド」、又は「ＡＳＯ」という用語は、標的核酸、特に標的核酸上の連続配列にハイブリダイズすることによって標的遺伝子の発現を調節することができるオリゴヌクレオチドとして定義される。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、基本的に二本鎖ではなく、したがってｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡではない。好ましくは、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは一本鎖である。本発明の単鎖オリゴヌクレオチドは、自己内又は自己間の相補性の程度がオリゴヌクレオチドの全長にわたって５０％未満である限り、ヘアピン又は分子間二重構造（同じオリゴヌクレオチドの２つの分子間の二重鎖）を形成することができるものと理解される。

有利には、本発明の一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ヌクレアーゼ耐性を低下させるためＲＮＡヌクレオシドを含まない。

有利には、本発明のオリゴヌクレオチドは、例えば２’糖修飾ヌクレオシド等の１つ以上の修飾ヌクレオシド又はヌクレオチドを含む。さらに、修飾されていないヌクレオシドがＤＮＡヌクレオシドであることは有利である。

ＲＮＡｉ分子
本明細書では、「ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）分子」という用語は、ＲＮＡヌクレオシドを含有し、ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）を介してＲＮＡ転写物の標的切断を媒介する短い二本鎖オリゴヌクレオチドを指し、ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体では、触媒的ＲＩＳＣ成分のアルゴノートと相互作用する。ＲＮＡｉ分子は、細胞、例えば哺乳動物被験体等の被験体内の細胞における標的核酸の発現を調節、例えば阻害する。ＲＮＡｉ分子には、一本鎖ＲＮＡｉ分子Ｌｉｍａ ａｔ ａｌ ２０１２ Ｃｅｌｌ １５０：８８３）及び二本鎖ｓｉＲＮＡ、並びに短いヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）が含まれる。本発明のいくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチド、又はその連続ヌクレオチド配列は、ｓｉＲＮＡ等のＲＮＡｉ剤である。

ｓｉＲＮＡ
「低分子干渉リボ核酸」又は「ｓｉＲＮＡ」という用語は、低分子干渉リボ核酸ＲＮＡｉ分子を指す。これは二本鎖ＲＮＡ分子のクラスであり、当該技術分野では短干渉ＲＮＡ又はサイレンシングＲＮＡとしても知られている。ｓｉＲＮＡは、典型的にはセンス鎖（パッセンジャ鎖とも呼ばれる）及びアンチセンス鎖（ガイド鎖とも呼ばれる）を含み、各鎖は１７～３０ヌクレオチド長、典型的には１９～２５ヌクレオシド長であり、アンチセンス鎖は標的核酸（適切には成熟ｍＲＮＡ配列）に相補的、例えば少なくとも９５％相補的、例えば完全に相補的であり、センス鎖はアンチセンス鎖に相補的であるので、センス鎖及びアンチセンス鎖は二本鎖又は二本鎖領域を形成する。ｓｉＲＮＡ鎖は、平滑末端二重鎖を形成し得るか、又は有利には、センス鎖及びアンチセンス鎖３’末端は、例えば、１、２、又は３ヌクレオシドの３’オーバーハングを形成することがあり、これは、インビボでＲＩＳＣ基質を形成するＤｉｃｅｒによって生成される生成物に類似する。Ｄｉｃｅｒ基質の有効な拡張形態は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第８，３４９，８０９号及び米国特許第８，５１３，２０７号に記載されている。いくつかの実施形態では、センス鎖及びアンチセンス鎖の両方は、２ｎｔ３’オーバーハングを有する。したがって、二重鎖領域は、例えば１７～２５ヌクレオチド長、例えば２１～２３ヌクレオチド長であり得る。

一旦細胞内に入ると、アンチセンス鎖は、標的核酸の標的分解又は標的阻害を媒介するＲＩＳＣ複合体に組み込まれる。ｓｉＲＮＡは、典型的には、ＲＮＡヌクレオシドに加えて修飾ヌクレオシドを含む。一実施形態では、ｓｉＲＮＡ分子はまた、修飾ヌクレオチド間結合及び２’糖修飾ヌクレオシド、例えば２’－４’二環式リボース修飾ヌクレオシド（ＬＮＡ及びｃＥＴ又は２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ（ＭＯＥ）、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、アラビノ核酸（ＡＮＡ）、２’－フルオロ－ＡＮＡのような２’置換修飾を含む）を用いて化学的に修飾されてもよい。特に、２’フルオロ、２’－Ｏ－メチル、又は２’－Ｏ－メトキシエチルをｓｉＲＮＡに組み込むことができる。

いくつかの実施形態では、ｓｉＲＮＡセンス（パッセンジャ）鎖のヌクレオチドの全ては、ＬＮＡ等の２’糖修飾ヌクレオシドで修飾され得る（例えば、国際公開第２００４／０８３４３０号、同第２００７／０８５４８５号を参照）。いくつかの実施形態では、ｓｉＲＮＡのパッセンジャ鎖は不連続であり得る（例えば、国際公開第２００７／１０７１６２号を参照）。ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖のシード領域で生じる熱不安定化ヌクレオチドの取込みは、ｓｉＲＮＡのオフターゲット活性の低減に有用であることが報告されている（例えば、国際公開第２０１８／０９８３２８号を参照）。好適には、ｓｉＲＮＡは、アンチセンス鎖の５’末端に５’リン酸基又は５’リン酸模倣物を含む。いくつかの実施形態では、アンチセンス鎖の５’末端は、ＲＮＡヌクレオシドである。

一実施形態では、ｓｉＲＮＡ分子は、少なくとも１つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートのヌクレオシド間結合を更に含む。ホスホロチオエート（ｐｈｏｓｐｈｏｒｏｔｈｉｏａｉｅ）若しくはメチルホスホネートのヌクレオシド間結合は一方若しくは両方の鎖の３’末端にあり得る（例えば、アンチセンス鎖又はセンス鎖）か、又はホスホロチオエート若しくはメチルホスホネートのヌクレオシド間結合は一方若しくは両方の鎖の５’末端にあり得る（例えば、アンチセンス鎖又はセンス鎖）か、又はホスホロチオエート若しくはメチルホスホネートのヌクレオシド間結合は一方又は両方の鎖の５’末端及び３’末端の両方にあり得る（例えば、アンチセンス鎖又はセンス鎖）。いくつかの実施形態では、残りのヌクレオシド間結合は、ホスホジエステル結合である。いくつかの実施形態では、ｓｉＲＮＡ分子は、１つ以上のホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含む。ｓｉＲＮＡ分子において、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合はＲＩＣＳにおけるヌクレアーゼ切断を低減し得るため、したがって、アンチセンス鎖における全てのヌクレオシド間結合が修飾されはしないことが有利である。

ｓｉＲＮＡ分子は、リガンドを更に含むことができる。いくつかの実施形態では、リガンドは、センス鎖の３’末端に結合する。

生物学的分布については、ｓｉＲＮＡを標的リガンドに結合させるか、及び／又は脂質ナノ粒子に製剤化することができる。

本発明の他の態様は、治療的使用に適したｓｉＲＮＡ分子といったこれらのｄｓＲＮＡを含む医薬組成物と、例えば本明細書に開示されている種々の疾患状態の処置のために、本発明のｓｉＲＮＡといったｄｓＲＮＡ分子を投与することによって標的遺伝子の発現を阻害する方法と、に関する。

ｓｈＲＮＡ
「短ヘアピンＲＮＡ」又は「ｓｈＲＮＡ」という用語は、一般に４０と７０の間のヌクレオチド長、例えば４５と６５の間のヌクレオチド長、例えば５０と６０の間のヌクレオチド長の分子を指し、ステムループ（ヘアピン）ＲＮＡ構造を形成し、これは、特徴的な２塩基３’オーバーハングを有する１９～２３塩基対の短干渉ＲＮＡにｄｓＲＮＡをプロセシングすると考えられるＤｉｃｅｒとして既知のエンドヌクレアーゼと相互作用し、次いでＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＮＡ－ｉｎｄｕｃｅｄ ｓｉｌｅｎｃｉｎｇ ｃｏｍｐｌｅｘ：ＲＩＳＣ）に組み込まれる。適切な標的ｍＲＮＡに結合すると、ＲＩＳＣ内の１つ以上のエンドヌクレアーゼが標的を切断してサイレンシングを誘導する。ｓｈＲＮＡオリゴヌクレオチドは、修飾ヌクレオチド間結合及び２’糖修飾ヌクレオシド、例えば２’－４’二環式リボース修飾ヌクレオシド（ＬＮＡ及びｃＥＴ又は２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ（ＭＯＥ）、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、アラビノ核酸（ＡＮＡ）、２’－フルオロ－ＡＮＡのような２’置換修飾を含む）を用いて化学的に修飾されてもよい。

いくつかの実施形態では、ｓｈＲＮＡ分子は、１つ以上のホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含む。ＲＮＡｉ分子において、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合は、ＲＩＣＳにおけるヌクレアーゼ切断を低減し得るため、したがってｓｈＲＮＡ分子のステムループにおける全てのヌクレオシド間結合が修飾されはしないことが有利である。ホスホロチオエートヌクレオシド間結合は、ｓｈＲＮＡ分子のステムループの３’及び／又は５’末端、特に標的核酸に相補的ではない分子の部分に有利に配置することができる。標的核酸に相補的なｓｈＲＮＡ分子の領域は、しかしながら、Ｄｉｃｅｒによる切断後に３’末端及び／又は５’末端になると予測される部分における最初の２～３個のヌクレオシド間結合でもまた修飾され得る。

連続ヌクレオチド配列
「連続ヌクレオチド配列」という用語は、標的核酸に相補的な核酸分子の領域を指す。この用語は、本明細書で「連続核酸塩基配列」という用語及び「オリゴヌクレオチドモチーフ配列」という用語と互換的に用いられる。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドの全てのヌクレオチドが連続ヌクレオチド配列を構成する。いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、ｓｉＲＮＡ分子のガイド鎖に含まれる。いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、標的核酸に対して１００％相補的であるｓｈＲＮＡ分子の一部である。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドは、Ｆ－Ｇ－Ｆ’ギャップマー領域のような連続ヌクレオチド配列を含み、任意には、更なるヌクレオチド（複数可）、例えば、官能基（例えば、標的化のためのコンジュゲート基）を連続ヌクレオチド配列に結合するために使用され得るヌクレオチドリンカー領域を含み得る。ヌクレオチドリンカー領域は、標的核酸に相補的であっても相補的でなくてもよい。いくつかの実施形態では、アンチセンスオリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、連続ヌクレオチド配列を構成である。いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、標的核酸に対して１００％相補的である。

ヌクレオチド及びヌクレオシド
ヌクレオチド及びヌクレオシドは、オリゴヌクレオチド及びポリヌクレオチドの構成単位であり、本発明の目的のために、天然に存在するヌクレオチド及びヌクレオシドと、天然に存在しないヌクレオチド及びヌクレオシドとの両方を含む。本来、ＤＮＡヌクレオチド及びＲＮＡヌクレオチド等のヌクレオチドは、リボース糖部分、核酸塩基部分、及び１つ以上のリン酸基（ヌクレオシドには存在しない）を含む。ヌクレオシド及びヌクレオチドはまた、互換的に「単位」又は「モノマー」と呼ぶことができる。

修飾ヌクレオシド
本明細書で使用される場合、「修飾ヌクレオシド」又は「ヌクレオシド修飾」という用語は、糖部分又は（核酸）塩基部分の１つ以上の修飾の導入によって、同等のＤＮＡ又はＲＮＡヌクレオシドと比較して修飾されたヌクレオシドを指す。有利には、修飾ヌクレオシドの１つ以上は修飾糖部分を含む。修飾ヌクレオシドという用語はまた、「ヌクレオシド類縁体」又は修飾「単位」又は修飾「モノマー」という用語と互換的に使用されてもよい。非修飾ＤＮＡ又はＲＮＡ糖部分を有するヌクレオシドは、本明細書ではＤＮＡ又はＲＮＡヌクレオシドと称される。ＤＮＡ又はＲＮＡヌクレオシドの塩基領域に修飾を有するヌクレオシドは、それらがワトソン・クリック塩基対合可能な場合には、依然として一般的にＤＮＡ又はＲＮＡと称される。

修飾ヌクレオシド間結合
「修飾ヌクレオシド間結合」という用語は、２つのヌクレオシドを共に共有結合する、ホスホジエステル（ＰＯ）結合以外の結合として当業者に一般的に理解されるように定義される。したがって、本発明のオリゴヌクレオチドは、１つ以上のホスホロチオエートのヌクレオシド間結合又は１つ以上のホスホロジチオエートのヌクレオシド間結合のような、１つ以上の修飾ヌクレオシド間結合を含むことができる。

本発明のオリゴヌクレオチドでは、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合を用いることが有利である。

ホスホロチオエートヌクレオシド間結合は、ヌクレアーゼ耐性、有益な薬物動態、及び製造の容易さに起因して、特に有用である。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列の少なくとも５０％のヌクレオシド間結合がホスホロチオエートであり、オリゴヌクレオチド又はそのヌクレオチド配列の少なくとも６０％、例えば少なくとも７０％、例えば少なくとも７５％、例えば少なくとも８０％又は例えば少なくとも９０％のヌクレオシド間結合が、ホスホロチオエートである。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列のヌクレオシド間結合の全部は、ホスホロチオエートである。

いくつかの有利な実施形態では、オリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列の全ヌクレオシド間結合がホスホロチオエートであるか、又はオリゴヌクレオチドの全ヌクレオシド間結合がホスホロチオエート結合である。

欧州特許第２ ７４２ １３５号に開示されているように、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、他のヌクレオシド間結合（ホスホジエステル及びホスホロチオエート以外の）、例えばアルキルホスホネート／メチルホスホネートヌクレオシド間結合を含んでもよいことが認識され、これは欧州特許第２ ７４２ １３５号によれば、例えば別のＤＮＡホスホロチオエートのギャップ領域内で耐性であり得る。

核酸塩基
核酸塩基という用語は、ヌクレオシド及びヌクレオチドに存在するプリン（例えばアデニン及びグアニン）及びピリミジン（例えばウラシル、チミン及びシトシン）部分を含み、これらは核酸ハイブリダイゼーションにおいて水素結合を形成する。本発明の文脈において、核酸塩基という用語は、天然に存在する核酸塩基とは異なり得るが、核酸ハイブリダイゼーションの際に機能的である修飾核酸塩基も包含する。この文脈において、「核酸塩基」とは、アデニン、グアニン、シトシン、チミジン、ウラシル、キサンチン、及びヒポキサンチン等の天然に存在する核酸塩基と、天然に存在しないバリアントとの両方を指す。このようなバリアントは、例えば、Ｈｉｒａｏ ｅｔ ａｌ（２０１２）Ａｃｃｏｕｎｔｓ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｖｏｌ ４５ ｐａｇｅ ２０５５ ａｎｄ Ｂｅｒｇｓｔｒｏｍ（２００９）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｓｕｐｐｌ．３７ １．４．１に記載されている。

いくつかの実施形態において、核酸塩基部分は、プリン又はピリミジンを、修飾されたプリン又はピリミジン、例えば置換プリン又は置換ピリミジン、例えばイソシトシン、シュードイソシトシン、５－メチルシトシン、５－チアゾロ－シトシン、５－プロピニル－シトシン、５－プロピニル－ウラシル、５－ブロモウラシル５－チアゾロ－ウラシル、２－チオ－ウラシル、２’チオ－チミン、イノシン、ジアミノプリン、６－アミノプリン、２－アミノプリン、２，６－ジアミノプリン、及び２－クロロ－６－アミノプリンから選択される核酸塩基に変えることにより修飾される。

核酸塩基部分は、各々の対応する核酸塩基の文字コード、例えば、Ａ、Ｔ、Ｇ、Ｃ、又はＵで示すことができ、各文字は、任意に、同等の機能の修飾核酸塩基を含み得る。例えば、例示したオリゴヌクレオチドにおいて、核酸塩基部分は、Ａ、Ｔ、Ｇ、Ｃ、及び５－メチルシトシンから選択される。任意に、ＬＮＡギャップマーでは、５－メチルシトシンＬＮＡヌクレオシドが用いられ得る。

修飾オリゴヌクレオチド
「修飾オリゴヌクレオチド」という用語は、１つ以上の糖－修飾ヌクレオシド及び／又は修飾ヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチドを説明するものである。「キメラ」オリゴヌクレオチドという用語は、修飾ヌクレオシド及びＤＮＡヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドを記述するために文献で使用されている用語である。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、有利にはキメラオリゴヌクレオチドである。

相補性
「相補性」又は「相補的」という用語は、ヌクレオシド／ヌクレオチドのワトソン・クリック塩基対形成能を表す。ワトソン・クリック塩基対は、グアニン（Ｇ）－シトシン（Ｃ）及びアデニン（Ａ）－チミン（Ｔ）／ウラシル（Ｕ）である。オリゴヌクレオチドは修飾核酸塩基を有するヌクレオシドを含んでいてもよく、例えば５－メチルシトシンは、しばしばシトシンの代わりに用いられ、したがって、相補性という用語は、非修飾核酸塩基と修飾核酸塩基との間のワトソン・クリック塩基対合を包含することが理解されよう（例えば、Ｈｉｒａｏ ｅｔ ａｌ（２０１２）Ａｃｃｏｕｎｔｓ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｖｏｌ ４５ ｐａｇｅ ２０５５ ａｎｄ Ｂｅｒｇｓｔｒｏｍ（２００９）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｓｕｐｐｌ．３７ １．４．１を参照）。

本明細書で使用される場合、「％相補的」という用語は、連続ヌクレオチド配列にわたって参照配列（例えば、標的配列又は配列モチーフ）に相補的である、核酸分子（例えば、オリゴヌクレオチド）の連続ヌクレオチド配列のヌクレオチドの割合（パーセント）を指す。したがって、相補性のパーセンテージは、２つの配列間（標的配列５’－３’と３’－５’からのオリゴヌクレオチド配列とを整列させた場合）で相補的である（ワトソン・クリック塩基対から）整列した核酸塩基の数を数え、その数をオリゴヌクレオチド中のヌクレオチドの総数で割り、１００を掛けることによって計算される。このような比較において、整列（塩基対を形成）しない核酸塩基／ヌクレオチドは、ミスマッチと称される。挿入及び欠失は、連続ヌクレオチド配列の％相補性の計算において許容されない。相補性の決定において、核酸塩基の化学的修飾は、核酸塩基がワトソン・クリック塩基対合を形成する機能的能力が保持される限り、無視されることが理解されるであろう（例えば、５’－メチルシトシンは、％同一性の計算の目的のために、シトシンと同一であると見なされる）。

