JP2023116475A - 液体クロマトグラフィー-質量分析を用いるタンパク質分析のシステムおよび方法 - Google Patents
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Abstract
Description
[1] インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有する容器と、
インレットラインポートにシースガスを提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を含む、エレクトロスプレーイオン化源;
[2] 容器が有機溶媒および追加の化学的構成成分を含む、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[3] 追加の化学的構成成分が酸である、[2]のエレクトロスプレーイオン化源;
[4] 追加の化学的構成成分が塩基である、[2]のエレクトロスプレーイオン化源;
[5] 有機溶媒がアセトニトリルである、[2]のエレクトロスプレーイオン化源;
[6] 酸がトリフルロ酢酸である、[3]のエレクトロスプレーイオン化源;
[7] 塩基がトリエチルアミンである、[4]のエレクトロスプレーイオン化源;
[8] エレクトロスプレーイオン化プローブが補助ガスインレットを含む、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[9] エレクトロスプレーイオン化プローブがエレクトロスプレーエミッターニードルを含む、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[10] シースガスが窒素ガスである、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[11] 補助ガスインレットに補助ガスが供給される、[8]のエレクトロスプレーイオン化源;
[12] エレクトロスプレーイオン化プローブが、エレクトロスプレーエミッターニードルと、シースガス流配管と、補助ガス流配管とを含む、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[13] エレクトロスプレーイオン化プローブが、シースガス流配管中の流れをエレクトロスプレーエミッターニードルに対して同軸に方向付けるように構成されている、[12]のエレクトロスプレーイオン化源;
[14] エレクトロスプレーイオン化プローブが、補助ガス流配管中の流れをエレクトロスプレーエミッターニードルに対して同軸に方向付けるように構成されている、[12]のエレクトロスプレーイオン化源;
[15] エレクトロスプレーイオン化プローブが加熱エレクトロスプレーイオン化プローブである、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[16] シースガスインレットラインが部分的にインレットラインポートに挿入されている、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[17] 改質脱溶媒ガスアウトレットラインが部分的にアウトレットラインポートに挿入されている、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[18] シースガスが、シースガスインレットラインから、有機溶媒を含有する容器を通って脱溶媒ガスアウトレットラインへと流れ込む、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[19] エレクトロスプレーに約5μL/分を上回る溶媒流量を与えることができる、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[20] 容器が第2容器によって囲まれている、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[21] 液体クロマトグラフィーシステムに接続されることができる、[1]のエレクトロスプレーイオン化源;
[22] 以下の工程を含む、試料中のタンパク質の特性解析を行う方法:
インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有する容器と、
インレットラインポートにシースガスを提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を備えたエレクトロスプレーイオン化源のインレットに試料を供給する工程、
エレクトロスプレーイオン化源のアウトレットで試料中のタンパク質の構成成分のイオンを生成する工程、ならびに
質量分析計を用いてイオンを分析し、タンパク質の構成成分を同定して、タンパク質の特性解析を行う工程;
[23] 容器が第2容器によって囲まれている、[22]の方法;