「完全に相補的な」という用語は、１００％の相補性を指す。

同一性
本明細書で使用される場合、「同一性」という用語は、連続ヌクレオチド配列にわたって参照配列（例えば、配列モチーフ）と同一である、核酸分子（例えば、オリゴヌクレオチド）内の連続ヌクレオチド配列のヌクレオチドの割合（パーセントで表される）を指す。したがって、同一性のパーセンテージは、２つの配列（本発明の化合物の連続ヌクレオチド配列及び参照配列における）の間で同一の（一致する）整列された核酸塩基の数を数え、その数をオリゴヌクレオチドのヌクレオチドの総数で割り、１００を掛けることにより計算される。したがって、同一性の百分率＝（一致数×１００）／整列領域（例えば、連続ヌクレオチド配列）の長さ。挿入及び欠失は、連続ヌクレオチド配列の同一性の百分率の計算において許容されない。同一性の決定において、核酸塩基の化学的修飾は、核酸塩基がＷａｔｓｏｎ Ｃｒｉｃｋ塩基対を形成する機能的能力が保持される限り、無視されることが理解されよう（例えば、５－メチルシトシンは、同一性％の計算の目的のために、シトシンと同一であると見なされる）。

ハイブリダイゼーション
本明細書で使用される場合、「ハイブリダイズ」又は「ハイブリダイズする」という用語は、２つの核酸鎖（例えば、オリゴヌクレオチド及び標的核酸）が対向する鎖上の塩基対間に水素結合を形成することにより二重鎖を形成することと理解されるべきである。２つの核酸鎖の間の結合の親和性は、ハイブリダイゼーションの強度である。これは、オリゴヌクレオチドの半分が標的核酸と二重鎖を形成する温度として定義される、融解温度（Ｔ_ｍ）によって説明されることが多い。生理学的条件では、Ｔ_ｍは親和性に厳密に比例しない（Ｍｅｒｇｎｙ ａｎｄ Ｌａｃｒｏｉｘ，２００３，Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ １３：５１５－５３７）。標準状態ギブス自由エネルギーΔＧ°は、結合親和性をより正確に表し、ΔＧ°＝－ＲＴｌｎ（Ｋ_ｄ）によって反応の解離定数（Ｋ_ｄ）に関連付けられ、式中、Ｒは気体定数であり、Ｔは絶対温度である。したがって、オリゴヌクレオチドと標的核酸との間の反応の非常に低いΔＧ°は、オリゴヌクレオチドと標的核酸との間の強いハイブリダイゼーションを反映している。ΔＧ°は、水性濃度が１Ｍ、ｐＨが７、温度が３７℃の反応に関連したエネルギーである。標的核酸に対するオリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションは、自発的反応であり、自発的反応の場合、ΔＧ°はゼロ未満である。ΔＧ°は、Ｈａｎｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，１９６５，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍ．３６－３８ ａｎｄ Ｈｏｌｄｇａｔｅ ｅｔ ａｌ．，２００５，Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ Ｔｏｄａｙに記載されているように、例えば等温滴定熱量測定（ＩＴＣ）により、実験的に測定し得る。当業者は、ΔＧ°測定のために市販の装置が入手可能であることを知るであろう。ΔＧ°はまた、Ｓｕｇｉｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．，１９９５，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３４：１１２１１－１１２１６及びＭｃＴｉｇｕｅ ｅｔ ａｌ．，２００４，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４３：５３８８－５４０５によって記載された適切に導出された熱力学パラメータを使用して、ＳａｎｔａＬｕｃｉａ，１９９８，Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ．９５：１４６０－１４６５によって記載された最近傍モデルを使用することによって数値的に推定することができる。ハイブリダイゼーションによってその意図された核酸標的を調節する可能性を有するために、本発明のオリゴヌクレオチドは、１０～３０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドについて－１０ｋｃａｌ未満の推定ΔＧ°値で標的核酸にハイブリダイズする。いくつかの実施形態では、ハイブリダイゼーションの程度又は強度は、標準状態ギブス自由エネルギーΔＧ°により測定される。オリゴヌクレオチドは、８～３０ヌクレオチド長のオリゴヌクレオチドに対して－１０ｋｃａｌ未満、例えば－１５ｋｃａｌ未満、例えば－２０ｋｃａｌ未満、及び例えば－２５ｋｃａｌ未満の概算ΔＧ°値で標的核酸にハイブリダイズし得る。いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドは、－１０～－６０ｋｃａｌ、例えば－１２～－４０、例えば－１５～－３０ｋｃａｌ又は－１６～－２７ｋｃａｌ、例えば－１８～－２５ｋｃａｌの範囲の推定ΔＧ゜値で標的核酸にハイブリダイズする。

標的核酸
本発明によれば、標的核酸は、哺乳動物ＣＯＰＳ３をコードする核酸であり、例えば遺伝子、ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、及びプレｍＲＮＡ、成熟ｍＲＮＡ又はｃＤＮＡ配列であり得る。したがって、標的は、ＣＯＰＳ３標的核酸と称することができる。

適切には、標的核酸は、本明細書において配列番号１、４、５、６、７、８及び／又は９として提供されるｐｒｅ－ｍＲＮＡ又はｍＲＮＡ配列をコードするヒトＣＯＰＳ３遺伝子等のＣＯＰＳ３タンパク質、特に哺乳動物ＣＯＰＳ３をコードする。

本発明の治療用核酸分子は、例えば、哺乳動物ＣＯＰＳ３（特にｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡ、並びにアンチセンスオリゴヌクレオチド）のエクソン領域を標的とし得るか、又は例えば、ＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡの任意のイントロン領域を標的とし得る（特にアンチセンスオリゴヌクレオチド）。ヒトＣＯＰＳ３遺伝子は１８個の転写物をコードし、そのうち６つはタンパク質をコードし、したがって潜在的な核酸標的である。

表１は、配列番号１、すなわちヒトＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ配列の予測エクソン及びイントロン領域を列挙する。

適切には、標的核酸は、ヒト、カニクイザル及びマウスＣＯＰＳ３（表２）のゲノム配列並びにヒト、サル及びマウスＣＯＰＳ３のプレｍＲＮＡ配列並びにヒトＣＯＰＳ３の成熟ｍＲＮＡ（表３）の概要を提供するヒトＣＯＰＳ３（例えば表２及び表３を参照）等のＣＯＰＳ３タンパク質、特に哺乳動物ＣＯＰＳ３をコードする。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号１、２、３、４、６、７、８及び／又は９、又はその天然バリアント（例えば哺乳動物ＣＯＰＳ３をコードする配列）からなる群から選択される。

本発明の核酸分子を研究又は診断に使用する場合、標的核酸は、ｃＤＮＡ、又はＤＮＡ若しくはＲＮＡに由来する合成核酸であり得る。

ｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏ適用のために、本発明の治療用核酸分子は、典型的には、ＣＯＰＳ３標的核酸を発現している細胞におけるＣＯＰＳ３標的核酸の発現を阻害することができる。いくつかの実施形態では、当該細胞は、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡを含む。本発明の核酸分子の核酸塩基の連続配列は、典型的には、核酸分子の長さにわたって測定した場合、任意に１つ又は２つのミスマッチを除いて、また任意に、オリゴヌクレオチドをコンジュゲート等の任意の官能基に結合し得るヌクレオチドベースのリンカー領域、又は他の非相補的末端ヌクレオチドを除いて、ＣＯＰＳ３標的核酸の保存領域に相補的である。標的核酸は、ヒトＣＯＰＳ３等の哺乳動物ＣＯＰＳ３タンパク質をコードするプレｍＲＮＡ、例えば配列番号１として開示されているもの等のヒトＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ配列、配列番号２として開示されているもの等のサルＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ配列、又は配列番号３標的核酸として開示されているもの等のマウスＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ配列、又は配列番号４、５、６、７、８若しくは９として開示されているヒト成熟ｍＲＮＡ等の成熟ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡである。配列番号１～９はＤＮＡ配列である。標的ＲＮＡ配列は、チミジン塩基（Ｔ）の代わりに、ウラシル（Ｕ）塩基を有することが理解されよう。

例示的な標的核酸に関する更なる情報は、表２及び３に提供される。

注記 配列番号２は、配列決定が配列を正確に精製することができず、したがって縮重配列が含まれる、複数のＮＮＮＮの領域を含む。疑いを避けるため、本発明の化合物は実際の標的配列に対して相補的であり、したがって、縮重化合物ではない。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号１である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号２である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号３である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号４である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号５である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号６である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号７である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号８である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号９である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は配列番号１、４、５、６及び／又は８である。

いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号１、４及び／又は５である。

標的配列
本明細書で使用される場合、「標的配列」という用語は、本発明のオリゴヌクレオチド又は核酸分子に相補的な核酸塩基配列を含む、標的核酸中に存在するヌクレオチドの配列を指す。いくつかの実施形態では、標的配列は、本発明のオリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列に相補的な核酸塩基配列を有する標的核酸上の領域からなる。標的核酸のこの領域は、互換的に標的ヌクレオチド配列、標的配列、又は標的領域と称され得る。いくつかの実施形態では、標的配列は、本発明の核酸分子の相補配列よりも長く、例えば、本発明のいくつかの核酸分子によって標的化され得る標的核酸の好ましい領域を表し得る。

いくつかの実施形態では、標的配列は、ヒトＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡエクソン、例えばｅ１、ｅ２、ｅ３、ｅ４、ｅ５、ｅ６、ｅ７、ｅ８、ｅ９、ｅ１０、ｅ１１、及びｅ１２からなる群から選択されるヒトＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡエクソンからなる群から選択される配列である（例えば上記の表１参照）。

したがって、本発明は、ｅ１～ｅ１２（表１を参照）からなる群から選択される配列番号１のエクソン領域に少なくとも９０％相補的、例えば完全に相補的な連続配列を含むオリゴヌクレオチドを提供する。

いくつかの実施形態では、標的配列は、ヒトＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡイントロン、例えばｉ１、ｉ２、ｉ３、ｉ４、ｉ５、ｉ６、ｉ７、ｉ９、ｉ１０及びｉ１１からなる群から選択されるヒトＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡイントロンからなる群から選択される配列である（例えば上記の表１参照）。

したがって、本発明は、ｉ１～ｉ１１（表１を参照）からなる群から選択される配列番号１のイントロン領域に少なくとも９０％相補的、例えば完全に相補的な連続配列を含むオリゴヌクレオチドを提供する。

いくつかの実施形態では、標的配列は、配列番号１０、１１、１２及び１３からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、本明細書で言及される連続ヌクレオチド配列は、配列番号１０、１１、１２及び１３からなる群から選択される標的配列に対して少なくとも９０％相補的である、例えば少なくとも９５％相補的である。いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、配列番号１０、１１、１２及び１３からなる群から選択される標的配列に対して完全に相補的である。

本発明の核酸分子は、本明細書に記載の標的配列等の標的核酸上の領域に相補的であるか又はハイブリダイズする連続ヌクレオチド配列を含む。

治療用核酸分子が相補的であるか又はハイブリダイズする標的核酸配列は、一般に、少なくとも１０ヌクレオチドの連続核酸塩基のストレッチを含む。連続ヌクレオチド配列は、１２～７０ヌクレオチド、例えば１２～５０、例えば１３～３０、例えば１４～２５、例えば１５～２０、例えば１６～１８連続ヌクレオチドである。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子は、表４又は５に示される領域を標的とする。

いくつかの実施形態では、標的配列は、上記の表４に示されるような標的領域１Ａ～１８４６Ａからなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、標的配列は、上記の表５に示されるような標的領域１Ｃ～１７８Ｃからなる群から選択される。

標的細胞
「標的細胞」という用語は、本明細書で使用される場合、標的核酸を発現している細胞を指す。本発明の治療的使用のためには、標的細胞がＨＢＶに感染している場合が有利である。いくつかの実施形態では、標的細胞は、ｉｎ ｖｉｖｏ 又はｉｎ ｖｉｔｒｏであり得る。いくつかの実施形態では、標的細胞は、哺乳動物細胞、例えばげっ歯類細胞、例えばマウス細胞若しくはラット細胞、若しくはウッドチャック細胞、又は霊長類細胞、例えばサル細胞（例えば、カニクイザル細胞）若しくはヒト細胞である。

好ましい実施形態では、標的細胞は、ＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ又はＣＯＰＳ３成熟ｍＲＮＡ等のＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡを発現する。ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡのポリＡテールは、典型的には、アンチセンスオリゴヌクレオチド標的化では無視される。

さらに、標的細胞は肝細胞であってもよい。一実施形態では、標的細胞は、ＨＢＶに感染した初代ヒト肝細胞であり、ＨＢＶ感染個体に由来するか、又はヒト化肝臓を有するＨＢＶに感染したマウス（ＰｈｏｅｎｉｘＢｉｏ、ＰＸＢマウス）に由来するかのいずれかである。

本発明によれば、標的細胞は、ＨＢＶに感染していてもよい。さらに、標的細胞は、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡを含み得る。したがって、標的細胞は、ＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ又はＣＯＰＳ３成熟ｍＲＮＡ等のＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ及びＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡを含むことが好ましい。

天然に存在するバリアント
「天然に存在するバリアント」という用語は、標的核酸と同じ遺伝子座に由来するが、例えば、同じアミノ酸をコードする多数のコドンを引き起こす遺伝コードの縮重のために、又はプレｍＲＮＡの選択的スプライシング若しくは例えば一塩基多型（ｓｉｎｇｌｅ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ：ＳＮＰ）等の多型の存在に起因して異なり得る、ＣＯＰＳ３遺伝子又は転写物のバリアントと、対立遺伝子バリアントとを指す。オリゴヌクレオチドに対する十分な相補的な配列の存在に基づいて、本発明のオリゴヌクレオチドは、したがって、標的核酸及びその天然に存在するバリアントを標的とし得る。

いくつかの実施形態では、天然に存在するバリアントは、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸、例えば配列番号１及び／又は配列番号２の標的核酸に対して少なくとも９５％、例えば少なくとも９８％又は少なくとも９９％相同性を有する。いくつかの実施形態では、天然に存在するバリアントは、配列番号１のヒトＣＯＰＳ３標的核酸に対して少なくとも９９％相同性を有する。いくつかの実施形態では、天然に存在するバリアントは、既知の多型である。

発現の阻害
本明細書で使用される場合、「発現の阻害」という用語は、標的細胞におけるＣＯＰＳ３の量又は活性を阻害する、すなわち低下させるＣＯＰＳ３（ＣＯＰ９シグナロソームサブユニット３）阻害剤の能力の全体的な用語として理解されるべきである。発現又は活性の阻害は、ＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ若しくはＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡのレベルを測定することによって、又は細胞中のＣＯＰＳ３タンパク質若しくは活性のレベルを測定することによって決定され得る。発現の阻害は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ 又は ｉｎ ｖｉｖｏで決定され得る。有利には、阻害は、ＣＯＰＳ３阻害剤の投与前のＣＯＰＳ３の量に関して評価される。或いは、阻害は、対照を参照することによって決定される。対照は、生理食塩水組成物で処置された個体若しくは標的細胞、又は非標的化オリゴヌクレオチド（モック）で処置された個体若しくは標的細胞であると一般的に理解されている。

「阻害」又は「阻害する」という用語は、ＣＯＰＳ３の発現又は活性をダウンレギュレートする、低下する、抑制する、減らす、低くする、減少するとも呼ばれる場合がある。

ＣＯＰＳ３の発現の阻害は、例えば、プレｍＲＮＡ又はｍＲＮＡの分解によって、例えば、ギャップマー等のＲＮａｓｅ Ｈ動員オリゴヌクレオチド、又はｓｉＲＮＡ若しくはｓｈＲＮＡ等のＲＮＡ干渉経路を介して機能する核酸分子を使用して起こり得る。あるいは、本発明の阻害剤は、ＣＯＰＳ３ポリペプチドに結合し、ＣＯＰＳ３の活性を阻害するか、又は他の分子へのその結合を妨げ得る。

いくつかの実施形態では、ＣＯＰＳ３標的核酸の発現又はＣＯＰＳ３タンパク質の活性の阻害は、標的細胞中のＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡの量の減少をもたらす。好ましくは、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡの量は、対照と比較して減少する。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡの量の減少は、対照と比較して少なくとも２０％、少なくとも３０％である。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ感染細胞中のｃｃｃＤＮＡの量は、対照と比較した場合、少なくとも５０％、例えば６０％減少する。

いくつかの実施形態では、ＣＯＰＳ３標的核酸の発現又はＣＯＰＳ３タンパク質の活性の阻害は、標的細胞中のＨＢＶ ｐｇＲＮＡの量の減少をもたらす。好ましくは、ＨＢＶ ｐｇＲＮＡの量は、対照と比較して減少する。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ ｐｇＲＮＡの量の減少は、対照と比較して少なくとも２０％、少なくとも３０％である。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ感染細胞中のｐｇＲＮＡの量は、対照と比較した場合、少なくとも５０％、例えば６０％減少する。

糖修飾
本発明のオリゴヌクレオチドは、修飾された糖部分、すなわち、ＤＮＡ及びＲＮＡに見られるリボース糖部分と比較した場合の糖部分の修飾を有する１つ以上のヌクレオシドを含み得る。

リボース糖部分の修飾を有する数多くのヌクレオシドは、親和性及び／又はヌクレアーゼ耐性等のオリゴヌクレオチドのある特定の性質を改善することを主な目的として作製されてきた。