[24] エレクトロスプレーイオン化源が液体クロマトグラフィーシステムに接続される、[22]の方法;
[25] シースガスが5psi~75psiの圧力で供給される、[22]の方法;
[26] エレクトロスプレーイオン化プローブが正極性モードである、[22]の方法;
[27] エレクトロスプレーイオン化プローブが負極性モードである、[22]の方法;
[28] タンパク質の特性解析を行う工程がインタクト質量分析を行う工程を含む、[22]の方法;
[29] タンパク質の特性解析を行う工程がペプチドマッピング分析を行う工程を含む、[22]の方法;
[30] タンパク質が抗体である、[22]の方法;
[31] エレクトロスプレーイオン化源がエレクトロスプレーに約5μL/分を上回る溶媒流量を与える、[22]の方法;
[32] 以下を含む、液体クロマトグラフィー質量分析システム: および
試料の流れをエレクトロスプレーイオン化源に方向付けるように構成された液体クロマトグラフィー装置であって、
エレクトロスプレーイオン化源が、
インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有する容器と、
シースガスをインレットラインポートに提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を含み、かつ
エレクトロスプレーイオン化源が、試料の構成成分のイオンを形成させるために試料を帯電させ脱溶媒するように構成されている、
液体クロマトグラフィー装置、ならびに
イオンを受け取ってイオンの質量電荷比の特性解析を行うように構成された質量分析装置。
LC-MSに基づくペプチドマッピング分析はタンパク質生物製剤の一次配列を確認するために日常的に応用されている。ここでは、タンパク質分子がまず、公知の特異性を持つプロテアーゼを使って(ただし時には非特異的プロテアーゼを適用することもできる)小さなペプチドフラグメントに加水分解され、次に各ペプチドフラグメントのアミノ酸配列が、cDNA予測配列と使用したプロテアーゼの特異性とを考慮して、LC-MS/MS分析によって決定される(Dick et al. Journal of chromatography. B, Analytical technologies in the biomedical and life sciences 2009, 877, 230-236、Bongers et al. Journal of pharmaceutical and biomedical analysis 2000, 21, 1099-1128、Mouchahoir and Schiel, Analytical and bioanalytical chemistry 2018, 410, 2111-2126)。ペプチドマッピング分析からのデータは、翻訳後修飾の同定および定量、ジスルフィド結合による連結の確認、さらには極めて低レベル(<0.1%)に存在するアミノ酸置換事象の検出にも利用しうる(Zeck et al. PloS one 2012, 7, e40328)。タンパク質生物製剤のペプチドマッピング分析では、いわゆるUVフィンガープリントを生成するために、LC-MSが紫外(UV)検出と組み合わせて行われることも多く、これは、品質管理(QC)および医薬品リリース(drug release)における同定アッセイとして、単独で使用することができる。逆相カラムにおいてペプチドを良好なピーク形状で効果的に分離するために、トリフルオロ酢酸(TFA)が、その優れたイオン対形成能力ゆえに、移動相改質剤としてよく使用される(Shibue, et al. Journal of chromatography. A 2005, 1080, 68-75)。
質量分析計によって同定されたペプチドは、インタクトタンパク質およびそれらの翻訳後修飾の代理標本(surrogate representative)として使用することができる。それらは、実験的MS/MSデータを、タンパク質配列データベース中の考えうるペプチドから生成させた理論的MS/MSデータと相関させることによって、タンパク質特性解析に使用することができる。特性解析としては、タンパク質フラグメントのアミノ酸を配列決定すること、タンパク質シーケンシングを決定すること、タンパク質デノボシーケンシングを決定すること、翻訳後修飾の場所を特定すること、もしくは翻訳後修飾を同定すること、もしくは同等性/同質性分析(comparability analysis)、またはそれらの組み合わせが挙げられるが、それらに限定されるわけではない。
本明細書に開示する態様は、試料中のタンパク質の迅速な特性解析のための組成物、方法およびシステムを提供する。
1.1 試料調製
NISTmAb保存試料(100μg)を5mM酢酸に希釈し、5mM TCEP-HClを用いて、80℃で10分間、還元した。1M Tris-HCl(pH7.5)を用いてpHを7.5に調節した後、10mMヨードアセトアミドおよび5μgのトリプシン(E/S比1:20)を加え、試料を37℃で3時間インキュベートした。最後に、消化を止めるために、溶液を1%TFAで酸性化した。
NISTmAbのペプチドマッピング分析のために、消化物の一部(2μg)を、Q-Exactive質量分析計でのオンラインLC-MS/MS分析のために、ACQUITY UPLC Peptide BEH C18カラム(130Å、1.7μm、2.1mm×150mm)(Waters、マサチューセッツ州ミルフォード)を用いて分離した。分離には、移動相Aを水中の0.1%FA(v/v)とし、移動相Bはアセトニトリル(ACN)中の0.1%FAとした。詳しいLC勾配およびMSパラメータをそれぞれ表1および表2に掲載する。
図3に、BEH C18カラムでFAを移動相として用いたNISTmAbのトリプシン消化物のLC-MS分析から得られた基準ピーククロマトグラム(BPC)を示す。
2.1 試料調製
試料調製は1.1で述べたように実行した。
NISTmAbのペプチドマッピング分析のために、消化物の一部(2μg)を、Q-Exactive質量分析計でのオンラインLC-MS/MS分析のために、ACQUITY UPLC Peptide BEH C18カラム(130Å、1.7μm、2.1mm×150mm)(Waters、マサチューセッツ州ミルフォード)を用いて分離した。分離には、移動相Aを水中の0.05%TFA(v/v)とし、移動相BをACN中の0.045%TFA(v/v)とした。履行したLC勾配およびMSパラメータを、それぞれ表1および表2に掲載する。
図4に、BEH C18カラムでTFAを移動相として用いたNISTmAbのトリプシン消化物のLC-MS分析から得られた基準ピーククロマトグラム(BPC)を示す。図3と図4のBPCを比較すると、移動相改質剤としてFAまたはTFAのどちらかを使用することで、C18カラムでのトリプシンペプチドの分離および保持が著しく相違したことは明白である。一般に、クロマトグラフィー性能面では、TFAはFAより優れていて、親水性ペプチドのより良い保持、より良いピーク形状および総合的に高いピーク容量を呈する。例えば、小さなトリプシンペプチドEYK(P1、図4)は、FAを使用した場合にはC18カラム上に保持されず、一方、TFAを適用した場合には同じカラムに保持される。この特徴は、ペプチドマッピング分析でのタンパク質生物製剤の配列カバレッジを改良するかもしれない。他方、TFAに基づく分析は、FAに基づく分析と比較して、MS感度の著しい喪失を呈した。
3.1 試料調製
試料調製は1.1で述べたように実行した。
LS-MS分析は2.2で述べたように実行した。
1/8”TEFLON管を使用し、Canary-Safeキャップ(Analytical Sales and Services, Inc.、ニュージャージー州フランダース)を通して、Q-Exactive質量分析計からのシースガス流を、Duran pressure plusボトル(SCHOTT North America, Inc.、ニューヨーク州エルムスフォード)に転送した(図1)。次に、ボトルから出ていく管を、Thermo Scientific Ion Maxイオン源のHESI-IIプローブに再接続した。ペプチドマッピング分析のために、150mLのプロピオン酸(PA)および50mLのイソプロパノール(IPA)を混合し、ボトルに移した。次に、PAおよびIPAを含有するボトルを、管を挿入するための16mmの開口を上端に持つポリエチレン製二次容器(BEL-ART酸/溶媒ボトルキャリア、ニュージャージー州ウェイン)に入れた。改質を無効にするには、この装置を通さずに、シースガス管を直接HESI-IIプローブに接続した。
図5に、脱溶媒改変を有効にして、BEH C18カラムでトリフルオロ酢酸を移動相として用いたNISTmAbのトリプシン消化物のLC-MS分析から得られた基準ピーククロマトグラム(BPC)を示す。図5におけるBPC(TFA含有移動相、脱溶媒ガス改質有効)を図3(FA含有移動相、脱溶媒ガス改質無効)および図4(TFA含有移動相、脱溶媒ガス改質無効)と比較すると、PAおよびIPAからの酸蒸気による脱溶媒ガスの改質が、TFAに基づく分析について、MS感度の著しい増加につながったことは明白である。
4.1 試料調製
初期試料調製は1.1で述べたように実行した。ただし、新しいアプローチを連続分析に応用できるかどうか、および改良された感度がペプチドマッピング分析のために長期間にわたって維持されうるかどうかを評価するために、NISTmAb消化を2日連続して反復して行った。
LS-MS分析は2.2で述べたように実行した。
脱溶媒ガスの改質は3.3で述べたように実行した。