このような修飾には、例えば、ヘキソース環（ＨＮＡ）、又は典型的にはリボース環（ＬＮＡ）上のＣ２炭素とＣ４炭素との間にビラジカル架橋を有する二環式環、又は典型的にはＣ２炭素とＣ３炭素との間の結合を欠く非結合リボース環（例えば、ＵＮＡ）で置き換えることにより、リボース環構造が修飾されているものが含まれる。他の糖修飾ヌクレオシドには、例えばビシクロヘキソース核酸（国際公開第２０１１／０１７５２１号）又は三環式核酸（国際公開第２０１３／１５４７９８号）が含まれる。修飾ヌクレオシドにはまた、糖部分が例えばペプチド核酸（ＰＮＡ）又はモルホリノ核酸の場合には非糖部分で置き換えられているヌクレオシドが含まれる。

糖修飾にはまた、リボース環上の置換基を、水素以外の基、又はＤＮＡ及びＲＮＡヌクレオシド中に天然に存在する２’－ＯＨ基に変更することによってなされる修飾も含まれる。置換基は、例えば、２’、３’、４’、又は５’位で導入され得る。

高親和性修飾ヌクレオシド
高親和性修飾ヌクレオシドは、修飾されたヌクレオチドであり、これは、オリゴヌクレオチドに組み込まれる場合、例えば融解温度（Ｔ^ｍ）によって測定されるように、その相補的標的に対するオリゴヌクレオチドの親和性を高める。本発明の高親和性修飾ヌクレオシドは、好ましくは、修飾ヌクレオシドあたり＋０．５～＋１２℃の範囲、より好ましくは＋１．５～＋１０℃の範囲、最も好ましくは＋３～＋８^ｏＣの範囲の融解温度の上昇をもたらす。数多くの高親和性修飾ヌクレオシドが当該技術分野において知られており、例えば、多くの２’置換ヌクレオシド及びロックド核酸（ＬＮＡ）が挙げられる（例えば、Ｆｒｅｉｅｒ＆Ａｌｔｍａｎｎ；Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．，１９９７，２５，４４２９－４４４３及びＵｈｌｍａｎｎ；Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，２０００，３（２），２９３－２１３を参照）。

２’糖修飾ヌクレオシド
２’糖修飾ヌクレオシドは、２’位にＨ又は－ＯＨ以外の置換基を有するか（２’置換ヌクレオシド）、又は２’炭素とリボース環上の第２の炭素との間に架橋を形成することができる２’結合ビラジカルを含むヌクレオシド、例えばＬＮＡ（２’－４’ビラジカル架橋）ヌクレオシドである。

実際、２’糖置換ヌクレオシドの開発には多くの注目が集まっており、数多くの２’置換ヌクレオシドが、オリゴヌクレオチドに組み込まれた際に有益な特性を有することが見出されている。例えば、２’修飾糖は、高められた結合親和性及び／又は増大されたヌクレアーゼ耐性をオリゴヌクレオチドにもたらすことができる。２’置換修飾ヌクレオシドの例は、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ（ＭＯＥ）、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＲＮＡ及び２’－Ｆ－ＡＮＡヌクレオシドである。更なる例については、例えばＦｒｅｉｅｒ＆Ａｌｔｍａｎｎ；Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．，１９９７，２５，４４２９－４４４３及びＵｈｌｍａｎｎ；Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，２０００，３（２），２９３－２１３、及びＤｅｌｅａｖｅｙ ａｎｄ Ｄａｍｈａ，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｙ ２０１２，１９，９３７を参照されたい。以下は、幾つかの２’置換修飾ヌクレオシドの例示である。

本発明に関して、２’置換糖修飾ヌクレオシドは、ＬＮＡのような２’架橋ヌクレオシドを含まない。

ロックド核酸ヌクレオシド（ＬＮＡヌクレオシド）
「ＬＮＡヌクレオシド」は、該ヌクレオシドのリボース糖環のＣ２’とＣ４’とを結合するバイラジカル（「２’－４’架橋」とも称される）を含む２’糖修飾ヌクレオシドであり、これはリボース環の立体配座を制限又は固定する。これらのヌクレオシドはまた、文献において、架橋核酸又は二環式核酸（ＢＮＡ）とも称されている。リボースのコンホメーションの固定は、ＬＮＡが相補的ＲＮＡ又はＤＮＡ分子のオリゴヌクレオチドに組み込まれる場合、ハイブリダイゼーションの親和性の向上（二重鎖安定化）に関連している。これは、オリゴヌクレオチド／相補二重鎖の融解温度を測定することによって、日常的に決定され得る。

非限定的で例示的なＬＮＡヌクレオシドは、国際公開第９９／０１４２２６号、国際公開第００／６６６０４号、国際公開第９８／０３９３５２号、国際公開第２００４／０４６１６０号、国際公開第００／０４７５９９号、国際公開第２００７／１３４１８１号、国際公開第２０１０／０７７５７８号、国際公開第２０１０／０３６６９８号、国際公開第２００７／０９００７１号、国際公開第２００９／００６４７８号、国際公開第２０１１／１５６２０２号、国際公開第２００８／１５４４０１号、国際公開第２００９／０６７６４７号、国際公開第２００８／１５０７２９号、Ｍｏｒｉｔａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ＆Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．１２，７３－７６，Ｓｅｔｈ ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．２０１０，Ｖｏｌ ７５（５）ｐｐ．１５６９－８１、Ｍｉｔｓｕｏｋａ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２００９，３７（４），１２２５－１２３８、及びＷａｎ ａｎｄ Ｓｅｔｈ，Ｊ．Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２０１６，５９，９６４５－９６６７を参照されたい。

本発明のＬＮＡヌクレオシドの特定の例がスキーム１に示されている（Ｂは上記定義されたとおりである）。
スキーム１

特定のＬＮＡヌクレオシドは、ベータ－Ｄ－オキシ－ＬＮＡ、６’－メチル－ベータ－Ｄ－オキシＬＮＡ、例えば（Ｓ）－６’－メチル－ベータ－Ｄ－オキシ－ＬＮＡ（ＳｃＥＴ）及びＥＮＡである。

ＲＮａｓｅ Ｈの活性及び動員
アンチセンスオリゴヌクレオチドのＲＮａｓｅ Ｈ活性は、相補的ＲＮＡ分子と二重鎖を形成するときにＲＮａｓｅ Ｈを動員する、その能力を指す。国際公開第０１／２３６１３号は、ＲＮａｓｅ Ｈを動員する能力を決定するために使用され得る、ＲＮａｓｅ Ｈ活性を決定するためのｉｎ ｖｉｔｒｏ方法を提供する。典型的には、オリゴヌクレオチドは、相補的な標的核酸が提供された場合、ｐｍｏｌ／ｌ／分で測定して、試験されている修飾オリゴヌクレオチドと同じ塩基配列を有するが、ＤＮＡモノマーのみを含み、オリゴヌクレオチドの全モノマー間にホスホロチオエート結合を有するオリゴヌクレオチドを使用し、また国際公開第０１／２３６１３号（参照により本明細書に組み込まれる）の実施例９１～９５により提供される方法論を使用したときに決定された初期率の少なくとも５％、例えば少なくとも１０％又は２０％超を有する場合に、ＲＮａｓｅ Ｈを動員することができると見なされる。ＲＨａｓｅ Ｈ活性の決定での使用について、組換えヒトＲＮａｓｅ Ｈ１は、Ｃｒｅａｔｉｖｅ Ｂｉｏｍａｒｔ（登録商標）（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で発現したＨｉｓタグと融合した組換えヒトＲＮａｓｅ Ｈ１）から入手できる。

ギャップマー
本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列はギャップマーであってもよく、また、ギャップマーオリゴヌクレオチド又はギャップマー設計とも称され得る。アンチセンスギャップマーは、通常、ＲＮａｓｅ Ｈ媒介分解を介した標的核酸の阻害に用いられる。ギャップマーオリゴヌクレオチドは、少なくとも３つの区別される構造領域、５’－フランク、ギャップ、及び３’－フランク、Ｆ－Ｇ－Ｆ’を、５’－＞３’配向で含む。「ギャップ」領域（Ｇ）は、オリゴヌクレオチドがＲＮａｓｅ Ｈを動員することを可能にする一続きの連続するＤＮＡヌクレオチドを含む。ギャップ領域には、１種以上の糖修飾ヌクレオシド、有利には高親和性糖修飾ヌクレオシドを含む５’隣接領域（Ｆ）と、１種以上の糖修飾ヌクレオシド、有利には高親和性糖修飾ヌクレオシドを含む３’隣接領域（Ｆ’）が隣接する。領域Ｆ及びＦ’の１個以上の糖修飾ヌクレオシドは、標的核酸に対するオリゴヌクレオチドの親和性を向上させる（すなわち、これは親和性向上糖修飾ヌクレオシドである）。いくつかの実施形態では、領域Ｆ及びＦ’の１つ以上の糖修飾ヌクレオシドは、例えばＬＮＡ及び２’－ＭＯＥから独立して選択される、例えば高親和性の２’糖修飾等、２’糖修飾ヌクレオシドである。

ギャップマー設計において、ギャップ領域の最も５’及び３’のヌクレオシドはＤＮＡヌクレオシドであり、それぞれ、５’（Ｆ）又は３’（Ｆ’）領域の糖修飾ヌクレオシドに隣接して配置されている。フランクは更に、ギャップ領域から最も遠い端、即ち５’フランクの５’末端及び３’フランクの３’末端に少なくとも１種の糖修飾ヌクレオシドを有することによって定義されてもよい。

領域Ｆ－Ｇ－Ｆ’は、連続ヌクレオチド配列を形成する。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド、又はその連続ヌクレオチド配列は、式Ｆ－Ｇ－Ｆ’のギャップマー領域を含み得る。

ギャップマー設計Ｆ－Ｇ－Ｆ’の全長は、例えば１２～３２ヌクレオシド、例えば１３～２４、例えば１４～２２ヌクレオシド、例えば１５～２０、例えば１６～１８ヌクレオシドであり得る。

例として、本発明のギャップマーオリゴヌクレオチドは、以下の式によって表すことができる：
Ｆ_１－８－Ｇ_５－１８－Ｆ’_１－８、例えば
Ｆ_１－８－Ｇ_７－１８－Ｆ’_２－８
ただし、ギャップマー領域Ｆ－Ｇ－Ｆ’の全長は、少なくとも１２、例えば少なくとも１４ヌクレオチド長であることを条件とする。

本発明の一態様では、アンチセンスオリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列は、式５’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’－３’のギャップマーからなるか又はそれを含み、式中、領域Ｆ及びＦ’が独立して１～８個のヌクレオシドを含むか又はそれらからなり、そのうち１～４個が２’糖修飾され、Ｆ及びＦ’領域の５’及び３’末端を規定し、ＧがＲＮａｓｅ Ｈを動員することができる６～１８個のヌクレオシドの領域である。いくつかの実施形態では、Ｇ領域はＤＮＡヌクレオシドからなる。

いくつかの実施形態では、領域Ｆ及びＦ’は、独立して、糖修飾ヌクレオシドの連続配列からなるか、又はそれを含む。いくつかの実施形態では、領域Ｆの糖修飾ヌクレオシドは、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ単位、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アミノ－ＤＮＡ単位、２’－フルオロ－ＤＮＡ単位、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、ＭＯＥ単位、ＬＮＡ単位、アラビノ核酸（ＡＮＡ）単位、及び２’－フルオロ－ＡＮＡ単位から独立して選択され得る。

いくつかの実施形態では、領域Ｆ及びＦ’は、ＬＮＡと２’置換糖修飾ヌクレオチドの両方を独立して含む（混合ウィング設計）。いくつかの実施形態では、２’－置換糖修飾ヌクレオチドは、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ単位、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ単位、２’－アミノ－ＤＮＡ単位、２’－フルオロ－ＤＮＡ単位、２’－アルコキシ－ＲＮＡ単位、ＭＯＥ単位、アラビノ核酸（ＡＮＡ）単位及び２’－フルオロ－ＡＮＡ単位からなる群から独立して選択される。

いくつかの実施形態では、領域Ｆ及びＦ’の全修飾ヌクレオシドが、例えばベータ－Ｄ－オキシＬＮＡ、ＥＮＡ、又はＳｃＥＴヌクレオシドから独立して選択されるＬＮＡヌクレオシドであり、領域Ｆ又はＦ’、若しくはＦ及びＦ’は、任意にＤＮＡヌクレオシドを含んでいてもよい。いくつかの実施形態では、領域Ｆ及びＦ’の全修飾ヌクレオシドがベータ－Ｄ－オキシＬＮＡヌクレオシドであり、領域Ｆ又はＦ’、若しくはＦ及びＦ’は、任意にＤＮＡヌクレオシドを含んでいてもよい。このような実施形態では、フランキング領域Ｆ又はＦ’、若しくはＦ及びＦ’の両方が少なくとも３つのヌクレオシドを含み、Ｆ及び／又はＦ’領域の最も５’及び３’のヌクレオシドは、ＬＮＡヌクレオシドである。

ＬＮＡギャップマー
ＬＮＡギャップマーは、領域Ｆ及びＦ’の一方又は両方に、ＬＮＡヌクレオシドを含むか、若しくはそれからなるギャップマーである。ベータ－Ｄ－オキシギャップマーは、領域Ｆ及びＦ’の一方又は両方に、ベータ－Ｄ－オキシＬＮＡヌクレオシドを含むか、若しくはそれからなるギャップマーである。

いくつかの実施形態では、ＬＮＡギャップマーは、式：［ＬＮＡ］_１－５－［領域Ｇ］ _６－１８－［ＬＮＡ］_１－５のものであり、領域Ｇはギャップマー領域Ｇの定義で定義したとおりである。

ＭＯＥギャップマー
ＭＯＥギャップマーは、領域Ｆ及びＦ’がＭＯＥヌクレオシドからなるギャップマーである。いくつかの実施形態では、ＭＯＥギャップマーは、設計［ＭＯＥ］_１－８－［領域Ｇ］_５－１６－［ＭＯＥ］_１－８、例えば［ＭＯＥ］_２－７－［領域Ｇ］_６－１４－［ＭＯＥ］_２－７、例えば［ＭＯＥ］_３－６－［領域Ｇ］_８－１２－［ＭＯＥ］_３－６、例えば［ＭＯＥ］_５－［領域Ｇ］_１０－［ＭＯＥ］_５のものであり、領域Ｇはギャップマーの定義に規定した通りである。５－１０－５設計（ＭＯＥ－ＤＮＡ－ＭＯＥ）を有するＭＯＥギャップマーは、当該技術分野で広く使用されている。

オリゴヌクレオチドにおける領域Ｄ’又はＤ’’
本発明のオリゴヌクレオチドは、いくつかの実施形態では、ギャップマー領域Ｆ－Ｇ－Ｆ’等の標的核酸と、更なる５’及び／又は３’ヌクレオシドとに相補的である、オリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列を含むか、又はそれからなり得る。更なる５’及び／又は３’ヌクレオシドは、標的核酸に完全に相補的であっても、完全に相補的でなくてもよい。このような更なる５’及び／又は３’ヌクレオシドは、本明細書では領域Ｄ’及びＤ’’と呼ばれ得る。

領域Ｄ’又はＤ’’の追加は、連続ヌクレオチド配列、例えばギャップマーをコンジュゲート部分又は別の官能基に連結する目的で用いられ得る。連結に用いられる場合、コンジュゲート部分を有する連続ヌクレオチド配列は、生体切断可能なリンカーとしての役割を果たし得る。あるいは、それはエキソヌクレアーゼ保護を提供するために、又は合成若しくは製造を容易にするために使用され得る。
領域Ｄ’及びＤ’’は、各々、領域Ｆの５’末端又は領域Ｆ’の３’末端に結合されて、以下の式Ｄ’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’、Ｆ－Ｇ－Ｆ’－Ｄ’’又は

Ｄ’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’－Ｄ’’の設計を生成することができる。この場合、Ｆ－Ｇ－Ｆ’はオリゴヌクレオチドのギャップマー部分であり、領域Ｄ’又はＤ’’は、オリゴヌクレオチドの別個の部分を構成する。

領域Ｄ’又はＤ’’は、独立して、１、２、３、４、又は５の追加のヌクレオチドを含むか、又はそれからなり、これは、標的核酸に相補的であっても、相補的でなくてもよい。Ｆ又はＦ’領域に隣接するヌクレオチドは、ＤＮＡ又はＲＮＡ等の糖修飾ヌクレオチドではなく、若しくはこれらの塩基修飾バージョンでもない。Ｄ’又はＤ’’領域は、ヌクレアーゼ感受性の生体切断可能なリンカーとしての役割を果たし得る（リンカーの定義を参照）。いくつかの実施形態では、追加の５’及び／又は３’末端ヌクレオチドは、ホスホジエステル結合で連結されており、かつ、ＤＮＡ又はＲＮＡである。領域Ｄ’又はＤ’’としての使用に好適なヌクレオチドベースの生体切断性リンカーは、国際公開第２０１４／０７６１９５号に開示されており、これには例としてホスホジエステル結合ＤＮＡジヌクレオチドが含まれる。ポリオリゴヌクレオチド構築物における生体切断可能なリンカーの使用は国際公開第ＷＯ２０１５／１１３９２２号に開示されており、それらは複数のアンチセンス構築物（例えば、ギャップマー領域）を単一のオリゴヌクレオチド内で結合するのに使用されている。

一実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドは、ギャップマーを構成する連続ヌクレオチド配列に加えて、領域Ｄ’及び／又はＤ’’を含む。

いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチドは、以下の式によって表すことができる：
Ｆ－Ｇ－Ｆ’；特にＦ_１－８－Ｇ_５－１８－Ｆ’_２－８
Ｄ’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’、特に、Ｄ’_１－３－Ｆ_１－８－Ｇ_５－１８－Ｆ’_２－８
Ｆ－Ｇ－Ｆ’－Ｄ’’、特に、Ｆ_１－８－Ｇ_５－１８－Ｆ’_２－８－Ｄ’’_１－３
Ｄ’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’－Ｄ’’、特に、Ｄ’_１－３－Ｆ_１－８－Ｇ_５－１８－Ｆ’_２－８－Ｄ’’_１－３。

いくつかの実施形態では、領域Ｄ’と領域Ｆの間に位置するヌクレオシド間結合は、ホスホジエステル結合である。いくつかの実施形態では、領域Ｆ’と領域Ｄ’’の間に位置するヌクレオシド間結合は、ホスホジエステル結合である。