ここでも、3.3で述べたように酸蒸気による脱溶媒ガス改質を有効にすると、対照法(実施例3で述べたもの)と比較してMS感度の向上が直ちに達成され、それは試験した少なくとも37連続実験(約3800分)にわたって維持された(図6参照)。PAとIPAとの混合物の消費は、適用した実験条件では、毎時1mLと見積もられた。結果として、開発されたアプローチは、大きな試料セットの連続分析がしばしば要求されうるタンパク質生物製剤のルーチンペプチドマッピング分析に、極めて適している。
実施例1~4は、ペプチドマッピング分析のために脱溶媒ガスアプローチを使った結果を例証している。電荷低減によってタンパク質生物製剤のインタクト質量分析を改良する目的で同じアプローチを利用することができるかどうかを評価するために、弱塩基による脱溶媒ガスアプローチを使った実験を行った。
希釈したNISTmAb溶液(1μg/μL)に10mM TCEP-HClを加え、試料を50℃で30分間インキュベートした。試薬タンパク質X上に存在するN-グリカンを除去するために、タンパク質試料をまず5×Rapid PNGase F緩衝液(還元剤含有)を用いて0.25μg/μLに希釈し、次にその溶液を80℃で10分間インキュベートした。次に、その溶液にRapid PNGase Fを加え、その試料を50℃で30分間インキュベートした。
還元されたNISTmAbおよび試薬タンパク質Xのインタクト質量分析のために、各試料の一部(4μg)を、Q-Exactive質量分析計でのオンラインLC-MS分析のために、BioResolve RP mAbポリフェニルカラム(50mm×2.1mm、2.7μm)(Waters、マサチューセッツ州ミルフォード)を用いて分離した。詳しいLC勾配およびMSパラメータをそれぞれ表4および表5に掲載する。
a:溶媒ボトル内の圧力を低減するためにシースガス設定を15任意単位に下げた。
b:電荷低減ゆえにスキャン範囲を変更した。
1/8”TEFLON管を使用し、Canary-Safeキャップ(Analytical Sales and Services, Inc.、ニュージャージー州フランダース)を通して、Q-Exactive質量分析計からのシースガス流を、Duran pressure plusボトル(SCHOTT North America, Inc.、ニューヨーク州エルムスフォード)に転送した(図1参照)。次に、ボトルから出ていく管を、Thermo Scientific Ion Maxイオン源のHESI-IIプローブに再接続した。インタクト質量分析のために、アセトニトリル200mL中の1%トリエチルアミン(TEA)(v/v)をボトルに移した。次に、濃酸または塩基を含有するボトルを、管を挿入するための16mmの開口を上端に持つポリエチレン製二次容器(BEL-ART酸/溶媒ボトルキャリア、ニュージャージー州ウェイン)に入れた。改質を無効にするには、この装置を通さずに、シースガス管を直接HESI-IIプローブに接続した。
脱溶媒ガス改質によって同様の改良を達成することができるかどうかを評価するために、還元されたNISTmAbを試験品として使用した。アセトニトリル(ACN)を用いてトリエチルアミン(TEA)を1%(v/v)に希釈し、それを用いて脱溶媒ガス中に塩基蒸気を送達した。逆相(RP)ポリフェノールカラムでのクロマトグラフィー分離後に、対照法および脱溶媒ガス改質法で取得されたNISTmAbの還元重鎖のMSスペクトルを、共に、図7(対照法)および図8(電荷低減法)に示した。改質を有効にした後は、荷電状態+23~+55から荷電状態+14~+28へと、NISTmAb重鎖での有意な電荷低減が達成された。対照法からの荷電状態+39の詳細な検討により、高レベルのバックグラウンドノイズが明らかになった。これは、おそらくMS分析中の高荷電重鎖種の崩壊、例えば水(-18Da)、アンモニア(-17Da)およびカルボン酸(-44Da)のニュートラルロス、ならびにタンパク質主鎖断片化損失に起因すると考えられた。
加えて、TEAで脱溶媒ガスを改質することによって達成される開発された電荷低減法は、複雑なタンパク質試料中に存在する高い質量不均一性と取り組むために利用することもできる。それらには、タンパク質生物製剤の開発中にさまざまなアッセイをサポートするのに決定的に重要な種々のタンパク質試薬が含まれうる。それらタンパク質試薬の実体を確認するためのインタクト質量分析の使用は、それらが商業的供給源から得られたものであれ、組織内で生産されたものであれ、後続の研究をサポートするために必要になることが多い。一部のタンパク質試薬は甚だしいグリコシル化ゆえに分子量が高度に不均質であり、それが、ルーチンのインタクト質量法にとって著しい課題になりうる。開発した電荷低減法の有用性を実証するために、質量不均一性が高い複雑な試薬タンパク質(タンパク質X)を試験品として使用した。
分析に先だって、N-グリカンの存在によって導入される質量不均一性を取り除くために、タンパク質Xをまず、PNGase Fにより、変性かつ還元条件下で処理した。図11に示すとおり、PNGase F処理後でさえ、タンパク質Xは、通常のインタクト質量法では解読することができない高度に重なり合った(convoluted)MSスペクトルを呈した。これは、おそらく、低m/z領域におけるこの分子のさまざまな同時溶出質量体からのオーバーラップした電荷エンベロープに原因があると考えられた。