コンジュゲート
本明細書で用いられるコンジュゲートという用語は、非ヌクレオチド部分（コンジュゲート部分又は領域Ｃ又は第３の領域）に共有結合したオリゴヌクレオチドを指す。コンジュゲート部分は、任意に領域Ｄ’又はＤ’’等のリンカー基を介して、アンチセンスオリゴヌクレオチドに共有結合していてもよい。

オリゴヌクレオチドコンジュゲート及びそれらの合成については、その各々全体が参照することによって本明細書に組み込まれる、Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｄｒｕｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ，Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ，ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｓ．Ｔ．Ｃｒｏｏｋｅ，ｅｄ．，Ｃｈ．１６，Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．，２００１及びＭａｎｏｈａｒａｎ，Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ ａｎｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，２００２，１２，１０３による包括的な概説でも報告されている。

いくつかの実施形態では、非ヌクレオチド部分（コンジュゲート部分）は、炭水化物（例えば、ガラクトース又はＮ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ））、細胞表面受容体リガンド、原薬、ホルモン、親油性物質、ポリマー、タンパク質（例えば、抗体）、ペプチド、毒素（例えば細菌毒素）、ビタミン、ウイルスタンパク質（例えばキャプシド）又はそれらの組み合わせからなる群から選択される。

例示的なコンジュゲート部分は、アシアロ糖タンパク質受容体（ＡＳＧＰＲ）に結合することができるものである。特に、三価Ｎ－アセチルガラクトサミンのコンジュゲート部分は、ＡＳＧＰＲへの結合に適しており、例えば、国際公開第２０１４／０７６１９６号、国際公開第２０１４／２０７２３２号、及び国際公開第２０１４／１７９６２０号（参照することによって本明細書に組み込まれる）を参照されたい。そのようなコンジュゲートは、肝臓へのオリゴヌクレオチドの取り込みを増強するのに役立つ。

リンカー
結合又はリンカーは、１つ以上の共有結合を介して目的の１つの化学基又はセグメントを目的の別の化学基又はセグメントに連結する、２つの原子間の接続である。コンジュゲート部分は、直接又は連結部分（例えば、リンカー又はテザー）を介してオリゴヌクレオチドに結合させることができる。リンカーは、第３の領域、例えばコンジュゲート部分（領域Ｃ）を、第１の領域、例えば、標的核酸に相補的なオリゴヌクレオチド又は連続ヌクレオチド配列（領域Ａ）に共有結合する役割を果たす。

本発明のいくつかの実施形態では、本発明のコンジュゲート又はオリゴヌクレオチドコンジュゲートは、任意に、標的核酸に相補的なオリゴヌクレオチド又は連続ヌクレオチド配列（領域Ａ又は第１の領域）と、コンジュゲート部分（領域Ｃ又は第３の領域）との間に位置するリンカー領域（第２の領域又は領域Ｂ及び／又は領域Ｙ）を含み得る。

領域Ｂは、哺乳動物の体内で通常遭遇する又は遭遇するものに類似した条件下で切断可能である生理学的に不安定な結合を含むか、又はそれからなる生体切断可能なリンカーを指す。生理学的に不安定なリンカーが化学的変換（例えば、切断）を受ける条件には、ｐＨ、温度、酸化又は還元条件、若しくは薬剤等の化学条件、並びに哺乳動物の細胞で見られる又は遭遇するものに類似した塩濃度が含まれる。哺乳動物の細胞内条件には、タンパク質分解酵素又は加水分解酵素又はヌクレアーゼ等の哺乳動物細胞に通常存在する酵素活性の存在も含まれる。一実施形態では、生体切断可能なリンカーは、Ｓ１ヌクレアーゼ切断の影響を受けやすい。好ましい実施形態では、ヌクレアーゼ感受性リンカーは、１～５個のヌクレオシド、例えば１、２、３、４又は５個のヌクレオシド、より好ましくは２～４個のヌクレオシド、最も好ましくは少なくとも２個の連続するホスホジエステル結合、例えば少なくとも３個又は４個又は５個の連続するホスホジエステル結合を含む２個又は３個の連結されたヌクレオシドを含む。好ましくは、ヌクレオシドは、ＤＮＡ又はＲＮＡである。ホスホジエステルを含む生体切断可能なリンカーは、国際公開第２０１４／０７６１９５号（参照することによって本明細書に組み込まれる）により詳細に記載されている。

領域Ｙは、必ずしも生体切断可能ではないが、主にコンジュゲート部分（領域Ｃ又は第３の領域）をオリゴヌクレオチド（領域Ａ又は第１の領域）に共有結合させるのに役立つリンカーを指す。領域Ｙリンカーは、鎖構造、又はエチレングリコール、アミノ酸単位若しくはアミノアルキル基等の繰返し単位のオリゴマーを含み得る。本発明のオリゴヌクレオチドコンジュゲートは、以下の局所要素Ａ－Ｃ、Ａ－Ｂ－Ｃ、Ａ－Ｂ－Ｙ－Ｃ、Ａ－Ｙ－Ｂ－Ｃ又はＡ－Ｙ－Ｃから構築することができる。いくつかの実施形態では、リンカー（領域Ｙ）は、アミノアルキル、例えばＣ６～Ｃ１２アミノアルキル基を含むＣ２～Ｃ３６アミノアルキル基である。いくつかの実施形態では、リンカー（領域Ｙ）はＣ６アミノアルキル基である。

処置
本明細書で使用される場合、「処置」という用語は、既存の疾患（例えば、本明細書で言及される疾患又は障害）の処置、又は疾患の予防（ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ）、すなわち予防（ｐｒｏｐｈｙｌａｘｉｓ）の両方を指す。したがって、本明細書で言及される処置は、いくつかの実施形態では、予防的であり得ることが認識されよう。予防とは、ＨＢＶ感染が慢性ＨＢＶ感染に転化するのを防ぐこと、又は慢性ＨＢＶ感染による肝硬変及び肝細胞癌等の重篤な肝疾患を予防することと理解することができる。

患者
本発明の目的について、「被験体」（又は「患者」）は、脊椎動物であり得る。本発明に関連して、「被験体」という用語は、ヒト及び他の動物、特に哺乳動物と、他の生物との両方を含む。したがって、本明細書に提供される手段及び方法は、ヒト治療及び獣医学的用途の両方に適用可能である。好ましくは、被験体は、哺乳動物である。より好ましくは、被験体はヒトである。

本明細書の他の箇所に記載されるように、処置される患者は、慢性ＨＢＶ感染等のＨＢＶ感染に罹患している可能性がある。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ感染に罹患している患者は、肝細胞癌（ＨＣＣ）に罹患している可能性がある。いくつかの実施形態では、ＨＢＶ感染に罹患している患者は、肝細胞癌に罹患していない。

発明を実施するための形態
感染肝細胞におけるＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡは持続的な慢性感染及び再活性化に関与し、全てのウイルスサブゲノム転写物及びプレゲノムＲＮＡ（ｐｇＲＮＡ）の鋳型であって、新たに合成されたウイルス子孫と細胞内ヌクレオカプシド再循環を介したｃｃｃＤＮＡプール補充との両方を確実にする。本発明の文脈において、ＣＯＰＳ３がｃｃｃＤＮＡ安定性と関連することが初めて示された。この知識により、ＨＢＶ感染被験体におけるｃｃｃＤＮＡを不安定化する機会が生まれ、慢性感染ＨＢＶ患者の完全治癒の機会が開ける。

本発明の一態様は、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染、特に慢性ＨＢＶ感染の処置及び／又は予防用のＣＯＰＳ３阻害剤である。

ＣＯＰＳ３阻害剤は、例えばＣＯＰＳ３タンパク質に特異的に結合する小分子であり得、該阻害剤は、ｃｃｃＤＮＡへのＣＯＰＳ３タンパク質の結合を防止又は低減する。

本発明の実施形態は、ＨＢＶ感染細胞等の感染細胞中のｃｃｃＤＮＡ及び／又はｐｇＲＮＡを減少させることができる、ＣＯＰＳ３阻害剤である。

更なる実施形態では、ＣＯＰＳ３阻害剤は、ＨＢＶ感染個体においてｉｎ ｖｉｖｏでＨＢｓＡｇ及び／又はＨＢｅＡｇを減少させることができる。

ＨＢＶの処置に使用するためのＣＯＰＳ３阻害剤
理論に束縛されるものではないが、ＣＯＰＳ３は、ｃｃｃＤＮＡへの直接的又は間接的な結合を介して、細胞核内のｃｃｃＤＮＡの安定化に関与し、ｃｃｃＤＮＡとのＣＯＰＳ３の結合／会合を妨げることによって、ｃｃｃＤＮＡは不安定化され、分解しやすくなると考えられる。したがって、本発明の一実施形態は、ＣＯＰＳ３タンパク質と相互作用し、ｃｃｃＤＮＡへのその結合／会合を防止又は低減するＣＯＰＳ３阻害剤である。

本発明のいくつかの実施形態では、阻害剤は、抗体、抗体断片又は小分子化合物である。いくつかの実施形態では、阻害剤は、配列番号１、４、５、６又は７によってコードされるＣＯＰＳ３タンパク質等のＣＯＰＳ３タンパク質に特異的に結合する抗体、抗体断片又は小分子であり得る。

本発明の核酸分子
治療用核酸分子は、ＣＯＰＳ３転写物を標的とし、ＲＮＡ干渉経路又はＲＮａｓｅ Ｈ切断のいずれかを介してその分解を促進することができるため、潜在的に優れたＣＯＰＳ３阻害剤である。あるいは、アプタマーのようなオリゴヌクレオチドもまた、ＣＯＰＳ３タンパク質相互作用の阻害剤として作用し得る。

本発明の一態様は、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染の処置及び／又は予防に使用するためのＣＯＰＳ３標的化核酸分子である。そのような核酸分子は、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ分子及びｓｈＲＮＡ分子からなる群から選択することができる。

本セクションは、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染の処置及び／又は予防における使用に適した新規な核酸分子を記載する。

本発明の核酸分子は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでＣＯＰＳ３の発現を阻害することができる。阻害は、ＣＯＰＳ３をコードする又はＣＯＰＳ３の調節に関与する標的核酸に、オリゴヌクレオチドをハイブリダイズすることにより達成される。標的核酸は、哺乳動物ＣＯＰＳ３配列であり得る。いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号１の配列又は配列番号４～９から選択されるヒトＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ配列等のヒトＣＯＰＳ３プレｍＲＮＡ配列であり得る。いくつかの実施形態では、標的核酸は、配列番号２の配列等のカニクイザルＣＯＰＳ３配列であり得る。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子は、標的の発現を阻害又はダウンレギュレートすることにより、それを調節することができる。好ましくは、そのような調節は、標的の正常な発現レベルと比較して標的の正常な発現レベルと比較して少なくとも２０％、より好ましくは、標的の正常な発現レベルと比較して少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％の阻害をもたらす。いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子は、２５ｎＭの核酸分子をＰＸＢ－ＰＨＨ細胞にトランスフェクトすることによって、ｉｎ ｖｉｔｒｏで少なくとも６０％又は７０％のＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡの発現レベルを阻害することができ、この標的減少の範囲は、ｃｃｃＤＮＡ減少との良好な相関を有する核酸分子を選択する点で有利である。適切には、実施例は、ＣＯＰＳ３ ＲＮＡ又はタンパク質阻害（例えば、実施例１、及び「材料及び方法」のセクション）を測定するために使用され得るアッセイを提供する。標的阻害は、ｓｉＲＮＡのガイド鎖又はアンチセンスオリゴヌクレオチドのギャップマー領域等のオリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列と標的核酸との間のハイブリダイゼーションによって引き起こされる。いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子は、オリゴヌクレオチドと標的核酸との間のミスマッチを含む。ミスマッチにもかかわらず、標的核酸へのハイブリダイゼーションは、ＣＯＰＳ３発現の所望の阻害を示すのに尚充分であり得る。ミスマッチから生じる結合親和性の低下は、標的核酸に相補的なオリゴヌクレオチド内のヌクレオチド数の増加、及び／又は、標的への結合親和性を増加させることができる修飾ヌクレオシドの数、例えばオリゴヌクレオチド配列内に存在する、ＬＮＡを含む２’糖修飾ヌクレオシドの数の増加により有利に補償され得る。

本発明の一態様は、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸、特にヒトＣＯＰＳ３核酸に少なくとも９５％相補的、例えば完全に相補的である、少なくとも１２ヌクレオチド長、例えば少なくとも１２～３０ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含む、１２～６０ヌクレオチド長の核酸分子に関する。これらの核酸分子は、ＣＯＰＳ３の発現を阻害することができる。

本発明の一態様は、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的配列に対して少なくとも９０％相補的である、例えば完全に相補的である、少なくとも１２ヌクレオチド、例えば１２～３０ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含む、１２～３０ヌクレオチド長の核酸分子に関する。

本発明の更なる態様は、配列番号１の標的核酸に対して少なくとも９０％相補的、例えば完全に相補的な、１２～２０ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含む本発明による核酸分子に関する。

いくつかの実施形態では、核酸分子は、１２～３０ヌクレオチド長の連続配列を含み、これは、標的核酸又は標的配列の領域と、少なくとも９０％相補的、例えば少なくとも９１％、例えば少なくとも９２％、例えば少なくとも９３％、例えば少なくとも９４％、例えば少なくとも９５％、例えば少なくとも９６％、例えば少なくとも９７％、例えば少なくとも９８％、又は１００％相補的である。

核酸分子又はその連続ヌクレオチド配列が、標的核酸に完全に相補的（１００％相補的）である、又は、いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドと標的核酸との間に、１つ又は２つのミスマッチを含み得る場合、有利である。

いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチド配列は、配列番号１及び／又は配列番号４、５、６、７、８及び／又は９の標的核酸領域に１００％相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子又は連続ヌクレオチド配列は、配列番号１及び２の標的核酸に対して少なくとも９０％又は９５％相補的、例えば完全に（又は１００％）相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチド又は連続ヌクレオチド配列は、配列番号２及び配列番号４、５、６、７、８又は９の標的核酸に対して少なくとも９０％又は９５％相補的、例えば完全に（又は１００％）相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチド又は連続ヌクレオチド配列は、配列番号１及び配列番号２及び配列番号３の標的核酸に対して少なくとも９０％又は９５％相補性、例えば完全に（又は１００％）相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子の連続配列は、表４に示される標的配列１Ａ～１８４６Ａからなる群から選択される、配列番号１の領域に少なくとも９０％相補的、例えば完全に相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子の連続配列は、表５に示される標的配列１Ｃ～２０３Ｃからなる群から選択される、配列番号１の領域に少なくとも９０％相補的、例えば完全に相補的である。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子は、１２～６０ヌクレオチド長、例えば１３～５０、例えば１４～３５、例えば１５～３０、例えば１６～２２連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。好ましい実施形態では、核酸分子ドは、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１又は２２ヌクレオチド長を含むか又はそれからなる。

いくつかの実施形態では、標的核酸に相補的である核酸分子の連続ヌクレオチド配列は、１２～３０、例えば１３～２５、例えば１５～２３、例えば１６～２２連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。

いくつかの実施形態では、オリゴヌクレオチドは、アンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡからなる群から選択される。

いくつかの実施形態では、標的核酸に相補的であるｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡの連続ヌクレオチド配列は、１８～２８、例えば１９～２６、例えば２０～２４、例えば２１～２３連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。

いくつかの実施形態では、標的核酸に相補的なアンチセンスオリゴヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列は、１２～２２、例えば１４～２０、例えば１６～２０、例えば１５～１８、例えば１６～１８、例えば１６～１７、１８、１９又は２０の連続ヌクレオチド長を含むか、又はそれらからなる。

連続オリゴヌクレオチド配列（モチーフ配列）は、例えばヌクレアーゼ耐性及び／又は標的核酸に対する結合親和性を増大させるために修飾され得ることが理解される。

修飾ヌクレオシド（高親和性修飾ヌクレオシド等）がオリゴヌクレオチド配列に組み込まれるパターンは、一般にオリゴヌクレオチド設計と称される。

本発明の核酸分子は、修飾ヌクレオシド及びＲＮＡヌクレオシド（特に、ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡ分子）又はＤＮＡヌクレオシド（特に、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド）を用いて設計することができる。高親和性修飾ヌクレオシドを用いることが有利である。

有利な実施形態では、核酸分子又は連続ヌクレオチド配列は、１つ以上の糖修飾ヌクレオシド、例えば２’糖修飾ヌクレオシド、例えば２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、アラビノ核酸（ＡＮＡ）、２’－フルオロ－ＡＮＡ及びＬＮＡヌクレオシドからなる群から独立して選択される１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシドを含む。１つ以上の修飾ヌクレオシド（複数可）がロックド核酸（ＬＮＡ）である場合、有利である。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、ＬＮＡヌクレオシドを含む。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、ＬＮＡヌクレオシド及びＤＮＡヌクレオシドを含む。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、２’－Ｏ－メトキシエチル（２’ＭＯＥ）ヌクレオシドを含む。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列は、２’－Ｏ－メトキシエチル（２’ＭＯＥ）ヌクレオシド及びＤＮＡヌクレオシドを含む。

有利には、アンチセンスオリゴヌクレオチドの最も３’側のヌクレオシド、又はその連続ヌクレオチド配列は、２’糖修飾ヌクレオシドである。

更なる実施形態では、核酸分子は、少なくとも１つの修飾されたヌクレオシド間結合を含む。好適なヌクレオシド間修飾は、「修飾ヌクレオシド間結合」の「定義」セクションに記載されている。

有利には、オリゴヌクレオチドは、ホスホロチオエート又はホスホロジチオエート等の少なくとも１つの修飾されたヌクレオシド間結合を含む。

いくつかの実施形態では、連続ヌクレオチド配列中の少なくとも１つのヌクレオシド間結合は、ホスホジエステルヌクレオシド間結合である。

オリゴヌクレオチドの５’末端又は３’末端における少なくとも２～３個のヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である場合、有利である。

一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドについて、連続ヌクレオチド配列内の少なくとも７５％、例えば全てのヌクレオシド間結合がホスホロチオエート結合であれば有利である。いくつかの実施形態では、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドの連続配列中の全ヌクレオチド間結合は、ホスホロチオエート結合である。

本発明の有利な実施形態では、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、ＲＮａｓｅ Ｈ、例えばＲＮａｓｅ Ｈ１を動員することができる。有利な構造設計は、例えば、「ギャップマー」、「ＬＮＡギャップマー」、及び「ＭＯＥギャップマー」の「定義」セクションに記載されているギャップマー設計である。本発明では、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドがＦ－Ｇ－Ｆ’設計のギャップマーである場合が有利である。

全ての場合において、Ｆ－Ｇ－Ｆ’設計は、「オリゴヌクレオチド中の領域Ｄ’又はＤ’’」の「定義」セクションに記載されるように、領域Ｄ’及び／又はＤ’’を更に含み得る。

本発明は、配列番号２３に存在する少なくとも１４個、例えば少なくとも１５個、例えば１６個の連続ヌクレオチドを含む連続ヌクレオチド配列を含む、本発明によるアンチセンスオリゴヌクレオチド、例えばアンチセンスオリゴヌクレオチド１２～２４、例えば１２～１８個の長さのヌクレオシドを提供する。

本発明は、配列番号２４に存在する少なくとも１４個、例えば少なくとも１５個、例えば１６個の連続ヌクレオチドを含む連続ヌクレオチド配列を含む、本発明によるアンチセンスオリゴヌクレオチド、例えばアンチセンスオリゴヌクレオチド１２～２４、例えば１２～１８個の長さのヌクレオシドを提供する。

本発明は、配列番号２５に存在する少なくとも１４個、例えば少なくとも１５個、例えば１６個の連続ヌクレオチドを含む連続ヌクレオチド配列を含む、本発明によるアンチセンスオリゴヌクレオチド、例えばアンチセンスオリゴヌクレオチド１２～２４、例えば１２～１８個の長さのヌクレオシドを提供する。

本発明は、配列番号２３、２４又は２５に示される連続ヌクレオチド配列を含むか又はそれからなる本発明によるＬＮＡギャップマーを提供する。いくつかの実施形態では、ＬＮＡギャップマーは、表７のＣＭＰ ＩＤ ＮＯ：２３＿１、２４＿１又は２５＿１を有するＬＮＡギャップマーである。

本発明の更なる態様では、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡ等の核酸分子を、アシアロ糖タンパク質受容体（ＡＳＧＰｒ）に結合することができるコンジュゲート部分、例えば二価又は三価のＧａｌＮＡｃクラスターに共有結合することによって、肝臓に直接標的化することができる。

コンジュゲート
ＨＢＶ感染は主に肝臓の肝細胞に影響を及ぼすので、ＣＯＰＳ３阻害剤をコンジュゲート部分に結合させ、未結合阻害剤と比較して阻害剤の肝臓への送達を増加させることが、有利である。一実施形態では、肝臓標的化部分は、コレステロール若しくは他の脂質を含む部分、又はアシアロ糖タンパク質受容体（ＡＳＧＰＲ）に結合し得るコンジュゲート部分から選択される。

いくつかの実施形態では、本発明は、コンジュゲート部分に共有結合した本発明の核酸分子を含むコンジュゲートを提供する。

アシアロ糖タンパク質受容体（ＡＳＧＰＲ）コンジュゲート部分は、ガラクトースと同等以上の親和性でアシアロ糖タンパク質受容体（ＡＳＰＧＲ標的化部分）に結合することができる、１つ以上の炭水化物部分を含む。アシアロ糖タンパク質受容体に対する多数のガラクトース誘導体の親和性が研究されており（例えば、Ｊｏｂｓｔ，Ｓ．Ｔ．ａｎｄ Ｄｒｉｃｋａｍｅｒ，Ｋ．ＪＢ．Ｃ．１９９６，２７１，６６８６を参照）、又は当技術分野で典型的な方法を用いて容易に決定される。

一実施形態では、コンジュゲート部分は、ガラクトース、ガラクトサミン、Ｎ－ホルミル－ガラクトサミン、Ｎ－アセチルガラクトサミン、Ｎ－プロピオニル－ガラクトサミン、Ｎ－ｎ－ブタノイル－ガラクトサミン、及びＮ－イソブタノイルガラクサミンからなる群から選択される、少なくとも１つのアシアロ糖タンパク質受容体標的化部分を含む。有利には、アシアロ糖タンパク質受容体標的化部分は、Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）である。

ＡＳＧＰＲコンジュゲート部分を生成するために、ＡＳＰＧＲ標的化部分（好ましくは、ＧａｌＮＡｃ）をコンジュゲート足場に付着させることができる。一般に、ＡＳＰＧＲ標的化部分は、足場の同じ末端にあり得る。一実施形態では、コンジュゲート部分は、アンチセンスオリゴヌクレオチドに結合され得るブランチャ分子に各ＧａｌＮＡｃ部分を結合するスペーサーに結合された、２～４個の末端ＧａｌＮＡｃ部分からなる。

更なる実施形態では、コンジュゲート部分は、アシアロ糖タンパク質受容体標的化部分に関して、一価、二価、三価、又は四価である。有利には、アシアロ糖タンパク質受容体標的化部分は、Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）部分を含む。

ＧａｌＮＡｃコンジュゲート部分としては、例えば、国際公開第２０１４／１７９６２０号及び国際公開第２０１６／０５５６０１号及びＰＣＴ／ＥＰ２０１７／０５９０８０（参照により本明細書に組み込まれる）に記載されているもの、並びにＴｙｒ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－（アミノヘキシルＧａｌＮＡｃ）３（ＹＥＥ（ａｈＧａｌＮＡｃ）３；肝細胞上のアシアロ糖タンパク質受容体に結合するグリコトリペプチド、例えば、Ｄｕｆｆ，ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ，２０００，３１３，２９７を参照）等のＧａｌＮＡｃ部分が結合した小さなペプチド；リシン系ガラクトースクラスター（例えば、Ｌ３Ｇ４；Ｂｉｅｓｓｅｎ，ｅｔ ａｌ．，Ｃａｒｄｏｖａｓｃ．Ｍｅｄ．，１９９９，２１４）；並びにコランベースのガラクトースクラスター（例えば、アシアロ糖タンパク質受容体に対する炭水化物認識モチーフ）を挙げることができる

ＡＳＧＰＲコンジュゲート部分、特に三価ＧａｌＮＡｃコンジュゲート部分は、当該技術分野で公知の方法を用いてオリゴヌクレオチドの３’末端又は５’末端に結合することができる。一実施形態では、ＡＳＧＰＲコンジュゲート部分は、オリゴヌクレオチドの５’末端に結合する。

一実施形態では、コンジュゲート部分は、図１に示すもの等の三価Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）である。一実施形態では、コンジュゲート部分は、図１Ａ－１若しくは図１Ａ－２の三価Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、又は両方の混合物である。一実施形態では、コンジュゲート部分は、図１Ｂ－１若しくは図１Ｂ－２の三価Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、又は両方の混合物である。一実施形態では、コンジュゲート部分は、図１Ｃ－１若しくは図１Ｃ－２の三価Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、又は両方の混合物である。一実施形態では、コンジュゲート部分は、図１Ｄ－１若しくは図１Ｄ－２の三価Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、又は両方の混合物である。

製造方法
更なる態様では、本発明は、ヌクレオチド単位を反応させ、それによってオリゴヌクレオチドからなる共有結合された連続ヌクレオチド単位を形成することを含む、本発明のオリゴヌクレオチドを製造する方法を提供する。好ましくは、この方法は、ホスホロアミダイト化学を使用する（例えば、Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ ｅｔ ａｌ，１９８７，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ｖｏｌ．１５４，ｐａｇｅｓ ２８７－３１３を参照）。更なる実施形態では、この方法は、連続ヌクレオチド配列を結合（ｃｏｎｊｕｇａｔｉｎｇ）部分（リガンド）と反応させて、コンジュゲート部分をオリゴヌクレオチドに共有結合させることを更に含む。更なる態様では、本発明のオリゴヌクレオチド又は結合オリゴヌクレオチドを薬学的に許容され得る希釈剤、溶媒、担体、塩、及び／又はアジュバントと混合することを含む、本発明の組成物を製造する方法が提供される。

薬学的な塩
本発明による化合物は、その薬学的に許容され得る塩の形態で存在し得る。「薬学的に許容され得る塩」という用語は、本発明の化合物の生物学的有効性及び特性を保持する従来の酸付加塩又は塩基付加塩を指す。

更なる態様では、本発明は、核酸分子の薬学的に許容され得る塩又はそのコンジュゲート、例えば薬学的に許容され得るナトリウム塩、アンモニウム塩又はカリウム塩を提供する。

医薬組成物
更なる態様では、本発明は、本発明の化合物のいずれか、特に前述の核酸分子及び／又は核酸分子コンジュゲート又はその塩と、薬学的に許容され得る希釈剤、担体、塩及び／又はアジュバントとを含む医薬組成物を提供する。薬学的に許容され得る希釈剤には、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）が含まれ、薬学的に許容され得る塩には、限定するものではないが、ナトリウム塩及びカリウム塩が含まれる。いくつかの実施形態では、薬学的に許容され得る希釈剤は、無菌リン酸緩衝生理食塩水である。いくつかの実施形態では、核酸分子は、５０～３００μＭの溶液の濃度で薬学的に許容され得る希釈剤中で使用される。

本発明での使用に適した製剤は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，Ｐａ．，１７ｔｈ ｅｄ．，１９８５に見られる。薬物送達の方法の簡単な概説については、例えば、Ｌａｎｇｅｒ（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７－１５３３，１９９０）を参照されたい。国際公開第２００７／０３１０９１号は、薬学的に許容され得る希釈剤、担体及びアジュバントの適切で好ましい更なる例を提供する（参照により本明細書に組み込まれる）。適切な用量、製剤、投与経路、組成物、剤形、他の治療薬との組み合わせ、プロドラッグ製剤もまた、国際公開第２００７／０３１０９１号に提供されている。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子若しくは核酸分子コンジュゲート、又はその薬学的に許容され得る塩は、固体形態、例えば粉末、例えば凍結乾燥粉末である。

本発明の化合物、核酸分子又は核酸分子コンジュゲートは、医薬組成物又は製剤の調製のために薬学的に許容され得る活性物質又は不活性物質と混合され得る。医薬組成物の調製のための組成物及び方法は、限定されるものではないが、投与経路、疾患の程度、又は投与される用量を含む多くの基準に依存する。

これらの組成物は、従来の滅菌技術によって滅菌されても、又は滅菌フィルタにかけられてもよい。得られた水溶液は、そのまま使用するために包装するか、又は凍結乾燥することができ、凍結乾燥された調製物は、投与前に滅菌水性担体と組み合わされる。調製物のｐＨは、典型的には３～１１、より好ましくは５～９又は６～８、最も好ましくは７～８、例えば７～７．５であろう。得られた固体形態の組成物は、錠剤又はカプセルの密封パッケージ等のように、各々が上記の薬剤又は薬剤群の固定量を含む複数の単回用量単位で包装することができる。固体形態の組成物はまた、局所適用可能なクリーム又は軟膏用に設計された絞り出し可能なチューブ等の柔軟な量の容器に包装することもできる。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子又は核酸分子コンジュゲートはプロドラッグである。特に、核酸分子コンジュゲートに関して、コンジュゲート部分は、プロドラッグが作用部位、例えば標的細胞に送達されると核酸分子から切断される。

投与
本発明の化合物、核酸分子若しくは核酸分子コンジュゲート、又は医薬組成物は、局所的（皮膚、吸入、眼、又は耳等）、又は経腸的（経口的に又は消化管を通して）、又は非経口的（静脈内、皮下、筋肉内、脳内、脳室内、又は髄腔内等）に投与され得る。

好ましい実施形態では、本発明のオリゴヌクレオチド又は医薬組成物は、静脈内、動脈内、皮下、腹腔内又は筋肉内注射又は注入を含む非経口経路によって投与される。一実施形態では、活性核酸分子又は核酸分子コンジュゲートは静脈内投与される。別の実施形態では、活性核酸分子又は核酸分子コンジュゲートは皮下投与される。

いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子、核酸分子コンジュゲート又は医薬組成物は、０．１～１５ｍｇ／ｋｇ、例えば０．２～１０ｍｇ／ｋｇ、例えば０．２５～５ｍｇ／ｋｇの用量で投与される。投与は、１週間に１回、２週間に１回、３週間に１回、又は更に１ヶ月に１回であり得る。

本発明はまた、医薬が皮下投与用の剤形である医薬の製造について記載される本発明の核酸分子又は核酸分子コンジュゲート等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用を提供する。

併用療法
いくつかの実施形態では、本発明の核酸分子、核酸分子コンジュゲート又は医薬組成物等の本発明の阻害剤は、別の治療剤との併用処置で使用するためのものである。治療薬は、例えば、上記の疾患又は障害の標準的な治療薬であり得る。

例として、本発明の核酸分子又は核酸分子コンジュゲート等のＣＯＰＳ３阻害剤は、アンチセンス（他のＬＮＡオリゴマーを含む）、ｓｉＲＮＡ（ＡＲＣ５２０等）、アプタマー、モルホリノ、又は任意の他の抗ウイルス、ヌクレオチド配列依存性作用様式のいずれかを介して作用する、オリゴヌクレオチド系抗ウイルス剤、例えば配列特異的オリゴヌクレオチド系抗ウイルス剤等の他の活性剤と組み合わせて使用することができる。

更なる例として、本発明の核酸分子又は核酸分子コンジュゲート等のＣＯＰＳ３阻害剤は、インターフェロン（例えば、ペグ化インターフェロンアルファ）、ＴＬＲ７アゴニスト（例えば、ＧＳ－９６２０）、又は治療ワクチン等の免疫刺激抗ウイルス化合物といった他の活性物質と組み合わせて使用することができる。

更なる例として、本発明の核酸分子又は核酸分子コンジュゲート等のＣＯＰＳ３阻害剤は、抗ウイルス活性を有する他の活性物質、例えば小分子と組み合わせて使用することができる。これらの他の活性物質は、例えば、ヌクレオシド／ヌクレオチド阻害剤（例えば、エンテカビル又はテノホビル・ジソプロキシルフマル酸塩）、封入阻害剤、侵入阻害剤（例えば、Ｍｙｒｃｌｕｄｅｘ Ｂ）であり得る。

ある特定の実施形態では、更なる治療薬は、ＨＢＶ剤、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）剤、化学療法剤、抗生物質、鎮痛薬、非ステロイド性抗炎症（ＮＳＡＩＤ）剤、抗真菌剤、抗寄生虫剤、抗悪心剤、止瀉薬、止瀉薬、又は免疫抑制剤であり得る。

特に、関連する実施形態では、追加のＨＢＶ剤は、インターフェロンアルファ－２ｂ、インターフェロンアルファ－２ａ、及びインターフェロンアルファコン－１（ペグ化及び非ペグ化）、リバビリン；ＨＢＶ ＲＮＡ複製阻害薬；第２のアンチセンスオリゴマー；ＨＢＶ治療ワクチン；ＨＢＶ予防ワクチン；ラミブジン（３ＴＣ）；エンテカビル（ＥＴＶ）；フマル酸テノホビルジイソプロキシル（ＴＤＦ）；テルビブジン（ＬｄＴ）；アデホビル；又はＨＢＶ抗体療法（単クローン性又は多クローン性）であり得る。

他の特定の関連する実施形態では、更なるＨＣＶ剤は、インターフェロンアルファ－２ｂ、インターフェロンアルファ－２ａ、及びインターフェロンアルファコン－１（ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ａｌｐｈａｃｏｎ－１）（ペグ化及び非ペグ化）；リバビリン；ペガシス；ＨＣＶ ＲＮＡ複製阻害剤（例えば、ＶｉｒｏＰｈａｒｍａ製ＶＰ５０４０６シリーズ）；ＨＣＶアンチセンス剤；ＨＣＶ治療ワクチン；ＨＣＶプロテアーゼ阻害剤；ＨＣＶヘリカーゼ阻害剤；又はＨＣＶモノクローナル抗体療法若しくはＨＣＶポリクローナル抗体療法であり得る。

用途
本発明の核酸分子は、例えば、診断、処置及び予防のための研究試薬として利用され得る。

研究では、そのような核酸分子を使用して、細胞（例えば、インビトロ細胞培養物）及び実験動物におけるＣＯＰＳ３タンパク質の合成を特異的に調節し、それによって標的の機能分析又は治療的介入の標的としてのその有用性の評価を促進し得る。典型的には、標的調節は、タンパク質を生成するｍＲＮＡを分解又は阻害し、それによりタンパク質形成を防止することによって、又はタンパク質を生成する遺伝子若しくはｍＲＮＡのモジュレータを分解若しくは阻害することによって達成される。

本発明の核酸分子を研究又は診断に使用する場合、標的核酸は、ｃＤＮＡ、又はＤＮＡ若しくはＲＮＡに由来する合成核酸であり得る。

本発明はまた、ＣＯＰＳ３を発現している標的細胞においてＣＯＰＳ３発現を調節するためのｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏの方法であって、有効量の本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物、又は医薬組成物を該細胞に投与することを含む方法も、包含する。

いくつかの実施形態では、標的細胞は、哺乳動物細胞、特にヒト細胞である。標的細胞は、哺乳動物の組織の一部を形成するｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞培養物又はｉｎ ｖｉｖｏ細胞であってよい。好ましい実施形態では、標的細胞は、肝臓中に存在する。標的細胞は肝細胞であってもよい。

本発明の一態様は、医薬として使用するための本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤に関する。

本発明の一態様では、本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤は、感染細胞中のｃｃｃＤＮＡレベルを低下させ、したがってＨＢＶ感染を阻害することができる。特に、核酸分子は、感染細胞中における以下のパラメータ（ｉ）ｃｃｃＤＮＡの減少、及び／又は（ｉｉ）ｐｇＲＮＡの減少、及び／又は（ｉｉｉ）ＨＢＶ ＤＮＡの減少、及び／又は（ｉｖ）ＨＢＶウイルス抗原の減少のうちの１つ以上に影響を及ぼすことができる。