脱溶媒ガス改質は5.3で述べたように実行した。
実施例6.1で得られた結果とは対照的に、TEAによる脱溶媒ガス改質を有効にした後は、同じ試料のMSシグナルが直ちに高m/z領域にシフトして、はるかによく分割された荷電状態を呈した。次に、デコンボリューションされたスペクトル(図12参照)から、このタンパク質はO-グリカンによって甚だしく修飾されており、異なるグリコシル化部位はおそらく10箇所。異なるO-グリカン型は4種であることが、明確に判明した。総合すると、このタンパク質からの35種に近い異なる質量種が、高い信頼性で同定され、帰属された。この分子の多糖部分は、通常のESI-MS条件下では不安定であるだろうから、劇的に改良されたスペクトル品質が、電荷低減後の、より安定化されたタンパク質イオンにも原因があると考えうることは、注目に値する。
110 容器
120 シースガスインレットライン
130 脱溶媒ガスアウトレットライン
140 エレクトロスプレーイオン化プローブ
150 キャップ
160 インレットラインポート
170 アウトレットラインポート
180 シースガスインレット
190 補助ガスインレット
200 シースガス源
210 補助ガス源
220 補助ガスインレットライン
230 第2容器
SEQUENCE LISTING
<110> REGENERON PHARMACEUTICALS INCORPORATED
<120> SYSTEM AND METHOD OF ANALYSIS OF A PROTEIN USING LIQUID
CHROMATOGRAPHY-MASS SPECTROMETRY
<150> US 62/778,521
<151> 2018-12-12
<160> 6
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 3
<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 1
Glu Tyr Lys
1
<210> 2
<211> 20
<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 2
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1 5 10 15
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20
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<212> PRT
<213> Homo sapiens
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1 5 10 15
Lys
<210> 4
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<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 4
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1 5 10
<210> 5
<211> 17
<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 5
Thr Thr Pro Pro Val Leu Asp Ser Asp Gly Ser Phe Phe Leu Tyr Ser
1 5 10 15
Lys
<210> 6
<211> 63
<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 6
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Tyr Ser Leu Ser Ser Val Val Thr Val Pro Ser Ser Ser Leu Gly Thr
35 40 45
Gln Thr Tyr Ile Cys Asn Val Asn His Lys Pro Ser Asn Thr Lys
50 55 60
Claims (18)
- インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有し、有機溶媒および塩基を含む、容器と、
インレットラインポートにシースガスを提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を含む、エレクトロスプレーイオン化源であって、