例えば、ＨＢＶ感染を阻害する核酸分子は、（ｉ）感染細胞中のｃｃｃＤＮＡレベルを、対照と比較して、少なくとも４０％、例えば５０％若しくは６０％低減、又は（ｉｉ）ｐｇＲＮＡレベルを、対照と比較して、少なくとも４０％、例えば５０％若しくは６０％低減することができる。対照は、未処置の細胞若しくは動物、又は適切な陰性対照で処置された細胞若しくは動物であり得る。

ＨＢＶ感染の阻害は、ＨＢＶに感染した初代ヒト肝細胞を用いてｉｎ ｖｉｔｒｏで、又はヒト化肝細胞ＰＸＢマウスモデル（ＰｈｏｅｎｉｘＢｉｏから入手可能、また、Ｋａｋｕｎｉ ｅｔ ａｌ ２０１４ Ｉｎｔ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｓｃｉ．１５：５８－７４も参照）を用いてｉｎ ｖｉｖｏで測定することができる。ＨＢｓＡｇ及び／又はＨＢｅＡｇの分泌阻害は、製造業者の指示に従って、例えばＣＬＩＡ ＥＬＩＳＡキット（Ａｕｔｏｂｉｏ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ）を用いてＥＬＩＳＡにより測定することができる。細胞内ｃｃｃＤＮＡ又はＨＢＶ ｍＲＮＡ及びｐｇＲＮＡの減少は、例えば、材料及び方法セクションに記載されるように、ｑＰＣＲによって測定することができる。試験化合物がＨＢＶ感染を阻害するかどうかを評価するための更なる方法は、例えば国際公開第２０１５／１７３２０８号に記載されている通りｑＰＣＲにより、又はノーザンブロット、インサイチュハイブリダイゼーション、又は免疫蛍光を用いて、ＨＢＶ ＤＮＡの分泌を測定することである。

ＣＯＰＳ３レベルの低下のために、本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物は、ＨＢＶ感染の発症を阻害するために、又はＨＢＶ感染の処置において使用することができる。特に、ｃｃｃＤＮＡの不安定化及び減少により、本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物は、ＨＢｓＡｇの分泌のみを減少させる化合物と比較して、慢性ＨＢＶ感染の発症をより効率的に阻害するか又は慢性ＨＢＶ感染を処置する。

したがって、本発明の一態様は、ＨＢＶ感染個体においてｃｃｃＤＮＡ及び／又はｐｇＲＮＡを減少させるための本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用に関する。

本発明の更なる態様は、慢性ＨＢＶ感染の発症を阻害する又は処置するための本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用に関する。

本発明の更なる態様は、ＨＢＶ感染者の感染性を低下させるための本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用に関する。本発明の特定の態様では、本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤は、慢性ＨＢＶ感染の発症を阻害する。

本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物（又は本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物若しくは医薬組成物を予防的に受け取る）等のＣＯＰＳ３阻害剤で処置される被験体は、好ましくはヒト、より好ましくはＨＢｓＡｇ陽性及び／又はＨＢｅＡｇ陽性であるヒト患者、更により好ましくはＨＢｓＡｇ陽性及びＨＢｅＡｇ陽性であるヒト患者である。

したがって、本発明は、ＨＢＶ感染を処置する方法であって、有効量の本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤を投与することを含む方法に関する。本発明は更に、慢性ＨＢＶ感染に起因する肝硬変及び肝細胞癌を予防する方法に関する。一実施形態では、本発明のＣＯＰＳ３阻害剤は、肝細胞癌の処置を意図するものではなく、その予防のみを意図する。

本発明はまた、医薬、特にＨＢＶ感染若しくは慢性ＨＢＶ感染の処置又はＨＢＶ感染者の感染性の低下に使用するための医薬を製造するための、本発明の核酸分子、コンジュゲート化合物又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用を提供する。好ましい実施形態では、医薬は、皮下投与のための剤形で製造される。

本発明はまた、核酸分子、コンジュゲート化合物等のＣＯＰＳ３阻害剤の使用であって、医薬が静脈内投与用の剤形である医薬の製造のための本発明の医薬組成物を提供する。

本発明の核酸分子、コンジュゲート又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤は、併用療法で使用され得る。例えば、本発明の核酸分子、コンジュゲート又は医薬組成物等のＣＯＰＳ３阻害剤は、ＨＢＶの処置及び／又は予防のために、インターフェロンアルファ－２ｂ、インターフェロンアルファ－２ａ、及びインターフェロンアルファコン－１（ペグ化及び非ペグ化）、リバビリン、ラミブジン（３ＴＣ）、エンテカビル、テノホビル、テルビブジン（ＬｄＴ）、アデホビル等の他の抗ＨＢＶ剤、又はＨＢＶ ＲＮＡ複製阻害剤、ＨＢｓＡｇ分泌阻害剤、ＨＢＶカプシド阻害剤、アンチセンスオリゴマー（例えば、国際公開第２０１２／１４５６９７号、同第２０１４／１７９６２９号、及び同第２０１７／２１６３９０号に記載）、ｓｉＲＮＡ（例えば、国際公開第２００５／０１４８０６号、同第２０１２／０２４１７０号、同第２０１２／２０５５３６２号、同第２０１３／００３５２０号、同第２０１３／１５９１０９号、同第２０１７／０２７３５０号、及び同第２０１７／０１５１７５号に記載）、ＨＢＶ治療ワクチン、ＨＢＶ予防ワクチン、ＨＢＶ抗体療法（単クローン性又は多クローン性）、又はＴＬＲ２、３、７、８、若しくは９アゴニスト等の他の抗ＨＢＶ剤と組み合わせてもよい。

本発明の実施形態
本発明の以下の実施形態は、本明細書に記載される任意の他の実施形態と組み合わせて使用することができる。上記の、特に「発明の概要」、「定義」及び「発明の詳細な説明」のセクションで提供される定義及び説明は、以下に準用される。

１．Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染の処置及び／又は予防用のＣＯＰＳ３阻害剤。

２．該ＣＯＰＳ３阻害剤が、有効量で投与される、実施形態１に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

３．該ＨＢＶ感染が、慢性感染である、実施形態１又は２に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

４．該ＣＯＰＳ３阻害剤が、感染細胞中のｃｃｃＤＮＡ及び／又はｐｇＲＮＡを減少させることができる、実施形態１～３に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

５．該ＣＯＰＳ３阻害剤が、ｃｃｃＤＮＡへのＣＯＰＳ３の会合を防止又は低減する、実施形態１～４のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

６．該阻害剤が、ＣＯＰＳ３タンパク質に特異的に結合する小分子であって、該阻害剤が、ｃｃｃＤＮＡへのＣＯＰＳ３タンパク質の会合を防止又は低減する、実施形態５に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

７．該ＣＯＰＳ３タンパク質が配列番号４、５、６、７、８又は９によってコードされる、実施形態６に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

８．該阻害剤が、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸に対して少なくとも９０％相補的である、少なくとも１２ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含むか又はそれからなる、１２～６０ヌクレオチド長の核酸分子である、実施形態１～７のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

９．該哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸のレベルを低下させることができる、実施形態８に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１０．該哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸がＲＮＡである、実施形態８又は９に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１１．該ＲＮＡがプレｍＲＮＡである、実施形態１０に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１２．該核酸分子が、アンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡからなる群から選択される、実施形態８～１１のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１３．該核酸分子が、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド又は二本鎖ｓｉＲＮＡである、実施形態１２に用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１４．該哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸が、配列番号１、４、５、６、７、８及び９からなる群から選択される、実施形態８～１３のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１５．該核酸分子の該連続ヌクレオチド配列が、配列番号１及び配列番号２の該標的核酸に対して少なくとも９８％相補的である、実施形態８～１３のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１６．該核酸分子の該連続ヌクレオチド配列が、配列番号１及び配列番号２及び配列番号３の該標的核酸に対して少なくとも９８％相補的である、実施形態８～１３のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１７．ＨＢＶ感染細胞中の該ｃｃｃＤＮＡが、対照と比較した場合、少なくとも５０％、例えば６０％減少している、実施形態１～１６のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１８．ＨＢＶ感染細胞中の該ｐｇＲＮＡが、対照と比較した場合、少なくとも５０％、例えば６０％減少している、実施形態１～１６のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

１９．該哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸が、対照と比較した場合に少なくとも５０％、例えば６０％減少している、実施形態８～１８のいずれか一つに用途が記載のＣＯＰＳ３阻害剤。

２０．１２～３０ヌクレオチド長のヌクレオチド配列を含む又はそれからなる１２～６０ヌクレオチド長の核酸分子であって、該連続ヌクレオチド配列が哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸に対して少なくとも９０％相補的、例えば９５％、例えば９８％、例えば完全に相補的である、核酸分子。

２１．前記核酸分子が化学的に生成される、実施形態２０に記載の核酸分子。

２２．該哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸が配列番号１、４、５、６、７、８及び９からなる群から選択される、実施形態２０又は２１に記載の核酸分子。

２３．該連続ヌクレオチド配列が、配列番号１及び配列番号２の該標的核酸に対して少なくとも９８％相補的である、実施形態２０又は２１に記載の核酸分子。

２４．該連続ヌクレオチド配列が、配列番号１及び配列番号２及び配列番号３の該標的核酸に対して完全に相補的である、実施形態２０又は２１に記載の核酸分子。

２５．前記核酸分子が１２～３０ヌクレオチド長である、実施形態２０～２３のいずれか一つに記載の核酸分子。

２６．該核酸分子が、二本鎖ｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡ等のＲＮＡｉ分子である、実施形態２０～２５のいずれか一つに記載の核酸分子。

２７．該核酸分子が一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドである、実施形態２０～２５のいずれか一つに記載の核酸分子。

２８．該連続ヌクレオチド配列が、表４又は表５から選択される標的核酸配列に完全に相補的である、実施形態２０～２７のいずれか一つに記載の核酸分子。

２９．配列番号１及び配列番号２の標的核酸と、－１５ｋｃａｌ未満のΔＧ°でハイブリダイズすることができる、実施形態２０～２８のいずれか一つに記載の核酸分子。

３０．該連続ヌクレオチド配列が、少なくとも１４連続ヌクレオチド、特に１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、又は２２連続ヌクレオチドを含むか、又はそれらからなる、実施形態２０～２９のいずれか一つに記載の核酸分子。

３１．該連続ヌクレオチド配列が、１４～２２個のヌクレオチドを含むか、又はそれらからなる、実施形態２０～２９のいずれか一つに記載の核酸分子。

３２．該連続ヌクレオチド配列が、１６～２０個のヌクレオチドを含むか、又はそれらからなる、実施形態３１に記載の核酸分子。

３３．該核酸分子が１４～２５ヌクレオチド長を含む又はそれからなる、実施形態２０～３２のいずれか一つに記載の核酸分子。

３４．該核酸分子が、１６～２２ヌクレオチド長の少なくとも１つのオリゴヌクレオチド鎖を含むか又はそれからなる、実施形態３３に記載の核酸分子。

３５．該連続ヌクレオチド配列が、配列番号１０、１１、１２及び１３からなる群から選択される標的配列に対して完全に相補的である、実施形態２０～３４のいずれか一つに記載の核酸分子。

３６．該連続ヌクレオチド配列が、それが相補的である哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸と比較して、０～３個のミスマッチを有する、実施形態２０～３５のいずれか一つに記載の核酸分子。

３７．該連続ヌクレオチド配列が、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸と比較して、１個のミスマッチを有する、実施形態３６に記載の核酸分子。

３８．該連続ヌクレオチド配列が、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸と比較して、２個のミスマッチを有する、実施形態３６に記載の核酸分子。

３９．該連続ヌクレオチド配列が、哺乳動物ＣＯＰＳ３標的核酸と比較して完全に相補的である、実施形態３６に記載の核酸分子。

４０．１つ以上の修飾ヌクレオシドを含む、実施形態２０～３９のいずれか一つに記載の核酸分子。

４１．該１つ以上の修飾ヌクレオシドが、高親和性修飾ヌクレオシドである、実施形態４０に記載の核酸分子。

４２．該１つ以上の修飾ヌクレオシドが２’糖修飾ヌクレオシドである、実施形態４０又は４１に記載の核酸分子。

４３．該１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシドが、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＡＮＡ、及びＬＮＡヌクレオシドからなる群から独立して選択される、実施形態４２に記載の核酸分子。

４４．該１つ以上の修飾ヌクレオシドがＬＮＡである、実施形態４０～４３のいずれか一つに記載の核酸分子。

４５．該修飾ＬＮＡヌクレオシドが、オキシＬＮＡ、アミノＬＮＡ、チオＬＮＡ、ｃＥＴ及びＥＮＡからなる群から選択される、実施形態４４に記載の核酸分子。

４６．該修飾ＬＮＡヌクレオシドが、以下の２’－４’架橋-Ｏ－ＣＨ_２－を有するオキシＬＮＡである、実施形態４４又は４５に記載の核酸分子。

４７．該オキシ－ＬＮＡが、ベータ－Ｄ－オキシ－ＬＮＡである、実施形態４６に記載の核酸分子。

４８．該修飾ＬＮＡヌクレオシドが、以下の２’－４’架橋-Ｏ－ＣＨ（ＣＨ_３）－を有するｃＥＴである、実施形態４４又は４５に記載の核酸分子。

４９．該ｃＥＴが、（Ｓ）ｃＥＴ、すなわち６’（Ｓ）メチル－ベータ－Ｄ－オキシ－ＬＮＡである、実施形態４８に記載の核酸分子。

５０．該ＬＮＡがＥＮＡであり、以下の２’－４’架橋-Ｏ－ＣＨ_２－ＣＨ_２－を有する、実施形態４４又は４５に記載の核酸分子。

５１．該核酸分子が少なくとも１つの修飾ヌクレオシド間結合を含む、実施形態２０～５０のいずれか一つに記載の核酸分子。

５２．少なくとも１個の修飾ヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、実施形態５１に記載の核酸分子。

５３．該核酸分子が、ＲＮａｓｅ Ｈを動員することができるアンチセンスオリゴヌクレオチドである、実施形態２０～５２のいずれか一つに記載の核酸分子。

５４．該アンチセンスオリゴヌクレオチド又は該連続ヌクレオチド配列が、ギャップマーである、実施形態５３に記載の核酸分子。

５５．該アンチセンスオリゴヌクレオチド又はその連続ヌクレオチド配列が、式５’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’－３’のギャップマーからなるか、又はそれを含み、式中、領域Ｆ及びＦ’が独立して１～４個の２’糖修飾ヌクレオシドを含むか又はそれらからなり、ＧがＲＮａｓｅ Ｈを動員することが可能な６～１８個のヌクレオシドの領域である、実施形態５４に記載の核酸分子。

５６．該１～４個の２’糖修飾ヌクレオシドが、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、アラビノ核酸（ＡＮＡ）、２’－フルオロ－ＡＮＡ、及びＬＮＡヌクレオシドからなる群から独立して選択される、実施形態５５に記載の核酸分子。

５７．領域Ｆ及びＦ’における該１～４個の２’糖修飾ヌクレオシドのうちの１個以上がＬＮＡヌクレオシドである、実施形態５５又は５６に記載の核酸分子。

５８．領域Ｆ及びＦ’における全ての該２’糖修飾ヌクレオシドがＬＮＡヌクレオシドである、実施形態５７に記載の核酸分子。

５９．該ＬＮＡヌクレオシドが、ベータ－Ｄ－オキシ－ＬＮＡ、アルファ－Ｌ－オキシ－ＬＮＡ、ベータ－Ｄ－アミノ－ＬＮＡ、アルファ－Ｌ－アミノ－ＬＮＡ、ベータ－Ｄ－チオ－ＬＮＡ、アルファ－Ｌ－チオ－ＬＮＡ、（Ｓ）ｃＥＴ、（Ｒ）ｃＥＴベータ－Ｄ－ＥＮＡ及びアルファ－Ｌ－ＥＮＡからなる群から選択される、実施形態５６～５８に記載の核酸分子。

６０．領域Ｆ及びＦ’が同一のＬＮＡヌクレオシドからなる、実施形態５６～５９のいずれか一つに記載の核酸分子。

６１．領域Ｆ及びＦ’における全ての該２’糖修飾ヌクレオシドがオキシ－ＬＮＡヌクレオシドである、実施形態５６～６０のいずれか一つに記載の核酸分子。

６２．領域Ｇ中の該ヌクレオシドがＤＮＡヌクレオシドである、実施形態５５～６１のいずれか一つに記載の核酸分子。

６３．領域Ｇが、少なくとも７５％のＤＮＡヌクレオシドからなる、実施形態６２に記載の核酸分子。

６４．領域Ｇ中の全てのヌクレオシドがＤＮＡヌクレオシドである、実施形態６３に記載の核酸分子。

６５．実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子と、当該核酸分子に共有結合した少なくとも１つのコンジュゲート部分とを含む、コンジュゲート化合物。

６６．該核酸分子が二本鎖ｓｉＲＮＡであり、該コンジュゲート部分が該ｓｉＲＮＡのセンス鎖に共有結合している、実施形態６５に記載のコンジュゲート化合物。

６７．該コンジュゲート部分が、炭水化物、細胞表面受容体リガンド、原薬、ホルモン、親油性物質、ポリマー、タンパク質、ペプチド、毒素、ビタミン、ウイルスタンパク質、又はそれらの組合せから選択される、実施形態６５又は６６に記載のコンジュゲート化合物。

６８．該コンジュゲート部分が、アシアロ糖タンパク質受容体に結合することができる、実施形態６５～６７のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物。

６９．該コンジュゲート部分が、ガラクトース、ガラクトサミン、Ｎ－ホルミル－ガラクトサミン、Ｎ－アセチルガラクトサミン、Ｎ－プロピオニル－ガラクトサミン、Ｎ－ｎ－ブタノイル－ガラクトサミン、及びＮ－イソブタノイルガラクサミンからなる群から選択される、少なくとも１つのアシアロ糖タンパク質受容体標的化部分を含む、実施形態６８に記載のコンジュゲート化合物。

７０．該アシアロ糖タンパク質受容体標的化部分が、Ｎ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）である、実施形態６９に記載のコンジュゲート化合物。

７１．該コンジュゲート部分が、アシアロ糖タンパク質受容体標的化部分に関して、一価、二価、三価、又は四価である、実施形態６９又は７０のコンジュゲート化合物。

７２．該コンジュゲート部分が、２～４つの末端ＧａｌＮＡｃ部分と、該アンチセンス化合物にコンジュゲートされ得るブランチャ分子に各ＧａｌＮＡｃ部分を結合するスペーサーと、からなる、実施形態７１に記載のコンジュゲート化合物。

７３．該スペーサーが、ＰＥＧスペーサーである、実施形態７２に記載のコンジュゲート化合物。

７４．該コンジュゲート部分が、三価のＮ－アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）部分である、実施形態６８～７３のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物。

７５．該コンジュゲート部分が、図１の三価ＧａｌＮＡｃ部分のうち１つから選択される、実施形態６８～７４のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物。

７６．該コンジュゲート部分が、図１Ｄ－１若しくは図１Ｄ－２の三価ＧａｌＮＡｃ部分、又は両方の混合物である、実施形態７５に記載のコンジュゲート化合物。

７７．該核酸分子とコンジュゲート部分との間に配置されたリンカーを含む、実施形態６５～７６のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物。

７８．該リンカーが、生理学的に不安定なリンカーである、実施形態７７に記載のコンジュゲート化合物。

７９．該生理学的に不安定なリンカーが、ヌクレアーゼ感受性リンカーである、実施形態７８に記載のコンジュゲート化合物。

８０．該生理学的に不安定なリンカーが、２～５個の連続ホスホジエステル結合で構成される、実施形態７８又は７９に記載のコンジュゲート化合物。

８１．非コンジュゲート核酸と比較して、肝臓対腎臓間の改善された細胞分布又はコンジュゲート化合物の肝臓への改善された細胞取り込みを示す、実施形態６８～８０のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物。

８２．実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子、実施形態６５～８１に記載のコンジュゲート化合物又はその許容され得る塩と、薬学的に許容され得る希釈剤、担体、塩及び／又はアジュバントとを含む、医薬組成物。

８３．Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染を予防、改善、及び／又は阻害する化合物を同定するための方法であって、
ａ．試験化合物を
ｉ．ＣＯＰＳ３ポリペプチド、又は
ｉｉ．ＣＯＰＳ３を発現する細胞と接触させること、
ｂ．該試験化合物の存在下又は非存在下において、ＣＯＰＳ３の該発現及び／又は活性を測定すること、並びに
ｃ．ＣＯＰＳ３の発現及び／又は活性を低下させ、ｃｃｃＤＮＡを減少させる化合物を同定すること、を含む、方法。

８４．ＣＯＰＳ３を発現している標的細胞においてＣＯＰＳ３発現を調節するためのｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏ方法であって、有効量の、実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子、実施形態６５～８１のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物、又は実施形態８２に記載の医薬組成物を当該細胞に投与することを含む、方法。

８５．該ＣＯＰＳ３発現が、いかなる処置もしない又は対照で処置したレベルと比較して、標的細胞において少なくとも５０％、又は少なくとも６０％低下する、実施形態８４に記載の方法。

８６．該標的細胞がＨＢＶに感染し、ＨＢＶ感染細胞のｃｃｃＤＮＡが、処置なし又は対照で処置したレベルと比較して、ＨＢＶ感染標的細胞で少なくとも５０％、又は少なくとも６０％減少する、実施形態８４に記載の方法。

８７．ＨＢＶ感染等の疾患を処置又は予防するための方法であって、疾患に罹患しているか又は疾患に罹患しやすい被験体に、治療有効量又は予防有効量の、実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子、実施形態６５～８１のいずれかに記載のコンジュゲート化合物、又は実施形態８２に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。

８８．被験体においてＨＢＶ感染等の疾患を処置又は予防するための医薬として使用するための、実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子、又は実施形態６５～８１のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物、又は実施形態８２に記載の医薬組成物。

８９．被験体においてＨＢＶ感染等の疾患を処置又は予防するための医薬を調製するための実施形態２０～６４のいずれか一つに記載の核酸分子、又は実施形態６５～８１のいずれか一つに記載のコンジュゲート化合物の使用。

９０．該被験体が哺乳動物である、実施形態８７～８９のいずれか一つの方法、核酸分子、アンチセンスオリゴヌクレオチド、コンジュゲート化合物又は使用。

９１．該哺乳動物がヒトである、実施形態９０に記載の方法、核酸分子、コンジュゲート化合物又はその使用。

９２．該コンジュゲート部分が、図１Ｂ－１若しくは図１Ｂ－２の三価ＧａｌＮＡｃ部分、又は両方の混合物である、実施形態７５に記載のコンジュゲート化合物。

これより、本発明を、限定的な特徴を有しない以下の実施例によって説明する。

材料及び方法
ｓｉＲＮＡ配列及び化合物

ｓｉＲＮＡのプール（ＯＮ－ＴＡＲＧＥＴｐｌｕｓ ＳＭＡＲＴプールｓｉＲＮＡ カタログ番号 ＬＵ－０１１４９４－００－０００５、Ｄｈａｒｍａｃｏｎ）は、上記の表に列挙された配列を標的とする４つの個々のｓｉＲＮＡ分子を含む。

オリゴヌクレオチド合成
オリゴヌクレオチド合成は当該技術分野で一般に知られている。以下は、適用できるプロトコルである。本発明のオリゴヌクレオチドは、使用される装置、支持体、及び濃度に関してわずかに異なる方法によって、生成されている場合がある。

オリゴヌクレオチドは、Ｏｌｉｇｏｍａｋｅｒ ４８のホスホロアミダイトアプローチを１μｍｏｌスケールで用いて、ウリジンユニバーサル支持体上で合成される。合成の終わりに、オリゴヌクレオチドを、アンモニア水を用いて６０°Ｃで５～１６時間、固体支持体から切断する。オリゴヌクレオチドを逆相ＨＰＬＣ（ＲＰ－ＨＰＬＣ）又は固相抽出によって精製し、ＵＰＬＣによって特徴付け、分子量を更にＥＳＩ－ＭＳによって確認する。

オリゴヌクレオチドの伸長：
β－シアノエチル－ホスホロアミダイトのカップリング（ＤＮＡ－Ａ（Ｂｚ）、ＤＮＡ－Ｇ（ｉｂｕ）、ＤＮＡ－Ｃ（Ｂｚ）、ＤＮＡ－Ｔ、ＬＮＡ－５－メチル－Ｃ（Ｂｚ）、ＬＮＡ－Ａ（Ｂｚ）、ＬＮＡ－Ｇ（ｄｍｆ）、又はＬＮＡ－Ｔ）は、アセトニトリル中の０．１Ｍの５’－Ｏ－ＤＭＴ保護アミダイト及びアセトニトリル（０．２５Ｍ）中のＤＣＩ（４，５－ジシアノイミダゾール）の溶液を活性剤として用いて行われる。最終サイクルでは、所望の修飾を有するホスホロアミダイト、例えばコンジュゲート基を結合するためのＣ６リンカー、又はそのようなコンジュゲート基を使用できる。ホスホルチオエート結合を導入するためのチオール化は、水素化キサンタン（アセトニトリル／ピリジン９：１中０．０１Ｍ）を用いることにより行われる。ホスホジエステル結合は、ＴＨＦ／ピリジン／水７：２：１中の０．０２Ｍヨウ素を用いて導入できる。残りの試薬はオリゴヌクレオチド合成に典型的に使用される試薬である。

固相合成後のコンジュゲーションでは、固相合成の最後のサイクルで市販のＣ６アミノリンカーホルフォラミダイトを使用でき、脱保護及び固相支持体からの切断後、アミノ結合脱保護オリゴヌクレオチドが単離される。コンジュゲートは標準的な合成方法を使用した官能基の活性化によって導入される。

ＲＰ－ＨＰＬＣによる精製：
粗化合物は、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｊｕｐｉｔｅｒ Ｃ１８ １０μｍ １５０×１０ｍｍカラムでの分取ＲＰ－ＨＰＬＣにより精製される。０．１Ｍ酢酸アンモニウムｐＨ８及びアセトニトリルを５ｍＬ／分の流速で緩衝液として使用する。収集された画分を凍結乾燥して、精製された化合物を典型的には白色固体として得る。
略語：
ＤＣＩ：４，５－ジシアノイミダゾール
ＤＣＭ：ジクロロメタン
ＤＭＦ：ジメチルホルムアミド
ＤＭＴ：４，４’－ジメトキシトリチル
ＴＨＦ：テトラヒドロフラン
Ｂｚ：ベンゾイル
Ｉｂｕ：イソブチリル
ＲＰ－ＨＰＬＣ：逆相高速液体クロマトグラフィ

Ｔ_ｍアッセイ：
オリゴヌクレオチドとＲＮＡ標的（リン酸結合、ＰＯ）二重鎖を、５００ｍＬのＲＮａｓｅフリー水で３ｍＭに希釈し、５００ｍＬの２倍Ｔ_ｍ緩衝液（２００ｍＭのＮａＣｌ、０．２ｍＭのＥＤＴＡ、２０ｍＭリン酸、ｐＨ７．０）と混合する。この溶液を９５℃で３分間加熱し、次いで、室温で３０分間アニールする。二重鎖の融解温度（Ｔ_ｍ）は、ＰＥ Ｔｅｍｐｌａｂソフトウェア（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）を用いて、ペルチェ温度プログラマＰＴＰ６を備えたＬａｍｂｄａ ４０ ＵＶ／ＶＩＳ分光光度計で測定する。温度を２０℃から９５℃に上昇させ、次いで２５℃に低下させ、２６０ｎｍで吸収を記録する。一次導関数と、融解及びアニーリングの両方の極大値とを使用して、二重鎖Ｔ_ｍを評価する。

クローン増殖培地（ｄＨＣＧＭ）．ｄＨＣＧＭは、１００Ｕ／ｍｌペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン、２０ｍＭヘペス、４４ｍＭ ＮａＨＣＯ_３、１５μｇ／ｍＬ Ｌ－プロリン、０．２５μｇ／ｍＬインスリン、５０ｎＭデキサメタゾン、５ｎｇ／ｍＬ ＥＧＦ、０．１ｍＭ Ａｓｃ－２Ｐ、２％ＤＭＳＯ、及び１０％ＦＢＳ（Ｉｓｈｉｄａ ｅｔ ａｌ．，２０１５）を含有するＤＭＥＭ培地である。細胞を、５％ＣＯ_２を含む加湿雰囲気下において３７℃のインキュベータで培養した。培養培地を、播種後２４時間、採取まで２日毎に交換した。

ＡＳＯ配列及び化合物

表中の「オリゴヌクレオチド化合物」という見出しは、モチーフ配列の具体的な設計を表す。大文字はベータ－Ｄ－オキシＬＮＡヌクレオシドであり、小文字はＤＮＡヌクレオシドであり、全てのＬＮＡ Ｃが５－メチルシトシンであり、全てのヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である）で表わされるアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＣＭＰ ＩＤ ＮＯ＝化合物ＩＤ番号）。

ＨＢＶ感染ＰＨＨ細胞
新鮮な初代ヒト肝細胞（ＰＨＨ）を、ＰｈｏｅｎｉｘＢｉｏ（ＰＸＢ細胞はＩｓｈｉｄａ ｅｔ ａｌ ２０１５ Ａｍ Ｊ Ｐａｔｈｏｌ．１８５（５）：１２７５－８５にも記載されている）によって９６ウェルプレート形式で７０，０００細胞／ウェルで提供した。

到着時に、ＰＨＨを、ＨｅｐＧ２ ２．２．１５由来のＨＢＶ（バッチＺ１２）を使用して２ ＧＥ／ｍＬのＭＯＩで、又はＰＨＨ培地中の４％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ中でＰＨＨ細胞をＨＢＶと共に１６時間インキュベートすることによって慢性患者由来の精製接種物（遺伝子型Ｃ）を使用して７Ｅ０８ ＧＥ／ｍＬのＭＯＩで感染させた。次いで、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、１０％（ｖ／ｖ）熱不活性化ウシ胎児血清（ＧＩＢＣＯ、カタログ番号１００８２）、２％（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ、１％（ｖ／ｖ）ペニシリン／ストレプトマイシン（ＧＩＢＣＯ、カタログ番号１５１４０－１４８）、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（ＧＩＢＣＯ、カタログ番号１５６３０－０８０）、４４ｍＭ ＮａＨＣＯ_３（Ｗａｋｏ、カタログ番号１９５－１４５１５）、１５μｇ／ｍｌ Ｌ－プロリン（ＭＰ－Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓ、カタログ番号０２１９４７２８２５）、０．２５μｇ／ｍｌインスリン（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｉ１８８２）、５０ｎＭデキサメタゾン（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｄ８８９３）、５ｎｇ／ｍｌ ＥＧＦ（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｅ９６４４）及び０．１ｍＭ Ｌ－アスコルビン酸２－リン酸（Ｗａｋｏ、カタログ番号０１３－１２０６１）を補充したＤＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ、カタログ番号２１８８５）からなる新鮮ＰＨＨ培地中、５％ＣＯ_２の加湿雰囲気で培養した。細胞を、５％ＣＯ２を含む加湿雰囲気下において３７℃のインキュベータで培養した。培養培地をプレーティングの２４時間後及び収穫まで週に３回交換した。

ｓｉＲＮＡトランスフェクション
感染の４日後、細胞を３連でＣＯＰＳ３ ｓｉＲＮＡプールでトランスフェクトした。対照として、無薬物対照（ＮＤＣ）、陰性対照ｓｉＲＮＡ、及びＨＢｘ ｓｉＲＮＡを含んだ（表６Ａを参照）。

ウェルごとに、２μｌの陰性対照ｓｉＲＮＡ（ストック濃度１ｕＭ）、ＣＯＰＳ３ ｓｉＲＮＡプール（ストック濃度１ｕＭ）、ＨＢｘ対照ｓｉＲＮＡ（ストック濃度０．１２ｕＭ）、又はＨ２Ｏ（ＮＤＣ）と、１８．２μｌのＯｐｔｉＭＥＭ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｒｅｄｕｃｅｄ Ｓｅｒｕｍ ｍｅｄｉａ）及び０．６ｕｌのＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標）ＲＮＡｉＭＡＸ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｔｈｅｒｍｏｆｉｓｈｅｒ ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃカタログＮｏ．１３７７８）とのトランスフェクション混合物を調製した。トランスフェクション混合物を混合し、トランスフェクションの５分前に室温でインキュベートした。トランスフェクションの前に、培地をＰＨＨ細胞から除去し、Ｐ／Ｓを含まないＨｅｐａＲＧサプリメント（Ｂｉｏｐｒｅｄｉｃ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、＃ＡＤＤ７１１Ｃ）を補充した１００μｌ／ウェルのＷｉｌｌｉａｍのＥ Ｍｅｄｉｕｍ＋ＧｌｕｔａＭＡＸ（Ｇｉｂｃｏ、＃３２５５１）と交換した。２０ｕｌのトランスフェクションミックスを各ウェルに添加して、最終濃度を、陰性対照ｓｉＲＮＡ又はＣＯＰＳ３ ｓｉＲＮＡプールについては１６ｎＭ、又はＨＢｘ対照ｓｉＲＮＡについては１．９２ｎＭとし、プレートを穏やかに揺動させた後、インキュベータに入れた。培地を６時間後にＰＨＨ培地と交換した。ｓｉＲＮＡ処置を上記のように感染後６日目に繰り返した。感染後８日目に上清を回収し、－２０℃で保存した。所望であれば、上清からＨＢｓＡｇ及びＨＢｅＡｇを決定することができる。

ＬＮＡ処置
５００μＭストックからの二つのＬＮＡマスターミックスプレートを調製した。２５μＭの最終濃度でのＬＮＡ処置のため、２００ｕＬの５００μＭストックＬＮＡを第１のマスターミックスプレート中で調製する。１００μＭのＣＯＰＳ３ ＬＮＡを含む第２のマスターミックスプレートを、５μＭの最終濃度のＬＮＡ処置のために調製し、５００μＭの各ＣＯＰＳ３ ＬＮＡ ４０μＬと１６０μＬのＰＢＳとを混合した。

感染の４日後、細胞を、２５μＭの最終濃度のＣＯＰＳ３ ＬＮＡ（表７を参照）で二連若しくは三連のいずれかで、又は無薬物対照としてのＰＢＳ（ＮＤＣ）で処置した。ＬＮＡ処置の前に、古い培地を細胞から除去し、１１４μｌ／ウェルの新鮮なＰＨＨ培地と交換した。ウェルごとに、６μＬの各ＣＯＰＳ３ ＬＮＡを５００ｕＭ又はＮＤＣとしてのＰＢＳのいずれかで１１４μＬのＰＨＨ培地に添加した。感染後４、１１及び１８日目に同じ処置を３回繰り返した。細胞培養培地を、感染後７日目、１４日目及び２１日目に３日毎に新鮮培地と交換した。

ｃｃｃＤＮＡの定量のために、感染細胞を感染後７日目から２１日目まで１０ｎＭの最終濃度でエンテカビル（ｅｎｔｅｃａｖｉｒ）（ＥＴＶ）で処置した。新鮮なＥＴＶ処置を感染後７、１１、１４、１８及び２１日目に５回繰り返した。このＥＴＶ処置を使用して、新たなウイルスＤＮＡ中間体の合成を阻害し、ＨＢＶ ｃｃｃＤＮＡ配列を特異的に検出した。

ＨＢＶ抗原発現の測定
ＨＢＶ抗原の発現及び分泌は、所望であれば、収集した上清中で測定することができる。ＨＢＶ増殖パラメータであるＨＢｓＡｇ及びＨＢｅＡｇレベルは、製造業者のプロトコルに従って、ＣＬＩＡ ＥＬＩＳＡキット（Ａｕｔｏｂｉｏ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ、ＣＬ０３１０－２号、ＣＬ０３１２－２号）を用いて測定する。簡単に述べると、２５μＬ／ウェルの上清をそれぞれの抗体被覆マイクロタイタプレートに移し、２５μＬの酵素コンジュゲート試薬を加える。プレートを振盪機上で室温にて６０分間インキュベートした後、自動洗浄機を用いて洗浄緩衝液によりウェルを５回洗浄する。２５μＬの基質Ａ及びＢを各ウェルに加えた。プレートを振盪機上で室温にて１０分間インキュベートした後、ＥｎＶｉｓｉｏｎ（登録商標）発光リーダ（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）を用いて発光を測定する。