該エレクトロスプレーイオン化プローブが陽イオンモードで作動し、該有機溶媒および塩基が分析物イオンの荷電状態を低下させることができる、該エレクトロスプレーイオン化源。 - 有機溶媒がアセトニトリルである、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- 塩基がトリエチルアミンである、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- エレクトロスプレーイオン化プローブが補助ガスインレットを含む、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- 補助ガスインレットに補助ガスが供給される、請求項4記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- エレクトロスプレーイオン化プローブが、エレクトロスプレーエミッターニードルと、シースガス流配管と、補助ガス流配管とを含む、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- エレクトロスプレーイオン化プローブが、シースガス流配管中の流れをエレクトロスプレーエミッターニードルに対して同軸に方向付けるように構成されている、請求項6記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- エレクトロスプレーイオン化プローブが、補助ガス流配管中の流れをエレクトロスプレーエミッターニードルに対して同軸に方向付けるように構成されている、請求項6記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- シースガスインレットラインが部分的にインレットラインポートに挿入されている、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- 改質脱溶媒ガスアウトレットラインが部分的にアウトレットラインポートに挿入されている、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- シースガスが、シースガスインレットラインから、有機溶媒を含有する容器を通って脱溶媒ガスアウトレットラインへと流れ込む、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- 容器が第2容器によって囲まれている、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- 液体クロマトグラフィーシステムに接続されることができる、請求項1記載のエレクトロスプレーイオン化源。
- インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有し、有機溶媒および塩基を含む、容器と、
インレットラインポートにシースガスを提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を備えたエレクトロスプレーイオン化源のインレットに試料を供給する工程、
エレクトロスプレーイオン化源のアウトレットで試料中のタンパク質の構成成分のイオンを生成する工程、ならびに
質量分析計を用いてイオンを分析し、タンパク質の構成成分を同定して、タンパク質の特性解析を行う工程
を含む、試料中のタンパク質の特性解析を行う方法であって、
該エレクトロスプレーイオン化プローブが陽イオンモードで作動し、該有機溶媒および塩基がイオンの荷電状態を低下させる、該方法。 - タンパク質の特性解析を行う工程がインタクト質量分析を行う工程を含む、請求項14記載の方法。
- タンパク質の特性解析を行う工程がペプチドマッピング分析を行う工程を含む、請求項14記載の方法。
- エレクトロスプレーイオン化源がエレクトロスプレーに約5μL/分を上回る溶媒流量を与える、請求項14記載の方法。
- 試料の流れをエレクトロスプレーイオン化源に方向付けるように構成された液体クロマトグラフィー装置であって、
エレクトロスプレーイオン化源が、
インレットラインポートおよびアウトレットラインポートを有するキャップを有し、有機溶媒および塩基を含む、容器と、
シースガスをインレットラインポートに提供するためのシースガスインレットラインと、
アウトレットラインポートをエレクトロスプレーイオン化プローブのシースガスインレットに接続することができる改質脱溶媒ガスアウトレットラインと
を含み、かつ
エレクトロスプレーイオン化源が、試料の構成成分のイオンを形成させるために試料を帯電させ脱溶媒するように構成されている、
液体クロマトグラフィー装置、ならびに
イオンを受け取ってイオンの質量電荷比の特性解析を行うように構成された質量分析装置
を含む、液体クロマトグラフィー質量分析システムであって、
該エレクトロスプレーイオン化プローブが陽イオンモードで作動し、該有機溶媒および塩基がイオンの荷電状態を低下させる、該システム。
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