細胞生存率測定
細胞生存率は、Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ－８（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ製ＣＣＫ８、＃９６９９２）によって上清を含まない細胞で測定した。測定のため、ＣＣＫ８試薬を通常の培養培地で１：１０に希釈し、１００μｌ／ウェルを細胞に添加した。インキュベータ内で１時間インキュベートした後、８０μｌの上清を透明な平底９６ウェルプレートに移し、マイクロプレートリーダー（Ｔｅｃａｎ）を使用して４５０ｎｍでの吸光度を読み取った。吸光度値をＮＤＣに対して正規化し、これを１００％に設定して相対細胞生存率を計算した。

ウイルスパラメータの減少が細胞死の原因ではないことを確認するために細胞生存率測定値が使用され、値が１００％に近いほど毒性が低い。ＮＤＣに対して２０％以下の細胞生存率値を与えるＬＮＡ処置は、更なる分析から除外した。

ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ発現、並びにウイルスパラメータｐｇＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及びＨＢＶ ＤＮＡ定量化を測定するためのリアルタイムＰＣＲ
細胞生存率の決定後、細胞をＰＢＳで１回洗浄した。ｓｉＲＮＡ処置のため、細胞をＴａｑＭａｎ（登録商標）Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｃｅｌｌｓ－ｔｏ－ＣＴ（商標）Ｋｉｔ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、＃ＡＭ１７２９）からの５０μｌ／ウェル溶解溶液で溶解し、－８０℃で保存した。ＬＮＡで処置した細胞について、総ＲＮＡを、ＭａｇＮＡ Ｐｕｒｅロボット及びＭａｇＮＡ Ｐｕｒｅ ９６ Ｃｅｌｌｕｌａｒ ＲＮＡ Ｌａｒｇｅ Ｖｏｌｕｍｅ Ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ、＃０５４６７５３５００１）を製造者のプロトコルに従って使用して抽出した。ＣＯＰＳ３ ＲＮＡ及びウイルスｐｇＲＮＡレベルの定量及び正常化対照、ＧＵＳ Ｂ、ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＲＮＡ－ｔｏ－Ｃｔ（商標）１－Ｓｔｅｐ Ｋｉｔ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、番号４３９２６５６）を使用した。各反応について、２又は４μｌの細胞溶解物、０．５μｌの２０×ＣＯＰＳ３ Ｔａｑｍａｎプライマー／プローブ、０．５μｌの２０×ＧＵＳ Ｂ Ｔａｑｍａｎプライマー／プローブ、５μｌの２×ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＲＴ－ＰＣＲ Ｍｉｘ、０．２５μｌの４０×ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＲＴ Ｅｎｚｙｍｅ Ｍｉｘ、及び１．７５μｌのＤＥＰＣ処置水を使用する。ＧＵＳ Ｂ ＲＮＡ及び標的ｍＲＮＡの定量に使用したプライマーを表８に列挙する。技術的反復実験を各試料について行い、存在するＤＮＡによる潜在的増幅を評価するために、マイナスＲＴ対照を含める。

標的ｍＲＮＡ発現レベル並びにウイルスｐｇＲＮＡを、ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ １２ Ｋ Ｆｌｅｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して、以下のプロトコル、４８℃で１５分間、９５℃で１０分間、次いで９５℃で１５秒間及び６０℃で６０秒間を４０サイクルのＲＴ－ｑＰＣＲによる技術的複製で定量した。

参照遺伝子ＧＵＳ Ｂ及び非トランスフェクト細胞に対して正規化された比較サイクル閾値２－ΔΔＣｔ法を使用して、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ及びｐｇＲＮＡ発現レベルを分析した。ｓｉＲＮＡ処置細胞における発現レベルを、平均無薬物対照試料（すなわち、値が低いほど阻害／減少は大きくなる）の％として示す。ＬＮＡ処置細胞では、発現レベルは、１００％として設定された非処置細胞（ＮＤＣ）と比較した阻害効果として提示され、２つの独立した生物学的複製からの平均＋ＳＤのパーセンテージとして表される。ｃｃｃＤＮＡ定量のために、ｓｉＲＮＡ又はＬＮＡで処置したＨＢＶ感染初代ヒト肝細胞から全ＤＮＡを抽出した。ｃｃｃＤＮＡ ｑＰＣＲ分析の前に、ｓｉＲＮＡ処置細胞溶解物の画分をＴ５酵素（１０Ｕ／５００ｎｇ ＤＮＡ；Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ、＃Ｍ０３６３Ｌ）で消化してウイルスＤＮＡ中間体を除去し、ｃｃｃＤＮＡ分子のみを定量した。Ｔ５消化を３７℃で３０分間行った。アッセイにおけるｑＰＣＲ干渉を回避するために、Ｔ５消化をＬＮＡ処置細胞溶解物に適用しなかった。ＨＢＶ ＤＮＡ中間体を除去し、ＬＮＡ処置細胞のｃｃｃＤＮＡレベルを定量するために、ＬＮＡ処置セクションに記載されているように、細胞をエンテカビル（１０ｎＭ）で３週間処置した。

ｓｉＲＮＡ処置細胞中のｃｃｃＤＮＡの定量のために、各反応混合物／ウェルは、２μｌのＴ５消化細胞溶解物、０．５μｌの２０×ｃｃｃＤＮＡ＿ＤＡＮＤＲＩ Ｔａｑｍａｎプライマー／プローブ（以下の表に列挙されるＬｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、カスタム＃ＡＩ１ＲＷ７Ｎ、ＦＡＭ染料）、５μｌのＴａｑＭａｎ（登録商標）Ｆａｓｔ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、＃４４４４５５７）及び２．５μｌのＤＥＰＣ処置水を含有していた。技術的な三連を各試料に対して実行した。

ｑＰＣＲによるＬＮＡ処置細胞中のｃｃｃＤＮＡの定量のため、ウェルあたり１０ｕｌの２×Ｆａｓｔ ＳＹＢＲ（商標）Ｇｒｅｅｎ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、＃４３８５６１４）、２ｕｌのｃｃｃＤＮＡ Ｐｒｉｍｅｒ Ｍｉｘ（フォワード及びリバースそれぞれ１ｕＭ）及び４ｕｌのヌクレアーゼフリー水を含む１６ｕＬ／ウェルのマスターミックスを調製する。ウェルあたり１０ｕｌの２×Ｆａｓｔ ＳＹＢＲ（商標）Ｇｒｅｅｎ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、＃４３８５６１４）、２ｕｌのミトコンドリアゲノムプライマーミックス（フォワード及びリバースそれぞれ１ｕＭ）、及び４ｕｌのヌクレアーゼフリー水を含むマスターミックスも、ｃｃｃＤＮＡの正規化のために調製する。

細胞内ＨＢＶ ＤＮＡ及び正常化対照であるヒトヘモグロビンベータ（ＨＢＢ）の定量化のため、２μｌの未消化細胞溶解物、０．５μｌの２０×ＨＢＶ Ｔａｑｍａｎプライマー／プローブ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，＃Ｐａ ０３４５３４０６＿ｓ１、ＦＡＭ染料）、０．５μｌの２０×ＨＢＢ Ｔａｑｍａｎプライマー／プローブ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、＃Ｈｓ００７５８８８９＿ｓ１、ＶＩＣ染料）、５μｌのＴａｑＭａｎ（登録商標）Ｆａｓｔ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、＃４４４４５５７）、及び２μｌのＤＥＰＣ処置水を含む各反応混合物を使用した。技術的な三連を各試料に対して実行した。

ｑＰＣＲを、急速加熱ブロック（９５℃で２０秒間、次いで９５℃で１秒間及び６０℃で２０秒間を４０サイクル）の標準設定を用いてＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ（商標）Ｋ １２フレックスで実行した。

各処置条件についての３つ全ての生物学的反復の中央値Ｃｔに対して０．９を超える差を有する値を除外することによって、データセットから外れ値を除去した。ｃｃｃＤＮＡ（ｓｉＲＮＡ及びＬＮＡ処置細胞）及び総ＨＢＶ ＤＮＡ（ｓｉＲＮＡ処置細胞のみ）の倍数変化を、２^{－ｄｄＣＴ}法を介してＣｔ値から決定し、ハウスキーピング遺伝子としてＨＢＢ又はミトコンドリアＤＮＡに対して正規化した。ｓｉＲＮＡ処置細胞の場合、発現レベルは、平均無薬物対照試料（すなわち、値が低いほど阻害／減少は大きくなる）の％として示される。ＬＮＡ処置細胞では、ｃｃｃＤＮＡに対する阻害効果を、１００％に設定した非処置細胞（ＮＤＣ）と比較して、３つの独立した生物学的複製物からの平均＋／－ＳＤのパーセンテージとして表した。

実施例１：ｓｉＲＮＡ処置から生じるＨＢＶ感染ＰＨＨ細胞におけるＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ、ＨＢＶ細胞内ＤＮＡ及びｃｃｃＤＮＡの減少の測定
以下の実験では、ＨＢＶパラメータ、ＨＢＶ ＤＮＡ及びｃｃｃＤＮＡに対するＣＯＰＳ３ノックダウンの効果を試験した。

ＨＢＶ感染ＰＨＨ細胞を、材料及び方法のセクション「ｓｉＲＮＡトランスフェクション」に記載されているように、Ｄｈａｒｍａｃｏｎ（ＬＵ－０１１４９４－００－０００５、表６Ａを参照）からのｓｉＲＮＡのプールで処置した。４日間の処置の後、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及び細胞内ＨＢＶ ＤＮＡを、材料及び方法のセクション「ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ発現、並びにウイルスパラメータｐｇＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及びＨＢＶ ＤＮＡを測定するためのリアルタイムＰＣＲ」に記載されるようにｑＰＣＲによって測定した。

結果を、平均無薬物対照試料（すなわち、値が低いほど阻害／減少は大きくなる）の％として表９に示す。

このことから、ＣＯＰＳ３ ｓｉＲＮＡプールは、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及びＨＢＶ ＤＮＡを非常に効率的に減少できることが分かる。陽性対照は、予想通り細胞内ＨＢＶ ＤＮＡを減少させたが、陰性対照と比較した場合、ｃｃｃＤＮＡに影響を及ぼさなかった。

実施例２：ＬＮＡ処置から生じるＨＢＶ感染ＰＨＨ細胞におけるＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ、ＨＢＶ細胞内ｐｇＲＮＡ及びｃｃｃＤＮＡの減少の測定
以下の実験では、ＨＢＶパラメータ、ＨＢＶ ＤＮＡ及びｃｃｃＤＮＡに対するＣＯＰＳ３ノックダウンの効果を試験した。

ＨＢＶ感染ＰＨＨ細胞を、材料及び方法のセクション「ＬＮＡ処置」に記載されているように、ＣＯＰＳ３ネイキッドＬＮＡ（表７を参照）で処置した。

２１日間の処置の後、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及び細胞内ＨＢＶ ｐｇＲＮＡを、材料及び方法のセクション「ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡ発現、並びにウイルスパラメータｐｇＲＮＡ、ｃｃｃＤＮＡ及びＨＢＶ ＤＮＡを測定するためのリアルタイムＰＣＲ」に記載されるようにｑＰＣＲによって測定した。結果は、１００％として設定された非処置細胞（ＮＤＣ）と比較した阻害効果として表１０に示されており、２回の独立した生物学的複製からの平均＋ＳＤの百分率として表されている。

このことから、ＳＣＡＭＰ３ ＬＮＡはＳＣＡＭＰ３ ｍＲＮＡ発現を顕著に低下させることができ、その結果、ｐｇＲＮＡ及びｃｃｃＤＮＡの両方の発現レベルが非常に効率的に低下することが分かる。

Claims (32)

1. Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染の処置に使用するためのＣＯＰＳ３（ＣＯＰ９シグナロソームサブユニット３）阻害剤。
2. 前記ＨＢＶ感染が、慢性感染である、請求項１に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
3. 前記ＣＯＰＳ３阻害剤が、ＨＢＶ感染細胞においてｃｃｃＤＮＡ（共有結合閉環状ＤＮＡ）の量を減少させることができる、請求項１又は２に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
4. 前記阻害剤が、哺乳動物のＣＯＰＳ３標的核酸、特にヒトＣＯＰＳ３標的配列に対して少なくとも９５％相補的である、例えば完全に相補的である、少なくとも１２ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含む１２～６０ヌクレオチド長の核酸分子であり、ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡの発現を低下させることができる、請求項１～３のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
5. 前記阻害剤が、一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡからなる群から選択される、請求項１～４のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
6. 前記哺乳動物ＣＯＰＳ３標的配列が、配列番号１、４、５、６、７、８及び９からなる群の配列から選択される、請求項１～５のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
7. 前記連続ヌクレオチド配列が、配列番号１及び配列番号２の標的配列に対して少なくとも９８％相補的である、例えば完全に相補的である、請求項４～６のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
8. 前記ＨＢＶ感染細胞中のｃｃｃＤＮＡの量が少なくとも６０％減少される、請求項３～７のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
9. 前記ＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡの量が少なくとも６０％減少される、請求項４～７のいずれか一項に記載の使用のためのＣＯＰＳ３阻害剤。
10. 哺乳動物ＣＯＰＳ３標的配列、特にヒトＣＯＰＳ３標的配列に対して９０％相補的である、例えば完全に相補的である、少なくとも１２ヌクレオチドの連続ヌクレオチド配列を含む１２～３０ヌクレオチド長の核酸分子であって、前記核酸分子がＣＯＰＳ３ ｍＲＮＡの発現を阻害することができる、核酸分子。
11. 前記連続ヌクレオチド配列が、配列番号１、４、５、６、７、８及び９からなる群から選択される配列に完全に相補的である、請求項１０に記載の核酸分子。
12. 前記核酸分子が、１２～２５、例えば１６～２０ヌクレオチド長の連続ヌクレオチド配列を含む、請求項１０又は１１に記載の核酸分子。
13. 前記核酸分子が、二本鎖ｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡ等のＲＮＡｉ分子である、請求項１０～１２のいずれか一項に記載の核酸分子。
14. 前記核酸分子が一本鎖アンチセンスオリゴヌクレオチドである、請求項１０～１２のいずれか一項に記載の核酸分子。
15. 前記核酸分子が１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシドを含む、請求項１０～１４のいずれか一項に記載の核酸分子。
16. 前記１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシドが、２’－Ｏ－アルキル－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メチル－ＲＮＡ、２’－アルコキシ－ＲＮＡ、２’－Ｏ－メトキシエチル－ＲＮＡ、２’－アミノ－ＤＮＡ、２’－フルオロ－ＤＮＡ、アラビノ核酸（ＡＮＡ）、２’－フルオロ－ＡＮＡ及びＬＮＡヌクレオシドからなる群から独立して選択される、請求項１５に記載の核酸分子。
17. 前記１つ以上の２’糖修飾ヌクレオシドがＬＮＡヌクレオシドである、請求項１５又は１６のいずれか一項に記載の核酸分子。
18. 前記連続ヌクレオチド配列が、少なくとも１つのホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含む、請求項１０～１７のいずれか一項に記載の核酸分子。
19. 前記連続ヌクレオチド配列内の全てのヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項１８に記載の核酸分子。
20. 前記核酸分子がＲＮａｓｅ Ｈを動員することができる、請求項１０～１９のいずれか一項に記載の核酸分子。
21. 前記核酸分子又はその連続ヌクレオチド配列が、式５’－Ｆ－Ｇ－Ｆ’－３’のギャップマーを含み、領域Ｆ及びＦ’が独立して１～４個の２’糖修飾ヌクレオシドを含み、Ｇが、６～１８個のＤＮＡヌクレオシドを含む領域等のＲＮａｓｅ Ｈを動員することができる６～１８個のヌクレオシドの領域である、請求項１０～２０のいずれか一項に記載の核酸分子。
22. 請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子と、前記核酸分子に共有結合した少なくとも１つのコンジュゲート部分とを含む、コンジュゲート化合物。
23. 前記コンジュゲート部分が、ＧａｌＮＡｃ部分、例えば三価ＧａｌＮＡｃ部分、例えば図１の三価ＧａｌＮＡｃ部分の１つから選択されるＧａｌＮＡｃ部分であるか、又はそれを含む、請求項２２に記載のコンジュゲート化合物。
24. 前記コンジュゲート化合物が、少なくとも２つの連続するホスホジエステル結合を含む２～５個の連結されたヌクレオシドで構成される生理学的に不安定なリンカーを含み、前記生理学的に不安定なリンカーが前記核酸分子の５’又は３’末端に共有結合している、請求項２２又は２３に記載のコンジュゲート化合物。
25. 請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、又は請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物の薬学的に許容され得る塩。
26. 請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、又は請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩と、薬学的に許容され得る賦形剤とを含む、医薬組成物。
27. ＣＯＰＳ３を発現している標的細胞におけるＣＯＰＳ３発現を阻害するためのｉｎ ｖｉｖｏ又はｉｎ ｖｉｔｒｏでの方法であって、前記方法が、有効量の、請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩、又は請求項２６に記載の医薬組成物を前記細胞に投与することを含む、方法。
28. 疾患を処置又は予防するための方法であって、前記疾患に罹患しているか又は罹患しやすい被験体に、治療又は予防有効量の、請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩、又は請求項２６に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。
29. 前記疾患が、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染、例えば慢性ＨＢＶ感染である、請求項２８に記載の方法。
30. 薬に使用するための、請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩、又は請求項２６に記載の医薬組成物。
31. Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染、例えば慢性ＨＢＶ感染の処置に使用するための、請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩、又は請求項２６に記載の医薬組成物。
32. Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）感染、例えば慢性ＨＢＶ感染を処置するための医薬を調製するための、請求項１０～２１のいずれか一項に記載の核酸分子、請求項２２～２４のいずれか一項に記載のコンジュゲート化合物、請求項２５に記載の薬学的に許容され得る塩、又は請求項２６に記載の医薬組成物の使用。
    

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